JP2003508460A - チョウセンニンジンから単離された、造血性、骨髄保護性、抗腫瘍免疫細胞発生性および放射線増感性を有する多糖類 - Google Patents
チョウセンニンジンから単離された、造血性、骨髄保護性、抗腫瘍免疫細胞発生性および放射線増感性を有する多糖類Info
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Abstract
Description
免疫細胞発生のおよび放射線増感の活性を有する新規多糖類に関する。本発明は
またチョウセンニンジンからの多糖類ならびに造血性の、骨髄保護の、抗腫瘍免
疫細胞発生のおよび放射線増感の活性を増強する製剤用組成物の調製方法に関す
る。
ること、 の工程を含む調製方法により得られ、該多糖類は、 6種類の多糖類であって、それらの分子量が1,800,000〜2,200,000、1,350,00
0〜1,650,000、620,000〜780,000、105,000〜130,000、23,000〜27,000、5,000
〜6,000ダルトンであり、11.4〜13.4:3.6〜4.2:4.5〜5.1:0.7〜0.9:40.1〜4
8.1:31.0〜37.0の比で存在する多糖類が、α(1→6)連結のD−グルコピラ
ノース単位を主として含み、部分的にC-3位置で連結した分岐を持つ。
くの多糖類が報告されてきた。以下はこのことにおける周知の報告である。 D−グルコースからなるグリカンの一つであるパナキサン(Panaxan)は、血
糖レベルを低下させる活性成分として開示された〔Konno C. et al., チョウセ
ンニンジン根のパナキサンA.B.C.D.およびEグリカンの単離と血糖低下活性、 Pl
anta Medica 50 pp434-436,1984〕。その多糖類は、ガラクツロン酸、グルコー
ス、アラビノース、マンノース、およびガラクトースからなり、抗補体効果を有
する物質として開示された〔Gao Q., Kiyohara H. et al., チョウセンニンジン
の根および葉からの多糖類画分の化学的性質および抗補体活性、Planta Medica
55 pp9〜12, 1989〕。さらにチョウセンニンジンからの当該多糖類は、抗腫瘍
もしくは抗菌(bacterial resistance)活性を有することが報告された〔日本国
特許公開公報1986-18722A1号〕。
、それらの多糖類の成分は、本発明に係る多糖類の成分とは異なっている。さら
にチョウセンニンジンから抽出された多糖類が、造血性の、骨髄保護の、抗腫瘍
免疫細胞発生の、および放射線増感の活性を増強する物質としては決して開示さ
れたことはない。
は本発明の多糖類に比べて異なる分子構造を有する。 酵母細胞壁から分離されたβ-グルカンは、造血活性を持つことが知られてい
るが、本発明の多糖類とは異なる分子構造を有する。さらに、ストレプトコッカ
ス ピロジェンス(Streptococcus pyrogenes Su)細胞系を、Lentinus edodes
から抽出された椎茸抽出物(Lentinan)とともに加熱処理することにより調製さ
れるOK−432粉末は、生物応答調節剤(biological response modifiers, B
RMs)として開示されているが、β-グルカン構造もまた有する。
る抗腫瘍免疫細胞および放射線増感腫瘍細胞の成長を促進する活性をもつ多糖類
を精製単離することにより完成された。
下記の工程: i) 1重量部のチョウセンニンジン根を2〜4重量部のメタノールで抽出するこ
とにより残渣を得ること; ii) 工程i)の残渣から3〜5重量部の蒸留水を使用して水可溶性画分を抽出し
、得ること; iii) 工程ii)で得られた水可溶性画分を凍結乾燥すること; iv) 工程iii)での凍結乾燥画分から40%エタノールに対し不溶性画分を得て
から透析膜を使用して内画分を得ること; v) セファクリルS-500ゲルクロマトグラフィーにより6画分を得ること;およ
び vi) DEAE−セファデックスA-50クロマトグラフィーにより多糖類を精製す
ること; により精製された造血性の、骨髄保護の、抗腫瘍免疫細胞発生のおよび放射線増
感の活性を有する多糖類組成物を提供することである。
、620,000〜780,000、105,000〜130,000、23,000〜27,000、5,000〜6,000ダルト
ンであり、11.4〜13.4:3.6〜4.2:4.5〜5.1:0.7〜0.9:40.1〜48.1:31.0〜37
.0の比で存在する6種類の多糖類であって、部分的にα(1→3)連結した分岐
とともにα(1→6)連結のD−グルコピラノース単位を含む多糖類を提供する
ことにある。
パク質を含む多糖類を提供することにある。 本発明の更なる目的は、造血性の、骨髄保護性の、抗腫瘍免疫細胞発生の、お
よび放射線増感の活性を増強する多糖類を有する製剤用組成物を与えることであ
る。
ある。 1重量部のチョウセンニンジンを3重量部のメタノールで抽出した。抽出後、
残渣を得て暗所で乾燥した。次いでその残渣から4重量部の蒸留水を使用して4
℃、24時間で3回、抽出して水可溶性画分を得て凍結乾燥した。得られた水可溶
性画分は、少量の蒸留水に溶解し、次に40%エタノールにより沈殿させて、不
溶画分を得た。次いでセルロース膜を使用して蒸留水に対して透析することによ
り多糖類画分を得て凍結乾燥した。結局、セファクリルS-500ゲルクロマトグラ
フィーにより6画分の多糖類を得て、DEAE−セファデックスA-50クロマトグ
ラフィーにより多糖類を精製した(図1〜3)。 1)本発明に係る多糖類の炭水化物含量の定量 本発明の多糖類の総炭水化物は、D−グルコースを標準としてフェノール硫酸
法により定量した。多糖類を蒸留水に0.1mg/mlの濃度で溶解した。次いで、5
%フェノール溶液30μlおよび硫酸0.2mlの試薬を、20μlの多糖類溶液に加えて
撹拌し、60℃で20分間反応させた。490nmで吸光度を測定し、多糖類の炭水化物
含量は、グルコース標準に対比して98.5%である。 2)本発明に係る多糖類のタンパク質含量の定量 本発明の多糖類に含まれる総タンパク質は、バイオラッド社(Bio-Rad, Co)
のタンパク質アッセイキットを使用して製造業者の指示に従い、ブラッドフォー
ド(Bradford)法により定量した。多糖類のタンパク質含量は、ウシ血清アルブ
ミンを標準に対比して1.0%よりも少なかった。 3)薄層クロマトグラフィーによる本発明に係る多糖類の糖成分の同定 本発明の多糖類20mgを1M硫酸2mlとともに100℃で4時間反応させ、水酸化バ
リウムで中和した。本発明の多糖類は、n-プロパノールおよび水(85:15,v/v)
の混合溶媒系を使用し、硫酸で検出する薄層クロマトグラフィーによって主にグ
ルコースで構成されていた。図4は、多糖類がグルコースを含んでいたことを示
す。 4)本発明に係る多糖類の成分を調べるため、ガスクロマトグラフィーにより糖
分析の定量をおこなった。
分間反応させた。多糖類溶液にメチルスルフィニルカルバニオン(0.5ml)を加
え、25℃で1.5時間反応させた。反応混合液は水で透析しクロロホルムで抽出し
、かかるメチル化は、水酸基のIR吸収バンドがなくなるまで反復した。メチル
化された多糖類は、最初90%蟻酸(0.5ml)で100℃で8時間、次いで2Mトリフル
オロ酢酸(0.5ml)で3時間100℃で、加水分解した。水素化ホウ素ナトリウムで
還元後、アルディトール (alditols)は、酢酸-ピリジン(1:1,v/v)0.2mlとともに
100℃で2時間加熱することによりアセチル化した。生成物は、GC-マスにかけ
、このGC−マスはHP−5毛細管カラムを使用し280℃の条件下で行った。イ
ンジェクターの温度条件は280℃であり、炎イオン化検出器の温度は300℃であっ
た。これらの結果に基づき、該多糖類は、α(1→6)連結のD−グルコピラノ
ース単位からなり、3位を通じて、10:1の比で部分的に連結した分岐を持つ(表
1)。
0Sで行った。移動層は、1.5 ml/minの流速で0.1M炭酸ナトリウム溶液であり、
糖は、屈折率検出器で追跡した。分子量は、アマーシャム・ファーマシア・バイ
オテック社(Amersham Pharmacia Biotech.)から購入したデキストランT20
00(分子量2,000,000ダルトン)、T500(分子量500,000ダルトン)、T7
0(分子量70,000ダルトン)、T40(分子量40,000ダルトン)、T10(分子
量10,000ダルトン)といった標準多糖類との溶出時間および面積の比較により決
定した。表2は、本発明の多糖類が、11.4〜13.4:3.6〜4.2:4.5〜5.1:0.7〜0
.9:40.1〜48.1:31.0〜37.0の比で存在する分子量が、1.8〜2.2×106、1.35〜1
.65×106、6.2〜7.8×105、1.05〜1.3×105、2.3〜2.7×104、5.0〜6.0×103ダ
ルトンからなることを示す。
用 本発明に係る多糖類のIRスペクトルを、KBrを使いフーリエ変換赤外分光
器、Bomen DA8.12, Hartman and Braun, Co.,カナダ国 により測定した。IRス
ペクトル(図5)は、ヒドロキシル基(-OH)を示す3400cm-1の幅広い吸収;
エステル基(C-O)を示す1000〜1100 cm-1の吸収バンドおよび炭化水素を示す
2800〜2900 cm-1の吸収バンドを表している。 7)本発明の多糖類の構造解明のためのNMR分光法の適用 本発明の多糖類のNMRスペクトルが、重水溶媒について500MHzで核磁気
共鳴分光法、Bruker AMX 500,ドイツ国により得られた。プロトン核磁気共鳴(1 H-NMR)スペクトルは、ヒドロキシル化されたメチンおよびメチレンプロト
ンに基づくδ3.5〜4.2、アノマーの水素プロトンシグナルに基づくδ4.76(二重
線、J=2.6Hz)δ4.98(二重線、J=3.0Hz)を示しているグルコースの典型的な
スペクトルを示した(図6)。相互作用の比は10:1であった。これらの結果は、
D−グルコース単位がα-連結していることを示唆した。13C-NMRスペクトル
(図7)は、6個の主要炭素シグナル(δ62.6, 66.0, 77.8, 78.9, 82.8および1
06.7)ならびに12個の小さい炭素シグナル(δ63.0, 64.8, 63.6, 65.1, 72.3,
76.9, 77.3, 79.2, 82.1, 83.6, 83.8, 106.1, 106.2および106.7)を示した。
これらのシグナルのなかで、C-6炭素シグナルは、δ62.6, 64.8 および65.1で
吸収し、C-3炭素シグナルはδ82.9, 83.6および83.8で吸収した。C-1炭素シグ
ナルは、δ106.7, 106.1および106.2で現われた。本発明に係る多糖類のこれら
のスペクトル性質は、α-D-グルコース単位が1、3および6位で連結している
ことを示した。この結果は、この多糖類が主要な骨格および小さい分岐から構成
されていることを示唆した。
チさせた。プロトンとプロトンとの相関は、1H-1H-COSY実験により決定し
た(図8)。δ3.89でのプロトンシグナルはδ3.56とスピンカップリングしてお
り、δ4.10はδ4.19とスピンカップリングしており、δ3.67はδ3.79およびδ4.
10とスピンカップリングしており、δ3.69はδ3.79とスピンカップリングしてい
る。したがって、本多糖類は、α(1→6)グルコピラノース連結を有すること
が同定された。長域C-Hカップリングは、図9に示すように異核多重結合コヒ
ーレンス(HMBC)実験により観測された。δ66.0での炭素シグナルはδ4.10
のメチンプロトンと相関しており、δ82.8の炭素シグナルはδ3.56および4.10の
プロトンと相関し、δ71.8での炭素シグナルはδ4.19のプロトンと相関し、δ78
.9での炭素シグナルはδ3.79および4.10のプロトンと相関し、δ62.6での炭素シ
グナルはδ4.19のプロトンと相関し、δ106.7での炭素シグナルはδ3.79のプロ
トンとそれぞれ相関していた。これらの結果から、α(1→6)グルコピラノー
ス連結が同定された。
→6)連結D−グルコピラノース単位であると同定され、3位を通じて部分的に
連結した分岐を10:1の比率で有する(図2)。 チョウセンニンジンから単離された多糖類は、様々な薬剤に使用することがで
き、たとえば造血細胞の発育を促進する薬剤、骨髄細胞を保護する薬剤、放射線
−化学治療法により誘発された造血細胞の抑圧を阻害する薬剤、抗腫瘍免疫治療
剤、がん予防剤および放射線治療の治療効果を高める薬剤などである。
施例は本発明の説明を意図したものであり、いかなる形でも本発明の範囲を限定
するものではないことは理解されねばならない。
ge-colony forming unit)の発生 骨髄細胞(1×105/皿)を、0.3%の寒天、20%の馬血清および10%の組換GM-CSF
を加えたIscove's変法ダルベッコ培地(IMDM, Iscove's modified Dulbecco's me
dium)が入っている35mmの組織培養皿(2mmのグリッドを有する、Nalge Nunc. In
ternational, Corning, NY, USA)にプレートした(植え付けた)。本発明の多
糖類を、濃度に従って処置し、37℃、空気中5%のCO2中で、7日間培養物を維持し
た。50細胞より多いコロニーを評価した。表3は、GM-CFUの数が、コントロール
における40.67から、チョウセンニンジンの多糖類を50μg/mlの割合で用いて培
養されたものでは、64.67コロニーにまで増大されたことを示している。
線量率で、60Co γ−照射にさらした。本発明の多糖類を、リン酸バッファー溶
液(PBS, pH 7.4)に溶かし、0.45μmのミリポア(Millipore)膜(Corning, NY
)を用いてろ過し、マウスに投与するまで、4℃で保管した。適当な濃度の多糖
類を0.2ml容積で、腹膜内注射により正常なマウスに投与した。コントロールの
動物は、同時に、0.2mlのPBSを受けた。ヘパリン化キャピラリーチューブ(Chas
e instruments corp., Norcross, GA)を用いてマウスの眼瞼から血液を得た。
自動血球(blood cell)分析装置、cell-DYN 4000を用いて、血球分析を行った
。
れの細胞の数を、トリパンブルー排除法(trypan blue exclusion method)によ
り評価した。 PBSのみを投与した、照射されたコントロールマウス中の脾臓細胞および骨髄
細胞の数は、それぞれ、非照射の正常マウスの10%未満、および62%未満であっ
た。これらの値は、照射の24時間前に、多糖類を100mg/kg注射したマウス由来の
脾臓細胞充実性においては1.8倍、骨髄細胞充実性においては1.3倍増加した。図
10は、この結果を示す。
FU)の早期回復 本発明の多糖類をPBS中に溶かし、照射の24時間前に、腹膜内注射により100mg
/kgまたは200mg/kgで投与した。その後、マウスを4.5 Gy致死下の線量で照射し
た。GM-CFUの数を、照射後5日目に測定した。
非照射の正常値の約17%であったことを示しており、他方、照射前に多糖類を投
与したグループでは、注目されたGM-CFUの増加(エンハンスメント)が正常のも
のの63〜80%にまでになったことを示している。そのことは、多糖類を投与され
たグループは、コントロールのグループと比較して、3.7〜4.7倍早く回復される
ことを示している。
03/μLに減少した。血小板の数は、585.0±39.0から354.5±26.0×103/μLに減
少し、好中球およびリンパ球の数もまた有意に減少した。表5に見られるように
、多糖類処置マウスにおける造血の回復は、照射コントロールグループのものよ
りも2倍早く、特に好中球の数に対するものが早かった。
目のマウス(5匹のマウス/各グループ)から、骨髄細胞を回収した。受容体マウ
ス(10匹のマウス/各グループ)は、9Gyの致命的照射線量を受けた。骨髄細胞
(105)を受容体マウスの尾の静脈に静脈(intraveineously)注射した。脾臓中
のコロニーの数を、Bouin's溶液で固定させた後8日後に顕微鏡により数えた。
で多糖類を用いて処置したマウスでは、17.47±2.33 CFU-Sを生じた。表6は、こ
の結果を示す。
の早期回復 250mg/kgのシクロホスファミドの投与後24時間後にて、50mg/kgの多糖類を投
与した。骨髄および脾臓細胞を9日目のマウスから回収し、それぞれの細胞の生
存能力をトリパンブルー排除法により評価した。
ベルの76%だけ減少したが、統計的には有意ではなかった。シクロホスファミド
と一緒に多糖類が投与されたグループでは、骨髄細胞の数には有意な変化はなか
った。 他方、脾臓の細胞充実性では、シクロホスファミドの処置に対してより感受性
であった。シクロホスファミドを併用して多糖類(100mg/kg)が投与されたマウ
スでは、脾臓細胞の数が、正常値の68%を示すシクロホスファミド処置されたコ
ントロールマウスに比べ、2.1倍増加した。
40%まで有意に減少したが、他方で、シクロホスファミドを併用して多糖類を投
与したマウスのGM-CFUの数は、シクロホスファミド処置コントロールマウスより
も1.94倍増加した。表7にこの結果を示す。
,100,200mg/kg投与した。4時間[51Cr]放出アッセイを用いてナチュラルキラー
細胞の発生を決定した。すなわち、多糖類投与後24時間にて脾臓細胞(1.5×106 細胞/ml)を準備し、[51Cr]標識標的細胞、YAC-1を用いて(エフェクター細胞
:標的細胞=100:1)、96 well-U-bottomマイクロプレート中で4時間培養した。
このプレートを採取し、上澄み液に放出された放射能を、γ−カウンター(Beck
mann Inst., Palo Alto., CA, USA)を用いて決定した。特定の放出の割合は、
次のように計算された: 特定の放出の%=(ER-SR)/(MR-SR)×100 (式中、ERは実験グループからの平均カウントであり、SRは単独で培地中でイン
キュベートされた標的細胞からの平均カウントであり、MRは0.5% triton X-100
で処置した標的細胞からの平均カウントである)。100mg/kgで多糖類処置された
グループは、YAC-1腫瘍細胞に対し42.4%の細胞毒性を示し、これは、コントロー
ルの12.1%より、3.5倍高い。表8は、この結果を示す。
lle, MD)を、ペニシリン、ストレプトマイシンおよび10%の牛胎児血清(FCS)
を含むダルベッコ変法イーグル培地(DMEM, Dulbecco's modified Eagles mediu
m)中で培養した。MOPC 315細胞を1×106で、Balb/cマウスに皮下(s.c.)注射し
た。3日後に、多糖類を50,10,2mg/kgの濃度で一日おきに4回、マウスに腹膜内注
射により投与することにより、マウスに投与した。14日後、脾臓細胞を採取し、
CTL活性を51Cr標識標的細胞に対して評価した。種々の数のエフェクター細胞を3
倍量で104の51Cr標識MOPC315腫瘍細胞とともに混合し、96-well U-bottom組織培
養皿で培養した。4時間後、プレートを400gで5分間遠心分離し、0.1mlの上澄み
液を回収し、ガンマカウンターでカウントした。2,10,50mg/kgで多糖類を投与し
たグループは、それぞれ、MOPC 315細胞に対し、18.6, 22.4, 17.8%の細胞毒性
を示した。表9は、この結果を示す。
験 C3H/HeNマウスの腹膜のマクロファージを、単離して、37℃、5% CO2インキュ
ベーターで24時間、多糖類を入れたまたは入れていない96well-U-Bottomマイク
ロプレートに2×105細胞/ウェルを接種した。腹膜のマクロファージを、PBSで洗
浄し、多糖類を除き、2μCi/ウェルの3H-チミジンの存在下、1×104細胞/ウェル
でYAC-1細胞と共にインキュベートした。24時間後、細胞を自動多重ウェル採取
機(automatic multiwell harvester)を用いて採取し、標的細胞に取り込まれ
た放射能の量を液体シンチレーションカウンター中でカウントした。10, 50, 10
0μg/mlの多糖類を用いて培養した腹膜のマクロファージは、YAC-1がん細胞の成
長をそれぞれ52.6, 69.2, 59.8%阻害した。表10は、その結果を示す。
10, 2, 0.5mg/kgの多糖類およびPBSを、腫瘍の接種後3日目から1日おきに8回腹
膜内注射した。図11は、10, 2, 0.5mg/kgの多糖類を投与したマウスでは、30日
目のコントロールマウスと比較して、腫瘍の大きさが22%、46%、16%減少したこ
とを示している。 5) がん予防効果に関する試験 Balb/cマウスを4つのグループに分けた。それぞれのグループは50匹のマウス
を含んだ。1% ゼラチン水溶液中の0.5mgのベンゾ[α]ピレンを、誕生後24時間
以内に肩甲骨領域に皮下注射し、0.5, 2, 10mg/mlの割合で飲み水に溶かした多
糖類を、離乳後9週間無制限に与えた。マウスを殺し、肺を取り除いた後、Bouin
's溶液で固定した。肺中の小結節の数を顕微鏡下で数えた。表11に見られるよ
うに、BP単独グループ中の肺腫瘍の発生率は62%であり、それは、多糖類を用い
た処置によってそれぞれ、31%、23%、および45%まで有意に減少した。
、50μg/ml、200μg/ml)を入れた6ウェルプレートに接種し、1、3、6、24時間
インキュベートした。インキュベーション後、細胞を洗浄し、全RNAを単離した
。全RNAの1μgを37℃で60分間逆転写した。逆転写酵素を95℃で5分間不活化し、
2.5UのTaqポリメラーゼ、10μMの各dNTPs、40pmolのサイトカインプライマーお
よび1.5mMの塩化マグネシウム条件下で、cDNAをポリメラーゼ連鎖反応(PCR)に
より増幅した。PCR生成物をエチジウムブロミドで染色した2%アガロースゲル上
で電気泳動し、DNAサイズマーカー、λDNA-BstEII Digestと比較した。それぞれ
のサイトカインmRNA発現を、β−アクチンと比較するMCIDソフトウェアプログラ
ムを有するイメージアナライザーを使用して定量した。Th1細胞由来のIL-2、IFN
γ、IL-12 mRNA;Th2細胞由来のIL-4、IL-5、IL-10およびマクロファージ由来の
TNFα、GM-CSF、IL-1βの発現が誘導された。図12は、この結果を示している。
成物およびLine 1細胞系中の多糖類の放射線感受性効果を評価した。腫瘍細胞培
養上澄み液中の、NO形成の安定な最終生成物である、NO2 -の集積を、NO生成物の
相対測定として利用した。細胞を96ウェルプレート上に、5×104細胞/ウェルの
割合で、多糖類(100μg/ml)またはIFN-γ(50U/ml)とともに接種した。24時
間のインキュベーション後、100μlの細胞のない上澄み液を100μlのGriess試薬
(H2O中の0.1%ナフチルエチレンジアミンニ塩酸塩:5%H3PO4中の1%スルファニ
ルアミド=1:1)とともに室温で10分間インキュベートし、550nmにおける吸
収を、マイクロプレートリーダーを用いて測定した。NO2 -の濃度を、それぞれの
実験で発生した亜硝酸ナトリウム標準の最小二乗線形回帰解析により決定した。
図13に示したように、多糖類(100μg/ml)で処置した細胞は、21.6μMのNO2 -を
生成し、またIFNγでは、16.7μMのNO2 -を生成した。細胞を、IFNγ(50U/ml)
を併用した多糖類(100μg/ml)により処置したときは、相乗作用的効果があっ
た。 2) 放射線感受性効果の評価 対数期発育におけるLine 1細胞を採取し、多糖類、IFN-γまたはIFN-γを併用
した多糖類を入れた6mm2の培養皿に16時間接種し、照射した。皿あたりの細胞数
を処理したところ、各条件で、50-200コロニーが生き残った。7日のインキュベ
ーションの後、コロニーを無水メタノール中の1%メチレンブルーで染色し、カウ
ントした。>50細胞を含むコロニーを評価した。増大割合(ER)は、コントロー
ル条件についての放射線量を1%生存フラクションレベルで種々の試薬処置された
条件についての放射線量で割ることにより算出した。図14は、多糖類(100μg/m
l)およびIFN-γ(50U/ml)を用いて処置されたLine 1細胞に関する放射線生存
曲線を示している。多糖類に関するERsは、1.28であり、IFN-γに関しては1.14
であった。多糖類とIFN-γとの併用効果のERは、1.66であった。 3) インビボにおける放射線感受性効果に関する試験 インビボにおける多糖類の放射線感受性効果を調査するために、Line 1細胞を
Balb/cメスのマウスに移植した。腫瘍が、平均容積1000mm3になると同時に、処
置を開始した。腫瘍体積は、カリパスを用いた直接計測により決定し、式(長さ
×幅×厚さ/2)により計算し、平均容積±S.E.として報告した。マウスにPBS
または多糖類(200mg/kg)を、一日おきに3回腹膜内注射した。処置後、マウス
を線量率65.8cGy/分で20Gy放射線にさらした。多糖類の投与および放射線を組合
わせた場合、腫瘍は、同じ時点では、実際にコントロールマウスの45%だけ退行
した(図15)。
の多糖類を腹膜内注射した。30日の期間の間に生じた死亡数を計測した。表12は
、この結果を示している。
処方は、種々の方法、たとえば、経口または非経口投薬型の、タブレット剤、分
散剤、顆粒剤、カプセル剤、溶液剤または注射剤に用いることができる。 多糖類の投薬量は、患者の状態、体重、年齢および性別に従って変えることが
できる。一般に、100〜1,000mg/日/60kgが好ましい。
。
糖類、6種の単離工程を示す。
護効果を示す。
果を示す。
効果を示す。
を示す。
Claims (4)
- 【請求項1】 チョウセンニンジン(Panax ginseng)の根から抽出し、下記の工程: i) 1重量部のチョウセンニンジン根を2〜4重量部のメタノールで抽出するこ
とにより残渣を得ること; ii) 工程i)の残渣から3〜5重量部の蒸留水を使用して水可溶性画分を抽出し
、得ること; iii) 工程ii)で得られた水可溶性画分を凍結乾燥すること; iv) 工程iii)での凍結乾燥画分から40%エタノールに対し不溶性画分を得て
から透析膜を使用して内画分を得ること; v) セファクリルS-500ゲルクロマトグラフィーにより6画分を得ること;およ
び vi) DEAE−セファデックスA-50クロマトグラフィーにより多糖類を精製す
ること; により調製される多糖類組成物であり、該組成物が造血性の、骨髄保護の、抗腫
瘍免疫細胞発生の、および放射線感作の活性を有する多糖類組成物。 - 【請求項2】 6種類の多糖類であって、それらの分子量が1,800,000〜2,200,000、1,350,00
0〜1,650,000、620,000〜780,000、105,000〜130,000、23,000〜27,000、5,000
〜6,000ダルトンであり、11.4〜13.4:3.6〜4.2:4.5〜5.1:0.7〜0.9:40.1〜4
8.1:31.0〜37.0の比で存在する多糖類が、部分的にα(1→3)連結した分岐
とともにα(1→6)連結のD−グルコピラノース単位を含むことを特徴とする
、請求項1に記載の多糖類組成物。 - 【請求項3】 前記多糖類が、定量分析により98.5%よりも多い炭水化物ならびに1.0%未満の
量のタンパク質を含むことを特徴とする請求項1に記載の多糖類組成物。 - 【請求項4】 造血剤、骨髄保護剤、危険を誘導する放射線および/または抗がん剤の阻害剤
、抗腫瘍免疫調節剤、化学予防剤および放射線増感剤用の請求項1の多糖類を有
効量含む製剤用組成物。
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