JPS6197230A - ヒトα↓2―プラスミンインヒビターに対する選択的吸着体 - Google Patents
ヒトα↓2―プラスミンインヒビターに対する選択的吸着体Info
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- JPS6197230A JPS6197230A JP59217312A JP21731284A JPS6197230A JP S6197230 A JPS6197230 A JP S6197230A JP 59217312 A JP59217312 A JP 59217312A JP 21731284 A JP21731284 A JP 21731284A JP S6197230 A JPS6197230 A JP S6197230A
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- plasmin
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- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K16/00—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
- C07K16/38—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against protease inhibitors of peptide structure
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- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
- C07K14/81—Protease inhibitors
- C07K14/8107—Endopeptidase (E.C. 3.4.21-99) inhibitors
- C07K14/811—Serine protease (E.C. 3.4.21) inhibitors
- C07K14/8121—Serpins
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- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
- G01N33/573—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor for enzymes or isoenzymes
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- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K38/00—Medicinal preparations containing peptides
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- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
a、産業上の利用分野
本発明は、ヒトα2−プラスミンインヒビターに対する
選択的吸着体及びそれを用いてヒト血漿中よりヒトα2
−プラスミンインヒビターを分離する方法に関するもの
である。
選択的吸着体及びそれを用いてヒト血漿中よりヒトα2
−プラスミンインヒビターを分離する方法に関するもの
である。
b、従来技術
しトのα、−プラスミンインヒビタ−は、青水と諸井に
よって最初に単離・精製され、@雑木溶解酵素のプラス
ミン(plasmin )のエステラーゼ活性を瞬間的
に阻害する強力なプラスミンインヒビタ−であり、11
.796の糖を含む分子量約67.000の1本鎖の糖
蛋白質であることが知られている( Moral an
d AokiyThe Journal of Bio
logical Chemistry+251.595
6−5965(1976)参照〕。
よって最初に単離・精製され、@雑木溶解酵素のプラス
ミン(plasmin )のエステラーゼ活性を瞬間的
に阻害する強力なプラスミンインヒビタ−であり、11
.796の糖を含む分子量約67.000の1本鎖の糖
蛋白質であることが知られている( Moral an
d AokiyThe Journal of Bio
logical Chemistry+251.595
6−5965(1976)参照〕。
またその血漿中の濃度は、健常人で6.13f0.88
II9/10 ouであることも知られている(N、A
oki and T、Yamanaka+C1inC1
1nicaChi Acta 84.99−105 (
1978)参照〕。
II9/10 ouであることも知られている(N、A
oki and T、Yamanaka+C1inC1
1nicaChi Acta 84.99−105 (
1978)参照〕。
一方ヒトのα!−プラスミンインヒビターには3種類の
活性部位があることが知られている。第1はプラスミン
の線雑木溶解作用阻害部位(以下これを1リアクテイブ
サイト′ということがある) CB 、 W’iman
and D、 Co11en;The Journa
l of Biological Chemistry
+254.9291−9297(1979)参照〕 で
あり、第2はカルボキシル基末端側のプラスミン結合部
位CB 、Wiman and D、 Co11en;
European Journal of Bioch
emistry+ 84 +573−578(1978
)参照〕であり、第3はアミ7基末端のフィブリン結合
部位である( Y 、 5akata 、 et al
、 、 Thrombosis Re5earch+
16 、279−282 (1979)#照〕、最近、
ヒトα2−プラスミンインヒビターの理学的、生物学的
性質の解明が進み、ヒトα。
活性部位があることが知られている。第1はプラスミン
の線雑木溶解作用阻害部位(以下これを1リアクテイブ
サイト′ということがある) CB 、 W’iman
and D、 Co11en;The Journa
l of Biological Chemistry
+254.9291−9297(1979)参照〕 で
あり、第2はカルボキシル基末端側のプラスミン結合部
位CB 、Wiman and D、 Co11en;
European Journal of Bioch
emistry+ 84 +573−578(1978
)参照〕であり、第3はアミ7基末端のフィブリン結合
部位である( Y 、 5akata 、 et al
、 、 Thrombosis Re5earch+
16 、279−282 (1979)#照〕、最近、
ヒトα2−プラスミンインヒビターの理学的、生物学的
性質の解明が進み、ヒトα。
−グラスミ/インヒビターはlN!!維素溶雑木構に対
して、myな作用をしていることが知られている〔例え
ば青水延雄1医学のあゆみ′126.147−155(
1983)参照〕。
して、myな作用をしていることが知られている〔例え
ば青水延雄1医学のあゆみ′126.147−155(
1983)参照〕。
また、C2−プラスミンインヒビタ−先天的欠損症患者
の血液を試験管に入れ37℃に放置すると、凝固はまっ
たく正常におこるが4〜8時間で#血は完全に自然溶解
する ( N 、 Aoki + etal、 + Jour
nal of C1inicC11nicalInve
sti+ 63 +877−884(1979,)参照
〕。
の血液を試験管に入れ37℃に放置すると、凝固はまっ
たく正常におこるが4〜8時間で#血は完全に自然溶解
する ( N 、 Aoki + etal、 + Jour
nal of C1inicC11nicalInve
sti+ 63 +877−884(1979,)参照
〕。
実際−−プラスミンインヒビタ−欠損症に於ては、止血
栓の早期崩簸によるきわめて重篤な出血傾向がみられる
。
栓の早期崩簸によるきわめて重篤な出血傾向がみられる
。
この事実は、逆に1重篤な血栓症に於て血液中のC8−
プラスミンインヒビタ−の量を減少させることにより病
因となっている血栓を速やかに溶解し得ることを示唆し
ているものと考えられる。
プラスミンインヒビタ−の量を減少させることにより病
因となっている血栓を速やかに溶解し得ることを示唆し
ているものと考えられる。
C0発明の構成
そこで、本発明者らは、ヒトα2−プラスミンインヒビ
ターに対するモノクローナル抗体について研究を重ねた
ところ、ヒトα2−プラスミンインヒビターにおけるプ
ラスミンの線雑木溶解作用阻止部位を特異的に認識し、
ヒトα2−プラスミンインヒビターの線雑木溶解阻止作
用を抑制する活性を有するモノクローナル抗体を見出し
、またこのモノクローナル抗体を産生ずるバイプリドー
マ細胞を創作し得、既に提案した。
ターに対するモノクローナル抗体について研究を重ねた
ところ、ヒトα2−プラスミンインヒビターにおけるプ
ラスミンの線雑木溶解作用阻止部位を特異的に認識し、
ヒトα2−プラスミンインヒビターの線雑木溶解阻止作
用を抑制する活性を有するモノクローナル抗体を見出し
、またこのモノクローナル抗体を産生ずるバイプリドー
マ細胞を創作し得、既に提案した。
本発明者らは、かくして得られたモノクー−ナル抗体の
特異的な作用の利用について更に研究を進めた結果、ヒ
トa、−プラスミンインヒビタ−を特異的に吸着し得る
吸着体及びそれを用いてヒト血漿中のヒトα、−プラス
ミ。
特異的な作用の利用について更に研究を進めた結果、ヒ
トa、−プラスミンインヒビタ−を特異的に吸着し得る
吸着体及びそれを用いてヒト血漿中のヒトα、−プラス
ミ。
ンインヒビターを選択的に分離し得ることを見出し本発
明K j!I達したものである〇すなわち、本発明はヒ
トα2−プラスミンインヒビターにおけるプラスミンの
線雑木溶解作用の阻止部位を特異的に認識して結合し得
るモノクローナル抗体をリガンドとして不溶性担体に結
合させたヒト偽−プラスミンインヒピターに対する選択
的吸着体であり、またその吸着体を用いてヒト血漿中よ
りヒトα2−プラスミンインヒビターを選択的に分離す
る方法である。
明K j!I達したものである〇すなわち、本発明はヒ
トα2−プラスミンインヒビターにおけるプラスミンの
線雑木溶解作用の阻止部位を特異的に認識して結合し得
るモノクローナル抗体をリガンドとして不溶性担体に結
合させたヒト偽−プラスミンインヒピターに対する選択
的吸着体であり、またその吸着体を用いてヒト血漿中よ
りヒトα2−プラスミンインヒビターを選択的に分離す
る方法である。
一般に、吸着体の生物学的親和力を生体物質の分離・精
製に利用するりpマドグラフィーは、7フイニテイーク
ロマトグラフイーと呼ばれている〔例えば、千畑一部、
土佐哲也。
製に利用するりpマドグラフィーは、7フイニテイーク
ロマトグラフイーと呼ばれている〔例えば、千畑一部、
土佐哲也。
松尾雄志著「実験と応用アフィニティークロマトグラフ
ィー」講映社すイコンティフィックε照〕。
ィー」講映社すイコンティフィックε照〕。
本発明におけるアフィニティー、リガンド。
不溶性担体、吸着体なる語は、それぞれ下記に意味に解
するものとする。
するものとする。
7フイニテイー;2m物質問に存在する特異的親和力
リガント;吸着あるいはa表を目的とする物質と7フイ
ニテイーを有する 物質 不溶性担体;水に不溶性の支持体(これにはリガンドは
含まれない) 吸 着 体;リガンドを不溶性担体に固定化したもの 次に本発明におけるヒトαオープラスミンインヒビタ−
に対する選択的吸着体及びヒト血漿中よりヒトαオープ
ラスミンインヒビタ−を分離する方法について詳細に説
明する。
ニテイーを有する 物質 不溶性担体;水に不溶性の支持体(これにはリガンドは
含まれない) 吸 着 体;リガンドを不溶性担体に固定化したもの 次に本発明におけるヒトαオープラスミンインヒビタ−
に対する選択的吸着体及びヒト血漿中よりヒトαオープ
ラスミンインヒビタ−を分離する方法について詳細に説
明する。
後述するヒトσ、−プラスミンインヒビタ−に対するモ
ノクローナル抗体を適当な不溶性担体(例えばセファロ
ース)K化学的にリガンドとして結合させ、これをカラ
ムに詰め適当な緩衝溶液(例えば5(ltM)!jス緩
衝液PH7,4+ 0.15 M NaC/ ) Kよ
って平衝化する。
ノクローナル抗体を適当な不溶性担体(例えばセファロ
ース)K化学的にリガンドとして結合させ、これをカラ
ムに詰め適当な緩衝溶液(例えば5(ltM)!jス緩
衝液PH7,4+ 0.15 M NaC/ ) Kよ
って平衝化する。
この吸着体に横付試料(ヒト血漿)を添加して検体試料
中のヒトαツープラスミンインヒビj′ ターを
吸着させる。次に適当な洗浄溶液(例えば、50mM)
リス緩衝液、 pH7,4。
中のヒトαツープラスミンインヒビj′ ターを
吸着させる。次に適当な洗浄溶液(例えば、50mM)
リス緩衝液、 pH7,4。
0.15 MNaC/ )によって、不純物を吸着体か
ら除去する。次い宅血漿の1素通り画分′及び洗浄画分
′中のヒトαオープラスミンインヒビタ−量を測定する
。かくしてその値からヒト血漿中からのヒトαオープラ
スミンインヒビタ−の分離の程度を算出することができ
る。
ら除去する。次い宅血漿の1素通り画分′及び洗浄画分
′中のヒトαオープラスミンインヒビタ−量を測定する
。かくしてその値からヒト血漿中からのヒトαオープラ
スミンインヒビタ−の分離の程度を算出することができ
る。
本発明における選択的吸着体に用いられる不溶性担体と
しては、種々のものが使用できるが1例えば材質として
セファロース、ポリアクリル7ミド9セルロース!テキ
ストラン!またはマレイン酸ポリマー或いはこれらの混
合物が好ましく用いられる。これら不活性担体の形状と
しては、粉末状9粒状、ペレット状!ビーズ状!フィル
ム状、繊維状など径々の形態であることができる、 前記したように、本発明の吸着体に使用される抗体であ
る1ヒトα、−プラスミンインヒビタ−におけるプラス
ミンの線維素溶解作用の阻止部位を特異的に認識して結
合し得るモノクローナル抗体′は、本発明者らKよって
初めて見出され先に特許出願された(昭和59年4月1
7日出願;発明の名称1モノクロ一ナル抗体、ノーイブ
リドーマ細胞及びモノクローナル抗体の製造方法“)。
しては、種々のものが使用できるが1例えば材質として
セファロース、ポリアクリル7ミド9セルロース!テキ
ストラン!またはマレイン酸ポリマー或いはこれらの混
合物が好ましく用いられる。これら不活性担体の形状と
しては、粉末状9粒状、ペレット状!ビーズ状!フィル
ム状、繊維状など径々の形態であることができる、 前記したように、本発明の吸着体に使用される抗体であ
る1ヒトα、−プラスミンインヒビタ−におけるプラス
ミンの線維素溶解作用の阻止部位を特異的に認識して結
合し得るモノクローナル抗体′は、本発明者らKよって
初めて見出され先に特許出願された(昭和59年4月1
7日出願;発明の名称1モノクロ一ナル抗体、ノーイブ
リドーマ細胞及びモノクローナル抗体の製造方法“)。
本発明の前記モノクローナル抗体及びその製造方法につ
いては前記特許出願明細書に詳細に説明されているが、
以下にその内容を簡単に説明する。
いては前記特許出願明細書に詳細に説明されているが、
以下にその内容を簡単に説明する。
抗原に用いるヒトα!−プラスミンインヒビタ−は前記
青水と諸井の方法によりヒト血漿中より単#、精製され
た。
青水と諸井の方法によりヒト血漿中より単#、精製され
た。
雄Ba1b/cマウスを用いるが、他の系(5trai
ns )の1ウスを使用することもできる。その際、免
疫計画及びヒトσ鵞−プラスミンインヒビターの製産は
十分な九の抗原刺激を受けたリンパ球が形成されるよう
選ばれるべきである。例えばマウスに少量のα、−プラ
スミンインヒビタ−で成る間隔で腹腔に数回免疫の後、
さらに数回静脈に投与した。最終免疫の数日後に融合の
為に肺臓細胞を取り出す。
ns )の1ウスを使用することもできる。その際、免
疫計画及びヒトσ鵞−プラスミンインヒビターの製産は
十分な九の抗原刺激を受けたリンパ球が形成されるよう
選ばれるべきである。例えばマウスに少量のα、−プラ
スミンインヒビタ−で成る間隔で腹腔に数回免疫の後、
さらに数回静脈に投与した。最終免疫の数日後に融合の
為に肺臓細胞を取り出す。
肺臓を無菌的に取り出し、それから単細胞懸濁液を調製
する。それらの肺臓細胞を適当なラインからのマウス骨
髄腫細胞と適当な融合促進剤の使用により細胞融合させ
る。牌屍細胞対骨髄Mm胞の好ましい比率は約20=1
〜約2=1の範囲である。朽t o’個の牌1臓細胞に
ついて0.5〜1.5117tノ融合媒体の使用が適当
である。
する。それらの肺臓細胞を適当なラインからのマウス骨
髄腫細胞と適当な融合促進剤の使用により細胞融合させ
る。牌屍細胞対骨髄Mm胞の好ましい比率は約20=1
〜約2=1の範囲である。朽t o’個の牌1臓細胞に
ついて0.5〜1.5117tノ融合媒体の使用が適当
である。
細胞融合に用いる骨髄島細胞は多く知られているが、本
発明ではP3−X63−Ag8−Ul細胞(以下P 3
−U 1と略記する)C−falton+ D、E、e
t al 、l Current ToplcainM
icrobiology and Immunolog
y+ 81 + 1(1978)#照〕を用いた。これ
は、8−アザグアニン耐性の細胞ラインであり、酵素ヒ
ボキサンチンーグアニンホスボリボシルトランスフエラ
ーゼ(’hypoxanthinegu −anine
phosporibosyl transferas
e )が欠失しており、それゆえにHAT (ヒポキサ
ンチン、アミノプテリン、チミジン)培地中では生存し
ない。また、この細胞ラインは、それ自体抗体を分路し
ない、いわゆる非分泌屋である。
発明ではP3−X63−Ag8−Ul細胞(以下P 3
−U 1と略記する)C−falton+ D、E、e
t al 、l Current ToplcainM
icrobiology and Immunolog
y+ 81 + 1(1978)#照〕を用いた。これ
は、8−アザグアニン耐性の細胞ラインであり、酵素ヒ
ボキサンチンーグアニンホスボリボシルトランスフエラ
ーゼ(’hypoxanthinegu −anine
phosporibosyl transferas
e )が欠失しており、それゆえにHAT (ヒポキサ
ンチン、アミノプテリン、チミジン)培地中では生存し
ない。また、この細胞ラインは、それ自体抗体を分路し
ない、いわゆる非分泌屋である。
好ましい融合促進剤としては例えば平均分子量がi、o
oo〜4,000のポリエチレングリコールを有利に使
用できるが、この分野で知られている他の融合促進剤を
使用することもできる。
oo〜4,000のポリエチレングリコールを有利に使
用できるが、この分野で知られている他の融合促進剤を
使用することもできる。
別の容器内(例えばマイクロタイタープレート)で未融
合の膵臓細胞、未融合の骨髄腫細胞および融合した細胞
の混合物を、未融合の骨髄腫細胞を支持しない選択培地
で希釈し、未融合の細胞を死滅させるのに十分な時間(
約1週間)培養する。培地は薬物抵抗性(例えば8−7
ザグ7ニン抵抗性)で未融合の骨髄腫細胞を支持しない
もの(例えば前記HAT培地)が使用される。
合の膵臓細胞、未融合の骨髄腫細胞および融合した細胞
の混合物を、未融合の骨髄腫細胞を支持しない選択培地
で希釈し、未融合の細胞を死滅させるのに十分な時間(
約1週間)培養する。培地は薬物抵抗性(例えば8−7
ザグ7ニン抵抗性)で未融合の骨髄腫細胞を支持しない
もの(例えば前記HAT培地)が使用される。
この選択培地中では未融合の骨髄Il細胞は死滅する。
この未融合の膵臓細胞は非腫瘍性細胞なのである一定期
間後(約1週間後)死滅する。これらに対して融合した
細胞は骨髄腫の観細胞のPIk瘍性と親膵臓細胞の性質
をあわせ持つために選択培地中で生存できる。
間後(約1週間後)死滅する。これらに対して融合した
細胞は骨髄腫の観細胞のPIk瘍性と親膵臓細胞の性質
をあわせ持つために選択培地中で生存できる。
かくしてハイプリドーマ細胞が検出された後、その培養
上清を採取し、ヒトαヨープラスミンインヒビタ−に対
する抗体について酵素免疫定量法(Enzyme Li
nked Immun。
上清を採取し、ヒトαヨープラスミンインヒビタ−に対
する抗体について酵素免疫定量法(Enzyme Li
nked Immun。
5orbent A+!say ) Kよりスクリーニ
ングする。
ングする。
ヒトαヨープラスミンインヒビタ−に対する抗体を産生
じているノーイプリドーマ細胞を、無血清培地で培養し
て得られた、抗体を含んだ培養上澄液を濃縮し、ヒトα
!−プラスミンインヒビタ−と共に一定時間インキユベ
ートした。さらKこのヒトαヨープラスミンインヒビタ
−混合液にプラスミンを加え、フィブリンプレート上に
のせ、フィブリン溶鱗面積を測定した。このようにして
、ヒトα宜−プラスミンインヒビターに対する活性を持
つ抗体を産生ずるハイグリドーマ細胞を選択する。
じているノーイプリドーマ細胞を、無血清培地で培養し
て得られた、抗体を含んだ培養上澄液を濃縮し、ヒトα
!−プラスミンインヒビタ−と共に一定時間インキユベ
ートした。さらKこのヒトαヨープラスミンインヒビタ
−混合液にプラスミンを加え、フィブリンプレート上に
のせ、フィブリン溶鱗面積を測定した。このようにして
、ヒトα宜−プラスミンインヒビターに対する活性を持
つ抗体を産生ずるハイグリドーマ細胞を選択する。
目的の抗体を産生ずるハイプリドーマ細胞を適当な方法
(例えば限定希釈法)でクローン化すると、抗体は2つ
の異なった方法で産生される。その第1の方法によれば
ハイプリドーマ細胞を一定時間適当な培地で培養するこ
とKより、その培養上清からそのハイプリドーマ細胞の
産生する七ツクローナル抗体を得ることができる。第2
の方法によればノ・イブリドーマ細胞は同質遺伝子又は
半同質遺伝子を持つマウスの腹腔に注射す°ることがで
きる。一定時間後の宿主動物の血液中及び腹水中より、
そのハイプリドーマ細胞の産生ずるモノクー−ナル抗体
を得ることができる。
(例えば限定希釈法)でクローン化すると、抗体は2つ
の異なった方法で産生される。その第1の方法によれば
ハイプリドーマ細胞を一定時間適当な培地で培養するこ
とKより、その培養上清からそのハイプリドーマ細胞の
産生する七ツクローナル抗体を得ることができる。第2
の方法によればノ・イブリドーマ細胞は同質遺伝子又は
半同質遺伝子を持つマウスの腹腔に注射す°ることがで
きる。一定時間後の宿主動物の血液中及び腹水中より、
そのハイプリドーマ細胞の産生ずるモノクー−ナル抗体
を得ることができる。
上記の如くして得られたモノクローナル抗体は、ヒトα
ヨープラスミンインヒビタ−におけるプラスミンの線雑
木溶解作用の阻止部位を特異的に認識し、その部位に選
択的に結合する。
ヨープラスミンインヒビタ−におけるプラスミンの線雑
木溶解作用の阻止部位を特異的に認識し、その部位に選
択的に結合する。
本発明のヒト血漿中のα、−プラスミンインヒビタ−の
分離に用いる吸着体においては。
分離に用いる吸着体においては。
かかるモノクローナル抗体をリガンドとして不溶性担体
に化学的に結合させて使用する。
に化学的に結合させて使用する。
かへる結合方法とし【は一般にモノクローナル抗体を不
活性担体に化学的に結合する方法であればよい。
活性担体に化学的に結合する方法であればよい。
以上、本発明によれば、ヒト血漿中よりα。
−プラスミンインヒビタ−を容易に且つ選択的に分離す
ることが可能である。
ることが可能である。
以上実施例を掲げて本発明を詳述する。
実施例
α、−プラスミンインヒビタ−に対するモノクー−ナル
抗体IDl0CI をリガンドとして化学的に結合させ
た吸着体(0,51111)をカラムに詰め、洗浄液(
50m M41@液pH7,4、0,15MNaCl
)で十分に洗浄後、ヒト血漿1.0117を添加した。
抗体IDl0CI をリガンドとして化学的に結合させ
た吸着体(0,51111)をカラムに詰め、洗浄液(
50m M41@液pH7,4、0,15MNaCl
)で十分に洗浄後、ヒト血漿1.0117を添加した。
さらに、上記洗浄液1.0jljでカラム内壁を洗浄し
、溶出した両分を「素通り画分」とした。次に未吸着物
質を上記洗浄液2.0IIjで溶出し、「洗浄画分」と
した。以上の操作はすべて4℃で行なった。分取した「
素通り画分」及び「洗浄画分」は、即に4℃で脱塩、濃
縮を行な1 つだ、 ヒトα2−プラスミンインヒビター検量線の作成α!−
プラスミンインヒビター量は、本発明者らが、先に出願
した明細書く昭和59年5月1日付出願;発明の名称1
ヒトα、7ブラスミンインヒビターに対するモノクロー
ナル抗体を用いた免疫学的測定試薬及びキラ) ’))
C記載された、サンドイツチ法を用いて測定した。
、溶出した両分を「素通り画分」とした。次に未吸着物
質を上記洗浄液2.0IIjで溶出し、「洗浄画分」と
した。以上の操作はすべて4℃で行なった。分取した「
素通り画分」及び「洗浄画分」は、即に4℃で脱塩、濃
縮を行な1 つだ、 ヒトα2−プラスミンインヒビター検量線の作成α!−
プラスミンインヒビター量は、本発明者らが、先に出願
した明細書く昭和59年5月1日付出願;発明の名称1
ヒトα、7ブラスミンインヒビターに対するモノクロー
ナル抗体を用いた免疫学的測定試薬及びキラ) ’))
C記載された、サンドイツチ法を用いて測定した。
本実施例で使用した第1及び第2抗体は1本発明者らが
先に出願した明細書(昭和59年4月17日付出願;発
明の名称1モノクロ一ナル抗体、ハイプリドーマ細胞及
びモノクローナル抗体の製造方法″)に記載された方法
によって得られた下記のものを使用した。
先に出願した明細書(昭和59年4月17日付出願;発
明の名称1モノクロ一ナル抗体、ハイプリドーマ細胞及
びモノクローナル抗体の製造方法″)に記載された方法
によって得られた下記のものを使用した。
第1抗体
前記出願明細書の実施例3において得られた抗体名’
IDl0CI ’を使用し、これを下記の如く不溶性担
体(マイクロタイタープレート)に固定化させて用いた
。この抗体はα、−プラスミンインヒビタ−におけるプ
ラスミンの線雑木溶解作用の阻止部位(リアクティブサ
イト)を特異的にg臓し得るモノクローナル抗体である
。
IDl0CI ’を使用し、これを下記の如く不溶性担
体(マイクロタイタープレート)に固定化させて用いた
。この抗体はα、−プラスミンインヒビタ−におけるプ
ラスミンの線雑木溶解作用の阻止部位(リアクティブサ
イト)を特異的にg臓し得るモノクローナル抗体である
。
1a2抗体
前記出願明細書の実施例3において得られた抗体名’
IBIOGII ’を使用した。この抗体はα、−プラ
スミンインヒビタ−におけるり7クテイプサイト以外の
部位を特異的Kg識するモノクローナル抗体であり、ア
ルカリ性フォスファターゼで1iAR化して使用した。
IBIOGII ’を使用した。この抗体はα、−プラ
スミンインヒビタ−におけるり7クテイプサイト以外の
部位を特異的Kg識するモノクローナル抗体であり、ア
ルカリ性フォスファターゼで1iAR化して使用した。
濃度20μm1/111のヒトαヨープラスミンインヒ
ビタ−におけるリアクティブサイトを特異的Kl!!織
す木モノクローナル抗体(IDIOCI)をマイクロタ
イタープレート上に4℃で一晩放置し固定化した。これ
にIX牛血清アルブミンを含む緩衝液(15m M N
12CO3+ 35 m M NaHCO2+3 m
M NaN、 )を加え室温で4時間放置した後、19
6牛血清アルブミンを含む洗浄液(20mMリン酸緩衝
液+ 0.135M NaCl + 2 m M Na
N、 +0.05 j%’ Tween 20 )で5
回洗浄した。次に希釈用溶液(20mMリン敗緩衝液p
H7,4sO,135M NaCl)で種々の濃度とな
るように希釈したα鵞−プラスミンインヒビターを加え
、室温で4時間放置した。
ビタ−におけるリアクティブサイトを特異的Kl!!織
す木モノクローナル抗体(IDIOCI)をマイクロタ
イタープレート上に4℃で一晩放置し固定化した。これ
にIX牛血清アルブミンを含む緩衝液(15m M N
12CO3+ 35 m M NaHCO2+3 m
M NaN、 )を加え室温で4時間放置した後、19
6牛血清アルブミンを含む洗浄液(20mMリン酸緩衝
液+ 0.135M NaCl + 2 m M Na
N、 +0.05 j%’ Tween 20 )で5
回洗浄した。次に希釈用溶液(20mMリン敗緩衝液p
H7,4sO,135M NaCl)で種々の濃度とな
るように希釈したα鵞−プラスミンインヒビターを加え
、室温で4時間放置した。
その後前記洗浄液で5回洗浄し、さらにアルカリ性フォ
スファターゼで標識したα、−プラスミンインヒビタ−
におけるリアクティブサイト以外の部位な認識するモノ
クローナル抗体(IBIOGII)を加え4℃で一晩放
置した。前記洗浄液で洗浄後アルカリ性フォスファター
ゼ基J[ffz Wi t I W / 1LtcD
濃度Y:加え、 MICROPLATEPHOTO部T
ER(コロナ電気■製、MTP−20)で20分後K
405 nmの波長における吸光度を測定した。その結
果を添付図1illK示した、この図面からσ、−プラ
スミンインヒビタ−の濃度と吸光度との関係は直線関係
になることが埋屑できる。従ってα、−プラスミンイン
ヒビタ−におけるリアクティブサイトを特異的Kg繊す
るモノクローナル抗体をサンドインチ法における一つの
抗体とし【使用することによって、α、−プラスミンイ
ンヒビタ−の量を容易に測定することができる。
スファターゼで標識したα、−プラスミンインヒビタ−
におけるリアクティブサイト以外の部位な認識するモノ
クローナル抗体(IBIOGII)を加え4℃で一晩放
置した。前記洗浄液で洗浄後アルカリ性フォスファター
ゼ基J[ffz Wi t I W / 1LtcD
濃度Y:加え、 MICROPLATEPHOTO部T
ER(コロナ電気■製、MTP−20)で20分後K
405 nmの波長における吸光度を測定した。その結
果を添付図1illK示した、この図面からσ、−プラ
スミンインヒビタ−の濃度と吸光度との関係は直線関係
になることが埋屑できる。従ってα、−プラスミンイン
ヒビタ−におけるリアクティブサイトを特異的Kg繊す
るモノクローナル抗体をサンドインチ法における一つの
抗体とし【使用することによって、α、−プラスミンイ
ンヒビタ−の量を容易に測定することができる。
添付図面を検量線として用い、ヒト血漿[素通り画分」
及び「洗浄画分」のα、−プラスミンインヒビター量を
測定した。
及び「洗浄画分」のα、−プラスミンインヒビター量を
測定した。
試料中のα、−プラスミンインヒビター量の測定ヒトα
オープラスミンインヒビタ−におけるリアクティブサイ
トを特異的に認識するモノクローナル抗体(IDIOC
I)を濃度20μm17Mでマイクロタイタープレート
上に4℃で一晩放置し固定化した。これに1%牛血清フ
ルプミンを含む緩衝液(15mM Na1CO3135
mMNaHco@ +3 m MNaNs )を加え室
温で4時間放置した彼。
オープラスミンインヒビタ−におけるリアクティブサイ
トを特異的に認識するモノクローナル抗体(IDIOC
I)を濃度20μm17Mでマイクロタイタープレート
上に4℃で一晩放置し固定化した。これに1%牛血清フ
ルプミンを含む緩衝液(15mM Na1CO3135
mMNaHco@ +3 m MNaNs )を加え室
温で4時間放置した彼。
IN牛血清フルプミンを含む洗浄液(20mMリン酸a
!衝液10.135 M NaC/+ 2 mMNaN
l 10.05%Tvreen 2 G )で5回洗浄
した。次に希釈用溶液(20mMリン酸緩衝液+ 0.
135 MNaC/ )で徨々の濃度となるように希釈
した試料(前記「素通り画分」、「洗浄画分」及びヒト
血漿)を加え室温で4時間放置した。
!衝液10.135 M NaC/+ 2 mMNaN
l 10.05%Tvreen 2 G )で5回洗浄
した。次に希釈用溶液(20mMリン酸緩衝液+ 0.
135 MNaC/ )で徨々の濃度となるように希釈
した試料(前記「素通り画分」、「洗浄画分」及びヒト
血漿)を加え室温で4時間放置した。
その後、前記洗浄液で5回洗浄し、アルカリ性フォスフ
ァターゼで標識したヒトαオープラスミンインヒビタ−
におけるリアクティブサイト以外の部位を認識する七ツ
クローナル抗体(IBIOGII)を加え、4℃で一晩
放置した。
ァターゼで標識したヒトαオープラスミンインヒビタ−
におけるリアクティブサイト以外の部位を認識する七ツ
クローナル抗体(IBIOGII)を加え、4℃で一晩
放置した。
前記洗浄液で洗浄後、アルカリ性フォスファターゼ基質
溶液119/紅を加え、 MICROPLATEPHO
TOMETER(コロナ電気#Mシ、MTP−12)で
20分後K 405 nmの波長における吸光度を測定
した。
溶液119/紅を加え、 MICROPLATEPHO
TOMETER(コロナ電気#Mシ、MTP−12)で
20分後K 405 nmの波長における吸光度を測定
した。
結果を下記表に示す。「索量り画分」、「洗浄画分」釦
はα、−プラスミンインヒビタ−は検出されず、ヒト血
漿を前記吸着体に添加することKよってヒト血漿からα
、−プラスミンインヒビタ−が完全に分離されたことが
確認できた。
はα、−プラスミンインヒビタ−は検出されず、ヒト血
漿を前記吸着体に添加することKよってヒト血漿からα
、−プラスミンインヒビタ−が完全に分離されたことが
確認できた。
表(各試料中のα、−プラスミンインヒビター景)
離村V564はヒトαオープラスミンインヒビタ−の2
4 [と吸光度との関係を示すものである。
4 [と吸光度との関係を示すものである。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、ヒトα_2−プラスミンインヒビターにおけるプラ
スミンの繊維素溶解作用の阻止部位を特異的に認識して
結合し得るモノクローナル抗体を不溶性担体に結合させ
たヒトα_2−プラスミンインヒビターに対する選択的
吸着体。 2、該不溶性担体が、セファロース、ポリアクリルアミ
ド、セルロース、デキストラン及びマレイン酸ポリマー
なる群から選ばれた少くとも一種である第1項記載の選
択的吸着体。 3、ヒトα_2−プラスミンインヒビターにおけるプラ
スミンの繊維素溶解作用の阻止部位を特異的に認識して
結合し得るモノクローナル抗体を不溶性担体に結合させ
たヒトα_2−プラスミンインヒビターに対する選択的
吸着体を用いて、ヒトα_2−プラスミンインヒビター
含有血漿中よりヒトα_2−プラスミンインヒビターを
分離する方法。
Priority Applications (6)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP59217312A JPS6197230A (ja) | 1984-10-18 | 1984-10-18 | ヒトα↓2―プラスミンインヒビターに対する選択的吸着体 |
NO851518A NO171169C (no) | 1984-04-17 | 1985-04-16 | Monoklonale antistoffer eller fragmenter derav, spesifikke for alfa2-plasmininhibitor |
DK170485A DK166627B1 (da) | 1984-04-17 | 1985-04-16 | Monoklont antistof, der er specifikt over for human-alfa-2-plasmininhibitor, fremgangsmaade til fremstilling af et hybridom, der producerer antistoffet, anvendelse af antistoffet til immunologisk analyse for human-alfa-2-plasmininhibitor og anvendelse af antistoffet til fraskillelse og udvinding af human-alfa-2-plasmininhibitor |
EP85104629A EP0159025B1 (en) | 1984-04-17 | 1985-04-17 | Monoclonal antibody specific to human alpha2-plasmin |
DE3587714T DE3587714T2 (de) | 1984-04-17 | 1985-04-17 | Menschliches alpha 2-Plasmin spezifischer monoklonaler Antikörper. |
US07/716,694 US5534255A (en) | 1984-04-17 | 1991-06-17 | Monoclonal antibody specific to human α2 -plasmin inhibitor |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP59217312A JPS6197230A (ja) | 1984-10-18 | 1984-10-18 | ヒトα↓2―プラスミンインヒビターに対する選択的吸着体 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS6197230A true JPS6197230A (ja) | 1986-05-15 |
JPH0455200B2 JPH0455200B2 (ja) | 1992-09-02 |
Family
ID=16702182
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP59217312A Granted JPS6197230A (ja) | 1984-04-17 | 1984-10-18 | ヒトα↓2―プラスミンインヒビターに対する選択的吸着体 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS6197230A (ja) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS6410173A (en) * | 1987-07-03 | 1989-01-13 | Teijin Ltd | Method for measuring blood fibrinolytic activity |
JPH01233298A (ja) * | 1988-03-11 | 1989-09-19 | Boehringer Mannheim Gmbh | 抗体、その製造法、hmlcを測定するための試薬、ならびにモノクローナル抗体 |
-
1984
- 1984-10-18 JP JP59217312A patent/JPS6197230A/ja active Granted
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS6410173A (en) * | 1987-07-03 | 1989-01-13 | Teijin Ltd | Method for measuring blood fibrinolytic activity |
JPH01233298A (ja) * | 1988-03-11 | 1989-09-19 | Boehringer Mannheim Gmbh | 抗体、その製造法、hmlcを測定するための試薬、ならびにモノクローナル抗体 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPH0455200B2 (ja) | 1992-09-02 |
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Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
LAPS | Cancellation because of no payment of annual fees |