JP5861191B2 - ミエロイド系血液細胞の製造方法 - Google Patents
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Description
(1) ミエロイド系血液細胞において、
(A)cMYC遺伝子、並びに
(B)BMI1遺伝子、EZH2遺伝子、MDM2遺伝子、MDM4遺伝子、及びHIF1A遺伝子からなる群から選択される少なくとも一つの遺伝子
を強制的に発現させることを含む、増殖能力を有するミエロイド系血液細胞を製造する方法。
(2) 前記ミエロイド系血液細胞に前記遺伝子を導入することにより、該ミエロイド系血液細胞において該遺伝子を強制的に発現させる、(1)に記載の方法。
(3) 前記ミエロイド系血液細胞が、多能性幹細胞に由来する、(1)又は(2)に記載の方法。
(4) 前記多能性幹細胞が、人工多能性幹細胞である、(3)に記載の方法。
(5) 前記人工多能性幹細胞が、ヒト人工多能性幹細胞である、(4)に記載の方法。
(6) 前記ミエロイド系血液細胞が、末梢血単球である、(1)又は(2)に記載の方法。
(7) 前記末梢血単球が、ヒト末梢血単球である、(6)に記載の方法。
(8) 前記cMYC遺伝子、BMI1遺伝子、EZH2遺伝子、MDM2遺伝子、MDM4遺伝子、及びHIF1A遺伝子が、それぞれ、ヒトcMYC遺伝子、ヒトBMI1遺伝子、ヒトEZH2遺伝子、ヒトMDM2遺伝子、ヒトMDM4遺伝子、及びヒトHIF1A遺伝子である、(1)〜(7)のいずれかに記載の方法。
(9) マクロファージコロニー刺激因子(M-CSF)の存在下で、(1)〜(8)のいずれかに記載の方法で製造したミエロイド系血液細胞を培養することを含む、ミエロイド系血液細胞を増殖させる方法。
(10) (1)〜(9)のいずれかに記載の方法により製造される細胞。
(11) (10)に記載の細胞を樹状細胞様細胞に分化誘導することを含む、樹状細胞様細胞を製造する方法。
(12) 顆粒球・マクロファージコロニー刺激因子(GM-CSF)およびインターロイキン-4(IL-4)を含む培養液を用いて、前記ミエロイド系血液細胞を培養することにより、該ミエロイド系血液細胞を樹状細胞様細胞に分化誘導する、(11)に記載の方法。
(13) (11)又は(12)に記載の方法により製造される細胞。
(14) (10)又は(13)に記載の細胞を含む、細胞医薬。
(15) 前記細胞医薬は、感染症、腫瘍、アルツハイマー病、プリオン病、アミロイドーシス、白血病、及び/又は自己免疫疾患の治療又は予防に用いるための細胞医薬である、(14)に記載の細胞医薬。
(16) (10)若しくは(13)に記載の細胞、又は(14)に記載の細胞医薬を製造するための、
(A)cMYC遺伝子、並びに
(B)BMI1遺伝子、EZH2遺伝子、MDM2遺伝子、MDM4遺伝子、及びHIF1A遺伝子からなる群から選択される少なくとも一つの遺伝子
の使用。
(17) (14)に記載の細胞医薬を用いて、感染症、腫瘍、アルツハイマー病、プリオン病、アミロイドーシス、白血病、及び/又は自己免疫疾患を治療する方法。
(B)BMI1遺伝子、EZH2遺伝子、MDM2遺伝子、MDM4遺伝子、及びHIF1A遺伝子からなる群から選択される少なくとも一つの遺伝子を強制的に発現させることを含むことを特徴とする。
本発明で用いる胚性(ES)細胞は、哺乳動物由来のES細胞であればよく、その種類などは特に限定されず、例えば、マウス、サル又はヒト由来のES細胞などを使用することができる。例えば、ヒトの胚性(ES) 細胞は、ヒトの初期胚から樹立された幹細胞であり、生体内に存在する全ての細胞へ分化できる能力(分化多能性)を維持したまま、長期に渡って生体外で増殖できる細胞である。
本発明で用いるiPS細胞とは、体細胞に人為的な操作を加えることにより、胚性幹細胞に類似した分化多能性を獲得させた細胞である。ここで用いる体細胞の種類は特に限定されず、生体を構成する全ての細胞を包含する。
(i)Oct遺伝子、Klf遺伝子、Sox遺伝子、Myc遺伝子
(ii)Oct遺伝子、Sox遺伝子、NANOG遺伝子、LIN28遺伝子
(iii)Oct遺伝子、Klf遺伝子、Sox遺伝子、Myc遺伝子、hTERT遺伝子、SV40 large T遺伝子
(iv)Oct遺伝子、Klf遺伝子、Sox遺伝子
本発明において、「多能性幹細胞に由来するミエロイド系血液細胞」とは、多能性幹細胞を生体外で培養しつつ分化誘導することにより作製された細胞であり、細胞表面上にミエロイド系血液細胞のマーカー分子であるCD11bあるいはCD33分子を発現する細胞を言う。ヒト多能性幹細胞をミエロイド系血液細胞へ分化させる方法は、当業界では公知である。例えば、非特許文献6、7、8、9には、ヒトの多能性幹細胞から、ミエロイド系血液細胞である樹状細胞やマクロファージを作製する方法が記載されている。以下、多能性幹細胞をミエロイド系血液細胞へ分化させる方法の例について具体的に説明するが、本発明は、以下の方法による分化誘導により製造された多能性幹細胞由来のミエロイド系血液細胞に限定されるものではない。
血液細胞の分化と増殖とを誘導する性質を有する細胞をフィーダー細胞として、多能性幹細胞と、該フィーダー細胞とを共培養することにより、多能性幹細胞を、中胚葉系細胞を含む細胞群に分化させることができる。
フィーダー細胞と非ヒト動物の血清のいずれをも用いずに分化誘導を行う場合、細胞の培養容器への付着を助けるために、フィブロネクチンなどによるコーティングを施した培養容器を用いることができる。培養容器のコーティングに用いるフィブロネクチンは、ヒト血漿から精製したもの、あるいは、遺伝子組換えタンパク質として作製されたヒトフィブロネクチン断片等を用いることが可能である。
ヒトの末梢血を採血する。抗凝固剤としては、ヘパリンあるいはクエン酸などを用いる。採血した血液を等量の生理的食塩水、リン酸緩衝生理的食塩水、あるいは、ハンクス緩衝溶液などを用いて希釈する。次に、希釈した血液を、あらかじめ遠心チューブ(BD-Falcon 352070等)中に分注しておいたフィコール液(GE ヘルスケア社)の上に重層する。そして、遠心分離装置を用いて、遠心力500gで20分間遠心した後、界面付近に存在する単核細胞分画(リンパ球と単球を含む)を回収する。
本発明は、多能性幹細胞由来のミエロイド系血液細胞、あるいは、生体から採取したミエロイド系血液細胞において、cMYC遺伝子、並びにBMI1、EZH2、MDM2、MDM4、及びHIF1A遺伝子からなる群から選択される少なくとも一つの遺伝子を強制的に発現させることにより、これらの細胞に長期増殖能を付与する。前記遺伝子を強制的に発現させるための方法として、ミエロイド系血液細胞のゲノム上に存在する内在性の遺伝子を強制的に発現させても良いし、あるいは外来の遺伝子を該ミエロイド系血液細胞に導入することにより、これら遺伝子の強制的な発現を行っても良い。遺伝子の効率的かつ高レベルの発現を達成し、ミエロイド系血液細胞に長期増殖能を確実に付与する観点から、遺伝子工学技術を用いて外来遺伝子を該ミエロイド系血液細胞に導入する方法が好ましい。
本発明において、「増殖能力を有するミエロイド系血液細胞」とは、上記の通り、ミエロイド系血液細胞において上記遺伝子を強制的に発現させることにより長期増殖能が付与されたミエロイド系血液細胞を意味する。本発明の「増殖能力を有するミエロイド系血液細胞」は、上記遺伝子が導入されていない、対照となるミエロイド系血液細胞(つまり、出発材料として用いたミエロイド系血液細胞)と比較して、より長期に渡り増殖することが可能となり、例えば、上記遺伝子を強制的に発現させた時点(上記遺伝子を細胞に導入した時点)から2週間以上増殖することが可能である。
上記の通り製造した生体外で増殖する能力を有するミエロイド系血液細胞は、M−CSFを含む細胞培養液を用いて培養することができる。培養液中のマクロファージコロニー刺激因子(M−CSF)の含有量は、25〜100ng/mlの範囲とすることができる。あるいは、レンチウイルスベクター等を用いてM−CSF遺伝子をミエロイド系血液細胞自身に導入することによりミエロイド系血液細胞自身にM−CSFを産生させることも可能である。この場合は、M-CSFを添加していない細胞培養液を用いて培養し、増殖させることが可能である。
本発明の生体外で増殖する能力を有するミエロイド系血液細胞から、樹状細胞様細胞を製造することが可能である。例えば、本発明の長期増殖能を有するミエロイド系血液細胞を、GM−CSF及びインターロイキン4(IL−4)の存在下で培養することにより、樹状細胞様細胞を製造することができる。培養液中のGM−CSFの含有量は、50〜200ng/mlの範囲、IL-4の含有量は、5〜20ng/mlの範囲とすることができる。本発明において、「樹状細胞様細胞」とは、形態、細胞表面分子、T細胞刺激能力という点で単球由来樹状細胞等と類似した性質を有する細胞である。
本発明のミエロイド系血液細胞は、生体内に存在するマクロファージ等と同様に微生物などを貪食する活性を有しており、感染症や悪性腫瘍に対する免疫細胞療法を行うための細胞医薬を提供することができる。また、本発明のミエロイド系血液細胞は、アルツハイマー病、プリオン病、アミロイドーシス、がん、白血病、或いはある種の代謝性疾患など、体内に特定の物質が大量に蓄積することに起因する疾患等の治療に用いるための細胞医薬を提供することもできる。また、本発明の長期増殖能を有するミエロイド系血液細胞に由来する樹状細胞様細胞は、悪性腫瘍や感染症の治療に用いるための細胞ワクチンとして使用することができる。さらに、本発明のミエロイド系血液細胞に由来する樹状細胞様細胞は、自己免疫疾患や臓器移植に伴う拒絶反応等を治療する目的で、免疫応答の制御に用いるための細胞医薬を提供することができる。
PCR法により初期化因子であるヒトのOCT3/4, SOX2, KLF4,および c-MYCのcDNAを合成し、プラスミドベクター(pENTR-D-TOPO, Gibco-Invitrogen社)へ挿入しクローニングを行った。その後、クローニングを行ったプラスミドDNAの塩基配列をシークエンス解析により確認した。ヒトBMI1、EZH2、MDM2、MDM4、及びHIF1AのcDNAクローンは、理化学研究所BRC遺伝子材料開発室あるいは製品評価技術基盤機構より入手した。
ヒト腹部の皮膚片を採取し、細胞培養用プレート中で培養液(DMEM / 10 % 牛血清)を用いて培養した。培養開始1週間目以降より、皮膚片からの線維芽細胞の遊走と増殖が認められたので、トリプシン/EDTA含有リン酸干渉生理食塩水(トリプシン-EDTA)を用いて、適宜、線維芽細胞を回収し凍結保存した。
(1)OP9フィーダー細胞の調整
マウス由来の培養細胞株OP9をマイトマイシンCにて処理(0.01 mg/ml、60分)したものを、ゼラチンをコートしたディッシュに播種し、翌日以降に使用した。
未分化なiPS細胞を、CTK液を用いて5-10分間処理し、牛胎児(FCS)血清入りのDMEM培養液で回収した。細胞をα-MEM/20%FCSに懸濁し、OP9フィーダー細胞上へ播種し、分化誘導培養を開始した。以降、3日に1度、培養液(α-MEM/20%FCS)を交換しつつ培養を継続した。
前項で作製したiPS-MCを24穴培養プレート中で培養し、そこへcMYCあるいはBMI1を発現するレンチウイルス懸濁液を単独で、あるいは同時に加えることにより、感染させた。遺伝子導入の翌日より、細胞の増殖に応じて培養液を追加しつつ、培養スケールの拡大を行った。培養液としては、継続的に、α-MEM / 20%FCS / ヒト GM-CSF (100 ng/ml) / ヒト M-CSF (50 ng/ml、)を用いた。
cMYCとBMI1を発現するレンチウイルスを感染させた後、2か月間培養を継続した後のiPS-MLを回収し96穴培養プレート(FALSCON 353072)に播種し(5 x 103細胞 / well)培養を行った。そして、培養液中にGM-CSFとM-CSFが含まれている(50ng/mlあるいは100ng/ml)場合と含まれていない場合とで増殖の速度を比較した。
一般に、ミエロイド系血液細胞は、細菌や真菌などの微生物を貪食する強い活性を有している。そこで、iPS-MLによる真菌の菌体粒子(ザイモサン)の貪色活性を検討した。維持培養中のiPS-MLをピペッティング操作により培養フラスコから回収し、細胞培養用のコーティングがなされている24穴培養プレート(FALCON 353047)へ播種した(2 x 105/well)。3時間静置しiPS-MLの多くが培養プレートの底面に付着したのを確認した後、FITC標識ザイモサン(Molecular Probe社 Z2841)を加えた。さらに3時間が経過した後、蛍光顕微鏡による観察を行った。
cMYCを発現するレンチウイルスとBMI1を発現するレンチウイルスを同時に感染させた後、40日経過した後のiPS-MLをGM-CSF(100 ng/ml)とIL-4 (10 ng/ml)の存在下で4日間培養し、樹状細胞様細胞(ML-DC)への分化誘導を行った。さらにTNF(腫瘍壊死因子)-α(10 ng/ml)を添加して2日間培養した時の細胞の形態(位相差顕微鏡写真)を、図9に示す。突起を有する不規則な形態の細胞がクラスターを形成しているのがわかる。
iPS-MLをGM-CSF(100 ng/ml)とIL-4 (10 ng/ml)の存在下で4日間培養してML-DCを作製し、さらにTNF(腫瘍壊死因子)-α(10 ng/ml)を添加して2日間培養した後、細胞を回収した。この細胞に45 GyのX線を照射して細胞増殖を停止させた後、96穴丸底培養プレート(FALCON 353077)に播種し(1 x 102細胞-1 x 104細胞/well)、刺激細胞とした。TNF-αの添加を行っていないML-DC、あるいは、GM-CSFとIL-4を加えていないiPS-MLも、同様に45GyのX線を照射して細胞増殖を停止させた後、培養プレートに播種し、刺激細胞とした。そして、反応細胞として、アロのドナー由来の末梢血T細胞を加え(5 x 104細胞/well)、培養を行った。末梢血T細胞は、ヒトT細胞分離キット(ミルテ二−バイオテク社 130-091-156)を用いて分離したものを用いた。
前項で作製したiPS-MCを24穴培養プレート中で培養し、そこへcMYCとEZH2を発現するレンチウイルス懸濁液を同時に加えることにより感染させ、iPS-MLを作製した。図12に、この細胞の顕微鏡写真を示す。図13に、フローサイトメーターによりCD45、CD11b、CD33およびCD14の発現を検討した結果を示す。
本実施例により得られたiPS-MLは、cMYCのみを導入した細胞よりも速い速度で増殖した。さらに、得られたiPS-ML は、cMYC のみ導入した細胞よりも長期に渡り増殖し、レンチウイルスを感染させてから2週間目以降も増殖を続けた。
前項で作製したiPS-MCを24穴培養プレート中で培養し、そこへcMYCとMDM2を発現するレンチウイルス懸濁液を同時に加えることにより感染させ、iPS-MLを作製した。図14に、この細胞の顕微鏡写真を示す。図15に、フローサイトメーターによりCD45、CD11b、およびCD33の発現を検討した結果を示す。
本実施例により得られたiPS-MLは、cMYCのみを導入した細胞よりも速い速度で増殖した。さらに、得られたiPS-ML は、cMYC のみ導入した細胞よりも長期に渡り増殖し、レンチウイルスを感染させてから2週間目以降も増殖を続けた。
前項で作製したiPS-MCを24穴培養プレート中で培養し、そこへcMYCとMDM4を発現するレンチウイルス懸濁液を同時に加えることにより感染させ、iPS-MLを作製した。図16に、この細胞の顕微鏡写真を示す。図17に、フローサイトメーターによりCD45、CD11b、およびCD33の発現を検討した結果を示す。
本実施例により得られたiPS-MLは、cMYCのみを導入した細胞よりも速い速度で増殖した。さらに、得られたiPS-ML は、cMYC のみ導入した細胞よりも長期に渡り増殖し、レンチウイルスを感染させてから2週間目以降も増殖を続けた。
前項で作製したiPS-MCを24穴培養プレート中で培養し、そこへcMYCとHIF1aを発現するレンチウイルス懸濁液を同時に加えることにより感染させ、iPS-MLを作製した。図18に、この細胞の顕微鏡写真を示す。図19に、フローサイトメーターによりCD45、CD11b、およびCD33の発現を検討した結果を示す。
本実施例により得られたiPS-MLは、cMYCのみを導入した細胞よりも速い速度で増殖した。さらに、得られたiPS-ML は、cMYC のみ導入した細胞よりも長期に渡り増殖し、レンチウイルスを感染させてから2週間目以降も増殖を続けた。
未分化なヒトiPS細胞を、CTK液を用いて回収し、ヒトフィブロネクチンをコートした培養容器中で培養した。培養液は、OpTmizerTM T-Cell Expansion SFM (Life Technoilogies社)とStemline II Hematopoietic Stem Cell Expansion Medium(SIGMA社)を1:1で混合したもの、および、Peprogrow III(Peprotech社)を順次用いた。さらに、培養液には、中胚葉系細胞への分化を促進することを意図して、ヒトBMP-4 (Bone Morphogenic Protein 4)を5ng/mlの濃度で添加した。
本実施例により得られたiPS-MLは、cMYCのみを導入した細胞よりも速い速度で増殖した。さらに、得られたiPS-ML は、cMYC のみ導入した細胞よりも長期に渡り増殖し、レンチウイルスを感染させてから2週間目以降も増殖を続けた。
少量(0.5ml程度)のヘパリンを吸引した50mlの注射シリンジを用いて、健常人ドナーより末梢血を50ml採血した。血液は、50mlの遠心チューブ2本に25mlずつ分注し、等量のリン酸緩衝生理的食塩水(PBS)で希釈した。次に、この希釈した血液25mlを、あらかじめ遠心チューブ(BD-Falcon 352070等)中に分注しておいたフィコール液(GE ヘルスケア社 17-1440-03)15 mlの上にゆっくりと重層した。そして、遠心分離装置を用いて、遠心力500gで20分間遠心した後、界面付近に存在する単核細胞分画(リンパ球と単球を含む細胞集団)を回収した。
cMYCとBMI1を発現するレンチウイルスを同時に感染させた後、40日経過した後のMo-MLをGM-CSF(100 ng/ml)とIL-4 (10 ng/ml)の存在下で4日間培養し、樹状細胞様細胞(ML-DC)への分化誘導を行った。さらにTNF-α(10 ng/ml)を添加して2日間培養した。
まず、Fcレセプターブロック試薬(Miltenyi Biotec社製)を用いて10分間処理した。次に、FITC-抗ヒト80抗体、抗ヒト86抗体、あるいは抗HLAクラスII抗体を用いて室温中で40分間染色した。また、FITCあるいはPEで標識されたアイソタイプ適合対照抗体を用いて染色した。染色した細胞を、FACScan(BD社)を用いて解析した。
Mo-MLをGM-CSF(100 ng/ml)とIL-4 (10 ng/ml)の存在下で4日間培養してML-DCを作製し、さらにTNF-α(10 ng/ml)を添加して2日間培養した後、細胞を回収した。この細胞に45 GyのX線を照射して細胞増殖を停止させた後、96穴丸底培養プレート(FALCON 353077)に播種し(1 x 102細胞-1 x 104細胞/well)、刺激細胞とした。TNF-αの添加を行っていないML-DC、あるいは、GM-CSFとIL-4を加えていないMo-MLも、同様に45GyのX線を照射して細胞増殖を停止させた後、培養プレートに播種し、刺激細胞とした。そして、反応細胞として、アロのドナー由来の末梢血T細胞を加え(5 x 104細胞/well)、培養を行った。
ヒト末梢血単球(CD14陽性細胞)を24穴培養プレート中で培養し、そこへcMYCおよびMDM2を発現するレンチウイルス懸濁液を同時に加えることにより、感染させた。培養液としては、α-MEM / 20%FCS / ヒト GM-CSF (100 ng/ml) / ヒト M-CSF (50 ng/ml、)を用いた。細胞は、レンチウイルスを感染させた後、3週間目頃よりはっきりとした増殖傾向を示した。図28に、レンチウイルスを感染させた約1月後の細胞の顕微鏡写真を示す。図29に、同時期にフローサイトメーターによりCD45、CD11b、CD33およびCD14の発現を検討した結果を示す。
ヒト末梢血単球を24穴培養プレート中で培養し、そこへcMYC、EZH2およびMDM2を発現するレンチウイルス懸濁液を同時に加えることにより、感染させた。細胞は、レンチウイルスを感染させた後、3週間目頃よりはっきりとした増殖傾向を示した。図30に、レンチウイルスを感染させた約1月後の細胞の顕微鏡写真を示す。図31に、同時期にフローサイトメーターによりCD45、CD11b、CD33およびCD14の発現を検討した結果を示す。
Claims (16)
- ミエロイド系血液細胞において、
(A)cMYC遺伝子、並びに
(B)BMI1遺伝子、EZH2遺伝子、MDM2遺伝子、MDM4遺伝子、及びHIF1A遺伝子からなる群から選択される少なくとも一つの遺伝子
を強制的に発現させることを含む、増殖能力を有するミエロイド系血液細胞を製造する方法。 - 前記ミエロイド系血液細胞に前記遺伝子を導入することにより、該ミエロイド系血液細胞において該遺伝子を強制的に発現させる、請求項1に記載の方法。
- 前記ミエロイド系血液細胞が、多能性幹細胞に由来する、請求項1又は2に記載の方法。
- 前記多能性幹細胞が、人工多能性幹細胞である、請求項3に記載の方法。
- 前記人工多能性幹細胞が、ヒト人工多能性幹細胞である、請求項4に記載の方法。
- 前記ミエロイド系血液細胞が、末梢血単球である、請求項1又は2に記載の方法。
- 前記末梢血単球が、ヒト末梢血単球である、請求項6に記載の方法。
- 前記cMYC遺伝子、BMI1遺伝子、EZH2遺伝子、MDM2遺伝子、MDM4遺伝子、及びHIF1A遺伝子が、それぞれ、ヒトcMYC遺伝子、ヒトBMI1遺伝子、ヒトEZH2遺伝子、ヒトMDM2遺伝子、ヒトMDM4遺伝子、及びヒトHIF1A遺伝子である、請求項1〜7のいずれか1項に記載の方法。
- マクロファージコロニー刺激因子(M-CSF)の存在下で、請求項1〜8のいずれか1項に記載の方法で製造したミエロイド系血液細胞を培養することを含む、ミエロイド系血液細胞を増殖させる方法。
- 請求項1〜9のいずれか1項に記載の方法により製造される細胞。
- 請求項10に記載の細胞を樹状細胞様細胞に分化誘導することを含む、樹状細胞様細胞を製造する方法。
- 顆粒球・マクロファージコロニー刺激因子(GM-CSF)およびインターロイキン-4(IL-4)を含む培養液を用いて、前記ミエロイド系血液細胞を培養することにより、該ミエロイド系血液細胞を樹状細胞様細胞に分化誘導する、請求項11に記載の方法。
- 請求項11又は12に記載の方法により製造される細胞。
- 請求項10又は13に記載の細胞を含む、細胞医薬。
- 前記細胞医薬は、感染症、腫瘍、アルツハイマー病、プリオン病、アミロイドーシス、白血病、臓器移植に伴う拒絶反応、及び/又は自己免疫疾患の治療又は予防に用いるための細胞医薬である、請求項14に記載の細胞医薬。
- 請求項10若しくは13に記載の細胞、又は請求項14に記載の細胞医薬を製造するための、
(A)cMYC遺伝子、並びに
(B)BMI1遺伝子、EZH2遺伝子、MDM2遺伝子、MDM4遺伝子、及びHIF1A遺伝子からなる群から選択される少なくとも一つの遺伝子
の使用。
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