JP2022516123A - バイオロジカルスキャホールド及びその製造方法 - Google Patents

Abstract

本発明のバイオロジカルスキャホールドは、本体と、生物学的物質層と、任意で組織接着剤層を備える。本体は、少なくとも非再構成コラーゲンマトリックスを有する。生物学的物質層は、少なくとも本体の表面上にコーティングされ、組織接着剤層は、少なくとも本体の別の表面に配置される。バイオロジカルスキャホールドが組織接着剤層を通じて組織に接着されると、複数の細胞が組織から接着層又は生物学的物質層のいずれかに移動して、組織修復／再生が行われる。【選択図】図１

Description

本発明は、非再構成コラーゲンマトリックスと生物学的物質、任意で組織接着剤層で構成された、バイオロジカルスキャホールド及びその製造方法を提供する。より具体的には、このような非再構成コラーゲンマトリックス及びこのようなバイオロジカルスキャホールドは、創傷の治癒を促進するための被覆材として有用である。

組織工学とは、合成物質又は生物活性物質を用いるインビトロ培養又は建造技術を通じて、臓器及び組織を再構成又は修復することを指す。組織工学は、生物学、材料科学、及び工学などの複数の分野を含み、骨、軟骨、皮膚、腎臓、肝臓、消化管、角膜、筋、及び***などの組織を再構築することができている。「再生医療」としても知られている組織工学の基本的な手法は、以下のステップで構成される。最初に、人体から細胞を採取し、その細胞を十分な数に達するまでインビトロで培養する。次いで、その細胞を人工スキャフォールドに配置して増殖させる。時には、細胞分化を促進するためにいくつかの化学物質又は生物学的因子を添加する必要がある場合もある。最後に、人工組織を患者に入れる。したがって、組織再生の３つの要素は、細胞、バイオロジカルスキャホールド、及び成長因子である。

その中で、人体の最も基本的な構造及び機能を構成する単位は細胞である。細胞間には、細胞自体によって形成される細胞外マトリックスが存在する。これは、タンパク質細線維／束（例えば、コラーゲン）、結晶性無機ミネラルなどの構造成分を含む物質である。

組織は、同様の形態及び機能をもつ多くの細胞からなり、細胞外マトリックスを通じて互いに結合する。その中で、それらは、異なる細胞型に従って、例えば、上皮組織、結合組織、筋肉組織、及び神経組織などの異なる組織に分けられる。その中で、結合組織は、多数の細胞外マトリックスと、その中に散在する細胞で構成される。細胞外マトリックスは、マトリックス、細線維、組織液などを含有する。コラーゲンは、動物の結合組織で最も重要な構造タンパク質であり、細胞外マトリックスで最も重要な成分である。動物の結合組織には、６０～７０％の水に加えて、２０～３０％のコラーゲンが含まれている。したがって、コラーゲンは、動物に広く存在するタンパク質であり、結合組織は人体に広く分布し、ほぼすべての臓器に見られる。

コラーゲンは、主に不溶性細線維の形態で存在し、ヒト組織のタンパク質の約３３％を占めている。言い換えれば、コラーゲンは、人体のタンパク質の３分の１を占め、結合組織の非常に重要な構造タンパク質である。これは、様々な組織を保護及び連結して人体の構造を支える「マットレス」及び「セメント」の役割を果たす。したがって、コラーゲンは、バイオプロテーゼの材料としてよく用いられる。

コラーゲンの最も基本的な単位はトロポコラーゲンであり、これは３つのポリペプチド鎖で構成される分子である。３つのポリペプチド鎖は、鎖間水素結合によって平行に緊密に結合されて安定した三重らせん構造を形成する。三重らせん鎖のコラーゲン単位はトロポコラーゲンと呼ばれ、直径約１．５ｎｍ、長さ約２８０ｎｍである。生理学的条件では、複数のトロポコラーゲン分子が自己凝集してコラーゲンマイクロフィブリル構造となり、各分子は約６７ｎｍの距離だけずれている。次いで、マイクロフィブリルは、様々な直径の、普通は約５０ｎｍの細線維に凝集することがある。体内では、細線維は、積み重なって異なる四次構造となり、表皮細胞の下のマトリックスなどの網状細線維を形成し得る。これらの細線維はさらに、一方向に規則的に配置されたコラーゲン細線維を含む靱帯及び腱のような線維に凝集し得る。

これまでに発見された動物性コラーゲンは、少なくとも２８種類に分類することができる。主にＩＩ型コラーゲンである硝子軟骨を除いて、ほとんどの結合組織は主にＩ型コラーゲンを含有し、総コラーゲン含有量の約９０％を占め、最も広く用いられているコラーゲン生体材料でもある。その主要な構造タンパク質は、結合組織に、張力、引張強さ、及び粘弾性などの、結合組織に必要な支持、保護、及び様々な機械的特性をもたらす。生化学特性の観点から、これは凝固カスケードを促進し、凝血塊の形成を触媒することができる。コラーゲンの機能としては、分子透過性の制御、創傷治癒と組織修復の促進、及び細胞と組織の生理的機能の調節が挙げられる。

中国特許第４７６６４２号での多孔質コラーゲンマトリックスを調製する方法などの従来のコラーゲンマトリックスを調製する方法は、同様の生理学的条件で３０～４５℃でコラーゲンマトリックスを再構成することである。多孔質コラーゲンマトリックスは、このようなマトリックスを凍結及び凍結乾燥することによって得ることができる。図３は、従来の多孔質コラーゲンマトリックスを１００倍に拡大した電子顕微鏡写真を示す。その外観は、緩い不規則なフレーク状の外観を呈し、適切な細胞の移動及び増殖を最適化するのに必要とされる、より良好な張力及び抗細胞収縮性を提供しない構造を有する。さらに、コラーゲンの表面特性により、細胞の浸入にも悪影響を及ぼす。

米国特許第５，９９７，８９５号「Ｄｕｒａｌ／ｍｅｎｉｎｇｅａｌ ｒｅｐａｉｒ ｐｒｏｄｕｃｔ ｕｓｉｎｇ ｃｏｌｌａｇｅｎ ｍａｔｒｉｘ」のような別の従来技術は、髄膜を修復及び成長促進する方法を提供する。病原性ウィルス残留物を持たない、検査済みの生物適合性のコラーゲン源を用いることができる。コラーゲンマトリックスに架橋反応を使用し、細孔径１０～５００μｍの多孔質コラーゲン構造を形成することで、損傷した髄膜を修復し、髄膜の成長を促進することができる。しかしながら、コラーゲンはブタ皮膚などの動物皮膚の皮層から採取されるため、ブタ皮膚の処理中に毛包が完全に除去されないと、その後のコラーゲンマトリックスの調製の全体構造が崩れることになる。また、調製されたコラーゲンの純度に影響することになり、臨床使用で細菌感染及び免疫反応を引き起こす又は免疫拒絶反応を引き起こす可能性がある。

「Ｐｒｅｐａｒａｔｉｏｎ ｏｆ ｈｉｇｈ ｐｕｒｉｔｙ ｃｏｌｌａｇｅｎ」という名称の台湾特許第０９８１２５２１７号は、２０ｍｍ^２～２ｍ^２の表面積を有する結合組織を用意することと、ｐＨ値が１～６の、実質的に塩を含有しない第１の酸溶液を使用して、結合組織の体積を少なくとも５０％膨張させ、膨潤した結合組織を形成することと、膨潤した結合組織を洗浄して非コラーゲン性物質を除去し、コラーゲンマトリックスを形成することと、抽出溶液を使用してコラーゲンマトリックスからコラーゲンを抽出し、コラーゲン含有溶液を作製することを含む、コラーゲンの調製方法を提供する。前述の技術では、溶液がコラーゲンであり、従来の方法を通じて形成された多孔質コラーゲンマトリックスは、適切な細胞の浸潤及び増殖を最適化するために必要とされる、より良好な張力及び抗細胞収縮性を提供しない。

「Ａｃｅｌｌｕｌａｒ ｄｅｒｍａｌ ｍａｔｒｉｘ ａｎｄ ｍｅｔｈｏｄ ｏｆ ｕｓｅ ｔｈｅｒｅｏｆ ｆｏｒ ｇｒａｆｔｉｎｇ」という名称の別の米国特許公開番号ＵＳ８０６７１４９Ｂ２は、毛包を除去し、界面活性剤ＳＤＳで抽出することを含む、非細胞組織マトリックスを抽出する方法を提供する。しかしながら、これは、本発明の高純度多孔質コラーゲンマトリックスとは異なる、非細胞組織マトリックスを抽出するものである。

バイオロジカルスキャホールドの現在の一般的な状況は以下の通りである。

現在、市場に出回っているバイオロジカルスキャホールドのほとんどは、再構成コラーゲンマトリックスで作製されており、その関連製品が多くの先行特許で開示されている。例えば、米国特許第４，１９３，８１３号では、コラーゲンを最初に酢酸に溶解し、グルタルアルデヒドで架橋し、低温で長時間（例えば、２０時間）凍結させる。解凍後に、水が機械的に除去されることでスポンジ状のマトリックスが形成され、この方法で得られるマトリックスの細孔径は約８０～１４００μｍである。米国特許第４，４１２，９４７号は、高純度不溶性コラーゲン粒子を酢酸溶液に懸濁させ、約０．３～０．４℃／分の冷却速度で－６５℃に凍結し、凍結乾燥して、多孔質シート基質を形成する方法を教示している。米国特許第４，５２２，７５３号は、コラーゲンとコンドロイチン硫酸を混合してコポリマーにし、グルタルアルデヒドで架橋し、凍結乾燥して、人工皮膚基質として用いることができる細孔径約２０～１８０μｍの多孔質マトリックスを得ることを教示している。米国特許第４，９７０，２９８号は、酸可溶性コラーゲン溶液、又は酸可溶性コラーゲン、ヒアルロン酸、及びフィブロネクチンなどの溶液を含む混合溶液を、カルボジイミド及び脱水熱架橋法で架橋できることを開示する。様々な温度で凍結した後に、凍結乾燥を用いて多孔質マトリックスを作製する。凍結温度は－３０～－５０℃であり、得られるマトリックスの細孔径は約５０～２５０μｍであり、ヒアルロン酸又はフィブロネクチンを含有するコラーゲンマトリックスの細孔径は１００～１５０μｍである。上記特許で開示されているコラーゲンマトリックスの調製方法は、主に高温で又は化学架橋剤で架橋した酸性又はアルカリ性コラーゲンを使用し、凍結乾燥して細孔を形成させることで多孔質マトリックスを得るものである。これらの方法で調製されたマトリックスは、細孔の均一性が低く、細孔径の制御が難しい。さらに、使用される化学架橋剤のほとんどに毒性がある。再構成コラーゲンマイクロフィブリル又は細線維は、マトリックスに、限定された支持、保護、並びに張力、引張強さ、及び粘弾性などの様々な機械的特性を与えるため、臨床応用にはあまり理想的ではない。

非再構成コラーゲンマトリックスには臨床応用のための高い工業的価値があり、非再構成コラーゲンマトリックスの製造プロセスは、本発明者が以前に出願した「Ｍｅｔｈｏｄ ｆｏｒ ｐｒｅｐａｒｉｎｇ ｐｏｒｏｕｓ ｃｏｌｌａｇｅｎ ｍａｔｒｉｃｅｓ」という名称の米国特許第８，１９８，４０８号で開示されている。

従来、「Ｐｒｅｐａｒａｔｉｏｎ ｏｆ ａ ｐｏｒｏｕｓ ｃｏｌｌａｇｅｎ ｍａｔｒｉｘ」という名称の中国特許第１５０７４６号などの従来技術で用いられていた方法では、最初にコラーゲンを３０～４５℃の中性溶液に一定時間入れてコラーゲンマイクロフィブリルを再組織化させ、ゼラチン状のコラーゲンマトリックスを得る。ゼラチン状のコラーゲンマトリックスを適切な冷却速度で適切な低温に凍結し、次いで、減圧下で凍結乾燥して、多孔質コラーゲンマトリックスを得る。「Ｐｒｏｃｅｓｓ ｆｏｒ ｐｒｅｐａｒｉｎｇ ｐｏｒｏｕｓ ｃｏｌｌａｇｅｎ ｍａｔｒｉｘ ｆｒｏｍ ｃｏｎｎｅｃｔｉｖｅ ｔｉｓｓｕｅ」という名称の中国特許第Ｉ２８４６６５号では、実質的にその場で処理される結合組織に、結合組織から不純物及び非コラーゲンを除去する洗浄ステップ後に多孔質処理ステップを行い、多孔質処理ステップは、多孔質特性をもつコラーゲンマトリックスを得ることである。このその場処理は、結合組織を細断する又は細かく切る従来の手順を省略し、このプロセスは、架橋剤の使用を必要としない。この方法は、２つ又は３つの処理ステップを省略することにより、コラーゲンマトリックスを調製するのにより便利であるが、多孔質構造とその支圧応力及び張力については説明していない。

一般に、人体の表面に創傷がある場合、外部の細菌による感染を防ぐために、ガーゼ、包帯、パッチ、及び医療用テープなどを使用して創傷を覆う及び包む。しかしながら、上記の外部被覆材は、外部の細菌を抑制することしかできず、創傷自体の治癒を直接助けることはない。

要約すれば、創傷が外部の細菌に感染するのを防ぎ、高純度多孔質コラーゲンを得るという課題を解決するために、本発明は、創傷被覆材のための非再構成コラーゲンマトリックスを備えるバイオロジカルスキャホールドを提供する。

本発明は、少なくとも１つの非再構成コラーゲンマトリックスと、非再構成コラーゲンマトリックスの少なくとも１つの表面又は外面と内面の両方を均一に覆う少なくとも１つの生物学的物質とを備えるバイオロジカルスキャホールドを提供する。また、従来のコラーゲンマトリックスよりも高い強度を有する、上記の非再構成コラーゲンマトリックス及びバイオロジカルスキャホールドを調製する方法も本発明で開示される。さらに、本発明によって提供されるバイオロジカルスキャホールドは、生物学的物質層で均一にコーティングすることができるので、非再構成コラーゲンマトリックスへの細胞の浸潤を容易にすることができる。加えて、この非再構成コラーゲンマトリックス中の毛包組織は、真皮コラーゲンの主構造を破壊することなく破壊することができ、これにより、従来技術で作製されたマトリックスよりも高い強度を有する非再構成コラーゲンマトリックスが得られる。また、毛包によって引き起こされる免疫応答を低下させ、細胞の成長を助けるので、このバイオロジカルスキャホールドは、外科手術、ヒト臓器及び組織の修復、再生医療、皮膚移植術、又は美容医療でのさらなる使用により適している。また、外科用修復メッシュファブリック、歯科用修復メッシュファブリック、ヒト皮膚代替物、人工髄膜代替物、整形外科用修復代替物、又は創傷被覆材代替物として用いることができる。

本発明によって提供されるバイオロジカルスキャホールドは、少なくとも非再構成コラーゲンマトリックスと、少なくとも１つの生物学的物質を含む。非再構成コラーゲンマトリックスシステムは、複数の束状コラーゲン細線維と、束状コラーゲン細線維によって形成された複数の細孔を有する。生物学的物質は、本体の少なくとも１つの外面及び／又は束状コラーゲン細線維の外面上にコーティングされる。複数の細孔が束状コラーゲン細線維によって形成される、すなわち、コラーゲン細線維が細孔の内壁を形成するので、コラーゲン細線維の表面をコーティングすることは、細孔の内壁をコーティングすることと同等であり得る。

非再構成コラーゲンマトリックスを調製する方法は、動物皮膚組織から皮層シートを得ることと、皮層シートを高イオン強度の塩溶液に浸漬し、次いで塩溶液にタンパク質分解酵素を添加することで脱毛した皮層シートが生成される、脱毛ステップを行うことと、脱毛した皮層シートが膨潤した皮層シート層を形成するのに十分な時間にわたって、脱毛した皮層シートを第１の酸性溶液に浸漬することで、非再構成コラーゲンマトリックスが形成される、膨潤ステップを行うこととを含むことができ、非再構成コラーゲンマトリックスは、交絡した重なり合う複数の束状コラーゲン細線維と、束状のコラーゲン細線維によって形成された複数の細孔を有する。

任意で、非再構成コラーゲンマトリックスを調製する方法は、消毒ステップ、脱脂ステップ、脱抗原ステップ、及び／又は強化ステップをさらに含むことができる。

バイオロジカルスキャホールドを調製する方法は、本明細書に記載の非再構成コラーゲンマトリックスを用意することと、非再構成コラーゲンマトリックスを減圧環境下で生物学的物質を含有する溶液と接触させることで生物学的物質を非再構成コラーゲンマトリックスの第１の外面及び複数の細孔の内部にコーティングすることを含むことができる。

結論として、本発明の調製方法は、任意のステップを行う前又は後に消毒処理ステップをさらに含むことができ、シート又は皮層シートは消毒溶液で洗浄される。最も好ましくは、消毒溶液は過酢酸溶液である。

本発明の一実施形態において、本発明によって提供される調製方法は、以下のステップをさらに含む。最初に、生物学的物質でコーティングされた非再構成コラーゲンマトリックスを取り出す。次に、細孔に細胞培養培地を注入し、次いで、細胞を含有する溶液を注入することにより、細胞が細孔に入り、バイオロジカルスキャホールドに付着する。好ましくは、細胞は、幹細胞、衛星細胞、前駆細胞、又は組織細胞とすることができる。

本発明に係る非再構成コラーゲンマトリックスを調製する方法の一実施形態において、動物皮膚組織は、豚皮組織、牛皮組織、又は羊皮組織である。

本発明に係る非再構成コラーゲンマトリックスを調製する方法の一実施形態において、高イオン強度の塩溶液は、陰イオンと陽イオンがイオン結合により結合されている塩溶液である。好ましくは、高イオン強度の塩溶液のイオン強度は０．１５Ｎを超える。最も好ましくは、高イオン強度の塩溶液のイオン強度は０．５Ｎから１０Ｎの間である。最も好ましくは、高イオン強度の塩溶液は、塩化ナトリウム、硫酸アンモニウム、及び上記の化合物の混合物を含有する溶液である。この高い塩の条件は、非再構成コラーゲンマトリックスの構造を安定化し、それを膨潤させず、毛包に押し出されるので、酵素が反応のために毛包にスムーズに入ることができる。

本発明に係る非再構成コラーゲンマトリックスを調製する方法の一実施形態において、タンパク質分解酵素は、高イオン強度の塩溶液で作用することができる。好ましくは、タンパク質分解酵素は、セリンプロテアーゼ、トレオニンプロテアーゼ、システインプロテアーゼ、アスパラギン酸プロテアーゼ、グルタミン酸プロテアーゼ、メタロプロテアーゼ、及び上記の酵素の組み合わせからなる群から選択される。好ましくは、システイン酵素は、パパイヤ酵素（例えば、パパイン）、パイナップル酵素（例えば、ブロメライン）、及び上記の酵素の混合物からなる群から選択される。最も好ましくは、メタロプロテアーゼは、ディスパーゼである。

本発明に係る非再構成コラーゲンマトリックスを調製する方法の一実施形態において、脱毛処理ステップの前又は後に脱脂ステップがさらに含まれる。脱脂ステップは、鹸化処理、有機溶媒処理、又はこれらの組み合わせである。鹸化ステップでは、アルカリ性物質を使用して皮層シートの表面に接触させる。好ましくは、アルカリ性物質は、粒度が細かい強アルカリ性粒子である。最も好ましくは、強塩基性粒子は水酸化ナトリウム粒子である。有機溶媒処理は、アルコール処理、ヘキサン処理、又はクロロホルム処理である。

本発明に係る非再構成コラーゲンマトリックスを調製する方法の一実施形態において、脱毛処理ステップ又はその後の任意のステップは、振とう又は攪拌ステップを行うことをさらに含む。好ましくは、振とう又は攪拌ステップは、超音波振動処理である。

本発明に係る非再構成コラーゲンマトリックスを調製する方法の一実施形態において、脱毛処理ステップ又はその後の任意のステップは熱処理を行うことをさらに含む。熱処理は、２５℃～４０℃に加熱するのが最適である。

本発明に係る非再構成コラーゲンマトリックスを調製する方法の一実施形態において、脱毛処理ステップを行った後の任意のステップは、シート又は皮層シートを洗浄溶液に浸漬する又は消毒ガスに通す、洗浄ステップをさらに含む。好ましくは、洗浄溶液は、リン酸塩溶液又は水溶液である。好ましくは、消毒ガスはオゾンである。

本発明に係る非再構成コラーゲンマトリックスを調製する方法の一実施形態において、第１の酸性溶液は弱酸溶液である。

本発明に係る非再構成コラーゲンマトリックスを調製する方法の一実施形態において、膨潤処理ステップの後に、脱抗原処理ステップをさらに含む。脱抗原処理ステップは、シート又は皮層シートを第２の酸性溶液に浸漬することである。第２の酸性溶液はペプシンを含有する。最も好ましくは、第２の酸性溶液は弱酸性溶液である。

本発明に係る非再構成コラーゲンマトリックスを調製する方法の一実施形態において、膨潤処理ステップの後に、強化処理ステップがさらに含まれる。シート又は皮層シートは、添加剤に浸漬される。好ましくは、添加剤は架橋剤溶液である。

本発明の一実施形態において、架橋剤は、トランスグルタミナーゼであるか又は官能基を通じて作用し、架橋剤の１つの官能基は、アミン、スルフヒドリル、カルボニル、グリコール、ヒドロキシル、カルボキシル、アジド、イミドエステル、エポキシド、アルデヒド、ハロアセチル、ピリジルジスルフィド、ピリジルジチオール、ヒドラジド、光架橋剤、カルボジイミド、ジアジリン、アジリジン、アクリロイル、アリレート、チオール、ゲニピン、リボフラビン、フラボノイド及びその誘導体、ヒドロキシメチルホスフィン、イソシアネート、マレイミド、６－マレイミドヘキサン酸活性エステル、スベリン酸ジサクシンイミジル、スベリン酸ビス（スルホスクシンイミジル）、Ｎ－ヒドロキシ－スクシンイミドエステル（ＮＨＳ－エステル）、スルホスクシンイミジル－４－（Ｎ－マレイミドメチル）シクロヘキサン－１－カルボキシレート、ペンタフルオロフェニルエステル（ＰＦＰ－エステル）、エチレングリコールジグリシジルエーテル、グルタルアルデヒド、２，３－ジブロモプロピオニルＮ－ヒドロキシスクシンイミドエステル、スルホ－Ｎ－ヒドロキシスクシンイミドエステル、クロラムブシル－Ｎ－ヒドロキシスクシンイミドエステル、１－エチル－３－（３－ジメチルアミノプロピル）カルボジイミド、ソラレン、ビニルスルホン、及びこれらの組み合わせからなる群から選択される。

本発明の一実施形態において、本体の複数の細孔の壁は、束状コラーゲン細線維が交絡した重なり合った構造を有する。

本発明の一実施形態において、バイオロジカルスキャホールドは、少なくとも、非再構成コラーゲンマトリックスを含む本体と、少なくとも本体の第１の表面上にコーティングされた生物学的物質と、第１の表面とは反対の又は第１の表面に隣接する本体の別の表面上の又は第１の表面以外の２つ以上の表面上の組織接着剤層を含み、組織接着剤層は組織接着剤を含む。バイオロジカルスキャホールドが組織接着剤層によって組織に接着されると、複数の細胞が組織接着剤層から生物学的物質層に移動し、組織の再構築が行われる。

本発明の一実施形態において、生物学的物質は、細胞接着材料、組織修復材料、細胞誘導材料、成長因子材料、抗菌材料、及び上記の物質の混合物からなる群から選択される。

好ましくは、細胞接着材料は、糖類材料、ペプチド、タンパク質、リン脂質、又はこれらの組み合わせであり得る。

好ましくは、糖類材料は、グリコサミノグリカン材料であり得る。

好ましくは、グリコサミノグリカン材料は、コンドロイチン、コンドロイチン硫酸、ヘパリン、ヘパラン硫酸、ヘパラン硫酸プロテオグリカン、ケラタン、ケラタン硫酸、デルマタン硫酸、カラギーナン、ヒアルロン酸、及びこれらの組み合わせからなる群から選択される。

好ましくは、組織修復材料は、生体材料、細胞外マトリックス、栄養素、及びこれらの組み合わせであり得る。

好ましくは、生体材料は、コラーゲン、ゼラチン、エラスチン、グリコサミノグリカン、キトサン、アルギン酸塩、ポリグルタミン酸（γ－ＰＧＡ）、ポリリジン、ポリ（乳酸－コ－グリコール酸）（ＰＬＧＡ）、シルクフィブロインなど、及びこれらの組み合わせからなる群から選択される。

好ましくは、細胞外マトリックスは、コラーゲン、ゼラチン、エラスチン、グリコサミノグリカン、プロテオグリカン、糖タンパク質、フィブロネクチン、ラミニン、アグリカン、メタロプロテアーゼなど、及びこれらの組み合わせからなる群から選択される。

好ましくは、栄養素は、ビタミン、ミネラル、タンパク質、脂質、炭水化物、アミノ酸、ペプチド、ヌクレオチド、デオキシヌクレオチド、薬用ハーブなど、及びこれらの組み合わせからなる群から選択される。

好ましくは、細胞誘導材料は、ビタミン、ミネラル、化学薬品、薬剤、薬用ハーブ、代謝物、中間代謝物、糖類、ペプチド、タンパク質、リン脂質、又はこれらの組み合わせなどの分子からなる群から選択される。

好ましくは、抗菌材料は、抗生物質、抗菌タンパク質、又は抗菌ペプチドである。

好ましくは、成長因子材料は、上皮成長因子（ＥＧＦ）、線維芽細胞成長因子（ＦＧＦ）、血管内皮細胞成長因子（ＶＥＧＦ）、結合組織成長因子（ＣＴＧＦ）、血小板由来成長因子（ＰＤＧＦ）、インスリン様成長因子（ＩＧＦ－Ｉ、ＩＧＦ－ＩＩ）、神経成長因子（ＮＧＦ）、肝細胞成長因子（ＨＧＦ）、コロニー刺激因子（ＣＳＦ）、幹細胞因子（ＳＣＦ）、表皮細胞成長因子（ＫＧＦ）、顆粒球コロニー刺激因子（ＧＣＳＦ）、マクロファージコロニー刺激因子（ＭＣＳＦ）、顆粒球マクロファージコロニー刺激因子（ＧＭＣＳＦ）、グリア細胞株由来神経栄養因子（ＧＤＮＦ）、毛様体神経栄養因子（ＣＮＦ）、内皮－単球活性化ポリペプチド、上皮好中球活性化ペプチド、エリスロポエチン、骨形成タンパク質（ＢＭＰ－１、ＢＭＰ－２、ＢＭＰ－３など）、脳由来神経栄養因子（ＢＤＮＦ）、ＢＲＡＫ、セロトニン、フォン・ヴィレブランド因子（ｖＷＦ）、トランスフォーミング成長因子（ＴＧＦ－α、ＴＧＦ－β）、インターロイキン（ＩＬ－１、ＩＬ－２、ＩＬ－３など）、腫瘍壊死因子（ＴＮＦ）、及びこれらの組み合わせからなる群から選択される。

本発明の一実施形態において、本発明によって提供されるバイオロジカルスキャホールドは、細孔内に細胞培養培地をさらに含む。

好ましくは、これは細胞をさらに含み、細胞は、バイオロジカルスキャホールドの細孔のいずれか１つの中に付着している。

好ましくは、細胞は、幹細胞、衛星細胞、前駆細胞、又は組織細胞とすることができる。

本発明の一実施形態において、減圧環境は、真空引き動作によって生成される。

本発明の一実施形態において、組織接着剤層は、トランスグルタミナーゼであるか又は少なくとも官能基を有する架橋剤と、１つのマトリックス成分と、非再構成コラーゲンマトリックス自体又は架橋剤で架橋される追加のマトリックス分子と、細胞毒性を低減するべく架橋剤の官能基又は架橋剤の残りの官能基と反応させるために用いられるクエンチ剤を含む。

好ましくは、マトリックス分子は、コラーゲン、ヒアルロン酸、ゼラチン、シルクフィブロイン、フィブロネクチン、エラスチン、テネイシン、ラミニン、ビトロネクチン、ヘパラン硫酸、コンドロイチン、コンドロイチン硫酸、ケラチン、ケラタン硫酸、デルマタン硫酸、カラギーナン、ヘパリン、キチン、キトサン、アルギン酸塩、アグリカン、アガロース、寒天、セルロース、メチルセルロース、カルボキシルメチルセルロース、グリコーゲン、フィブリン、フィブリノゲン、トロンビン、ポリグルタミン酸、ポリリジン、ポリアミノ酸、合成ポリマー（例えば、アクリレート、ポリ乳酸、ポリグリコール酸、ポリ乳酸－グリコール酸）、これらの誘導体、及びこれらの組み合わせからなる群から選択される。

好ましくは、クエンチ剤は、アミノ酸、オリゴペプチド、ポリペプチド、タンパク質、アミン、ジアミン、オリゴアミン、ポリアミン、カルボニル化合物、グリコール化合物、カルボキシル化合物、ジカルボキシレート、オリゴカルボキシレート、ポリカルボキシレート、スルフヒドリル化合物、オリゴスルフヒドリル化合物、ポリスルフヒドリル化合物、ヒドロキシル化合物、オリゴヒドロキシル化合物、ポリヒドロキシル化合物、糖類、オリゴ糖、多糖類、リボ核酸（ＲＮＡ）、デオキシリボ核酸（ＤＮＡ）、オリゴヌクレオチド、アジド、光架橋化合物、及び単官能基又はヘテロ二官能基からなる基、及びこれらの組み合わせからなる群から選択される。

好ましくは、組織は皮膚組織である。

本発明の一実施形態における非再構成バイオロジカルスキャホールドを示す略断面図である。 本発明の一実施形態における非再構成バイオロジカルスキャホールドの本体を示す略断面図である。 従来の再構成多孔質コラーゲンマトリックスを１００倍に拡大した電子顕微鏡画像を示す。 本発明の非再構成コラーゲンマトリックスの調製についてのフローチャートを示す。 本発明の非再構成コラーゲンマトリックスの調製についての別のフローチャートを示す。 図６Ａ～図６Ｃは、本発明の方法によって調製された非再構成コラーゲンマトリックスの電子顕微鏡画像を示す。 図７Ａ～図７Ｂは、本発明の一実施形態からのバイオロジカルスキャホールドの電子顕微鏡画像を示す。 バイオロジカルスキャホールド内のヒアルロン酸の良好な分布を示すアルシアンブルー染色を示す図である。 本発明の一実施形態からのバイオロジカルスキャホールドと従来技術からのバイオロジカルスキャホールドとの剪断応力試験の比較図である。 図９Ａ及び図９Ｂは、本発明の非再構成多孔質コラーゲンマトリックスと従来技術からの再構成多孔質コラーゲンマトリックスの貯蔵弾性率及び損失弾性率を示す図である。 本発明のバイオロジカルスキャホールドと、従来の方法によって調製された再構成多孔質コラーゲン－コンドロイチン硫酸マトリックスとの創傷の治癒を示す比較図である。 様々な治療の下での創傷の治癒を示すグラフである。 術後２８日目の創傷治癒状態の比較を示す顕微鏡画像の組である。（Ａ）正常な皮膚の対照、（Ｂ）ＰＣＨＭグループの治癒したマトリックス、（Ｃ）Ｉｎｔｅｇｒａグループの治癒したマトリックス。 本発明の一実施形態におけるバイオロジカルスキャホールドを調製する方法を示すフローチャートである。 図１３Ａ～図１３Ｂは、本発明の別の実施形態に係るバイオロジカルスキャホールドを示す略断面図及び部分拡大図である。 図１４Ａ～図１４Ｃは、本発明の一実施形態における程度の異なる生物学的物質コーティングを有するバイオロジカルスキャホールドの吸水能力の比較図である。 図１５Ａ～図１５Ｄは、本発明の一実施形態における異なる抗菌材料で覆われたバイオロジカルスキャホールドの抗菌作用を示す図である。

図１を参照すると、本発明は、本体１０と、生物学的物質層２０と、組織接着剤層３０とを含む非再構成材料バイオロジカルスキャホールド１を提供する。本体１０は、少なくとも１つの非再構成コラーゲンマトリックス１０ａを含む。生物学的物質層２０及び組織接着剤層３０は、それぞれ、本体の一方の表面及び本体の隣接する又は反対側の表面上にコーティングされる。前述のバイオロジカルスキャホールドが組織接着剤層によって組織２に接着されると、複数の細胞が生物学的物質によって化学的に誘引され、組織接着剤層から生物学的物質層に移動し、組織２の再構築が行われる。

本発明の一実施形態におけるバイオロジカルスキャホールドの本体１０の略断面図を示す図２を参照する。図に示すように、本体１０は、好ましくは非再構成コラーゲンマトリックス１０ａであり、このコラーゲンマトリックス１０ａは、複数の円柱状コラーゲン細線維で構成され、コラーゲン細線維によって構造化された複数の細孔１０ｂを含む。細孔１０ｂの内面に生物学的物質１０ｃがコーティングされている。

図４を参照すると、本発明の非再構成コラーゲンマトリックスを有するバイオロジカルスキャホールドから調製される創傷被覆材について、最初に、ステップＳ１００に示すように、１５℃未満の環境で動物組織、或いは豚皮組織、牛皮組織、又は羊皮組織などの動物皮膚組織を用意し、鋭利物で動物皮膚組織の皮下脂肪を除去し、組織を２８±１ｃｍ×７０±１ｃｍのサイズに切断する。次に、動物皮膚組織を脱毛し、そこに残っている油分及び水分を擦り落とし、各皮膚組織を各サイズ１３±１ｃｍ×３４±１ｃｍの４片に切断する。次いで、ブタ皮膚の皮層を機械で剥がして少なくとも１枚の皮層シートを得た後に、純水ですすぐ。最も好ましくは、皮層はブタ皮膚から採取される。

さらに、ステップＳ１０２に示すように、皮層シートを高イオン強度の塩溶液に浸漬し、タンパク質分解酵素を加えた後に、塩溶液を２５～４０℃に加熱することによって、脱毛処理ステップを行う。次いで、超音波振動処理を２時間行う。脱毛処理後の皮層シートを洗浄するための洗浄溶液としてリン酸緩衝溶液が用いられる。高イオン強度の塩溶液は、陰イオンと陽イオンがイオン結合している塩溶液である。高イオン強度の塩溶液のイオン強度は０．１５Ｎを超える。最も好ましくは、高イオン強度の塩溶液のイオン強度は０．５Ｎから１０Ｎの間である。最も好ましくは、高イオン強度の塩溶液は、塩化ナトリウム、硫酸アンモニウム、又は上記の化合物の混合物を含有する溶液である。

一実施形態において、高イオン強度の塩溶液は、塩化ナトリウムを含有するリン酸緩衝溶液である。この高い塩の条件は、非再構成コラーゲンマトリックスの構造を安定化し、組織を膨潤させず、毛包に押し出されるので、酵素が反応のために毛包にスムーズに入ることができる。

一実施形態において、タンパク質分解酵素は、高イオン強度の塩溶液で作用する。最も好ましくは、タンパク質分解酵素は、セリンプロテアーゼ、トレオニンプロテアーゼ、システインプロテアーゼ、アスパラギン酸プロテアーゼ、グルタミン酸プロテアーゼ、メタロプロテアーゼ、及び上記の酵素の組み合わせからなる群から選択される。最も好ましくは、システインプロテアーゼは、パパイヤ酵素、パイナップル酵素、及び上記の酵素の混合物からなる群から選択される。最も好ましくは、メタロプロテアーゼは、ディスパーゼである。

以下の表１を参照すると、皮層シートを、約５ｍＭ又は０．１６％（ｗ／ｗ）のＬ－システインを含有するリン酸緩衝溶液中のパパイン（パパイヤ酵素）に浸漬し、パパインの濃度が０．６ｍｇ／ｍＬを超えていたとき（グループＢ、Ｃ、及びＤ）、ブタの毛は完全に除去された。皮層シートを、リン酸緩衝溶液中のブロメライン（パイナップル酵素）に浸漬し、ブロメライン濃度が０．２ｍｇ／ｍＬ及び０．６ｍｇ／ｍＬのとき（グループＡ及びＢ）、まだ取れていないブタの毛があった。ブロメラインの濃度が１．２ｍｇ／ｍＬのとき、ブタの毛は完全に除去された。ブタの毛包は、０．２Ｕ／ｍＬを超えるディスパーゼでも完全に除去することができた。対照群（リン酸緩衝液のみ）のブタでは、すべてのブタの毛は取れていなかった。

図４を参照すると、ステップＳ１０４に示すように、脱毛処理後の皮層シートを第１の酸性溶液に浸漬し、第１の酸性溶液を超音波振動処理で３３～３７℃に加熱する、膨潤処理ステップを行う。超音波振動処理時間は２４時間連続しているため、皮層シートの体積が少なくとも５０パーセント増大する。好ましくは、第１の酸性溶液は、蟻酸、カルボン酸、シュウ酸、酢酸、クエン酸、乳酸、リンゴ酸、ホウ酸、リン酸、塩酸、及びこれらの混合物からなる群から選択された弱酸溶液である。最も好ましくは、第１の酸性溶液は酢酸溶液である。

ステップＳ１０５に示すように、皮層シートから非コラーゲン性材料を除去するために洗浄処理ステップを行い、精製されたコラーゲンマトリックスを得る。これに続いて、精製されたコラーゲンマトリックスを－２０℃及び－８０℃で凍結し、フリーズドライ又は凍結乾燥処理して、精製された非再構成多孔質コラーゲンマトリックスを得る。

本発明の非再構成コラーゲンマトリックスの調製方法の別の実施形態を示す図５を参照すると、ステップＳ１０１ａに示すように、任意のステップを行う前又は後にシート又は皮層シートを消毒溶液で洗浄する消毒処理を行う。最も好ましくは、消毒溶液は過酢酸溶液である。

ステップＳ１０２ａに示すように、本発明の調製方法は、脱毛処理ステップＳ１０２の前又は後に脱脂ステップをさらに含む。脱脂ステップは、鹸化処理、有機溶媒処理、又はこれらの組み合わせである。鹸化ステップは、シート又は皮層シートをアルカリ性物質と接触させることであり、一方の表面のみに脂がついている場合、一方の特定の表面と接触させることができる。最も好ましくは、アルカリ性物質は、強塩基性粒子の顆粒の形態である。最も好ましくは、強塩基性粒子は水酸化ナトリウム粒子である。有機溶媒処理は、アルコール処理、ヘキサン処理、又はクロロホルム処理である。それでもなお、マトリックス中のコラーゲンの変性を防ぐために最適な処理量及び処理時間が必要とされる。

ステップＳ１０４ａに示すように、本発明の調製方法は、膨潤処理ステップＳ１０４の後に、脱抗原処理ステップをさらに含む。最も好ましくは、脱抗原処理ステップは、シート又は皮層シートを、ペプシンを含有する第２の酸性溶液に浸漬することである。ペプシンを含有する第２の酸性溶液を３３℃～３７℃に加熱する。次いで、超音波振動処理を４時間行う。シート又は皮層シートに残っている溶液を純水で洗い流す。シート又は皮層シートを２５℃のリン酸二水素カリウム溶液で再び処理する。好ましくは、第２の酸性溶液は、蟻酸、カルボン酸、シュウ酸、酢酸、クエン酸、乳酸、リンゴ酸、ホウ酸、リン酸、塩酸、及びそれらの混合物からなる群から選択された弱酸溶液である。最も好ましくは、第２の酸性溶液は酢酸溶液である。

ステップＳ１０４ｂに示すように、本発明の調製方法は、膨潤処理ステップの後に、複数のシート又は皮層シートを積層し、添加剤、好ましくは架橋剤溶液に浸漬する、強化処理ステップをさらに含む。架橋剤溶液を３３℃～３７℃に加熱し、超音波振動処理を２４時間行って架橋反応を完了させる。シート又は皮層シートに残っている溶液を純水ですすぐ。最も好ましくは、架橋剤の１つの官能基は、アミン、スルフヒドリル、カルボニル、グリコール、ヒドロキシル、カルボキシル、アジド、イミドエステル、エポキシド、アルデヒド、ハロアセチル、ピリジルジスルフィド、ピリジルジチオール、ヒドラジド、光架橋剤、カルボジイミド、ジアジリン、アジリジン、アクリロイル、アリレート、チオール、ゲニピン、リボフラビン、フラボノイド及びその誘導体、ヒドロキシメチルホスフィン、イソシアネート、マレイミド、６－マレイミドヘキサン酸活性エステル、スベリン酸ジサクシンイミジル、スベリン酸ビス（スルホスクシンイミジル）、Ｎ－ヒドロキシ－スクシンイミドエステル（ＮＨＳ－エステル）、スルホスクシンイミジル－４－（Ｎ－マレイミドメチル）シクロヘキサン－１－カルボキシレート、ペンタフルオロフェニルエステル（ＰＦＰ－エステル）、エチレングリコールジグリシジルエーテル、グルタルアルデヒド、２，３－ジブロモプロピオニルＮ－ヒドロキシスクシンイミドエステル、スルホ－Ｎ－ヒドロキシスクシンイミドエステル、クロラムブシル－Ｎ－ヒドロキシスクシンイミドエステル、１－エチル－３－（３－ジメチルアミノプロピル）カルボジイミド、ソラレン、ビニルスルホン、及びこれらの組み合わせからなる群から選択される。

上記の方法に従って調製された非再構成コラーゲンマトリックスの外観を示す図６Ａ～図６Ｃを参照する。図６Ａは、本発明の一実施形態における非再構成コラーゲンマトリックスを１００倍に拡大した走査型電子顕微鏡画像である。図６Ｂは、本発明の一実施形態における非再構成コラーゲンマトリックスを４００倍に拡大した走査型電子顕微鏡画像である。図６Ｃは、本発明の一実施形態における非再構成コラーゲンマトリックスを１０，０００倍に拡大した走査型電子顕微鏡画像である。

従来技術によって調製された多孔質コラーゲンマトリックス（図３参照）と比較して、本発明によって調製された非再構成多孔質コラーゲンマトリックスは、絡み合った凝集した複数のコラーゲン細線維束で構成され、深さのある、溝壁を有する複数の細孔を有する。前述のコラーゲン細線維束は、プロコラーゲン分子で構成され、直径１００ｎｍ未満であるが、本発明はこれに限定されるものではない。細孔の外観はランダムな半径の開口部であり、細孔のサイズは、狭い範囲に制御される。したがって、本明細書に記載の方法によって調製されたコラーゲンマトリックスは、比較的均一な細孔を有する。

上記の方法に従って調製された非再構成コラーゲンマトリックスから作製されたバイオロジカルスキャホールドの外観を示す図７Ａ～図７Ｃを参照されたい。図７Ａは、本発明の一実施形態におけるバイオロジカルスキャホールドを１００倍に拡大した走査型電子顕微鏡画像である。図７Ｂは、本発明の一実施形態におけるバイオロジカルスキャホールドを４００倍に拡大した走査型電子顕微鏡画像である。図７Ｃは、本発明の一実施形態における、ＣＮＢｒによって事前に活性化され非再構成コラーゲンマトリックスに架橋されたヒアルロン酸を有するバイオロジカルスキャホールドの光学顕微鏡画像である。組織学サンプルの切片化後にスキャフォールド内に存在するヒアルロン酸誘導体を染色するためにアルシアンブルーを使用した。画像は、バイオロジカルスキャホールド内のヒアルロン酸誘導体の良好な分布を示す。

本発明の実施形態に係る非再構成多孔質コラーゲンマトリックス（ラインＢ）と、従来技術によって得られた従来の多孔質コラーゲンマトリックス（ラインＡ）との剪断応力試験を示す、図８を参照する。結果から、従来技術によって得られた多孔質コラーゲンマトリックスの剪断応力は、温度２０℃で６３．５６ｅ－０３ＭＰａであり、本発明の非再構成多孔質コラーゲンマトリックスの剪断応力は１８９．０７ＭＰａであったことが分かる。したがって、同じ試験条件下で、本発明の非再構成多孔質コラーゲンマトリックスの剪断強度は、従来技術の多孔質コラーゲンマトリックスよりも約３桁大きいことが実証された。毛包を初めに完全に除去することができるので、非再構成多孔質コラーゲンマトリックスは、従来の多孔質コラーゲンマトリックスよりも構造強度と張力が確かに優れている。要約すれば、本発明は、真皮層のコラーゲンの本来の架橋を破壊せずに毛包組織を破壊することができる、非再構成多孔質コラーゲンマトリックスを調製するためのプロセスを提供し、これにより、従来技術よりも高い構造強度を有する多孔質マトリックスが調製される。

貯蔵弾性率及び損失弾性率の変化を、レオメータで監視した振動ひずみの変化とともに示す、図９Ａ及び図９Ｂを参照する。貯蔵弾性率は、変形エネルギーを弾性的に貯蔵するマトリックスの能力の指標である。これは架橋の度合いに直接関係しており、架橋度が高いほど貯蔵弾性率が大きくなる。図９Ａは、本発明の非再構成多孔質コラーゲンマトリックスのデータであり、一方、図９Ｂは、従来の再構成多孔質コラーゲンマトリックスのデータを示す。微細構造は、材料内の分子又は粒子間に力が存在することを意味する。微細構造を破壊するには、それを保持しているよりも大きな力が必要とされる。加えられた力が、分子力又は粒子間力よりも小さいとき、Ｇ’はＧ”よりも大きくなる。材料にはエネルギーを蓄える能力があり、機械的な力が加えられる前に、或る程度、その最初の構成に戻ることができるはずである。材料は弾性固体として挙動するが、機械的エネルギーの一部が散逸するため、理想と同じものではない。図９Ａ及び図９Ｂでの結果は、非再構成多孔質コラーゲンマトリックスの貯蔵弾性率が、従来技術によって調製された再構成多孔質コラーゲンマトリックスの貯蔵弾性率よりも高いことを示す。非再構成多孔質コラーゲンマトリックスのほとんどの本来の架橋は保たれているが、従来の再構成多孔質コラーゲンマトリックスではほとんどの本来の架橋が失われる。

さらに、非再構成コラーゲンマトリックス１０ａ自体は親水性の材料ではないので、本体１０は、コラーゲン細線維の外面にコーティングされた親水性の生体材料１０ｃをさらに含み得る。すなわち、細胞が非再構成多孔質コラーゲンマトリックス１０ａに浸潤し、その後、その中で移動して接着／付着することを促進するために、これらの細孔１０ｂの内壁も親水性の生物学的物質１０ｃ（図２に示される）でコーティングされる。好ましくは、前述の生物学的物質は、成長因子、又はヒアルロン酸（ＨＡ）、コンドロイチン硫酸（ＣＳ）、又はヘパラン（Ｈｅｐ）などのグリコサミノグリカンであり得る。より好ましくは、親水性の生物学的物質１０ｃはヒアルロン酸であるが、本発明はこれに限定されるものではない。

図１を再び参照すると、本発明の好ましい実施形態において、本体１０の片面にコーティングされた成長因子材料層２０は、上皮成長因子（ＥＧＦ）、線維芽細胞成長因子（ＦＧＦ）、血管内皮細胞成長因子（ＶＥＧＦ）、結合組織成長因子（ＣＴＧＦ）、血小板由来成長因子（ＰＤＧＦ）、インスリン様成長因子（ＩＧＦ－Ｉ、ＩＧＦ－ＩＩ）、神経成長因子（ＮＧＦ）、肝細胞成長因子（ＨＧＦ）、コロニー刺激因子（ＣＳＦ）、幹細胞因子（ＳＣＦ）、表皮細胞成長因子（ＫＧＦ）、顆粒球コロニー刺激因子（ＧＣＳＦ）、マクロファージコロニー刺激因子（ＭＣＳＦ）、顆粒球マクロファージコロニー刺激因子（ＧＭＣＳＦ）、グリア細胞株由来神経栄養因子（ＧＤＮＦ）、毛様体神経栄養因子（ＣＮＦ）、内皮－単球活性化ポリペプチド、上皮好中球活性化ペプチド、エリスロポエチン、骨形成タンパク質（ＢＭＰ－１、ＢＭＰ－２、ＢＭＰ－３など）、脳由来神経栄養因子（ＢＤＮＦ）、ＢＲＡＫ、セロトニン、フォン・ヴィレブランド因子（ｖＷＦ）、トランスフォーミング成長因子（ＴＧＦ－α、ＴＧＦ－β）、インターロイキン（ＩＬ－１、ＩＬ－２、ＩＬ－３など）、腫瘍壊死因子（ＴＮＦ）、及びこれらの組み合わせからなる群から選択される。

加えて、臨床医学及び組織工学で用いられる組織接着剤は、その接着特性により、薬剤放出の制御、生物適合性材料の分解の調節、又は血管の接合の促進の効果を達成することができる。しかしながら、従来技術の組織接着剤は、グルタルアルデヒド（ＧＡ）、グリオキサール、ホルムアルデヒド、又はトリポリリン酸ナトリウム（ＴＰＰ）などの架橋剤で作製され、ゼラチン、キトサン、又はコラーゲンなどの担体材料で架橋されるため、架橋剤は細胞毒性があり、強い持続的な免疫応答を容易にもたらし、組織接着剤を細胞毒性にする。

したがって、本発明では、より良好な結合強度と低い細胞毒性を有する組織接着剤層３０が用いられ、これは、少なくとも１つの架橋剤と、少なくとも１つのマトリックス成分と、クエンチ剤を含む。架橋剤は、トランスグルタミナーゼであるか又は官能基を有し、マトリックス成分は、架橋剤との架橋に用いられる。クエンチ剤は、細胞毒性を低減するべく架橋剤の官能基と反応させるために用いられる。

好ましい実施形態において、前述の架橋剤は、トランスグルタミナーゼである、又はその官能基のうちの１つは、アミン、スルフヒドリル、カルボニル、グリコール、ヒドロキシル、カルボキシル、アジド、イミドエステル、エポキシド、アルデヒド、ハロアセチル、ピリジルジスルフィド、ピリジルジチオール、ヒドラジド、光架橋剤、カルボジイミド、ジアジリン、アジリジン、アクリロイル、アリレート、チオール、ゲニピン、リボフラビン、フラボノイド及びその誘導体、ヒドロキシメチルホスフィン、イソシアネート、マレイミド、６－マレイミドヘキサン酸活性エステル、スベリン酸ジサクシンイミジル、スベリン酸ビス（スルホスクシンイミジル）、Ｎ－ヒドロキシ－スクシンイミドエステル（ＮＨＳ－エステル）、スルホスクシンイミジル－４－（Ｎ－マレイミドメチル）シクロヘキサン－１－カルボキシレート、ペンタフルオロフェニルエステル（ＰＦＰ－エステル）、エチレングリコールジグリシジルエーテル、グルタルアルデヒド、２，３－ジブロモプロピオニルＮ－ヒドロキシスクシンイミドエステル、スルホ－Ｎ－ヒドロキシスクシンイミドエステル、クロラムブシル－Ｎ－ヒドロキシスクシンイミドエステル、１－エチル－３－（３－ジメチルアミノプロピル）カルボジイミド、ソラレン、ビニルスルホン、及びこれらの組み合わせを含有する反応性化合物からなる群から選択される。

好ましい実施形態において、マトリックス成分は、コラーゲン、ヒアルロン酸、ゼラチン、シルクフィブロイン、フィブロネクチン、エラスチン、テネイシン、ラミニン、ビトロネクチン、ヘパラン硫酸、コンドロイチン、コンドロイチン硫酸、ケラチン、ケラタン硫酸、デルマタン硫酸、カラギーナン、ヘパリン、キチン、キトサン、アルギン酸塩、アグリカン、アガロース、寒天、セルロース、メチルセルロース、カルボキシルメチルセルロース、グリコーゲン、フィブリン、フィブリノゲン、トロンビン、ポリグルタミン酸、ポリリジン、ポリアミノ酸、合成ポリマー（例えば、アクリレート、ポリ乳酸、ポリグリコール酸、ポリ乳酸－グリコール酸）、これらの誘導体、及びこれらの組み合わせからなる群から選択される。

より好ましくは、マトリックス成分は、任意の天然に産生されたコラーゲン又はその機能的変異体及び／又はヒアルロン酸から調製することができる。さらに、ヒアルロン酸、特に高分子量のヒアルロン酸（５ｋＤａを超える）は、血管新生を効果的に促進し、さらに創傷治癒を促進できることが示されている。例えば、ヒアルロン酸の分子量は、５０ｋＤａ～５，０００ｋＤａ、７０ｋＤａ～１，５００ｋＤａ、２００ｋＤａ～１，５００ｋＤａ、５００ｋＤａ～１，５００ｋＤａ、又は７００ｋＤａ～１，５００ｋＤａとすることができる。細胞がコラーゲン又はヒアルロン酸のマトリックス中で成長するとき、それらは良好な生存能力を有する。したがって、本発明で用いられる組織接着剤層３０のマトリックス成分中、ヒアルロン酸の濃度は０．００１ｍｇ／ｍＬ～１００ｍｇ／ｍＬであり、コラーゲンの濃度は０．００１ｍｇ／ｍＬ～１００ｍｇ／ｍＬである。好ましくは、コラーゲンの濃度は０．１ｍｇ／ｍＬ～１００ｍｇ／ｍＬであり、ヒアルロン酸の濃度は０．０１ｍｇ／ｍＬ～３５ｍｇ／ｍＬである。より好ましくは、コラーゲンの濃度は３ｍｇ／ｍＬ～７５ｍｇ／ｍＬ（６ｍｇ／ｍＬ又は９ｍｇ／ｍＬなど）であり、ヒアルロン酸の濃度は０．２ｍｇ／ｍＬ～２０ｍｇ／ｍＬである。

好ましい実施形態において、クエンチ剤は、アミノ酸、オリゴペプチド、ポリペプチド、タンパク質、アミン、ジアミン、オリゴアミン、ポリアミン、カルボニル化合物、グリコール化合物、カルボキシル化合物、ジカルボキシレート、オリゴカルボキシレート、ポリカルボキシレート、スルフヒドリル化合物、オリゴスルフヒドリル化合物、ポリスルフヒドリル化合物、ヒドロキシル化合物、オリゴヒドロキシル化合物、ポリヒドロキシル化合物、糖類、オリゴ糖、多糖類、リボ核酸（ＲＮＡ）、デオキシリボ核酸（ＤＮＡ）、オリゴヌクレオチド、アジド、光架橋化合物、単官能基又はヘテロ二官能基、及びこれらの組み合わせからなる群から選択される。より好ましくは、本発明で用いられるクエンチ剤としては、スペルミン、プロタミン、１－６ヘキサンジアミン、及び様々な分子量の異なるグループのポリリジンが挙げられる。ポリリジンの平均分子量は、それぞれ、３．４ｋＤａ、２０ｋＤａ、９９ｋＤａ、２１２ｋＤａ、及び２２５ｋＤａである。

図１０Ａは、Ｉｎｔｅｇｒａ（登録商標）人工皮膚又はＰＣＭＨを移植したモルモットの背部皮膚の全層創傷の治癒を示す比較図である。対照として機能するＩｎｔｅｇｒａ（登録商標）人工皮膚は、脱水熱架橋による従来の方法によって調製された再構成多孔質コラーゲン－コンドロイチン硫酸マトリックスである。ＰＣＨＭは、本発明のバイオロジカルスキャホールドであり、非再構成多孔質コラーゲンマトリックスと、マトリックスの外面及び内面にコーティングされたヒアルロン酸で構成される。ＰＣＨＭの安定した多孔質構造により、対照群よりも最大４倍の、皮膚細胞のより良好な浸潤が可能となる。したがって、ＰＣＨＭで満たされた創傷の治癒速度は、Ｉｎｔｅｇｒａグループよりもはるかに（約８０％）速いことが実証された。ＰＣＨＭグループの再生マトリックスの組織学で実証された治癒の質も、術後４か月で対照群よりもはるかに良好であった。

図１１を参照すると、術後２８日目に、正常な皮膚と比較して、ＰＣＨＭのバイオロジカルスキャホールドは２週間以内に分解し、ＰＣＨＭグループの治癒したマトリックスは、図１１Ｂに示す組織構造のように基本的にネオマトリックスに置き換えられた。図１１Ｃに示すように、Ｉｎｔｅｇｒａ人工皮膚の破片が観察され、創傷治癒の再生プロセスが妨げられた。

図１２を参照すると、ステップＳ１０６～Ｓ１０９に示すように、非再構成コラーゲンマトリックスを、生物学的物質を含有する溶液と接触させ、非再構成コラーゲンマトリックスに減圧環境を生成する。一実施形態では、非再構成コラーゲンマトリックスの一端を、少なくとも１つの生物学的物質を含有する溶液に入れる。ステップＳ１０８に示すように、非再構成コラーゲンマトリックスの他端に減圧環境が生成され、これにより、生物学的物質が非再構成コラーゲンマトリックスの構造に吸収され、生物学的物質を束状コラーゲン細線維の外面及び内面に均一にコーティングすることができる（細孔の内壁に均一にコーティングされると考えることもできる）。非再構成コラーゲンマトリックスの細孔径は極めて小さいため、非再構成コラーゲンマトリックスを溶液に単に浸漬するだけでは空気の残存を回避することは不可能であることに注意しなければならない。したがって、本発明では、空気を間接的に除去するためにサイフォンの原理が用いられ、これにより、生物学的物質は束状コラーゲン細線維の外面を完全に覆うことができる（細孔の内壁とみなすこともできる）。加えて、前述の減圧環境は、好ましくは真空引き動作によって生成される。

前述の生物学的物質は、細胞接着材料、組織修復材料、細胞誘導材料、成長因子材料、抗菌材料、及びこれらの組み合わせからなる群から選択される。好ましくは、前述の細胞接着材料は、糖類、ペプチド、タンパク質、リン脂質、又はこれらの組み合わせである。好ましくは、糖類材料は、グリコサミノグリカン材料である。好ましくは、グリコサミノグリカン材料は、コンドロイチン、コンドロイチン硫酸、ヘパリン、ヘパラン硫酸、ヘパラン硫酸プロテオグリカン、ケラタン、ケラタン硫酸、デルマタン硫酸、カラギーナン、ヒアルロン酸、及びこれらの組み合わせからなる群から選択される。好ましくは、本発明で用いられる生体材料は、コラーゲン、エラスチン、グリコサミノグリカン、キトサン、アルギン酸塩、ポリグルタミン酸（γ－ＰＧＡ）、ポリリジン、ポリ（乳酸－コ－グリコール酸）ＰＬＧＡ、シルクプロテイン、及びフィブロインからなる群から選択されるが、本発明はこれに限定されるものではない。

好ましくは、細胞誘導材料は、ビタミン、ミネラル、成長因子、化学薬品、薬剤、薬用ハーブ、代謝物、中間代謝物、糖類、ペプチド、タンパク質、リン脂質、又はこれらの組み合わせなどの分子からなる群から選択される。

好ましくは、成長因子材料は、上皮成長因子（ＥＧＦ）、線維芽細胞成長因子（ＦＧＦ）、血管内皮細胞成長因子（ＶＥＧＦ）、結合組織成長因子（ＣＴＧＦ）、血小板由来成長因子（ＰＤＧＦ）、インスリン様成長因子（ＩＧＦ－Ｉ、ＩＧＦ－ＩＩ）、神経成長因子（ＮＧＦ）、肝細胞成長因子（ＨＧＦ）、コロニー刺激因子（ＣＳＦ）、幹細胞因子（ＳＣＦ）、表皮細胞成長因子（ＫＧＦ）、顆粒球コロニー刺激因子（ＧＣＳＦ）、マクロファージコロニー刺激因子（ＭＣＳＦ）、顆粒球マクロファージコロニー刺激因子（ＧＭＣＳＦ）、グリア細胞株由来神経栄養因子（ＧＤＮＦ）、毛様体神経栄養因子（ＣＮＦ）、内皮－単球活性化ポリペプチド、上皮好中球活性化ペプチド、エリスロポエチン、骨形成タンパク質（ＢＭＰ－１、ＢＭＰ－２、ＢＭＰ－３など）、脳由来神経栄養因子（ＢＤＮＦ）、ＢＲＡＫ、セロトニン、フォン・ヴィレブランド因子（ｖＷＦ）、トランスフォーミング成長因子（ＴＧＦ－α、ＴＧＦ－β）、インターロイキン（ＩＬ－１、ＩＬ－２、ＩＬ－３など）、腫瘍壊死因子（ＴＮＦ）、及びこれらの組み合わせからなる群から選択される。

好ましくは、抗菌材料は、抗生物質、抗菌タンパク質、抗菌ペプチド、又はこれらの組み合わせである。

非再構成コラーゲンマトリックスの詳細な構造については、本発明の一実施形態に係るバイオロジカルスキャホールドの略断面図である図２を参照されたい。上記に示すように、非再構成コラーゲンマトリックス１０ａは、複数の細孔１０ｂを含む複数の束状コラーゲン細線維で構成される。生物学的物質１０ｃは、サイフォンの原理により、非再構成コラーゲンマトリックス１０ａに吸収され、束状コラーゲン細線維の外面上にコーティングされる。すなわち、細孔１０ｂの内壁はすべて、生物学的物質１０ｃでコーティングされており、これはその後の用途のために細胞が細孔に入って生物学的物質に付着するのにより伝導的である。

本発明の好ましい実施形態において、図２には示されていないが、生物学的物質が束状コラーゲン細線維の外面上にコーティングされた後に、細胞をバイオロジカルスキャホールドに導入することができる。細孔１０ｂに細胞培養培地又は細胞を含有する溶液を注入することで、細胞が非再構成コラーゲンマトリックスの細孔に入ることが可能となる。すなわち、本発明の好ましい実施形態において、本発明によって提供されるバイオロジカルスキャホールドは、図１３Ａに示すように細胞をさらに備える。図１３Ａの点線円の部分拡大図である図１３Ｂを参照すると、細胞３０は、細孔１０ｂ内で生物学的物質１０ｃに付着している。好ましくは、細胞は、幹細胞、衛星細胞、前駆細胞、始原細胞、又は組織細胞であってよく、組織細胞は、皮膚組織、軟骨組織、又は脂肪組織なども含み得る。

以下の表２は、異なる視野での、生物学的物質を含まない非再構成コラーゲンマトリックスと、生物学的物質を含む非再構成コラーゲンマトリックスの付着細胞数の比較を示す。表２から分かるように、非再構成コラーゲンマトリックス自体は疎水性の材料であり、細胞が細孔に付着するのに伝導的ではない。しかしながら、本発明が非再構成コラーゲンマトリックスの表面を細胞接着材料でさらにコーティングすると、その後、細胞がこれらの細孔に入り、バイオロジカルスキャホールドに付着するのに有益であることが示された。

次に、生物学的物質を含まない非再構成コラーゲンマトリックス（Ａ１）、ヒアルロン酸でコーティングされた（１回）非再構成コラーゲンマトリックス（Ａ２）、及びヒアルロン酸でコーティングされた（５回）非再構成コラーゲンマトリックス（Ａ３）の吸水率をさらに比較した。図１４Ａ～図１４Ｃ参照。３つの図は、それぞれＡ１、Ａ２、及びＡ３の吸水条件を示す。したがって、生物学的物質のより多くの層でコーティングされた非再構成コラーゲンマトリックスは、より良好な吸水能力を有することが実証された。

本発明によって提供される創傷被覆材に用いられるバイオロジカルスキャホールドの効果を確認した。図１０Ｂ及び図１１参照。図１０Ｂは、様々なバイオロジカルスキャホールドの創傷治癒時間を比較し、図１１は、様々なバイオロジカルスキャホールドの創傷治癒状態を比較している。

最初に、図１０Ｂは、創傷の様々な治療を示し、これらは、創傷面積と治癒時間との関係性を観察するために、グループＡ、Ｂ、Ｃ、Ｄ、及びＥに分けられた。その中で、最初の創傷面積は１００％であり、創傷が完全に治癒するまで２日おきに測定した。Ａは未治療の創傷を表し、Ｂは多孔質コラーゲンマトリックス（ＰＣＭ）で治療された創傷を表し、Ｃは多孔質コラーゲンマトリックスとＣＮＢｒ活性化ヒアルロン酸（ａＨ）の組み合わせ（ＰＣＭ－ａＨ）で治療された創傷を表し、ＤはＰＣＭ－ａＨとさらに５ｍｇ／ｍＬのヒアルロン酸で治療された創傷を表し、ＥはＩｎｔｅｇｒａ（登録商標）人工皮膚で治療された創傷を表している。図に示すように、グループＢ、グループＣ、及びグループＤの創傷はすべて、約３０日で治癒したが、人工皮膚で治療された創傷（グループＥ）の治癒には４４日かかった。グループＡは僅かにより早く治癒したが、瘢痕拘縮及び他の症状を呈した。

図１０Ｂに示すように、１２日後に、グループＣ（ＰＣＭ－ａＨで治療された創傷）の線維芽細胞増殖状態は、グループＥ（人工皮膚で治療された創傷）のそれを確かに上回った。したがって、前述の本体１０と生物学的物質との組み合わせは、瘢痕拘縮を引き起こさずに細胞増殖を効果的に促進することができ、従来技術の人工皮膚よりも迅速に創傷を治癒できることが示された。

次に、別の実施形態において、図１５Ａ～図１５Ｄに示すように、バイオロジカルスキャホールドを、図１５Ａ及び図１５Ｂの抗菌ペプチドのペキシガナン並びに図１５Ｃ及び図１５Ｄのネオマイシンなどの様々な抗菌材料でコーティングした。結果は、抗菌作用が濃度依存性であり、抗菌材料でコーティングされたバイオロジカルスキャホールドは良好な抗菌作用を有することを示した。

要約すれば、本発明の目的は、創傷被覆材に用いることができるバイオロジカルスキャホールドを提供することである。一実施形態では、本体の一方の側部は生物学的物質の層でコーティングされ、別の側部は組織接着剤層でコーティングされ、これにより、濃度勾配の影響に基づいて細胞が本体内で移動することができる。さらに、本体は、親水性の生物学的物質を含有するので、細胞の移動及び付着をさらに容易にすることができる。したがって、創傷の感染を防ぐために外来細菌の侵入を効果的に遮断することに加えて、本発明によって提供されるバイオロジカルスキャホールドはまた、細胞の成長を加速し、創傷治癒速度を促進するために用いることができる。

さらに、従来技術では、細分化されたコラーゲンを生物学的物質（ヒアルロン酸など）に添加し、それらを架橋して構造体に凝固させることが知られているが、コラーゲンと生物学的物質が絡み合うと、バイオロジカルスキャホールドの外側が完全には親水性にならない。加えて、再構成コラーゲンスキャフォールド（図３に示す）が最初に用意され、次いで、本発明によって提供される方法が実施される場合、再構成コラーゲンマトリックスの支持力は、その後の生物学的物質でのスキャフォールドのコーティングに必要とされる真空引きステップによってかかる外圧に耐えるのに不十分となる（図９及び上記の関連する説明参照）。前述のように、生物学的物質が非再構成コラーゲンマトリックスに完全に吸収又は導入され、表面を均一にコーティングできるように、サイフォンの原理が適用されるので、バイオロジカルスキャホールドの表面は細胞の浸潤及び付着に有利である。このバイオロジカルスキャホールドは、外科手術、ヒト臓器及び組織の修復、再生医療、皮膚移植術、又は美容医療に広く適用することができ、外科用修復メッシュファブリック、歯科用修復メッシュファブリック、ヒト皮膚代替物、人工髄膜代替物、整形外科用修復代替物、又は創傷被覆材代替物にも用いることができる。

上記の詳細な説明は、本発明の特定の実行可能な実施形態の具体的な説明であるが、これらの実施形態は、本発明の特許範囲を限定することを意図するものではない。本発明の技術的精神から逸脱しない任意の同等の実装又は変化が本発明の特許範囲内に含まれるはずである。

１ バイオロジカルスキャホールド
１０ 本体
１０ａ 非再構成コラーゲンマトリックス
１０ｂ 細孔
１０ｃ 生物学的物質
２０ 生物学的物質層
３０ 組織接着剤層
２ 組織
Ｓ１００～Ｓ１０５ 非再構成コラーゲンマトリックスを調製する方法
Ｓ１００～Ｓ１０４ｂ 非再構成コラーゲンマトリックスを調製する方法
Ｓ１０６～Ｓ１０９ バイオロジカルスキャホールドの調製

Claims (38)

1. バイオロジカルスキャホールドであって、
   非再構成コラーゲンマトリックスを含む本体と、
   前記非再構成コラーゲンマトリックスは、交絡した重なり合う複数の束状コラーゲン細線維と、前記束状コラーゲン細線維によって形成された複数の細孔とを有し、
   前記本体の第１の外面及び複数の細孔の内部をコーティングする生物学的物質と、
   を備えるバイオロジカルスキャホールド。
2. 前記生物学的物質が、細胞接着材料、組織修復材料、細胞誘導材料、成長因子材料、抗菌材料、及びこれらの組み合わせからなる群から選択される、請求項１に記載のバイオロジカルスキャホールド。
3. 前記抗菌材料が、抗生物質、抗菌タンパク質、抗菌ペプチド、又はこれらの組み合わせである、請求項２に記載のバイオロジカルスキャホールド。
4. 前記細胞接着材料が、糖類、ペプチド、タンパク質、リン脂質、又はこれらの組み合わせである、請求項２又は請求項３に記載のバイオロジカルスキャホールド。
5. 前記糖類材料が、グリコサミノグリカン材料である、請求項２～請求項４のいずれか一項に記載のバイオロジカルスキャホールド。
6. 前記グリコサミノグリカン材料が、コンドロイチン、コンドロイチン硫酸、ヘパリン、ヘパラン硫酸、ヘパラン硫酸プロテオグリカン、ケラタン、ケラタン硫酸、デルマタン硫酸、カラギーナン、ヒアルロン酸、及びこれらの組み合わせからなる群から選択される、請求項２～請求項５のいずれか一項に記載のバイオロジカルスキャホールド。
7. 前記成長因子材料が、上皮成長因子（ＥＧＦ）、線維芽細胞成長因子（ＦＧＦ）、血管内皮細胞成長因子（ＶＥＧＦ）、結合組織成長因子（ＣＴＧＦ）、血小板由来成長因子（ＰＤＧＦ）、インスリン様成長因子（ＩＧＦ－Ｉ、ＩＧＦ－ＩＩ）、神経成長因子（ＮＧＦ）、肝細胞成長因子（ＨＧＦ）、コロニー刺激因子（ＣＳＦ）、幹細胞因子（ＳＣＦ）、表皮細胞成長因子（ＫＧＦ）、顆粒球コロニー刺激因子（ＧＣＳＦ）、マクロファージコロニー刺激因子（ＭＣＳＦ）、顆粒球マクロファージコロニー刺激因子（ＧＭＣＳＦ）、グリア細胞株由来神経栄養因子（ＧＤＮＦ）、毛様体神経栄養因子（ＣＮＦ）、内皮－単球活性化ポリペプチド、上皮好中球活性化ペプチド、エリスロポエチン、骨形成タンパク質（ＢＭＰ－１、ＢＭＰ－２、ＢＭＰ－３など）、脳由来神経栄養因子（ＢＤＮＦ）、ＢＲＡＫ、セロトニン、フォン・ヴィレブランド因子（ｖＷＦ）、トランスフォーミング成長因子（ＴＧＦ－α、ＴＧＦ－β）、インターロイキン（ＩＬ－１、ＩＬ－２、ＩＬ－３など）、腫瘍壊死因子（ＴＮＦ）、及びこれらの組み合わせからなる群から選択される、請求項２～請求項６のいずれか一項に記載のバイオロジカルスキャホールド。
8. 前記細胞誘導材料が、ビタミン、ミネラル、化学薬品、薬剤、薬用ハーブ、代謝物、中間代謝物、糖類、ペプチド、タンパク質、リン脂質、及びこれらの組み合わせからなる群から選択される、請求項２～請求項７のいずれか一項に記載の生物学的物質。
9. 前記組織修復材料が、生体材料、細胞外マトリックス、栄養素、又はこれらの組み合わせである、請求項２～請求項８のいずれか一項に記載のバイオロジカルスキャホールド。
10. 前記生体材料が、コラーゲン、ゼラチン、ヒアルロン酸、エラスチン、グリコサミノグリカン、キトサン、アルギン酸塩、ポリグルタミン酸（γ－ＰＧＡ）、ポリリジン、ポリ（乳酸－コ－グリコール酸）（ＰＬＧＡ）、シルクフィブロイン、ポリアミノ酸、セルロース及びその誘導体、又はこれらの組み合わせである、請求項２～請求項９のいずれか一項に記載のバイオロジカルスキャホールド。
11. 前記細胞外マトリックスが、コラーゲン、ゼラチン、エラスチン、グリコサミノグリカン、プロテオグリカン、糖タンパク質、フィブロネクチン、ラミニン、アグリカン、メタロプロテアーゼ、及びこれらの組み合わせからなる群から選択される、請求項２～請求項１０のいずれか一項に記載のバイオロジカルスキャホールド。
12. 前記栄養素が、ビタミン、ミネラル、タンパク質、脂質、炭水化物、アミノ酸、ペプチド、ヌクレオチド、デオキシヌクレオチド、薬用ハーブ、及びこれらの組み合わせからなる群から選択される、請求項２～請求項１１のいずれか一項に記載のバイオロジカルスキャホールド。
13. 前記本体の複数の細孔内に細胞をさらに含む、請求項１～請求項１２のいずれか一項に記載のバイオロジカルスキャホールド。
14. 前記細胞が、幹細胞、衛星細胞、始原細胞、前駆細胞、又は組織細胞である、請求項１～請求項１３のいずれか一項に記載のバイオロジカルスキャホールド。
15. 前記生物学的物質が、前記本体の表面全体及び内面を実質的にコーティングする、請求項１～請求項１４のいずれか一項に記載のバイオロジカルスキャホールド。
16. 前記本体の第２の表面にコーティングされた組織接着剤層をさらに備える、請求項１～請求項１５のいずれか一項に記載のバイオロジカルスキャホールド。
17. 前記組織接着剤層が、
    官能基又は二官能基を有する架橋剤と、
    少なくとも、前記架橋剤で架橋されるマトリックス分子と、
    前記マトリックス分子と反応していない前記架橋剤の過剰な官能基又は二官能基と反応させるためのクエンチ剤と、
    を含む、請求項１～請求項１６のいずれか一項に記載のバイオロジカルスキャホールド。
18. 前記架橋剤の１つの官能基が、アミン、スルフヒドリル、カルボニル、グリコール、ヒドロキシル、カルボキシル、アジド、イミドエステル、エポキシド、アルデヒド、ハロアセチル、ピリジルジスルフィド、ピリジルジチオール、ヒドラジド、光架橋剤、カルボジイミド、ジアジリン、アジリジン、アクリロイル、アリレート、チオール、ゲニピン、リボフラビン、フラボノイド及びその誘導体、ヒドロキシメチルホスフィン、イソシアネート、マレイミド、６－マレイミドヘキサン酸活性エステル、スベリン酸ジサクシンイミジル、スベリン酸ビス（スルホスクシンイミジル）、Ｎ－ヒドロキシ－スクシンイミドエステル（ＮＨＳ－エステル）、スルホスクシンイミジル－４－（Ｎ－マレイミドメチル）シクロヘキサン－１－カルボキシレート、ペンタフルオロフェニルエステル（ＰＦＰ－エステル）、エチレングリコールジグリシジルエーテル、グルタルアルデヒド、２，３－ジブロモプロピオニルＮ－ヒドロキシスクシンイミドエステル、スルホ－Ｎ－ヒドロキシスクシンイミドエステル、クロラムブシル－Ｎ－ヒドロキシスクシンイミドエステル、１－エチル－３－（３－ジメチルアミノプロピル）カルボジイミド、ソラレン、ビニルスルホン、及びこれらの組み合わせからなる群から選択される、請求項１～請求項１７のいずれか一項に記載のバイオロジカルスキャホールド。
19. 前記マトリックス分子が、コラーゲン、ヒアルロン酸、ゼラチン、シルクプロテイン、フィブロイン、フィブロネクチン、エラスチン、テネイシン、ラミニン、ビトロネクチン、ヘパラン硫酸、コンドロイチン、コンドロイチン硫酸、ケラチン、ケラタン硫酸、デルマタン硫酸、カラギーナン、ヘパリン、キチン、キトサン、アルギン酸塩、アグリカン、アガロース、寒天、セルロース、メチルセルロース、カルボキシルメチルセルロース、グリコーゲン、フィブリン、フィブリノゲン、トロンビン、ポリグルタミン酸、ポリリジン、ポリアミノ酸、合成ポリマー（例えば、アクリレート、ポリ乳酸、ポリグリコール酸、ポリ乳酸－グリコール酸）、これらの誘導体、及びこれらの組み合わせからなる群から選択される、請求項１～請求項１８のいずれか一項に記載のバイオロジカルスキャホールド。
20. 前記マトリックス分子が前記本体のコラーゲンである、請求項１～請求項１９のいずれか一項に記載のバイオロジカルスキャホールド。
21. 前記クエンチ剤が、アミノ酸、オリゴペプチド、ポリペプチド、タンパク質、アミン、ジアミン、オリゴアミン、ポリアミン、カルボニル化合物、グリコール化合物、カルボキシル化合物、ジカルボキシレート、オリゴカルボキシレート、ポリカルボキシレート、スルフヒドリル化合物、オリゴスルフヒドリル化合物、ポリスルフヒドリル化合物、ヒドロキシル化合物、オリゴヒドロキシル化合物、ポリヒドロキシル化合物、糖類、オリゴ糖、多糖類、リボ核酸（ＲＮＡ）、デオキシリボ核酸（ＤＮＡ）、オリゴヌクレオチド、アジド、光架橋化合物、単官能基又はヘテロ二官能基、及びこれらの組み合わせからなる群から選択される、請求項１～請求項２０のいずれか一項に記載のバイオロジカルスキャホールド。
22. 前記非再構成コラーゲンマトリックスが、
    結合組織の層シートを得ることと、
    前記層シートを高イオン強度の塩溶液に浸漬し、次いで前記塩溶液にタンパク質分解酵素を添加することで脱毛した層シートが生成される、脱毛ステップを行うことと、
    前記脱毛した層シートが膨潤した層シートを形成するのに十分な時間にわたって、前記脱毛した層シートを第１の酸性溶液に浸漬することで、非再構成コラーゲンマトリックスが形成される、膨潤ステップを行うことと、
    を含む手順によって調製される、請求項１～請求項２１のいずれか一項に記載のバイオロジカルスキャホールド。
23. 前記層シートが動物皮膚組織から得られた皮層シートである、請求項１～請求項２２のいずれか一項に記載のバイオロジカルスキャホールド。
24. 非再構成コラーゲンマトリックスを調製する方法であって、
    動物皮膚組織から皮層シートを得ることと、
    前記皮層シートを高イオン強度の塩溶液に浸漬し、次いで前記塩溶液にタンパク質分解酵素を添加することで脱毛した皮層シートが生成される、脱毛ステップを行うことと、
    前記脱毛した皮層シートが膨潤した皮層シート層を形成するのに十分な時間にわたって、前記脱毛した皮層シートを第１の酸性溶液に浸漬することで、非再構成コラーゲンマトリックスが形成される、膨潤ステップを行うことと、
    を含み、
    前記非再構成コラーゲンマトリックスは、交絡した重なり合う複数の束状コラーゲン細線維と、前記束状コラーゲン細線維によって形成された複数の細孔を有する、
    方法。
25. 前記塩溶液のイオン強度が０．１５Ｎを超える、請求項２４に記載の方法。
26. 前記イオン強度が０．５Ｎから１０Ｎの間である、請求項２４又は請求項２５に記載の方法。
27. 前記塩溶液が、塩化ナトリウム、硫酸アンモニウム、又はこれらの混合物を含有するリン酸塩溶液である、請求項２４～請求項２６のいずれか一項に記載の方法。
28. 前記タンパク質分解酵素が、セリンプロテアーゼ、トレオニンプロテアーゼ、システインプロテアーゼ、アスパラギン酸プロテアーゼ、グルタミン酸プロテアーゼ、メタロプロテアーゼ、及びこれらの混合物からなる群から選択される、請求項２４～請求項２７のいずれか一項に記載の方法。
29. 消毒ステップをさらに含む、請求項２４～請求項２８のいずれか一項に記載の方法。
30. 前記脱毛ステップの前又は後に脱脂ステップをさらに含む、請求項２４～請求項２９のいずれか一項に記載の方法。
31. 前記膨潤ステップの後に、前記非再構成コラーゲンマトリックスを、ペプシンを含有する第２の酸性溶液に浸漬することを含む脱抗原ステップをさらに含む、請求項２４～請求項３０のいずれか一項に記載の方法。
32. 前記膨潤ステップの後に、前記膨潤した皮層シート層を添加剤に浸漬することを含む強化ステップをさらに含む、請求項２４～請求項３１のいずれか一項に記載の方法。
33. バイオロジカルスキャホールドを調製する方法であって、
    請求項２４～請求項３１のいずれか一項に記載の方法によって調製された非再構成コラーゲンマトリックスを準備することと、
    前記非再構成コラーゲンマトリックスを減圧環境下で生物学的物質を含有する溶液と接触させることで、前記生物学的物質を前記非再構成コラーゲンマトリックスの第１の外面及び複数の細孔の内部にコーティングすることと、
    を含む方法。
34. 前記減圧環境が、真空引き動作によって生成される、請求項３３に記載の方法。
35. 前記非再構成コラーゲンマトリックスの複数の細孔に細胞培養培地を注入することと、
    前記生物学的物質に細胞が付着するように、細胞を前記複数の細孔に注入することと、
    をさらに含む、請求項３３又は請求項３４に記載の方法。
36. 前記生物学的物質が、細胞接着材料、組織修復材料、細胞誘導材料、成長因子材料、抗菌材料、及びこれらの組み合わせからなる群から選択される、請求項２７に記載の方法。
37. 前記非再構成コラーゲンマトリックスの第１の外面を、生物学的物質を含有する溶液と接触させ、前記非再構成コラーゲンマトリックスの第２の外面に、組織接着剤層をコーティングすることをさらに含む、請求項２９のいずれか一項に記載の方法。
38. 前記組織接着剤層が、官能基又は二官能基を有する架橋剤と、少なくとも、前記架橋剤で架橋されるマトリックス分子と、前記マトリックス分子と反応していない前記架橋剤の過剰な官能基又は二官能基と反応させるためのクエンチ剤とを含む、請求項３１に記載の方法。

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