JP3463596B2 - Suture-resistant adhesion prevention membrane - Google Patents

Suture-resistant adhesion prevention membrane

Info

Publication number
JP3463596B2
JP3463596B2 JP08547799A JP8547799A JP3463596B2 JP 3463596 B2 JP3463596 B2 JP 3463596B2 JP 08547799 A JP08547799 A JP 08547799A JP 8547799 A JP8547799 A JP 8547799A JP 3463596 B2 JP3463596 B2 JP 3463596B2
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
collagen
layer
adhesion
film
gelatin
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired - Fee Related
Application number
JP08547799A
Other languages
Japanese (ja)
Other versions
JP2000271207A (en
Inventor
和久 松田
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Nipro Corp
Original Assignee
Nipro Corp
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Nipro Corp filed Critical Nipro Corp
Priority to JP08547799A priority Critical patent/JP3463596B2/en
Priority to EP20000101203 priority patent/EP1022031B1/en
Priority to DE2000618814 priority patent/DE60018814T2/en
Priority to US09/489,473 priority patent/US6977231B1/en
Publication of JP2000271207A publication Critical patent/JP2000271207A/en
Application granted granted Critical
Publication of JP3463596B2 publication Critical patent/JP3463596B2/en
Priority to US11/255,922 priority patent/US20060041320A1/en
Anticipated expiration legal-status Critical
Expired - Fee Related legal-status Critical Current

Links

Description

【発明の詳細な説明】 【0001】 【発明の属する技術分野】本発明は、縫合が可能である
癒着防止膜に関するものである。詳しくは生体内での癒
着防止膜として、胸膜、心膜、脳硬膜、漿膜などの生体
内膜状組織および各種臓器などの欠損部または切断面へ
の補填、補綴などに利用され、特に縫合可能であり、か
つ、生体適合性と生体吸収性が良好である癒着防止膜に
関するものである。 【0002】 【従来の技術】各種の外科手術においては、患部の切除
および損傷部位の修復等を行うことが多く、特に肺、心
臓、肝臓、脳、消化器官、胆嚢などの各種臓器を対象と
する外科手術の場合には、その切断面や欠損部などに、
該臓器の組織を覆っている膜状物を補填または補綴しな
ければ、その臓器の根本的な機能を損なう場合が多い。
これらの処置を不完全に行うと、臓器の機能不全により
死亡するか、もしくは生命の危機を逃れても、予後が大
変悪くなる傾向が良く見受けられる。また、これらの補
綴、補填部位での膜状物の縫合固定が不良であると、該
処置を行った臓器自身の機能はかろうじて維持できたと
しても、これらの臓器から滲出または漏出した体液、消
化液、内容物などにより、感染したり、他臓器への攻
撃、浸食を引き起こして生命の危機を招くこともある。 【0003】さらに、これら補綴または補填した部位に
は、膜状物の癒着が高頻度に発生するケースがあり、そ
の結果として、経時的に臓器の機能不全を誘発すること
もある。このような各種の問題点を解決する目的で、臓
器または該臓器の組織を覆う膜状物または癒着防止膜
が、様々な材料により開発されている。 【0004】従来から、コラーゲン繊維からなる不織布
層をアルデヒド類で耐水処理し、コラーゲンで前記繊維
を相互に結合した外科用創傷被覆材(特開昭50-141190
号公報)が公知である。しかしながら、該被覆材は表面
が架橋剤を使用した層であることから、生体適合性、組
織再生促進の誘導などに問題がある。また、このような
被覆材は創傷を被覆するのみであって、縫合が可能であ
る膜強度や癒着を防止する機能などを有することが明ら
かではない。 【0005】 【発明が解決しようとする課題】上記従来技術において
は、癒着防止膜の十分な癒着防止効果、縫合強度、生体
適合性、生体内分解・吸収性が不足しており、特にこれ
らを同時に満足することが出来ないという問題を有して
いた。すなわち、本発明はこれまでの癒着防止膜の欠点
であった、十分な縫合強度および生体適合性、生体内分
解・吸収性の不足、また十分な癒着防止効果の不足とい
う点を同時に解決することを目的とするものである。 【0006】 【課題を解決するための手段】すなわち、本発明はコラ
ーゲン繊維からなる不織布層の表面に、ゼラチンまたは
ヒアルロン酸を含む被覆層を有することを特徴とする縫
合可能な癒着防止膜である。 【0007】ところで、癒着を防止する機構として、最
も単純かつ効果的である方法は、損傷または欠損等によ
り傷ついた組織と、この組織に物理的に接触が可能であ
る別の組織とを隔壁により接触させないことである。し
かし、これを合成繊維等で行う場合、生体適合性の不足
から、過度の石灰化、異物反応、炎症反応などの様々な
不都合が生じてくる。また、隔壁として用いた材料自身
が、損傷または欠損した組織と、それに対応する別組織
との癒着を媒介してしまってはならない。これらの条件
を満足する材料としては、ヒアルロン酸またはゼラチン
などが挙げられる。両者は共に粘性のある水溶性の液と
して取り扱うことが可能であり、様々な加工方法によ
り、ゲルとして利用することが可能である。 【0008】これらの材料は主に動物等の生体より抽出
・精製されるものなので、生体適合性が良好であり、既
に医薬品をはじめ、様々な医療分野で実用化が成されて
いる。また、生体内に埋植した場合、分解・吸収される
過程でゼラチンまたはヒアルロン酸分子が徐放され、親
水性を保ったまま粘性を継続して発揮するので、損傷ま
たは欠損した傷ついた部位の組織と接触していても、物
理的に接着、癒着が起こりにくいという特性を合わせ持
つ。 【0009】これらの特長を応用して、ヒアルロン酸を
利用した癒着防止膜、医用材料等を製造する技術として
は、特開平6−73103号公報、特公平7−3012
4号公報、登録特許第2670996号公報、特開平8
−333402号公報、特開昭61−234864号公
報、登録特許第2648308号公報、特開平8−15
7378号公報、特開平9−296005号公報、特開
平7−102002号公報、特表平7−509386号
公報などが挙げられる。しかし、これらの技術を含め
て、十分な癒着防止効果と縫合が可能である機械的強度
を同時に合わせ持つ技術は見あたらない。 【0010】上記ヒアルロン酸と同様に、ゼラチンを癒
着防止効果を期待して利用する技術としては、特開平9
−103479号公報、特開平8−52204号公報に
記載されたものが挙げられる。しかし、これらの技術は
いずれもヒアルロン酸を利用した場合と同様に、癒着防
止効果、縫合固定が可能な機械的強度の二点を同時に満
足する医用材料を提供するには至っていない。 【0011】 【発明の実施の態様】本発明の癒着防止膜とは、合成繊
維、合成物を一切使用せず、生体由来材料であるコラー
ゲンと、ゼラチンまたはヒアルロン酸を主原料として作
製され、これらを不織布状またはスポンジ状に加工して
積層させた、全体として2〜8層、好ましくは3〜5層
からなる積層構造により構成される。該癒着防止膜は十
分に縫合可能な膜強度を、主にコラーゲン不織布層が担
当し、生体適合性と周囲組織との癒着防止効果を、ゼラ
チンまたはヒアルロン酸により形成される層が発揮する
ものと考えられる。 【0012】本発明の癒着防止膜は、全て生体由来材料
であるコラーゲンおよびゼラチンまたはヒアルロン酸に
より構成されるため、生体適合性が非常に優秀であるだ
けでは無く、移植された生体内では徐々に分解・吸収さ
れ、最終的には全て分解・吸収されることとなる。特に
コラーゲン不織布層は、生体内欠損部位等の組織再生が
完了するまでの間、補填、補綴、シールする足場として
存在し、縫合固定後の一定期間、その膜強度を維持した
後に、全て分解、吸収される。また、最外層のゼラチン
またはヒアルロン酸層は、その粘性と徐放作用により、
損傷または欠損部位の組織と周囲組織との癒着を防止す
る。なお、この癒着を防止する期間は、損傷または欠損
部位の組織が、自然状態で周囲組織との癒着が起こらな
い程度まで再生・治癒するまでの期間持続する。これら
の癒着防止効果を発揮しつつ、徐々に体内で分解・吸収
され、最終的にはこれらゼラチン、ヒアルロン酸層も全
て無くなる。 【0013】本発明に使用される代表的なコラーゲンと
しては、酵素可溶化コラーゲン、酸可溶化コラーゲン、
アルカリ可溶化コラーゲンまたは中性可溶化コラーゲン
などの可溶性コラーゲンが挙げられる。、これら可溶化
されたコラーゲンとは、特に蛋白質分解酵素(例:ペプ
シン、トリプシンなど)による可溶化処理、もしくはア
ルカリにより可溶化処理されたものであって、可溶化と
同時にコラーゲンの抗原決定基であるテロペプタイドの
除去処理を行った、通常、アテロコラーゲンと呼ばれる
医療用途に適する物が特に好適である。これらの可溶化
されたコラーゲンについては、以下の動物種などから、
公知技術(特公昭46-15033号公報、特公昭43-259839号
公報、特公昭43-27513号公報など)に従い、容易に得ら
れる。 【0014】また、本発明に利用されるコラーゲンの由
来については、特に限定されないが、一般的には牛、
豚、鳥類、魚類、兎、羊、ネズミ、ヒトなどが挙げられ
る。また、コラーゲンはこれらの皮膚、腱、骨、軟骨、
臓器などから公知の各種抽出方法を用いることにより得
られるものである。また、コラーゲンのタイプについて
は、I型、III型などの分類可能なタイプの内のいずれ
かに特に限定されるものではないが、取り扱い上の観点
からI型コラーゲンが特に好適である。また、コラーゲ
ンを可溶化させる溶媒については、取り扱い上、水が好
適である。ゼラチンは通常の日本薬局方準拠のゼラチン
を使用し、ヒアルロン酸は動物由来、微生物由来のどち
らでも良いが、医療用グレードの物が特に好適である。 【0015】十分に縫合可能な膜強度を有する不織布層
を得るためには、上記コラーゲン溶液を凝固浴中に紡糸
し、凝固浴の底面で多重多層に交差させて、繊維直径が
10〜1000μm、好ましくは20〜300μm、嵩
密度(繊維密度)が5×10 -4〜5g/cm3、好まし
くは1.0×10-3〜2.0g/cm3である繊維の集
合体を得る。すなわち、上記可溶化コラーゲンの溶液を
連続的に湿式紡糸し、この長いままの糸を適当な容器に
移し、一定方向のみに配列しないように交差状態に配列
して配置する。次に減圧乾燥、自然乾燥、低温乾燥、送
風下乾燥などの方法で乾燥して綿状とした不織布(繊維
状物)を得る。いずれの乾燥方法においてもコラーゲン
の変性を防ぐため、使用するコラーゲンの変性温度以下
で乾燥を行うことが重要であり、その温度は使用するコ
ラーゲンの種類にもよるが、おおよそ35〜45℃の温
度域以下が望ましい。特に低温乾燥または減圧乾燥が好
ましい。 【0016】一方、間欠吐出による非連続紡糸又は通常
の連続紡糸を行った後に、得られた糸を切断処理するこ
とにより、連続、非連続紡糸のいずれの場合においても
短いステープル状の繊維状物が得られる。これらを適当
な大きさの容器に均一に分散させた状態で、同様に減圧
乾燥、自然乾燥などの方法により乾燥させ不織布(繊維
状物)を得ることも可能である。 【0017】紡糸に使用する可溶化コラーゲン溶液の濃
度は、使用するコラーゲンの種類により任意であり、紡
糸可能であればどの様な濃度でも構わないが、通常は
0.1〜20wt%、このうち、湿式紡糸では1〜10
wt%程度が特に好適である。また、紡糸時の可溶化コ
ラーゲンの吐出速度、得られた糸の巻き取り速度は、紡
糸可能である範囲であれば任意である。 【0018】紡糸の際に可溶化コラーゲン溶液の吐出に
用いる装置は、汎用のギアポンプ、ディスペンサー、各
種押出し装置等、何を用いても良いが、均一な紡糸を行
うためには脈動が少なく安定してコラーゲン溶液を定量
吐出できる装置が良い。 【0019】また、紡糸を行う際の口金の孔径サイズは
紡糸さえ可能であれば、特に限定されないが、あまりに
大きな孔径では後工程で繊維状物から膜状物にする場合
にはこれが困難となり、また極度に細径であると膜強度
の向上が難しいため、通常、10〜1000μm、好ま
しくは50〜700μmの範囲であることが好ましい。
なお、口金の孔数は単数でも複数でも良い。また、口金
の形状も特に限定されず、紡糸可能であれば、例えばス
リット状、各種形状などの物を用いても良い。さらに口
金の孔長に関しては、これも紡糸可能であれば特に限定
されないが、可溶化コラーゲン分子中のコラーゲン分子
を少しでも多く配向させる目的において、可能な限り長
い方が好ましい。 【0020】湿式紡糸法の凝固浴としては、一般的にコ
ラーゲンを凝固させることが可能であれば、特に限定は
されないが、無機塩類水溶液、無機塩類溶解有機溶媒、
アルコール類、ケトン類またはそれらの内から選ばれる
組み合わせを採用することができる。これらの凝固浴と
しては、例えば無機塩類水溶液としては、硫酸ナトリウ
ム、塩化ナトリウム、硫酸アンモニウム、塩化カルシウ
ム、塩化マグネシウムなどが挙げられるが、特に塩化ナ
トリウム、硫酸ナトリウム、硫酸アンモニウムが紡糸に
は好ましい。また、これらの無機塩類をアルコール、ア
セトンに溶解/分散させた無機塩類溶解有機溶媒等も利
用可能であり、特に塩化ナトリウムのエタノール溶解/
分散溶液は好適である。またアルコール類としては、メ
タノール、エタノール、イソプロパノール、アミルアル
コールなどが挙げられるが、医療用途としてはエタノー
ルが特に好適である。さらにケトン類としてはアセト
ン、メチルエチルケトンなどがある。 【0021】また、単なる凝固浴としてのみでは無く、
後述する各種架橋剤との組み合わせにより、コラーゲン
の凝固と架橋処理を兼ね備えた加工方法も有効である。
例えば、エタノールとグルタルアルデヒドを混和した溶
液を、凝固処理と架橋処理を兼ね備えた凝固浴として使
用した場合、両者の工程を一度に行うことができ、紡糸
されたコラーゲン糸はそのまま浸漬することにより架橋
処理も可能である。これらの同時処理は、工程の合理化
だけではなく、希薄なコラーゲン溶液による紡糸や細径
の糸を紡糸する際に非常に有効である。 【0022】上記の各種不織布層の形成方法において、
特に好適な例を以下に記す。コラーゲン吐出用口金の孔
径がφ200μm程度で、孔長15〜20mm程度のも
のを使用し、脈動なく可溶化コラーゲン溶液をディスペ
ンサー等で吐出させ、99.5vol%エタノール凝固浴中
へ湿式紡糸することが望ましい。99.5vol%エタノー
ル凝固浴中に可溶化コラーゲンを押出す際には、吐出口
金を随時移動せしめ、紡糸された糸が任意の方向より交
差し得る状態で連続的に押出し、糸を多重多層状態にす
る。この後に凝固液を除去して、再度、エタノールで洗
浄し、減圧乾燥することにより、非常に良好な綿状の繊
維状物を得ることがきる。この方法は工程の簡素化、短
縮化、経済性の面で特に有効である。 【0023】なお、この例は代表的なものであり、繊維
状物が得られさえすれば、これに限定されるものではな
く、例えば前述のステープル状短繊維を利用しても良い
し、凝固浴の種類、凝固浴と架橋剤の混合浴の利用、ま
た乾燥方法等を変更し、さらにそれらの組み合わせを変
更してもよい。 【0024】上記方法で得られた不織布層は十分な縫合
強度を獲得するために、さらに架橋処理を施されること
が望ましい。これは架橋処理により、特に湿潤時におけ
る物理的な強度が向上し、縫合に必要な強度が十分に確
保できるからである。また、生体内に移植された際に分
解・吸収される時間を、未架橋の場合に比較して飛躍的
に遅延させるためでもある。この架橋処理により、生体
の欠損部を補填または補綴し、欠損による臓器・組織等
の機能不全を防止し、しかも創傷面の修復および組織の
再生を完了するまでの期間、体内で必要な膜強度を維持
したまま残存することが可能となる。 【0025】この架橋方法には、大別して物理的架橋方
法と化学的架橋方法が存在する。物理的架橋方法の例と
しては、γ線、紫外線、電子線、プラズマ、熱脱水架橋
などが挙げられ、一方化学的架橋方法の代表例として
は、ジアルデヒド、ポリアルデヒドなどのアルデヒド
類、エポキシ類、カルボジイミド類、イソシアネート
類、タンニン処理、クロム処理などが挙げられる。この
うち、アルデヒド類としては、ホルムアルデヒド、グル
タルアルデヒド、酸アルデヒド、グリオキザール、マロ
ン酸ジアルデヒド、スクシン酸ジアルデヒド、フタル酸
アルデヒド、ジアルデヒド澱粉、ポリアクロレイン、ポ
リメタクロレインなどがあるが、コラーゲンとの架橋反
応が可能なアルデヒド類であれば、どのようなものでも
構わない。また、エポキシ類としては、グリセロールジ
グリシジルエーテル、ソルビトールジグリシジルエーテ
ル、エチレングリコールジグリシジルエーテル、ポリエ
チレングリコールジグリシジルエーテル、ポリグリセロ
ールポリグリシジルエーテルなどがあり、このほかコラ
ーゲンと架橋反応が可能なエポキシ化合物であれば、使
用可能である。さらに、カルボジイミド類の一例として
は、特に水溶性カルボジイミドが好適であるが、同様の
反応機構が可能であれば、何でも良い。また、イソシア
ネート類の代表例としては、ヘキサメチレンジイソシア
ネート、トリレンジイソシアネートなどが挙げられる
が、特に架橋反応に関与するイソシアネート基を2つ以
上保有しているものであれば、コラーゲンを架橋可能で
あり、特にこれらのみに限定はされない。 【0026】上記の方法により、紡糸等で得られたコラ
ーゲン不織布(繊維状物)は、より高い縫合強度を得る
ために、さらにこれを圧縮することもできる。圧縮する
ことにより、不織布層の繊維密度が上がり、より強度の
高い好ましい膜状物を得ることが可能になる。圧縮され
た不織布の嵩密度は特に0.05〜5g/cm3である
ことが好ましい。 【0027】圧縮は汎用のプレス機で行うことが可能で
あるが、医療用途を目的とすることから、十分に丈夫な
滅菌済みの包装材、例えばアルミパック、高強度樹脂包
装材等により無菌的に包装された状態で圧縮されること
が望ましい。この際、不織布層を圧縮する圧力に関して
は、不織布層本体を破壊しない範囲において特に制限は
されないが、通常10〜1000kgf/cm2である
ことが望ましい。不織布層は強度向上の目的で繊維密度
を上げるためにも、また最終形態である積層構造をもつ
癒着防止膜にした場合における医療行為上の取り扱いの
観点からも、可能な限り十分に圧縮され、薄層化される
ことが望ましい。このように薄層化された不織布層は、
これを積層し、多層構造とすることによって、さらに縫
合強度を高めた癒着防止膜を得ることが可能となる。 【0028】上記方法により得られた不織布層または圧
縮された不織布層の物理的強度を、さらに向上する目的
で、バインダー処理を施すことが可能である。バインダ
ーとしては、コラーゲンスポンジ層および/または可溶
化コラーゲン溶液が好ましい。これは不織布層または圧
縮された不織布層に、コラーゲンスポンジ層を溶解した
可溶化コラーゲン溶液を含浸させた後、自然乾燥、送風
下乾燥、減圧乾燥、低温下乾燥などの適当な乾燥方法で
乾燥を行い、不織布層の繊維同士を結合させ、膜状にす
る手法である。この操作により得られた膜状物は、不織
布層単体の時よりもはるかに物理的強度が向上し、従っ
て縫合強度も格段に向上する。なお、要求される物理的
強度の程度により、この含浸・乾燥の工程を1回〜数1
0回以上繰り返しても差し支えない。 【0029】ただし、バインダー処理を行う際には、不
織布層または圧縮された不織布層に架橋処理が施されて
いない場合、可溶化コラーゲン溶液に含浸した時点で不
織布層自身が溶解してしまうことがある。したがって、
前述の方法等で、前もって架橋処理を施しておくことが
望ましい。なお、コラーゲン溶液に含浸する処理法の他
には、適当な容器または型に不織布層とともに可溶化コ
ラーゲンを流延または充填する方法や直接、不織布層に
可溶化コラーゲン溶液を塗布する方法もある。 【0030】本発明の膜状物は、コラーゲン繊維からな
る不織布が1〜6層、好ましくは1〜3層積層された層
を有する。該不織布は厚さが100μm〜50mm、好
ましくは200μm〜4.0mmであり、該不織布層は
1〜6層、好ましくは1〜3層からなる。本発明の膜状
物を得るには、例えば、あらかじめスポンジ状に乾燥し
ておいたコラーゲン層で不織布層を挟んで得た膜状物、
もしくは該スポンジ層と不織布層を同時に圧縮し、不織
布層を該スポンジ層に埋入させた膜状物を、希薄な可溶
化コラーゲン溶液または水の存在下で、常圧もしくは減
圧下に置くことにより、スポンジ層の可溶化コラーゲン
を溶解させ、不織布層と十分になじませてから、各種乾
燥法で乾燥させる方法などがある。このスポンジ層を利
用したバインダー処理方法は、不織布層の繊維同士を結
合させるために、実際に使用されるコラーゲン量に対し
て、水分などの溶媒成分が非常に少量で済むために、後
工程で乾燥を行う際に短時間で済む上、乾燥時における
拘縮、変形などが非常に少ないという大きなメリットが
ある。通常の含浸工程であれば、含浸用可溶化コラーゲ
ン溶液中の実質コラーゲン量は、実用的溶液粘度の関係
から、数%程度が限度であり、残りの90%以上は水分
等の溶媒成分となる。したがって、含浸・乾燥の操作に
時間がかかるだけでなく、この操作自体を反復する必要
が有るために、簡便な方法ではあるが、合理性に欠け
る。無論、これらの方法は代表的な例示であり、不織布
層または圧縮された不織布層の繊維同士を可溶化コラー
ゲンを用いて結合させ、膜状物とする方法であれば、ど
のような方法でも良く、上記代表例には特に限定されな
い。また、バインダー処理には、上記コラーゲン溶液の
他、ゼラチン溶液、ヒアルロン酸溶液なども使用可能で
ある。 【0031】本発明では、上記方法により得られたコラ
ーゲン繊維からなる不織布層に、さらにゼラチン層また
はヒアルロン酸層を形成することが必要である。該形成
法は、常法に従い、凍結乾燥などの方法により容易に実
施可能である。、形成する製造工程上の順序・方法等に
ついては特に限定されない。具体的な製法としては、例
えば、コラーゲン不織布層とゼラチンまたはヒアルロン
酸のスポンジ層もしくはフィルム層を積層するか、また
はゼラチンまたはヒアルロン酸スポンジ層を独自に作製
して、その後に、該スポンジ層とコラーゲン不織布層を
可溶化コラーゲン、ゼラチン溶液、ヒアルロン酸溶液な
どを用いて接着する方法がある。また、コラーゲン不織
布層を、可溶化コラーゲンの溶液に浸漬させた後に一度
凍結し、再度、同様にゼラチンもしくはヒアルロン酸溶
液に浸漬させ、これらを凍結して一体化した後に凍結乾
燥することにより、同時にコラーゲン層とゼラチンまた
はヒアルロン酸の積層スポンジを得る方法などがある。 【0032】また、容器中に充填したゼラチン溶液また
はヒアルロン酸溶液中にコラーゲン不織布を浸漬させた
後に、フリーザーで凍結し、さらに凍結乾燥してゼラチ
ンまたはヒアルロン酸スポンジ層中にコラーゲン不織布
が含有されている状態に成形することも可能である。し
かし、これらは本発明の加工方法の一例を示したに過ぎ
ず、これらの加工の目的はゼラチンまたはヒアルロン酸
のスポンジ層もしくはフィルム層とコラーゲン不織布層
が生体内移植時に簡単に剥離・分離すること無く、一体
化されることが目的であり、これが達成されるのであれ
ば、どのような加工順序、方法を用いても構わない。 【0033】ゼラチンまたはヒアルロン酸スポンジ層の
作製については、ゼラチン溶液またはヒアルロン酸溶液
を容器に流延、または所望の厚さとなるまで充填し、汎
用のフリーザー等で十分に凍結した後、凍結乾燥機で乾
燥することにより、均一な各種スポンジ層が得られる。
この時、ゼラチンまたはヒアルロン酸スポンジ層に形成
される微細な多孔の孔径は、ゼラチン溶液、ヒアルロン
酸溶液の濃度とその溶媒、凍結時の温度と凍結時間など
により変化する。 【0034】また、ゼラチンスポンジ層、ヒアルロン酸
スポンジ層における各種原料の総量および各種スポンジ
層の厚さについては、対象となる部位の癒着防止効果、
損傷・切断部位の修復、組織再生の誘導などにおける支
障を来さないように、約1〜4週間程度、各スポンジ層
が体内で残存している程度が望ましい。このゼラチンま
たはヒアルロン酸スポンジ層の厚さ、およびスポンジ層
の形成に使用される総原料量は、生体内に移植された場
合の分解・吸収時間、組織再生の誘導への影響を考慮し
て、任意にコントロールすることが可能である。スポン
ジ層の厚さは、具体的には約50μm〜20mm、好ま
しくは100〜1000μmであり、特に乾燥終了時の
厚さが1〜10mmであり、これらを圧縮して使用する
場合において、100μm〜1mmの厚さとなるスポン
ジが好ましい。これらの状況を考慮して、ゼラチン溶液
の濃度範囲は、0.5〜60wt%、好ましくは5〜4
0wt%である。さらにヒアルロン酸溶液の濃度範囲
は、0.1〜50wt%、好ましくは0.5〜5wt%
であることが望ましい。また凍結温度は−196〜−1
0℃、好ましくは汎用のフリーザーまたはディープフリ
ーザーで設定可能である−80〜−10℃であること好
ましい。また、凍結乾燥機は安定して乾燥が可能であれ
ば特に限定はされない。 【0035】さらに、ゼラチン溶液またはヒアルロン酸
溶液のスチロール角型容器への充填量は、仕上がりスポ
ンジの厚さが、約50μm〜20mm、好ましくは10
0〜1000μm程度になるように充填すれば良い。こ
れらの値は、使用する目的に応じて随時変更が可能であ
り、これらの例示には限定されない。 【0036】なお、癒着防止効果を発揮するヒアルロン
酸またはゼラチンの層は、スポンジの形状のみには限定
されず、例えば、通常の流延方式などにより得られるフ
ィルム状などに加工されていても良い。また、癒着防止
効果を付与するためにゼラチンまたはヒアルロン酸層を
形成する場合には、目的に応じて、膜の片面または両
面、あるいは一部分または全面被覆など様々な形態が選
択可能であり、ゼラチンまたはヒアルロン酸層の形成方
法、または、その部位については特に限定されるもので
は無く、任意の組み合わせが可能である。 【0037】上記の各種架橋方法により、架橋処理を施
される対象としては、本発明の癒着防止膜が、全てコラ
ーゲンとゼラチンもしくはヒアルロン酸により構成され
ているから、膜を構成する不織布層、ゼラチン層または
ヒアルロン酸層、およびこれらが一体化され積層化され
た癒着防止膜の一部または全部が対象となる。また、架
橋の順序、架橋方法の組み合わせは任意であり、特に限
定されない。しかし、最も好ましくは、コラーゲン不織
布層においてグルタルアルデヒドなどのアルデヒト類を
用いて架橋を施し、しかる後にゼラチン層またはヒアル
ロン酸層を形成し、これと一体化させ、最後に熱脱水架
橋を施す。これらの方法においては、コラーゲンの紡糸
・不織布化の工程において、エタノール等の凝固剤と、
グルタルアルデヒドに代表される架橋剤類を混合し、紡
糸と架橋の工程を一度に行う方法なども含まれる。 【0038】本発明の方法により、最終的に得られる癒
着防止膜は、縫合強度、生体適合性、生体内分解・吸収
性の点において優れた癒着防止膜である。なお、コラー
ゲン不織布層において、バインダー処理を行う場合に
は、これにより形成される層をも熱脱水架橋することが
良い。しかし、これはあくまで一例であって、例えば、
全ての層を熱脱水架橋により処理しても、何ら問題は無
く、また、滅菌と架橋を兼ねて、例えばγ線を照射して
も良い。 【0039】上記方法により得られた不織布層とゼラチ
ンまたはヒアルロン酸層を有する癒着防止膜を、さらに
圧縮することが可能である。ゼラチンまたはヒアルロン
酸スポンジ層単独または不織布層単独を圧縮した後に、
圧縮されていない不織布層またはゼラチンまたはヒアル
ロン酸スポンジ層と組み合わせて一体化しても良い。特
に好ましくは、製膜の最終工程において不織布層とゼラ
チンまたはヒアルロン酸スポンジ層が一体化されている
ものを同時に圧縮することである。これは圧縮すること
により膜厚が減少し、薄膜化されたことによって、手術
現場等において実際に癒着防止膜を使用する際に、縫合
における縫合針の貫通性、任意の形状への切断等の取り
扱いが特に向上し、移植手術等がより円滑に行える。圧
縮の方法はコラーゲン不織布層を圧縮する際と全く同様
に、汎用のプレス機で行うことが可能であるが、医療用
途を目的とすることから、十分に丈夫な滅菌済みの包装
材、例えばアルミパック、高強度樹脂包装材等により無
菌的に包装された状態で圧縮されることが望ましい。ま
た、癒着防止膜を圧縮する圧力に関しては、膜本体を破
壊しない範囲において特に制限はされないが、通常、1
0〜1000kgf/cm2であることが望ましい。 【0040】 【実施例】次に本発明を実施例を用いて説明する。実施例1 まず、エルレンマイヤーフラスコ(コーニング社製)中
でニワトリ由来アテロコラーゲンをマグネチックスター
ラーで緩やかに撹拌しながら、注射用蒸留水を加えて、
コラーゲン濃度が3wt%または5wt%である2種の
コラーゲン溶液を、クリーンベンチ内で無菌的に調製し
た。次に、5wt%コラーゲン溶液40mlをディスペ
ンサー(サンエイテック社製:EFD900型)を用い
て、27ゲージサイズ(孔径200μm)のニードル先
端より、4.0barの定圧条件下で、99.5vol
%エタノール液(和光純薬製、特級)である凝固浴中に
連続押出し紡糸を行った。なお、連続押出し紡糸中にお
いて、ニードル先端をエタノール凝固浴上でランダムに
移動させながら、沈降・凝固したコラーゲン糸が凝固浴
の底面で多重多層に交差するように紡糸させて、不織布
(繊維状コラーゲンの集合体)を得た。次に、この不織
布(繊維状コラーゲンの集合体)を1時間放置して十分
に凝固させた後、同じエタノールで2回凝固液を交換し
て洗浄した。 【0041】上記不織布(繊維状コラーゲンの集合体)
を、そのまま、バキュームドライオーブン(EYELA
社製:VOS-300VD型)中で油回転真空ポンプ(ULVA
C社製:GCD135−XA型)にて室温で減圧下(1Torr未
満)、4時間乾燥させ、不織布(繊維状コラーゲン不織
布)を得た。繊維直径は60μm、不織布の嵩密度は
4.0×10-2g/cm3である。次に、この不織布を
滅菌済みアルミ包材に入れ、ハイプレッシャージャッキ
(井内盛栄堂社製:15tプレス機)にて100kgf
/cm2の圧力で圧縮し、約8cm×5cmの圧縮不織
布(繊維直径は60μm、不織布の嵩密度は0.9g/
cm3)を得た。 【0042】さらに、この圧縮不織布を5%グルタール
アルデヒド溶液(和光純薬製、1級グルタルアルデヒド
25%溶液を注射用蒸留水で希釈)に4時間浸漬させ、
架橋処理を行った。反応終了後に注射用蒸留水で十分に
洗浄した後、注射用蒸留水浴中に1時間浸漬させ、浸漬
中に水を3回交換して、余剰のグルタルアルデヒドを除
去した。架橋処理が完了した不織布を再度、同様に減圧
乾燥し、圧縮して、厚さ0.6mm、大きさ約8cm×
5cmの圧縮不織布(繊維直径は60μm、不織布の嵩
密度は0.91g/cm3)を得た。 【0043】別途、バインダー処理を行うために、凍結
乾燥コラーゲンスポンジを作製した。これは、まず3w
t%可溶化コラーゲン溶液をスチロール角型容器に入
れ、厚さ約17mmまで充填した後、フリーザー(SA
NYO社製:MEDICALFREEZER)にて、−20℃下で12
時間程凍結処理した。次に、該凍結した可溶化コラーゲ
ンを上記容器に入れたまま、凍結乾燥機(EYELA社
製:FDU-830型)中に移し、油回転真空ポンプ(ULV
AC社製:GCD200−XA型)にて減圧下(0.05Torr未
満)で約24時間凍結乾燥して、コラーゲンスポンジを
得た。なお、凍結乾燥終了時の膜厚は約15mm、空孔
率80%であった。 【0044】得られた架橋処理圧縮不織布1枚(厚さ
0.6mm)を、別途作製した上記コラーゲンスポンジ
1枚(厚さ15mm)と共に、再び100kgf/cm
2の圧力で圧縮し、コラーゲン不織布層がコラーゲンス
ポンジ層に埋没した厚さ1mm、大きさ約7cm×4.
5cmの2層構造のコラーゲン膜状物を得た。 【0045】次に、上記膜状物を3wt%可溶化コラー
ゲン水溶液約15ml中に浸漬した状態で、バキューム
ドライオーブン(EYELA社製:VOS-300VD型)中に
て減圧し、膜状物中の空気を脱気して、可溶化コラーゲ
ン溶液を上記膜状物のスポンジ層に強制的に含浸させ
た。コラーゲン膜状物中でスポンジ層のコラーゲンは水
により溶解し、1層の膜状物が得られた。得られた膜状
物を低温下(4℃)で24時間乾燥して、バインダー処
理を行ったコラーゲン膜状物(厚さ0.18mm、大き
さ約7cm×4.5cm)を得た。次に、得られたコラ
ーゲン膜状物をスチロール角型容器に移し、該容器の上
から30wt%ゼラチン溶液を注ぎ込み、膜状物がほぼ
中間層に来るように滅菌ピンセット等で位置調整を行っ
た後、フリーザー(SANYO社製:MEDICALFREEZER)
にて、−20℃下で12時間程凍結処理した。こうして
ゼラチン層と圧縮コラーゲン不織布層が一体となった凍
結状態の3層積層構造膜を得た。 【0046】次に、この3層構造膜を容器に入れたま
ま、同様に、−20℃で約24時間凍結乾燥を行った。
得られた圧縮コラーゲン不織布層とゼラチンスポンジ層
が一体化した膜状物を、再度、同様に400kgf/c
2の圧力で圧縮し、厚さ約1.6mm、大きさ約7c
m×5cmの3層構造積層膜を得た。 【0047】次に、この得られた膜を、バキュームドラ
イオーブンと油回転真空ポンプ(ULVAC社製:GCD1
35−XA型)にて、135℃、減圧下(1Torr未満)で
12時間、熱脱水架橋処理を行った。このようにして、
コラーゲン不織布層の繊維のみがグルタルアルデヒド架
橋処理され、その表面に片面の厚さ約0.4mmである
ゼラチンスポンジ層を有する癒着防止膜(厚さ約1.6
mm、大きさ約7cm×5cm)を得た。得られた癒着
防止膜の縫合強度、生体適合性、組織再生の誘導性、癒
着防止性を下記実施例3〜4に示す。 【0048】実施例2 実施例1と同様に、ニワトリ由来アテロコラーゲンを注
射用蒸留水に溶解して、コラーゲン濃度が5wt%であ
る溶液をクリーンベンチ内で無菌的に調製した。次に、
5wt%コラーゲン溶液40mlをディスペンサー(サ
ンエイテック社製:EFD900型)を用いて、20ゲ
ージサイズ(孔径約600μm)のニードル先端から、
2.0barの定圧条件下で、99.5vol%エタノ
ール液(和光純薬製、特級)1000ml/25%グル
タルアルデヒド溶液42mlの混合浴中に連続押出し紡
糸を行った。繊維直径が200μm、不織布の嵩密度が
0.01g/cm3である不織布を得た。以下、実施例
1と同様に操作して、グルタルアルデヒドを約1%含有
するエタノール混合凝固兼架橋浴中で上記不織布を4時
間反応させた。反応終了後、次いで、反応液からグルタ
ルアルデヒド/エタノール混合溶液を除去し、99.5
%エタノール液で3回不織布を洗浄して、余剰のグルタ
ルアルデヒドを除去した。次に、実施例1と同様に減圧
乾燥を行い、さらに、このコラーゲン不織布を圧縮し
て、厚さ0.7mm、大きさ約7cm×5cmの圧縮不
織布(繊維直径は200μm、不織布の嵩密度は0.8
g/cm3)を得た。このようにして得られた圧縮不織
布2枚を使用して積層構造とした。 【0049】次に、これら2枚の不織布層をスチロール
角型容器に入れ、さらに容器の上から20wt%ヒアル
ロン酸溶液を充填した後、フリーザー(サンヨー社製:
MEDICALFREEZER)にて、−20℃下で12時間凍結し、
後に、凍結乾燥を約24時間行い、ヒアルロン酸スポン
ジ層中にコラーゲン不織布層を含有する4層構造の膜状
物を得た。得られた膜状物を、500kgf/cm2
圧力で圧縮し、厚さ約1.9mm、大きさ約7cm×5
cmの癒着防止膜を得た。この得られた膜を、バキュー
ムドライオーブンと油回転真空ポンプ(ULVAC社
製:GCD135−XA型)にて135℃、−減圧下(1Torr
未満)で12時間熱脱水架橋処理を行った。このように
して、不織布層が2層構造であり、グルタルアルデヒド
により架橋処理され、さらに片面の厚さが約0.25m
mのヒアルロン酸スポンジ層が不織布層と一体となり、
熱架橋された4層構造の癒着防止膜(厚さ約1.9m
m、大きさ約7cm×5cm)を得た。得られた癒着防
止膜の縫合強度、生体適合性、組織再生の誘導性、癒着
防止性を下記実施例3〜4に示す。 【0050】実施例3 縫合強度の測定 実施例1および実施例2において作製した癒着防止膜の
縫合強度を測定した。コントロール用サンプルとして
は、ゴアテックス心膜(ゴアテックス社製:ゴアテック
ス EPTFEパッチII(心膜用シート))、ブタ摘出
心膜、ブタ摘出脳硬膜を使用した。なお、ブタ摘出心膜
および摘出脳硬膜は、約20kgのブタを麻酔下で摘出
手術により、各膜を取り出した後、生理食塩水に浸漬さ
せ、新鮮な状態で直ちに測定した。測定方法は以下の通
りに行った。まず、各サンプル膜およびコントロール膜
を全て1cm×2.5cmのプレート状切片として切り
出し、長辺方向の片端から5mmの距離で、該膜の中央
部に、縫合糸(4−0プロリーン糸、ETHICON,
INC製)を通して輪状に結節した。次に、縫合糸を結節
した切片を37℃の生理食塩水中に30分間浸漬させた
後、速やかに取り出して、引張り強度測定計(島津社製
オートグラフS−500D)により引張り強度を測定し
た。測定条件は、縫合糸を通した側と反対側の端を末端
から約10mmの距離までチャックして固定し、一端に
ある輪状の縫合糸を測定フックに掛けて、10mm/分
の一定速度で引っ張り測定した。この時、膜が縫合糸に
より切断、または、縫合糸が被測定膜切片より離れる時
点までの応力変化を測定した。記録された応力の内で、
その最高値を測定に使用した被測定膜の縫合強度(単
位、N)として採用した。その結果を表1に示す。 【0051】 【表1】単位:(N) 【0052】表1から明らかなように、本発明の癒着防
止膜は、縫合強度において、通常の縫合固定に充分耐え
られる強度を有している。 【0053】実施例4 埋植試験 実施例1で得られた癒着防止膜を、ウサギ(n=8)の
背部筋肉内に埋植して、その組織反応を、肉眼と光学顕
微鏡により観察し、生体適合性を評価した。埋植サンプ
ルは、実施例1により得られた癒着防止膜を1.5mm
×10mmの大きさに切断して使用した。また、コント
ロールとしては、高密度ポリエチレンプレートをサンプ
ルと同じ大きさに切断して使用した。なお、コントロー
ルはエチレンオキサイドガス滅菌を行って使用した。サ
ンプル膜は25kGyのγ線を照射して滅菌した後に、
埋植試験に使用した。埋植は、まず、ウサギ(体重約
2.5kg〜3.0kg)に通常の吸入麻酔を行い、次
に無菌的にラット背部脊髄を挟んで、左にコントロー
ル、右にサンプルを埋植した。埋植方法は、滅菌した1
5ゲージの注射針を用いて、皮膚表面に対して斜めに約
30度の角度より刺入して、注射針内に充填したおいた
サンプル膜およびコントロールを押出してウサギ筋肉内
に埋植した。この後、埋植1週間後に4羽、さらに4週
間後に4羽を観察対象として使用した。各観察時間にお
いて、ウサギ4羽のうちの2羽については、麻酔下でサ
ンプル埋植部位を切開し、埋植部分とその周囲組織の観
察を炎症反応等を中心に目視による観察を行った。ま
た、残り2羽については、過剰の麻酔により犠牲死さ
せ、埋植物を含む周囲組織を摘出した後、通常のホルマ
リン固定を行い、切片を作製して顕微鏡による観察を行
った。 【0054】これらの観察結果より、いずれの観察時間
において、また、全てのウサギにおいて、サンプル膜は
コントロールに対して顕著な炎症反応等を示さず、本発
明により得られる癒着防止膜の生体適合性が良好である
ことが分かった。なお、埋植後4週間経過した場合にお
いては、サンプル膜の一部が分解・吸収されていること
が見受けられた。 【0055】実施例5 癒着防止効果の検討 ラット10匹(体重250g〜300g)を5匹ずつ2
群に分け、一方の群をコントロールとし、他方の群をサ
ンプル群とした。なお、サンプル群には実施例2で作製
した癒着防止膜を使用した。コントロール群、サンプル
群のいずれの場合も、ラットに筋肉注射により麻酔をか
けた後、吸入麻酔により麻酔状態を持続させた。コント
ロール群では、麻酔下で腹部を切開し、盲腸を露出させ
た後に、約5mm四方程度の漿膜を剥離した。また、剥
離した盲腸漿膜とこれに対応する腹壁側を同様に剥離し
て、盲腸損傷面と腹壁損傷面とが接合面となる癒着モデ
ルを作製した。コントロール群では、この後、特に何も
処置をせずに閉腹した。一方、サンプル群では、コント
ロール群と同様に癒着モデルを作製した後に、盲腸損傷
面に対して実施例2で作製した癒着防止膜を被覆して固
定した。固定した癒着防止膜の大きさは、約10mm×
10mm程度であり、四隅を縫合糸(5−0バイクリル
糸)にて腸管に軽く掛けて縫合固定した。サンプル群お
よびコントロール群ともに2週間後にラットを再手術
し、開腹して癒着の状態ををれぞれ目視で観察した。目
視による癒着の程度は、下記表2の基準を基に判別し、
点数化を行って、サンプル群およびコントロール群を比
較評価した。癒着を認めたと判断する場合は、等級3以
上を採用した。 【0056】 【表2】【0057】 【表3】 【0058】表3から明らかなように、サンプル群とコ
ントロール群を比較検討した結果、サンプル群では癒着
を認めた例が無かったのに対して、コントロール群では
全例ともに等級3以上の癒着を認めた。また、サンプル
群ではほぼ全例において、癒着防止膜は固定した部位に
残存しており、他所へ移動すること無く、損傷面同士を
隔離する役目を果たしていた。さらに、残存した癒着防
止膜を慎重に剥離し、盲腸の損傷面を目視観察すると、
損傷面が再生し始めている様子が伺えた。 【0059】 【発明の効果】本発明の癒着防止膜は、縫合が可能であ
るため、生体中の欠損または損傷部位に直接固定が可能
であり、これにより、従来の癒着防止膜に見られた体内
における目的部位よりの移動、脱落、逸脱が無く、被癒
着部位と欠損、損傷部位等を確実に隔離し、良好な癒着
防止効果を発揮することが可能であり、さらに癒着防止
に必要な期間経過後には、全て体内で分解・吸収される
という特長を有する。
DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION [0001] TECHNICAL FIELD The present invention is capable of suturing
The present invention relates to an adhesion preventing film. Specifically, healing in vivo
Biological materials such as pleura, pericardium, dura mater, and serosa as anti-adhesion films
Defects or cut surfaces such as intimal tissue and various organs
It is used for filling, prosthesis, etc., and is particularly sutureable.
First, an anti-adhesion membrane with good biocompatibility and bioabsorbability
It is about. [0002] 2. Description of the Related Art In various surgical operations, an affected part is resected.
And often repairs damaged areas, especially in the lungs and heart.
Targets various organs such as the organs, liver, brain, digestive organs, and gallbladder
In the case of a surgical operation that does,
Do not supplement or prosthetic the membrane covering the tissue of the organ.
If so, it often impairs the underlying function of that organ.
If these procedures are performed incompletely, organ dysfunction may occur.
If you die or escape from a life threat, your prognosis will be great
The tendency to get worse is often seen. In addition, these supplements
If the suturing and fixing of the film at the site of
The function of the treated organ itself was barely maintained
Even if body fluids exude or leak from these organs,
Infection or attack on other organs due to
It can cause fire and erosion, resulting in a life-threatening crisis. In addition, these prostheses or supplemented sites
In some cases, adhesion of membranes occurs frequently,
Inducing organ dysfunction over time as a result of
There is also. To solve these various problems,
Film or anti-adhesion membrane covering organ or tissue of said organ
Has been developed with various materials. Conventionally, a nonwoven fabric made of collagen fibers
The layer is water-resistant with aldehydes, and the fibers are
Wound dressing material in which fibers are bonded to each other (Japanese Patent Laid-Open No. 50-141190)
Is known. However, the coating is
Is a layer using a cross-linking agent.
There is a problem in inducing weaving promotion. Also like this
The dressing only covers the wound and is sutureable.
It has a function to prevent film adhesion and adhesion.
Or not. [0005] SUMMARY OF THE INVENTION In the above prior art,
Is sufficient adhesion prevention effect, suture strength,
Lack of compatibility, biodegradation and absorption
Have the problem that they cannot be satisfied at the same time.
Was. That is, the present invention has the disadvantages of the conventional anti-adhesion film.
Sufficient suture strength and biocompatibility,
Insufficient solution / absorptivity and insufficient adhesion prevention
It is intended to solve these problems at the same time. [0006] That is, the present invention provides a
Gelatin or non-woven fabric layer
Sewing having a coating layer containing hyaluronic acid
It is an adhesion preventing film that can be combined. By the way, as a mechanism for preventing adhesion, the most
Simple and effective methods are also based on damage or loss
Physical contact is possible with the damaged tissue.
Another tissue is not brought into contact with the partition wall. I
However, if this is done with synthetic fibers, etc., lack of biocompatibility
From various calcifications, foreign body reactions, inflammatory reactions, etc.
Inconvenience arises. Also, the material used for the partition itself
Is the damaged or missing tissue and the corresponding other tissue
Do not mediate adhesions with. These conditions
Hyaluronic acid or gelatin
And the like. Both are viscous water-soluble liquids
Can be handled by various processing methods.
It can be used as a gel. These materials are mainly extracted from living bodies such as animals.
・ Because it is purified, its biocompatibility is good.
Practical application in various medical fields, including pharmaceuticals
I have. Also, when implanted in a living body, it is decomposed and absorbed
During the process, gelatin or hyaluronic acid molecules are released
Continue to exhibit viscosity while maintaining water-based properties,
Contact with tissue at the damaged or defective site
Combined with the characteristic that adhesion and adhesion hardly occur
One. Applying these features, hyaluronic acid
As a technology for manufacturing anti-adhesion films and medical materials
Is disclosed in JP-A-6-73103, JP-B-7-3012.
No. 4, Japanese Patent No. 2670996, Japanese Unexamined Patent Application Publication No.
-333402, JP-A-61-234864
, Registered Patent No. 2648308, JP-A-8-15
No. 7378, JP-A-9-296005, JP-A-9-296005
JP-A-7-102002, JP-T-7-509386
Gazettes and the like. But including these technologies
Mechanical strength for sufficient adhesion prevention and suturing
There is no technology that combines [0010] Similar to the above-mentioned hyaluronic acid, it cures gelatin.
Japanese Patent Laid-Open Publication No.
JP-103479, JP-A-8-52204
Those described are mentioned. However, these technologies
In all cases, as with hyaluronic acid, adhesion prevention
The two points of mechanical strength that can be stopped and suture fixed
It has yet to provide a satisfactory medical material. [0011] BEST MODE FOR CARRYING OUT THE INVENTION The adhesion preventing film of the present invention is a synthetic fiber.
Collar is a bio-based material that does not use any fibers or synthetics
Gen and gelatin or hyaluronic acid as main ingredients
These are processed into a non-woven or sponge shape
2 to 8 layers, preferably 3 to 5 layers as a whole
And a laminated structure composed of The anti-adhesion film is
The collagen non-woven fabric layer is responsible for the strength of the membrane that can be sutured in minutes.
The biocompatibility and the effect of preventing adhesion to surrounding tissue
The layer formed by tin or hyaluronic acid exerts
It is considered something. [0012] The anti-adhesion film of the present invention is a
To collagen and gelatin or hyaluronic acid
Is very biocompatible
It is not degraded and absorbed gradually in the transplanted living body.
In the end, all will be decomposed and absorbed. In particular
The collagen non-woven fabric layer can be used to regenerate tissue
Until completion, as a scaffold to refill, prosthetic and seal
Present and maintained its membrane strength for a period of time after suture fixation
Later, they are all decomposed and absorbed. Also, the outermost layer of gelatin
Or the hyaluronic acid layer, due to its viscosity and sustained release action,
Prevents adhesion of damaged or defective tissue to surrounding tissue
You. Note that the period during which this adhesion is prevented is
The tissue at the site does not naturally adhere to surrounding tissue
It lasts until it is regenerated and healed to a certain extent. these
Decomposes and absorbs gradually in the body while exhibiting the adhesion prevention effect of
Finally, these gelatin and hyaluronic acid layers
Lost. The typical collagen used in the present invention is
In addition, enzyme-solubilized collagen, acid-solubilized collagen,
Alkaline or neutral solubilized collagen
And soluble collagen. , These solubilized
Collagen is a particular type of proteolytic enzyme (eg, pep
Or solubilization with trypsin, etc.)
It has been solubilized by Lucari,
At the same time, the determinant of telopeptide,
Removed, usually called atelocollagen
Those suitable for medical use are particularly preferred. Solubilization of these
About the collagen which was done, from the following animal species,
Known technologies (JP-B-46-15033, JP-B-43-259839)
Gazettes and Japanese Patent Publication No. 43-27513).
It is. [0014] The reason for the collagen used in the present invention is as follows.
There are no particular restrictions on the coming, but in general, cattle,
Pigs, birds, fish, rabbits, sheep, rats, humans, etc.
You. Collagen can also be found in these skins, tendons, bones, cartilage,
Obtained by using various known extraction methods from organs, etc.
It is something that can be done. Also, about the type of collagen
Is any of the types that can be classified, such as type I and type III
Crab is not particularly limited, but handling
To type I collagen are particularly preferred. Also Collage
For solvents that solubilize water, water is preferred for handling.
Suitable. Gelatin is normal Japanese Pharmacopoeia compliant gelatin
Using hyaluronic acid from animals or microorganisms
However, medical grade products are particularly suitable. Nonwoven layer having sufficient film strength to be sutured
Spin the collagen solution into a coagulation bath to obtain
And crossed in multiple layers at the bottom of the coagulation bath to reduce the fiber diameter.
10 to 1000 μm, preferably 20 to 300 μm, bulk
Density (fiber density) is 5 × 10 -Four~ 5g / cmThree, Preferred
1.0x10-3~ 2.0g / cmThreeCollection of fibers
Get united. That is, the solution of the solubilized collagen
Continuous wet spinning, and put this long yarn in a suitable container
Move and arrange in a crossed state so that it is not arranged only in a certain direction
And place it. Next, vacuum drying, natural drying, low temperature drying,
Non-woven fabric (fiber
State). Collagen in any drying method
Below the denaturation temperature of the collagen used to prevent denaturation
It is important to perform drying at a temperature
Depending on the type of lagen, the temperature is about 35-45 ° C.
Below the temperature range is desirable. In particular, low-temperature drying or vacuum drying is preferable.
Good. On the other hand, discontinuous spinning by intermittent ejection or normal spinning
After continuous spinning, the obtained yarn is cut.
In both continuous and discontinuous spinning,
A short staple-like fibrous material is obtained. These are appropriate
In a state of being uniformly dispersed in a container of
Drying by non-woven fabric (fiber
State) can also be obtained. The concentration of the solubilized collagen solution used for spinning
The degree is optional depending on the type of collagen used.
Any concentration is possible as long as it is possible, but usually
0.1-20 wt%, of which 1-10 in wet spinning
Particularly preferred is about wt%. In addition, the solubilizing core
The discharge speed of the lagen and the winding speed of the obtained yarn
Any range is possible as long as the yarn can be formed. For discharging a solubilized collagen solution during spinning
The equipment used is a general-purpose gear pump, dispenser,
Any type of equipment such as a seed extrusion device may be used, but uniform spinning is performed.
For stable quantification of collagen solution with low pulsation
A device that can discharge is good. The size of the hole diameter of the spinneret when spinning is
There is no particular limitation as long as spinning is possible, but too much
For large pores when converting from fibrous to membrane-like material in a later process
This is difficult to achieve, and extremely small
Usually, 10 to 1000 μm is preferable because it is difficult to improve
More preferably, it is in the range of 50 to 700 μm.
The number of holes in the base may be singular or plural. Also the base
The shape is not particularly limited as long as spinning is possible.
Lit-shaped or various shapes may be used. More mouth
Regarding the hole length of gold, it is particularly limited as long as it can be spun
But not collagen molecules in the solubilized collagen molecules
As long as possible for the purpose of aligning
Is preferred. The coagulation bath of the wet spinning method is generally
If it is possible to coagulate the lagen
Is not, but an inorganic salt aqueous solution, an inorganic salt dissolving organic solvent,
Selected from alcohols, ketones or any of them
Combinations can be employed. With these coagulation baths
For example, as an aqueous solution of inorganic salts, sodium sulfate
, Sodium chloride, ammonium sulfate, calcium chloride
And magnesium chloride.
Thorium, sodium sulfate and ammonium sulfate for spinning
Is preferred. In addition, these inorganic salts are
Use of organic solvents such as inorganic salts dissolved / dispersed in
It can be used especially for dissolving sodium chloride in ethanol /
Dispersed solutions are preferred. In addition, as alcohols,
Tanol, ethanol, isopropanol, amylal
Call, etc.
Are particularly preferred. As ketones, aceto
And methyl ethyl ketone. In addition, not only as a coagulation bath,
Collagen with various cross-linking agents described below
A processing method having both coagulation and cross-linking treatment is also effective.
For example, a mixture of ethanol and glutaraldehyde
The liquid is used as a coagulation bath that has both coagulation and cross-linking.
If used, both processes can be performed at once and spinning
Cross-linked by immersing collagen yarn as it is
Processing is also possible. These simultaneous processes streamline the process
Not only spinning and small diameter with dilute collagen solution
It is very effective when spinning the yarn of In the above-mentioned method for forming various nonwoven fabric layers,
Particularly preferred examples are described below. Collar ejection mouth
The diameter is about 200μm and the hole length is about 15-20mm.
Dispense solubilized collagen solution without pulsation
In a 99.5 vol% ethanol coagulation bath.
It is desirable to perform wet spinning. 99.5vol% ethanol
When extruding solubilized collagen into the coagulation bath,
Move the gold at any time, and the spun yarn
Continuously extrude in a state where it can be
You. After this, remove the coagulating liquid and wash again with ethanol.
By cleaning and drying under reduced pressure, a very good floc
We can get fibers. This method simplifies the process and shortens the process.
This is particularly effective in terms of reduction and economic efficiency. Note that this example is a typical one,
It is not limited to this as long as it is obtained.
For example, the above-mentioned staple-like short fibers may be used.
Type of coagulation bath, use of coagulation bath and cross-linking agent mixed bath,
Drying methods, etc., and their combinations.
May be changed. The nonwoven fabric layer obtained by the above method is sufficiently sutured.
To be further cross-linked to obtain strength
Is desirable. This is due to the crosslinking treatment, especially when wet.
Physical strength and ensure that the strength required for suturing is sufficient.
Because it can be maintained. Also, when implanted in vivo,
Dramatically shortens the time required for dissolution and absorption compared to uncrosslinked
It is also to delay. By this cross-linking treatment,
To replace or replace the missing part of the organ
To prevent dysfunction and to repair wound surfaces and tissue
Maintains necessary membrane strength in the body until regeneration is completed
It is possible to remain as it is. This crosslinking method is roughly divided into physical crosslinking methods.
There are methods and chemical cross-linking methods. Examples of physical crosslinking methods and
Γ-ray, ultraviolet ray, electron beam, plasma, thermal dehydration crosslinking
On the other hand, as a typical example of the chemical crosslinking method,
Is an aldehyde such as dialdehyde or polyaldehyde
, Epoxy, carbodiimide, isocyanate
Tannin treatment, chromium treatment and the like. this
Of the aldehydes, formaldehyde, glue
Talaldehyde, acid aldehyde, glyoxal, malo
Acid dialdehyde, succinic acid dialdehyde, phthalic acid
Aldehyde, dialdehyde starch, polyacrolein,
Limethacrolein, etc.
Any available aldehydes
I do not care. In addition, as epoxies, glycerol di
Glycidyl ether, sorbitol diglycidyl ether
, Ethylene glycol diglycidyl ether, polyether
Tylene glycol diglycidyl ether, polyglycero
Polyglycidyl ether, etc.
Epoxy compounds that can crosslink with
Is available. Further, as an example of carbodiimides
Is particularly preferably a water-soluble carbodiimide,
Anything is possible as long as the reaction mechanism is possible. Also, isocyanates
Hexamethylene diisocyanate is a typical example of nates.
And tolylene diisocyanate
Has at least two isocyanate groups involved in the crosslinking reaction.
Can be cross-linked with collagen
Yes, and not particularly limited to these. By the above-mentioned method, the kola obtained by spinning or the like is used.
-Gen nonwoven fabric (fibrous material) obtains higher suture strength
For this purpose, it can be further compressed. Compress
This increases the fiber density of the non-woven fabric layer,
It is possible to obtain a highly preferable film-like material. Compressed
The non-woven fabric has a bulk density of particularly 0.05 to 5 g / cm.ThreeIs
Is preferred. The compression can be performed by a general-purpose press.
Although it is intended for medical use, it is
Sterile packaging materials, such as aluminum packs and high-strength resin packages
Compressed aseptically packaged with equipment, etc.
Is desirable. At this time, regarding the pressure for compressing the nonwoven fabric layer,
Is not particularly limited as long as it does not destroy the non-woven fabric layer body.
Not usually, but usually 10-1000kgf / cmTwoIs
It is desirable. Non-woven fabric layer has fiber density for the purpose of improving strength
With a laminated structure that is the final form
Handling of medical treatment when using an adhesion prevention film
From the point of view, it is compressed and thinned as much as possible
It is desirable. The nonwoven fabric layer thus thinned is
By laminating this to form a multilayer structure,
It becomes possible to obtain an adhesion preventing film having an increased joint strength. The nonwoven fabric layer or pressure obtained by the above method
The purpose of further improving the physical strength of the shrinked nonwoven fabric layer
Thus, it is possible to perform a binder treatment. Binder
-As for collagen sponge layer and / or soluble
Collagenized collagen solution is preferred. This is a non-woven layer or pressure
The collagen sponge layer was dissolved in the shrinked nonwoven fabric layer
After impregnated with the solubilized collagen solution, air dry and blow
Under appropriate drying methods such as drying under reduced pressure, drying under reduced pressure, and drying under low temperature
After drying, the fibers of the non-woven fabric layer are bonded together to form a film.
It is a technique that The film obtained by this operation is non-woven
The physical strength is much higher than that of the fabric layer alone,
The suture strength is also significantly improved. Note that the required physical
Depending on the degree of strength, this impregnation and drying step is performed once to several times.
It can be repeated zero or more times. However, when performing the binder treatment,
Cross-linking is applied to the woven or compressed non-woven layer
If not, it will not work when impregnated with the solubilized collagen solution.
The woven fabric layer itself may be dissolved. Therefore,
Cross-linking treatment can be performed in advance by the method described above.
desirable. In addition, other than the treatment method of impregnating the collagen solution,
In a suitable container or mold, solubilize
The method of casting or filling the lage or directly to the non-woven fabric layer
There is also a method of applying a solubilized collagen solution. The film-like material of the present invention comprises collagen fibers.
1 to 6 layers, preferably 1 to 3 layers
Having. The nonwoven fabric has a thickness of 100 μm to 50 mm, preferably
Preferably, the nonwoven fabric layer has a thickness of 200 μm to 4.0 mm.
It consists of 1 to 6 layers, preferably 1 to 3 layers. Film form of the present invention
To get the product, for example, dry it in advance into a sponge
A membrane-like material obtained by sandwiching the nonwoven fabric layer with the collagen layer
Alternatively, the sponge layer and the non-woven
The film material in which the cloth layer is embedded in the sponge layer is
Pressure or reduced pressure in the presence of activated collagen solution or water
By placing it under pressure, the solubilized collagen of the sponge layer
Dissolve and let it mix well with the non-woven fabric layer
There is a method of drying by a drying method. Use this sponge layer
The binder treatment method used is to bind the fibers of the nonwoven fabric layer to each other.
To the amount of collagen actually used
And a very small amount of solvent components such as water
In addition to short time when drying in the process,
The great merit of very little contracture and deformation
is there. If it is a normal impregnation step, solubilized collagen for impregnation
The actual amount of collagen in the solution is related to the practical solution viscosity.
Therefore, the limit is about several percent, and the remaining 90% or more is moisture
And so on. Therefore, for impregnation and drying operations
Not only is it time-consuming, but the operation itself needs to be repeated
Is a simple method, but lacks rationality.
You. Of course, these methods are representative examples,
Solubilizing fiber between layers or compressed non-woven layers
If it is a method of binding using a gene to form a film,
Such a method may be used, and the above representative example is not particularly limited.
No. In addition, for the binder treatment, the collagen solution
In addition, gelatin solution, hyaluronic acid solution, etc. can be used
is there. In the present invention, the cola obtained by the above method is used.
A non-woven fabric layer consisting of
It is necessary to form a hyaluronic acid layer. The formation
The method is easy to carry out by freeze drying etc.
It is possible. , The order and method in the manufacturing process to form
The method is not particularly limited. Examples of specific manufacturing methods
For example, collagen non-woven fabric layer and gelatin or hyaluron
Laminate an acid sponge or film layer, or
Independently manufactures a gelatin or hyaluronic acid sponge layer
Then, after that, the sponge layer and the collagen nonwoven fabric layer
Solubilized collagen, gelatin solution, hyaluronic acid solution
There is a method of bonding using any method. Also, collagen non-woven
Once the fabric layer is immersed in the solubilized collagen solution,
Frozen and dissolve gelatin or hyaluronic acid again
Immersion in a liquid, freeze them and integrate them, then freeze-dry
By drying, the collagen layer and gelatin or
Is a method of obtaining a laminated sponge of hyaluronic acid. The gelatin solution filled in the container or
Dipped collagen nonwoven fabric in hyaluronic acid solution
Later, freeze in a freezer, freeze-dry and
Collagen non-woven fabric in the sponge or hyaluronic acid sponge layer
It is also possible to mold to a state in which is contained. I
However, these are merely examples of the processing method of the present invention.
The purpose of these processing is gelatin or hyaluronic acid
Sponge layer or film layer and collagen nonwoven layer
Can be integrated without being easily separated or separated when implanted in vivo
The goal is to be
Any processing order and method may be used. Gelatin or hyaluronic acid sponge layer
For preparation, gelatin solution or hyaluronic acid solution
Is cast into a container or filled to a desired thickness, and
After freezing sufficiently in a freezer, etc., dry with a freeze dryer.
By drying, various uniform sponge layers can be obtained.
At this time, formed on gelatin or hyaluronic acid sponge layer
The pore size of the fine porosity is determined by the gelatin solution, hyaluronic
Acid solution concentration and solvent, freezing temperature and freezing time, etc.
It changes with. Further, a gelatin sponge layer, hyaluronic acid
Total amount of various raw materials in sponge layer and various sponges
About the thickness of the layer, the adhesion prevention effect of the target site,
Support for repairing damaged / cut sites and inducing tissue regeneration
Each sponge layer for about 1 to 4 weeks so as not to interfere
Is desirably in the body. This gelatin
Or the thickness of the hyaluronic acid sponge layer and the sponge layer
The total amount of raw materials used for the formation of
Considering the effect on the decomposition / absorption time and induction of tissue regeneration
And can be controlled arbitrarily. Spong
The thickness of the bilayer is specifically about 50 μm to 20 mm, preferably
100 to 1000 μm, especially at the end of drying.
Thickness is 1-10mm, these are compressed and used
In some cases, a sponge having a thickness of 100 μm to 1 mm
Di is preferred. Considering these situations, the gelatin solution
Is 0.5 to 60% by weight, preferably 5 to 4% by weight.
0 wt%. Hyaluronic acid solution concentration range
Is 0.1 to 50 wt%, preferably 0.5 to 5 wt%
It is desirable that The freezing temperature is -196 to -1
0 ° C, preferably general-purpose freezer or deep free
-80 to -10 ° C, which can be set by the user
Good. Also, freeze dryers can be dried stably.
It is not particularly limited. Further, a gelatin solution or hyaluronic acid
The filling amount of the solution into the styrene
The thickness of the flange is about 50 μm to 20 mm, preferably 10 μm.
What is necessary is just to fill so that it may be set to about 0-1000 micrometers. This
These values can be changed at any time according to the purpose of use.
However, the present invention is not limited to these examples. A hyaluron exhibiting an adhesion preventing effect
Acid or gelatin layer is limited to sponge shape only
However, for example, a file obtained by a normal casting method or the like is used.
It may be processed into a film shape or the like. Also prevents adhesion
Gelatin or hyaluronic acid layer to give effect
When forming, depending on the purpose, one side or both sides of the membrane
Various forms such as surface, partial or full coverage
The method of forming the gelatin or hyaluronic acid layer is optional.
The law or its site is particularly limited
, And any combination is possible. The cross-linking treatment is performed by the various cross-linking methods described above.
The target is that the anti-adhesion film of the present invention
And gelatin or hyaluronic acid
The non-woven fabric layer, gelatin layer or
Hyaluronic acid layers, and these are integrated and laminated
Part or all of the anti-adhesion film is targeted. Also, the frame
The order of the bridges and the combination of the crosslinking methods are arbitrary, and
Not determined. However, most preferably, collagen non-woven
Glutaraldehyde and other aldehydes in the fabric layer
Cross-linking, followed by a gelatin layer or hyal
Form a layer of lonic acid, integrate with it, and finally heat dehydration rack
Apply a bridge. In these methods, collagen spinning
-In the process of nonwoven fabric, a coagulant such as ethanol,
Mix crosslinking agents such as glutaraldehyde and spin
It also includes a method of performing the yarn and cross-linking steps at once. The healing finally obtained by the method of the present invention
Anti-adhesion membrane has suture strength, biocompatibility, biodegradation and absorption
It is an anti-adhesion film excellent in terms of properties. In addition,
When performing binder treatment on the non-woven fabric layer
Can be thermally dehydrated and crosslinked also in the layer formed by this.
good. However, this is only an example, for example,
No problem when all layers are treated by thermal dehydration crosslinking
In addition, for both sterilization and cross-linking, for example,
Is also good. The nonwoven fabric layer obtained by the above method and the gelatin
An anti-adhesion film having a hyaluronic acid or hyaluronic acid layer,
It is possible to compress. Gelatin or hyaluronic
After compressing the acid sponge layer alone or the nonwoven fabric layer alone,
Uncompressed nonwoven layer or gelatin or hyal
You may integrate with combining with a lonic acid sponge layer. Special
Preferably, the nonwoven fabric layer and
Tin or hyaluronic acid sponge layer is integrated
To compress things at the same time. This is to compress
The thickness was reduced by the
When actually using the anti-adhesion membrane at the site,
Of penetrating suture needles, cutting into arbitrary shapes, etc.
Handling is particularly improved, and transplant surgery and the like can be performed more smoothly. Pressure
The method of shrinking is exactly the same as when compressing the collagen nonwoven layer
Can be performed with a general-purpose press,
Sterile packaging that is strong enough for the intended purpose
Materials such as aluminum packs and high-strength resin packaging materials
Desirably, it is compressed in a bacterially packaged state. Ma
As for the pressure to compress the adhesion prevention membrane,
There is no particular limitation as long as it does not break, but usually 1
0-1000kgf / cmTwoIt is desirable that [0040] Next, the present invention will be described with reference to examples.Example 1 First, in an Erlenmeyer flask (Corning)
Magnetically transforms chicken-derived atelocollagen
While gently stirring with a stirrer, add distilled water for injection,
Collagen concentration of 3 wt% or 5 wt%
Prepare the collagen solution aseptically in a clean bench.
Was. Next, dispens 40 ml of 5 wt% collagen solution.
Sensor (San-A-Tech: EFD900)
Needle tip of 27 gauge size (200 μm hole diameter)
From the end, 99.5 vol under a constant pressure condition of 4.0 bar
% Ethanol solution (Wako Pure Chemical Industries, special grade) in a coagulation bath
Continuous extrusion spinning was performed. During continuous extrusion spinning,
The needle tip randomly on an ethanol coagulation bath.
While moving, the precipitated and coagulated collagen yarn is
Spun so as to cross multiple layers at the bottom of
(Aggregate of fibrous collagen) was obtained. Then this non-woven
Leave the cloth (aggregate of fibrous collagen) for 1 hour
After coagulation, the coagulation liquid is exchanged twice with the same ethanol.
And washed. The above nonwoven fabric (aggregate of fibrous collagen)
As it is in a vacuum dry oven (EYELA
Oil rotary vacuum pump (ULVA) in VOS-300VD
C Company: GCD135-XA) at room temperature under reduced pressure (less than 1 Torr)
Full) dried for 4 hours, non-woven fabric (fibrous collagen non-woven)
Cloth). Fiber diameter is 60μm, bulk density of non-woven fabric is
4.0 × 10-2g / cmThreeIt is. Next, this non-woven fabric
Put in sterilized aluminum packaging, high pressure jack
100 kgf with a (15-ton press machine manufactured by Iuchi Seieido)
/ CmTwoCompressed at a pressure of approximately 8cm x 5cm
Cloth (fiber diameter is 60μm, bulk density of non-woven fabric is 0.9g /
cmThree) Got. Further, the compressed non-woven fabric was used in 5% glutar.
Aldehyde solution (Wako Pure Chemical, first grade glutaraldehyde
25% solution diluted with distilled water for injection) for 4 hours,
Crosslinking treatment was performed. After the reaction is complete, use distilled water for injection.
After washing, immerse for 1 hour in distilled water bath for injection
Change the water three times to remove excess glutaraldehyde.
I left. Reduce the pressure of the non-woven fabric after cross-linking treatment again
Dry and compress, 0.6mm thick, about 8cm in size
5 cm compressed nonwoven fabric (fiber diameter is 60 μm, bulk of nonwoven fabric
The density is 0.91 g / cmThree) Got. Separately, in order to perform binder processing,
A dried collagen sponge was prepared. This is 3w
Put the t% solubilized collagen solution into a styrene square container
After filling to a thickness of about 17 mm, the freezer (SA
NYO: MEDICALFREEZER) at -20 ° C
It was frozen for about an hour. Next, the frozen solubilized collagen
Lyophilizer (EYELA, Inc.)
Manufactured by FDU-830) and an oil rotary vacuum pump (ULV
AC company: GCD200-XA) under reduced pressure (0.05 Torr or less)
Full) freeze-dried for about 24 hours and remove collagen sponge
Obtained. The film thickness at the end of freeze-drying was about 15 mm,
Rate was 80%. One sheet of the obtained crosslinked nonwoven fabric (thickness:
0.6 mm), separately prepared collagen sponge
100kgf / cm again with one sheet (15mm thick)
TwoCompressed under the pressure of
3 mm thick, buried in a ponge layer, approximately 7 cm in size x 4.
A 5 cm-thick collagen film having a two-layer structure was obtained. Next, the above film was solubilized in a 3 wt%
Vacuum while immersed in about 15 ml
In a dry oven (manufactured by EYELA: VOS-300VD)
To decompress the air in the film,
Solution is forcibly impregnated into the sponge layer of the film.
Was. The collagen in the sponge layer is water in the collagen film
And a one-layered film was obtained. The film obtained
The product is dried at low temperature (4 ° C.) for 24 hours,
Treated collagen membrane (0.18 mm thick, large
(Approximately 7 cm × 4.5 cm). Next, the obtained Photoshop
Transfer the genogen film to a styrene square container and place it on the container.
Pour a 30 wt% gelatin solution from
Adjust the position with sterile tweezers etc. so that it comes to the middle layer
After that, freezer (Sanyo: MEDICALFREEZER)
At -20 ° C for about 12 hours. In this way
Freezing with integrated gelatin layer and compressed collagen nonwoven layer
A three-layer laminated structure film in a bonded state was obtained. Next, the three-layer structure film was placed in a container.
Similarly, freeze-drying was performed at −20 ° C. for about 24 hours.
The obtained compressed collagen nonwoven layer and gelatin sponge layer
Was again integrated into a 400 kgf / c
mTwoCompressed with a pressure of about 1.6mm thick, about 7c in size
An mx 5 cm three-layer laminated film was obtained. Next, the obtained film is vacuum-dried.
Oven and oil rotary vacuum pump (ULVAC GCD1)
35-XA) at 135 ° C under reduced pressure (less than 1 Torr)
The thermal dehydration crosslinking treatment was performed for 12 hours. In this way,
Only the fibers of the collagen nonwoven fabric layer are glutaraldehyde frames
Bridge treated, one side of the surface is about 0.4mm thick
Anti-adhesion film having gelatin sponge layer (thickness of about 1.6
mm, size about 7 cm × 5 cm). The adhesion obtained
Suture strength, biocompatibility, inducibility of tissue regeneration, healing
The anti-adhesion properties are shown in Examples 3 and 4 below. [0048]Example 2 As in Example 1, chicken atelocollagen was injected.
Dissolve in distilled water for injection, and collagen concentration is 5 wt%
Solution was aseptically prepared in a clean bench. next,
40 ml of a 5 wt% collagen solution is dispensed
20 Technics: EFD900)
From the tip of the needle of the needle size (pore diameter about 600μm)
Under constant pressure conditions of 2.0 bar, 99.5 vol% ethanol
1000ml / 25% glue solution (made by Wako Pure Chemical Industries, special grade)
Continuous extrusion spinning into a mixing bath of 42 ml of taraldehyde solution
Yarn went. Fiber diameter 200μm, non-woven fabric bulk density
0.01 g / cmThreeWas obtained. Examples below
Operate in the same way as in Step 1 and contain about 1% glutaraldehyde
The above non-woven fabric at 4:00 in a mixed ethanol coagulation and crosslinking bath
Reaction. After the completion of the reaction,
Remove the mixed solution of rualdehyde / ethanol and add 99.5
Wash the nonwoven fabric three times with a 3% ethanol solution and remove excess gluta.
The rualdehyde was removed. Next, the pressure was reduced in the same manner as in Example 1.
After drying, compress this collagen non-woven fabric
0.7mm thick and about 7cm x 5cm
Woven cloth (fiber diameter 200 μm, non-woven fabric bulk density 0.8
g / cmThree) Got. The compressed nonwoven thus obtained
A laminated structure was formed using two cloths. Next, these two nonwoven fabric layers were
Put into a square container, and further add 20wt% hyal from the top of the container
After filling with the acid solution, a freezer (manufactured by Sanyo:
MEDICALFREEZER), freeze at -20 ° C for 12 hours,
After that, freeze-drying is performed for about 24 hours,
Membrane of four-layer structure containing collagen nonwoven layer in dilayer
I got something. 500 kgf / cmTwoof
Compressed by pressure, thickness about 1.9mm, size about 7cm × 5
cm of adhesion preventing film was obtained. Vacuum the resulting membrane
Dry oven and oil rotary vacuum pump (ULVAC)
(GCD135-XA type) at 135 ° C under reduced pressure (1 Torr)
) For 12 hours. in this way
And the non-woven fabric layer has a two-layer structure,
Cross-linking, and the thickness of one side is about 0.25m
m hyaluronic acid sponge layer is integrated with the nonwoven fabric layer,
Thermally crosslinked four-layer adhesion prevention film (about 1.9m thick)
m, size about 7 cm × 5 cm). Anti-adhesion obtained
Suture strength of the stop membrane, biocompatibility, inducibility of tissue regeneration, adhesion
The preventive properties are shown in Examples 3 and 4 below. [0050]Example 3 Measurement of suture strength Of the anti-adhesion film prepared in Example 1 and Example 2.
The suture strength was measured. As a control sample
Is Gore-Tex pericardium (Gore-Tex Corp .: Gore-Tex)
S EPTFE patch II (pericardial sheet)), pig extirpation
Pericardium and porcine isolated brain dura were used. The porcine isolated pericardium
And excised cerebral dura, excised about 20 kg of pig under anesthesia
After surgery, each membrane is removed and immersed in saline.
And immediately measured fresh. The measurement method is as follows.
I went there. First, each sample membrane and control membrane
Were cut into 1 cm x 2.5 cm plate sections
At the distance of 5 mm from one end in the long side direction, and the center of the film
In the part, the suture (4-0 pro-lean thread, ETHICON,
INC). Next, knot the suture
The sliced section was immersed in physiological saline at 37 ° C. for 30 minutes.
After that, take it out immediately and measure the tensile strength (manufactured by Shimadzu Corporation).
The tensile strength was measured by the autograph S-500D).
Was. The measurement conditions are as follows: the end opposite to the side where the suture passed
Chuck to a distance of about 10mm from
Hook a looped suture on the measuring hook, 10mm / min
At a constant speed. At this time, the membrane
Twist or when the suture separates from the membrane section to be measured
The change in stress up to the point was measured. Within the recorded stress,
The suture strength of the membrane to be measured (the
, N). Table 1 shows the results. [0051] [Table 1] Unit: (N) As is clear from Table 1, the adhesion prevention of the present invention
The stop membrane is suture-resistant enough to withstand normal suturing
Strength. [0053]Example 4 Implanting test The anti-adhesion membrane obtained in Example 1 was used for rabbits (n = 8).
Implanted in the back muscles, the tissue response is visually and optically examined.
Observation with a microscope was performed to evaluate biocompatibility. Implanted sump
The adhesion preventing film obtained in Example 1 was 1.5 mm
It was cut into a size of × 10 mm and used. In addition,
As a roll, a high-density polyethylene plate is sampled.
Cut into the same size as The control
Was used after sterilizing ethylene oxide gas. Sa
The sample membrane is sterilized by irradiation with 25 kGy γ-rays,
Used for implantation tests. Implantation should be done with rabbits (weight approx.
2.5 kg-3.0 kg), perform normal inhalation anesthesia,
Aseptically sandwich the spinal cord at the back of the rat and control to the left
The sample was implanted on the right. Implantation method is sterilized 1
Using a 5 gauge needle, diagonally to the skin surface
Inserted at an angle of 30 degrees and filled inside the injection needle
Extrude sample membranes and controls into rabbit intramuscular
Buried. One week after implantation, four birds, and another four weeks
Four hours later, four birds were used as observation targets. At each observation time
And two of the four rabbits were under anesthesia.
Make an incision in the implanted site, and observe the implanted area and surrounding tissue.
Observations were made visually with a focus on inflammatory reactions and the like. Ma
The other two birds were killed by excessive anesthesia.
And remove the surrounding tissue, including the embedded plant, and
Perform phosphorus fixation, prepare sections, and observe with a microscope.
Was. From these observation results, any observation time
, And in all rabbits, the sample membrane
No significant inflammatory response, etc. to the control
Good biocompatibility of anti-adhesion membrane obtained by light
I understood that. If 4 weeks have passed since implantation,
That part of the sample membrane has been decomposed and absorbed
Was found. [0055]Example 5 Examination of adhesion prevention effect 10 rats (body weight 250 g-300 g), 5
Into two groups, one group serving as a control and the other group serving as a control.
And a sample group. The sample group was manufactured in Example 2.
An anti-adhesion film was used. Control group, sample
In any of the groups, rats were anesthetized by intramuscular injection.
After the irradiation, the state of anesthesia was maintained by inhalation anesthesia. Conte
In the roll group, an abdominal incision was made under anesthesia to expose the cecum and
After that, the serosa of about 5 mm square was peeled off. Also, peel off
Separate the separated cecal serosa and the corresponding abdominal wall in the same manner.
Adhesion model where the cecal injury surface and the abdominal wall injury surface
Was prepared. After this, in the control group, nothing
The abdomen was closed without any treatment. On the other hand, in the sample group,
After creating an adhesion model as in the roll group,
The surface is coated with the anti-adhesion film prepared in Example 2 and fixed.
Specified. The size of the fixed anti-adhesion membrane is about 10 mm x
It is about 10mm and the four corners are sutures (5-0
The thread was lightly hung over the intestinal tract with suture and fixed. Sample group
Rats were re-operated after 2 weeks in both control and control groups
The abdomen was opened, and the state of adhesion was visually observed. Eye
The degree of visual adhesion is determined based on the criteria in Table 2 below.
Perform scoring to compare the sample and control groups.
Comparative evaluation. If it is judged that adhesion has been recognized, grade 3 or higher
Adopted above. [0056] [Table 2][0057] [Table 3] As is clear from Table 3, the sample group and the
As a result of comparative study of the control group, adhesion was found in the sample group.
No cases were observed, whereas the control group
All cases showed adhesion of grade 3 or higher. Also sample
In almost all cases in the group, the anti-adhesion membrane was
It remains and can move damaged surfaces without moving to other places.
It served as a quarantine. Furthermore, residual adhesion prevention
Carefully peel off the stop membrane and visually observe the damaged surface of the cecum,
It was apparent that the damaged surface had begun to regenerate. [0059] The adhesion preventing film of the present invention can be sutured.
Therefore, it can be fixed directly to the defect or injury site in the living body
This allows the body to be seen in the conventional anti-adhesion membrane.
Healing without moving, dropping, or deviating from the target site in
Good adhesion by reliably isolating the site of attachment from defects and injuries
It is possible to exhibit the effect of prevention, further preventing adhesion
After the necessary period of time has passed, all will be decomposed and absorbed in the body
It has the feature of.

Claims (1)

(57)【特許請求の範囲】 【請求項1】 可溶化コラーゲンの溶液を連続的に湿式
紡糸し、この長いままの糸を一定方向のみに配列しない
ように交差状態にして配列し、乾燥して得られるコラー
ゲン繊維からなる不織布層の表面に、ゼラチンまたはヒ
アルロン酸を含む被覆層を有することを特徴とする縫合
可能な癒着防止膜。
(57) [Claims 1] A solution of solubilized collagen is continuously wet-spun, and the long fibers are arranged in a crossed state so as not to be arranged only in a certain direction, and dried. A non-woven fabric layer comprising collagen fibers obtained by the above method, having a coating layer containing gelatin or hyaluronic acid on the surface thereof.
JP08547799A 1999-01-21 1999-03-29 Suture-resistant adhesion prevention membrane Expired - Fee Related JP3463596B2 (en)

Priority Applications (5)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP08547799A JP3463596B2 (en) 1999-03-29 1999-03-29 Suture-resistant adhesion prevention membrane
EP20000101203 EP1022031B1 (en) 1999-01-21 2000-01-21 Suturable adhesion-preventing membrane
DE2000618814 DE60018814T2 (en) 1999-01-21 2000-01-21 Sewable membrane for adhesion prevention
US09/489,473 US6977231B1 (en) 1999-01-21 2000-01-21 Suturable adhesion-preventing membrane
US11/255,922 US20060041320A1 (en) 1999-01-21 2005-10-24 Suturable adhesion-preventing membrane

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP08547799A JP3463596B2 (en) 1999-03-29 1999-03-29 Suture-resistant adhesion prevention membrane

Publications (2)

Publication Number Publication Date
JP2000271207A JP2000271207A (en) 2000-10-03
JP3463596B2 true JP3463596B2 (en) 2003-11-05

Family

ID=13859997

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP08547799A Expired - Fee Related JP3463596B2 (en) 1999-01-21 1999-03-29 Suture-resistant adhesion prevention membrane

Country Status (1)

Country Link
JP (1) JP3463596B2 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP3345633A4 (en) * 2015-09-03 2019-04-17 Jinwoo Bio Co., Ltd. Method for preparing high-functional suture yarn coated with hyaluronate and high-functional suture yarn prepared therefrom

Families Citing this family (24)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US7615373B2 (en) 1999-02-25 2009-11-10 Virginia Commonwealth University Intellectual Property Foundation Electroprocessed collagen and tissue engineering
AU2001288692A1 (en) 2000-09-01 2002-03-13 Virginia Commonwealth University Intellectual Property Foundation Electroprocessed fibrin-based matrices and tissues
EP1982735A1 (en) * 2000-11-17 2008-10-22 Virginia Commonwealth University Intellectual Property Foundation Electroprocessed collagen
JP2003193328A (en) * 2001-12-19 2003-07-09 Nipro Corp Method of production for collagen monofilament
JP4595279B2 (en) * 2001-12-13 2010-12-08 ニプロ株式会社 Anti-adhesion membrane
JP4581318B2 (en) * 2002-08-09 2010-11-17 ニプロ株式会社 Biodegradable cylindrical body and biological tissue or organ regeneration device using the same
JP4411834B2 (en) * 2002-10-31 2010-02-10 ニプロ株式会社 Biodegradable substrate, tissue regeneration prosthesis, and cultured tissue
JP4554916B2 (en) * 2002-12-16 2010-09-29 グンゼ株式会社 Medical film
US20080241203A1 (en) 2004-03-31 2008-10-02 Nipro Corporation Antiadhesive Kit, Process for Producing the Same and Method of Adhesion Prevention
JP4356654B2 (en) * 2005-06-02 2009-11-04 ニプロ株式会社 Method for producing collagen single yarn
US20100015226A1 (en) * 2005-06-21 2010-01-21 Antoine Turzi Bioresorbable hydrogel
JP5092210B2 (en) * 2005-07-07 2012-12-05 ニプロ株式会社 Collagen base material
JP5040091B2 (en) * 2005-07-07 2012-10-03 ニプロ株式会社 Collagen base material, method for producing the same, and method for using the same
KR100785378B1 (en) * 2005-09-05 2007-12-14 주식회사 바이오레인 Multi-layered antiadhesion barrier
DE102005054940A1 (en) * 2005-11-17 2007-05-24 Gelita Ag Composite material, in particular for medical use, and method for its production
AU2009288118B2 (en) 2008-09-02 2014-12-11 Allergan, Inc. Threads of hyaluronic acid and/or derivatives thereof, methods of making thereof and uses thereof
JP2010279574A (en) * 2009-06-05 2010-12-16 Nipro Corp Adhesion preventing film
JP5578874B2 (en) * 2010-02-10 2014-08-27 グンゼ株式会社 Bioabsorbable self-adhesive anti-adhesion material
US9095558B2 (en) 2010-10-08 2015-08-04 Board Of Regents, The University Of Texas System Anti-adhesive barrier membrane using alginate and hyaluronic acid for biomedical applications
WO2012114707A1 (en) 2011-02-21 2012-08-30 株式会社アトリー Collagen material and method for producing collagen material
JP6480026B2 (en) * 2015-06-29 2019-03-06 モダン メドウ,インコーポレイテッド Fabric and method for producing fabric from cultured cells
SG11202003244VA (en) * 2017-10-20 2020-05-28 Otsuka Pharma Factory Inc Adhesion prevention material
KR101876196B1 (en) * 2017-11-03 2018-07-09 세원셀론텍(주) Medical materials produced using collagen and method for manufacturing the same
KR102245629B1 (en) * 2019-04-10 2021-04-30 주식회사 제네웰 hyaluronic acid-based melting film, METHOD FOR PREPARING THE SAME and release paper FOR THE SAME

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP3345633A4 (en) * 2015-09-03 2019-04-17 Jinwoo Bio Co., Ltd. Method for preparing high-functional suture yarn coated with hyaluronate and high-functional suture yarn prepared therefrom
US10695459B2 (en) 2015-09-03 2020-06-30 Jinwoo Bio Co., Ltd. Method for preparing high-functional suture yarn coated with hyaluronate and high-functional suture yarn prepared therefrom
US11617813B2 (en) 2015-09-03 2023-04-04 Jinwoo Bio Co., Ltd. Method for preparing high-functional suture yarn coated with hyaluronate and high-functional suture yarn prepared therefrom

Also Published As

Publication number Publication date
JP2000271207A (en) 2000-10-03

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP3463596B2 (en) Suture-resistant adhesion prevention membrane
EP1022031B1 (en) Suturable adhesion-preventing membrane
EP1319415B1 (en) Adhesion preventive membrane, method of producing a collagen single strand, collagen nonwoven fabric and method and apparatus for producing the same
US7084082B1 (en) Collagen material and its production process
JP3476631B2 (en) Medical material composed of human-derived natural collagen membrane
US6015844A (en) Composite surgical material
US6001895A (en) Composite surgical material
US5789465A (en) Composite surgical material
JP3536295B2 (en) Sutureable tissue regeneration induced adhesion prevention membrane
CA2272905A1 (en) Collagen material and its production process
US20160121031A1 (en) Antiadhesive Kit and Method of Adhesion Prevention
AU2009259835A1 (en) Composite extracellular matrix materials and medical products formed therefrom
JP3726280B2 (en) Medical collagen membrane
US9796769B2 (en) Methods of making bioactive collagen medical scaffolds such as for wound care dressings, hernia repair prosthetics, and surgical incision closure members
JP4968976B2 (en) Collagen material and production method thereof
EP0636377B1 (en) Use of a composite surgical material
JP4168740B2 (en) Collagen artificial blood vessel
US20090054995A1 (en) Planar implant
JP4345296B2 (en) Anti-adhesion membrane
US10729548B2 (en) Bioactive soft tissue implant and methods of manufacture and use thereof
JP4595279B2 (en) Anti-adhesion membrane
JP2010029684A (en) Collagen material and process for producing the same

Legal Events

Date Code Title Description
R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250

FPAY Renewal fee payment (event date is renewal date of database)

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20090822

Year of fee payment: 6

FPAY Renewal fee payment (event date is renewal date of database)

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20120822

Year of fee payment: 9

FPAY Renewal fee payment (event date is renewal date of database)

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20150822

Year of fee payment: 12

R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250

LAPS Cancellation because of no payment of annual fees