JP2005512508A - Dkk媒介性相互作用を変調する試薬および方法 - Google Patents

Dkk媒介性相互作用を変調する試薬および方法 Download PDF

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Abstract

本発明は、LRP5、HBM(LRP5の変異体)、および/またはLRP6の細胞外ドメインとDkk−1を含むDkkとの新規相互作用に関連する試薬、化合物、組成物および方法を提供する。本発明の種々の核酸、ポリペプチド、抗体、アッセイ方法、診断方法および治療方法はDkk、LRP5、LRP6、HBMおよびWntシグナル伝達に関連しており、それらに影響を及ぼす。Dkk、LRP5、LRP6、HBMおよびWntは骨および脂質細胞シグナル伝達に関与している。したがって、本発明は脂質濃度および/または骨量を変調する試薬および方法を提供し、例えば骨粗鬆症のような異常な脂質濃度および骨量障害の治療および診断において有用である。

Description

本発明は、Dkk−1、および/またはLRP5、LRP6、HBMを含むDkkまたはもしくはWnt経路の他のメンバーによって媒介されるシグナル伝達、骨の発達、骨量減少障害、脂質に関連する状態の変調、研究用試薬、薬物リードのスクリーニング方法、新薬開発、骨および/または脂質障害の治療、治療法のスクリーニングおよび開発、骨および/または脂質の発達および維持の分子、細胞および動物モデルに関する。
骨粗鬆症の極めて一般的なタイプのうちの2つは閉経後骨粗鬆症および老人性骨粗鬆症である。骨粗鬆症は男性と女性のどちらもが罹患する疾患であり、他の骨の異常と一緒に、高齢者における増加の一途をたどる健康上のリスクを表している。骨粗鬆症に最も一般的なのは閉経に関連したタイプである。ほとんどの女性は、閉経後3〜6年以内に骨の骨梁区画に含まれる骨量の20〜60%を失う。この急速な骨量減少は、一般には骨の吸収および形成の増加に関連している。しかし吸収サイクルの方が優勢であるため、結果として骨量の正味減少が生じる。骨粗鬆症は、閉経後の女性の間で一般的かつ深刻な疾患である。米国内だけでも、この疾患に罹患している女性は2,500万人と推定されている。骨粗鬆症の結果は個人的には痛みを伴うが、さらにこの疾患が慢性的で疾患の後遺症の結果として広範囲に及ぶ長期的サポート(例えば、入院および在宅看護)の必要が生じることから、大きな経済的損失の原因でもある。これは特に高齢患者について言える。さらに、骨粗鬆症は一般には生命を脅かす状態とは考えられていないが、高齢の女性における股関節骨折には20〜30%の死亡率が結び付いている。この死亡率の大きなパーセンテージは、閉経後骨粗鬆症と直接的に関連している可能性がある。
閉経後骨粗鬆症の作用に対して骨の中で最も易損性である組織は骨梁骨である。この組織はしばしば海綿骨と呼ばれており、特に骨端近傍、関節近傍および脊椎に集中している。骨梁組織は、相互に、ならびに骨の外面および中心軸を作り上げているより固く密な皮質組織と相互連結している微小構造を特徴とする。この骨梁の交差網目は外皮質構造への側方支持を与えるので、全体的構造の生体力学的強度にとって極めて重要である。閉経後骨粗鬆症では、主として骨梁の網目吸収や消失が骨の障害や骨折を導く。閉経後の女性における骨梁消失を考えると、大多数の一般的骨折が例えば脊椎、大腿骨頸部および前腕のような骨梁支持に高度に依存する骨に関連する骨折であることは驚くに当たらない。実際に、股関節骨折、コーレス(Colles’s)骨折、および脊椎粉砕骨折は閉経後骨粗鬆症の徴候である。皮質と骨梁骨のどちらもが骨粗鬆症に罹患する。加齢に伴う骨内膜性骨吸収における変化やハーバースリモデリング(Haversian remodeling)は、骨折のリスク上昇の原因となる皮質厚および構造完全性に影響を及ぼす。
閉経後骨粗鬆症の治療方法として初期に一般的に容認されていた方法の1つは、エストロゲン代償療法であった。この療法は高頻度で成功が得られはするが、主として長期エストロゲン療法の望ましくない副作用が原因で患者のコンプライアンスが低い。しばしば言及されているエストロゲン代償療法の副作用には、月経の再開、膨満感、うつ病、および可能性として乳癌もしくは子宮癌のリスク上昇が含まれる。子宮摘出術を受けていない女性において知られている子宮癌の脅威を抑えるためには、エストロゲンとプロゲスチンの周期療法のプロトコールがしばしば使用されている。だがこのプロトコールは受胎調節レジメンに使用されるプロトコールに類似しており、プロゲスチンに特徴的な副作用が生じるため、しばしば女性には忍容されない。より近年には、最初は乳癌を治療するために開発された一定の抗エストロゲンが閉経後骨粗鬆症の実験モデルにおいて有効であることが証明されている。特に有効な物質はラロキシフェンである(米国特許第5,393,763号;Blackら,J.Clin.Invest.,93:63−69(1994);およびEttingerら,JAMA 282:637−45(1999)を参照)。さらに、乳癌を治療するために広範に使用されている臨床薬であるタモキシフェンも乳癌に罹患している閉経後女性における骨塩密度を上昇させることが証明されている(Loveら,N.Engl.J.Med.,326:826−856(1992))。
閉経後骨粗鬆症を治療するためのまた別の療法はカルシトニンの使用である。カルシトニンは骨吸収を阻害する天然型ペプチドであり、この使用は多数の国々で承認されている(Overgaardら,Br.Med.J.,305:556−561(1992))。しかしカルシトニンを使用するのはいくらか限定されてきた。骨塩密度を上昇させることに関するカルシトニンの作用は極めてささやかであり、そしてその治療は非常に費用がかかるからである。閉経後骨粗鬆症を治療するためのまた別の療法は、ビスホスホネート製剤の使用である。これらの化合物は、最初はぺージェット病や悪性高カルシウム血症を治療するために開発された。ビスホスホネート製剤が骨吸収を抑制することは証明されている。ビスホスホネート製剤の1種であるアレンドロネートは、閉経後骨粗鬆症の治療のために承認されている。これらの薬剤は骨粗鬆症の治療には有用であるが、これらの薬剤はさらに潜在的不利益も有しており、それには骨軟化症、極めて長い骨中半減期(2年間を超える)、および例えば正常骨リモデリングの停止のような「凍結骨症候群(frozen bone syndrome)」が含まれる。
老人性骨粗鬆症は、骨塩密度の減少が顕著で、結果として骨折率、罹病率、および関連死亡率が上昇するという点で閉経後骨粗鬆症に類似している。一般に、老人性骨粗鬆症は高齢期に、すなわち70歳代以降に発生する。歴史的には、老人性骨粗鬆症は女性における方が一般的であったが、より高齢の男性集団の出現に伴ってこの疾患は男女両性の健康における主要要素になりつつある。テストステロンまたはエストロゲンのようなホルモンがこの疾患において、もしあるとしても、どのような役割を果たすのかは不明であり、その病因ははっきりしていない。この疾患の治療は余り満足が得られていない。女性ではエストロゲン、男性ではテストステロンを使用するホルモン療法は不明瞭な結果を示している;カルシトニンおよびビスホスホネート製剤にはいくらかの有用性があるかも知れない。
成人での骨格のピーク量は高度に遺伝的制御下にある。双子で実施された試験は、成人の一卵性双生児間の骨量変動が二卵性双生児間の骨量変動より小さいことを証明している(Slemendaら,J.Bone Miner.Res.,6:561−567(1991);Youngら,J.Bone Miner.Res.,6:561−567(1995);Pocockら,J.Clin.Invest.,80:706−710(1987);Kellyら,J.Bone Miner.Res.,8:11−18(1993)を参照)。骨格量における変動の60%以上までは遺伝性であると推定されている(Krallら,J.Bone Miner.Res.,10:S367(1993)を参照)。ピーク骨格量は高齢者における骨量の最も強力な決定因子であるが(Huiら,Ann.Int.Med.,111:355−361(1989))、成人および中年期以降における年齢関連性骨量減少率もまた重要な決定因子である(Huiら,Osteoporosis Int.,1:30−34(1995))。骨量は骨折リスクの測定可能な主要決定因子であるので、成人で達成された遺伝性ピーク骨格量は、中年期以降の個人の骨折リスクにとって重要な決定因子となる。そこで、骨量の遺伝的基礎に関する研究は、骨粗鬆症を原因とする骨折の病因において相当に重要である。
近年、骨粗鬆症の分野においてピーク骨量の遺伝的制御に大きな関心が高まってきた。この関心の焦点は、主として正常範囲内にある骨量における変動との関連について試験するための適切な多型性を備える候補遺伝子に、または骨粗鬆症を有する患者において見いだされる範囲内の低骨量に関連する遺伝子および遺伝子座の試験に当てられてきた。ビタミンD受容体(VDR)遺伝子座(Morrisonら,Nature,367:284−287(1994))、PTH遺伝子(Howardら,J.Clin.Endocrinol.Metab.,80:2800−2805(1995);Johnsonら,J.Bone Miner.Res.,8:11−17(1995);Gongら,J.Bone Miner.Res.,10:S462(1995))およびエストロゲン受容体遺伝子(Hosoiら,J.Bone Miner.Res.,10:S170(1995);Morrisonら,Nature,367:284−287(1994))は、この研究において極めて重要なものとして登場してきた。これらの試験は、骨量(すなわち、表現型)が連続的、定量的、多遺伝子の形質であり、そして例えば栄養、合併疾患、年齢、身体活動度、およびその他の因子のような環境因子によって混乱させられるので困難である。さらに、このタイプの試験デザインには極めて多数の被験者が必要とされる。特に、現在に至るまでのVDR試験の結果は紛らわしく、矛盾していた(Garneroら,J.Bone Miner.Res.,10:1283−1288(1995);Eismanら,J.Bone.Miner.Res.,10:1289−1293(1995);Peacock,J.Bone Miner.Res.,10:1294−1297(1995))。さらにその上、これまでのところ、当分野ではそれにより遺伝的影響力が骨量に作用するメカニズムを確定していない。
ピーク骨量が環境因子よりはむしろ主として遺伝的因子により大方決定されることはよく知られているが、骨量の変動に関連する遺伝子座(および最終的には遺伝子)を決定する試験は困難である上に高額の費用がかかる。同胞コントロールまたは拡大家族のような例えば連鎖解析の検出力を利用する試験デザインでは単純関連試験より概してより多くの情報が得られるが、後者にも価値がある。しかし骨量を含む遺伝的連鎖試験は2つの重要な問題によって妨害される。第1の問題は、上記で手短かに考察したような表現型である。骨量は連続的定量的形質であるので、個別の表現型を確定することは困難である。測定のための各解剖学的部位はいくつかの遺伝子によって影響を受けることがあり、それらの多くは部位毎に相違する可能性がある。第2の問題は、表現型の年齢成分である。個人が低骨量を有すると同定できる時点までに彼らの両親またはその他の先行世代のメンバーが死亡していてこのため試験に利用できない可能性が高く、そして若年世代はピーク骨量にさえ達していないので、遺伝子解析のために彼らの表現型の型別が不明確になる可能性がある。
そこで、当分野においては骨の変調の分子機序を解明するため、候補新薬のスクリーニングおよび開発のため、そして骨の発達および骨量減少障害の治療のために、追加の研究用ツールの必要がある。本発明は、これらやその他の重要な目的に向けられる。
骨の変調に加えて、本発明は脂質濃度の変調にも関する。心血管疾患は米国における死亡率の最も一般的な原因であり、アテローム性動脈硬化症は心疾患および心臓発作の主因である。コレステロールがアテローム性動脈硬化症において重要な役割を果たすことは広く理解されている。通常、ほとんどのコレステロールは細胞壁における構造的要素として機能するが、残りの多くは血液を通って通過中であるか、または肝臓における胆汁酸、内分泌細胞におけるステロイドホルモンおよび皮膚内のビタミンDの合成にとっての出発物質として機能する。循環系を通してのコレステロールおよびその他の脂質の輸送はリポタンパク質担体内へのパッケージングによって促進される。これらの球状粒子には、非エステル化(「遊離」)もしくはエステル化コレステロールおよびトリグリセリドを含む中性脂質のコアを取り囲んでいるタンパク質およびリン脂質の殻が含まれている。アテローム性動脈硬化症のリスクは低密度リポタンパク質(LDL)コレステロールの濃度上昇に伴って増加するが、他方このリスクは高密度リポタンパク質(HDL)コレステロールの濃度と反比例している。血漿中LDL濃度の受容体媒介性制御は明確にされており、そして近年の研究はHDL代謝に関する新規の洞察を提供してきた。
LDL代謝の解明は、Michael BrownおよびJoseph Goldsteinによって1974年に開始された。手短かには、肝臓は循環中に中間密度型リポタンパク質(IDL)へ、およびその後はLDLへ変換されるリポタンパク質前駆体(超低密度リポタンパク質、VLDL)を合成する。身体内で発現するLDL受容体の大多数は肝細胞の表面上に存在するが、実質的にその他すべての組織(「末梢組織」)が数種のLDL受容体を発現する。結合後、受容体リポタンパク質複合体は被覆ピットおよび被覆小胞を介して細胞によって吸収され、そして全LDL粒子がリソソームへ送達されるが、このとき粒子は酵素加水分解によって分解され、引き続いて細胞代謝のためにコレステロールが遊離される。この全粒子取り込み経路は「受容体媒介性エンドサイトーシス」と呼ばれている。LDL受容体の濃度および細胞コレステロール生合成両方のコレステロール媒介性フィードバック調節は、細胞コレステロールの恒常性を保証するのに役立つ。ヒトにおけるLDL受容体の遺伝的欠損は、血漿中LDLコレステロールの上昇および若年性のアテローム性動脈硬化症および心臓発作を特徴とする家族性高コレステロール血症を生じさせる。過剰な血漿中LDLコレステロールの悪影響についての1つの仮説は、LDLが動脈壁に進入し、化学修飾され、そしてその後、動脈内でのLDLコレステロールの細胞集積を媒介してマクロファージスカベンジャー受容体と呼ばれる特別クラスの受容体によって認識され、最終的にはアテローム性動脈硬化症病変の形成を生じさせる、というものである。
主要リポタンパク質クラスには、食事脂肪およびコレステロールを腸管輸送する乳状脂粒、アテローム形成性の可能性がある肝由来VLDL、IDL、LDL、および抗アテローム形成性の肝由来および腸管由来HDLが含まれる。アポタンパク質B(ApoB)は、カイロミクロン(ApoB48)およびVLDL、IDL、およびLDL(ApoB100)の分泌にとって不可欠である。VLDLトリグリセリドの血漿中濃度は、主としてLDL脂肪分解活性における分泌速度によって決定される。LDLコレステロールの血漿中濃度は主として血漿内へのApoB100の分泌、それを用いてVLDLがLDLへ転換される有効性およびLDL受容体媒介性クリアランスによって決定される。HDLコレステロール濃度の調節は複雑であり、そのアポタンパク質の合成速度、LCATによる遊離コレステロールからコレステロールエステルへのエステル化速度、トリグリセリドリッチリポタンパク質の濃度およびHDLからのコレステロールエステルのCETP媒介性トランスファー、およびHDL脂質およびアポタンパク質の血漿からのクリアランスによって影響を受ける。
正常リポタンパク質輸送には、低濃度のトリグリセリドおよびLDLコレステロールならびに高濃度のHDLコレステロールが結び付いている。リポタンパク質輸送が異常であると、リポタンパク質濃度は個人にアテローム性動脈硬化症および動脈硬化症への素因を与える方法で変化することがある(Ginsburg,Endocrinol.Metab.Clin.North Am,27:503−19(1998)を参照)。
数種のリポタンパク質受容体は、細胞脂質取り込みに関わっている可能性がある。これらの受容体には次のものが含まれる:スカベンジャー受容体;LDL受容体関連タンパク質/α2−マクログロブリン受容体(LRP);LDL受容体;およびVLDL受容体。LDL受容体を除いて、これらの受容体はどれもがアテローム性動脈硬化症病変中で発現するが、他方スカベンジャー受容体はほとんどがマクロファージ中で発現し、LRPおよびVLDL受容体は平滑筋細胞中での脂質取り込みを媒介することに重要な役割を果たすことがある(Hiltunenら,Atherosclerosis,137補遺S81−8(1998))。
高コレステロール血症の薬物治療における大きな飛躍的進歩は、3−ヒドロキシ−3−メチルグルタリル−CoAレダクターゼ(HMG CoAレダクターゼ)阻害薬の「スタチン」クラスの開発であった。3−ヒドロキシ−3−メチルグルタリル−CoAレダクターゼはコレステロール生合成における律速酵素であり、肝内でのその阻害はLDL受容体発現を刺激する。その結果として、血漿中LDLコレステロール濃度およびアテローム性動脈硬化症のリスクの両方が減少する。LDL受容体形の発見および解析は、細胞生物学、生理学および医学に深遠な影響を及ぼしてきた。
HDLは末梢組織から非エステル化、もしくは「遊離」コレステロール(FC)を取り除くと考えられており、その後大多数のコレステロールは血漿中の酵素によってコレステロールエステル(CE)へ変換される。その後に、HDLコレステロールは選択的取り込み経路およびHDL受容体を介して肝およびステロイド産生組織へ効果的に直接に送達され、そしてHDL受容体、SR−BI(クラスBタイプIスカベンジャー受容体)または一部の種では代謝における追加の輸送のために他のリポタンパク質へ移送される(Krieger,Proc.Natl.Acad.Sci.USA,95:4077−4080(1998))。
これらの問題は、脂質変調の分子メカニズムを解明するため、候補新薬のスクリーニングおよび開発のため、そして脂質濃度および脂質濃度変調障害の治療のための追加の研究用ツールに対する技術における必要を例証している。本発明は、これらやその他の重要な目的に向けられる。
本発明は、LRP5、HBM(LRP5の変異体)、および/またはLRP6の細胞外ドメインとDkkタンパク質との新規相互作用に関連する試薬、化合物、組成物および方法を提供する。LRP5は、Zmax1もしくはZmaxとも呼ばれる。したがって、DkkとLRP5(もしくはZmax1)との相互作用に関連する本発明の方法、試薬、化合物、および組成物を考察するときには、本発明はDkkとLRP6との、およびDkkとHBMとの相互作用に関連する実施形態を含むと理解されなければならない。さらに、ここでDkkを考察する場合は、本発明の方法、試薬、化合物、および組成物には、Dkk−1、Dkk−2、Dkk−3、Dkk−4およびSoggyを含むがそれらに限定されないDkkファミリーメンバーが含まれると理解しなければならない。さらに、本発明はLRP5のリガンド結合ドメイン(LBD)とその他のタンパク質との結合相互作用を証明する、および/またはLRP5、またはその変異体もしくはフラグメントとDkkタンパク質との相互作用を変調できるDkk−1の新規フラグメントを含む。本発明は、Dkk−Wntシグナル伝達に関連するアッセイ、方法、組成物および化合物を提供する。Wnt1〜Wnt19、および特にWnt1、Wnt3、Wnt3a、およびWnt10bを含む多数のWntタンパク質が本発明に適合する。本発明は、さらに1つ以上の他のタンパク質とDkk−1との相互作用を変調する試薬、化合物、組成物および方法を提供する。本発明は、さらにまたDkk−1またはLRP5(またはHBMおよび/またはLRP6)へ結合する一連のペプチドアプタマーも提供する。
例えばペプチドオリゴマー、アプタマー、タンパク質およびタンパク質フラグメントの形状での本発明のポリペプチド、ならびに本発明のポリペプチドならびにアンチセンスもしくは相補的核酸をコードする核酸の形状での本発明の核酸は、骨量および脂質濃度変調を試験するための試薬として有用である。本発明のポリペプチドおよび核酸は、さらにまた治療薬および診断薬としても有用である。
本発明はLRP5、LRP6、および/またはHBMを用いたDkkタンパク質の変調、Dkk−1および/またはDkk−1相互作用タンパク質活性の変調、そしてLRP/Dkk−1、LRP6/Dkk1およびHBM/Dkk−1の相互作用およびDkk−1/Dkk−1相互作用タンパク質の相互作用の変調のための有用な試薬を提供する。本発明はDkk−1またはLRP6、LRP5および/またはHBMに結合する一連のペプチドアプタマーを提供する。
本発明の目的は、Dkk活性を変調する治療有効量の組成物を投与するステップを含む、被検対象においてLRP5/LRP6/HBM/HBN様活性を調節する方法を提供することである。該被検対象は脊椎動物または無脊椎動物であってよいが、より好ましくは該生物は、イヌ、ネコ、ヒツジ、霊長類、ウマ、ブタ、ヤギ、ラクダ、鳥類、ウシ、または齧歯動物である。より好ましい動物はヒトである。1つの好ましい実施形態では、Dkkタンパク質はDkk−1である。特に好ましい実施形態では、Dkk−1活性が低下させられる。別の実施形態では、Dkk活性が骨量および/または脂質濃度を変調する。1つの好ましい実施形態では、骨量が増加させられ、および/または脂質濃度が低下させられる。また別の好ましい実施形態では、骨量における変調とは骨折率の減少、部分的骨密度の上昇、容積骨塩密度の上昇、骨梁連結性の上昇、骨梁密度の上昇、皮質密度もしくは皮質厚の上昇、骨径の増加、および無機質骨含量の増加のうちの1つ以上を介して決定される骨の強度の増加である。本発明はさらにまた、該組成物が図6に示したものまたは図6に示したそれらのフラグメントの模倣物のようなDkk、Dkk−1もしくはそのLRP5/LRP6/HBM結合フラグメントを含むような方法を提供する。本発明はさらにまた、該組成物が例えば図5に示したもののようなDkk−1を含むDkk、もしくはそのDkk結合フラグメント、または1つ以上のDkk相互作用もしくはDkk−1相互作用タンパク質をコードする核酸を認識して結合するアンチセンス、siRNA、またはshRNA分子と相互作用する1つ以上のタンパク質を含むような方法を提供する。本発明はさらにまた、該組成物がLRP5/LRP6/Zmax1抗体、Dkk抗体、Dkk−1抗体またはDkk−1相互作用タンパク質に対する抗体を含むような方法を提供する。本発明はさらにまた、該組成物が例えば図3(配列番号171〜188)に示したもののようなDkkまたはDkk−1のアプタマー、またはこのようなアプタマーの模倣物を提供する。本方法はさらに、本発明がさらにまた該組成物がDkk相互作用もしくはDkk−1相互作用タンパク質のアプタマー、またはそのようなアプタマーの模倣物を含むような方法を提供する。
本発明の組成物は、DkkのLRP5/LRP6/Zmax1、特にDkk−1への結合、またはDkk−1の図5に示したもののようなDkk−1相互作用タンパク質への結合を増強または阻害するどちらかによって活性を変調することができる。本発明の組成物は例えばOST262(配列番号208)、図4(配列番号189〜192)(特に、ペプチド(配列番号191))および13(配列番号204〜214を含む)のようなLRP5ペプチドアプタマー、またはこのようなアプタマーの模倣物を含んでいてよい。本発明の好ましい組成物はさらにまたLRP5抗体も含む。
本発明のまた別の態様は、Dkk−Wnt経路活性を調節する治療有効量の組成物を投与するステップを含む、被検対象におけるDkk−Wnt経路活性を変調する方法を提供することである。1つの好ましい実施形態では、Dkkタンパク質はDkk−1である。特に好ましい実施形態では、Dkk−1活性が低下させられる。また別の実施形態では、Dkk活性は骨量および/または脂質濃度を変調する。1つの好ましい実施形態では、骨量が増加させられ、および/または脂質濃度が低下させられる。また別の好ましい実施形態では、骨量における変調とは、骨折率の減少、部分的骨密度の上昇、容積骨塩密度の上昇、骨梁連結性の上昇、骨梁密度の上昇、皮質密度もしくは皮質厚の上昇、骨径の増加、および無機質骨含量の増加のうちの1つ以上を介して決定される骨の強度の増加である。また別の好ましい実施形態では、WntはWnt1〜Wnt19である。特に好ましい実施形態では、WntはWnt1、Wnt3、Wnt3a、またはWnt10bである。好ましい組成物は、Dkk変調化合物またはDkk−1変調化合物、または1つ以上のDkk相互作用タンパク質もしくはDkk−1相互作用タンパク質、またはそのDkk結合フラグメントを含む。他の好ましいDkk変調組成物は、Dkk抗体もしくはDkk−1抗体、またはDkk相互作用タンパク質もしくはDkk−1相互作用タンパク質に対する抗体を含む。同様に意図されているのは1つ以上のDkk−1相互作用タンパク質をコードする核酸を認識して結合するアンチセンス、siRNA、およびshRNA分子である。本発明はさらにまた該組成物が図6に示したもののようなDkk−1を含むDkkの生物学的に活性もしくはLRP5/LRP6/HBM結合フラグメントまたは図6に示したそれらのフラグメントの模倣物を含むような方法を提供する。Dkk−1変調組成物はさらにまたDkk相互作用もしくはDkk−1相互作用タンパク質のペプチドアプタマー、またはそのようなアプタマーの模倣物を含んでいてよい。本発明の組成物は、Dkk−1を含むDkkのLRP5、LRP6、もしくはHBMへの結合またはDkk−1を含むDkkの例えば図5に示したもののようなDkk相互作用タンパク質への結合を増強または阻害することのどちらかによって活性を変調することができる。本発明はさらにまた該組成物が例えば図示したもののようなDkkまたはDkk−1のアプタマーを含むような方法を提供する。本発明の組成物は例えばOST262(配列番号208)のようなLRP5ペプチドアプタマーを含んでいてよい。本発明の好ましい組成物はさらにまたLRP5抗体を含む。
本発明のまた別の態様は、Dkk活性を変調する、またはLRP5(またはLRP6もしくはHBM)とのDkk相互作用を変調する治療有効量の組成物を投与するステップを含む、被検対象におけるWntシグナル伝達を変調する方法を提供することである。1つの好ましい実施形態では、Dkkタンパク質はDkk−1である。特に好ましい実施形態では、Dkk−1活性は低下させられる。また別の実施形態では、Dkk活性は骨量および/または脂質濃度を変調する。1つの好ましい実施形態では、骨量は増加させられ、および/または脂質濃度が低下させられる。また別の好ましい実施形態では、骨量における変調とは骨折率の減少、部分的骨密度の上昇、容積骨塩密度の上昇、骨梁連結性の上昇、骨梁密度の上昇、皮質密度もしくは皮質厚の上昇、骨径の増加、および無機質骨含量の増加のうちの1つ以上を介して決定される骨の強度の増加である。また別の好ましい実施形態では、WntはWnt1〜Wnt19である。特に好ましい実施形態では、WntはWnt1、Wnt3、Wnt3a、もしくはWnt10bである。好ましいWnt変調組成物は1つ以上のDkk相互作用もしくはDkk−1相互作用タンパク質、またはその生物学的に活性なフラグメント、もしくはLRP6/LRP6/HBM結合フラグメントを含む。同様に意図されているのは1つ以上のDkk相互作用もしくはDkk−1相互作用タンパク質をコードする核酸を認識して結合するアンチセンス、siRNA、およびshRNA分子である。本発明はさらにまた該組成物が図6に示したもののようなDkkもしくはDkk−1の生物学的に活性なフラグメント、もしくはLRP5/LRP6/HBM結合フラグメントまたは図6に示したそれらのフラグメントの模倣物を含むような方法を提供する。Dkk変調組成物はさらにまたDkk相互作用もしくはDkk−1相互作用タンパク質のペプチドアプタマー、またはそのようなアプタマーの模倣物を含むことがある。本発明の組成物は、Dkk−1を含むDkkのLRP5、LRP6、もしくはHBMへの結合またはDkkもしくはDkk−1の例えば図5に示したもののようなDkk相互作用もしくはDkk−1相互作用タンパク質への結合を増強または阻害することのどちらかによって活性を変調することができる。本発明はさらにまた該組成物が例えば図3に示したもの(配列番号171〜188)のようなDkkまたはDkk−1のアプタマー、またはそのようなアプタマーの模倣物を含むような方法を提供する。本発明はさらにまた、該組成物がDkkもしくはDkk−1抗体またはDkk相互作用もしくはDkk−1相互作用タンパク質に対する抗体を含むような方法を提供する。本発明はさらにまた例えば該組成物がOST262(配列番号208)、図4(配列番号189〜192、特にペプチド(配列番号191))および図13(配列番号204〜214を含む)のようなLRP5ペプチドアプタマー、またはそのようなアプタマーの模倣物を含むような方法を提供する。本発明のまた別の好ましい組成物はさらにまたLRP5抗体を含む。
さらに、本発明は被検対象における骨量および/または脂質濃度を変調する方法であって、骨量および/または脂質濃度を変調するために有効な量でDkk活性またはDkkとLRP5との相互作用を変調する組成物を該被検対象に投与するステップを含む方法を提供するが、このとき骨量および/または脂質濃度は変調する必要がある。1つの好ましい実施形態では、Dkkタンパク質はDkk−1である。特に好ましい実施形態では、Dkk−1活性が低下させられる。別の実施形態では、Dkk活性が骨量および/または脂質濃度を変調する。1つの好ましい実施形態では、骨量は増加させられ、および/または脂質濃度が低下させられる。また別の好ましい実施形態では、骨量における変調とは骨折率の減少、部分的骨密度の上昇、容積骨塩密度の上昇、骨梁連結性の上昇、骨梁密度の上昇、皮質密度もしくは皮質厚の上昇、骨径の増加、および無機質骨含量の増加のうちの1つ以上を介して決定される骨の強度の増加である。好ましい骨量および/または脂質濃度を変調する組成物は1つ以上のDkk相互作用もしくはDkk−1相互作用タンパク質、またはその生物学的に活性なフラグメント、もしくはLRP5/LRP6/HBM結合フラグメントを含む。同様に意図されているのは1つ以上のDkk相互作用もしくはDkk−1相互作用タンパク質をコードする核酸を認識して結合するアンチセンス、siRNA、およびshRNA分子である。本発明はさらにまた該組成物が図6に示したもののようなDkk−1を含むDkkの生物学的に活性なフラグメント、もしくはLRP5/LRP6/HBM結合フラグメントまたは図6に示したそれらのフラグメントの模倣物を含むような方法を提供する。Dkk変調組成物はさらにまたDkk相互作用もしくはDkk−1相互作用タンパク質のペプチドアプタマー、またはそのようなアプタマーの模倣物を含むことがある。本発明はさらにまた該組成物が例えば図3に示したもの(配列番号171〜188)のようなDkkもしくはDkk−1のアプタマー、またはそのようなアプタマーの模倣物を含むような方法を提供する。本発明の組成物はさらにまた、Dkk−1を含むDkkのLRP5、LRP6もしくはHBMへの結合、またはDkk−1を含むDkkの例えば図5に示したもののようなDkk相互作用タンパク質への結合を増強または阻害することのどちらかによって活性を変調することができる。本発明はさらにまた該組成物がDkkもしくはDkk−1抗体またはDkk相互作用もしくはDkk−1相互作用タンパク質に対する抗体を含むような方法を提供する。本発明の組成物は例えばOST262(配列番号208)、図4(配列番号189〜192(特にペプチド13(配列番号191))および13(配列番号204〜211を含む)のようなLRP5ペプチドアプタマー、またはそのようなアプタマーの模倣物を含むことがある。本発明の好ましい組成物は、さらにまたLRP5抗体を含む。本発明のまた別の態様は、そのような脂質変調疾患に心臓状態、アテローム性動脈硬化症、家族性リポタンパク質リパーゼ欠損症、家族性アポタンパク質CII欠損症、家族性3型高リポタンパク血症、家族性高コレステロール血症、家族性高トリグリセリド血症、多種リポタンパク型高脂血症、透析および/または糖尿病を原因とする脂質濃度上昇、および病因不明の脂質濃度上昇が含まれることである。
本明細書開示した方法および組成物による治療および/または診断のために意図された骨障害には、骨の発達障害、骨折、年齢関連性骨量減少、軟骨形成異常、薬物誘発性骨障害、骨の高度の代謝回転、高カルシウム血症、骨化過剰症、骨形成不全症、骨軟化症、骨髄炎、骨粗鬆症、ぺージェット病、変形性関節症、およびくる病が含まれる。
本発明のまた別の目的は、DkkとLRP5、LRP6、HBM、またはLRP5、LRP6もしくはHBMのDkk結合フラグメントとの相互作用を変調する化合物または組成物をスクリーニングする方法であって、
(a)DkkまたはそのLRP5/LRP6/HBM結合フラグメントを1つの化合物へ曝露させるステップと、
(b)前記化合物がDkkまたはそのLRP5/LRP6/HBM結合フラグメントへ結合するかどうかを決定するステップと
を含む方法を提供することである。1つの好ましい実施形態では、DkkはDkk−1である。特に好ましい実施形態では、Dkk−1とLRP5/LRP6/HBMとの結合は低下させられる。
本発明のまた別の目的は、DkkとLRP5、LRP6、HBM、またはそのDkk結合フラグメントとの相互作用を変調する化合物または組成物をスクリーニングする方法であって、
(a)DkkまたはそのLRP5/LRP6/HBM結合フラグメントを1つの化合物へ曝露させるステップと、
(b)前記化合物がDkkとLRP5、LRP6、HBM、またはそのLRP5/LRP6/HBMのDkk結合フラグメントとの相互作用を変調するかどうかを決定するステップと
を含む方法を提供することである。1つの好ましい実施形態では、DkkはDkk−1である。特に好ましい実施形態では、Dkk−1とLRP5/LRP6/HBMとの相互作用は低下させられる。
本発明のまた別の目的は、DkkとLRP5、LRP6、HBM、またはDkkとLRP5、LRP6、HBMのDkk結合フラグメントとの相互作用を変調する化合物または組成物をスクリーニングする方法であって、
(a)DkkまたはそのLRP5/LRP6/HBM結合フラグメントを1つの化合物へ曝露させるステップと、
(b)前記化合物がDkkまたはLRP5/LRP6/HBM結合フラグメントに結合するかどうかを決定するステップと、
(c)さらに前記化合物がDkkとLRP5、LRP6、HBM、またはLRP5/LRP6/HBMのDkk結合フラグメントとの相互作用を変調するかどうかを決定するステップと
を含む方法を提供することである。
このような方法の1つの好ましい実施形態では、Dkkまたはその生物学的に活性なフラグメントは固体基質に付着させられる。本発明のまた別の実施形態では、LRP5/LRP6/HBM、またはその生物学的に活性なフラグメント(例えば、リガンド結合ドメイン)が該化合物に曝露させられる。本発明のまた別の態様は、本明細書開示した方法によって同定される化合物および組成物を提供する。本発明の好ましい実施形態は、上記の方法によってスクリーニングされた化合物が図5に示したようなDkk、特にDkk−1と相互作用する1つ以上のタンパク質、またはそのLRP5/LRP6/HBM結合フラグメントであることを提供する。また別の好ましい実施形態は、該化合物が例えば図3に示したもの(配列番号171〜188)のようなDkkもしくはDkk−1ペプチドアプタマー、またはそのようなアプタマーの模倣物を含むことを提供する。該化合物はさらにまたDkk相互作用もしくはDkk−1相互作用タンパク質のペプチドアプタマー、またはそのようなアプタマーの模倣物を含んでいてよい。本方法はさらにまた、該化合物がDkkもしくはDkk−1抗体またはDkk−1相互作用タンパク質に対する抗体を含むことを提供する。本発明はさらにまた、該化合物が例えばOST262(配列番号208)、図4(配列番号189〜192(特にペプチド13(配列番号191))および図13(配列番号204〜214を含む)のようなLRP5ペプチドアプタマー、またはそのようなアプタマーの模倣物を含んでいてよいことを提供する。本発明の好ましい化合物は、さらにまたLRP5抗体を含む。
本発明のまた別の目的は、DkkとDkk相互作用タンパク質との相互作用を変調する化合物または組成物をスクリーニングする方法であって、
(a)Dkk相互作用タンパク質またはそのDkk結合フラグメントを1つの化合物へ曝露させるステップと、
(b)前記化合物がDkk相互作用タンパク質またはそのDkk結合フラグメントへ結合するかどうかを決定するステップと
を含む方法を提供することである。1つの好ましい実施形態では、DkkはDkk−1である。
本発明のまた別の目的は、DkkとDkk相互作用タンパク質との相互作用を変調する化合物または組成物をスクリーニングする方法であって、
(a)1つ以上のDkk相互作用タンパク質またはそのDkk結合フラグメントを1つの化合物へ曝露させるステップと、
(b)前記化合物がDkkとDkk相互作用タンパク質との相互作用を変調するかどうかを決定するステップと
を含む方法を提供することである。
本発明のまた別の目的は、DkkとDkk相互作用タンパク質との相互作用を変調する化合物または組成物をスクリーニングする方法であって、
(a)Dkk相互作用タンパク質またはそのDkk結合フラグメントを1つの化合物へ曝露させるステップと、
(b)前記化合物がDkk相互作用タンパク質またはそのDkk結合フラグメントに結合するかどうかを決定するステップと、
(c)さらに前記化合物がDkkとDkk相互作用タンパク質との相互作用を変調するかどうかを決定するステップと
を含む方法を提供することである。1つの好ましい実施形態では、DkkはDkk−1である。
このような方法の好ましい実施形態では、Dkk相互作用タンパク質、特にDkk−1相互作用タンパク質、またはそのDkk結合フラグメントが固体基質に付着させられる。本発明のまた別の態様は、上記の方法によって同定された化合物および組成物を提供する。1つの好ましい実施形態は、該化合物が例えば図3に示したもの(配列番号171〜188)のようなDkkもしくはDkk−1ペプチドアプタマー、またはそのようなアプタマーの模倣物を含むことを提供する。該化合物は、さらにまたDkk相互作用タンパク質もしくはDkk−1相互作用タンパク質のペプチドアプタマー、またはそのようなアプタマーの模倣物を含むことができる。該化合物は、Dkk相互作用タンパク質またはDkk−1相互作用タンパク質に対する抗体を含んでいてよい。
本発明のまた別の目的は、LRP5/LRP6/HBM変調化合物とそのための医薬上許容される賦形剤および/または担体とを含む骨量障害を治療するための組成物を提供することである。好ましいLRP5(またはLRP6もしくはHBM)変調化合物には、DkkもしくはDkk−1またはそのLRP5/LRP6/HBM結合フラグメントが含まれる。同様に意図されるのはDkk−1を含むDkkに結合するモノクローナル抗体もしくはポリクローナル抗体またはその免疫学的に活性なフラグメントと医薬上許容される賦形剤および/または担体とを含む化合物である。また別の好ましい実施形態は、該変調化合物が1つ以上のDkk相互作用タンパク質もしくはDkk−1相互作用タンパク質、またはその生物学的に活性なフラグメントを含むことを提供する。同様に意図されるのは、Dkk相互作用もしくはDkk−1相互作用タンパク質に結合するモノクローナル抗体もしくはポリクローナル抗体またはその免疫学的に活性なフラグメント、またはその生物学的に活性なフラグメントと、医薬上許容される賦形剤および/または担体とを含む化合物である。また別の実施形態は、該変調化合物がDkk相互作用もしくはDkk−1相互作用タンパク質をコードする核酸を認識して結合するアンチセンス、siRNA、およびshRNA分子を含むことを提供する。別の好ましい実施形態は、該変調化合物はDkkもしくはDkk−1ペプチドアプタマー、DkkもしくはDkk−1ペプチドアプタマーの模倣物、Dkk相互作用もしくはDkk−1相互作用タンパク質のペプチドアプタマー、またはそのようなアプタマーの模倣物を含むことを提供する。また別の実施形態は、該化合物が例えばOST262(配列番号208)、図4(配列番号189〜192(特にペプチド))および図13(配列番号204〜214)のようなLRP5ペプチドアプタマー、またはそのようなアプタマーの模倣物を含むことを提供する。本発明の好ましい化合物はさらにまたLRP5抗体を備えている。
本発明のまた別の目的は、Dkk活性を変調する化合物と医薬上許容される賦形剤を含むそのための担体とを含むDkk媒介性の疾患もしくは状態を治療するための医薬組成物を提供することである。このような組成物には、該化合物がDkk−1を含むDkkに結合するアンチセンス、siRNA、およびshRNA分子を含んでおり、そしてそれによって該化合物がLRP5、LRP6、もしくはHBMと相互作用することを防止する組成物が含まれる。その他のこのような組成物には、Dkk相互作用もしくはDkk−1相互作用タンパク質またはそのDkk結合フラグメントへ結合する例えば図5に示したもの、もしくはそのDkk結合フラグメントのような1つ以上のDkk相互作用タンパク質もしくはDkk−1相互作用タンパク質、またはモノクローナルもしくはポリクローナル抗体、またはその免疫学的に活性なフラグメントが含まれる。その他に意図される組成物には、Dkk相互作用またはDkk−1相互作用タンパク質をコードする核酸を認識して結合するアンチセンス、siRNA、およびshRNA分子が含まれる。その他の意図される組成物には図3(配列番号171〜188)に示したもののようなDkkおよびDkk−1ペプチドアプタマー、そのようなアプタマーの模倣物、Dkk相互作用またはDkk−1相互作用タンパク質のペプチドアプタマー、またはそのようなアプタマーの模倣物が含まれる。その他の意図される組成物は例えばOST262(配列番号208)、図4(配列番号189〜192)(特にペプチド13(配列番号191))および図13(配列番号204〜214を含む)のようなLRP5ペプチドアプタマー、またはそのようなアプタマーの模倣物を含む。本発明のその他の好ましい組成物には、LRP5抗体が含まれる。
本発明のまた別の目的は、例えば図5に示したもののような生物中のDkk相互作用タンパク質もしくはDkk−1相互作用タンパク質をコードする核酸の発現を変調する方法であって、該生物にDkk−1相互作用タンパク質をコードする核酸の発現を変調する有効量の組成物を投与するステップを含む方法を提供することである。1つの好ましい実施形態では、前記組成物はDkk相互作用もしくはDkk−1相互作用タンパク質をコードする核酸を認識して結合するアンチセンス、siRNA、およびshRNA分子を含む。
本発明の1つの態様は、DkkもしくはDkk−1相互作用タンパク質の少なくとも1つの活性を変調する方法であって、DkkもしくはDkk−1相互作用タンパク質の少なくとも1つの活性を変調する有効量の組成物を投与するステップを含む方法を提供する。本発明は、例えば図5に示したもののようなDkk相互作用もしくはDkk−1相互作用タンパク質、またはその生物学的に活性なフラグメントを含む組成物を提供する。この方法のために意図されているその他の物質は、Dkk相互作用もしくはDkk−1相互作用タンパク質をコードする核酸を認識して結合するアンチセンス、siRNA、およびshRNA分子である。本方法はさらに、該組成物がDkkもしくはDkk−1抗体またはDkk相互作用もしくはDkk−1相互作用タンパク質に対する抗体を含むことを提供する。また別の好ましい実施形態では、該組成物はDkkもしくはDkk−1ペプチドアプタマー、DkkもしくはDkk−1ペプチドアプタマーの模倣物、Dkk相互作用もしくはDkk−1相互作用タンパク質のペプチドアプタマー、またはそのようなアプタマーの模倣物を含む。本方法は、本発明の組成物が例えばOST262(配列番号208)、図4(配列番号189〜192)(特に(配列番号191)を含むペプチド)および(配列番号204〜214)を含む図のようなLRP5ペプチドアプタマー、またはそのようなアプタマーの模倣物を含んでいてよいことを提供する。本発明の好ましい組成物はさらにまたLRP5抗体を含む。また別の好ましい実施形態では、変調されたDkk活性は脂質の変調または骨量の変調である。
最終的にLRP5/LRP6/HBMシグナル伝達に影響を及ぼす化合物もしくは組成物を入手するための下記で考察する本発明の試験/スクリーニング実施形態のすべてにおいて、当業者であればHBMは試験サンプルもしくは化合物の不在下でコントロールとして使用できることを認識するであろう。さらに、試験サンプルの化合物がDkkとLRP5/LRP6/HBMとの相互作用を通してWntシグナル伝達に及ぼす作用は必ずしもDkkとLRP5/LRP6/HBMとの関連もしくは相互作用の直接的測定を必要としない。その他の陽性の表現型/活性は、高骨量表現型またはコントロールとしてHBMを使用することによって確立される。
本発明の1つの態様はDkkタンパク質のための結合パートナーを同定するための方法であって、
(a)1つ以上のDkkタンパク質またはそのLRP5/LRP6結合フラグメントを潜在的結合パートナーへ曝露させるステップと、
(b)潜在的結合パートナーがDkkタンパク質またはそのLRP5/LRP6結合フラグメントへ結合するかどうかを決定するステップと
を含む方法を提供する。1つの好ましい実施形態では、DkkはDkk−1である。
本発明のまた別の態様は、Dkk媒介性活性に影響を及ぼす化合物を同定するための方法であって、
(a)(1)調節可能な1つ以上のDkk相互作用タンパク質遺伝子、(2)1つ以上のDkk相互作用タンパク質遺伝子のノックアウトまたは(3)1つ以上のDkk相互作用タンパク質遺伝子のノックインを有する1群のトランスジェニック動物を用意するステップと、
(b)ステップ(a)におけるトランスジェニック動物群に対して各々第2群のコントロール動物を用意するステップと、
(c)トランスジェニック動物群およびコントロール動物群を骨量または脂質濃度を変調する潜在的Dkkを変調する化合物へ曝露させるステップと、
(d)トランスジェニック動物群とコントロール動物群とを比較し、そして該化合物がコントロール動物と比較してトランスジェニック動物における骨量または脂質濃度に及ぼす作用を決定するステップと
を含む方法を提供することである。1つの好ましい実施形態では、DkkはDkk−1である。
本発明のまた別の態様は、1つの化合物がDkk相互作用タンパク質を変調するかどうかを決定するための方法であって、
(a)Dkk相互作用タンパク質またはそのDkk結合フラグメントを前記少なくとも1つの化合物の存在下でDkkのリガンド結合ドメインと混合するステップと、
(b)前記Dkk相互作用タンパク質またはそのDkk結合フラグメントへ結合したDkkの前記結合ドメインの量を前記少なくとも1つの化合物を含まないコントロールと比較して測定するステップと、
(c)該化合物が前記Dkk相互作用タンパク質またはそのDkk結合フラグメントへのDkkの前記結合ドメインの結合の量を減少させるかどうかを決定するステップと
を含む方法を提供することである。1つの好ましい実施形態では、DkkはDkk−1である。
1つの好ましい実施形態では、該結合ドメインが固体基質へ付着させられる。本発明は、さらにまたこの方法によって同定された化合物を提供する。1つの好ましい実施形態では、本発明はDkk相互作用もしくはDkk−1相互作用タンパク質が抗体によって検出されることを提供する。また別の好ましい実施形態では、固体基質はマイクロアレイである。また別の好ましい実施形態は、Dkkおよび/またはDkk相互作用タンパク質のリガンド結合ドメインがペプチドもしくはタンパク質へ融合または共役結合させられていることを提供する。本発明はさらにまた該化合物にはDkkおよびDkk−1ペプチドアプタマー、DkkおよびDkk−1ペプチドアプタマーの模倣物、DkkおよびDkk−1相互作用タンパク質ペプチドアプタマー、またはそのようなアプタマーの模倣物が含まれることを提供する。
本発明の1つの態様は、1つ以上のDkk−1相互作用タンパク質の1つ以上のポリペプチド配列、またはその生物学的に活性なフラグメント、1つ以上のDkkタンパク質、またはその生物学的に活性なフラグメント、またはLRP5/LRP6/HBMポリペプチド配列またはその生物学的に活性なフラグメント(例えば、リガンド結合ドメイン)と医薬上許容される賦形剤および/または担体とを含む組成物を提供する。本発明のまた別の態様は、該組成物がDkkもしくはDkk−1抗体またはDkk相互作用もしくはDkk−1相互作用タンパク質に対する抗体および医薬上許容される賦形剤を含むことを提供する。本発明の組成物は、例えばOST262(配列番号208)、図4(配列番号189〜192)(特にペプチド13(配列番号191))および図13(配列番号204〜214を含む)のようなLRP5ペプチドアプタマー、またはそのようなアプタマーの模倣物を含んでいてよいことを提供する。本発明の好ましい組成物はさらにまた例えば図3に示したもの(配列番号171〜188)のようなDkkペプチドアプタマーを含んでいてよい。本発明の好ましい組成物はさらにまたLRP5抗体を含む。
本発明のまた別の態様は、以下の群:ヒトDkk−1のAsn34−His266(配列番号110)、Asn34−Cys245(配列番号111)、Asn34−Lys182(配列番号112)、Cys97−His266(配列番号113)、Val139−His266(配列番号114)、Gly183−His266(配列番号115)、Cys97−Cys245(配列番号116)、またはVal139−Cys245(配列番号117)から選択されるDkk−1アミノ酸配列を認識してそれを結合する抗体または免疫学的に活性な抗体フラグメントを提供することである。また別の抗体が図3(配列番号171〜188)および図4(配列番号189〜192)に示した配列のいずれかに結合していてよい。本発明のまた別の態様は、以下の1つ以上のアミノ酸配列:ペプチド1−GNKYQTIDNYQPYPC(配列番号118)、ペプチド2−LDGYSRRTTLSSKMYHTKGQEG(配列番号119)、ペプチド3−RIQKDHHQASNSSRLHTCQRH(配列番号120)、ペプチド4−RGEIEETITESFGND(配列番号121)、およびペプチド5−EIFQRCYCGEGLSCRIQKD(配列番号122)に対するポリクローナル抗体を提供することである。
本発明のまた別の目的は、例えばDkk−1のようなDkkタンパク質、Dkk相互作用もしくはDkk−1相互作用タンパク質アプタマーをコードする核酸、またはDkkもしくはDkk−1またはDkk相互作用もしくはDkk−1相互作用タンパク質アミノ酸配列をコードする核酸とインフレームであるGal4もしくはLex4の活性化ドメインとインフレームである足場タンパク質をコードする核酸を含むLRP5アプタマーを提供することである。好ましくは、足場タンパク質はチオレドキシン(trxA)、スタフィロコッカス(Staphylococcus)もしくはM13からのS1ヌクレアーゼである。その他の好ましい実施形態には、図6から選択されたDkk−1アミノ酸配列が含まれる。
本発明のまた別の態様は、図3(配列番号171〜188)、図4(配列番号189〜192)、または図5に同定されたDkk−1相互作用タンパク質のポリペプチド配列と医薬上許容される賦形剤および/または担体とを含む組成物を提供することである。
本発明のまた別の態様には、それらの自然環境における細胞外相互作用を介して結合するペプチド結合対の第1のペプチドおよび第2のペプチドの結合相互作用上の化合物の変調活性を検出する方法であって、
(i)少なくとも1つの真核細胞を培養するステップであって、このとき真核細胞が
a)第1のペプチドまたは転写活性化タンパク質のDNA結合ドメインへ結合したそのセグメントを含む第1の異種融合タンパク質をコードするヌクレオチド配列と、
b)第2のペプチドまたは転写活性化タンパク質のDNA結合ドメインへ結合したそのセグメントを含む第2の異種融合タンパク質をコードするヌクレオチド配列と、
(このとき第1のペプチドまたはそのセグメントおよび第2のペプチドまたはそのセグメントの結合は転写活性化タンパク質を再構成する)、
c)再構成された転写活性化タンパク質の陽性転写制御下で活性化されたレポーターエレメントであって、該レポーターエレメントの発現が選択された表現型を作り出すレポーターエレメントとを含む
ことを特徴とするステップと、
(ii)選択された表現型を検出するために適した条件下で1つの化合物を真核細胞と一緒に培養するステップと、
(iii)該化合物が選択された表現型を作り出すレポーターエレメントの発現に影響を及ぼすかどうかを決定することによって該化合物がペプチド結合対の結合相互作用に影響を及ぼす能力を検出するステップと
(このとき(1)前記第1のペプチドはDkkペプチドであり、第2のペプチドはLRP5、HBM、LRP6、およびLRP5/LRP6/HBMのDkk結合部分から選択されるペプチドである、または(2)前記第1のペプチドはDkk相互作用タンパク質またはそのDkk結合フラグメントであり、前記第2のペプチドはDkkペプチドである)、を含む方法が含まれる。
1つの実施形態では、真核細胞は酵母細胞である。1つの好ましい実施形態では、酵母細胞はサッカロミセスである。特に好ましい実施形態では、サッカロミセス細胞はサッカロミセス・セレヴィシエである。本発明はさらにまた、該化合物がDkk相互作用もしくはDkk−1相互作用タンパク質、またはその生物学的に活性なフラグメントを含んでいてよいことを提供する。1つの実施形態では、Dkk相互作用もしくはDkk−1相互作用タンパク質、またはそのDkk結合フラグメントがアッセイへ直接に添加される。また別の実施形態では、Dkk相互作用もしくはDkk−1相互作用タンパク質、またはそのDkk結合フラグメントは第1および第2のペプチドに加えて真核細胞によって組換え的に発現させられる。1つの好ましい実施形態では、該化合物はDkkもしくはDkk−1アプタマー、DkkもしくはDkk−1ペプチドアプタマーの模倣物、Dkk相互作用もしくはDkk−1相互作用タンパク質アプタマー、またはDkk−1相互作用タンパク質アプタマーの模倣物を含む。その他の好ましい実施形態は、該化合物が例えばOST262(配列番号208)、図4(配列番号189〜192)(特にペプチド13(配列番号191))および図13(配列番号204〜214を含む)のようなLRP5ペプチドアプタマー、またはそのようなアプタマーの模倣物を含むことを提供する。あるいはまた、本発明はさらに該化合物がLRP5抗体またはDkk抗体を含んでよいことを提供する。また別の実施形態では、酵母細胞はさらに転写活性化タンパク質のDNA結合ドメインをコードするヌクレオチド配列、転写活性化タンパク質の転写活性化ドメインをコードするヌクレオチド配列、およびレポーターエレメントをコードするヌクレオチド配列からなる群から選択された少なくとも1つの内因性ヌクレオチド配列を含むが、このとき少なくとも1つの内因性ヌクレオチド配列は突然変異または欠失によって不活化されている。また別の実施形態では、ペプチド結合対はリガンドおよびそれに該リガンドが結合する受容体を含む。1つの実施形態では、転写活性化タンパク質はGal4、Gcn4、Hap1、Adr1、Swi5、Ste12、Mcm1、Yap1、Ace1、Ppr1、Arg81、Lac9、Qa1F、VP16、または哺乳動物核受容体である。また別の実施形態では、異種融合タンパク質の少なくとも1つが自己複製プラスミドから発現させられる。1つの実施形態では、DNA結合ドメインは転写活性化タンパク質の異種DNA結合ドメインを含む。1つの好ましい実施形態では、DNA結合タンパク質は哺乳動物ステロイド受容体および細菌LexAタンパク質からなる群から選択される。また別の実施形態では、レポーターエレメントはlacZ、ルシフェラーゼをコードするポリヌクレオチド、緑色蛍光タンパク質(GFP)をコードするポリヌクレオチド、およびクロラムフェニコール・アセチルトランスフェラーゼをコードするポリヌクレオチドからなる群から選択される。特に好ましい実施形態では、レポーターエレメントはlacZである。
本発明はさらにまた1つの化合物がペプチド結合対の第1のペプチドおよび第2のペプチドの結合相互作用を変調する活性を検出するためのレスキュースクリーニングであって、
(i)少なくとも1つの酵母細胞を培養するステップであって、このとき酵母細胞が
a)第1のペプチドまたは転写活性化タンパク質のDNA結合ドメインへ結合したそのセグメントを含む第1の異種融合タンパク質をコードするヌクレオチド配列と、
b)第2のペプチドまたは転写活性化タンパク質の転写活性ドメインへ結合したそのセグメントを含む第2の異種融合タンパク質をコードするヌクレオチド配列と、
(このとき第1のペプチドまたはそのセグメントおよび第2のペプチドまたはそのセグメントの結合は転写活性化タンパク質を再構成する)、
c)再構成された転写活性化タンパク質の陽性転写制御下で活性化されたレポーターエレメントであって、該レポーター遺伝子の発現が選択された表現型が現れるのを防止するレポーターエレメントと、を含むステップと、
(ii)選択された表現型を検出するために適した条件下で1つの化合物を酵母細胞と一緒に培養するステップと、
(iii)該化合物が選択された表現型が現れるのを防止するレポーターエレメントの発現に影響を及ぼすかどうかを決定することによって該化合物がペプチド結合対の結合相互作用に影響を及ぼす能力を検出するステップと
(このとき前記第1のペプチドはDkkペプチドであり、第2のペプチドはLRP5、HBM、LRP6、およびLRP5/LRP6/HBMのDkk結合フラグメントである)、を含む方法が含まれるレスキュースクリーニングを提供する。
1つの好ましい実施形態では、本発明は酵母細胞がサッカロミセス(Saccharomyces)であることを提供する。特に好ましい実施形態では、サッカロミセス細胞はサッカロミセス・セレヴィシエ(Saccharomyces cerevisiae)である。1つの実施形態では、該化合物は1つ以上のDkk相互作用もしくはDkk−1相互作用タンパク質、またはそのDkk結合フラグメントを含む。本発明で使用する化合物は、例えばOST262(配列番号208)、図4(配列番号189〜192)(特にペプチド13(配列番号191))および図13(配列番号204〜214を含む)のようなLRP5ペプチドアプタマー、またはそのようなアプタマーの模倣物を含むことができる。あるいはまた、該化合物はLRP5抗体またはDkk抗体を含んでいてよい。また別の実施形態では、該酵母細胞はさらに転写活性化タンパク質のDNA結合ドメインをコードするヌクレオチド配列、転写活性化タンパク質の転写活性化ドメインをコードするヌクレオチド配列、およびレポーター遺伝子をコードするヌクレオチド配列からなる群から選択された少なくとも1つの内因性ヌクレオチド配列を含むが、このとき少なくとも1つの内因性ヌクレオチド配列は突然変異または欠失によって不活化されている。また別の実施形態では、転写活性化タンパク質はGal4、Gcn4、Hap1、Adr1、Swi5、Ste12、Mcm1、Yap1、Ace1、Ppr1、Arg81、Lac9、Qa1F、VP16、または哺乳動物核受容体である。1つの実施形態では、異種融合タンパク質の少なくとも1つは自己複製プラスミドから発現させられる。また別の実施形態では、DNA結合ドメインは転写活性化タンパク質の異種DNA結合ドメインである。
本発明はさらにまた1つの化合物がペプチド結合対の第1のペプチドおよび第2のペプチドの結合相互作用に及ぼす変調活性を検出するためのレスキュースクリーニングであって、
(i)少なくとも1つの酵母細胞を培養するステップであって、このとき酵母細胞が、
a)第1のペプチドまたは転写活性化タンパク質のDNA結合ドメインへ結合したそのセグメントを含む第1の異種融合タンパク質をコードするヌクレオチド配列と、
b)第2のペプチドまたは転写活性化タンパク質の転写活性化ドメインへ結合したそのセグメントを含む第2の異種融合タンパク質をコードするヌクレオチド配列と、
(このとき第1のペプチドまたはそのセグメントおよび第2のペプチドまたはそのセグメントの結合は転写活性化タンパク質を再構成する)、
c)再構成された転写活性化タンパク質の陽性転写制御下で活性化されたレポーターエレメントであって、該レポーターエレメントの発現が選択された表現型が現れるのを防止するレポーターエレメントと、を含むステップと、
(ii)選択された表現型を検出するために適した条件下で1つの化合物を酵母細胞と一緒に培養するステップと、
(iii)該化合物が選択された表現型が現れるのを防止するレポーターエレメントの発現に影響を及ぼすかどうかを決定することによって該化合物がペプチド結合対の結合相互作用に影響を及ぼす能力を検出するステップと、
(このとき前記第1のペプチドはDkk相互作用もしくはDkk−1相互作用タンパク質ペプチドであり、第2のペプチドはDkkもしくはDkk−1ペプチドである)、
を含む方法が含まれるレスキュースクリーニングを提供する。
レスキュースクリーニングの好ましい実施形態では、酵母細胞はサッカロミセスである。特に好ましい実施形態では、サッカロミセス細胞はサッカロミセス・セレヴィシエである。また別の実施形態では、酵母細胞はさらにまた転写活性化タンパク質のDNA結合ドメインをコードするヌクレオチド配列、転写活性化タンパク質の転写活性化ドメインをコードするヌクレオチド配列、およびレポーター遺伝子をコードするヌクレオチド配列からなる群から選択された少なくとも1つの内因性ヌクレオチド配列を含むが、このとき少なくとも1つの内因性ヌクレオチド配列は突然変異または欠失によって不活化されている。1つの実施形態では、転写活性化タンパク質はGal4、Gcn4、Hap1、Adr1、Swi5、Ste12、Mcm1、Yap1、Ace1、Ppr1、Arg81、Lac9、Qa1F、VP16、または哺乳動物核受容体である。レスキュースクリーニングのまた別の実施形態では、異種融合タンパク質の少なくとも1つは自己複製プラスミドから発現させられる。また別の実施形態では、DNA結合ドメインは転写活性化タンパク質の異種DNA結合ドメインである。
本発明はさらにまたDkk活性を変調する潜在的化合物を同定するための方法であって、
a)1つの化合物の存在下および不在下において1つ以上のDkk相互作用タンパク質、またはそのDkk結合フラグメントと、DkkまたはそのLRP5/LRP6/HBM結合フラグメントとの結合に及ぼす影響を測定するステップと、
b)1つ以上のDkk相互作用タンパク質またはそのDkk結合フラグメントとDkkまたはそのLRP5/LRP6/HBMフラグメントとの間の結合を変調する化合物を潜在的Dkkを変調する化合物であると同定するステップと
を含む方法を提供する。1つの好ましい実施形態では、DkkはDkk−1である。
本発明はさらにまた図3のDkkペプチドアプタマー(配列番号171〜188)のいずれかを提供する。本発明はさらにまた図4のLRPペプチドアプタマー(配列番号189〜192)のいずれかを提供する。
本発明のまた別の態様は、DkkとWntシグナル伝達経路との相互作用を変調する物質を同定する方法であって、
(a)DkkをコードするmRNAおよび1種の物質をアフリカツメガエル(Xenopus)割球内へ注入するステップと、
(b)体軸重複を評価する、またはマーカー遺伝子発現を解析するステップと;および
(c)体軸重複またはマーカー遺伝子発現における変化を引き出す物質を、DkkとWntシグナル伝達経路との相互作用を変調する物質であると同定するステップと
を含む方法を提供する。このとき該物質は特にDkk相互作用タンパク質をコードするmRNA、そのフラグメント、siRNA、shRNA、アンチセンスヌクレオチド、および抗体から選択することができる。1つの好ましい実施形態では、DkkはDkk−1である。また別の実施形態では、HBM、LRP5/6、いずれかのWnt(Wnt1〜Wnt19、特にWnt1、Wnt3、Wnt3a、およびWnt10bを含む)、Wntアンタゴニスト、またはこれらの組み合わせのmRNAがアフリカツメガエル割球内に共注入される。また別の実施形態では、解析されるマーカー遺伝子はSiamois、Xnr3、slug、Xbra、HNK−1、endodermin、Xlhbox8、BMP2、BMP4、XLRP6、EF−1またはODCを含むことができよう。
本発明はDkkとWntシグナル伝達経路との相互作用を変調する物質を同定するための方法であって、
(a)Dkkおよび潜在的Dkk相互作用タンパク質をコードする構築物、そのmRNAフラグメント、siRNA、shRNA、もしくはアンチセンス、をLRP5/HBM/LRP6/Dkk/Dkk相互作用タンパク質に対する抗体を用いて細胞をトランスフェクトするステップと、
(b)Wnt反応性プロモーターへ連結したレポーター遺伝子の発現における変化を評価するステップと、
(c)Dkk構築物単独を用いてトランスフェクトされた細胞と比較してレポーター遺伝子発現を変化させるいずれかのタンパク質をDkk相互作用タンパク質であると同定するステップと
を含む方法を提供する。また別の好ましい実施形態では、該細胞はHOB−03−CE6、HEK293、またはU2OS細胞であってよい。
また別の実施形態では、Wnt反応性プロモーターはTCFまたはLEFである。その他の好ましい実施形態では、該細胞はCMV β−ガラクトシダーゼまたはtk−Renillaを用いて共トランスフェクトされる。
本発明はさらにまた、アミノ酸配列MYWTDWVETPRIE(配列番号123)、MYWTDWGETPRIE(配列番号124)、KRTGGKREILSA(配列番号125)、ERVEKTTGDKRTRIQGR(配列番号126)、またはKQQCDSFPDCIDGSDE(配列番号127)の1つ以上のペプチドに対するLRP5/HBMモノクローナルまたはポリクローナル抗体を提供する。
さらに、本発明はDkkおよびLRP5/LRP6/HBM相互作用を変調する化合物を同定するための方法であって、
(a)LRP5/LRP6/HBMを固体表面へ固定化するステップと、
(b)分泌Dkkタンパク質もしくは分泌エピトープタグDkkおよび試験化合物を用いて固体表面を処理するステップと、
(c)Dkkもしくはエピトープタグに対する抗体を使用して、またはエピトープタグの活性を直接に測定するステップによって、該化合物がDkkとLRP5/LRP6/HBMとの間の結合を変調するかどうかを決定するステップと
を含む方法を提供する。
1つの実施形態では、DkkはDkk−1である。1つの好ましい実施形態では、エピトープタグはアルカリホスファターゼ、ヒスチジン、mycまたはV5タグである。
本発明のまた別の実施形態は、DkkとLRP5/LRP6/HBMの相互作用を変調する化合物を同定するための方法であって、
(a)第1蛍光タグを使用してLRP5、LRP6、もしくはHBM蛍光融合タンパク質を作製するステップと、
(b)第2蛍光タグを含むDkk融合タンパク質を作製するステップと、
(c)試験化合物を添加するステップと、
(d)蛍光共鳴エネルギー転移(FRET)または生物発光共鳴エネルギー転移(BRET)を使用して該化合物がDkkとLRP5/LRP6/HBMの相互作用を変調するかどうかを決定するために蛍光タグ放出の比率における変化を評価するステップと
を含む方法を提供する。1つの好ましい実施形態では、DkkはDkk−1である。
本発明はさらに、被検対象における低もしくは高骨量および/または低もしくは高脂質濃度を診断する方法であって、該被検対象におけるDkk、LRP5、LRP6、HBMまたはHBM様変異体の発現を検査し、そして該被検対象が(a)高骨量もしくは低骨量および/または(b)高脂質もしくは低脂質濃度を有しているかどうかを決定するためにDkk、LRP5、LRP6、HBMまたはHBM様変異体が過剰もしくは過小発現しているかどうかを決定するステップを含む方法を提供する。
本発明はさらに、組織特異的方法でDkkがノックアウトされているトランスジェニック動物を提供する。1つの好ましい実施形態では、DkkはDkk−1である。1つの好ましい実施形態では、組織特異性は骨組織である。また別の実施形態では、組織特異性は肝臓または脂質代謝を変調することに関わるその他の組織もしくは細胞または癌組織である。
本発明はさらに、DkkとLRP5、LRP6、もしくはHBMとの相互作用を変調する化合物をスクリーニングする方法であって:
(a)DkkとLRP5、LRP6、もしくはHBM、またはLRP5、LRP6、もしくはHBMのDkk結合フラグメントを1つの化合物へ曝露させるステップと;および
(b)前記化合物がDkkとLRP5、LRP6、もしくはHBM、またはLRP5、LRP6、もしくはHBMのDkk結合フラグメントへ結合したかどうかを決定し、そして前記化合物がDkkとLRP5、LRP6、もしくはHBMとの相互作用を変調するかどうかを決定するステップと、を含む方法を提供する。
1つの実施形態では、DkkはDkk−1である。1つの好ましい実施形態では、該化合物はLRP5ペプチドアプタマーを含む。他の好ましい組成物には、OST262(配列番号208)、図4(配列番号189〜192)(特にペプチド13(配列番号191)を含む)および図13(配列番号204〜214)のペプチドアプタマー、またはそのようなアプタマーの模倣物、およびLRP5抗体が含まれる。
本発明はさらにまた、DkkとLRP5/LRP6/HBMとの相互作用を変調する化合物を同定する方法であって、
(a)LRP5/LRP6/HBMを固体表面へ不動化するステップと、
(b)分泌Dkkタンパク質もしくは分泌エピトープタグDkkおよび試験化合物を用いて固体表面を処理するステップと、
(c)Dkkに対する抗体もしくはエピトープタグを使用して、または1つのエピトープタグの活性を直接的に測定することによって該化合物がDkkとLRP5/LRP6/HBM相互との結合を変調するかどうかを決定するステップと
を含む方法を提供する。1つの好ましい実施形態では、該エピトープタグはアルカリホスファターゼ、ヒスチジン、mycまたはV5タグである。1つの好ましい実施形態では、DkkはDkk−1である。
本発明はさらに、DkkとWntシグナル伝達経路との相互作用を変調する化合物を同定するための方法であって、
(a)DkkおよびWntタンパク質を含有する構築物を用いて細胞をトランスフェクトするステップと、
(b)Wnt反応性プロモーターへ連結したレポーターエレメントの発現における変化を評価するステップと、
(c)Dkk構築物単独を用いてトランスフェクトされた細胞と比較してレポーター遺伝子発現を変化させるいずれかの化合物をDkk/Wnt相互作用を変調する化合物であると同定するステップと
を含む方法を提供する。
1つの実施形態では、DkkはDkk−1である。また別の実施形態では、WntはWnt1〜Wnt19である。1つの好ましい実施形態では、WntはWnt1、Wnt3、Wnt3a、またはWnt10bである。特に好ましい実施形態では、Wnt構築物はWnt3aを含有する。別の特に好ましい実施形態では、Wnt構築物はWnt1を含有する。また別の好ましい実施形態では、Wnt構築物は正規Wnt経路を通してシグナル伝達するWntをコードする。特に好ましい実施形態では、Wnt3aおよびWnt1構築物はどちらも細胞内へ共トランスフェクトされる。また別の実施形態では、細胞はU2−OS、HOB−03−CE6、またはHEK293細胞であってよい。また別の実施形態では、使用されるレポーターエレメントはTCF−ルシフェラーゼ、tk−Renilla、またはその組み合わせである。
本発明はさらに、哺乳動物におけるDkk−媒介性活性を変調する化合物を試験する方法であって、
(a)(1)調節可能な1つ以上のDkk遺伝子、(2)Dkk遺伝子のノックアウト、もしくは(3)1つ以上のDkk遺伝子のノックインを有する1群のトランスジェニック動物を提供するステップと、
(b)ステップ(a)におけるトランスジェニック動物群に対して各々第2群のコントロール動物を提供するステップと、
(c)骨量または脂質濃度を変調する潜在的Dkkを変調する化合物へトランスジェニック動物群およびコントロール動物群を曝露させるステップと、
(d)トランスジェニック動物とコントロール動物群とを比較し、そしてコントロール動物群とを比較してトランスジェニック動物における骨量または脂質濃度に該化合物が及ぼす作用を決定するステップと
を含む方法を提供する。1つの好ましい実施形態では、DkkはDkk−1である。
本発明はさらに、HBM生物学的活性を示す、すなわち「HBM様」であるLRP5の変異体を提供する。好ましい実施形態では、LRP5の変異体G171F、M282V、G171K、G171Q、A65V、G171V、G171I、およびA214Vが提供される。本発明はさらに上記の方法におけるこれらの変異体のいずれかの使用を提供する。
1.用語の定義
一般に、本出願における用語は、それらの用語が当分野で理解されている方法に一致して使用した。明細書およびクレームを理解する際に役立つように、以下の定義を提供する。
「遺伝子」とは、そのテンプレートまたはメッセンジャーRNAを通して特定ペプチドに特徴的なアミノ酸の配列をコードするDNA配列を意味する。用語「遺伝子」には介在する非コード領域、ならびに調節領域が含まれ、さらに5’末端および3’末端が含まれることがある。
「核酸」は、DNA、RNA(例えば、mRNA、tRNA、siRNA)、cDNA、組換えDNA(rDNA)、rRNA、アンチセンス核酸、オリゴヌクレオチド、オリゴマー、およびポリヌクレオチドを含むがそれらに限定されない一本鎖および二本鎖核酸を含むことが意図されている。この用語には、さらにまたRNAおよび/またはDNAの三本鎖領域または二本鎖RNA/DNAハイブリッドのようなハイブリッドが含まれることもある。この用語は、さらにまた例えばビオチン化核酸、トリチル化核酸、蛍光体標識核酸、イノシン等を含むがそれらに限定されない修飾核酸を含むことも意図されている。
「遺伝子配列」とは、1個の遺伝子を含む非転写もしくは非翻訳配列を含有するDNAを含む核酸分子を意味する。この用語はさらにまた、同一DNA分子上に存在する1つ以上の遺伝子、1つ以上の遺伝子フラグメント、1つ以上の非転写配列もしくは非翻訳配列のいずれかの組み合わせを含むことも意図されている。
本発明の核酸配列は、DNA、cDNA、合成DNA、合成RNAまたはそれらの組み合わせを含む様々な起源から引き出されてよい。このような配列は、天然型イントロンを含んでも含まなくてもよいゲノムDNAを含んでいてよい。さらに、このようなゲノムDNAはプロモーター領域および/またはポリ(A)配列と結び付けて入手することができる。これらの配列、ゲノムDNAもしくはcDNAは数種の方法のうちのいずれかで入手することができる。ゲノムDNAは、当分野でよく知られている手段によって適切な細胞から抽出かつ精製することができる。あるいはまた、mRNAを細胞から単離して、逆転写またはその他の手段によってcDNAを作製するために使用することもできる。
「cDNA」とは、RNA依存性DNAポリメラーゼ(逆転写酵素)の作用によってRNAテンプレートから生成した相補的もしくはコピーDNAを意味する。したがって「cDNAクローン」はクローニングベクターで運ばれた、またはPCR増幅された当該RNA分子にそのうちの1本の鎖が相補的である二本鎖DNA配列を意味する。cDNAはさらにまた、逆転写酵素による第1鎖合成後に一本鎖化することもできる。この形ではcDNAは有用なPCRテンプレートであり、クローニングベクターで運ばれる必要がない。この用語には、介在配列が取り除かれている遺伝子が含まれる。したがって、時々一般的に使用されるように、用語「遺伝子」はさらにcDNAおよびcDNAクローンを含む核酸分子を含んでいてよい。
「組換えDNA」とは、インビトロでcDNAもしくはゲノムDNA配列をスプライシングすることによって、または例えばPCR突然変異誘発のような方法によって配列を変化させることによって工学的に作製された分子を意味する。
「クローニング」とは、特定遺伝子またはその他のDNA配列をベクター分子内に挿入するためのインビトロ組換え技術の使用を意味する。所望の遺伝子をクローン化するのに成功するためには、DNAフラグメントを生成させる方法、該フラグメントをベクター分子へ結合させる方法、複合DNA分子をその中で複製できる宿主細胞内へ導入する方法、およびレシピエント宿主細胞の中から標的遺伝子を有するクローンを選択する方法を使用することが必要である。
「cDNAライブラリー」とは、一緒に特定組織もしくは細胞源内で発現した遺伝子の全もしくは部分範囲を含むcDNA挿入断片を含有する組換えDNA分子のコレクションを意味する。このようなcDNAライブラリーは当業者によく知られている方法によって作製することができ、例えばCowell and Austin,「cDNAライブラリープロトコール(cDNA Library Protocols)」,Methods in Molecular Biology(1997)によって記載されている。
「クローニングビヒクル」とは、宿主細胞中で複製することができるプラスミドもしくはファージDNAまたはその他のDNA配列を意味する。この用語には、さらにまた例えばBACsおよびYACsのような人工染色体を含むことができる。クローニングビヒクルは、そこで形質転換細胞の同定において使用するために適合するマーカーを含むことのあるDNAの本質的な生物学的機能の消失を伴わずにそのようなDNA配列を確定方法で切断できる1つ以上のエンドヌクレアーゼ認識部位を特徴とする。
「発現」とは、遺伝子配列の転写および、例えば遺伝子の最終産物を作製するための結果として生じたmRNAの翻訳のような引き続いての処理ステップを含むプロセスを意味する。最終産物は、タンパク質(例えば、酵素もしくは受容体)または核酸(例えば、tRNA、アンチセンスRNA、またはその他の調節因子)であってよい。用語「発現制御配列」とは、それらの遺伝子と機能的に連結したときに構造的遺伝子の発現を制御または調節するヌクレオチドの配列を意味する。これらには、例えばlac系、trp系、ファージλの主要オペレーターおよびプロモーター領域、fdコートタンパク質の制御領域および原核もしくは真核細胞中の遺伝子発現を制御するために知られているその他の配列が含まれる。発現制御配列は、ベクターが原核宿主もしくは真核宿主中の機能的に連結した遺伝子を発現させるように構成されているかどうかに依存して変動し、そして例えばエンハンサーエレメント、終結配列、組織特異的エレメントおよび/または翻訳開始および終結部位のような転写エレメントを含んでいてよい。
「発現ビヒクル」とは、クローニングビヒクルに類似するが、宿主内へ形質転換された後にその中にクローン化されている遺伝子を発現させることのできるビヒクルもしくはベクターを意味する。クローン化遺伝子は、通常は発現制御配列の制御下に置かれて(すなわち、機能的に連結されて)いる。
「オペレーター」とは、特異的リプレッサーと相互作用して、それにより1つ以上の隣接遺伝子の転写を制御することのできるDNA配列を意味する。
「プロモーター」とは、RNAポリメラーゼが認識することのできるDNA配列を意味する。このような配列が存在すると、RNAポリメラーゼは機能的に連結した配列に結合してその転写を開始することができる。
「プロモーター領域」は、プロモーターならびに転写開始のために必要な可能性があるその他の遺伝子配列を含むことが意図されている。プロモーター領域が存在すると、機能的に連結した遺伝子配列の発現を十分に惹起することができる。用語「プロモーター」は、当分野においてときどき一般的にプロモーター領域を示すために使用されている。当分野では一定の細胞型における遺伝子の発現を指令する多数の様々なプロモーターが知られている。組織特異的プロモーターは、一定の組織タイプの細胞中でより大きな(またはより低い)発現レベルを惹起する核酸配列を含むことができる。
「機能的に連結した」とは、プロモーターが遺伝子の発現の開始を制御することを意味する。プロモーターは、宿主細胞内に導入されると該プロモーターが1つ以上のRNA種内への1つ以上の隣接DNA配列の転写を決定する場合に、近接DNAの配列へ機能的に連結されている。プロモーターは、該プロモーターがそのDNA配列の転写を開始することができる場合はDNA配列に機能的に連結している。
「原核生物」とは、細菌を含む真の核を有していないすべての生物を意味する。
「真核生物」とは、哺乳動物細胞を含む真の核を有する生物および細胞を意味する。
「宿主」には、例えば酵母や糸状菌、ならびに植物および動物細胞のような原核生物および真核生物が含まれる。この用語には、複製可能な発現ビヒクルのレシピエントである生物または細胞が含まれる。
用語「動物」は、ここではヒトを除くすべての脊椎動物を含むように使用する。動物にはさらにまた、胚形成期および胎生期を含む全発生期にある個体動物が含まれる。好ましい動物には、例えば鳥類、齧歯類(例えば、マウス、ウサギ、ラット、チンチラ、モルモット、ハムスター等)、および哺乳類のような高等真核生物が含まれる。好ましい哺乳動物には、ウシ、ウマ、ネコ、イヌ、ヒツジ、ヤギ、ブタ、バッファロー、ヒト、および霊長類が含まれる。
「トランスジェニック動物」は、例えば組換えウイルスベクター(例えば、アデノウイルス、レトロウイルス、ヘルペスウイルス、アデノ随伴ウイルス、レンチウイルス)を用いてのマイクロインジェクションもしくは感染によるような、細胞以下レベルでの操作された先祖から、直接的もしくは間接的に、故意による遺伝操作によって、または遺伝によって受容した遺伝情報を持っている1つ以上の細胞を含有する動物である。導入されたこのDNA分子は、染色体内に統合されてよい、または染色体外複製DNAであってよい。
ここで使用する「胚性幹細胞」もしくは「ES細胞」は、通常はそれらが未分化細胞であることを意味する多分化性である胚に由来する細胞もしくは細胞系である。これらの細胞は、さらにまた相同組換えによって外来性DNAを取り込み、そして引き続いて宿主胚内に組み込まれると身体内のいずれかの組織内に発達することができる。当分野においてよく知られている方法によって胚組織以外の源から多分化能細胞を単離することは可能である。
マウスにおける胚性幹細胞によって、研究者らはトランスジェニック細胞を選択して遺伝子ターゲティングを実施することが可能になってきた。これは、他のトランスジェニック技術を用いた場合より多数の遺伝子操作を可能にする。例えば、マウスES細胞はインビトロでコロニーとして相当容易に増殖させることができる。これらの細胞は標準方法および抗生物質耐性によってクローン的に選択したトランスジェニック細胞によってトランスフェクトすることができる。例えば、Pinkert(編集),「トランスジェニック動物テクノロジー:実験ハンドブック(Transgenic Animal Technology:A Laboratory Handbook)」,Academic Press Inc.,New York,pp.115−146に掲載されたDoetschmanら,1994,「胚性幹細胞中の遺伝子導入(Gene transfer in embryonic stem cells)」を参照。さらに、このプロセスの効率は、相同組換え体のための第2選択を許容するように十分なトランスジェニックコロニー(数百個〜数千個)を作製できるような効率である。マウスES細胞はその後正常宿主胚と結合させることができ、そしてそれらはそれらの潜在力を維持しているので、結果として生じるキメラ動物において生殖細胞を含むすべての組織内に発達させることができる。トランスジェニック修飾は、その後次世代へ伝達することができる。
早期着床前マウス胚から胚性幹(ES)細胞系をインビトロで誘導するための方法はよく知られている。例えば、Evansら,1981 Nature29:154−6およびMartin,1981,Proc.Nat.Acad.Sci.USA,78:7634−8を参照。ES細胞は、繊維芽細胞のフィーダー層または分化阻害源が存在することを前提に、未分化状態で継代させることができる。
用語「体細胞」とは、***もしくは卵細胞ではない、または***もしくは卵細胞になることのできるあらゆる動物もしくはヒト細胞を示している。用語「生殖細胞」もしくは「生殖細胞系細胞」とは、***もしくは卵細胞のいずれかである、または***もしくは卵細胞内へ発生することができる、そしてこのためにその遺伝情報を子孫へ伝えることのできるあらゆる細胞を意味する。用語「生殖細胞系トランスジェニック動物」とは、遺伝情報が生殖細胞系細胞内に組み込まれており、それによって該情報を子孫へ転送する能力を与えるトランスジェニック動物を意味する。そのような子孫が実際にその情報の一部もしくは全部を有している場合は、それらもまたトランスジェニック動物である。
遺伝情報の遺伝的変化はレシピエントが属する動物種にとって外来のものである場合がある、または特定個別レシピエントにとってのみ外来のものである場合がある。後者の場合には、変化した、もしくは導入された遺伝子はネイティブ遺伝子とは相違して発現することがある。
遺伝子の「フラグメント」とは、遺伝子配列のあらゆる部分を意味する。「生物学的に活性なフラグメント」とは、該遺伝子の少なくとも1つの生物学的活性を維持している遺伝子のあらゆる部分を意味する。例えば、該フラグメントは、おそらくその同系配列にハイブリダイズできる、またはそれに由来する遺伝子によってコードされたポリペプチドフラグメント内に翻訳されることができる。
「変異体」とは、全遺伝子または該遺伝子のフラグメントのいずれかと構造および生物学的活性または免疫学的特徴において実質的に類似である遺伝子を意味する。2つの遺伝子が類似活性を有することを前提に、その用語はここではたとえコードされたアミノ酸残基の配列が同一ではない場合でさえ、それらは変異体と見なされる。優先的に、ここで使用するように(他に定義されていない限り)変異体はLRP5、HBMもしくはLRP6の1つである。変異体は、好ましくはHBM様表現型を産生する(すなわち、骨量を増強する、および/または脂質濃度を変調する)変異体である。これらの変異体には、ミスセンス突然変異、一ヌクレオチド変異多型(SNPs)、遺伝子もしくは核酸によってコードされたタンパク質のアミノ酸配列における変化を生じさせる突然変異、およびそれらの組合せ、ならびにHBM遺伝子のエクソンドメインにおけるcomおよびHBM様表現型を生じさせるLRP5もしくはLRP6における突然変異が含まれる。
「核酸の増幅」とは、ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)、連結増幅(もしくはリガーゼ連鎖反応、LCR)およびQ−βレプリカーゼの使用に基づく増幅法のような方法を意味する。これらの方法は技術においてよく知られており、例えば米国特許第4,683,195号および第4,683,202号に記載されている。PCRを実施するための試薬およびハードウェアは市販されている。HBM領域からの配列を増幅させるために有用なプライマーは、好ましくはHBM領域内、またはその中の標的領域の側面に位置する領域内の配列に相補的であり、そしてそれに特異的にハイブリダイズする。増幅によって生成したHBM配列は直接にシーケンシングすることができる。あるいはまた、1つ以上の増幅した配列は配列解析前にクローン化されてもよい。
「抗体」とは、HBMタンパク質およびそのフラグメントまたはHBM領域から、特にHBM遺伝子座またはその一部分からの核酸配列に結合できるポリクローナルおよび/またはモノクローナル抗体およびそのフラグメント、およびその免疫学的結合等価物を意味することができる。好ましい抗体には、さらにまたLRP5、LRP6およびHBM変異体へ結合できる抗体が含まれる。用語の抗体は、同種分子実体、または例えば複数の種々の分子実体から作り上げられた血清製剤のような混合物の両方を意味するために使用される。タンパク質はタンパク質合成装置内で合成的に作製して担体分子へ結合させて、数ヵ月間に渡ってウサギに注入することができる。ウサギ血清はHBMタンパク質もしくはフラグメントに対する免疫反応性について試験される。モノクローナル抗体はマウスにタンパク質、またはそのフラグメントを注入することによって作製することができる。モノクローナル抗体は、ELISAによってスクリーニングして、HBMタンパク質またはそのフラグメントを用いて特異的免疫反応性について試験される。Harlowら,「抗体:実験マニュアル(Antibodies:A Laboratory Manual)」,Harlowら(Cold Spring Harbor Laboratory,Cold Spring Harbor,NY(1988)および「抗体を使用する:実験マニュアル(Using Antibodies:A Laboratory Manual)」,Harlow,Ed and Lane,David(Cold Spring Harbor Press,1999)を参照。これらの抗体はアッセイならびに医薬品において有用である。「抗体」は、ポリクローナル、モノクローナル、キメラ、ヒト、ヒト化、二重特異性、多重特異性、primatized(商標)抗体を含むことが意図されているが、それらに限定されない。
「HBMタンパク質」は、それがグリシン171からバリンへの変化を含有している以外はZmax1(LRP5)タンパク質と同一であるタンパク質を意味する。HBMタンパク質は、Zmax1(LRP5)真性ホモログをコードするあらゆる生物に対して定義されている。例えば、マウスHBMタンパク質とはグリシン171からバリンへの置換を有するマウスZmax1(LRP5)タンパク質を意味する。
「HBM様」とは、細胞中で発現すると骨量、脂質濃度、Dkk活性、および/またはWnt活性を変調することができるLRP5、LRP6もしくはHBMの変異体を意味する。
本発明の1つの実施形態では、「HBM遺伝子」とはHBMの特徴もしくは表現型を示している個体において見いだされるゲノムDNA配列を意味するが、このとき該配列は配列番号4によって示されるタンパク質をコードする。HBM遺伝子およびZmax1(LRP5)遺伝子は対立遺伝子である。HBM遺伝子によってコードされるタンパク質は骨量増加を誘導する特性を有するが、Zmax1(LRP5)によってコードされるタンパク質はこの特性を有していない。HBM遺伝子およびZmax1(LRP5)遺伝子は、HBM遺伝子が582位でチミンを有するが、Zmax1(LRP5)遺伝子は582位でグアニンを有するという点で相違する。HBM遺伝子は配列番号2として示した核酸配列を含む。HBM遺伝子はさらにまた「HBM多型」と呼ぶこともできる。他のHBM遺伝子はさらにまた例えば以下の第3章で考察するようなサイレント突然変異を有することがある。
本発明のまた別の実施形態では、「HBM遺伝子」はさらにまた結果としてHBM表現型を生じるZmax1(LRP5)もしくはLRP6のいずれかの対立遺伝子変異体も意味する。このような変異体には、ここで記載したような野生型タンパク質コード配列からの変化および/またはZmax1(LRP5)の発現制御配列における変化を含むことがある、または結果として生じるタンパク質が骨量を増強する、および/または脂質濃度を変調する表現型を生成するようにLRP5もしくはLRP6におけるアミノ酸突然変異を含有する。このような変異体の好ましい例は、Zmax1(LRP5)タンパク質の発現増加を生じさせる内因性Zmax1(LRP5)プロモーター領域の変化である。
「正常」、「野生型」、「影響を受けない」、「Zmax1」、「Zmax」、「LR3」および「LRP5」はすべて配列番号3によって指示されるタンパク質をコードするゲノムDNA配列を意味する。LRP5はさらにまたマウスにおいてはLRP7とも言われてきた。Zmax1、LRP5およびZmaxは本明細書を通して互換的に使用することができ、おそらくは相違する生物における遺伝子にのみ関連する同一遺伝子であることを意味する。Zmax1遺伝子はヒト配列における582位でグアニンを有している。ヒトのZmax1遺伝子は配列番号1として示される核酸配列を含む。「正常」、「野生型」、「影響を受けない」、「Zmax1」および「LRP5」はすべて骨量増加には貢献しないタンパク質をコードするゲノム配列の対立遺伝子変異体も意味する。Zmax1(LRP5)遺伝子はヒト集団において一般的であるが、HBM遺伝子はまれである。
「骨の発達」とは、一般に例えば正常発達、および症患状態中に発生する変化および加齢中に発生する変化を含む経時的な骨の変化に含まれるあらゆるプロセスを意味する。これは例えば成長率、吸収率、骨修復率等のような構造的変化および動的比率の変化を意味することがある。「骨の発達障害」は、特に例えば疾患状態中に発生する変化および加齢中に発生する変化を含む骨の発達におけるあらゆる障害を意味する。骨の発達は本質的に漸進的または周期的なことがある。発達中に変化する可能性がある骨の態様には、例えば無機物化、特異的解剖学的特徴の形成、および種々の細胞型の相対数もしくは絶対数が含まれる。
「骨の変調」もしくは「骨形成の変調」とは、当業者には理解されるように、例えば特に破骨細胞および骨芽細胞活性による骨吸収および付加骨成長を含む骨リモデリングに含まれる生理学的プロセスのいずれかに影響を及ぼす能力を意味しており、そしてここで使用するように骨形成および発達の一部または全部を含むことがある。
骨は破骨細胞による古い、もしくは不要な骨の再生および骨芽細胞による新しい骨の再建を通して持続的に適応および再生し続ける動的組織である。これらのプロセス間の結び付きの性質は、成長中の骨のモデリングならびに機械的使用の毎日の必要を満たすためのリモデリングおよび修復を通した成体骨格完全性の維持両方に責任を負っている。骨吸収と形成の間の平衡がくずれた結果として生じる多数の疾患がある。加齢に伴って、骨の代謝回転には段階的な「生理学的」不均衡が生じ、この不均衡は漸進的な骨量減少をもたらすエストロゲンサポートの閉経期消失を原因として特に女性において悪化する。骨塩密度が集団標準値より下へ低下するにつれて、結果として骨虚弱性および特発性骨折への易罹患性が増加する。骨が10%減少する毎に骨折リスクは2倍になる。脊椎もしくは近位大腿骨において正常ピーク骨量より2.5標準偏差以上低い骨塩密度(BMD)を有する個体は骨粗鬆症性であると分類されている。しかし正常値より1〜2.5標準偏差低いBMDを有する骨量減少性個体は明確にリスク状態にある。
骨は数種の形態のX線吸光光度分析法によって測定される。これらの機器のすべてが骨の無機質量もしくは骨ミネラル量を測定する。標準DXA測定値は、伝統的な密度の定義による真の密度測定値(質量/単位容積)ではない面積密度である数値を提供する。それでもこれは骨粗鬆症を診断するために臨床的に使用される測定タイプである。しかしBMDは骨の強度にとって主要な寄与因子ではあるが、骨の強度の40%は以下を含む他の因子から生じる:1)骨のサイズ(すなわち、径が大きければ、たとえ低密度であっても、器官レベルの剛性が増加する);2)骨梁構造の連結性;3)リモデリングのレベル(リモデリング位置は歪みの局所的コンセントレータである);および4)順に負荷履歴(すなわち、累積疲労損傷を通しての)の関数である骨材料自体の固有強度およびコラーゲン架橋結合の程度および無機物化のレベル。骨格外の多数の影響(例えば、骨量減少パターン、軟組織充填、および中枢神経系反射反応性)と同様に、これらの強度/脆弱性の因子の全部が骨粗鬆症性骨折において何らかの役割を果たすという明確な証拠がある。
これらの骨の特徴を取り扱うために追加の分析用機器を使用することができる。例えば、pQCTはサイズおよび密度についての個別骨梁および皮質区画の測定を許容し、そしてμCTは例えば骨梁連結性のような構造上の特徴に関する定量的情報を提供する。μCTはまた、忠実な骨密度を測定する。これらのツールを用いると、疾患の程度および治療の有効性を診断するために重要な非BMDパラメータを測定することができる。骨粗鬆症のための最新治療法は、薬物が骨吸収を防止または遅延させる能力に基づいている。より新規の抗吸収性物質は骨粗鬆症の治療において有用であることを実証しつつあり、それらは骨量および/または上記の骨質についてのパラメータを増加させるであろう治療法を開発するためのより明確な挑戦に比べて短期的解決策と見なされている。
そこで、骨の変調は例えばpDXA X線法による骨密度(BMD)および骨ミネラル量(BMC)、X線によって測定される骨のサイズ、厚さもしくは容積、カルセイン標識によって測定される骨形成率、pQCTおよび/またはμCT法によって測定される総、骨梁、および中軸密度、μCT法によって測定される連結性および他の組織学的パラメータ、好ましくは各々大腿骨および脊椎において測定される機械的曲げ強さおよび圧縮強さのようなパラメータを測定することによって評価できる。これらの測定の性質のために、各々は当業者にはよく理解できるように一定の状況についてはより適切である場合も、余り適切ではない場合もある。さらに、骨折がない臨床歴、骨の形状、骨の形態、連結性、正常組織学、骨折修復速度、およびその他の骨質のパラメータのようなパラメータおよび方法は当分野においてよく知られていて使用されている。最も好ましくは、骨質はこのような測定が適切な場合は脊椎の圧縮強さによって評価できる。骨の変調は、さらにまた種々のパラメータにおける変化速度によって評価することもできる。最も好ましくは、骨の変調は2つ以上の年齢で評価する。
「正常骨密度」とは、HBM関連試験の状況において0であるZスコアの2標準偏差以内の骨密度を意味する。一般的状況において、正常骨密度パラメータの範囲はルーチンの統計学的方法によって決定される。正常パラメータは年齢および性別に関して正規化されたパラメータの約1もしくは2標準偏差以内、好ましくは約2標準偏差以内である。重要な統計的尺度は、関連測定値が平均値から統計的有意に相違する確率を表すP値である。統計的有意なP値はP<0.05、0.01、0.005、および0.001、好ましくは少なくともP<0.01である。
「HBM」とは「高骨量」を意味するが、この用語はさらにまた骨密度、骨ミネラル量およびサイズを言い表すこともある。
「HBM表現型」および「HBM様表現型」は、骨の変調の1、2、3、4、5、もしくはそれ以上の量的パラメータ、好ましくは骨密度および骨ミネラル量および骨強度パラメータの、そのパラメータに対する年齢および性別標準値を超える約2標準偏差以上の、好ましくは2、2.5、3、もしくはそれ以上の標準偏差の上昇によって特徴付けることができる。HBM表現型およびHBM様表現型は、少なくとも1つのパラメータ、好ましくは少なくとも2つのパラメータ、およびより好ましくは少なくとも3つ以上のパラメータにおける統計的有意な上昇によって特徴付けられる。HBM表現型およびHBM様表現型はさらにまた、1つ以上の骨質のパラメータにおける上昇によっても特徴付けることができ、そして最も好ましくは上昇するパラメータにはいずれかの骨質のパラメータにおける低下が付随しない。最も好ましくは、骨の変調パラメータおよび/または骨質の測定値における上昇は2つ以上の年齢で観察される。HBM表現型およびHBM様表現型はさらにまた、脂質濃度、Wnt活性および/またはDkk活性の変化も含む。
用語「単離(された)」および「精製(された)」は自然環境から人間の手によって変化させられた物質を意味する。単離ペプチドは、実質的に純粋形であても、またはさもなければ例えば単離細胞系もしくはトランスジェニック動物中での発現によってその自然環境から置き換えられていてもよい。単離配列は、例えば実質的に純粋形の分子であっても、または前記単離配列の少なくとも一端が自然状態ではそれが隣接しているであろう配列と隣接していないその自然環境から置き換えられていている分子であってもよい。
「生物学的に活性な」とは、野生型タンパク質もしくはポリペプチドの生物学的および/または免疫学的活性を維持している1つのタンパク質またはタンパク質のポリペプチドフラグメントをコードする遺伝子の対立遺伝子である保存的に置換された変異体を含むタンパク質およびポリペプチドの形態を意味する。好ましくは、該活性は例えばDkkとリガンド結合パートナーとの相互作用(例えば、図5に示したもののようなLRP5もしくはLRP6もしくはDkk−1とDkk−1相互作用タンパク質)を阻害することのようなDkk活性の変化を誘導する活性である。生物学的に活性なとは、Wntシグナル伝達を変調するあらゆる形態を含むことも意図されている。
「変調する」および「調節する」は、酵素、インヒビター、シグナルトランスデューサー、受容体、転写アクチベーター、コファクター等の野生型活性を増加または減少させる方法、条件、または物質に使用する。活性におけるこの変化は、mRNA翻訳、mRNAもしくはDNA転写、および/またはmRNAもしくはタンパク質変性の増加または減少である可能性があり、これらは順に生物学的活性における増加または減少に一致することがある。
「変調された活性」は、タンパク質の生物学的に活性な形によって変調されたあらゆる活性、条件、疾患または表現型に使用する。変調は、生物学的に活性なタンパク質の濃縮または細胞以下局在に影響を及ぼすことによって、すなわち発現もしくは変性を変調することによって、または例えば阻害、活性化、結合、もしくは基質の遊離、化学的もしくは構造的いずれかの修飾を通してのような直接的な作用的もしくは拮抗的作用によって、または追加の因子を含むことがある直接的もしくは間接的相互作用によってもたらされることがある。
「有効量」または「有効用量」または「治療有効量」とは、本発明のポリペプチドの生物学的活性を変調する物質の量を意味する。
「免疫学的に活性な」とは、1つの抗原を認識して結合するあらゆる免疫グロブリンタンパク質またはそのフラグメントを意味する。
「Dkk」とは、Dkk(Dickkopf)ファミリーのメンバーの核酸およびタンパク質を意味することが意図されている。これには、Dkk−1、Dkk−2、Dkk−3、Dkk−4、Soggyおよび関連Dkkタンパク質が含まれるが、それらに限定されない。Dkk−1は本発明の好ましい実施形態である。しかし、Dkkタンパク質は実質的相同性を有しており、当業者であればDkk−1を利用する本発明の実施形態のすべてを他のDkkタンパク質と一緒に利用できることを理解するであろう。
「Dkk−1」は、Dkk−1タンパク質とDkk−1タンパク質をコードする核酸とを意味することが意図されている。Dkk−1はDickkopf−1を意味しており、アフリカツメガエルではDkk−1は少なくともDkk−2、Dkk−3、およびDkk−4に関連する(Krupnikら,Gene 238:301〜313(1999)を参照)。Dkk−1は最初にアフリカツメガエルにおいて同定された(Glinkaら,Nature 391:357−62(1998))。Dkk−1は、BMP経路の阻害の存在下で異所性頭部形成を誘導できる因子として認識された。Dkk−1はその後、Wntシグナル伝達の細胞外アンタゴニストとして作用することにより数種のアフリカツメガエルWnt分子の体軸誘導活性を阻害することも見いだされた。Dkk−1、Dkk−2、Dkk−3、Dkk−4およびSoggyを含む哺乳動物ホモログが見いだされている(Fediら,1999およびKrupnickら,1999)。ヒトDkk−1はまたskとも呼ばれた(Fediら,1999)。ここで使用するように、Dkk−1はその中でDkk−1が相互作用するWnt経路を有するあらゆる種からのタンパク質を含むことが意図されている。特に好ましいのは哺乳動物種(例えば、マウス、ヤギ、イヌ、ウシ、ネコ、ウマ、霊長類、ヒツジ、ブタ等)であり、特に好ましい哺乳動物はヒトである。Dkk−1をコードする核酸配列には、ヒトDkk−1(GenBankアクセッション番号AH009834、XM_005730、AF261158、AF261157、AF177394、AF125763およびNM_012242)、ハツカネズミ(Mus musculus)dickkopfホモログ1(GenBankアクセッション番号NM_010051)、およびゼブラフィッシュ(Danio rerio)dickkopf−1(GenBankアクセッション番号AF116852およびAB023488)が含まれるが、それらに限定されない。エクソン注釈を含むゲノム配列は、GenBankアクセッション番号AF261157およびAF161158である。同様に意図されているのはWnt経路内にDkk−1活性を有するこれらの配列のホモログである。Dkk−1アミノ酸配列には、ヒトdickkopfホモログ1(GenBankアクセッション番号AAG15544、BAA34651、NP_036374、AAF02674、AAD21087、およびXP_005730)、ゼブラフィッシュdickkopf1(GenBankアクセッション番号BAA82135およびAAD22461)およびマウスdickkopf−1(GenBankアクセッション番号O54908およびNP_034181)が含まれるが、それらに限定されない。Dkk−1について言うときは、Dkk−1活性を有するこれらの配列の変異体およびホモログもまた含まれる。
「Dkk媒介性」の障害、状態もしくは疾患とは、Dkk活性に関連するあらゆる異常な状態を意味する。異常な状態は、環境的曝露または薬物投与によって誘導され得る。あるいは、症患または障害は遺伝子欠陥によることがある。Dkk媒介性の疾患、障害および状態には、骨量障害もしくは状態および脂質障害および状態が含まれるがそれらに限定されない。例えば、Dkkによって媒介される可能性がある骨量障害/状態/疾患には、年齢関連性骨量減少、骨折(例えば、股関節骨折、コーレス骨折、脊椎粉砕骨折)、軟骨形成異常症、薬物誘発性障害(例えば、糖質コルチコイド剤またはヘパリンの投与に起因する骨粗鬆症、および水酸化アルミニウム、抗痙攣薬、もしくはグルテチミドの投与に起因する骨軟化症)、骨の高度の代謝回転、高カルシウム血症、骨化過剰症、骨形成不全症、骨軟化症、骨髄炎、骨粗鬆症、ぺージェット病、変形性関節症、およびくる病が含まれる。
Dkkによって媒介される可能性がある脂質の障害/疾患/状態には、家族性リポタンパク質リパーゼ欠損症、家族性アポタンパク質CII欠損症、家族性3型高リポタンパク血症、家族性高コレステロール血症、家族性高トリグリセリド血症、多種リポタンパク型高脂血症、透析および/または糖尿病を原因とする脂質濃度上昇、および病因不明の脂質濃度上昇が含まれるがそれらに限定されない。
「認識して結合する」は、アンチセンスヌクレオチド、siRNA(小さい抑制性RNA)、もしくはshRNA(ショートヘアピン構造を有するRNA)と標的配列との相互作用を定義するときに使用すると、特定のアンチセンス、siRNA、もしくはshRNA配列が標的配列と実質的に相補的であり、したがってmRNAをコードするポリペプチドの一部分に特異的に結合することを意味する。したがって、典型的には該配列はmRNA標的配列と高度に相補的であり、そして配列全部を通して1、2、3、4、5、6、7、8、9、もしくは10塩基を以下のミスマッチを有するであろう。多くの場合、該配列が厳密にマッチする、すなわちそれにオリゴヌクレオチドが特異的に結合する配列と完全に相補的であり、このため相補的伸長に沿ってミスマッチを全く有していないことが望ましい。したがって高度に相補的な配列は、典型的にはmRNAの標的配列領域に極めて特異的に結合し、このためポリペプチド産物内への標的mRNA配列の翻訳を減少させる、および/または阻害することにさえ高度に有効であろう。
実質的に相補的なオリゴヌクレオチド配列はそれに該オリゴヌクレオチドが特異的に結合する対応するmRNA標的配列に約80%を超えて相補的(もしくは「%厳密マッチ」)であり、そしてより好ましくはそれに該オリゴヌクレオチドが特異的に結合する対応するmRNA標的配列に約85%を超えて相補的であろう。上記のような一定の態様では、本発明の実践において使用するためにはよりいっそう実質的に相補的なオリゴヌクレオチド配列を有することが望ましく、そしてそのような場合には、該オリゴヌクレオチド配列はそれに該オリゴヌクレオチドが特異的に結合する対応するmRNA標的配列に約90%を超えて相補的であり、一定の実施形態ではそれに該オリゴヌクレオチドが特異的に結合する対応するmRNA標的配列に約95%を超えて相補的である可能性があり、そしてそれに該構成されたオリゴヌクレオチドが特異的に結合する標的mRNAに96%、97%、98%、99%までさえ、そして100%厳密マッチさえ含めて相補的である。
本明細書開示した配列のいずれかの類似性率もしくは相補性率は、例えばウィスコンシン(Wisconsin)大学Genetics Computer Group(UWGCG)から入手できるGAPコンピュータ・プログラム、バージョン6.0を使用して配列情報を比較することによって決定できる。GPAプログラムは、Needleman and Wunsch(1970)のアライメント法を利用している。手短かには、GPAプログラムは類似性を、2つの配列の短い方における記号の総数で割った、類似している整列した記号(すなわち、ヌクレオチドまたはアミノ酸)の数として定義している。GPAプログラムのための好ましいデフォルトパラメータには以下のものが含まれる:(1)ヌクレオチドについての単項比較行列(同一性に対しては1の数値、非同一性に対しては0の数値を含有する)、およびGribskov and Burgess(1986)の加重比較行列、(2)各ギャップに対する3.0のペナルティおよび各ギャップ内の各記号に対する追加の0.10のペナルティ;および(3)末端ギャップに対してはペナルティなし。
「模倣物」とは、模倣された化合物と同一機能を実行する、または類似して挙動する化合物もしくは分子を意味する。
「レポーターエレメント」とは、スクリーニングアッセイにおいて検出することのできるポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを意味する。レポーターエレメントによってコードされるポリペプチドの例には、lacZ、GFP、ルシフェラーゼ、およびクロラムフェニコールアセチルトランスフェラーゼが含まれるが、それらに限定されない。
2.はじめに
LRP5(Zmax)内の多型でHBMと指名されたG171Vは、これによりそれらの全体が参照することにより本明細書組み込まれる同時継続出願の国際特許出願第PCT/US 00/16951号、および米国特許出願第09/543,771号および第09/544,398号に記載されている関連被検対象の集団中で高骨量表現型を与えると同定されている(Littleら,Am J Hum Genet.70:11−19(2002))。LRP5はさらにまた、その全体が参照することにより本明細書組み込まれる国際公開第WO98/46743号にも記載されている。LRP5機能の消失は、骨に有害な作用を及ぼすことが証明されている(Gongら,Cell 107:513−523(2001))。さらに、HBM多型およびLRP5はまた心臓の健康および脂質媒介性障害において重要な可能性がある。したがって、それらの活性を変調する方法は心臓障害および脂質関連性障害を治療および/または防止する方法として機能することができる。
近年の試験は、LRP5がWntシグナル伝達経路に関わっていると指摘してきた。Wnt経路は、四肢の初期胎生期発生において極めて重要である。Wntシグナル伝達の構成要素について近年発表されたスケッチを図1に示した(Nusse,2001 http://www.stanford.edu/〜musse/pathways/cell2.html)(さらにNusse,Nature 411:255−6(2001);およびMaoら,Nature 411:321−5(2001)も参照されたい)。手短かに要約すると、Wntタンパク質は膜貫通タンパク質Frizzled(Fz)と相互作用する分泌タンパク質である。LRP5およびLRP6のようなLRPタンパク質は、Fzとの複合体中でWntシグナルを変調すると考えられている(Tamaiら,Nature 407:530−5(2000))。Wnt経路は、Disheveledタンパク質(Dsh)を介して細胞内で作用し、このタンパク質は順にリン酸化β−カテニンからのグリコーゲンシンテターゼキナーゼ−3(GSK3)を阻害する。リン酸化β−カテニンは、ユビキチン化に引き続いて急速に分解される。しかし、安定化β−カテニンは蓄積して核へ転位し、そこでT細胞因子(TCF)転写活性化因子複合体のコファクターとして機能する。
タンパク質dikkopf−1(Dkk−1)はWnt経路のアンタゴニストであると報告されている。Dkk−1は、初期発生における頭部形成のために必要とされる。Dkk−1およびWnt経路におけるその機能は例えばKrupnikら,Gene 238:301−13(1999);Fediら,J.Biol.Chem.274:19465−72(1999)に記載されている;さらにDkk−1およびWnt経路については、Wuら,Curr.Biol.10:1611−14(2000);Shinyaら,Mech.Dev.98:3−17(2000);Mukhopadhyayら,Dev Cell 1:423−434(2001)および国際公開第WO00/52047号、および各々において言及された参考文献も参照されたい。Dkk−1がDshの上流で機能することは知られているが、Dkk−1による阻害の機序の性質についてはまさにその解明の端緒についたところである。Dkk−1はマウス胎生期肢芽において発現し、その崩壊は異常な四肢形態、特に発達欠損を生じさせる(Gotewoldら,Mech.Dev.89:151−3(1999);およびMukhopadhyayら,Dev.Cell 1:423−434(2001))。
関連する米国仮出願第60/292,311号はDkk−1(GenBankアクセッション番号XM005730)とLRP5との新規相互作用を開示した。Dkk−1とLRP5との相互作用は、実施例1に記載したようにLRP5のリガンド結合ドメインと相互作用するタンパク質に対する酵母2ハイブリッド(Y2H)スクリーニングによって発見された。2ハイブリッドスクリーニングは当分野において一般的な方法であり、この方法については例えばGietzら,Mol.Cell.Biochem.172:67−79(1997);Young,Biol.Reprod.58:302−11(1998);Brent and Finley,Ann.Rev.Genet.31:663−704(1997);およびLu and Hannon編集、「酵母ハイブリッドテクノロジー(Yeast Hybrid Technologies)」,Eaton Publishing,ナティック,MA,(2000)によって記載されている。より近年には、Dkk−1がLRPに対する結合パートナーであり、LRPとの直接結合を介してWnt経路を変調することが、他の試験により確証されている(R.Nusse,Nature 411:255−256(2001);A.Baficoら,Nat.Cell Biol.3:683−686(2001);M.Semeenov,Curr.Biol.11:951−961(2001);B.Mao,Nature 411:321−325(2001),Zorn,Curr.Biol.11:R592−5(2001);およびL.Liら,J.Biol Chem.277:5977−81(2002))。
Maoら(2001)は、Dkk−1をLRP6に対するリガンドであると同定した。Maoらは、Dkk−1とLRP6とが拮抗的に相互作用し、そこでDkkタンパク質はLRP6のWntコ受容体機能を阻害することを示唆している。共免疫沈降法を使用して、この研究グループはDkk−1/LRP6相互作用が直接的であることを検証した。Dkk−2もまたLRP6へ直接的に結合することが見いだされた。仮出願第60/291,311号に含まれるデータとは対照的に、MaoらはDkkタンパク質とLRP5との相互作用は検出されず、同様にLDLR、VLDLR、ApoERもしくはLRPとの相互作用も検出されなかったと報告している。さらに、MaoらはLRP6が市販のTCF−ルシフェラーゼレポーター遺伝子アッセイ(TOPFLASH)を使用してWntシグナル伝達を阻害するDkk−1の作用を滴定できることを証明した。同様の結論は、アフリカツメガエル胚における類似試験からも引き出された。LRP6機能的ドメインの欠失解析は、Dkk−1結合のためにはEGFリピート(β−プロペラ)3および4が不可欠であること、そしてLRP6のリガンド結合ドメインはDkk−1結合には何の影響も及ぼさないことを解明した。Maoらの所見は、酵母中でのDkk−1結合のためにLRP5のリガンド結合ドメインが不可欠かつ十分であることを指摘している本発明者らが入手したデータとは対照的である。古典的な生化学的リガンド受容体試験を使用して、Maoらは、Dkk−1/LRP6に対してはKd=0.34nMおよびDkk−2/LRP6に対してはKd=0.73nMと決定した。
Semenovら(2001)は、Mao研究グループの結果を検証し、共免疫沈降法によってDkk−1がWntもしくはFrizzledへは直接的に結合せず、むしろLRP6と相互作用することを確証した。彼らが実施したスキャッチャード(Scatchard)解析は、Dkk−1/LRP6に対してはKd=0.5nMであることを見いだした。Semenovらはさらに、Dkk−1がLRP5/Frizzled8複合体を無効にできることを証明したが、これはDkk−1がLRP5との相互作用を介してWntシグナル伝達も抑制できることを示唆している。システイン220がアラニンへ変化させられたDkk−1突然変異体は、LRP6結合を無効にしたがWntシグナル伝達を抑制することはできなかった。アフリカツメガエル胚における試験はこれらの結果を確証し、Dkk−1/LRP6:Wntシグナル伝達の抑制の機能的重要性を解明した。アフリカツメガエルを使用した彼らの研究は、LRP6/Dkk−1がWnt平面内細胞極性(Planar Cell Polarity)経路とは対照的に正規β−カテニン媒介性Wnt経路に対して特異的であることも示唆した。
Baficoら(2001)は、125I−標識Dkk−1分子を使用してLRP6がKd=0.39nMを備える唯一の膜受容体であると同定した。さらに、Dkk−1/LRP6相互作用の機能的重要性は、Dkk−1が極めて低濃度(30pM)で添加された場合でさえ正規Wntシグナル伝達の抑制であった。
理論で結び付けることを望まなくても、本発明はWnt経路のDkk−1による阻害メカニズムについての説明を提供する、そしてそれによりWnt経路を変調できるメカニズムについての説明を提供すると考えられる。本出願および関連仮出願第60/291,311号は、Dkk−1/LRP5相互作用について記載しており、LRP5/LRP6/HBMとDkkとの相互作用をタンパク同化骨治療薬または脂質代謝の変調剤のためのWnt経路における介入点として1つの方法に使用できることを証明している。
以下の「結合パートナーを同定する方法」のセクションおよび実施例6および7で詳述するように、Dkk−1はLRP5媒介性Wntシグナル伝達を抑制することはできるが、HBM媒介性Wntシグナル伝達を抑制することはできない。この観察は、LRP5におけるHBM突然変異もまた機能もしくは活性化突然変異の利得であるので、特に興味深い。すなわち、正規経路を介してのWntシグナル伝達はLRP5に対してHBMを用いて増強される。本発明のデータは、この機能的活性化のメカニズム、すなわちDkk−1がHBM媒介性Wntシグナル伝達を抑制できないことを示唆している。他のWntもしくはDkkファミリーメンバーに関する他の研究は、特定細胞もしくは組織中で発現するLRP/Dkk/Wnt/Frizzledレパートリーに依存して達成できるWntシグナル伝達における複雑性および変動性を示す正規Wnt経路における示差的な活性を証明している。これはヒトおよびHBMトランスジェニック動物におけるHBM表現型の明白な骨特異性を証明していると思われる。
さらに、本発明のデータはLRP5の第1β−プロペラドメインの潜在的な構造的摂動についての重要性および機能的重要性を解明している。我々のデータは、LRP5のリガンド結合ドメインがDkk−1との相互作用領域であると同定したが、他方Maoらの出版物は彼らのLRP6/Dkk−1試験におけるプロペラ3および4の機能的役割を証明した。本発明では、我々は残基171でのHBM突然変異を介して第1β−プロペラドメインがDkk−1媒介性Wnt経路における機能的重要性を有すると見なしている。プロペラ1の171はDkk−1と直接的または間接的に関与する可能性がある。直接的関与は、Dkk−1を結合不能にさせるHBM細胞外ドメインの3次元構造の摂動から生じるのであろう。あるいは、プロペラ1の残基171はDkk−1と直接的に相互作用する可能性がある;しかし、単独では結合するのに不十分で、LRP5以外のドメインを必要とする。潜在的な間接的候補分子は、特にDkk−1酵母2ハイブリッド実験によって同定されたタンパク質の可能性がある。
Dkk活性の破壊は、DkkのLRP5/LRP6/HBMへの結合の増強または防止によって必ずしも媒介されない。2つ以上のメカニズムが関与する可能性がある。実際に、本発明者らはDkk−1がLRP5、LRP6、およびHBMに結合するのを観察した。Dkk−1はまたLRP6を効果的に阻害したり、そしてわずかに低い程度でLRP5活性を阻害することができる。さらに、Dkkファミリーの様々なメンバーがLRP5/LRP6/HBM活性に示差的に影響を及ぼすことも観察されている。例えば、Dkk−1はLRP5/LRP6/HBM活性を阻害するが、他のDkkはLRP5/LRP6/HBM活性を増強することがある。最終的に考察しなければならないのは、単純な結合ではなくLRP5/LRP6/HBM活性の変調である。
本明細書の開示は、Dkk−1/LRP5相互作用の崩壊を標的とすることがHBM模倣物物質に対する治療介入点であることを証明している。本発明の治療薬は、小分子、ペプチドもしくは核酸アプタマー、抗体、またはその他のペプチド/タンパク質等であってよい。Dkk−1発現を低下させる方法は、例えばRNA干渉、アンチセンスオリゴヌクレオチド、モルホリノオリゴヌクレオチド、PNAs、Dkk−1もしくはDkk−1相互作用タンパク質に対する抗体、おとりまたはスカベンジャーLRP5もしくはLRP6受容体、およびDkk−1もしくはDkk−1インタラクター転写のノックダウンのような方法を使用した治療法であってよい。
本発明の1つの実施形態では、Dkk−1の活性もしくはDkk−1相互作用タンパク質の活性は、例えば本発明のペプチドアプタマーとの結合によって変調することができる。また別の実施形態では、LRP5活性は、本発明によって提供される試薬(ペプチドアプタマー)によって変調することができる。また別の実施形態では、Dkk−1/LRP5相互作用は本発明の試薬(例えば、図5に同定したもののようなDkk−1相互作用タンパク質)によって変調することができる。また別の実施形態では、Wntシグナル伝達経路は1つ以上の上記の方法の使用によって変調することができる。本発明の1つの好ましい実施形態では、Wnt経路のDkk−1媒介性活性は1つ以上の上記の方法によって特異的に変調することができる。本発明のまた別の好ましい実施形態では、Wntシグナル伝達経路はDkk−1相互作用タンパク質活性をダウンレギュレートすることによって刺激できる;このようなダウンレギュレーションは、例えばより大きなLRP5活性を産生するであろう。より好ましい実施形態では、LRP5活性を刺激することによって、より最適なレベルを回復もしくは維持するために骨量変調を刺激することができる。また別の実施形態では、LRP5活性を刺激することによって、より最適なレベルを回復もしくは維持するために脂質代謝を刺激することができる。また別の実施形態は、骨量障害または脂質代謝障害の矯正に向けられる候補薬および候補治療をスクリーニングする方法を提供する。そして、本発明の好ましい実施形態は本発明の試薬および/または方法の使用によって開発された薬剤および治療を提供する。当業者は、本発明が骨粗鬆症の効果的モデルを開発するため、骨量および脂質の変調についての理解を増加させるため、そして骨量および脂質代謝を変調するために重要な研究用ツールを提供することを理解するであろう。
以前に実施された高骨量が単一遺伝子(常染色体優性)形質(HBM−1)として遺伝性である大家族に関する研究は、それにより骨密度が変調されるメカニズムに関する重要な洞察を提供した。この家族構成員の脊椎および股関節BMDは統計的有意に高く(標準値を>3標準偏差超える)、若年成人ならびに90歳代に入る高齢の家族構成員に影響を及ぼしている。罹患した家族の骨は、X線検査では極めて密に見えるが、正常な外形および外径を有している。皮質骨は骨内膜面上で肥厚しており、「罹患した」個人は、他の表現型異常を何ら伴わずに無症候性である。骨格代謝回転を反映する生化学的マーカーについてのアッセイは、この障害が骨リモデリングの正常速度と関連することを示唆している。罹患した個人は正常な骨格負荷のために必要であるより統計的有意に大きい密度で骨の代謝回転における均衡を達成している。重要なことに、最も罹患することが多い骨は最大の機械的および引力による負荷を受ける荷重を支える骨(脊椎および股関節)である。これらは骨粗鬆症における治療介入のための標的となる最も重要な骨である。この表現型に責任を負っていると同定された遺伝子であるZmaxまたはLRP5は、以前は骨の生理学とは結び付けられなかった。HBMファミリー表現型の常染色体優性遺伝をもたらす多型性によって生み出されるようなこの遺伝子の修飾は、Zmax/LRP5および上記で考察したDkk/Wnt経路を含むそれが変調される経路を骨密度のモジュレーターを開発するための重要な標的であると同定している。HBM多型性によって機能における利得を模倣するためのZmax/LRP5の変調は、骨消耗状態に対する重要な療法を提供すると予想されるであろう。さらに、若年成人におけるそのような変調はピーク骨量を増強して、後年における骨折リスクを防止するもしくは遅延させることができよう。あるいはまた、機能を低下させる変調は、骨が不適切に産生されている状態を治療するために使用できよう。
3.ポリペプチド
本発明に使用することが意図されるポリペプチドには、DkkおよびDkk相互作用タンパク質活性を変調するものが含まれる。好ましいポリペプチドおよびペプチドには、Wnt経路を変調するものが含まれる。好ましい配列の例には、図2に例示したY2Hベイト配列、図3(配列番号171〜188)および図4(配列番号189〜192)のペプチドアプタマー、図5に同定したDkk−1相互作用タンパク質のポリペプチド、図6に示したようなポリペプチド、DkkのLRP結合ドメイン(hDkk1のアミノ酸138〜266)、システインリッチドメイン2(a.a.hDkkのアミノ酸183〜245)、システインリッチドメイン1(a.a.hDkkのアミノ酸97〜138)、および図13(配列番号204〜213を含む)のLRP5結合アプタマーが含まれる。Dkk−1を例示したが、その他のDkkタンパク質も実質的に類似の領域を含有しており、同様に本発明にしたがって使用することができる。
例えば、図2に示したベイト配列を酵母2ハイブリッド(Y2H)スクリーニングに使用した。Y2Hスクリーニングを実施例2に記載した通りに実施してDkk−1がLRP5に結合するために最小必要結合ドメインを決定した。最小結合ドメイン構築物(すなわち、Dkk−1の、下記に太字で示した残基139〜266および下線を引いた残基97〜245)には、コリパーゼ折り畳みとの配列相同性を有する第2システインリッチドメインが含まれる。
Figure 2005512508
(GenBankアクセッション番号XP_005730)(配列番号128)
この相同性は脂質結合機能を示唆しており、血漿膜でのDkk−1相互作用を促進する可能性がある(van Tilbeurgh,H.,Biochim.Biophys.Acta.1441:173−84(1999))。LRP5のリガンド結合ドメイン(LBD)と相互作用することのできるDkk−1の相互作用ドメインは、LRP5活性の変調およびDkk−1/LRP5複合体形成の変調において有用な試薬である。Dkk−1およびDkk−1相互作用タンパク質もしくはポリペプチドに対しても同様のスクリーニングを作製できる。
実施例3に記載したようにチオレドキシンA(trxA)スカフォールド内に拘束かつ提示されたランダムペプチドのライブラリーから1組のペプチドアプタマーを同定した。ペプチドアプタマーは、Hoppe−Seyler&Butz,J.Mol.Med.,78:426−430(2000);Brody and Gold,Rev.Mol.Biotech.,74:5−13(2000);およびColas,Curr.Opin.in Chem.Biol.4:54−9(2000)およびそれらの中で言及された参考文献によって検討されたように、分子医学にとって強力な新規ツールである。手短かには、ペプチドアプタマーはインビボで結合できる高度に特異的な試薬であることが証明されている。したがって、ペプチドアプタマーはタンパク質の機能を変調する方法を提供し、そして機能のノックダウンまたは完全消失を意味する従来型のノックアウト法の代替法として機能できる。ペプチドアプタマーは、新薬開発のための標的の妥当性確認のために有用な試薬でもあり、治療用化合物として直接に使用できる、またはドラッグデザインのために必要な基礎を提供することができる。同定されると、ペプチド挿入断片を合成して直接に使用したり、または他の担体分子中に組み込むことができる。Brody and Gold(2000,上記参照)が検討して言及した参考文献は、ペプチドアプタマーの治療用途および診断用途を証明しており、当業者には周知であろう。
本発明のペプチドアプタマーは、Dkk−1のそのリガンドへの結合およびそれによるWnt経路の変調における有用な試薬であり、Dkk−1がWnt経路のLRP5変調またはDkk−1相互作用タンパク質変調を阻害するのを防止するために使用できる。これらのペプチドアプタマーの配列を図3に示した(配列番号171〜188)。ペプチドアプタマーとは、チオレドキシンスカフォールドによって拘束されたペプチドを意味する。これらのアプタマーは、Dkk−1媒介性の疾患および状態を治療するための治療薬としても意図されている。このようなアプタマーは、化学者にとって該アプタマーの模倣物化合物を構成するための有用な構造的ガイドである。
ペプチドアプタマーを、LRP5リガンド結合ドメイン(LBD)ベイト配列についても同様に開発した。これらのペプチドアプタマーの配列を図4(配列番号189〜192)に示した。これらはDkk−1をそのままに残しながらDkk−1/LRP5結合界面を破壊するために使用できる有用な試薬である。これらはWntシグナル伝達についての比較コントロールとして使用できるので、したがってスクリーニングされるあらゆる薬物または療法の特異性についてコントロールが提供される。これらのアプタマーはさらにまたLRP媒介性の疾患および状態を治療するための有用な治療薬でもある。このようなアプタマーは、化学者にとって該アプタマーの模倣物化合物を構成するための構造的ガイドとしても使用される。
Dkk−1、Dkk−1相互作用タンパク質と相互作用する30種のタンパク質を同定し、そしてDkk−1ベイトを使用して酵母2ハイブリッドスクリーニングにおいて同定し、これらを図5に示した。これらの結果がDkk−1とNotch−2との相互作用を示唆していることが認められた。これは、WntとNotchシグナル伝達経路間でクロストークが存在することを示唆していた。例えば、プレセニリン1(Presenilin1[Ps1])はNotchプロセッシングのために必要とされ、下流Wnt経路を阻害する。Notchの細胞外ドメインはWntと相互作用すると思われる。さらに、Notch細胞内ドメインは乱雑なシグナルで誘導されるプロセッシングと相互作用すると思われ、細胞内ドメインはプレセニリンと相互作用すると思われる(Sorianoら,J.Cell Biol.152:785−94(2001))。NotchとWntシグナル伝達との関係に関する追加の情報については、Wesley,Mol.Cell.Biol.19:5743−58(1999)およびAxelrodら,Science 271:1826−32(1996)を参照されたい。
Dkk−1とコルディン(chordin)との相互作用もまた認められた;これはWntとTGF−β/BMPシグナル伝達経路間にクロストークが存在することを示唆している(Letamendiaら,J.Bone Joint Surg.Am.83A:S31(2001);Labbeら,Proc.Natl.Acad.Sci.USA 97:8358−63(2000);Nishitaら,Nature 403:781−5(2000);DeRobertisら,Int.J.Dev.Biol.45:1389−97(2001);およびSaint−Jeannetら,Proc.Natl.Acad.Sci.USA 94:13713−8(1997))。BMPシグナル伝達経路は骨および結合組織の発達、修復およびホメオスタシスにおいて確定された役割を有している(「骨生物学の原理、第2版(Principles of Bone Biology)」,J.Bilezikian,L.Raisz and G.Rodan編集,Academic Press,第919〜28頁(2002)に含まれているRosen and Wozneyの「骨形態形成タンパク質(Bone Morphogenetic Proteins)」の論評を参照)。コルディンは、潜伏複合体中にBMPsを隔離することによってさらに成人におけるBMPシグナル伝達も変調する発生中に重要な分子である(Reddi,Arthritis Res.3:1−5(2001)の中で検討されたPiccoloら,Cell 86:589−98(1996);DeRobertisら,Int.J.Dev.Biol.45:189−197(2001))。DkkがLRPを介してWntシグナル伝達経路およびコルディンを介してBMP経路の両方により骨量変調に影響を及ぼす可能性がある。
さらに、多数の推定成長因子、成長因子関連タンパク質、および細胞外マトリックスタンパク質がDkk−1相互作用タンパク質として同定されている。Y2Hアッセイにおいて同定されたDkk−1相互作用タンパク質に関する追加の情報は、本出願書に提供したアクセッション番号の使用を介してPubMedのような公衆が利用できるデータベースから入手できる。本発明の1つの好ましい実施形態では、これらのDkk−1相互作用タンパク質またはその生物学的に活性なフラグメントのアミノ酸配列を使用してDkk、Dkk−1、LRP5、LRP6、HBM、またはWnt活性を変調した。これらのタンパク質はDkk−1と相互作用するとして同定されたが、種々のDkkタンパク質間の実質的相同性のために、そのような相互作用タンパク質は他のDkkファミリーメンバーと相互作用すると想定されている。
4.アプタマー模倣物
本発明はさらにまた、Dkk、特にDkk−1、およびLRP5ペプチドアプタマーの模倣物を提供する。そのようなアプタマーは、化学者にとって該アプタマーの模倣物化合物を構成するための有用な構造的ガイドである。該アプタマーおよびそれらの模倣物はLRP−もしくはDkk−媒介性の疾患および状態を治療するための治療薬として有用である。
5.核酸分子
本発明はさらにまた、DkkおよびDkk相互作用タンパク質、および/またはLRP5(さらにLRP6およびHBM)の生物学的活性を変調するためにこれらのタンパク質と相互作用するポリペプチドおよびタンパク質をコードする核酸分子を提供する。好ましい実施形態は、好ましくは単離形または精製形にある図7の核酸、図5に列挙したDkk−1相互作用タンパク質、Dkk−1のポリペプチドアプタマー(図3−配列番号171〜188)、LRP5(図4−配列番号189〜192)、図12のポリヌクレオチド(配列番号193〜203)によってコードされた図13のペプチドアプタマー(配列番号204〜214を含む)、LRP6およびHBM、および本明細書記載した関連融合タンパク質を含むDkk−1タンパク質のフラグメントをコードする核酸を提供する。ここで使用する「核酸」は上記のようなペプチドをコードする、またはこのようなペプチドをコードする核酸配列に相補的である、または該核酸のセンスもしくはアンチセンス鎖のいずれかへハイブリダイズして適切なストリンジェンシー条件下でそれに安定性で結合し続けるRNA、DNA、またはcDNAであると定義されている。該核酸は、該ペプチド配列と少なくとも約75%、好ましくは少なくとも約80%、およびより好ましくは少なくとも約85%の配列同一性を共有するポリペプチドをコードしていてよい;少なくとも約90%、95%、96%、97%、98%、および99%以上もまた想定されている。特に想定されているのはゲノムDNA、cDNA、mRNA、アンチセンス分子、酵素的に活性な核酸(例えば、リボザイム)、ならびに代替バックボーンに基づく核酸である、または天然原由来であろうと合成されたものであろうと選択的塩基を含んでいる。しかしこのようなハイブリダイジングもしくは相補的核酸は、さらにコードして適切なストリンジェンシー条件下でハイブリダイズする、または本発明に従ったタンパク質をコードする核酸に対して相補的であるものを含むあらゆる先行技術核酸に照らして新規かつ非自明であると定義されている。
ここで使用するヌクレオチド配列との関連での用語「ハイブリダイゼーション」(ハイブリダイズまたはハイブリダイゼーションする)および「特異性」(〜に対して特異的)は互換的に使用される。2つのヌクレオチド配列が相互にハイブリダイズする能力は、2つのヌクレオチド配列の相補性の程度に基づいており、これは順にマッチした相補的ヌクレオチド対の分画に基づいている。所定の配列内に他の配列に相補的であるより多くのヌクレオチドがあると、1つのヌクレオチドからもう1つのヌクレオチドへのハイブリダイゼーションの程度が大きくなる。ハイブリダイゼーションの程度はさらにまた温度、溶媒比、塩濃度等を含むストリンジェンシーの条件にも依存する。特に「選択的ハイブリダイゼーション」は、本発明のポリヌクレオチドのその標的へのハイブリダイゼーションの程度が完全もしくはほぼ完全な相補性を必要とするであろう条件に関連する。相補性は、本発明のポリヌクレオチドがハイブリダイゼーション培地中に存在する他の核酸の結合と比較して標的ヌクレオチド配列へ特異的に結合することを保証できるように十分に高くなければならない。選択的ハイブリダイゼーションを用いると、相補性は約90〜100%、好ましくは約95〜100%、より好ましくは約100%であろう。
「ストリンジェントな条件」とは、(1)例えば:50℃で0.015M NaCl、0.0015Mクエン酸ナトリウム、0.1% SDSのように洗浄のために低イオン強度および高温を使用する条件、または(2)ハイブリダイゼーション中に例えば42℃で0.1%ウシ血清アルブミン、0.1%フィコール(Ficoll)、0.1%ポリビニルピロリドン、および750mM NaCl、75mMクエン酸ナトリウムを備える50mMリン酸ナトリウムバッファー(pH6.5)を含む50%(容積/容積)ホルムアミドのようなホルムアルミドのような変性剤を使用するような条件である。別の例は、42℃での0.2×SSCおよび0.1% SDS中での洗浄とともに、42℃での50%ホルムアミド、5×SSC(0.75M NaCl、0.075Mクエン酸ナトリウム)、50mMリン酸ナトリウム(pH6.8)、0.1%ピロリン酸ナトリウム、5×デンハルト液(Denhardt’s solution)、超音波処理サケ***DNA(50μg/mL)、0.1% SDS、および10%硫酸デキストランの使用である。当業者であれば、明瞭かつ検出可能なハイブリダイゼーションシグナルを入手するために適切なストリンジェンシー条件を容易に決定して変化させることができる。
ここで使用する核酸分子は、該核酸分子が実質的に核酸の起源からの他のポリペプチドをコードする汚染核酸から分離されている場合は「単離(された)」もしくは「精製(された)」と言われる。単離(された)もしくは精製(された)はさらにまた、Dkk遺伝子を挟む周囲ゲノム配列が欠如しているDkkまたはそのフラグメントをコードする核酸を含めることが意図されている。単離(された)もしくは精製(された)はさらにまた、Dkk相互作用タンパク質遺伝子を挟む周囲ゲノム配列が欠如しているDkk相互作用タンパク質またはその生物学的に活性なフラグメントをコードする核酸を含めることが意図されている。
本発明はさらにまた、コードする核酸分子のフラグメントを提供する。ここで使用するコードする核酸分子のフラグメントとは、全タンパク質コード配列の小部分を意味する。該フラグメントのサイズは、使用目的によって決定されるであろう。例えば、該フラグメントが該タンパク質の活性部分をコードするように選択される場合は、該フラグメントは該タンパク質の1つ以上の機能的領域をコードするのに十分大きいことが必要であろう。該フラグメントが核酸プローブもしくはPCRプライマーとして使用される場合は、フラグメント長はプロービング/プライミング中の相当に小数の偽陽性を入手できるように選択される。
ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)のためのプローブもしくは特異的プライマーとして、または本発明のタンパク質をコードする遺伝子配列を合成するために使用される本発明のコードする核酸分子のフラグメント(すなわち合成オリゴヌクレオチド)は、例えばMatteucciらのホスホトリエステル法(J.Am.Chem.Soc.103:3185−3191(1981))のような化学的技術によって、または自動合成法を使用して容易に合成できる。さらに、より大きなDNAセグメントは、該遺伝子の様々なモジュラーセグメントを定義する1群のオリゴヌクレオチドの合成、その後の完全修飾遺伝子を構築するためのオリゴヌクレオチドのライゲーションのようなよく知られた方法によって容易に作製することができる。
本発明のポリペプチドをコードする核酸分子はさらに、診断目的およびプローブ目的で検出可能な標識を含むように修飾できる。様々なこのような標識は当分野で知られており、本明細書記載したコードする分子と一緒に容易に使用できる。適切な標識には、ビオチン、放射標識ヌクレオチド等が含まれるが、それらに限定されない。当業者であれば、標識されたコードする核酸分子を入手するための当分野で知られている標識のいずれかを使用することができる。
翻訳中にタンパク質配列内に組み込まれたアミノ酸の欠失、付加、または変化による一次構造自体への修飾は、該タンパク質の活性を破壊せずに行うことができる。このような置換またはその他の変化は、本発明の意図された適用範囲内に含まれる核酸によってコードされたアミノ酸配列を有するタンパク質を生じさせる。
該ポリペプチドをコードする配列または相補的配列に対応するアンチセンス分子を作製することができる。mRNAへ結合し、三重らせんを形成する、または酵素的に活性でTSG RNAを劈開するアンチセンス分子および一本鎖DNA(ssDNA)を作製する方法は当分野において知られている。例えば、「アンチセンスおよびリボザイム方法論:実験手引き書(Antisense and Ribozyme Methodology:Laboratory Companion)」(Ian Gibson編集、Chapman&Hall,1997)および「リボザイムプロトコール:分子生物学における方法(Ribozyme Protocols:Methods in Molecular Biology)」(Philip C.Turner編集,Humana Press,Clifton,NJ,1997)を参照されたい。
同様に想定されているのは、転写後遺伝子サイレンシング(PTGS)、抑制(quelling)およびRNA干渉(RNAi)を媒介する化合物の使用である。これらの化合物は、典型的には約21〜約25ヌクレオチドであり、短い干渉RNAもしくは短い抑制RNA(siRNA)としても知られている。siRNAは開始二本鎖RNA(dsRNA)から作製される。siRNAが機能する完全メカニズムは十分には解明されていないが、これらのsiRNAが標的mRNAからdsRNA内へ転換し、その後分解されることは知られている。好ましい形態は5’リン酸化siRNAであるが、ヒドロキシル化形もまた利用できる。siRNAの作製およびメカニズムに関する追加の背景情報については、一般に例えばLipardiら,Cell 107(3):297−307(2001);Boutlaら,Curr.Biol.11(22):1776−80(2001);Djikengら,RNA7(11):1522−30(2001);Elbashirら,EMBO J.20(23):6877−88(2001);Harborthら,J.Cell Sci.114(Pt.24):4557−65(2001):Hutvagnerら,Science 293(5531):811−3(2003);およびElbashirら,Nature 411:494−98(2001)を参照されたい。
同様に想定されるのはショートヘアピンRNA(shRNA)である。sRNAは上記のsiRNA法の修飾である。外因的に合成されたdsRNAを胞内にトランスフェクトする代わりに、配列特異的サイレンシングはフォールドバック・ステムループ、またはヘアピンとしてDNAテンプレートからのsiRNAを安定化発現させることによって達成することができる。このアプローチはshRNAとして知られている。この方法は例えば試薬のRNase変性、費用のかかる化学合成等のようなsiRNAと関連する多数の問題を回避することによって哺乳動物細胞中での配列特異的遺伝子サイレンシングに起因する機能表現型の消失の解析を許容する。shRNAの作製およびメカニズムに関する追加の背景情報については、例えばYuら,PNAS 99:6047−6052(2002);Paddisonら,Genes and Devel.16:948−58(2002);およびBrummelkampら,Science 296:550−553(2002)を参照されたい。哺乳動物遺伝子ノックダウン方法におけるこの方法の使用に関する追加の背景情報については、Tuschl,Nature Biotech.20:446−448(2002)(およびその中の参考文献)を参照されたい。
1つの好ましい実施形態では、siRNAもしくはshRNAはDkkをコードするmRNAに関するが、このとき好ましいDkkはDkk−1である。また別の実施形態では、siRNAもしくはshRNAはDkkに結合してその活性を変調する、またはDkkによって変調されるタンパク質に関する;これらのタンパク質にはLRP5、LRP6およびHBMならびにWnt経路の他のメンバーが含まれる。
6.他の関連核酸分子の単離
Dkkの核酸分子を同定できれば、当業者はDkkファミリーの他のメンバーをコードする核酸分子を単離することができる(Krupnikら,1999を参照)。さらに、本明細書開示した核酸分子を使用すると、当業者はDkk−1に加えてDkk−1様タンパク質をコードする核酸分子を単離することができる。本明細書開示したDkk相互作用タンパク質およびそれらの対応する核酸分子を使用すると、当業者はさらにDkk−1と相互作用する他の関連タンパク質ファミリーメンバーを単離することができる。
当業者は、DkkおよびDkk相互作用タンパク質のアミノ酸配列を使用して適切な細胞から作製された発現ライブラリーをスクリーニングするための抗体プローブを容易に作製することができる。典型的には、例えば精製タンパク質を用いて免疫化されたウサギのような哺乳動物からのポリクローナル抗血清(下記で説明する)またはモノクローナル抗体を使用すると、例えばヒトマクロファージライブラリーのような哺乳動物cDNAもしくはゲノム発現ライブラリーを精査して該タンパク質ファミリーの他のメンバーについて適切なコード配列を入手することができる。クローニングされたcDNA配列は融合タンパク質として発現させる、その自己制御配列を使用して直接的に発現させる、または所望のタンパク質の発現のために使用された特定宿主に適切な制御配列を使用した構造によって発現させることができる。
あるいはまた、本明細書記載したコード配列の一部分を合成してプローブとして使用することによりいずれかの哺乳動物からのタンパク質ファミリーのメンバーをコードするDNAを回収することができる。約18〜20ヌクレオチド(約6〜7アミノ酸伸長をコードする)を含有するオリゴマーを作製して使用すると、ストリンジェンシー条件下、または過度なレベルの偽陽性を排除するために十分にストリンジェントな条件下でハイブリダイゼーションを達成するためにゲノムDNAもしくはcDNAライブラリーをスクリーニングすることができる。
さらに、オリゴヌクレオチドプライマーの対を作製すると、ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)においてコードする核酸分子を選択的にクローン化するために使用できる。このようなPCRプライマーを使用するためのPCR変性/アニール/伸長サイクルは当分野においてよく知られており、他のコードする核酸分子を単離するのに使用するために容易に適応させることができる。例えば縮重プライマーを利用すると、Dkk−1およびDkk−1相互作用タンパク質に関連する配列を入手できる。完全に相補性ではないが、それでもまだ標的配列またはフランキング配列の一部分にハイブリダイズすることができ、それによって標的配列の全部もしくは一部分の増幅を提供するプライマーを構成することができる。約20ヌクレオチド以下のプライマーは、好ましくは5’および/または3’末端に位置する約1〜3個のミスマッチを有している。約20〜30ヌクレオチドのプライマーは約30%までのミスマッチを有しているが、それでもまだ標的配列にハイブリダイズすることができる。ミスマッチを含むプライマーのためのハイブリダイゼーション条件は、Maniatisら,「分子クローニング:実験マニュアル(Molecular Cloning:A Laboratory Manual)」(Cold Spring Harbor Laboratory,Cold Spring Harbor,NY,1982)に記載された方法、または既知の方法を参照することにより決定することができる。この方法を用いると様々な条件下で該プライマーがDkk−1、Dkk−1相互作用タンパク質いずれかの配列、または関連配列へハイブリダイズする能力を決定することができる。標的配列は知られているので、ミスマッチの作用は当業者に知られている方法によって決定できる。縮重プライマーは、Dkk−1およびDkk−1相互作用タンパク質遺伝子の推定保存アミノ酸配列に基づくであろう。
7.ポリペプチド発現のためのrDNA分子
本発明は、さらにまたポリペプチドコーディング配列を含有する組換えDNA分子(rDNA)を提供する。ここで使用するrDNA分子はインサイチュで分子操作を受けているDNA分子である。rDNA分子を作製する方法は当分野においてよく知られているが、例えばSambrookら,「分子クローニング:実験マニュアル(Molecular Cloning:A Laboratory Manual)」(Cold Spring Harbor Laboratory,Cold Spring Harbor,NY,1989)を参照。好ましいrDNA分子では、コードするDNA配列は発現制御配列および/またはベクター配列へ機能的に連結されている。
本発明のタンパク質ファミリーをコードする配列の1つがそれに機能的に連結しているベクターおよび/または発現制御配列の選択は、当分野においてよく知られているように、例えばタンパク質発現のような所望の機能的特性、および形質転換されるべき宿主細胞に直接的に依存する。本発明によって想定されるベクターは、rDNA分子において含まれる構造的遺伝子の少なくとも宿主染色体内への複製および/または挿入、および好ましくはさらに発現を指令することができる。
機能的に連結したタンパク質をコードする配列の発現を調節するために使用される発現制御エレメントは当分野においてよく知られており、誘導プロモーター、構成性プロモーター、分泌シグナル、およびその他の調節エレメントが含まれるが、それらに限定されない。好ましくは、誘導プロモーターは例えば宿主細胞の培地中での栄養に反応性であるように、容易に制御される。好ましいプロモーターには酵母プロモーターが含まれ、これにはメタロチオネイン、3−ホスホグリセリン酸キナーゼまたは例えばエノラーゼまたはグリセルアルデヒド−3−ホスフェイトデヒドロゲーゼ、マルトースおよびガラクトース利用に責任を負う酵素その他のような他の糖分解酵素に対するプロモーター領域が含まれる。酵母発現に使用するために適切なベクターおよびプロモーターはさらに欧州特許第73,675A号に記載されている。適切な外来哺乳動物プロモーターにはSV40早期および後期プロモーター(Fiersら,Nature,273:113(1978))またはMoloneyマウス白血病ウイルス、マウス腫瘍ウイルス、トリ肉腫ウイルス、アデノウイルスII、ウシパピローマウイルス、もしくはポリオーマ由来のプロモーターを含むであろう。さらに、該構築物は該遺伝子の複数のコピーを作製できるように増幅可能な遺伝子(例えば、DHFR)へ結合させることができる。適切なエンハンサーおよびその他の発現制御配列については、「エンハンサーおよび真核遺伝子発現(Enhancers and Eukaryotic Gene Expression)」(Cold Spring Harbor Press,Cold Spring Harbor,NY,1983)も参照されたい。好ましい骨関連プロモーターには、ヒトHBM、Zmax1/LRP5もしくはLRP6 cDNAの発現を駆動するCMVbActinもしくはI型コラーゲンプロモーターが含まれる。哺乳動物発現のための他の好ましいプロモーターはサイトメガロウイルス(CMV)、ラウス肉腫ウイルス(RSV)、シミアンウイルス40(SV40)、およびEF−1a(ヒト伸長因子1a−サブユニット)由来である。
1つの実施形態では、ベクターを含有するコーディング核酸分子は、例えば原核レプリコン、すなわちそれを用いて形質転換された細菌宿主細胞のような原核宿主細胞中で染色体外での組換えDNA分子の自立複製および維持を指令する能力を有するDNA配列が含まれる。このようなレプリコンは当分野においてよく知られている。さらに、原核細胞レプリコンを持つベクターには、さらにまたその発現が薬物耐性のような検出可能なマーカーを付与する遺伝子が含まれてよい。典型的な細菌薬物耐性遺伝子はアンピシリンまたはテトラサイクリンへの耐性を付与する遺伝子である。
原核レプリコンを含むベクターはさらにまた、例えば大腸菌のような細菌宿主細胞における遺伝子をコードする配列の発現(転写および翻訳)を指令することのできる原核もしくはバクテリオファージプロモーターを含むことができる。プロモーターは、RNAポリメラーゼの結合および転写の発生を許容するDNA配列によって形成された発現制御エレメントである。細菌宿主と適合するプロモーター配列は、本発明のDNAセグメントを挿入するために便宜的な制限酵素認識部位を含有する典型的にはプラスミドベクター中で提供される。このようなベクタープラスミドの中で典型的であるのはバイオラッド・ラボラトリーズ(Biorad Laboratories、リッチモンド、CA)から入手できるpUC8、pUC9、pBR322およびpBR329、およびファルマシア(Pharmacia、ピスカタウェイ、NJ)から入手できるpPLおよびpKK223である。
真核細胞と適合する発現ベクター、好ましくは脊椎動物細胞と適合する発現ベクターもまた、さらにまたコード配列を含有するrDNA分子を形成するために使用することができる。真核細胞発現ベクターは当分野においてよく知られており、数種の市販入手源から入手できる。典型的には、所望のDNAセグメントを挿入するための便宜的な制限酵素認識部位を含有するこのようなベクターが提供される。このようなベクターの典型的なものはpSVLおよびpKSV−10(ファルマシア)、pBPV−1/pML2d(インターナショナル・バイオテクノロジー[International Biotechnologies]社)、ヒスチジンタグおよびペリプラスム分泌を含むベクター系、または当分野で記載されている他のベクターである。
本発明のrDNA分子を構築するために使用される真核細胞発現ベクターはさらにまた、真核細胞において有効である選択マーカー、好ましくは薬物耐性選択マーカーを含んでいてよい。好ましい薬物耐性マーカーは、その発現がネオマイシン耐性を生じさせる遺伝子、すなわちネオマイシンホスホトランスフェラーゼ(ネオ)遺伝子である(Southernら,J.Mol.Anal.Genet.1:327−341(1982))。あるいはまた、選択マーカーは別個のプラスミド上に存在していてよい、そして2つのベクターは宿主細胞のコトランスフェクションによって導入することができ、選択マーカーのために適切な薬物中での培養によって選択することができる。
8.外来的に供給されたrDNA核酸分子を含有する宿主細胞
本発明はさらに、本発明のポリペプチドもしくはタンパク質をコードする核酸分子を用いて形質転換された宿主細胞を提供する。宿主細胞は原核細胞または真核細胞のいずれであってもよい。本発明のタンパク質の発現のために有用である真核細胞は、該細胞系が細胞培養法と適合し、発現ベクターの伝播および遺伝子産物の発現と適合する限り、限定されない。好ましい真核宿主細胞には酵母、昆虫および哺乳動物細胞、好ましくはマウス、ラット、サル、もしくはヒト細胞系からのような脊椎動物細胞が含まれるがそれらに限定されず、さらに例えば軟骨を備える無脊椎動物からの細胞を含むこともできる。好ましい真核宿主細胞にはチャイニーズハムスター卵巣(CHO)細胞(ATCCアクセッション番号CCL61)、NIHスイスマウス胚細胞NIH/3T3(ATCC番号CRL1658)、ベビーハムスター腎細胞(BHK)、HOB−03−CE6骨芽細胞およびその他の真核組織様培養細胞系が含まれるが、それらに限定されない。
あらゆる原核宿主を使用して本発明のタンパク質をコードするrDNA分子を発現させることができる。好ましい原核宿主は大腸菌である。
本発明の組換えDNA(rDNA)分子を用いた適切な細胞宿主の形質転換は、典型的には使用するベクターのタイプおよび利用する宿主系に依存するよく知られた方法によって遂行される。原核宿主細胞の形質転換に関しては、典型的にはエレクトロポレーションおよび塩処理法が使用される;例えば、Cohenら,Proc.Natl.Acad.Sci.USA69:2110(1972);Maniatisら(1982);およびSambrookら(1989)を参照されたい。rDNAを含有するベクターを用いた脊椎動物細胞の形質転換に関しては、典型的にはエレクトロポレーション、カチオン性脂質もしくは塩処理法が使用される;例えば、Grahamら,Virol.52:456(1973);Wiglerら,Proc.Natl.Acad.Sci.USA 76:1373−76(1979)を参照されたい。
形質転換に成功した細胞、すなわち本発明のrDNA分子を含有する細胞は選択マーカーについての選択を含むよく知られた技術によって同定することができる。例えば本発明のrDNA分子の導入の結果として生じた細胞は単一コロニーを作製するためにクローン化することができる。それらのコロニーからの細胞は採取し、溶解させ、そしてそれらのDNA含量を、Southern,J.Mol.Biol.98:503(1975)またはBerentら,Biotech.3:208(1985)によって記載されているような方法を使用してrDNAの存在について試験することができる。あるいはまた、該細胞を培養してrDNAによりコードされたタンパク質を作製し、例えばいずれかの適切な免疫学的方法を使用して該タンパク質を採取してアッセイすることができる。例えばHarlowら(1988)を参照されたい。
コード配列および非コード配列の機能を解析するために組換えDNAもまた利用できる。mRNAの翻訳を変調する配列を親和性マトリックス系で利用すると、Dkk−1もしくはDkk相互作用タンパク質もしくは発現制御配列と関連する細胞溶解液から入手したタンパク質を精製することができる。合成オリゴヌクレオチドは、当分野において一般に知られているように、ビーズに結合させて該溶解液を用いて精査されるであろう。関連するタンパク質はその後、例えば二次元SDS−PAGEシステムを用いて分離できよう。このように単離されたタンパク質は、さらに質量分析法またはタンパク質シーケンシング法を使用して同定できよう。その他の方法は当業者には明白であろう。
9.cDNAまたはその他の組換え核酸を使用した組換えペプチドおよびタンパク質の生成
本発明はさらにまた、Dkkタンパク質およびそのポリペプチドフラグメントをコードする核酸分子、ならびにDkk(例えば、LRP5、LRP6およびHBM、図5のタンパク質のようなDkk相互作用タンパク質)および分子アナログに結合するタンパク質およびポリペプチドに関する。本発明のポリペプチドには全長Dkkおよびそのポリペプチドフラグメント、Dkk結合タンパク質およびそのポリペプチドが含まれる。好ましくは、これらのタンパク質は哺乳動物タンパク質であり、最も好ましくはヒトタンパク質およびその生物学的に活性なフラグメントである。また別の実施形態には共通ポリペプチド配列からの少なくとも約3、5、7、8、9、10、15、20、25、30、40、50、60、70、80、90、100、125、150、175、または200アミノ酸残基の連続アミノ酸配列を有するポリペプチドフラグメントをコードする核酸分子;アミノ酸残基が該ポリペプチド配列またはそのフラグメントのN末端もしくはC末端へ、またはその中に挿入されている共通ポリペプチド配列のアミノ酸配列変異体;および他の保存残基によって置換されている共通ポリペプチド配列またはそのフラグメントのアミノ酸配列変異体が含まれる。ポリペプチドをコードする組換え核酸分子には、例えば相同的組換え、部位特異的もしくはPCR突然変異誘発による所定の突然変異を含有するもの、および脊椎動物(例えば、ウサギ、ラット、マウス、ブタ、ラクダ、爬虫類、ヤギ、鳥類、魚類、ウシ、ヒツジ、ウマおよび非ヒト霊長類種)ならびに無脊椎動物を含むがそれらに限定されない他の動物種の組換えDkkタンパク質もしくはポリペプチドフラグメント、および上記の種およびヒト配列のDkk結合タンパク質の対立遺伝子または他の天然型変異体およびホモログが含まれる。ここで同様に想定されるのは一般に知られているDkk、Dkk相互作用タンパク質、もしくはそれらのフラグメントの誘導体であるが、このときDkk、Dkk相互作用タンパク質、もしくはそれらのフラグメントは置換、化学的、酵素的、またはその他の適切な手段によって天然型アミノ酸以外の成分(例えば、酵素もしくはラジオアイソトープのような検出可能な成分)およびDkkの可溶形を用いて共有的に修飾されている。さらにまた、本発明が内因性配列にハイブリダイズし、そしてそれでも同一ポリペプチドをコードするサイレント突然変異を含む核酸を含むことも想定されている。
Dkk結合タンパク質、DkkのLRP5結合ドメインフラグメント、またはその他の本発明のポリペプチドをコードする核酸分子は、好ましくは共通生物学的活性(例えば、LRP5、HBMもしくはLRP6との相互作用のようなDkk活性を媒介する)を共有する核酸分子である。本発明のポリペプチドには、サイレント突然変異を含む核酸分子によってコードされるポリペプチド、ならびに保存的アミノ酸置換、対立遺伝子変異体、および少なくとも1つのDkk活性を維持している本明細書開示したポリペプチドの他の変異体を含む生物学的に活性なタンパク質をコードする核酸が含まれる。
本発明のアミノ酸化合物は、指定されたクラスのアミノ酸残基に関して部分的に定義されるポリペプチドである。ポリペプチドホモログは以下で記載するアミノ酸クラス内の保存的アミノ酸置換を含むであろう。アミノ酸残基は、一般に以下のような4つの主要サブクラスに分類することができる。
酸性:該残基は、生理的pHでのH+イオンの消失に起因する負電荷を有しており、そして該残基は該ペプチドが水性溶媒中にあるときにそれが生理的pHで含有されているペプチドの立体構造における表面位置を探索できるように水溶液によって誘引される。
塩基性:該残基は生理的pHでのH+イオンとのつながりに起因する正電荷を有しており、そして該残基は該ペプチドが水性溶媒中にあるときにそれが生理的pHで含有されているペプチドの立体構造における表面位置を探索できるように水溶液によって誘引される。
中性/非極性:該残基は生理的pHでは荷電していないが、該残基は該ペプチドが水性溶媒中にあるときにそれが含まれているペプチドの立体構造における内部位置を探索できるように水溶液によって反発される。これらの残基は「疎水性」とも表示される。
中性/極性:該残基は生理的pHでは荷電していないが、該残基は該ペプチドが水性溶媒中にあるときにそれが生理的pHで含有されているペプチドの立体構造における外部位置を探索できるように水溶液によって誘引される。
当然ながら、個々の残基分子の統計的集合においては、一部の分子が荷電していて一部が荷電していない、そして水性溶媒からの誘因または反発が多かれ少なかれ生じると理解されている。「荷電した」の定義に適合するためには、個々の分子の統計的有意なパーセンテージ(少なくとも約25%)が生理的pHで荷電している。極性または非極性と分類するために必要な誘因または反発の程度は任意であるので、このため本発明によって特別に想定されるアミノ酸は一方または他方であると分類されている。特別に指名されていないほとんどのアミノ酸は既知の挙動に基づいて分類できる。
アミノ酸残基はさらにまた、環状もしくは非環状、および芳香族もしくは非芳香族、残基の側鎖置換基に関する一目瞭然の分類、および小さいもしくは大きいと分類することができる。該残基は、カルボキシル炭素を含む計4個以下の炭素原子を含有する場合は小さいと見なされる。小さい残基は、当然ながら常に非芳香族である。
遺伝子をコードする第2アミノ酸プロリンは技術的には中性/非極性/大/環状および非芳香族群に含まれるが、それがペプチド鎖の第2立体構造に及ぼす既知の作用に起因して特別なケースであり、このためこの定義群には含まれない。
該遺伝子内でコードされるもののその他のアミノ酸置換基もまた本発明の範囲内のペプチド化合物に含むことができ、それらの構造にしたがってこの一般スキーム内に分類することができる。
本発明の化合物はすべて医薬上許容される塩もしくはエステルの形状であってよい。塩は例えばNa+、K+、Ca+2、Mg+2等であってよい;エステルは一般に1〜6個の炭素からなるアルコールのエステルである。
本発明はさらに、本明細書記載した核酸分子を使用して本発明のタンパク質を作製する方法を提供する。一般的に言って、タンパク質の組換え形の生成には典型的には以下のステップが含まれる。
第1に、例えばヒトDkkまたはその他のDkk配列をコードする核酸分子のようなDkkをコードする、またはDkk結合タンパク質、Dkkアプタマーまたはその生物学的に活性なフラグメントをコードする核酸分子が入手される。特にDkk結合ペプチドのためには該ペプチドをコードするヌクレオチドがインフレーム融合の形で核酸内に組み込まれる、またはチオレドキシンコード配列へ挿入または付加される。該コード配列(ORF)は、イントロンによって中断されないので、あらゆる宿主において直接発現させるために適している。
これらのDNAは真核細胞または原核細胞のような宿主細胞内へトランスフェクトさせることができる。真核宿主には哺乳動物細胞および脊椎動物(例えば、骨芽細胞、骨肉腫細胞系、ショウジョウバエS2細胞、肝細胞、腫瘍細胞系およびその他のあらゆる哺乳動物の骨細胞、ならびに例えば組換えバキュロウイルスを使用したSf9細胞のような昆虫細胞)が含まれる。動物細胞中のDkkを変調するためには例えば、I型コラーゲンプロモーターの制御下でオープンリーディングフレーム(ORF)を発現するDNA、またはオステオカルシン ヒストン、I型コラーゲン、TGFβ1、MSX2、cfos/cJunおよびCbfa1のような骨芽細胞プロモーターを使用できる。あるいはまた該核酸は誘導プロモーターから下流で置換することができ、これはその後脊椎動物または無脊椎動物細胞内に入れることができ、またはトランスジェニック動物モデルを作製する際に使用することができる。
あるいはまた、本発明のタンパク質およびポリペプチドは異種系において発現させることができる。ヒト細胞系GM637、SV−40形質転換ヒト線維芽細胞は、トリアクチンプロモーターの制御下でDkkリガンド結合ドメインコード配列を含むプラスミドを用いてトランスフェクトすることができる(Reisら,EMBO J.11:185−193(1992))。このようにトランスフェクトされた細胞は、機能アッセイにおけるDkk結合ドメインの起源として使用することができよう。あるいはまた、Dkkの一部分のみ、または本明細書開示したDkk結合ペプチドのいずれかをコードするポリペプチドまたはDkk相互作用タンパク質をコードするDkkアプタマーもしくはポリペプチドは単独で、または融合タンパク質の形で発現させることができる。例えばDkk由来ペプチドはGST−またはHis−タグ融合タンパク質として細菌(例えば、大腸菌)中で発現させることができる。これらの融合タンパク質はその後精製して、ポリクローナル抗体を生成するために使用できる、または他のDkkリガンドを同定するために使用できる。
核酸コード配列は、オープンリーディングフレームをコードするタンパク質を含有する発現単位を形成するために、好ましくは上記のように適切な制御配列と機能的に連結させて配置される。該発現単位は適切な宿主を形質転換させるために使用され、形質転換された宿主は組換えタンパク質の作製を許容する条件下で培養される。任意で、組換えタンパク質は培地または細胞から単離される;該タンパク質の回収および精製は、一部の不純性を認容できる一部の場合は必要とされないことがある。
上記のステップの各々は様々な方法で実施できる。例えば、所望のコード配列はゲノムフラグメントから入手して適切な宿主中で直接に使用できる。種々の宿主中で機能的である発現ベクターの構築は、上記で記載したように適切なレプリコンおよび制御配列を使用して遂行される。制御配列、発現ベクター、および形質転換法は該遺伝子を発現させるために使用される宿主細胞のタイプに依存し、上記で詳細に考察した。適切な制限酵素認識部位は、通常入手できない場合は、これらのベクター内に挿入する切り取り可能な遺伝子を提供できるようにコード配列の末端へ付加することができる。当業者であれば、組換えタンパク質を生成するために本発明の核酸分子と一緒に使用するために当分野で知られているあらゆる宿主/発現系を容易に適応させることができる。
10.結合パートナーを同定する方法
本発明のまた別の実施形態は、DkkもしくはDkk相互作用タンパク質の結合パートナーを単離および同定する際に使用する方法を提供する。DkkもしくはDkk相互作用タンパク質またはそのポリペプチドフラグメントは、潜在的結合パートナーとDkkもしくはDkk相互作用タンパク質との結び付きを許容する条件下で潜在的結合パートナーまたは細胞の抽出液もしくは分画と混合することができる。混合後、DkkもしくはDkk相互作用タンパク質と結び付いたペプチド、ポリペプチド、タンパク質またはその他の分子は該混合物から分離される。該ポリペプチドに結合した結合パートナーはその後、精製してさらに分析することができる。DkkおよびDkk相互作用タンパク質の結合パートナーならびにDkkとその相互作用タンパク質の1つ(例えば、LRP5、LRP6、HBM、または図5に列挙したタンパク質)との相互作用を防止する物質の決定は、当分野において知られているような多数の様々な競合アッセイを使用して実施できる。例えば、本明細書記載したようなDkkの最小配列を使用するとDkk−1との結合およびその逆についてLRP5(またはLRP6、HBM、またはその他のリガンド結合パートナー)と競合する抗体を同定することができる。最小Dkk配列は96ウェルプレート(またはその他の固体基質)の底部に結合することができ、そして抗体または他の潜在的結合物質(例えば、ポリペプチド、模倣物、ホモログ、抗体フラグメント等)を競合アッセイにおいてスクリーニングして例えばDkkの天然リガンド結合パートナーよりも大きい結合親和性を備える物質を同定することができる。
本発明では、適切な細胞を使用してLRPおよび/またはDkkまたは相互に相互作用するタンパク質の発現についてのアッセイを作製することができる。これらの細胞は哺乳動物、酵母、真菌またはウイルスから作製されても、引き出されてもよい。本発明のために適切な細胞は、検出可能なDkk−LRP(またはHBM)相互作用、および好ましくは、Dkk−1−LRP5とDkk−1−HBMとの示差的相互作用を示すことのできる細胞が含まれるが、それらに限定されない。所望のアッセイのためには、細胞タイプは様々であってよい。数種の実施形態では、例えばヒト骨芽細胞(例えば、hOB−03−CE6)または骨肉腫細胞(例えば、U2OS)のような骨細胞が好ましい。追加のhOB細胞はhOB−03−C5、hOB−02−02、およびhOB−01−C1−PS−09細胞(ATCC:アメリカンタイプカルチャーコレクション、マナサス、VAにPTA−785の名称で保管されている)と呼ばれる不死化前骨細胞性細胞系である。骨肉腫細胞の例にはSaoS2、MG63およびHOS TE85が含まれるであろう。不死化とは、実質的に無制限の細胞分割能力を備える持続的かつ永続的に確立された細胞培養を意味する。すなわち、該細胞は実質的に無制限に、すなわち少なくとも6ヵ月間は高速成長条件下で、好ましくはより緩徐な成長条件下ではるかに長期間にわたって培養することができ、かつルーチンの細胞培養技術を使用して高速かつ持続的に繁殖させることができる。あるいはまた言い換えれば、好ましい細胞は少なくとも約100、150または200集団倍加期間にわたって培養することができる。これらの細胞は正常ヒト骨芽細胞に特徴的なタンパク質の補体を生成することができ、骨芽細胞分化を行うことができる。これらは例えば、ホルモン、サイトカイン、および成長因子のような様々な物質への骨芽細胞感受性の細胞培養試験に、または組織療法において使用できる。検出可能なDkk−LRP(またはHBM)相互作用を示すHEK 293細胞のような一定の非骨細胞もまた本発明のアッセイのために有用である。
結合パートナーを同定かつ単離するためには、全Dkkタンパク質(例えば、ヒトDkk−1、GenBankアクセッション番号BAA34651)またはDkk相互作用タンパク質(一部のDkk−1相互作用タンパク質についてのGenBankアクセッション番号は図5に示した)を使用できる。あるいはまた該タンパク質のポリペプチドフラグメントを使用できる。該タンパク質の適切なフラグメントにはいずれかのDkkまたはDkkインタラクター配列の少なくとも約5、6、7、8、9、10、15、20、25、30、35、40、45、50、55、60、65、70、75、80、85、90、95、100、110、120、130、140、150以上の連続アミノ酸残基が含まれる。Dkkの好ましい配列にはシステインリッチドメイン(例えば、Dkk−1のCys−1およびCys−2)の一方もしくは両方の一部もしくは全部またはDkk−1のアミノ末端での保存配列が含まれる(Krupnikら,Gene 238:301−313(1999)を参照)。あるいはまた、LRP5、LRP6、HBMまたはDkk−1と相互作用する図5に示したもののような他のDkk相互作用タンパク質の部分を使用してDkk活性を変調する物質を同定かつ単離することができる。あるいはまた、LRP5、LRP6、HBMまたはDkk−1と相互作用する図5に示したもののような他のDkk相互作用タンパク質のペプチドアプタマーを使用してDkk活性を変調する物質を同定かつ単離することができる。
ここで使用する細胞抽出液とは、溶解または破壊された細胞から作製される調製物もしくは分画を意味する。細胞抽出液を入手するためには様々な方法を使用できる。細胞は、物理的または化学的破壊方法のいずれかを使用して破壊することができる。物理的破壊法の例には、超音波処理および機械的剪断が含まれるがそれらに限定されない。化学的溶解法の例には界面活性剤溶解法および酵素溶解法が含まれるがそれらに限定されない。当業者であれば、細胞抽出液を作製するための方法を本発明方法に使用するための抽出液を入手するために容易に適応させることができる。
細胞の抽出液が作製されると、該抽出液は本発明のタンパク質と、該タンパク質と該結合パートナーとの結び付きが発生できる条件下で混合される。様々な条件を使用できるが、最も好ましいのはヒト細胞の細胞形質中で見いだされる条件に密接に近似する条件である。浸透圧、pH、温度、および使用される細胞抽出液の濃度のような特徴は該タンパク質と該結合パートナーとの結び付きを最適化するように変化させることができる。
適切な条件下で混合した後、結合複合体は該混合物から分離される。該混合物を分離するためには様々な技術を利用できる。例えば、本発明のタンパク質に特異的な抗体を使用すると結合パートナー複合体を免疫沈降させることができる。あるいはまた、クロマトグラフィーおよび密度/沈殿物遠心分離のような標準化学的分離技術も使用できる。例えば、本発明のタンパク質はHisタグのような親和性タグを用いて発現させられる。His標識タンパク質およびあらゆる結合分子を維持してNi−NTAカラムから選択的に溶出することができる。
該抽出液中で見いだされた、結び付いていない細胞成分を除去した後、該結合パートナーは従来型方法を使用して複合体から分離することができる。例えば、該分離は該混合物の塩濃度もしくはpHを変化させることによって遂行できる。
混合抽出液から結び付いた結合パートナー対を分離するのに役立つように、本発明のタンパク質は固体支持体上に固定することができる。例えば、該タンパク質はニトロセルロースマトリックスまたはアクリルビーズに付着されてもよい。該タンパク質の固体支持体への付着は該抽出液中で見いだされた他の成分からペプチド/結合パートナー対を分離する際に役立つ。同定された結合パートナーは単一タンパク質であっても、2個以上のタンパク質から形成された複合体であってもよい。
あるいはまた、本発明の核酸分子はY2H系に使用できる。Y2H系は他のタンパク質パートナー対を同定するために使用されてきており、本明細書記載した核酸分子を使用するために容易に適応させることができる。Y2H系を実施かつ使用するための方法はよく知られている。例えば、酵母2ハイブリッド系(The Yeast Two−Hybrid System)(Paul L.Bartelら編集、オックスフォード、1997)の中のFinleyら,「遺伝的調節ネットワークの2ハイブリッド解析(Two−Hybrid Analysis of Genetic Regulatory Networks)」;酵母2ハイブリッド系(The Yeast Two−Hybrid System)(Paul L.Bartelら編集、オックスフォード、1997)の中のMeijia Yang,「2ハイブリッドアッセイにおけるコンビナトリアルペプチドライブラリーの使用(Use of a Combinatorial Peptide Library in the Two−Hybrid Assay)」;Gietzら,「関心タンパク質と相互作用するタンパク質の同定:酵母2ハイブリッド系の適用(Identification of proteins that interact with a protein of interest:Applications of the yeast two−hybrid system)」,Mol.& Cell.Biochem.172:67−9(1997);K.H.Young,「酵母2ハイブリッド:相互作用が多いほど、所要時間が少なくなる(Yeast Two−Hybrid:So Many Interactoins,(in) so Little Time)」,Biol.Reprod.58:302−311(1998);R.Brentら,「2ハイブリッド法を用いて遺伝子および対立遺伝子機能を理解する(Understanding Gene and Allele Function with Two−Hybrid Methods)」,Annu.Rev.Genet.31:663−704(1997)および米国特許第5,989,808号を参照されたい。図5に同定したDkk−1相互作用タンパク質はベイトとしてDkk−1を使用するY2H相互作用系を使用して同定した。
Dkkモジュレーターについての1つの好ましいインビトロ結合アッセイは、DkkのLRP結合ドメインと1つ以上の候補結合標的もしくは基質との混合物を含むであろう。該混合物を適切な条件下で培養した後、候補モジュレーターと結合しているDkkまたはそのフラグメントが存在するかどうかを決定するであろう。無細胞結合アッセイのためには、1つ以上の成分は通常は標識を含んでいる、またはそれに結合している。該標識は例えば放射能、発光、光学もしくは電子密度等のような直接検出、または例えばエピトープタグ、酵素等のような間接的検出を提供することができる。該標識の性質および他のアッセイ成分に依存する標識を検出するために様々な方法を使用できる。例えば、固体基質に結合している標識を検出できる、または該標識を含有する結合複合体の一部分を該固体基質から分離して、その後に該標識を検出できる。蛍光共鳴エネルギー転移を利用すると2つの標識分子の相互作用を監視できる。例えば、Dkk上の蛍光標識およびLRP5またはその可溶性フラグメント上の例えば細胞外ドメインのような別の標識は、近傍にあるときは蛍光共鳴エネルギーを交換して、これら2つの分子が結合していることを示すであろう。Dkkに対する好ましい結合パートナーはDkkとLRP5との親和性を増加または減少させ、これは蛍光分光計において容易に観察されるであろう。あるいはまた、BIAcore(ウプサラ、スウェーデン)によって製造された表面プラズモン共鳴検出器のような機器を使用すると固定標的との相互作用を観察することができる。当業者であればこの目的に使用できる多数の他の方法を知っている。
これにより、本発明は本発明のポリペプチドを含む候補を、これらの候補が貴重な薬物リードであると同定する活性についてスクリーニングする方法を提供する。その他の適切な方法は当分野においても知られており、アフリカツメガエル卵母細胞注入試験およびTCFルシフェラーゼアッセイを含めてここで使用するために適している。
その他のアッセイを使用すると、Wnt経路におけるDkkおよびDkk相互作用タンパク質の活性ならびにDkkおよびDkk相互作用タンパク質がWnt経路に及ぼす変調剤の影響を同定することができる。これには、Wntシグナル伝達変調を監視するための例えばアフリカツメガエル胚アッセイおよびTCFルシフェラーゼレポーター遺伝子アッセイが含まれる。
アフリカツメガエル胚はWntシグナル伝達の変調を評価するための情報を提供するインビボアッセイ系である。Wntシグナル伝達経路の一定のWntsまたはその他のアクチベーターの異所性発現は、前神経板の分岐を生じさせる。この分岐は重複体軸を生じさせ、これは胚発生中のWntシグナル伝達にとっての役割を示唆している(McMahonら,Cell 58:1075−84(1989);Sokolら,Cell 67:741−52(1991))。これらの最初の観察以降、アフリカツメガエル胚アッセイはWntシグナル伝達経路の変調を評価するためのアッセイ系として広範囲に使用されてきた。本発明の1つの好ましい実施形態は図6に示した。
アフリカツメガエル発現のための構築物は当分野でよく知られているように作製できる。例えば、アフリカツメガエル卵母細胞注入実験において使用するmRNAのインビトロ生成を促進するために様々なcDNAがベクターpC32+内へ工学的に作製されてきた(Turnerら,Genes Devel.8:1434−1447(1994))。DNA挿入断片はベクターSP6プロモーターに関してセンス方向においてサブクローニングされる。該挿入断片の下流では、該ベクターはSV40ウイルスポリアデニル化シグナルおよびT3プロモーター配列(すなわち、アンチセンスmRNAの生成のために)を提供する。構築物は様々なDkkファミリーメンバー、LRP5、LRP6、HBM、Dkk−1インタラクター等に対して生成することができる。構築物は、酵母スクリーニングにおいて同定されたペプチドアプタマーをコードする核酸配列を含有するpCS2+内で生成できよう。これらの配列は、該ペプチドアプタマーが該細胞から翻訳および分離されることを保証するために5’合成翻訳開始配列、その後に正規シグナル配列へ融合させられるであろう。
これらの構築物が作製されると、その後はmRNAを合成してアフリカツメガエル卵母細胞内へ注入することができる。アフリカツメガエル胚内へ顕微注入するためのmRNAは、テンプレートとして上記のpC32+ベクター内のcDNA構築物を使用するインビトロ転写によって生成される。実質的にMoonら,Technique−J.of Methods in Cell and Mol.Biol.1:76−89(1989)、およびPeng,Meth.Cell.Biol.36:657−62(1991)に記載されているように、様々な量のRNAを4−もしくは8細胞アフリカツメガエル胚の腹側割球内に注入することができる。
以前のデータは、Wnt5aの存在下でLRP5の発現がアフリカツメガエル胚中でWnt誘導性重複体軸形成を生じさせることを証明している(Tamaiら,Nature 407:530−535(2000))。Dkk−1およびDkk−2、およびDkk−1相互作用タンパク質がインビボのLRP5−媒介性Wnt反応を変調する際の役割は、例えばアフリカツメガエル胚を使用して解析できる。さらに、ペプチドアプタマー、Dkk相互作用タンパク質、または上記の組合せは同様の方法で評価できる。
観察された表現型の特異性を確認するために、RNAを背側割球に注入する実験もまた実施できる。例えば緑色蛍光タンパク質(GFP)もしくはlacZのようなマーカー遺伝子を実験RNAと一緒に共注入する細胞系統追跡実験もまた実施できる。マーカー遺伝子発現の検出はマイクロインジェクションの標的細胞を同定して作用機序の解明に役立つであろう。上記に列挙したWntシグナル伝達成分に加えて、HBMがWnt経路に作用する時点についても解析できる。これは種々のドミナントネガティブ構築物の共注入によって実施できる。例えば、ドミナントネガティブTCF−3構築物は、観察された体軸重複(およびWnt活性化)がβ−カテニン−TCF反応を解して媒介されるのを証明するのに有用であろう。もしそうであれば、このような構築物は観察された重複体軸表現型を無効にすると予想されるであろう。また別の例には、ドミナントネガティブDsh構築物が含まれる。DshはWntシグナル伝達経路においてはるかに上流であるので、ドミナントネガティブ構築物はWnt反応の活性化および観察された体軸重複を無効にするはずである。そうでなければ、これは体軸重複が相違するシグナル伝達経路を介して誘導されることを示唆するであろう。
注入されたアフリカツメガエル胚のマーカー遺伝子は以下のように解析できる。マーカー遺伝子解析のためには、代表的胚はステージ10.5(受精11時間後)に採取する。RNAは標準プロトコールにしたがって胚から抽出かつ精製する(Sambrookら,1986年,7.16)。マーカー遺伝子には以下のものが含まれよう:Siamois(すなわち、Wnt反応性遺伝子)、Xnr3(すなわち、Wnt反応性遺伝子)、slug(すなわち、神経堤マーカー)、Xbra(すなわち、早期中胚葉マーカー)、HNK−1(すなわち、外胚葉/神経堤マーカー)、内皮(すなわち、内胚葉)、XIhbox8(すなわち、膵臓)、BMP2およびBMP4(すなわち、早期中胚葉)、XLRP6(すなわち、母体および接合体発現、カエルにおいてはLRP6ホモログでもある)、EF−1(すなわち、コントロール)およびODC(すなわち、コントロール)。マーカー遺伝子の誘導はRT−PCR/TaqMan(登録商標)によって解析および定量される。
このタイプのマーカー解析は、シグナル伝達摂動の直接的結果として胚内で極めて初期に生じる遺伝子発現における変化を監視するために極めて優れている。より組織もしくは空間的に制限された方法での遺伝子発現における変化を監視する他の実験を構成できるであろう。その例にはトランスジェニックアフリカツメガエルモデルの生成が含まれる。例えば、Zmax/LRP5およびHBM発現は各々中胚葉または体節中で一過性に遺伝子発現を指令する短尾もしくは心臓アクチンプロモーターの制御下で生じることができよう。これらのトランスジェニックアフリカツメガエルの表現型解析はマーカー遺伝子解析/転写プロファイリング(制限された組織源から)および外組織の組織学的検査を含むであろう。
Wntシグナル伝達活性、Dkk活性およびDkk相互作用タンパク質活性を監視するためには、実施例7に記載したようなTCF−ルシフェラーゼアッセイ系もまた使用できる。TCF−ルシフェラーゼアッセイのための構築物は当分野においてよく知られているように作製できる。例えば、DkkおよびDkk相互作用タンパク質ペプチド、特にLRP5/LRP6は他の中で分泌のための標的ペプチドへのKozakおよびシグナル配列を使用してpcDNA3.1内で発現させることができる。
構築物が作製されると、骨芽細胞およびHEK293細胞のような細胞をウェルプレート内に播種し、構築物DNA、CMV β−ガラクトシダーゼプラスミドDNA、およびTCF−ルシフェラーゼレポーターDNAを用いてトランスフェクトする。その後これらの細胞を溶解させ、Dkk、Dkk相互作用タンパク質、または例えば抗体のような他の分子がWntシグナル伝達に影響を及ぼすかどうかを決定するためにβ−ガラクトシダーゼおよびルシフェラーゼ活性について評価される。
Wntシグナル伝達活性、Dkk活性、およびDkk相互作用タンパク質活性を監視するための追加のアッセイには以下が含まれる。
レポーター遺伝子活性によって可視化されるような他のWnt反応性転写因子、LEFの変調。1つの例には、ルシフェラーゼレポーター遺伝子へ融合したLEF1プロモーター領域の活性化が含まれる(Hsuら,Mol.Cell.Biol.18:4807−18(1999))。
細胞増殖、細胞周期もしくはアポトーシスにおける変化。Shimizuら,Cell.Growth Differ.8:1349−58(1997)を含むWnt媒介性細胞形質転換を記載した多数の例がある。
Wnt活性化のインジケーターとしての脱リン酸化β−カテニンの安定化および細胞局在化(Shimizuら,1997)。
正規または非正規経路のどちらかを通してWntシグナル伝達をアッセイする追加の方法は、当業者には明白であろう。
11.Dkkおよび/またはLRP5タンパク質および/またはDkk相互作用タンパク質をコードする核酸の発現を変調する物質を同定する方法
本発明のまた別の実施形態はDkkをコードする核酸の発現を変調する物質を同定する方法を提供する。このようなアッセイは、本発明の核酸の発現レベルにおける変化を監視するために利用できるあらゆる手段を利用できる。ここで使用する物質は、細胞中での核酸の発現をアップレギュレートまたはダウンレギュレートすることができる場合は、Dkkの発現を変調すると言われる(例えば、mRNA)。
1つのアッセイフォーマットでは、Dkk(またはDkkの活性を変調するタンパク質)をコードする核酸といずれかのアッセイ可能な融合パートナーとのレポーター遺伝子融合を含有する細胞系を作製できる。ホタルルシフェラーゼ遺伝子およびクロラムフェニコールアセチルトランスフェラーゼをコードする遺伝子を含むがそれらに限定されない多数のアッセイ可能な融合パートナーが知られており、容易に入手できる(Alamら,Anal.Biochem.188:245−254(1990))。レポーター遺伝子融合を含有する細胞系は、その後適切な条件下および時間で試験される物質へ曝露させられる。該物質へ曝露させられたサンプルとコントロールサンプルとの間でのレポーター遺伝子の示差的発現は、Dkkをコードする核酸またはDkk活性を変調する他のタンパク質の発現を変調する物質を同定する。このようなアッセイは、LRP5およびLRP6活性さえがDkk活性を調節することによって変調するかどうかを決定するために同様に使用できる。
追加のアッセイフォーマットを使用して1つ以上の物質が単独もしくはDKkおよびLRP5のようなDkk、および/または例えば図5に同定されたもののようなDkk相互作用タンパク質をコードする核酸の発現を変調する能力を監視することができる。例えば、mRNA発現は本発明の核酸へのハイブリダイゼーションによって直接に監視することができる。細胞系は適切な条件下および時間で試験される物質へ曝露させられ、全RNAもしくはmRNAがSambrookら(1989);Ausubelら,「分子生物学における最新プロトコール(Current Protocols in Molecular Biology)」(Greene Publishing Co.,NY,1995);Maniatisら,「分子クローニング:実験マニュアル(Molecular Cloning:A Laboratory Manual)」,(Cold Spring Harbor Laboratory,Cold Spring Harbor,NY,1982);および「分子生物学におけるショートプロトコール:分子生物学における最新プロトコールからの方法の概論(Short Protocols in Molecular Biology:A Compendium of Methods from Current Protocols in Molecular Biology)」(Frederick M.Ausubelら,1999年4月)に開示される方法のような標準方法によって単離される。
該物質に曝露させた細胞とコントロール細胞との間のRNA発現レベルにおける差を検出するためのプローブは本発明の核酸から作製できる。不可欠ではないが、高ストリンジェンシーの条件下で標的核酸とのみハイブリダイズするプローブを構成することが好ましい。高度に相補的核酸ハイブリッドだけが高ストリンジェンシーの条件下で形成される。したがって、アッセイ条件のストリンジェンシーがハイブリッドを形成するために2本の核酸鎖間に存在しなければならない相補性の量を決定する。ストリンジェンシーはプローブ:標的ハイブリッドと潜在的プローブ:非標的ハイブリッドとの間の安定性における差を最大化するように選択しなければならない。
プローブは、当分野において知られている方法を通して本発明の核酸から構成できる。例えば、プローブのG+C含量およびプローブ長はその標的配列に結合するプローブに影響を及ぼすことができる。プローブ特異性を最適化する方法は一般に利用できる。例えば、Sambrookら(1989)もしくはAusubelら「分子生物学における最新プロトコール(Current Protocols in Molecular Biology)」、(Greene Publishing Co.,NY,1995)を参照されたい。
ハイブリダイゼーション条件は、例えばSambrookら(1989);Ausubelら(1995)によって記載されているもののような既知の方法を使用して、各プローブに適合するように修正される。全細胞RNAまたはポリA RNAに富むRNAのハイブリダイゼーションはいずれかの利用可能なフォーマットで遂行できる。例えば、全細胞RNAまたはポリA RNAに富むRNAは固体支持体へ付着させ、該固体支持体を該プローブが特異的にハイブリダイズする条件下で本発明の少なくとも1つの核酸配列、または1つの核酸配列の一部分を含んでいる少なくとも1つのプローブへ曝露させることができる。あるいはまた、本発明の少なくとも1つの配列、または1つの配列の一部分を含んでいる核酸フラグメントを例えば多孔性ガラスウェハーのような固体支持体に付着させることができる。ガラスもしくはシリカウェハーは、その後付着させた配列が特異的にハイブリダイズする条件下でサンプルからの全細胞RNAまたはポリA RNAへ曝露させることができる。このようなガラスウェハーおよびハイブリダイゼーション法は広く利用可能であり、例えばBeattie(WO95/11755号)に開示されている。所定のプローブが未処理細胞集団および該物質に曝露させた細胞集団からのRNAサンプルに特異的にハイブリダイズする能力を試験することによって、Dkk、Dkk相互作用タンパク質、および/またはLRP5をコードする核酸の発現をアップレギュレートまたはダウンレギュレートする物質を同定できる。
マイクロアレイテクノロジーおよび転写プロファイリングは、推定DkkもしくはDkk相互作用タンパク質を変調する化合物の影響を解析するために使用できる方法の例である。転写プロファイリングのためには、Dkk相互作用タンパク質を変調する物質である本発明で同定されたDkk相互作用タンパク質(例えば、図5に同定されたもの)、および該物質に曝露されなかった同一タイプの細胞からのmRNAのようなインビボで潜在Dkk変調剤へ曝露させた細胞からのmRNAは逆転写させて多数の遺伝子からのDNAを含有するチップへハイブリダイズさせ、それによって該物質を用いて処理された、および処理されていない細胞中の遺伝子発現と比較することができよう。例えば推定Dkk変調剤が細胞内のDkkの発現をダウンレギュレートする場合は、一定の患者集団においては該物質の使用が望ましくない可能性がある。転写プロファイリングの追加の方法およびマイクロアレイの使用のためには、例えばLizardi(2000)へ発行された米国特許第6,124,120号を参照されたい。
DkkおよびDkk相互作用タンパク質を変調する化合物またはDkkもしくはDkk相互作用タンパク質がLRP5、LRP6、HBMもしくはWnt経路の変調に及ぼす作用をスクリーニングする追加の方法にはタンパク質検出のためのTaqMan PCR、従来型逆転写酵素PCR(RT−PCR)、下流代理マーカー(すなわち、Wnt反応性遺伝子)における変化、および抗Dkkウェスタンブロットの使用が含まれる。その他の方法は当業者には容易に明白であろう。
12.Dkk、Dkk相互作用タンパク質、またはLRP5/LRP6/HBMの少なくとも1つの活性を変調する物質を同定する方法
本発明のまた別の実施形態は、Dkk、Dkk相互作用タンパク質、および/またはLRP5/LRP6/HBMタンパク質の少なくとも1つの活性を変調する物質を同定する、または好ましくはDkk/Dkk相互作用タンパク質複合体もしくはLRP5(またはLRP6/HBM)/Dkk複合体、またはDkkの生物学的に活性なフラグメント(例えば、LRP5/LRP6/HBMに結合するドメインを含んでいる)またはDkk相互作用タンパク質複合体の1つの活性を特異的に変調する物質を同定する方法を提供する。このような方法またはアッセイは当分野で知られているような所望の活性を監視または検出するあらゆる手段を利用できる(例えば、Wuら,Curr.Biol.10:1611−4(2000);Fediら,J.Biol.Chem.274:19465−72(1991);Grotewoldら,Mech.Dev.89:151−3(1999);Shibataら,Mech.Dev.96:243−6(2000);Wangら,Oncogene 19:1843−8(2000);およびGlinkaら,Nature 391:357−62(1998)を参照されたい)。Dkkを変調する可能性がある物質には、例えばDkk−1を誘導できる癌抑制タンパク質であるp53が含まれる。DNAの損傷もまたp53の安定化および活性化を介してDkk−1発現をアップレギュレートすることが観察されている(Wangら,Oncogene 19:1843−48(2000));およびShouら,Oncogene 21:878−89(2002))。さらにFediら(1999)は、Dkk−1がNIH−3T3細胞のWnt2−誘導発癌性形質転換を遮断できることを証明したと言われている。さらにその上、Dkk発現を発達中の骨格においてBMPシグナル伝達により変調できることが示唆されている(Mukhopadhyayら,Dev.Cell.1:423−34(2001);およびGrotewoldら,EMBO J.21:966−75(2002))。Grotewoldらはさらに、UV照射およびその他の遺伝毒性刺激を含むストレスシグナルに反応して変化したDkk発現レベルについて述べている。彼らは、Dkk発現が前アポトーシス性であると提案している。高骨量を付与するHBM構築物を発現する動物においては、骨芽細胞アポトーシス作用の低下が観察された。そこでHBMおよびHBM様変異体はプログラムされた細胞死におけるDkkの役割を制御/変化させる可能性がある。Dkk活性を変調する可能性がある他の物質には、図5に同定されたDkk相互作用タンパク質が含まれる。
1つの実施形態では、試験される物質へ曝露させられている1つの細胞集団の相当量のDkkもしくはDkk相互作用タンパク質が曝露させられていないコントロール細胞集団と比較される。抗体を使用して相違する細胞集団における該タンパク質の示差的発現を監視することができる。細胞系もしくは細胞集団は適切な条件下および時間で試験される物質へ曝露させられる。細胞溶解液は曝露させた細胞系もしくは細胞集団およびコントロールの曝露させられていない細胞系もしくは細胞集団から作製できる。細胞溶解液はその後、当分野でよく知られているようにプローブを用いて解析される。例えばEd Harlow and David Lane,「抗体:実験マニュアル(Antibodies:A Laboratory Manual),(Cold Spring Harbor,NY,1988)およびEd Harlow and David Lane,「抗体を使用する:実験マニュアル(Using Antibodies:A Laboratory Manual)」,(Cold Spring Harbor,NY,1988)を参照されたい。
例えばDkkのN末端およびC末端フラグメントは、細菌中で発現させてこれらのフラグメントに結合するタンパク質を検索するために使用できる。例えばDkkのN末端もしくはC末端領域(またはDkk−1の生物学的に活性なドメイン)へのHisタグもしくはGST融合のような融合タンパク質または全Dkkタンパク質を作製できる。これらの融合タンパク質は、例えばTalonもしくはグルタチオン−セファロースビーズへ結合させ、その後Dkkへ結合する分子を同定するために細胞溶解液を用いて精査できる。溶解させる前に、これらの細胞は精製Wntタンパク質、RNA、またはWntシグナル伝達またはWnt経路の下流エレメントと相互作用するタンパク質を変調できる薬物を用いて処理することができる。融合タンパク質に結合している溶解液タンパク質は、SDS−PAGEによって分解させ、単離し、例えば当分野で知られているようにタンパク質順または質量分析法によって同定することができる。例えば、「タンパク質精製用途:実践アプローチ(Protein Purification Applications:A Practical Approach)(Simon Roe編集、第2版、Oxford Univ.Press,2001)およびMeth.Enzymology 182巻(Academic Press,1997)の中の「タンパク質精製の指針(Guide to Protein Purification)」を参照されたい。
Dkk、Dkk相互作用タンパク質、またはDkkとLRP5/LRP6/HBMとの複合体の活性は、DkkとDkk相互作用タンパク質(例えば、図5に示したもの)および/またはDkkとLRP5/LRP6/HBMとの相互作用を変調する化合物によって影響を受ける可能性がある。本発明はこれらの化合物の発見および特性解析のための方法および研究用ツールを提供する。DkkもしくはDkk相互作用タンパク質および/またはDkkとLRP5/LRP6/HBMとの相互作用はインビボおよびインビトロにおいて監視できる。Dkk−LRP5/LRP6/HBM複合体の安定性を変調する化合物は可能性のある治療用化合物である。インビトロ法の例には以下のものが含まれる:プラズモン共鳴分析法観察を実施するためにバイアコア(Biacore、ウプサラ、スウェーデン)によって製造されたような機器のために構成されたセンサーチップへのLRP5/LRP6/HBM、Dkk、またはDkk相互作用タンパク質の結合。この方法では、Dkk、Dkk相互作用タンパク質、またはLRP5/6の1つを含むチップが最初に複合体を形成することを許容する条件下で他のチップへ曝露させられる。試験化合物が導入され、機器の出力シグナルは該試験化合物が発揮したいずれかの作用の指標を提供する。この方法によって、化合物を迅速にスクリーニングすることができる。また別のインビトロ法は、SAR−by−NMR法によって例示される(Shukerら,Science.274:1531−4(1996))。手短かにはDkk−1結合ドメインおよび/またはLRP5もしくは6LBDが発現させられ、標識培地中での発現によって15N標識タンパク質として精製される。標識タンパク質は、NMRサンプルチューブ内の溶液中で複合体を形成させられる。試験化合物の存在下および不在下での異核相関スペクトルが試験化合物との相互作用および該複合体のタンパク質−タンパク質界面での変化に関する個々の残基レベルでのデータを提供する。当業者であれば、例えば親和性キャピラリー電気泳動法(Okunら,J Biol Chem 276:1057−62(2001);Vergun and Chu,Methods,19:270−7(1999))、蛍光分析法、電子常磁性共鳴法等のような、複合体の変調を監視できる、および/または複合体形成に対する結合親和性を測定できる多数の他のプロトコールを知っている。
Dkk/LRP5/LRP6/HBM複合体の変調を監視するためのインビトロプロトコールには酵母2ハイブリッドプロトコールが含まれる。酵母2ハイブリッド法を使用すると、Dkkの融合タンパク質とLRPリガンド結合ドメインとの複合体の形成によって活性化された遺伝子の発現を監視することによってインビボでの複合体の変調を監視することができる。相互作用DkkおよびLRP LBDドメインをコードする本発明に従った核酸がベイトおよびプレイプラスミド内に組み込まれる。Y2Hプロトコールは1つ以上の試験化合物の存在下で実施される。該複合体の変調は、該複合体活性化遺伝子の発現における変化によって観察される。当業者には、試験化合物を該アッセイに直接添加できる、またはタンパク質の場合、ベイトおよびプレイ化合物と一緒に酵母内で共発現させることができる。同様に、DkkおよびDkk相互作用タンパク質の融合タンパク質はさらにまたY2Hスクリーニングにおいて使用してDkk/Dkk相互作用タンパク質複合体を変調する他のタンパク質を同定することができる。
これらのようなアッセイプロトコールを方法中使用すると、Dkk/Dkk相互作用タンパク質および/またはDkk/LRP5/6複合体を変調する化合物、薬物治療法について、このような変調が競合的結合によって、または結合部位でLRP5/6もしくはDkkのいずれかの構造を変化させることによって、またはタンパク質−タンパク質界面を安定化もしくは脱安定化させることによって発生するかどうかをスクリーニングすることができる。ペプチドアプタマーは競合的に結合するが、立体効果によって変化した結合部位構造の導入もまた可能であることを予想できる。
12.1 抗体および抗体フラグメント
DkkまたはLRP5/LRP6/HBMに結合するポリクローナルおよびモノクローナル抗体ならびにこれらの抗体のフラグメントは、当分野においてよく知られているように作製できる。例えば、適切な宿主動物は適切な免疫プロトコールおよび本発明のペプチド、ポリペプチドもしくはタンパク質を使用して免役することができる。免疫に使用するためのペプチドは、典型的には約8〜40残基長である。必要または所望であれば、ポリペプチド免疫原を適切な担体へ抱合させることができる。ウシ血清アルブミン(BSA)、キーホールリンペットヘモシニアン(KLH)のような担体、またはその他の担体タンパク質を用いて免疫原性抱合体を作製する方法は当分野においてよく知られている(Harlowら,1988を参照)。一部の状況では、例えばカルボジミド試薬を使用した直接抱合が有効なことがある;他の例では、Pierce Chemical Co.,ロックフォード、ILによって供給されるもののような連結試薬が該ポリペプチドもしくはハプテンへの接近可能性を提供するために望ましいことがある。ハプテンペプチドは、例えば担体への連結を促進するためにシステイン残基を含むアミノもしくはカルボキシ末端のどちらかで伸長させることができる、またはシステイン残基を割り込ませることができる。免疫原の投与は一般に、当分野において一般に理解されているように、概して適切な時間に渡る注入および適切なアジュバントを使用して実施される。免疫スケジュール中には、抗体形成の妥当性を決定するために抗体の力価が取得される。
抗ペプチド抗体は、例えばDkk−1、もしくはLRP5/LRP6/HBMを含むいずれかのDkkの配列に由来するペプチドのような合成ペプチドを使用して生成することができる。合成ペプチドは長さが2〜3アミノ酸と小さくてよいが、好ましくは少なくとも3、5、10、または15アミノ酸残基長以上である。このようなペプチドは、DNAStarのようなプログラムを使用して決定できる。これらのペプチドは標準方法を使用してKLHへ結合されており、ウサギのような動物内へ免役することができる。ポリクローナル抗Dkkもしくは抗LRP5/LRP6/HBMペプチド抗体は、例えば共有的に結合したペプチドを含有するActigelビーズを使用して精製できる。
この方法で精製されたポリクローナル抗血清は一部の適用には十分であるが、医薬組成物のためにはモノクローナル調製物の使用が好ましい。所望のモノクローナル抗体を分泌する不死化細胞系は、Kohler and Milsteinの標準方法または一般に知られているように、リンパ球もしくは脾臓細胞の不死化を実施する修飾を使用して作製できる(例えば、Harlowら,1988および1998を参照)。所望の抗体を分泌する不死化細胞系は、抗原がペプチドハプテン、ポリペプチドもしくはタンパク質であるイムノアッセイによってスクリーニングすることができる。所望の抗体を分泌する適切な不死化細胞培養が同定されると、該細胞はインビトロまたは腹水中での生成のいずれかで培養できる。
所望のモノクローナル抗体はその後培養上清から、または腹水上清から回収される。免疫学的に有意な部分を含有するモノクローナル抗体のフラグメントはDkk活性のアゴニストまたはアンタゴニストとして使用できる。F(ab’)2フラグメントのFab、scFV、Fab’のような免疫学的反応性フラグメントの使用はしばしば、特に治療状況においては、これらのフラグメントが全免疫グロブリンより概して免疫原性が低いので好ましい。
抗体もしくはフラグメントは、さらにまた最新テクノロジーを使用して組換え手段によって生成できる。DkkもしくはLRP5/LRP6/HBMの所望の領域へ特異的に結合する領域はまた、多数の種起源を用いたキメラの状況において生成することができる。このように作り出された抗体試薬は診断的に、またはDkk活性の刺激薬または阻害薬としての使用のために想定されている。
1つの実施形態では、Dkkに対する抗体は高度の、すなわち10-5〜10-9Mの範囲内の親和性でDkkに結合する。好ましくは、抗Dkk抗体はキメラ、霊長類、Primatized(登録商標)、ヒトもしくはヒト化抗体を含んでいる。同様に、本発明は抗体フラグメント、例えばFab’、Fv’、Fab’、F(ab’)2、およびその凝集体の使用を含んでいる。
また別の実施形態は、DkkまたはLRP5/LRP6/HBMを認識するキメラ抗体を想定している。キメラ抗体とは、非ヒト可変領域およびヒト定常領域、最も典型的には齧歯類可変領域およびヒト定常領域を備える抗体を意味することが意図されている。
「Primatized(登録商標)抗体」とは、例えばCDRのような霊長類可変領域およびヒト定常領域を備える抗体を意味する。好ましくは、このような霊長類可変領域は旧世界ザル由来である。
「ヒト化抗体」とは、実質的にヒトフレームワークおよび定常領域、および非ヒト相補性決定領域(CDRs)を備える抗体を意味する。「実質的に」とは、ヒト化抗体が典型的に少なくとも数個のドナーフレームワーク残基(すなわち、CDRが由来する非ヒト親抗体の)を維持しているという事実を意味する。
キメラ、霊長類、Primatized(登録商標)、ヒト化およびヒト抗体を生成する方法は当分野においてよく知られている。それらの全部が参照することにより組み込まれる例えばQueenらに発行された米国特許第5,530,101号;Winterらに発行された米国特許第5,225,539号;各々BossらおよびCabillyらに発行された米国特許第4,816,397号および第4,816,567号を参照されたい。
ヒト定常領域の選択は、主題抗DkkまたはLRP5/LRP6/HBM抗体の治療有効性にとって重要な可能性がある。1つの好ましい実施形態では、主題抗DkkまたはLRP5/LRP6/HBM抗体は、ヒト、γ1もしくはγ3定常領域および、より好ましくはヒトγ1定常領域を含むであろう。
ヒト抗体を作製する方法も知られており、例えばSCIDマウス、およびインビトロ免疫における産生が含まれる。
主題抗DkkまたはLRP5/LRP6/HBM抗体は様々な投与形路、典型的には非経口的に投与できる。これは静脈内、筋肉内、皮下、直腸内、膣内を含むことが意図されるが、静脈内注入による投与が好ましい。
抗DkkまたはLRP5/LRP6/HBM抗体は治療用途のために標準方法によって、例えば無菌食塩水、無菌緩衝水、プロピレングリコールおよびそれらの組合せのような医薬上許容されるバッファーの添加によって作製される。
有効量は、多数の要素の中でも特異的抗体、患者の状態、年齢、体重、またはいずれかの他の治療に依存する。典型的な有効量は、約0.001〜約30mg/kg(体重)、より好ましくは約0.01〜25mg/kg(体重)、および最も好ましくは約0.1〜約20mg/kg(体重)の範囲内である。
このような投与は、投与される用量および患者の反応に依存して、例えば週1回、隔週、または月1回のような様々のプロトコールによって実行できる。同様に、このような投与と他の両方を結合することが望ましいことがある。
図5に同定したもののようなDkk−1相互作用タンパク質に対する抗体もまた本発明によって想定されており、上記の方法論で言及したDkk−1抗体に類似して使用できる。
本発明の抗体は、実験的スクリーニングにおいて、診断試薬として、および治療用組成物として利用できる。
12.2 化学ライブラリー
これらの方法によってアッセイできる物質は、無作為に選択でき、または合理的に選択もしくは構成できる。ここで使用するように、1つの物質が、該物質がDkk−1単独、Dkk−1相互作用タンパク質単独の関連に含まれる特異的配列を考慮に入れずに、またはそれらの関連基質、結合パートナー等を用いて無作為に選択される場合は、無作為に選択されると言われる。無作為に選択された物質の例は、化学ライブラリーもしくはペプチドコンビナトリアルライブラリーの使用、または生物の成長用ブロスの使用である。
本発明の物質は、例えばペプチド、小分子、ビタミン誘導体、ならびに炭水化物であってよい。当業者であれば、本発明の物質の構造的性質に関して制限がないことを容易に認識することができる。
12.3 ペプチド合成
本発明のペプチド物質は、当分野で知られているような標準固相(もしくは液相)ペプチド合成法を使用して作製できる。さらに、これらのペプチドをコードするDNAは市販で入手できるオリゴヌクレオチド合成用機器を使用して合成でき、標準組換え製造システムを使用して組換え的に製造できる。非核酸コード化アミノ酸を含めなければならない場合には、固相ペプチド合成法を使用したポリペプチドの製造が不可避である。
13.Dkk、Dkk相互作用タンパク質、Dkk/Dkk相互作用複合体、またはDkk/LRP5もしくはDkk/LRP6複合体の少なくとも1つの活性を変調する物質の使用
LRP5、Dkk、およびDkk相互作用タンパク質のアミノ酸配列を含有するタンパク質もしくはポリペプチドのような本発明のタンパク質および核酸は、他のWnt経路媒介性活性の骨量変調および脂質変調に関係している。DkkもしくはDkk相互作用タンパク質、または例えばDkkもしくはDkk相互作用タンパク質の少なくとも1つの活性の各々アゴニストおよびアンタゴニストのような物質の発現を変調(すなわち、アップレギュレートおよびダウンレギュレート)する物質を使用すると、DkkもしくはDkk相互作用タンパク質の機能および活性と関連する生物学的および病理学的プロセスを変調することができる。
ここで使用するような被検対象は、本発明のタンパク質によって変調される病理学的もしくは生物学的プロセスの変調を必要とする哺乳動物である限り、好ましくはあらゆる哺乳動物であってよい。用語「哺乳動物」とは、哺乳類のクラスに属する個体を意味する。本発明は、特にヒト被検対象の治療において有用である。
ここで使用するようなDkkもしくはDkk相互作用タンパク質によって媒介される生物学的および病理学的プロセスにはDkkのDkk相互作用タンパク質への結合、DkkからLRP5もしくはLRP6への結合またはそれらからの遊離、DkkもしくはDkk相互作用タンパク質mRNA合成の阻害または活性化、またはLRP5もしくはLRP6媒介性Wntシグナル伝達のDkkもしくはDkk相互作用タンパク質変調性阻害の阻害が含まれる。さらに例えばアルカリホスファターゼ活性、オステオカルニン産生、または無機物化のような他の骨関連マーカーが観察されてもよい。
病理学的プロセスとは、有害な作用を産生する生物学的プロセスのカテゴリーを意味する。例えば、LRP5もしくはLRP6および/またはDkkおよび/またはDkk相互作用タンパク質の発現または発現のアップレギュレーションは一定の疾患もしくは病理学的状態と結び付いていることがある。ここで使用するように、ある物質は該物質が統計的有意(p<0.05)に被検対象におけるプロセスを規定レベルから変化させる場合に病理学的プロセスを変調すると言われる。例えば、該物質は該物質が投与された被検対象においてそのタンパク質によって媒介されたプロセスの程度もしくは重症度を低下させることができる。例えば、1つの疾患もしくは病理的状態は、本発明のタンパク質の該発現もしくは少なくとも1つの活性を何らかの方法で低下もしくは変調する物質の投与によって防止できる、または疾患の進行を変調できる。
LRP5/6およびDkkは骨量変調において直接的および間接的の両方で関わっているので、本発明の1つの実施形態は骨の状態もしくは疾患を診断する方法としてDkkもしくはDkk相互作用タンパク質発現を使用することである。一定のマーカーは、特異的Wntシグナル伝達状態(例えば、TCF/LEF活性化)関連している。骨の状態についての診断検査には、サンプルまたはその抽出液を、DkkもしくはDkk相互作用タンパク質核酸(すなわち、DNAもしくはRNA)、オリゴマーまたはそのフラグメントまたはTCF/LEF調節発現のタンパク質産物の存在について、検査するステップを含むことができる。例えば、標準インサイチュハイブリダイゼーションまたはその他のイメージング技術を利用するとWntシグナル伝達の産物を観察することができる。
本発明は、さらに骨の発達または骨量減少状態を変調する方法に関する。骨量減少の阻害は、LRP5/6媒介性Wntシグナル伝達経路における変化を阻害もしくは変調することによって達成できる。例えば、LRP5活性の不在には低い骨量が結び付いていることがある。LRP5の活性増加には高い骨量が結び付いていることがある。このため、LRP5活性の変調は順に骨の発達を変調するであろう。アゴニストおよびアンタゴニストを介してのDkk/LRP5/6もしくはDkk/Dkk相互作用タンパク質複合体の変調は骨の発達を調節する方法の1つの実施形態である。このような骨の発達の変調は例えばDkk/LRP(5/6)タンパク質複合体、Dkk/Dkk相互作用タンパク質複合体の活性の阻害、LRP5遺伝子のアップレギュレートされた転写またはDkkもしくはDkk相互作用タンパク質mRNAの翻訳の阻害の結果として生じることがある。
本発明の物質は、単独で、または特定の病理学的プロセスを変調する他の物質と併用して提供することができる。ここで使用するように、2種の物質は該2種の物質が同時に投与される場合、または該2種の物質が同時に機能するような方法で独立して投与される場合に併用投与できると言われる。
本発明の物質は、経口、皮下(sc)、静脈内(iv)、筋肉内(im)、腹腔内(ip)、経皮もしくは舌下経路を介して投与できる。あるいはまた、または同時に、投与は経口経路であってもよい。投与される用量は、レシピエントの年齢、健康および体重、もしある場合は併用療法の種類、治療頻度および所望の効果の性質に依存する。
本発明は、さらにまた本発明のタンパク質の発現もしくは少なくとも1つの活性を変調する1つ以上の物質を含有する組成物を提供する。個体の必要は様々であるが、各構成要素の有効量の最適範囲の決定は当業者の技術の範囲内にある。DkkもしくはDkk相互作用タンパク質活性を媒介する有効成分の典型的な用量は、約0.0001〜約50mg/kg(体重)を含む。好ましい用量は、約0.001〜約50mg/kg(体重)を含む。最も好ましい用量は、約0.1〜約1mg/kg(体重)を含む。体重が70kgの平均的なヒトでは、該範囲は約7μg〜3.5g、より好ましい範囲は約0.5mg〜約5mgであろう。
製薬学的有効成分に加えて、本発明の組成物は作用部位への送達のために医薬上使用できる調製物への活性化合物の加工処理を容易にする賦形剤および補助剤を含む適切な医薬上許容される担体を含むことができる。非経口投与のために適切な調製物には、例えば水溶性塩のような水溶性形にある活性化合物の水溶液が含まれる。さらに、適切な油性注射用懸濁剤としての該活性化合物の懸濁液を投与することができる。適切な脂肪親和性溶媒もしくはビヒクルの例には、例えばゴマ油、もしくは合成脂肪酸エステル(例えば、オレイン酸エチルまたはトリグリセリド類)のような脂肪油が含まれる。水性注射用懸濁剤は例えばカルボキシメチルセルロースナトリウム、ソルビトールおよび/またはデキストランを含む該懸濁液の粘度を増加させる物質を含んでいてよい。任意で、該懸濁剤は安定剤も含んでいてよい。細胞内へ送達するために該物質を封入するためにはリポソームおよびその他の非ウイルスベクターを使用することもできる。
本発明による全身性投与のための医薬調製物は、経口、非経口、または局所(top)投与のために作製することができる。実際に、これら3つのタイプの調製物を使用すると該有効成分の全身性投与を同時に達成することができる。
もしかすると、DkkもしくはDkk相互作用タンパク質に結合する、またはDkk/LRP5もしくはDkk/LRP6もしくはDkk/Dkk相互作用タンパク質複合体を変調するあらゆる化合物は治療用化合物である可能性がある。本発明の1つの実施形態では、本発明によるペプチドもしくは核酸アプタマーが治療用組成物中に使用される。このような組成物は、アプタマー、または修飾されていない、もしくは修飾されているLRP5もしくはLRP6フラグメントを含んでいてよい。また別の実施形態では、該治療用化合物はDkk−1相互作用タンパク質、またはその生物学的に活性なフラグメントを含んでいる。
核酸アプタマーは、例えば該アプタマーの取り込みもしくは安定化を促進する可能性のあるポリエチレングリコール(PEG)のような担体分子への化学結合によって組成物中に使用されてきた。RNAへ負荷されたジアルキルグリセロール部分はリポソーム中に該アプタマーを包埋するので、したがって該化合物を安定化させる。化学的置換(すなわち、RNA中でリボースの2’−OH基を2’−NH基へ変化させるとリボヌクレアーゼ耐性を付与する)およびキャッピング等の組み込みは崩壊を防止できる。数種のこのような技術はBrody and Gold(Rev.Mol.Biol.74:3−13(2000))の中でRNAアプタマーについて考察されている。
ペプチドアプタマーは、アプタマー発現を指示する発現ベクターを、例えばレトロウイルス送達、送達複合体内へのDNAの封入もしくは単純に裸のDNAの注射によるように罹患組織内へ導入することにより治療用途に使用できる。または、アプタマー自体もしくは合成アナログは薬物として直接に使用できる。ポリマーおよび脂質中への封入もまた送達に役立つことがある。治療薬および診断薬としてのペプチドアプタマーの使用は、Hoppe−Syler and Butz(J.Mol.Med.78:426−430(2000)によって検討されている。
本発明のまた別の態様では、本発明の拘束されたペプチドアプタマーの構造を例えばNMRもしくはX線結晶学によって決定できる(Cavanaghら,「タンパク質NMR分光法:原理および実践(Protein NMR Spectroscopy:Principles and Practice),Academic Press,1996;Drenth,「タンパク質X線結晶学の原理(Principles of Protein X−Ray Crystallography)」,Springer Verlag,1999」。好ましくは、構造は標的タンパク質との複合体中で決定される。その後、該アプタマーの三次元構造の機能的エレメントの位置にしたがって小分子アナログが構成される(「ドラッグデザインにおける分子モデリングに関するガイドブック(Guidebook on Molecular Modeling in Drug Design)」,Cohen編集,Academic Press,1996;「分子モデリングおよびドラッグデザイン(分子および構造生物学におけるトピックス)(Molecular Modeling and Drug Design(Topics in Molecular and Structural Biology)),Vinter and Gardner編集,CRC Press,1994)。したがって、本発明はDkk、Dkk相互作用タンパク質、Dkk/Dkk相互作用タンパク質複合体およびDkk/LRP複合体の活性を変調する有効かつ特異的薬物を構成するための方法を提供する。本発明のペプチドアプタマーの小分子模倣物は本発明の範囲内に含まれる。
本発明の方法を実践する際には、本発明の化合物は単独でもしくは組み合わせて、または他の治療薬もしくは診断薬と組み合わせて使用できる。一定の好ましい実施形態では、本発明の化合物は概して許容される医学実践にしたがってこれらの状態に対して典型的に処方される他の化合物と一緒に併用投与することができる。例えば、本発明の化合物は骨量減少を治療するための他の治療薬と併用して投与できる。骨量減少媒介物質には、例えばビスホスホネート製剤(例えば、アレンドロン酸、クロドロン酸、エチドロン酸、パミドロン酸、リセドロン酸およびチルドロン酸)、ビタミンDおよびビタミンDアナログ、カテプシンKインヒビター、ホルモン剤(例えば、カルシトニンおよびエストロゲン)、および選択的エストロゲン受容体変調剤もしくはSERM(例えば、ラロキシフェン)、のような骨吸収インヒビターおよび例えば甲状腺ホルモン(PTH)および骨形態形成タンパク質(BMP)のような骨形成物質が含まれる。
さらに想定されるのは、Dkk−1を調節する物質と例えばHMG−CoAレダクターゼインヒビター(すなわち、Mevacor(登録商標)のようなスタチン類およびBaycol(登録商標)、Lescol(登録商標)、Pravachol(登録商標)およびZocor(登録商標)のような他のインヒビター)、胆汁酸金属イオン封鎖剤(例えば、Colestid(登録商標)およびWelchol(登録商標))、フィブリン酸誘導体(Atromid−S(登録商標)、Lopid(登録商標)、Tricor(登録商標))、およびニコチン酸のような脂質濃度を調節する物質との併用である。
本発明の化合物は通常は脊椎動物において、および好ましくはヒト、ヒツジ、ウマ、ウシ、ブタ、イヌ、ネコ、ラットおよびマウスのような哺乳動物においてインビボで、またはインビトロで利用できる。
14.トランスジェニック動物
Dkkおよび/またはLRP5もしくはLRP6および/または例えば図5に示したもののようなDkk相互作用タンパク質を条件付きで発現するトランスジェニック動物モデルを作製することができる。これらの動物は、Dkk−1/Dkk−1相互作用タンパク質の相互作用および/またはLRP5/Dkk相互作用の生理学的作用について試験するための研究用ツールとして使用できる。あるいはまた、Dkk単独のまたはHBMのトランスジェニック形に加えてトランスジェニック形を発現する、またはDkk相互作用タンパク質単独のもしくはDkkのトランスジェニック形に加えて発現するトランスジェニック動物を作製することができる。HBMもしくはLRP5を発現するトランスジェニック動物をDkkもしくはDkk相互作用タンパク質を発現するトランスジェニック動物と交配させると、両方の所望の遺伝子を発現するヘテロ接合体ならびにホモ接合体動物を得ることができる。
Dkk/Dkk相互作用タンパク質もしくはLRP5/Dkk相互作用活性をインビトロで変調する候補化合物の有効性を決定するための研究用ツールとして役立たせるために、Dkk/Dkk相互作用タンパク質もしくはDkk/LRP5相互作用活性をインビボで直接変調させるための動物モデルを作製できる。例えばトランスジェニックマウスのような動物は、例えばヒトDkkもしくはDkk相互作用タンパク質、または条件付きであってよいマウスDkkもしくはDk相互作用タンパク質をコードする遺伝子のノックアウト(KO)を発現するトランスジェニックマウスを作るために使用される技術を使用して作製できる。ノックイン動物には遺伝子が導入されている動物および以前にノックアウトされた遺伝子が動物内に再導入されている動物が含まれる。その他のトランスジェニック動物は、骨量の発達および減少ならびに脂質濃度の調節に該遺伝子が及ぼす作用を試験するためにDkkもしくはDk相互作用タンパク質の誘導形を用いて作製できる。これらの動物はさらにまたDkkもしくはDk相互作用タンパク質の変調の長期的作用を試験するためにも使用できる。ペプチドアプタマーを発現する、またはRNAアプタマーを産生するトランスジェニック動物を作製することもできる。トランスジェニックベクターは組織特異的プロモーターを使用することによって組織特異的方法での発現を指令できる。1つの好ましい実施形態では、ペプチドアプタマー融合タンパク質は骨特異的プロモーターを使用して発現させられる。このような系は、DkkもしくはDk相互作用タンパク質活性の組織特異的ノックアウトを提供できる。
トランスジェニック動物を作製するための一般的方法は当分野において知られており、例えば「トランスジェニック動物科学における戦術(Strategies in Transgenic Animal Science)」,(Glenn M.Monastersky and James M.Robl編集,ASM Press;Washington,DC,1995);「トランスジェニック動物テクノロジー:実験ハンドブック(Transgenic Animal Technology:A Laboratory Handbook)」,(Carl A.Pinkert編集,Academic Press 1994);「トランスジェニック動物(Transgenic Animals)」,(Louis Marie Houdebine編集,Harwood Academic Press,1997);「トランスジェニックマウスにおけるサイトカインの過剰発現およびノックアウト(Overexpression and Knockout of Cytokines in Transgenic Mice)」,(Chaim O.Jacob編集,Academic Press 1994);「マイクロインジェクションおよび胚発生:戦術およびプロトコール(Microinjection and Transgenesis:Strategies and Protocols)」,(Springer Lab Manual)(Angel Cid−Arregui and Alejandro Garcia−Carranca編集,Springer Verlag 1998);および「マウス胚の操作:実験マニュアル(Manipulating the Mouse Embryo:A Laboratory Manual)」,(Brigid Hoganら編集,Cold Spring Harbor Laboratory Press,1994)に記載されている。
15.ペプチドおよびヌクレオチドアプタマーならびにペプチドアプタマー模倣物
また別の実施態様は、Dkkと相互作用する、LRP5もしくはLRP6との相互作用からDkkを遮断する、またはいずれか他のDkkリガンド相互作用を遮断する、または例えば図5に示したもののようなDkk相互作用タンパク質と相互作用する物質をスクリーニングするためのペプチドおよびヌクレオチドアプタマーテクノロジーの使用を想定している。ペプチドアプタマーは、その中で可変ペプチドドメインが足場タンパク質から表示される分子である。チオレドキシンA(trxA)は、一般にスカフォールドのために使用される。ペプチド挿入断片はtrxAの触媒部位を破壊する。ペプチドアプタマーを拘束および/または提示する足場タンパク質として多数のタンパク質も使用できることは認識されている。拘束されたペプチドアプタマーを表示できた他の足場タンパク質にはスタフィロコッカスヌクレアーゼ、プロテアーゼインヒビターのエグリンC、Streptomyces tendeaアルファアミラーゼインヒビターのTendamistat、Sp1、および緑色蛍光タンパク質(GFP)(Hoppe−Seylerら,J.Steroid Biochem Mol.Biol.78:105−11(2001)において検討された)、およびファージ表示のためのスタフィロコッカスもしくはM13からのS1ヌクレアーゼが含まれよう。アプタマーを固定させてその生体活性形態で提示できるあらゆる分子が適切であろう。
その後、アプタマーはインビトロおよびインビボの所定の標的タンパク質へ特異的に結合して、それらの標的タンパク質の機能を選択的に遮断する能力を有することができる。ペプチドアプタマーは、所望の標的タンパク質へのインビボ結合能力に基づいて無作為化発現ライブラリーから選択される。手短かには標的タンパク質(例えば、Dkk、Dkk相互作用タンパク質、またはLRP5/6)は異種DNA結合ドメイン(BD)へ連結していて、酵母試験菌株中でベイトとして発現する。付随して、異種転写活性化ドメイン(AD)へ連結されている足場タンパク質配列内に挿入された無作為化配列の種々のペプチド(例えば、16−mer)をコードするライブラリーはベイトとして発現する。ペプチドが標的タンパク質に結合すると、機能的転写因子が再構成され、その中でBDおよびADが相互作用タンパク質によって一緒に架橋される。この転写因子はその後、マーカー遺伝子のプロモーターを活性化させることができ、マーカー遺伝子は比色酵素アッセイまたは成長選択によって監視できる。追加の変化、調製方法およびスクリーニング法は、例えばHoppe−Seylerら,J.Mol.Med.78:426−430(2000)に記載されている。
ヌクレオチドアプタマーについては例えばBrodyら,Trends Mol.Biotechnol.74:5−13(2000)に記載されている。ヌクレオチドアプタマーを作製および使用する追加の方法にはSELEX、すなわち指数的濃縮によるリガンドの体系的進化が含まれる。SELEXは選択された標的分子のオリゴヌクレオチドリガンドを単離するプロセスである(Tuerk and Gold,Science 249:505−510(1990);米国特許第5,475,096号、第5,595,877号、および第5,660,985号を参照されたい)。Tuerk and Goldらが記載しているように、SELEXは標的分子を1プールの様々な配列のオリゴヌクレオチド(例えば、RNA)と混合するステップと;標的とオリゴヌクレオチドとの間で形成された複合体を維持するステップと;標的と結合するオリゴヌクレオチドを回収するステップと;RNAからDNAへ逆転写するステップと;ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)を用いてDNAを増殖するステップと;増幅したDNAをRNA内へ転写させるステップと;および常に増加し続ける結合ストリンジェンシーを用いて該サイクルを繰り返すステップと、を含む。各サイクルのために3回の酵素反応が必要とされる。標的に対する高親和性および高特異性を有するアプタマーを単離するには、通常は12〜15サイクルを要する。アプタマーは、同一条件下で意図された標的物質には結合できるが他の分子には結合することができないオリゴヌクレオチドである。
また別の参考文献では、Bockら,Nature 355:564−566(1990)はTuerk and GoldらのSELEX法とは各サイクルに対して酵素反応が1回しか必要とされない(すなわちPCR)点で相違するプロセスを記載しているが、それはBock’s法における核酸ライブラリーがRNAの代わりにDNAから構成されるためである。Bockらの方法を用いた高い特異性および親和性のアプタマーを同定および単離するためには、まだクロマトグラフィーカラムにおいて反復サイクルを必要とする。
その他のヌクレオチドアプタマー法には、Conradら,Meth.Enzymol.267:336−367(1996)によって記載された方法が含まれる。Conradらはアプタマーを単離するための様々な方法を記載しているが、それらはすべて標的結合リガンドを濃縮するために反復サイクルを使用し、そして大量の精製標的分子を必要とする。より近年に記載されたヌクレオチドアプタマーを作製して使用する方法には、米国特許第6,180,348号;第6,051,388号;第5,840,867号;第5,780,610号、第5,756,291号および第5,582,981号に記載されている方法が含まれるがそれらに限定されない。
もしかすると、DkkもしくはDk相互作用タンパク質に結合する、またはDkk/Dkk相互作用タンパク質またはDkk/LRP5またはDkk/LRP6複合体を変調するあらゆる化合物は治療用化合物である可能性がある。本発明の1つの実施形態では、本発明によるペプチドもしくは核酸アプタマーが治療用組成物に使用される。このような組成物は、アプタマー、または修飾されていない、もしくは修飾されたLRP5もしくはLRP6フラグメントを含んでいてよい。
核酸アプタマーは、例えば該アプタマーの取り込みもしくは安定化を促進できるポリエチレングリコール(PEG)のような担体分子への化学的結合によって組成物中に使用されてきた。RNAへ取り付けられたジアルキルグリセロール部分はリポソーム内に該アプタマーを包埋する、したがって該化合物を安定化するであろう。化学置換(すなわち、RNA中でリボースの2’−OH基を2’−NH基へ変化させるステップはリボヌクレアーゼ耐性を付与する)およびキャッピング等を組み込むことにより崩壊を防止できる。数種のこのような技術はBrody and Gold,Rev.Mol.Biol.74:3−13(2000)においてRNAアプタマーのために考察されている。
ペプチドアプタマーは、例えばレトロウイルス送達、送達用複合体中へのDNAの封入もしくは単純に裸のDNA注射によるような罹患組織内へのアプタマー発現を指示する発現ベクターの導入によって治療用途に使用することができる。または、アプタマー自体もしくは合成アナログを薬物として直接に使用できる。ポリマーおよび脂質中への封入は送達に役立つ可能性がある。治療薬および診断薬としてのペプチドアプタマーの使用についてはHoppe−Syler and Butz,J.Mol.Med.78:426−439(2000)によって検討されている。
本発明のまた別の態様では、本発明の拘束されたペプチドアプタマーの構造は、例えばNMRまたはX線結晶学によって決定できる(Cavanaghら,「タンパク質NMR分光法:原理および実践(Protein NMR Spectroscopy:Principles and Practice)」,Academic Press,1996;Drenth,「タンパク質X線結晶学の原理(Principles of Protein X−Ray Crystallography)」,Springer Verlag,1999)。好ましくは、構造は標的タンパク質との複合体中で決定される。その後、該アプタマーの三次元構造の機能的エレメントの位置にしたがって小分子アナログが構成される(「ドラッグデザインにおける分子モデリングに関するガイドブック(Guidebook on Molecular Modeling in Drug Design)」,Cohen編集,Academic Press,1996;「分子モデリングおよびドラッグデザイン(分子および構造生物学におけるトピックス)(Molecular Modeling and Drug Design(Topics in Molecular and Structural Biology))」.Vinter and Gardner編集,CRC Press,1994)。したがって、本発明はDkk、Dkk相互作用タンパク質、Dkk/Dkk相互作用タンパク質複合体およびDkk/LRP複合体の活性を変調する有効かつ特異的薬物を構成するための方法を提供する。本発明のペプチドアプタマーの小分子模倣物は本発明の範囲内に含まれる。
16.HBM活性を有するLRP5/LRP6の代替変異体
LRP5/Zmax1第1βプロペラモジュールの構造モデルはSpringerら(1998),J.Molecular Biology,283:837−862におけるモデル予測に基づいて生成された。該モデルに基づいて、一定のアミノ酸残基がLRP5/HBM/Zmax1の重要な変異体であると同定された。以下の3つのカテゴリーはそのような変異体の例を提供する。
β−プロペラの形状は、内側へ傾斜した側面および中央部で抜けた穴を備えるディスクに似ている。残基171は、プロペラモジュール1のブレード4内のドメインの外面もしくは上面上のループ中にある。そこで他のブレード内の構造的に等価の位置にある変化した残基;ならびに結合ポケットへわずかにより内側にある残基を含むが、それでもまだ表面に接近しやすい変異体は、LRP5/HBMによる骨量変調の試験、骨量障害の治療薬および治療法の開発、および本発明のその他の目的のために本発明の重要な実施形態である。以下はそのような変異体の例である:
A214V(ブレード5内の171に等価の位置;アラニンは他のプロペラでは保存されていない)、
E128V(ブレード3内の171に等価の位置;グルタミン酸塩は他のプロペラでは保存されていない)、
A65V(ブレード2内の171に等価の位置;アラニンはプロペラ1〜3では保存されているが、4では保存されていない)、
G199V(ブレード5内の接近可能な内側位置;グリシンはプロペラ1〜3では保存されているが、4では保存されていない)、および
M282V(ブレード1内の接近可能な内側位置;メチオニンはプロペラ1〜3では保存されているが、4では保存されていない)。
LRP5/Zmax1は4つのβ−プロペラ構造を有する;最初の3つのβ−プロペラモジュールはヒトLRP5/Zmax1における残基171に対応する位置でグリシンを保存している。このため他のプロペラにおいて等価の位置でバリンを有する変異体は本発明の重要な実施形態である。次の変異体は、LRP5/HBMによる骨量変調の試験、骨量障害の治療薬および治療法の開発、および本発明のその他の目的のために有用である:G479V、G781V、およびQ1087V。
G171V HBM多型は、β−プロペラ1の「占有空間」を生じさせ、バリン残基からの側鎖は開放結合ポケット内へ突き出し、もしかするとリガンド/タンパク質相互作用を変化させる。グリシン残基はLRP5/Zmax1プロペラ1、2および3で保存されているが、グルタミンはプロペラ4で保存されている。このため次のLRP5/HBMの変異体は、LRP5/HBMによる骨量変調の試験、骨量障害の治療薬および治療法の開発、および本発明のその他の目的のために重要な本発明の実施形態である:
G171K(荷電側鎖を導入する)、
G171F(環状側鎖を導入する)、
G171I(分岐状側鎖を導入する)、および
G171Q(プロペラ4残基を導入する)。
さらに、LRP6はLRP5/Zmax1の最も近いホモログである。LRP6はもしZmax1と同一でなければ類似すると予想されるβ−プロペラ構造を有する。ヒトLRP5/Zmax1におけるグリシン171に対応する位置はヒトLRP6のグリシン158である。したがって、LRP6の対応する変異体は、LRP5/Zmax1をその関連ファミリーメンバーと比較した特異性についての試験、骨量障害の治療薬および治療法の開発、および本発明のその他の目的のための本発明の重要な実施形態である。詳細には、例えばヒトLRP6の残基158、および他の種のLRP6ホモログの類似の変種の構造的に等価の位置でのグリシンからバリンへの置換は重要な研究用ツールを表している。
LRP5の部位特異的変異体は、QuikChange XL特定部位の突然変異誘発性キット(製品番号200516、Stratagene社、ラホーヤ、CA)を使用して製造業者のプロトコールにしたがって全長ヒトLRP5 cDNA中で生成された。変異体配列は相補的合成オリゴヌクレオチドを使用して導入された。
Figure 2005512508
Figure 2005512508
すべての構築物は、人工的に作り出された修飾だけが遺伝子内に存在することを保証するために検証された配列であった。検証されると、各変異体はU2OS細胞中でのTCF−ルシフェラーゼアッセイで機能的に評価された(本質的には実施例7に記載した通り)。例えばアフリカツメガエル胚アッセイ(本質的には実施例6に記載した通り)、またはWntシグナル伝達、Dkk変調または同化骨作用を評価するための他のアッセイのような他の機能的評価も実施できよう。これらの変異体のDkk、LRP相互作用タンパク質、Dkk相互作用タンパク質、または先行物のいずれかへのペプチドアプタマーへの結合もまた例えば2ハイブリッド系(本出願書で記載した酵母におけるような)、またはその他の方法のような様々な方法で調査できよう。
図24は、LRP5のプロペラ1におけるG171F突然変異の作用を示している。この突然変異はHBMのG171V置換と同一位置である。G171Fの発現はHBM作用を生じさせる。すなわち、Wntの存在下では、G171FはTCF−ルシフェラーゼレポーター構築物を活性化させることができる。実際に、G171FはLRP5もしくはHBMのいずれよりも大きく該レポーターを活性化する可能性がある。さらに、Dkk1およびWnt1の存在下では、G171FはDkkによる変調に対してLRP5よりも感受性が低い。これらのデータは、G171F変異体がHBMと類似する方法でWntシグナル伝達を変調することを例証している。さらに、このデータは171でのHBMのバリン残基がHBM作用を生じさせることのできる171での唯一の修飾ではないことを確証している。同様に、これらのデータはLRP5のプロペラ1がWnt経路活性を変調すること;Dkk変調に反応すること、およびHBM作用を生成させる能力において果たす重要な役割を支持している。
図25は、LRP5のプロペラ1におけるM282V突然変異の作用を示している。M282発現はHBM作用を生じさせる。つまり、Wntの存在下では、M282はTCF−ルシフェラーゼレポーター構築物を活性化することができる。さらにDkk1およびWnt1の存在下では、M282VはDkkによる変調に対してLRP5よりも感受性が低い。これらのデータは、M282V変異体がHBMと類似する方法でWntシグナル伝達を変調することを証明している。さらに、このデータはLRP5のプロペラ1における他の残基の修飾がHBM作用を生じさせることを確証している。
これらのデータはプロペラ1におけるHBM突然変異の「占有空間」モデルを支持しており、プロペラ1の多重突然変異がHBM作用を生成できることを証明している;オリジナルのG171V HBM突然変異のこの能力は独特ではない。さらに、プロペラ1における様々な摂動はDkk活性を変調できる。
これらのデータは、LRPシグナル伝達のDkk変調の分子機序を例示している。本明細書開示した方法および米国特許出願第60/290,071号に開示された方法を使用すると、包括的な突然変異体パネルの生成によりWntシグナル伝達のDkk変調において機能するLRP内の残基が解明されるであろう。Dkk活性を変調するLRP5およびLRP6のこのような変異体およびそれらをLRP5およびLRP6から区別する残基は小分子化合物、抗体、ペプチドアプタマー、またはその他の物質による治療的介入点である。さらに、各HBM作用突然変異/多型のモデルはHBM模倣物剤の合理的ドラッグデザインに使用できる。
これらは本発明をより明確に記載するために提示したほんの少数の例示的実施例である。アッセイにおいてHBM活性を示したLRP5の変異体にはG171F、M282V、G171K、G171QおよびA214Vが含まれる。明らかに、他の変異体も本発明の範囲に想定することができる。さらに、HBMを本発明の方法に挙げた場合は必ず、HBM生物学的活性を示すLRPのあらゆるそのような代替変異体もまた本発明のクレームに含まれていると理解されなければならない。
17.スクリーニングアッセイ
2ハイブリッド系は、タンパク質:タンパク質相互作用を試験するために極めて有用である。例えばChienら,Proc.Natl Acad.Sci.USA 88:9578−82(1991);Fieldsら,Trends Genetics 10:286−92(1994);Harperら,Cell 75:805−16(1993);Vojtekら,Cell 74:205−14(1993);Lubanら,Cell 73:1067−78(1993);Liら,FASEB J.7:957−63(1993);Zangら,Nature 364:308−13(1993);Golemisら,Mol.Cell.Biol.12:3006−14(1992);Satoら,Proc.Natl.Acad.Sci.USA 91:9238−42(1994);Coghlanら,Science 267:108−111(1995);Kalpanaら,Science 266:2002−6(1994);Helpsら,FEBS Lett.340:93−8(1994);Yeungら,Genes&Devel.8:2087−9(1994);Durfeeら,Genes&Devel.7:555−569(1993);Paetkauら,Genes&Devel.8:2035−45);Spaargarenら,1994,Proc.Natl.Acad.Sci.USA 91:12609−13(1994);Yeら,Proc.Natl.Acad.Sci.USA 91:12629−33(1994);および米国特許第5,989,808号;第6,251,602号;および第6,284,519号を参照されたい。
該系の変種は、クローン相互作用タンパク質に対する酵母ファージミド(例えば、Harper,「細胞相互作用および発生:実践アプローチ(Cellular Interactions and Development:A Practical Approach)」,153−179(1993);Elledgeら,Proc.Natl.Acad.Sci.USA 88:1731−5(1991))またはプラスミド(Bartel,1993およびBartel,Cell 14:920−4(1993));Finleyら,Proc.Natl.Acad.Sci.USA91:12980−4(1994)cDNAライブラリーをスクリーニングするため、ならびに既知のタンパク質対について試験するために利用できる。
2ハイブリッド系の成功は、例えばGAL4のような多数の転写因子のDNA結合およびポリメラーゼ活性化ドメインを分離して、再結合させて機能性を回復することができるという事実に依存している(Morinら,Nuc.Acids Res.21:2157−63(1993))。これらの実施例は酵母系における2ハイブリッドスクリーニングを記載しているが、例えば哺乳動物細胞系のような他の系においても2ハイブリッドスクリーニングを実施できると理解されている。このため本発明は、酵母2ハイブリッド系の使用に限定されておらず、このような他の系も含んでいる。
例えばGAL.fwdarw.lacZ,GAL.fwdarw.HIS3もしくはGAL.fwdarw.URA3(Bartel,「細胞相互作用および発生:実践アプローチ(Cellular Interactions and Development:A Practical Approach)」,153−179(1993);Harperら,Cell 75:805−16(1993);Fieldsら,Trends Genetics 10:286−92(1994))のような様々なレポーター遺伝子カセットの統合コピーを備える酵母株は各々が相違する融合タンパク質を発現する2つのプラスミドを用いて共形質転換される。1つのプラスミドはタンパク質「X」と例えばGAL4酵母転写アクチベーターのDNA結合ドメインとの融合をコードするが(Brentら,Cell 43:729−36(1985);Maら,Cell 48:847−53(1987);Keeganら,Science 231:699−704(1986))、他方もう1つのプラスミドはタンパク質「Y」とGAL4のRNAポリメラーゼ活性化ドメイン(Keeganら,1986)との間の融合をコードする。これらのプラスミドは例えばlacZのようなその調節領域がGAL4結合部位を含んでいるレポーター遺伝子を含有する酵母株内へ形質転換される。タンパク質XおよびYが相互作用すると、それらは2個のGAL4成分を転写を活性化させるために十分な近傍に持ち込むことによって機能的なGAL4転写アクチベータータンパク質を再構成する。ベイトおよびプレイタンパク質の役割は交互に切り替えることができるので、したがって本発明の実施形態は両方の代替配置を想定かつ含んでいることはよく理解される。
どちらのハイブリッドタンパク質単独も該レポーター遺伝子の転写を活性化させることができないはずであるが、それはDNA結合ドメインハイブリッドは活性化機能を提供せず、活性化ドメインハイブリッドはGAL4結合部位に局在できないためである。2つの試験タンパク質の相互作用はGAL4の機能を再構成し、該レポーター遺伝子の発現を生じさせる。該レポーター遺伝子カセットはそれらのTATAボックスの5’末端へクローン化されたGAL4 DNA認識部位(Johnsonら,Mol.Cell.Biol.4:1440−8(1984);Lorchら,J.Mol.Biol.186:821−824(1984))を含有する最小プロモーターから構成される。転写活性化は、例えばURA3(ウラシル選択)またはHIS3(ヒスチジン選択)のような転写産物についての栄養素要求性選択を許容する特定栄養素が欠如している最小培地上でのβ−ガラクトシダーゼの発現または形質転換体の成長のどちらかを測定することによってスコア付けする。例えばBartel,1993;Durfeeら,Genes&Devel.7:555−569(1993);Fieldsら,Trends Genet.10:286−92(1994);および米国特許第5,283,173号を参照されたい。
一般に、これらの方法は酵母細胞の核内のハイブリッドとして発現する相互作用について試験される2つのタンパク質が含まれる。これらのタンパク質の1つは転写因子のDNA結合ドメイン(DBD)に融合しており、もう1つは転写活性化ドメイン(AD)へ融合している。これらのタンパク質が相互作用すると、それらはDBDのための結合部位を含有する1つ以上のレポーター遺伝子を活性化する機能的転写因子を再構成する。Dkk−1またはDkk−1/LRP5のために使用されている代表的2ハイブリッドアッセイについては以下の実施例の項で提示する。
Dkk−1相互作用のための2ハイブリッドアッセイ系を作製するためのまた別の方法は当業者には明白であろう。例えば、「酵母2ハイブリッド系(The Yeatst Two−Hybrid System)」(Paul L.Bartelら編集、Oxford,1997)の中のFinleyら,「遺伝調節ネットワークの2ハイブリッド解析(Two−Hybrid Analysis of Genetic Regulatory Networks)」;「酵母2ハイブリッド系(The Yeatst Two−Hybrid System)」(Paul L.Bartelら編集、Oxford,1997)の中のMeijia Yang,「2ハイブリッドアッセイにおけるコンビナトリアルペプチドライブラリーの使用(Use of a Combinatorial Peptide Library in the Two−Hybrid Assay)」;Gietzら,「関心タンパク質と相互作用するタンパク質の同定:酵母2ハイブリッド系の適用(Identification of proteins that interact with a protein of interest:Apprications of the yeast two−hybrid system)」,Mol.& Cell.Biochem.172:67−9(1997);K.H.Young,「酵母2ハイブリッド:相互作用が多いほど所要時間が短くなる(Yeast Two−Hybrid:So Many Interactions,(in) so Little Time)」,Biol.Reprod.58:302−311(1998);R.Brentら,「2ハイブリッド法を用いた遺伝子および対立遺伝子の機能の理解(Understanding Gene and Allele Function with Two−Hybrid Methods)」,Annu.Rev.Genet.31:663−704(1997)を参照されたい。タンパク質ネットワークが活性化ドメイン−融合ライブラリーの段階的スクリーニングを実施することによって解明できることは理解されるであろう。
これ以上説明せずとも、当業者には、先行の説明および下記の例示的実施例を使用すれば本発明の化合物を作製かつ利用し、本明細書主張した方法を実行することができると考えられる。このため以下の実施例は本発明の好ましい実施形態を特別に指示しており、決して本開示の残りの部分を限定するものと見なされてはならない。
[実施例]
本発明を、例示するために提供されており、いかなる意味でも本発明を限定することは意図されていない以下の実施例を参照しながら説明する。当分野でよく知られている標準的技術または下記に詳細に説明する技術を利用した。
以下に参照したプロトコールのルーチン実践については、当業者は本出願書に言及した参考文献ならびに、継続的に更新されており、広範囲にわたって利用でき、John Wiley and Sons(New York)により発行されたいくつかの最新プロトコールガイドを参照されたい。生命化学においては、「最新プロトコール」は分子生物学、免疫学、ヒト遺伝学、タンパク質科学、サイトメトリー、神経科学、薬物学、細胞生物学、毒物学、および核酸科学における包括的マニュアルを発表している。その他の情報源は当業者にはよく知られている。
LRP5リガンド結合ドメイン(LBD)ベイト配列を使用した酵母2ハイブリッドスクリーニング
ヒト骨芽細胞ライブラリー(すなわち、HOB03C5、Bodine and Komm,Bone 25:535−43(1999))によって記載されているようなヒト骨芽細胞系からのカスタムGibco生成Y2H適合cDNAライブラリー)に対するスクリーニングにおいて、Dkk−1との相互作用を同定した。このスクリーニングのために使用したLRP5リガンド結合ドメイン(LBD)ベイトを図2BおよびCに示した。基本プロトコールは以下の通りである:
関心ベイトを含有する酵母株のオーバーナイト培養は、30℃で2%グルコースを含有する適切な選択培地20mL中で増殖させる。このオーバーナイト培養は40mg/Lのアデニンを補給したYPDmedia内へ倍率10倍に希釈し、30℃で4時間増殖させる。
各交配事象については冷凍プレイライブラリーのアリコートを30℃で5時間にわたり150mLのYAPD培地中で増殖させる。
各培養のOD600を測定することによって計算した適切な量を試験管内に結合する。スクリーニングすべき二倍体の数は、典型的には関心プレイライブラリー内に最初に存在するクローンの数の10倍である。交配効率が最小20%であると想定して、ベイトを含有する多数のハプロイド細胞およびプレイを含有するとして50回(すなわち10回の被覆に20%交配効率をかけた数)をあらゆる所定の交配事象に使用する。混合物を47mm、0.45mm無菌Metricelフィルター膜(Gelman社)に通して濾過する。
無菌ピンセットを用いて、このフィルターを100mm2YAPD寒天プレート上に細胞の側を上に向けて移し、フィルター下の全気泡を除去する。このプレートは室温で一晩培養する。
このフィルターを無菌ピンセットを用いて50mLFalcon管に移し、細胞を再懸濁させるために2%グルコースを含有する10mL SD培地を添加する。細胞を含まないフィルターを取り除き、細胞懸濁液を2,000×gで5分間回転させる。
細胞を2%グルコースを含有する10mL SD培地中に再懸濁させる。100μLのアリコートを滴定のために別に取り置く。
細胞は適切な選択培地を含有する大きな正方形のプレート上にプレーティングし、3〜5日間30℃で培養する。
交配効率を計算してスクリーニングされる二倍体の総数を決定するために、滴定のために取り置いた100μLのアリコートを希釈し、種々の選択培地上にプレーティングした。交配効率は二倍体/mLの数をベイトまたはプレイどちらかの最小数の半数体/mLによって割り、そして100をかけることによって計算する。例えば、ベイトを含有する1,000万個の半数体とプレイを含有する1,200万個の半数体を交配することによって200万個の二倍体を入手した場合は、交配効率は200万を1,000万で割ると0.2となることにより計算され、100をかけると20%となる。上記の条件下での典型的な交配効率は約20〜約40%の範囲内である。交配事象においてスクリーニングした二倍体の総数は、二倍体/mLの数に典型的には約10であるプレーティングしたmLの総数をかけることによって入手する。
[相互作用タンパク質の対を含有するコロニーの単離]
相互作用選択(大きな正方形の)プレートからの酵母コロニーは無菌爪楊枝を用いて採集し、適切な選択培地を含有するプレート上にパッチし、30℃で2日間培養する。
さらに酵母の純度を保証するために、これらのプレートは同一培地を含有する別のプレート上に複製し、さらに2日間30℃で培養する。
酵母パッチは無菌爪楊枝を用いてこすり取り、2%グルコース液体培地とともに100μLのSD−L−W−Hを含有する96ウェルフォーマットプレート内に置いた。
このプレートの半量を保管のために50μLの40%グリセロールを含有する96ウェルプレートへ移す。残り半分は複製およびガラクトシダーゼ活性アッセイ(下記を参照)のために取り置く。
細胞はマスタープレートを作製するために2%グルコースプレートを用いてSD−L−W−Hプレート上に複製し、30℃で2日間培養する。マスタープレートは様々な選択的培地上で複製し、各相互作用の強度をスコア付けする。
細胞はさらにコロニーPCRについてのみプレイベクターのために選択した培地上で複製し、30℃で2日間培養する。
[ガラクトシダーゼ活性アッセイ]
96ウェルプレートからの10μL(上記から取り置いた)は、100μL SDおよび2%グルコース培地を含有する別の96ウェルプレート内に移す。細胞密度は分光光度計を使用してOD600で測定すると、OD600は通常は0.03〜0.1である。50μLのガラクトシダーゼ反応混合液(Tropix)は照度計(Hewlett Packard Lumicount)のために特別構成されたマイクロプレート(Marsh社)へ添加する。その後50μLの希釈細胞を添加し、ピペッティングにより混合する。この反応液を室温で60〜120分間培養する。相対光度単位(RLUs)は照度計によって読み取る。各プレートは、関心ベイトおよび空プレイベクターを含有する二倍体酵母によって構成されたネガティブコントロールを含有する。陽性とスコア付けされるためには、試験された二倍体はネガティブコントロールの少なくとも2倍の高さのRLU数を有していなければならない。
最小相互作用ドメインマッピング
酵母2ハイブリッド(Y2H)相互作用タンパク質のまた別の解析には、相互作用の原因となるタンパク質モチーフの解離が含まれる。Y2Hスクリーニングにおいて同定された複数のクローンの配列アライメントは、この相互作用の原因となる最小共通領域を同定するのに役立つことができる。適切なクローンが欠如している場合は、相互作用ドメインの欠失マッピングが必要である。
クローニングのために適切な制限酵素認識部位を含有するPCRプライマーは、関心タンパク質(ベイトまたはプレイ)の複数のサブドメインを被覆するように構成されている。相互作用のクローニング、シーケンシング、酵母形質転換、交配およびスコア付けに含まれる方法は、分子生物学および遺伝子工学の当業者によって容易に実施される。
[材料および方法]
最小相互作用ドメイン:プライマーは、プールされたZmax1/LRP5リガンド結合ドメイン(LBD)ベイト:LBD1(Leu969−Pro1376)およびLBD4(Arg1070−Pro1376)を用いて一次骨芽細胞株(HOB03C5)ライブラリーをスクリーニングすることによって単離されたDkk−1クローンのPCRのために構成された。5’〜3’方向に与えられるプライマーは次の通りであった。
Figure 2005512508
PCRは、PfuTurbo(登録商標)ポリメラーゼ(Stratagene社)を使用して実施した。PCR産物はゲル精製し、SalI/NotIを用いて消化し、SalI/NotIを用いて線形化されているpPC86(Gibco/BRL社)へ連結させた。クローンを回収し、構造が予想された通りであり、Gal4活性化ドメインおよびDkk−1がインフレームであることを確定するためにシーケンシングした。Dkk−1のORFはヒトDkk−1(GenBankアクセッション番号:XM_005730)におけると同様にMet1−His266であった。
使用したクローンは次の通りであった:D5(F1/R3:Asn34−His266)、D4(F1/R2:Asn34−Cys245)、D3(F1/R1:Asn34−Lys182)、D9(F2/R3:Cys97−His266)、D12(F3/R3,val139−His266)、D14(F4/R3:Gly183−His266)、D8(F2/R2:Cys97−Cys245)、およびD11(F3/R2:Val139−Cys245)。F1、F2、F3およびF4は各々フォワードプライマー1、2、3および4を意味する。R1、R2およびR3は各々リバースプライマー1、2および3を意味する。
これらのクローンは酵母内に形質転換させ、pDBleu(Gibco/BRL)、pDBleuLBD1、およびpDBleuLBD4を含有する3つの酵母株の各々と交配させた。陽性相互作用は適切な選択培地上でのハイブリッドの増殖によって検出した。
[結果]
最小相互作用ドメイン:図6は、D4、D5、D8、D9およびD12の二倍体中で増殖が観察されたが、D3、D11およびD12のハイブリッドでは増殖が観察されなかったことを示している。カルボキシ末端(C−末端)欠失は、可能性のあるN−グリコシル化部位(Arg246−His266)を含有するDkk−1のC−末端アミノ酸はZmax1/LRP5 LBDベイトとの相互作用のためには必要ではないが、Cys2ドメイン、Gly183−Cys245は必要とされることを示す。N末端欠失はさらにまた、2つのシステインドメイン間の領域、すなわちVal139〜Lys182もまた必要であることも証明した。2つの最小相互作用ドメイン構築物が単離された:D12(Val139−His266)およびD8(Cys97−Cys245)。Dkk−1相互作用物質に対して類似の構築物を作製できよう。
Dkk−1に対するペプチドアプタマー配列についての酵母2ハイブリッドスクリーニング
[ペプチドアプタマーライブラリーの構築]
古典的酵母2ハイブリッド(Y2H)アッセイを使用して関心タンパク質標的(もしくはベイト)へ結合するキメラタンパク質を同定するための手段を提供するペプチドアプタマーライブラリーであるTpepを構築した。該Tpepライブラリーは、大腸菌チオレドキシン(trxA)のジスルフィドループの状況内でS.セレヴィシエGal4活性化ドメインへのC末端融合として発現した拘束されたランダムペプチドから構成されるコンビナトリアルアプタマーライブラリーである。TpepライブラリーはtrxA足場タンパク質を含有する制限酵素修飾組換えY2HプレイベクターであるpPC86(Gibco社)を使用して生成した。
[アプタマーコード配列の生成]
アプタマーコード配列は以下の通り生成した。適切な制限酵素認識部位によって取り囲まれた適切な16アミノ酸のDNAをコードするランダム伸長はセミランダムオリゴヌクレオチド合成法によって生成した。合成オリゴヌクレオチドはPCR増幅し、制限消化し、trxA足場タンパク質内の許容部位内へクローン化した。クローニング戦術は、ランダムオリゴヌクレオチド配列が足場タンパク質コード配列とインフレームとなるように挿入し、足場タンパク質−アプタマーキメラの発現を生じさせることであった。足場タンパク質はそれ自体が、標準のY2Hアッセイにおいてアプタマーが発現して機能的となるのに適切なpPC86ベクター内で、Gal4の活性化ドメインとインフレームである。アプタマーを作製するためのまた別の方法は当業者には明白であろう。
[trxAコード配列を含有する許容組換えpPC86ベクターの生成]
第1に、pPC86のGal4(Gibco社)の活性化ドメイン内に位置するRsrII制限酵素認識部位を部位特異的突然変異誘発(Quickchange(商標)キット、Stratagene社)によって排除した。Gal4の活性化ドメインのアミノ酸配列はこの修飾によって変化しなかった。相違する制御相互作用の強度はこの修飾によって変化していないことが検証された。
第2に、大腸菌 trxAコード配列をRsrII修飾pPC86のSalIおよびNotI部位内へクローン化した。次にEcoRIおよびSpel部位をtrxA RsrII部位内へ導入した。該ペプチドアプタマーをコードするオリゴヌクレオチドを結果として生じたベクターのEcoRIおよびSpel部位内へクローン化した。
Dkk−1相互作用タンパク質のための酵母2ハイブリッドスクリーニング
Dkk−1相互作用タンパク質を同定するために酵母2ハイブリッドスクリーニングにおいてDkk−1ベイト配列を利用した。Y2Hについての方法は、LRPベイトの代わりに図2CからのDkk−1ベイトを使用したこと以外は実施例1で使用した方法と同様に実施した。スクリーニングはHelaおよび胎児脳ライブラリー(Infitrogen Corporation社、カールズバッド、CA)を使用して実施した。多数のライブラリーを使用して追加のDkk−1相互作用タンパク質を同定し、その他のライブラリーで見いだされた相互作用を確証した。
これらのY2Hスクリーニングで明らかになったDkk−1相互作用タンパク質のリストを図5に列挙した。
Dkk−1ベイトスクリーニングで同定された相互作用タンパク質は、Dkk−1/LRP相互作用および/またはWntシグナル伝達を変調する可能性があるより複雑な相互作用を決定するために、LRPベイトおよびその他のDkk−1相互作用タンパク質を用いる他のY2Hスクリーニングにおいて使用できる。
[抗体の生成]
以下の抗体生成実施例の各々では、これらの線状ペプチドの合成に続いて2匹のニュージーランドウサギ内への注入が行われる。引き続いてのブーストおよびブリードは標準10週間プロトコールにしたがって行われる。エンドユーザーは5mgのペプチド、ブリード前のアリコート、2匹のウサギ各々からのほぼ80mLの粗血清を受け取り、ELISA滴定データを入手する。
[LRP5多型特異的抗体の生成]
HBM多型対野生型LRP/Zmaxを区別する抗体を入手するために次のペプチドに対する抗体を生成した:MYWTDWVETPRIE(配列番号123)(突然変異体ペプチド)およびMYWTDWGETPRIE(配列番号124)(陰性選択のための野生型ペプチド)。免疫蛍光試験データは、親和性精製後の抗体がHBMには特異的であるがLRP5を認識しないことを確証した(図17)。
[LRP5単一特異的抗体の生成]
LRP5単一特異的ポリクローナル抗体を以下のLRP5のアミノ酸配列に対して生成した:ペプチド1(a.a.265−277)−KRTGGKRKEILSA(配列番号125)、ペプチド2(a.a.1178−1194)−ERVEKTTGDKRTRIQGR(配列番号126)、およびペプチド3(a.a.1352−1375)−KQQCDSFPDCIDGSDE(配列番号127)。免疫蛍光により生成したこれらの抗体がLRP5を検出することを確証した。
[Dkk−1単一特異的ポリクローナル抗体の生成]
Dkk−1単一特異的ポリクローナル抗体を以下のDkk−1のアミノ酸配列に対して生成した:ヒトDkk−1のペプチド1(a.a.71−85)−GNKYQTIDNYQPYPC(配列番号118)、ペプチド2(a.a.165−186)−LDGYSRRTTLSSKMYHTKGQEG(配列番号119)、ペプチド3(a.a.246−266)−RIQKDHHQASNSSRLHTCQRH(配列番号120)、ペプチド4(a.a.147−161)−RGEIEETITESFGND(配列番号121)、およびペプチド5(232−250)−EIFQRCYCGEGLSCRIQKD(配列番号122)。図26は、選択した様々なペプチドの位置、それらとDkk−1アミノ酸配列および生成したポリクローナル抗体との関係を示している。
ウェスタンブロットは、ペプチド2(抗体番号5521)(図27)および4(抗体番号74397)(図28)に対して生成した抗体がDkk−1に向かって特異的であることを証明した。図27は、非トランスフェクト293細胞または抗V5抗体によって免疫沈降させたDkk1−V5を用いてトランスフェクトした293細胞からの馴化培地(CM)500μLを使用したウェスタンブロットを示している。ビーズ溶出液は非還元SDS−PAGEによって分離した(図27のレーン4、5)。両方のサンプル(図27のレーン2、3)およびDkk1−APトランスフェクト293細胞(図27のレーン6)からの馴化培地20μLを追加してゲル状で分離した。ウェスタンブロットは、抗体の抗−V5/AP(1:10,000)およびAb#5521(10μg/mL)を使用して実施した。Ab#5521は馴化培地からDkk1−V5およびDkk1−APを検出した。
図28は、Ab#74397を使用したウェスタンブロットの結果を示している。抗体抗−V5/APは1:4,000の希釈率で試験し、Ab#74397は1:500の希釈率で試験した。Ab#74397は馴化培地および免疫沈降馴化培地のどちらにおいてもDkk1−V5を検出することができた。
抗体#5521および#74397を用いて入手した結果を下記の表にまとめた。
Figure 2005512508
アフリカツメガエル胚アッセイにおけるWnt媒介性シグナル伝達に外因性Dkk−1が及ぼす作用
アフリカツメガエル胚は、Wntシグナル伝達の変調を評価するために情報を提供する明確に確立されたインビボアッセイ系である(McMahonら,Cell 58:1075−84(1989);Smith and Harland,1991;Wodarz and Nusse 1998における検討)。
Wntシグナル伝達経路の修飾は、4細胞もしくは8細胞ステージで腹側割球内へのRNA注入後に背側化表現型(重複体軸)について胚を検査することによって可視化できる。分子レベルでは、表現型は10.5ステージの胚における種々のマーカー遺伝子の発現について探索することによって解析できる。このようなマーカーには一般的内胚葉、中胚葉、および外胚葉マーカーならびに種々の組織特異的転写体が含まれるであろう。
解析はRT−PCR/TaqMan(登録商標)によって実施でき、全胚組織についてまたはより限定された方法(顕微解剖)で実施できる。この系は極めて柔軟性かつ高速であるので、例えばHBMおよび相違するWntsもしくはWntアンタゴニストのような転写体の組み合わせを注入することによって、Wnt経路におけるHBMの機序を分析することができる。さらに、Zmax/LRP5およびHBMがWntシグナル伝達を単独、または他の構成要素と組み合わせてWntシグナル伝達を示差的に変調するかどうかを決定するために調査が実施される。これまでに実施された試験は、LRP6単独またはLRP5+Wnt5aがこの系において体軸重複(背側化)を誘導できることを証明している(Tamaiら,Nature 407:530−35(2000))。
[アフリカツメガエル発現のための構築物(ベクターpCS2+)]
ベクターpCS2+を使用して構築物を作製した。DNA挿入断片はベクターSP6プロモーターに対してセンス方向にサブクローニングした。pCS2+ベクターはSV40ウイルスポリアデニル化シグナルおよび該挿入断片の下流のT3プロモーター配列(アンチセンスmRNAを生成するため)を含有している。
全長Zmax/LRP5およびHBM ORF cDNA:挿入断片cDNAはBg/II−EcoRIによって全長cDNAレトロウイルス構築物(最適化Kozak配列を備える)から単離し、pCS2+ベクターのBamHI−EcoRI部位内へサブクローニングした。
全長XWnt8:このcDNAはオリゴ14484(配列番号162)(5’−CAGTGAATTCACCATGCAAAACACCACTTTGTTC−3’)および114487(配列番号163)(5’−CAGTTGCGGCCGCTCATCTCCGGTGGCCTCTG−3’)を使用してアフリカツメガエル胚cDNAライブラリーからPCR増幅させた。オリゴは5’末端にコンセンサスKozak配列を備えGenBank #X57234から決定されるようなORFを増幅するように構成した。PCRは次の条件を使用して実施した:96℃、45秒間;63℃、45秒間;72℃、2分間、30サイクル。生じたPCR産物は精製し、pCRII−TOPO(Infitrogen Corp.社)内へサブクローニングし、配列を検証し、BamHI/XhoIを用いて消化した。この挿入断片をBamHI−XhoI部位でベクター内にサブクローニングした。
全長Wnt5a:マウスWnt5a cDNAクローンは、Upstate Biotechnology(レイクプラシッド、NY)から購入し、ベクターのEcoRI部位内へサブクローニングした。シーケンシングにより挿入断片の方向を確証した。
全長ヒトDkk−1:GenBankアクセッション番号AF127563を備えるヒトcDNAは公衆データベースで入手できた。この配列を用いて、開始ATGのすぐ上流のコンセンサスKozak配列を備えるオープンリーディングフレームを増幅するためにPCRプライマーを構成した。オリゴ117162(配列番号164)(5’−CAATAGTCGACGAATTCACCATGGCTCTGGGCGCAGCGG−3’)および117163(配列番号165)(5’−GTATTGCGGCCGCTCTAGATTAGTGTCTCTGACAAGTGTGAA−3’)を使用してPCRによりヒト子宮cDNAライブラリーをスクリーニングした。生じたPCR産物を精製し、pCRII−TOPO(Infitrogen Corp.社)内へサブクローニングし、配列を検証し、EcoRI/XhoIを用いて消化した。この挿入断片はEcoRI/XhoI部位でpCS2+ベクター内へサブクローニングした。
全長ヒトDkk−2:Zmax/LRP5/HBM相互作用の分子のDkkファミリーとの特異性を調査するためにヒトDkk−2をコードする全長cDNAを単離した。Dkk−1はZmax/LRP5/HBMの潜在的結合パートナーとして酵母中で同定した。Dkk−1は、さらに文献においてWntシグナル伝達経路のアンタゴニストであると証明されているが、Dkk−2はそうではない(Krupnikら,1999)。Dkk−2全長cDNAはDkkファミリーとのZmax/LRP5/HBM相互作用の特異性および生物学的有意性を識別するためのツールとして機能する(例えば、Dkk−1、Dkk−2、Dkk−3、Dkk−4、Soggy、それらのホモログおよび変異体等)。Dkk−2についてのヒトcDNA配列(GenBankアクセッション番号NM_014421)は公衆データベースで入手できた。この配列を用いて、開始ATGのすぐ上流のコンセンサスKozak配列を備えるオープンリーディングフレームを増幅するためにPCRプライマーを構成した。オリゴ51409(配列番号166)(5’−CTAACGGATCCACCATGGCCGCGTTGATGCGG−3’)および51411(配列番号167)(5’−GATTCGAATTCTCAAATTTTCTGACACACATGG−3’)を使用してPCRによりヒト胚および脳cDNAライブラリーをスクリーニングした。生じたPCR産物を精製し、pCRII−TOPO内へサブクローニングし、配列を検証し、そしてBamHI−EcoRIを用いて消化した。この挿入断片はBamHI−EcoRI部位でpCS2+ベクター内へサブクローニングした。
全長LRP6は、XhoI−XbaI消化によってpED6dpc4ベクターから単離した。全長cDNAはpCS2+のXhoI−XbaI部位内へ再構築した。挿入断片の方向はDNAシーケンシングによって確証した。
[mRNA合成およびマイクロインジェクションプロトコール]
アフリカツメガエル胚内へ顕微注入するためのmRNAは、テンプレートとして上記のpCS2+ベクター内のcDNA構築物を使用してインビトロ転写によって生成した。RNAはSp6ポリメラーゼ反応のためのAmbion mMessage mMachine high yield capped RNA転写キット(製品番号1340)を使用して製造業者の取扱説明書にしたがって合成した。RNA産物は無菌ガラス蒸留水中で最終量を50μLとし、製造業者の取扱説明書にしたがって放射標識RNA精製G50−SephadexのためのQuick Spin Column(Roche社、製品番号1274015)に通して精製した。生じた溶出液を最終的にフェノール:クロロホルム:イソアミルアルコールを用いて抽出し、標準プロトコール(Sambrookら,1989)を使用してイソプロパノール沈降させた。最終RNA量は約50μLであった。RNA濃度は260nmおよび280nmでの吸光度値によって決定した。RNA完全性は変性(ホルムアルデヒド)アガロースゲル電気泳動法の臭化エチジウム染色によって可視化した(Sambrookら,1989)。種々の量のRNA(2pg〜1ng)を4細胞もしくは8細胞アフリカツメガエル胚の腹側割球内に注入した。これらのプロトコールは、Moonら,Technique−J.of Methods in Cell and Mol.Biol.1:76−89(1989)、およびPeng,Meth.Cell.Biol.36:657−62(1991)に記載されている。
[重複体軸についてのスクリーニング]
インビトロ転写RNAを精製し、4細胞もしくは8細胞(受胎約2時間後)アフリカツメガエル胚の腹側割球内に注入した。ステージ10.5(受胎約11時間後)で、注入した胚を計72時間培養し、その後重複体軸(背側化)の存在についてスクリーニングした(図7)。ポジティブコントロール(Christianら,1991)としてのXWnt8注入(2〜10pg)胚およびネガティブコントロールとしての水注入または非注入胚を使用して、公表されているZmax(LRPt5)+Wnt5a(各々、500および20pg)が体軸重複を誘導できるという観察所見を複製した。Wnt5a(20pg)単独では体軸重複を誘導できなかった(以前にMoonら(1993)によって報告されたように)。さらにまた注入したRNAの量が胚発生を混乱させないことを証明するためにネガティブコントロールとしてGFP RNA(100〜770pg)も注入した(図示していない)。驚くべきことに、HBM+WNt5a(各々、500および20pg)はZmax/LRP5)+Wnt5aに比較してこの表現型の約3.5倍強力な反応を産生したが(フィッシャーの直接確率検定によりp=0.043)、これはHBM突然変異がWnt経路を活性化していることを示唆している(図8および9)。HBM/Wnt5a胚はさらにまたZmax(LRP5)/Wnt5a胚より「前方化」していると思われるが、これも同様に機能獲得性突然変異を示唆している。
Zmax/LRP5媒介性およびHBM媒介性Wntシグナル伝達の変調剤としてのDkk−1の役割を調査した。文献での報告は、以前にアフリカツメガエルおよびマウスDkk−1がアフリカツメガエル系における正規Wnt経路のアンタゴニストであると特性解析している(Glinkaら,Nature 391:357−362(1998))。ヒトDkk−1構築物を使用して、我々の構築物が機能的であることを確証するため、そしてマイクロインジェクションのためのRNAの最適量を同定するために用量反応アッセイを実施した。250pg/胚のhDkk−1 RNAを使用して、90%(p<0.001)を超える胚が公表された報告書からの予想に比較して拡大前方構造(大きな頭部)を示すことが観察された(図10)。
Zmax/LRP5もしくはHBMの存在下でのWntシグナル伝達のhDkk−1変調のメカニズムについても調査した。いずれのhDkk−1が存在しない場合は、HBM+Wnt5aがZmax/LRP5+Wnt5aより強力なWntシグナル伝達のアクチベーターであることを確証した(p<0.05)。興味深いことに、hDkk−1(250pg)の存在下では、Zmax/LRP5媒介性Wntシグナル伝達は抑制されたが(p<0.05)、hDkk−1はHBM媒介性Wntシグナル伝達を抑制することはできなかった(p<0.01)(図11)。この観察所見の特異性は、さらにDkkファミリーの他のメンバー、他のWnt遺伝子、LRP6、また別のZmax/LRP5突然変異体、およびペプチドアプタマーを調査することによって取り扱うことができる。
TCF−ルシフェラーゼアッセイにおいてWntシグナル伝達に外因性DkkおよびLRP5が及ぼす作用
Wnt活性は分泌Frizzled関連タンパク質(SFRPs)、Cerberus、Wnt阻害因子−1およびDkk−1を含む多数のタンパク質によって相殺され得る(Krupnikら,1999)。Dkkファミリーのタンパク質はDkk−1〜4およびSoggy、Dkk−3様タンパク質から構成される。Dkk−1およびDkk−4はWnt媒介性アフリカツメガエル胚発生を相殺するが、Dkk−2、Dkk−3およびSoggyは相殺しないことが証明されている。Wntタンパク質と直接相互作用することによってWnt活性を相殺するこれらのタンパク質の多数とは相違して、Dkk−1は近年同定された2つのWntコ受容体であるLRP5およびLRP6へ結合することによって機能する(Maoら,2001;Baficoら,2001)。この相互作用の詳細については、本発明者らおよびMaoらによって、LRP6の欠失構築物を使用して試験されており、これはEGFリピート3および4がDkk−1相互作用にとって重要であることを証明した。そこで、2つのDkkタンパク質、Dkk−1およびDkk−2の活性が種々のWntメンバーであるLRP5、LRP6、およびHBMと呼ばれるLRP5の突然変異体形を用いて試験された。本発明では、LRP5とHBMとの間でWnt媒介性シグナル伝達へのDkk作用に関して何らかの機能的相違が存在するかどうかについて探索する。HBM媒介性Wntシグナル伝達を模倣する因子を同定するために、Dkk−1ペプチド、拘束LRP5ペプチドアプタマー、拘束Dkk−1ペプチドアプタマーおよびDkk−1に対するポリクローナル抗体(上記実施例5中)を含む種々の試薬を開発した。
[方法]
種々のLRP5拘束ペプチドを開発した。詳細には、LRP5のLBDと相互作用する4つのペプチド(図4、図12における構築物OST259〜262)およびLRP5の細胞形質ドメインと相互作用する3つのペプチド(図12における構築物OST266からOST268)である。さらに2つのDkk−1ペプチドを開発した:Dkk−1アミノ酸139〜266および96〜245に対応し、LRP5と相互作用するDkk−1の最小領域(図6)を含有する図12における構築物OST264およびOST265。LRP5 LBD相互作用タンパク質およびDkk−1ペプチドをコードするcDNAクローンを分泌についてペプチドを標的とするためにKozakおよびシグナル配列を添加してpcDNA3.1内へサブクローニングした。LRP5の細胞形質ドメインと相互作用する3つのペプチドをコードする構築物もまたpcDNA3.1内にサブクローニングした。しかしこれら後者の構築物はシグナル配列を含有していない。
Wyeth Ayerst(フィラデルフィア、PA)によって開発されたHOB−03−CE6細胞を、10%(v/v)熱不活化FBS、1×ペニシリンストレプトマイシン、および1×Glutamax−1を含有する増殖培地(D−MEM/F12フェノールレッド無含有)1mL中に1ウェル当たり150,000cellsで24ウェルプレートに播種し、34℃で一晩培養した。翌日、0.35μg/ウェルのLRP5、HBM、またはコントロールプラスミドDNA(空ベクターpcDNA3.1)およびWnt1もしくはWnt3aプラスミドDNAのどちらかと一緒にOptiMEM(Infitrogen社)中のLipofectamine2000(登録商標)を使用して(製造業者の説明通りに、Infitrogen社)該細胞をトランスフェクトした。LRP6プラスミドDNA(0.35μg/ウェル)またはコントロールpEDdpc4空ベクターを用いて同様の実験を実施した。さらにこれらの群各々を3群に分け、それらに0.35μg/ウェルのDkk−1、Dkk−2、またはpcDNA3.1コントロールDNAを添加した。すべてのウェルは、0.025μg/ウェルのCMV β−ガラクトシダーゼプラスミドDNAおよび0.35μg/ウェルの16×TCF(AS)−ルシフェラーゼレポーターDNA(Remesh Bhat,Wyeth−Ayerst(フィラデルフィア、PA)によって開発された)を用いてトランスフェクトした。4時間のインキュベーション後、細胞をすすぎ洗い、各ウェルに1mLの新鮮増殖培地を添加した。細胞を34℃で一晩培養し、その後洗浄して培地を取り替えた。細胞をさらに37℃で18〜24時間培養した。その後細胞は50μL/ウェルの1×溶解用バッファーを用いて溶解させた。抽出液は、5μL抽出液+50μLβ−ガラクトシダーゼ希釈液を使用してβ−ガラクトシダーゼ活性(Galacto Reaction Buffer Diluent&Light Emission Accelerator,Tropix社)について、および20μLの抽出液を使用してルシフェラーゼ活性(Luciferase Assay Reagent,Promega)についてアッセイした。
U2OSヒト骨肉腫細胞もまた利用した。U2OS細胞(ATCC)は、10%(v/v)熱不活化FBS、1×ペニシリンストレプトマイシン、および1×Glutamax−1を含有する増殖培地(McCoy’s 5A)200μL中に1ウェル当たり30,000cellsで96ウェルプレートに播種し、37℃で一晩培養した。翌日、培地をOptiMEM(Infitrogen社)と交換し、0.005μg/ウェルのLRP5、HBM、LRP6またはコントロールプラスミドDNA(空ベクターpcDNA3.1)およびWnt1(0.0025μg/ウェル)もしくはWnt3a(0.0025μg/ウェル)プラスミドDNAのどちらかと一緒にLipofectamine2000(登録商標)を使用して(製造業者の説明通りに、Infitrogen社)細胞をトランスフェクトした。さらに16x−(AS)TCF−TKホタル−ルシフェラーゼ(Ramesh Bhat、 WHRI、Wyeth社)およびコントロールTK−renillaルシフェラーゼ(Promega Corp.)を全実験で各々0.3μg/ウェルおよび0.06μg/ウェルで共トランスフェクトした。さらにこれらの群各々をその後異なる群に分け、それらに0.05μg/ウェルのDkk−1、Dkk−2、Dkk3、Dkk1−アルカリホスファターゼ(AP)、突然変異体Dkk−1(C220A)、SoggyもしくはpcDNA3.1コントロールDNAを添加した。他の実験では、細胞はLRP5−相互作用アプタマー(0.05μg/ウェル)とともに0.005μg/ウェルのLRP5、0.0025μg/ウェルのWnt1もしくはWnt3a(0.0025μg/ウェルのコントロールpcDNA3.1を使用)を用いて共トランスフェクトした。細胞をさらに37℃で18〜20時間培養した。培地を除去した。細胞をさらに37℃で18〜20時間培養した。培地を除去した。その後細胞は100μL/ウェルの1×Passive Lysis Buffer(PLB)のDual Luciferase Reagentキット(DLRキット、Promega Corp.)を用いて溶解させた。これらの溶解液20μLをDLRキットのLARII試薬と結合し、Top Count(Packard社)機器内でTCF−ホタルルシフェラーゼシグナルについてアッセイした。ホタル示度を測定した後、クエンチャーおよびrenillaルシフェラーゼのための基質を含有するDLRキットの100μLの「Stop and Glo」試薬を各ウェルに添加した。直ちにTop Count(Packard社)機器を使用してrenillaルシフェラーゼ示度を測定した。TCF−ホタルルシフェラーゼ対コントロールrenilla示度の比率は各ウェルについて計算し、全データにおいて3ウェル以上の平均比率を表示した。
[結果]
これらの実験の結果は、Wnt1およびLRP5の存在下でDkk−1がTCF−ルシフェラーゼ活性を統計的有意に相殺したことを示している(図14)。これとは顕著に対照的に、Dkk−1はHBM/Wnt1媒介性TCF−ルシフェラーゼ活性には全く影響を及ぼさなかった(図14)。同様の実験で、Dkk−1はさらにLRP5/Wnt3aを相殺することはできたが、HBM/Wnt3a媒介性TCF−ルシフェラーゼ活性を相殺することはできなかった(図15)。これらの結果は、HBM突然変異がHOB03CE6骨芽細胞におけるWnt1およびWnt3aシグナル伝達のアンタゴニストとしてDkk−1を不活性にすることを指摘している。Wnt1を用いた他の実験では、Dkk−1はLRP5もしくはHBM媒介性TCF−ルシフェラーゼ活性に何の影響も及ぼさなかった(図14)。これとは対照的に、Wnt3aの存在下でLRP5もしくはHBMのどちらかを用いた場合、Dkk−2はTCF−ルシフェラーゼ活性を相殺することができた(図15)。これらの後者の結果は、HBM突然変異がWnt3aの存在下ではDkk−2の作用に影響を及ぼさないことを指摘している。さらにまたHOB−03−CE6細胞中の密接に関連するLRP6 cDNAを使用して実験を実施した。これらの実験では、LRP6/Wnt1およびLRP6/Wnt3a媒介性TCF−ルシフェラーゼはLRP5と同様の方法で調節された。詳細には、Dkk−1はLRP6/Wnt1媒介性TCF−ルシフェラーゼ活性を相殺したが、Dkk−2は作用を及ぼさなかった(図14)。しかし、Dkk−2とLRP5/Wnt3aとの作用と同様に、Dkk−2はLRP6/Wnt3a媒介性TCF−ルシフェラーゼ活性を相殺することができた(図15)。
U2OS細胞における結果は、Wnt3aの存在下でのWntシグナル伝達のOST262 LRP5ペプチドアプタマー活性化の力強い作用を証明している(図16)。これらの機能的重要性は、アフリカツメガエルアッセイにおいてLRP5ペプチドアプタマーを用いて下記の実施例11で証明された結果によって確証された。このような結果は、LRP5/LRP6/HBMシグナル伝達に小分子が及ぼす作用はTCF−ルシフェラーゼアッセイを使用して検出できることを肯定的に証明している。
これらのデータは、Wnt1およびWnt3aシグナル伝達を相殺するDkk−1の能力に関してLRP5とHBMとの間には機能的相違があることを証明している。これらのデータおよびDkk−1がLRP5と直接的に相互作用することを証明した以前のデータは、Dkk−1がHBM/Wntシグナル伝達を相殺できないことの原因は、一部にはHBM表現型に帰せられることを示唆している。これらの実験はさらに、HBM媒介性Wntシグナル伝達を模倣するLRP5リガンドまたはLRP5とのDkk−1相互作用を遮断する因子について種々の分子(例えば、小分子、アプタマー、ペプチド、抗体、LRP5相互作用タンパク質またはDkk−1相互作用タンパク質等)を試験する能力を証明している。
酵母2ハイブリッド相互作用トラップ
Dkk−LRP相互作用の小分子インヒビター(もしくは部分的インヒビター)は、極めて素晴らしい骨形成性治療薬である可能性がある。この重要なタンパク質−タンパク質相互作用を調査するための1つの方法は、上記に説明し、当分野でよく知られているY2H技術を実質的に使用することである。例えばLRP5 LBDのようなLRP5の領域は、Dkkと機能的に相互作用することが見いだされている。この相互作用を、ベイトおよびプレイが相互作用する場合にのみ活性化される例えばlacZもしくはルシフェラーゼのような当分野でよく知られているレポーターエレメントを使用して定量した。Y2Hアッセイを使用して、LRP−Dkk相互作用を変調する化合物についてスクリーニングした。このような変調は、より弱いもしくは崩壊した相互作用を意味するレポーターエレメント活性化の減少、またはより強力な相互作用を意味するレポーターエレメント活性化の増強によって視認できるであろう。そこで、Y2Hアッセイを高スループット・スクリーニング技術として使用すると、Dkkと潜在的治療薬として機能する可能性があるLRP5/LRP6/HBMとの相互作用を破壊または増強する化合物を同定することができる。
例えば、相互作用Trap法は下記のように使用できる。例えばLRP5 LBDをLexAと融合させ、Dkk−1をGal4−ADもしくはB42のどちらかと融合させた。LRP5 LBD−LexAベイトおよびGal4−AD−Dkkプレイを用いると、バックグラウンドの20倍を超えるlacZレポーターの活性化(単一LexAオペレーターの制御下)を検出した。LRPに結合できないDkk−1突然変異体(C220A)を用いると、酵母中ではこの相互作用は減少し、この相互作用および系の特異性を証明した(図18)。結果として、LRPとDkkとの間のこの相互作用を変調する小分子を同定することができる。
細胞に基づく機能的高スループットアッセイ
高スループットアッセイを開発するために、U2OS細胞およびHEK293細胞中の外因性LRP5/6の低レベル発現を利用して実施例7に記載したTCF−ルシフェラーゼアッセイを修正した。しかし、HOB−03−CE6細胞および、LRP5、LRP6もしくはHBMが発現するかどうかに依存してDkkへの示差的反応を示す他のあらゆる細胞を使用できる。U2OS(ヒト肉芽腫)およびHEK293(ATCC)細胞を使用して、TCF−ルシフェラーゼおよびtk−Renillaレポーターエレメント構築物をWnt3a/1およびDkkと一緒に共トランスフェクトした。外因性LRP5/6を使用して、Wnt3a単独はTCFレポーター遺伝子活性化を刺激することができた。Wnt3a/Wnt1およびレポーター(TCF−luciおよびtk−Renilla)を用いてDkkを共トランスフェクトすると、Dkkはレポーターエレメント活性を抑制する。さらにWnt3a/Wnt1によって活性化されたTCF−luciシグナルはWnt3a/Wnt1およびレポーターを含有する細胞へDkk富裕馴化培地を添加することにより抑制できる。このアッセイは、さらにDkk1の点突然変異構築物(C220A)によってTCF−レポーター阻害の欠如によって妥当性が確認される。
該レポーターのDkk媒介性回帰はトランスフェクトしたDkk cDNAの濃度または添加されたDkk馴化培地の量に依存する。さらに、Dkk媒介性レポーター抑制は、U2OSもしくはHEK293細胞のLRP5、LRP6、およびHBM cDNAのコトランスフェクションによって変化させることができる。一般に、U2OS細胞はHEK293細胞中よりもDkk媒介性レポーター抑制への大きな感受性を示す。U2OS細胞中では、LRP5/LRP6/HBM cDNAのトランスフェクションはWnt3a/Wnt1トランスフェクションの不在下でTCF−luciの中等度の活性化を引き起こす。この活性化は、おそらくはU2OS細胞中に存在する外因性Wntsを利用する。この条件下で、Dkk1はTCF−luciを抑制することができ、LRP5とHBMとの間の示差的シグナルを示す。Wnt3a/Wnt1を共トランスフェクトすることによって、本アッセイではTCF−luciシグナルの一般的増加が生じる。さらに、LRP5とHBM cDNA発現ならびにLRP5とLRP6 cDNAとの間に起因するレポーターのDkk媒介性示差的抑制を検出することができる。この抑制はLRP6とでは最大、LRP5とでは中等度、そしてHBM cDNA発現とでは最小である。さらに、このアッセイはLRP5相互作用ペプチドアプタマー(図4)、Dkk1相互作用アプタマーおよびDkk−1の結合ドメインの機能的影響(図6;図12および13のOST264および265)を検出できる。
DkkおよびWnt3a両方の存在を原因として抑制されたWNt−TCFシグナルを備えるこの系を使用すると、TCF−ルシフェラーゼレポーターを活性化し、それによりWnt経路のDkk媒介性抑制を和らげる化合物を探索することによって、Wntシグナル伝達のDkk変調を変化させることのできた化合物をスクリーニングすることができる。このように同定された化合物は、HBM模倣物として機能して、例えば骨形成性治療薬として有用である可能性がある。この高スループットスクリーニングから生成したデータを図19〜21に示した。図19は、Dkk1がU2OS骨細胞中でWnt3a媒介性シグナル伝達を抑制することを証明している。図20は、LRP5、LRP6、およびHBMの間の機能的差を証明している。Dkk−1はLRP6およびLRP5を抑制するが、U2OS細胞中のHBM生成Wnt1シグナル伝達にほとんど、または全く影響を及ぼさない。図21は、種々のDkkファミリーメンバー、およびDkk−1、突然変異Dkk−1(C220A)、Dkk−1−AP(アルカリホスファターゼを用いて修飾された)、Dkk−3およびSoggyを含む修飾されたDkksの示差的作用を示している。
DKK/LRP5/6/HBM ELISAアッセイ
LRPへのDkkの結合を調査するためのさらなる方法はELISAアッセイによるものである。このアッセイの可能性のある2つの順列を例示する。LRP5は組織培養プレートウェルのような固体表面に固定した。当業者であれば、例えばナイロンもしくはニトロセルロース膜、シリコーンチップ、ガラススライド、ビーズ等のような他の支持体を利用できることを認識するであろう。この実施例では、使用したLRP5の形状は実質的にLRP5の細胞外ドメインがヒトIgGのFc部分へ融合している融合タンパク質であった。LRP5−Fc融合タンパク質は安定細胞系からのCHO細胞抽出液中で生成した。LRP5−Fc融合タンパク質は抗ヒトFc抗体を介して、または例えばタンパク質Aもしくはタンパク質G被覆プレートによって固体表面上に固定化した。このプレートをその後洗浄して結合していないタンパク質を除去した。分泌Dkkタンパク質もしくは分泌Dkk−エピトープタグ付きタンパク質(または精製Dkkもしくは精製Dkk−エピトープタグ付きタンパク質)を含有する馴化培地をウェル内でインキュベートし、Dkkもしくはエピトープタグのどちらかに対する抗体を使用してLRPへのDkkの結合を調査した。DKk−V5エピトープタグ付きタンパク質は、アルカリホスファターゼタグ付き抗V5抗体を使用して検出されるであろう。
あるいはまたDkkタンパク質は例えばアルカリホスファターゼのような検出マーカーへ直接融合することができよう。この場合、Dkk−LRP相互作用の検出は引き続いての抗体に基づく実験を行わずに直接に調査できる。結合したDkkはアルカリホスファターゼアッセイにおいて検出される。Dkk−アルカリホスファターゼ融合タンパク質が固定化されたLRP5に結合している場合は、アルカリホスファターゼ活性は比色計の読み出しから検出されるであろう。結果として、この系を使用すると小分子化合物がDkkのLRPへの結合を変化させる能力をアッセイできる。化合物をプレートの各ウェルにDkk(もしくはエピトープタグ付きDkk)と一緒に添加すると、適切なインキュベーション時間および洗浄後にウェル内に存在する結合したDkkのシグナル強度に基づいてそれらの化合物がDkkとLRPとの相互作用を変調する能力をスコア付けすることができる。このアッセイは、未標識Dkkまたは第2のタイプのエピトープタグ付きDkkを用いて低温競合実験を実施することによって校正できる。Dkk−LRP相互作用を変調できるあらゆる小分子は適切な治療薬候補、より好ましくは骨形成性治療薬候補である可能性がある。
アフリカツメガエルにおけるペプチドアプタマーの機能的評価
拘束ペプチドアプタマー構築物OST258〜263(258はシグナル配列を単独で含有し、263は無関係の拘束ペプチドを含有している)(図12および13)を使用して、制限エンドヌクレアーゼ消化によってベクターを線状化し、T7 RNAポリメラーゼを使用してRNAを生成したこと以外は、実質的に実施例7に記載した通りにRNAを生成した。
アプタマーRNAは、実施例7のプロトコールを使用して1割球当たり250pgで注入した。Wntシグナル伝達は、アプタマー261を用いて、およびより強力には262を用いて胚背側化(重複体軸)によって視認されたように、活性化された。このアッセイの結果は図22および23に示した。これらの結果は、アプタマー261および262がおそらくLRPのLBDへの結合によって、それによりDkkによるLRP媒介性シグナル伝達の変調を防止することによってWntシグナル伝達を活性化できることを示唆している。
本発明のアプタマーはHBM模倣物として機能することができる。アフリカツメガエル系では、それらはすべて単独でWntシグナル伝達を誘導することができる。それらはさらにまた、ペプチドが特異的アミノ酸レベルでどのようにLRPと相互作用してWntシグナル伝達を変調できるのかについての理解を強化することによって合理的ドラッグデザインのためのツールとして機能する可能性がある。したがって、治療薬としてそれらの作用を模倣する小分子を構成することができるであろう。さらに、このアッセイで陽性であると同定されたアプタマーは単独で治療用分子として使用できる可能性がある。
均一性アッセイ
タンパク質−タンパク質相互作用における摂動を調査するための極めて優れた方法は、蛍光共鳴エネルギー転移(FRET)による方法である。FRETは、蛍光分子であるドナーが極めて近位にあるアクセプター発色団分子へエネルギーを転移させる量子力学的プロセスである。この系はLRP5とAxinとの分子間相互作用について特性解析するために文献で使用され成功が得られている(Maoら,Molec.Cell Biol.7:801−809)。このような試験では多数の異なる蛍光タグを利用することができ、関心タンパク質に蛍光標識するためには数種の方法がある。例えば、CFP(シアン蛍光タンパク質)およびYFP(黄色蛍光タンパク質)は各々がドナーおよびアクセプターとして使用できる。ドナーおよびアクセプターを備える融合タンパク質は、人工的に作製し、発現させ、そして精製することができる。
例えば、CFPおよび精製Dkkタンパク質へ融合した精製LRPタンパク質、またはその部分もしくはドメイン、またはYFPへ融合した各々DkkもしくはLRPと相互作用するそれらの部分もしくはドメインは標準的アプローチを使用して生成および精製することができる。LRP−CFPおよびDKk−YFPが極めて近位に存在する場合、CFPからYFPへのエネルギーの転移はCFP発光の減少およびYFP発光の増加を生じさせるであろう。エネルギーは450nmの励起波長で供給され、エネルギー転移は480nmおよび570nmの発光波長で記録した。YFP発光対CFP発光の比率はLRPとDkkとの相互作用における変化の測定基準を提供する。この系は、Dkk−LRPタンパク質−タンパク質相互作用を変化させる可能性がある小分子化合物をスクリーニングするために適している。この相互作用を破壊する化合物は、YFP発光対CFP発光の比率における低下によって同定されるであろう。LRP−Dkk相互作用を変調するこのような化合物は、候補HBM模倣物分子と見なされるであろう。該化合物のこれ以上の特性解析は、該化合物がWntシグナル伝達へ及ぼす作用を解明するためにTCF−ルシフェラーゼまたはアフリカツメガエル胚アッセイを使用して実施できる。
上記の実施例では精製された成分を使用する無細胞液相アッセイを説明してきたが、細胞に基づく同様のアッセイも実施できよう。例えば、LRP−CFP融合タンパク質は細胞中で発現できる。その後、Dkk−YFP融合タンパク質は精製タンパク質または馴化培地のどちらかとして細胞に添加できよう。LRPとDkkとの相互作用は上記の通りに監視する。
本明細書言及したすべての参考文献は、事実上その全体が参照することにより本明細書組み込まれる。以下の特許出願もまた事実上その全体が参照することにより本明細書組み込まれる:2001年5月11日に提出された米国特許出願第60/290,071号;2000年4月5日に提出された米国特許出願第09/544,398号;2000年4月5日に提出された米国特許出願第09/543,771号;第09/578,900;1999年1月13日に提出された米国特許出願第09/229,319号;1998年1月13日に提出された米国仮出願60/071,449号;および2000年6月21日に提出された国際特許出願第PCT/US00/16951号;2002年5月13日に提出された「骨量および脂質濃度を変調するHBM変異体(HBM Variants That Modulate Bone Mass and Lipid Levels)」と題する国際PCT出願;および2002年5月13日に提出された「骨量変調のトランスジェニック動物モデル(Transgenic Animal Model of Bone Mass Modulation)」と題する国際PCT出願。さらに、本出願は、事実上それらの本文が参照することによりその全体が本明細書組み込まれる2001年5月17日に提出された米国仮出願第60/291,311号;2002年2月1日に提出された第60/353,058号;および2002年3月4日に提出された第60/361,293号への優先権を主張する。
Wntシグナル伝達経路の構成要素の略図である。略図の入手先:http//www.stanford.edu/〜musse/pathways/cell2.html 図2A〜Cは、タンパク質−タンパク質相互作用に対する酵母2ハイブリッド(Y2H)スクリーニングに利用されるベイト配列(配列番号168〜170)の図である。 Dkk−1ベイト配列を用いてY2Hスクリーニングで同定されたペプチドアプタマー挿入配列(配列番号171〜192)の表である。 LRP5リガンド結合ドメインベイト配列を使用してY2Hスクリーニングにおいて同定されたペプチドアプタマー挿入配列の表である。 Dkk−1ベイト配列を使用してY2Hスクリーニングにおいて同定されたタンパク質の表である。これらのタンパク質はそれらの核酸およびアミノ酸アクセッション番号の両方によって同定される。 Dkk−1とLRP5の最小相互作用ドメインマッピングスクリーニングの結果の図である。一番上は、シグナル配列の位置、およびシステインリッチドメイン1および2を示しているDkk−1のマップ。下方は、図2のLRP5 LBDベイトであるLBD1およびLBD4を使用して試験したドメインの範囲。右には実験で観察された結合結果のスコア付けが示されている。 Wnt活性についてのアフリカツメガエル(Xenopus)胚アッセイの図解である。 アフリカツメガエル胚アッセイにおいてWntシグナル伝達にZmax/LRP5およびHBMが及ぼす作用の図である。 アフリカツメガエル胚アッセイにおいて2次的な体軸形成の誘導にZmax/LRP5およびHBMが及ぼす作用の図である。 正規Wnt経路の抑制にヒトDkk−1が及ぼす作用の図である。 Zmax/LRP5およびHBM媒介性Wntシグナル伝達にヒトDkk−1が及ぼす作用の図である。 LRP5結合ペプチドアプタマー、Dkk−1ペプチドおよびコントロール構築物についてのpcDNA3.1構築物の名称およびヌクレオチド配列(配列番号193〜203を含む)である。 図12における対応するLRP5結合ペプチド、Dkk−1ペプチドアプタマーおよびコントロール構築物についてのアミノ酸配列(配列番号204〜214を含む)である。 HOB03CE6細胞中のコ受容体LRP5、HBM、およびLRP6によるWnt1シグナル伝達にDkk−1およびDkk−2が及ぼす作用の図である。 HOB03CE6細胞中のコ受容体LRP5、HBM、およびLRP6によるWnt3aシグナル伝達にDkk−1およびDkk−2が及ぼす作用の図である。 U2OS細胞中のWnt3aの存在下でLRP5−LBDペプチドアプタマー262がWntシグナル伝達を活性化させることを示した図である。 LRP5およびHBMウイルス感染細胞中にHBM突然変異を含む配列(a.a.165〜177)へ生成された抗体の示差的結合を示した図である。 変異体Dkk−1(C220A)はLRP5に結合することができないY2H相互作用トラップから生成したデータの図であり、LRPおよびDkk相互作用に小分子が及ぼす作用を検出する能力のウィンドウを示した図である。 高スループットスクリーニングのために細胞に基づくレポーター遺伝子アッセイを使用してDkk−1がU2OS骨細胞中のWnt3a媒介性Wntシグナル伝達を抑制するのを示した図である。 高スループットスクリーニングのために細胞に基づくレポーター遺伝子アッセイを使用すると、Wnt1−HBM生成シグナル伝達はU2OS骨細胞中のDkk−1によって効果的に阻害されないが、LRP5およびLRP6−媒介性シグナル伝達は効果的に阻害されることを示した図である。 高スループットスクリーニングのための細胞に基づくレポーター遺伝子アッセイにおいて、TCFシグナルがWnt DNAトランスフェクションを行わずにDkk−1およびDkk−1−APによって変調できることを示した図である。 LRPt−LBDからのアプタマー261および262を使用してWntシグナル伝達を活性化したアフリカツメガエルアッセイにおける形態学的結果を示した図である。 LRP5−LBDアプタマー261および262がその他のLRP5アプタマーにわたってWntシグナル伝達を誘導することを証明した図である。 LRP5中の突然変異G171FがHBM活性に一致するLRP5よりも大きなWnt経路の活性化を生じさせることを示した図である。 LRP5中の突然変異M282VがU2OS細胞中のHBM活性と一致するWnt経路の活性化を生じさせることを示した図である。 ポリクローナル抗体を生成するために選択されたDkk−1の種々のペプチドのアミノ酸配列、それらとDkk−1アミノ酸配列との関係および生成したポリクローナル抗体の同一性を示した図である。 Dkk−1のアミノ酸165〜186に対するポリクローナル抗体#5521が馴化培地からDkk1−V5およびDkk1−APを検出できることを証明しているウェスタンブロットの図である。 アミノ酸147〜161に対するポリクローナル抗体#74397が馴化培地(conditioned medium)および免疫沈降馴化培地のどちらにおいてもDkk1−V5を検出できることを証明しているウェスタンブロットの図である。
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Claims (114)

  1. 被検対象におけるLRP5、LRP6またはHBM活性を調節する方法であって、LRP5、LRP6またはHBM活性を調節するための有効量でDkk活性を変調する組成物を投与するステップを含む方法。
  2. DkkがDkk−1である請求項1、24、28、33、36、37、48、64、65、93、98、101、105、107、111、または112のいずれかの方法。
  3. DkkがDkk−1であり、Dkk活性が阻害される請求項1、24、28、または33のいずれかの方法。
  4. Dkk活性が骨量および/または脂質濃度を変調する請求項1または24の方法。
  5. 骨量を増加させる、および/または脂質濃度を低下させる請求項4の方法。
  6. 骨量における増加が骨折率の低下、骨強度の増加、骨密度の増加、骨塩密度の増加、骨梁連結性の増加、骨梁密度の増加、皮質骨密度の増加、骨径の増加、および無機質骨含量の増加のうちの1つ以上を介して決定される請求項5の方法。
  7. 前記組成物がDkk相互作用タンパク質、またはそのDkk結合フラグメントからなる群から選択される1つ以上の化合物を含む請求項1、24、28、または33のいずれかの方法。
  8. 前記組成物が、1つ以上のDkk相互作用タンパク質をコードする核酸を認識して結合するアンチセンス、siRNA、またはshRNA分子を含む請求項1、24、28、または33のいずれかの方法。
  9. 前記組成物がDkkペプチドアプタマーを含む請求項1、24、28、または33のいずれかの方法。
  10. 前記組成物がDkkペプチドアプタマーの模倣物を含む請求項1、24、28、または33のいずれかの方法。
  11. 前記組成物がDkkのLRP5、LRP6、もしくはHBMへの結合を阻害する請求項1、24、28、または33のいずれかの方法。
  12. 前記組成物がDkkのLRP5、LRP6、もしくはHBMへの結合を増強する請求項1、24、28、または33のいずれかの方法。
  13. 前記組成物がDkk相互作用タンパク質ペプチドアプタマーを含む請求項1、24、28、または33のいずれかの方法。
  14. 前記組成物がDkk相互作用タンパク質ペプチドアプタマーの模倣物を含む請求項1、24、28、または33のいずれかの方法。
  15. 前記組成物がDkk相互作用タンパク質またはそのDkk結合フラグメントのDkkへの結合を阻害する請求項1、24、28、または33のいずれかの方法。
  16. 前記組成物がDkk相互作用タンパク質またはそのDkk結合フラグメントのDkkへの結合を増強する請求項1、24、28、または33のいずれかの方法。
  17. 前記被検対象が脊椎動物または無脊椎動物である請求項1、24、28、または33のいずれかの方法。
  18. 前記被検対象が哺乳動物である請求項1、24、28、または33のいずれかの方法。
  19. 前記被検対象が、イヌ、ネコ、ヒツジ、霊長類、ウマ、ブタ、ヤギ、ラクダ、鳥類、ウシ、または齧歯動物である請求項1、24、28、または33のいずれかの方法。
  20. 前記霊長類がヒトである請求項19の方法。
  21. 前記組成物がLRP5ペプチドアプタマーを含む請求項1、24、28、または33のいずれかの方法。
  22. 前記ペプチドアプタマーがOST262(配列番号208)である請求項21の方法。
  23. 前記組成物がLRP5抗体またはその免疫学的に活性なフラグメントを含む請求項1、24、28、または33のいずれかの方法。
  24. 被検対象におけるDkk−Wnt経路活性を調節する方法であって、Dkk−Wnt経路活性を調節するための有効量でDkk活性を変調する組成物を投与するステップを含む方法。
  25. Wntが1つ以上のWnt1〜Wnt19である請求項24、101又は107の方法。
  26. WntがWnt1、Wnt3、Wnt3a又はWnt10bである請求項25の方法。
  27. Dkk活性を変調する、またはLRP5/LRP6/HBMとのDkk相互作用を変調する前記組成物がWntシグナル伝達を変調するための有効量で投与される請求項24の方法。
  28. 被検対象において骨量を変調する方法であって、前記被検対象における骨量を変調するための有効量でDkk活性またはLRP5、LRP6、もしくはHBMとのDkk相互作用を変調する組成物を前記被検対象に投与するステップを含む方法。
  29. 骨量を増加させる請求項28の方法。
  30. 骨量における増加が骨折率の低下、骨強度の増加、骨密度の増加、骨塩密度の増加、骨梁連結性の増加、骨梁密度の増加、皮質骨密度の増加、骨径の増加、および無機質骨含量の増加のうちの1つ以上を介して決定される請求項1〜29のいずれか1項に記載の方法。
  31. 前記被検対象が、骨の発達障害、骨折、年齢関連性骨量減少、軟骨形成異常、薬物誘発性骨障害、骨の高度の代謝回転、高カルシウム血症、骨化過剰症、骨形成不全症、骨軟化症、骨髄炎、骨粗鬆症、ぺージェット病、変形性関節症、およびくる病からなる群から選択される骨量障害を有する請求項28ないし36の方法。
  32. LRP5、LRP6若しくはHBMとのDkk相互作用又はDkk活性を変調する前記組成物が骨梁および/または皮質組織の量を変調するための有効量で投与される請求項28の方法。
  33. 被検対象における脂質濃度を変調する方法であって、前記被検対象における脂質濃度を変調するための有効量でDkk活性またはLRP5、LRP6、もしくはHBMとのDkk相互作用を変調する組成物を前記被検対象に投与するステップを含む方法。
  34. 脂質濃度を低下させる請求項33の方法。
  35. 前記被検対象が脂質変調障害を有し、前記脂質変調障害が心臓状態、アテローム性動脈硬化症、家族性リポタンパク質リパーゼ欠損症、家族性アポタンパク質CII欠損症、家族性3型高リポタンパク血症、家族性高コレステロール血症、家族性高トリグリセリド血症、多種リポタンパク型高脂血症、透析および/または糖尿病を原因とする脂質濃度上昇、および病因不明の脂質濃度上昇からなる群から選択される請求項33又は36の方法。
  36. 被検対象における低骨量もしくは高骨量および/または高脂質もしくは低脂質濃度を診断する方法であって、前記被検対象が(a)高骨量もしくは低骨量および/または(b)高脂質もしくは低脂質濃度を有するかどうかを決定するために、前記被検対象におけるDkk、LRP5、LRP6、HBMおよび/またはHBM様変異体の発現を検査するステップと、Dkk、LRP5、LRP6、HBM、またはHBM様変異体が過剰もしくは過小発現しているかどうかを決定するステップとを含む方法。
  37. LRP5、LRP6もしくはHBMとDkkとの相互作用、またはLRP5、LRP6もしくはHBMのDkk結合フラグメントとDkkとの相互作用を変調する化合物をスクリーニングする方法であって
    (a)DkkおよびそのLRP5、LRP6および/またはHBM結合フラグメントを化合物に曝露させるステップと、
    (b)前記化合物がLRP5/LRP6/HBM結合フラグメントとのDkk相互作用を変調するかどうかを決定するステップと
    を含む方法。
  38. 前記変調が、前記化合物がDkkまたはそのLRP5、LRP6もしくはHBM結合フラグメントに結合するかどうかによって決定される請求項37の方法。
  39. DkkまたはそのLRP結合フラグメントが基質に付着される請求項37の方法。
  40. 前記化合物がDkk相互作用タンパク質、またはそのDkk結合フラグメントからなる群から選択される1つ以上の化合物を含む請求項37の方法。
  41. 前記化合物がDkkペプチドアプタマーを含む請求項37または48の方法。
  42. 前記化合物がDkkペプチドアプタマーの模倣物を含む請求項37または48の方法。
  43. 前記化合物がDkk相互作用タンパク質ペプチドアプタマーを含む請求項37または48の方法。
  44. 前記化合物がLRP5ペプチドアプタマーを含む請求項37または48の方法。
  45. 前記ペプチドアプタマーがOST262(配列番号208)である請求項44の方法。
  46. 前記化合物がLRP5抗体を含む請求項37または48の方法。
  47. 前記化合物がDkk相互作用タンパク質ペプチドアプタマーの模倣物である請求項37または48の方法。
  48. DkkとDkk相互作用タンパク質との相互作用を変調する化合物をスクリーニングする方法であって、
    (a)Dkk相互作用タンパク質またはそのDkk結合フラグメントを1つの化合物に曝露させるステップと、
    (b)前記化合物がDkk相互作用タンパク質またはそのDkk結合フラグメントに結合したかどうかを決定するステップと、
    (c)前記化合物がDkk相互作用タンパク質とDkkとの相互作用を変調するかどうかをさらに決定するステップと
    を含む方法。
  49. 前記Dkk相互作用タンパク質またはそのDkk結合フラグメントが基質に付着される請求項48の方法。
  50. LRP5、LRP6またはHBM活性変調化合物とそのための医薬上許容される担体とを含む組成物。
  51. 前記LRP5、LRP6またはHBM活性変調化合物が、Dkkに結合する化合物を含んでおり、それによりDkkとLRP5、LRP6、もしくはHBMとの相互作用を変調する請求項50の組成物。
  52. 前記LRP5、LRP6またはHBM変調化合物が、1つ以上のDkk相互作用タンパク質およびそのDkk結合フラグメントを含む請求項50の組成物。
  53. 前記LRP5、LRP6またはHBM変調化合物が、Dkk相互作用タンパク質またはそのDkk結合フラグメントに結合するモノクローナル抗体またはその免疫学的に活性なフラグメントである請求項50の組成物。
  54. 前記モノクローナル抗体が、ヒト抗体、キメラ抗体、ヒト化抗体、Primatized(登録商標)抗体、または二重特異性抗体である請求項53の組成物。
  55. 前記LRP5、LRP6またはHBM変調化合物が、1つ以上のDkk相互作用タンパク質をコードする核酸を認識して結合するアンチセンス、siRNA、またはshRNA分子を含む請求項50の組成物。
  56. 前記LRP5、LRP6またはHBM変調化合物が、Dkkペプチドアプタマーを含む請求項50の組成物。
  57. 前記LRP5、LRP6またはHBM変調化合物が、Dkkペプチドアプタマーの模倣物を含む請求項50の組成物。
  58. 前記LRP5、LRP6またはHBM変調化合物が、Dkk相互作用タンパク質ペプチドアプタマーを含む請求項50の組成物。
  59. 前記LRP5、LRP6またはHBM変調化合物が、Dkk相互作用タンパク質ペプチドアプタマーの模倣物を含む請求項50の組成物。
  60. 前記化合物がLRP5ペプチドアプタマーを含む請求項50の組成物。
  61. 前記ペプチドアプタマーがOST262である請求項60の組成物。
  62. 前記化合物がLRP5抗体を含む請求項50の組成物。
  63. Dkk活性を変調する化合物とそのために医薬上許容される担体とを含む医薬組成物。
  64. DkkとLRP5/LRP6/HBMとの相互作用を変調する化合物を同定するための方法であって、
    (a)第1蛍光タグを使用してLRP5、LRP6、もしくはHBM蛍光融合タンパク質を作製するステップと、
    (b)第2蛍光タグを含むDkk融合タンパク質を作製するステップと、
    (c)試験化合物を添加するステップと、
    (d)前記化合物がDkkとLRP5/LRP6/HBMとの相互作用を変調するかどうかを決定するために蛍光共鳴エネルギー転移法(FRET)または生物蛍光共鳴エネルギー転移法(BRET)を使用して蛍光タグ発光の比率における変化を評価するステップと
    を含む方法。
  65. Dkkタンパク質に対する結合パートナーを同定する方法であって、
    (a)1つ以上のDkkタンパク質またはそのLRP5/LRP6結合フラグメントを潜在的結合パートナーへ曝露させるステップと、
    (b)前記潜在的結合パートナーがDkkタンパク質またはそのLRP5/LRP6結合フラグメントへ結合するかどうかを決定するステップと
    を含む方法。
  66. Dkk相互作用タンパク質アミノ酸配列をコードする核酸とインフレームであるGal4もしくはLexAの活性化ドメインとインフレームである足場タンパク質をコードする核酸を含むDkk相互作用タンパク質ペプチドアプタマーをコードする核酸。
  67. 請求項66の核酸を含むベクター。
  68. 前記足場タンパク質がtrxAである請求項66の核酸。
  69. その自然環境における細胞外相互作用を通して結合するペプチド結合対の第1のペプチドと第2のペプチドとの結合相互作用に及ぼす化合物の変調活性を検出する方法であって、
    (i)
    a)転写活性化タンパク質DNA結合ドメインへ結合した第1のペプチドまたはそのセグメントを含む第1の異種融合タンパク質をコードするヌクレオチド配列と、
    b)転写活性化タンパク質転写活性化ドメインへ結合した第2のペプチドまたはそのセグメントを含む第2の異種融合タンパク質をコードするヌクレオチド配列と、
    (このとき第1のペプチドまたはそのセグメントと第2のペプチドまたはそのセグメントとの結合は転写活性化タンパク質を再構成する)、
    c)再構成された転写活性化タンパク質の陽性転写制御下で活性化されたレポーターエレメントと(このとき前記レポーターエレメントの発現は選択された表現型を生じる)、
    を含む少なくとも1つの真核細胞を培養するステップと、
    (ii)前記真核細胞を化合物の存在下で前記選択された表現型を検出するために適合する条件下で培養するステップと、
    (iii)前記化合物が前記選択された表現型を生成する前記レポーターエレメントの発現に影響を及ぼすかどうかを決定することによって前記化合物が前記ペプチド結合対の結合相互作用に影響を及ぼす能力を検出するステップと(このとき、(1)前記第1のペプチドはDkkペプチドであり、第2のペプチドはLRP5、HBM、LRP6およびLRP5/LRP6/HBMのDkk結合部分から選択されたペプチドである、または(2)前記第1のペプチドはDkk相互作用タンパク質またはそのDkk結合フラグメントであり、前記第2のペプチドはDkkペプチドである)、
    を含む方法。
  70. 前記真核細胞が酵母細胞である請求項69の方法。
  71. 前記酵母細胞がサッカロミセスである請求項70の方法。
  72. サッカロミセス細胞がサッカロミセス・セレヴィシエである請求項71の方法。
  73. DkkがDkk−1であり、前記化合物が1つ以上のDkk相互作用タンパク質またはそのDkk結合フラグメントを含む請求項69の方法。
  74. 前記化合物がアッセイに直接的に添加される請求項73の方法。
  75. 前記化合物が前記第1および第2のペプチドに加えて前記真核細胞によって組換え的に発現させられる請求項73の方法。
  76. 前記化合物がDkkペプチドアプタマーを含む請求項69の方法。
  77. 前記化合物がDkkペプチドアプタマーの模倣物を含む請求項69の方法。
  78. 前記化合物がDkk相互作用タンパク質ペプチドアプタマーを含む請求項69の方法。
  79. 前記化合物がDkk相互作用タンパク質ペプチドアプタマーの模倣物を含む請求項69の方法。
  80. 真核細胞がさらに、転写活性化タンパク質のDNA結合ドメインをコードするヌクレオチド配列、転写活性化タンパク質の転写活性化ドメインをコードするヌクレオチド配列、およびレポーターエレメントをコードするヌクレオチド配列からなる群から選択された少なくとも1つの内因性ヌクレオチド配列を含んでおり、前記内因性ヌクレオチド配列の少なくとも1つが突然変異もしくは欠失によって不活化されている請求項69の方法。
  81. 前記ペプチド結合対がリガンドと前記リガンドが結合する受容体とを含む請求項69の方法。
  82. 前記転写活性化タンパク質がGal4、Gcn4、Hap1、Adr1、Swi5、Ste12、Mcm1、Yap1、Ace1、Ppr1、Arg81、Lac9、Qa1F、VP16、または哺乳動物核受容体である請求項69の方法。
  83. 前記異種融合タンパク質の少なくとも1つが自己複製プラスミドから発現させられる請求項69の方法。
  84. 前記DNA結合ドメインが転写活性化タンパク質の異種DNA結合ドメインである請求項69の方法。
  85. 前記DNA結合タンパク質が哺乳動物ステロイド受容体および細菌LexAタンパク質からなる群から選択される請求項84の方法。
  86. 前記レポーターエレメントがlacZ、ルシフェラーゼをコードするポリヌクレオチド、緑色蛍光タンパク質(GFP)をコードするポリヌクレオチド、およびクロラムフェニコール・アセチルトランスフェラーゼをコードするポリヌクレオチドからなる群から選択される請求項69の方法。
  87. 前記レポーターエレメントがlacZである請求項86の方法。
  88. 前記試験サンプルがLRP5ペプチドアプタマーを含む請求項69の方法。
  89. 前記ペプチドアプタマーがOST262(配列番号208)である請求項88の方法。
  90. 前記試験サンプルがLRP5抗体を含む請求項69の方法。
  91. Dkk−1が組織特異的な方法でノックアウトされているトランスジェニック動物。
  92. 前記組織特異性が骨組織、癌組織、または肝組織である請求項91のトランスジェニック動物。
  93. Dkk活性を変調する潜在的化合物を同定するための方法であって、
    a)1つの化合物の存在下および不在下において、1つ以上のDkk相互作用タンパク質またはそのDkk結合フラグメントと、Dkkまたはそのフラグメントとの結合に及ぼす影響を測定するステップと、
    b)1つ以上のDkk相互作用タンパク質またはそのDkk結合フラグメントとDkkまたはそのフラグメントとの間の結合を変調する化合物を、潜在的Dkkを変調する化合物であると同定するステップと
    を含む方法。
  94. 図3(配列番号171〜188)または図4(配列番号189〜192)のペプチドアプタマー。
  95. 以下の1つ以上のアミノ酸配列のペプチドGNKYQTIDNYQPYPC(配列番号118)、LDGYSRRTTLSSKMYHTKGQEG(配列番号119)、RIQKDHHQASNSSRLHTCQRH(配列番号120)、RGEIEETITESFGND(配列番号121)、EIFQRCYCGEGLSCRIQKD(配列番号122)、MYWTDWVETPRIE(配列番号123)、MYWTDWGETPRIE(配列番号124)、KRTGGKREILSA(配列番号125)、ERVEKTTGDKRTRIQGR(配列番号126)、KQQCDSFPDCIDGSDE(配列番号127)、またはAsn34−His266(配列番号110)、Asn34−Cys245(配列番号111)、Asn34−Lys182(配列番号112)、Cys97−His266(配列番号113)、Val139−His266(配列番号114)、Gly183−His266(配列番号115)、Cys97−Cys245(配列番号116)、もしくはVal139−Cys245(配列番号117)からなる群から選択されるDkk−1アミノ酸配列を認識して結合する抗体もしくは抗体フラグメント。
  96. 前記抗体がモノクローナル抗体である請求項95の抗体もしくは抗体フラグメント。
  97. 前記抗体がポリクローナル抗体である請求項95の抗体もしくは抗体フラグメント。
  98. DkkとWntシグナル伝達経路との相互作用を変調するDkk相互作用タンパク質を同定する方法であって、
    (a)Dkkおよび潜在的Dkk相互作用タンパク質mRNAをアフリカツメガエル(Xenopus)割球内へ注入するステップと、
    (b)体軸重複を評価する、またはマーカー遺伝子発現を解析するステップと、
    (c)体軸重複またはマーカー遺伝子発現における変化を引き出す組成物を、DkkとWntシグナル伝達経路との相互作用を変調するDkk相互作用タンパク質であると同定するステップと
    を含む方法。
  99. HBM、LRP5/6、いずれかのWnt、Wntアンタゴニスト、Wnt経路変調剤、またはこれらの組み合わせのmRNAが、アフリカツメガエル割球内に共注入される請求項98の方法。
  100. 解析されるマーカー遺伝子がSiamois、Xnr3、slug、Xbra、HNK−1、endodermin、Xlhbox8、BMP2、BMP4、XLRP6、EF−1またはODCである請求項98の方法。
  101. DkkとWntシグナル伝達経路との相互作用を変調するDkk相互作用タンパク質を同定するための方法であって、
    (a)Dkkおよび潜在的Dkk相互作用タンパク質を含有する構築物を用いて細胞をトランスフェクトするステップと、
    (b)Wnt反応性プロモーターへ連結したレポーター遺伝子の発現における変化を評価するステップと、
    (c)Dkk構築物単独を用いてトランスフェクトされた細胞と比較してレポーター遺伝子発現を変化させるいずれかのタンパク質をDkk相互作用タンパク質であると同定するステップと
    を含む方法。
  102. 前記細胞が、HOB−03−CE6、HEK293、またはU2OS細胞である請求項101の方法。
  103. 前記Wnt反応性プロモーターがTCFまたはLEFである請求項101の方法。
  104. 前記細胞が、CMV β−ガラクトシダーゼを用いて共トランスフェクトされる請求項101の方法。
  105. DkkとLRP5/LRP6/HBMとの相互作用を変調する化合物を同定するための方法であって、
    (a)LRP5/LRP6/HBMを固体表面へ固定化するステップと、
    (b)分泌Dkkタンパク質もしくは分泌エピトープタグDkkおよび試験化合物を用いて固体表面を処理するステップと、
    (c)Dkkもしくはエピトープタグに対する抗体を使用して、またはエピトープタグの活性を直接に測定するステップによって、前記化合物がDkkとLRP5/LRP6/HBMとの間の結合を変調するかどうかを決定するステップと
    を含む方法。
  106. エピトープタグが、アルカリホスファターゼ、ヒスチジンまたはV5タグである請求項105の方法。
  107. DkkとWntシグナル伝達経路との相互作用を変調する化合物を同定するための方法であって、
    (a)DkkおよびWntタンパク質を含有する構築物を用いて細胞をトランスフェクトするステップと、
    (b)Wnt反応性プロモーターへ連結したレポーターエレメントの発現における変化を評価するステップと、
    (c)Dkk構築物単独を用いてトランスフェクトされた細胞と比較してレポーター遺伝子発現を変化させるいずれかの化合物をDkk/Wnt相互作用を変調する化合物であると同定するステップと
    を含む方法。
  108. WNt3aおよびWnt1構築物が、前記細胞内へ共トランスフェクトされる請求項107の方法。
  109. 前記細胞が、U2OS、HOB−03−CE6、またはHEK293細胞である請求項107の方法。
  110. 使用されるレポーターエレメントが、TCF−ルシフェラーゼ、tk−Renilla、またはその組み合わせである請求項107の方法。
  111. 哺乳動物におけるDkk−媒介性活性を変調する化合物を試験する方法であって、
    (a)(1)調節可能な1つ以上のDkk遺伝子、(2)Dkk遺伝子のノックアウト、もしくは(3)1つ以上のDkk遺伝子のノックインを有する1群のトランスジェニック動物を提供するステップと、
    (b)ステップ(a)におけるトランスジェニック動物群に対して各々第2群のコントロール動物を提供するステップと、
    (c)骨量または脂質濃度を変調する潜在的Dkk変調化合物へトランスジェニック動物群および対照動物群を曝露させるステップと、
    (d)トランスジェニック動物群と対照動物群とを比較し、そして前記化合物が対照動物群に比してトランスジェニック動物における骨量または脂質濃度に及ぼす作用を決定するステップと
    を含む方法。
  112. DkkとDkk相互作用タンパク質との相互作用を変調する化合物または組成物をスクリーニングするための方法であって、
    (a)Dkk相互作用タンパク質またはそのDkk結合フラグメントを1つの化合物へ曝露させるステップと、
    (b)前記化合物がDkk相互作用タンパク質またはそのDkk結合フラグメントへ結合するかどうかを決定するステップと
    を含む方法。
  113. 前記変調が、前記化合物が前記Dkk相互作用タンパク質またはそのDkk結合フラグメントに結合するかどうかによって決定される請求項112の方法。
  114. 図3(配列番号171〜188)または図4(配列番号189〜192)に示した配列を認識して結合する抗体もしくは抗体フラグメント。
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