JP2001518801A

JP2001518801A - デンドロアスピン・スカフォルドに基づく二重あるいは多重機能性分子

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Publication number: JP2001518801A
Application number: JP54521998A
Authority: JP
Inventors: ル，シンジー; スカリー，マイケル・フィンバー; カカー，ビジャイ・ビール; オーシ，カルウォント・シン
Original assignee: Trigen Ltd
Current assignee: Trigen Ltd
Priority date: 1997-03-20
Filing date: 1998-03-20
Publication date: 2001-10-16
Also published as: NZ337639A; AU6511798A; AU735427B2; WO1998042834A1; GB9705787D0; US6451976B1; KR20010005529A; EP0972034A1; CN1251133A; BR9808376A; CA2284095A1

Abstract

(57)【要約】ポリペプチド神経毒同族体であるデンドロアスピンが組換えDNA技法、特に「ループ移植」により修飾されて、修飾ポリペプチドが提供される。修飾ポリペプチドは、デンドロアスピンの活性、例えばフィブリノゲンに対する血小板接着を保持し、さらにデンドロアスピンの本来の活性にない１以上の生物的または生化学的活性、例えば血小板由来増殖因子（PDGF）活性やヒルジン活性を有するするように、構築される。

Description

【発明の詳細な説明】デンドロアスピン・スカフォルドに基づく二重あるいは多重機能性分子本発明は、抗凝固および抗血小板などの活性を有するデンドロアスピン由来のキメラ分子に関する。本発明はまた、このようなキメラ性デンドロアスピン分子をコードする核酸分子、この核酸を含むクローニング・発現ベクターおよび発現ベクターで形質転換された宿主細胞に関し、組換えキメラ多重機能性デンドロアスピンを提供する。更に本発明は、血栓形成や血小板凝集に関連する疾患の予防と治療に有用な医薬組成物に関する。更に本発明はまた、キメラ性デンドロアスピン誘導体を設計または産生するのに、デンドロアスピン・スカフォルドを使用することに関する。この誘導体は、血小板のインテグリン結合活性に対する阻害作用を有し、さらに抗凝固や抗血栓などのいくつかの機能を有するものである。血液凝固の役割は、凝血血栓の硬着化および安定化のために不溶性フィブリン・マトリックスを提供することである。架橋フィブリン血餅の形成は、ある範囲の血漿タンパク質が関与する一連の生化学的相互作用から生じる。心筋梗塞、脳卒中、肺塞栓症、深部静脈血栓および末梢動脈閉塞症などの急性血管疾患は、血餅による血管の部分的または全体的な閉塞により引き起こされる。血管内の血餅の形成は、血栓症と呼ばれ、血小板凝集が原因である。血管損傷（例えば外科的処置の際に起こり得る）の場合、血小板と損傷血管の内皮表面および他の血小板との相互作用が、血餅または血栓の発生過程における主要因である。血餅形成を防ぐ様々な薬剤が現在使用されており、アスピリン、ジピリダモールおよびフィロピジンなどがある。これらの薬剤は、血小板の活性化および凝集を一般的に阻害し、または血液凝固の進行を遅らせるが、長期出血という副作用を起す恐れがある。さらに、このような薬剤の効果は、形成または提供されてくる新しい血小板によりたやすく逆転されることがある。血小板凝集は、フィブリノーゲンおよび他の血清タンパク質が血小板血漿細胞膜上において糖タンパク質受容体IIｂ/IIIａ複合体に結合することによって生じる。ＧＰ IIｂ/IIIａは、インテグリンとして知られている細胞接着受容体の大きなファミリーの一員である。インテグリンの多くは、Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ａｓｐ（ＲＧＤ）トリペプチド認識配列を認識することが分かっている。ヘパリンおよび低分子量ヘパリン類は、トロンビン活性が血栓の増大または拡張をもたらす症状、静脈血栓塞栓症などを処置するのに広く使用されてきた。ヘパリンは、効果的ではあるが、溢血や血小板減少症を含む多くの望ましくない副作用をもたらす。従って、より特異的で毒性の低い抗凝固剤が求められている。トロンビン直接阻害剤は利用可能であり、この例にはヒルジン、ヒルゲンおよびヒルログ（後の２つは合成ヒルジン誘導体である）、ＰＰＡＣＫ（合成トリペプチド）およびアルガトロバン（アルギニン誘導体）がある。これらの阻害剤の作用については、Lefkovits J and Topol E J(1994)，Circulation 90:1522-153 6で論じられている。理論上、トロンビン直接阻害剤による出血の危険性は、その単一標的特異性、血小板直接効果の不存在および短い半減期からして、他の抗血栓剤よりも低いが、出血が最も面倒な副作用としてやはり残存する。一連の他のトロンビン阻害剤（Lefkovits J and Topol E J（前述）の表１に記載）が開発されてきたが、臨床使用には毒性が強すぎることが判明した。アテローム性動脈硬化によって引き起こされる動脈の局部的狭小化は、バルーン血管形成術により外科手術で通常的に治療され得る症状である。該方法は侵襲的であって、動脈壁になんらかの組織損傷を与え、血栓を形成することがある。動脈壁におけるフィブロネクチンなどの細胞外タンパク質は、動脈中の血液にさらされる。血小板は、インテグリン受容体によってフィブロネクチンのＲＧＤモチーフと結合し、次に血小板凝集を引き起こし、凝血反応のカスケードを開始する。損傷部位で血小板凝集を特に阻害し、またこの部位で凝血を阻害する薬剤が求められている。この薬剤は、非毒性であり、出血が全身化する危険性などの望ましくない副作用がないものである。インテグリンは、細胞が互いにまたは細胞外マトリックスと接着するのを媒介する細胞表面受容体のファミリーである（Kieffer N & Philips D R（1990）Ann u Rev Cell Biol 6:329-357;Hynes R 0（1992）Cell 69:11-25;McEver R P（199 2）Curr Opin Cell Biol 4:840-849;Smyth S S et al（1993）Blood 81: 2827-2843;Giancotti F G and Mainiero F（1994）Biochim Biophys Acta 1198: 47-64）。インテグリンは、非共有結合の形で連結しているαおよびβ透過膜サブユニットから構成される。１６の異なるαおよび８の異なるβサブユニットが存在し、ヘテロ二量体化して、約２０種の異なる受容体を産生する（Clark E A & Brugge J S（1995）Science 268:233-239）。インテグリンの中で、血小板細胞膜インテグリンα_IIbβ₃は、最も特徴的なもののひとつである。細胞活性化の際、α_IIbβ₃インテグリンは、フィブリノーゲン(Nachman R L and Nachman L L K（1992）J Clin Invest 69:263-269)、フィブロネクチン（Gardner J M and H ynes R 0（1985）Cell 42:439-448）、von Willebrand因子（Ruggeri Z et al（ 1983）J Clin Invest 72:1-12）、ビトロネクチン（Pytela R M et al（1985）P roc Natl Acad Sci USA 82:5766-5770）およびトロンボスポンジン（Karczewski J et al（1989）J Biol Chem 264:21322-21326）に存在するＡｒｇ-Ｇｌｙ-Ａｓｐ(ＲＧＤ)トリペプチド配列を主に通じて（Pierschbacher M D and Ruoslaht i E（1984）前述；Plow E F et al（1987）Blood 70:110-115;Pytela R et al（ 1986）Science 231:1559-1562）、いくつかの糖タンパク質を結合する。これらの糖タンパク質リガンドとそのインテグリン受容体の相互作用の性質は、複合的であることがわかっており、受容体（Sims P J et al（1991）J Biol Chem 266: 7345-7352）およびリガンド(Ugarova T et al（1995）Thromb Haemostasis 74:2 53-257)の両方において、構造的な変化が起こる。最近、様々なヘビ毒からの多くのタンパク質が、血小板凝集およびインテグリン依存性細胞接着の強力な阻害剤として同定された。いわゆる“ジスインテグリン（disintegrin）”ファミリーに属するこれらのタンパク質の大半は、高レベルの配列相同性を共有し、小さい分子であり（４−８kDa）、システインが豊富であり、配列ＲＧＤ（Gould R J et al（1990）Proc Soc Exp Biol Med 195:168 -171）またはＫＧＤ(Scarborough R M et al（1991）J Biol Chem 266:9359-936 2)を含む。ジスインテグリンファミリー以外にも、類似の阻害能力と高度のジスルフィド結合を有し、サイズの小さい多くの非ジスインテグリンＲＧＤタンパク質が、メガネヘビ科のヘビ毒（McDowell R S et al（1992） Biochemistry 31:4766-4772;Williams J A et al（1992）Biochem Soc Trans 21 :73S）およびヒルホモジネート（Knapp A et al（1992）J Biol Chem 267:24230 -24234）の両方から単離された。これらのタンパク質の全ては、単純な直鎖状ＲＧＤペプチドよりも約１０００倍強力な、糖タンパク質リガンドとインテグリン受容体の相互作用の阻害剤である。ＲＧＤモチーフの光学的に好ましい構造に起因する特徴が、タンパク質スカフォルド内に保持されている。キストリン（Adle r M et al（1991）Science 253:445-448;Adler M and Wagner G（1992）Biochem istry 31:1031-1039;Adler M et al（1993）Biochemistry 32:282-289）、フラボリジン（Senn H and Klaus W（1993）J Mol Biol 234:907-925）、エチスタチン（Saudek V et al（1991）Biochemistry 39.:7369-7372;Saudek V et al（199 1）Eur J Biochem 202:329-328;Cooke R M et al（1991）Eur J Biochem 202：3 23-328;Cooke R M et al（1992）Protein Eng 5:473-477）、アルボラビリン（J aseja M et al（1993）Eur J Biochem 218:853-860）、デコルシン（Krezel A M et al（1994）Science 264:1944-1947）およびデンドロアスピン（Jaseja M et al（1994）Eur J Biochem 226:861-868;Sutcliffe M J et al（1994）Nature S truct Biol 1:802-807）を含むいくつかの阻害剤のＮＭＲ構造が報告されており、これまでに明らかな唯一共通の構造的特徴は、溶媒にさらされたループの末端におけるＲＧＤモチーフの存在位置であり、これは阻害作用に最も重要な特徴である。最近の研究で、トリペプチドＲＧＤ周囲のアミノ酸の一つの役割が示唆された。ヘビ毒タンパク質が示すリガンド結合特異性を調節する役割である。 Scarborough R M et al（J Biol Chem 268:1058-1065(1993))は、一連のジスインテグリンについて試験し、ＲＧＤＷを含むジスインテグリンは、フィブリノーゲンと精製α_IIbβ₃の相互作用を阻害するのに非常に効果的であるが、ビトロネクチンおよびフィブロネクチンと精製α_Vβ₃およびα₅β₁夫々との相互作用を阻害するのには効果的でなく、一方、配列ＲＧＤＮＰを含むジスインテグリンについては、その逆であることを観察した。アミノ酸配列不一致の他の領域もまた一因となり得る（Scarborough et al(1993)、前述）。ＲＧＤ配列を含む短鎖神経毒類似体であるデンドロアスピンおよびジスインテグリン・キストリンは、全体的な配列相同性を少ししか示さないが、ＲＧＤ配列（ＰＲＧＤＭＰ）の両側に類似のアミノ酸を有する。両者は、フィブリノーゲンへの血小板接着に対して強力な阻害剤であるが、血小板と固定フィブロネクチンとの結合に対しては不充分なアンタゴニストである(Lu X et al（1994）Biochem J 304:929-936)。反対に、エレガンチンは、キストリンに対して６５％の配列相同性を有するが、ＲＧＤ(ＡＲＧＤＮＰ)周囲に著しく異なるアミノ酸を有し、フィブリノーゲンとは対照的に、フィブロネクチンへの血小板接着を優先的に阻害し、α_IIbβ₃複合体上のアロステリック効果の著しい部位に結合する。 Smith J W et al(Journal of Biological Chemistry 270:30486-30490(1995)) は、タンパク質“ループ移植”実験を行い、血小板インテグリンα_IIbβ₃を結合する組織型プラスミノーゲン・アクチベータの変異体を構築した。ｔ−ｐＡの上皮細胞成長因子（ＥＧＦ）ドメインの表面ループにおけるアミノ酸を、接着インテグリン受容体α_IIbβ₃に反応的なモノクローナル抗体の一つの相補性決定領域（ＣＤＲ）を形成するＣＤＲからの残基で置換した。生じたｔ−ｐＡ（ループ移植ｔ−ｐＡ）の変異体は、ナノモル親和力でα_IIbβ₃と結合し、合成および自然の基質の両方に対して完全な活性を有するものであった。ループ移植の効果と適用可能性は概して予想が難しく、確実性がない。本発明者らは、デンドロアスピン・スカフォルドが修飾されることを発見した。デンドロアスピン（ＲＧＤモチーフを含む）を修飾し、追加の機能的アミノ酸配列、例えばアゴニスト、アンタゴニストあるいは因子阻害物質の活性部分すなわちモチーフを凝血カスケードに組み込むと、得られた分子は抗凝固剤として有用であり、依存の抗凝固剤に見られる欠点がない。第１の態様において、本発明は、ＲＧＤモチーフを含有してデンドロアスピン活性を付与する元のアミノ酸配列と、デンドロアスピン活性以外の活性を付与する追加のアミノ酸配列とを含むハイブリド・ポリペプチドを提供する。本発明はまた、デンドロアスピン・スカフォルドと、好ましくは異なる活性の追加非デンドロアスピンのアミノ酸配列とを含み、インテグリン結合活性を有するハイブリドを提供する。好都合に、本発明の分子は傷害の部位でインテグリン結合活性を有し、この活性は、インビボ投与時に分子を血小板に結合せしめ、それによって血小板の凝集を阻害するものである。さらに、非野生型デンドロアスピンのドメインは、抗血栓性作用などの二次的で選択性の追加の機能を提供して、細胞の遊走や増殖を阻害し、信号の導入を制御する。その結果、本発明の分子は、傷害部位での血栓の形成および動脈／静脈壁の肥厚などの血液凝固に対する活性において、二重あるいは多重の機能を有する。本発明のポリペプチドは、白血球動員、免疫系の活性化、組織線維症および腫瘍発生に対する活性を有し得る。本発明のポリペプチドは、少なくとも２個の追加のアミノ酸配列を含むことができ、好ましくはこの２個の該追加のアミノ酸配列は同じものである。追加のアミノ酸配列は、デンドロアスピンの少なくとも１個のアミノ酸残基によって隔てられた２個以上のアミノ酸配列部分を含むことができる。２個以上の配列部分は、互いに置き換えることができ、また天然の追加アミノ酸配列における直線順序のアミノ酸と置き換えることができる。換言すると、２個以上のアミノ酸配列部分の天然の順序は変えられるが、各部分の実際の配列は必ずしも変えられるわけでない。該追加の配列は、血小板由来増殖因子（ＰＤＧＦ）、糖タンパク質（ＧＰ）ＩＢα、ヒルジン、トロンビン、トロンボモジュリン（特に、その第５ＥＧＦ様ドメイン）、血管内皮増殖因子（ＶＥＧＦ）、トランスフォーミング増殖因子β１（ＴＧＦβ１）、塩基性繊維芽細胞増殖因子（ｂＦＧＦ）、アンギオテンシンII （ＡｎｇII）、第８因子およびフォンビルブラント因子（ｖＷＦ）から選択することができる。このようにして、本発明の分子は、多重機能が与えられて、血小板凝集のみに対する活性を越えて、例えば凝血カスケード（トロンビン活性など）や細胞内情報伝達カスケード（増殖因子など）における他の成分に対して活性となる。本発明の修飾デンドロアスピンは、追加のアミノ酸配列がインテグリン結合活性を有するように設計されて、インテグリン結合活性が増大したデンドロアスピン由来の分子を提供する。本発明のポリペプチドは、好ましくは図３に示すアミノ酸配列を有する。本発明のデンドロアスピン・スカフォルドには相同的分子も含まれる。この分子は、該追加アミノ酸配列を挿入する前で、デンドロアスピンとの相同性が約５０％、好ましくは約６５％、より好ましくは約７５％、さらにより好ましくは約８５％である。本発明のポリペプチドをコードする核酸配列は、該追加のアミノ酸配列をコードする核酸配列を別にして、デンドロアスピン核酸配列との相同性が約５０％、好ましくは約６５％、より好ましくは約７５％、さらにより好ましくは約８５％である。本発明のポリペプチドは、デンドロアスピンの５９個のアミノ酸に比して、多数あるいは少数のアミノ酸残基を含有することができる。例えば、本発明の分子は、４５−１５９、好ましくは約４９−８９、より好ましくは約５３−６９、さらにより好ましくは約５７−６１個の範囲のアミノ酸残基を含有できる。追加アミノ酸配列は、デンドロアスピン・スカフォルドの、（ａ）ループＩおよび／またはループII、（ｂ）ループＩおよび／またはループIII、（ｃ）ループIIおよび／またはループIII、（ｄ）ループＩ、ループIIおよびループIIIに好ましくは組み込まれる。ループＩはアミノ酸残基４−１６を、ループIIはアミノ酸残基２３−３６を、ループIIIはアミノ酸残基４０−５０を含有する。しかし、組み込まれる追加のアミノ酸は、ループの外側の領域、すなわち残基１−３、１７−２２および３７−３９に拡張されたり、その領域と置き換えられたりすることがあって、非ループ領域の残基が追加アミノ酸配列すなわち組み込まれる配列で増大あるいは置換される。追加アミノ酸残基は、好ましくはループＩかループIIに組み込まれる。その場合、ＲＧＤ含有ループIIIは変わることなく、デンドロアスピンのインテグリン結合機能が保持される。追加のＲＧＤモチーフは、デンドロアスピン・スカフォルド中に、好ましくはループＩまたはループII中に導入することができ、それによってデンドロアスピン活性が増加する。挿入された追加配列の好ましい位置は、デンドロアスピン・スカフォルドにおけるアミノ酸残基：４−１６、１８−２１、２３−３６、５２−５９間での部位である。各挿入追加アミノ酸配列すなわち追加アミノ酸配列部分は、アミノ酸残基の長さが好ましくは３−４０、より好ましくは３−１６、さらにより好ましくは３− １４個の範囲のアミノ酸配列である。挿入の追加アミノ酸配列の出発点は、デンドロアスピン・スカフォルドのアミノ酸残基１−５７のいずれでもよい。挿入の追加アミノ酸配列の終了点は、デンドロアスピン・スカフォルドのアミノ酸残基３−５９のいずれでもよい。２個の追加アミノ酸配列がデンドロアスピン・スカフォルドに挿入されるときは、両者間の隔たりは好ましくは１−３５個のアミノ酸、より好ましくは１−１４個のアミノ酸である。３個以上の追加アミノ酸配列が挿入されるときは、好ましくは少なくとも１個の天然デンドロアスピンのアミノ酸残基で各追加アミノ酸配列をが隔てられる。ＲＧＤ含有ループは、１個以上のアミノ酸残基の挿入、欠失あるいは置換により修飾されることがあり、好ましくは、最大で８、最小で１個のアミノ酸がデンドロアスピンのループIII内で修飾され得る。ＲＧＤループは、好ましくは表Ｉに示すアミノ酸配列を有する。ＲＧＤループ領域を修飾する利点は、インテグリン結合活性が高められて、特定の糖タンパク質リガンドに対してさらに特異的になり得ることである。また、デンドロアスピン・スカフォルドに移植された１以上の「異物」の追加アミノ酸配列がＲＧＤモチーフに対する立体作用を有すると、ＲＧＤ周辺のループIIIは立体障害を無くすように修飾することが可能であり、そうしてＲＧＤ機能が回復し、さらにＲＧＤ機能が上昇する。ループＩおよび／またはループIIは、１個以上のアミノ酸残基の挿入、欠失または置換により修飾される。適当な数のアミノ酸をデンドロアスピン・スカフォルドに挿入することができ、所望の二重または多重機能性活性が得られる。範囲１４−３６数の残基がデンドロアスピン・スカフォルドに１以上の部位で挿入されるのが好ましい。デンドロアスピン・スカフォルドに移植された「異物」の追加アミノ酸配列が他の移植ドメインまたはＲＧＤ含有ループのいずれかに対して立体障害作用を有すると、ループの修飾が必要となることがある。インサイトIIソフトウェアー（Molecular Simulation Inc）を用いたコンピューターによる分子モデル化は、本発明の「ループ移植」デンドロアスピンの構造を予測するのに使用することができる。ループ間の立体作用が機能性の喪失の原因となっているときは、デンドロアスピン分子の適当な部分を適当な方法で修飾することにより、この作用を設計除外することができる。これには、いくつかの適当なアミノ酸残基を挿入して、１以上のループ構造を伸張することも含まれる。好ましい修飾に、デンドロアスピン・スカフォルドの単数または複数のループにポリグリシンを挿入して、ループを伸張することがある。１個または多数のアミノ酸残基の反復ユニットを含む別の修飾を用いることができる。コンピューター・モデル化検討は、デンドロアスピンのループを伸張するのに必要なループ修飾の設計に行われ得る。本発明の二重または多重機能性分子の設計において、活性や安定性などの所望する生物的または生化学的特性に「ぴったりの調節」をなすことは、置換や欠失により個々の選択アミノ酸配列を変えることで達成される。選択位置での単数または複数のアミノ酸残基の挿入による修飾も本発明の「ぴったりの調節」の態様の範囲内にある。分子の特定部位でのアミノ酸配列を変えるのに有用な部位特異的変異導入法は当業者によく知られている。第２の態様において、本発明は、上記したポリペプチドをコードする核酸分子を提供する。核酸は、プロモーターに操作可能的に、また異種のタンパク質やペプチドをコードする核酸配列に所望により連結せしめることができ、それによって融合産物をコードする。プロモーターは好ましくはβ−Ｄ−イソプロピルチオガラクトピラノシド（ＩＰＴＧ）由来であり、異種のタンパク質またはペプチドはグルタチオン−Ｓ−トランスフェラーゼ（ＧＳＴ）であり得る。本発明のこの態様はまた、上記した核酸を含有するプラスミドを含む。プラスミドは好ましくはｐＧＥＸ−３Ｘである。第３の態様において、本発明は、上記のプラスミドで形質転換された宿主細胞を提供する。好ましい宿主細胞は大腸菌である。本発明はまた、上記した形質転換宿主細胞を含有する細胞培養を提供する。第４の態様において、本発明は、上記した宿主細胞を培養して上記のポリペプチドを発現し、培養基からポリペプチドを抽出し、精製することを含む該ポリペプチドの製造方法を提供する。第５の態様において、本発明は、次の工程を含む多重機能性抗凝固剤の製造方法を提供する。ａ）プロモーターに操作可能的に連結し、異種タンパク質をコードする核酸に所望により連結したデンドロアスピン・スカフォルドをコードする核酸配列を含有する発現ベクターを共発現のために構築すること。ｂ）デンドロアスピン・スカフォルドをコードするベクターの核酸配列の少なくとも一部分を、ＲＧＤモチーフは除外して、核酸残基の１以上の挿入、欠失または置換によって修飾し、発現時にデンドロアスピン・スカフォルドがデンドロアスピン活性以外の活性の追加アミノ酸配列を含むように修飾すること。ｃ）このベクターで宿主細胞を形質転換し、宿主細胞に修飾デンドロアスピン核酸配列を発現せしめること。本方法は、好ましくは次の工程をさらに含む。ｄ）宿主細胞培養物から修飾デンドロアスピンを抽出すること。ｅ）細胞培養抽出物から修飾デンドロアスピンを精製すること。この精製は選択的に、共発現の異種タンパク質からデンドロアスピンを分割する工程を含む。異種のタンパク質はＧＳＴが好ましく、精製には、ＧＳＴ精製モジュールに含有のグルタチオン・セファローズ４Ｂを用いてアフィニティークロマトグラフィーを行い、ＧＳＴから修飾デンドロアスピンの因子Ｘａによる開裂を行うのが好ましい。この結果、本発明は、上記の多重機能性抗凝固剤を製造する方法により得られる上記のポリペプチドを提供する。第６の態様において、本発明は、上記ポリペプチドの医療的有効量を含み、さらに選択的に薬学的に許容される賦形剤または担体を含む医薬組成物を提供する。本発明の種々の機能を有する多様なポリペプチドは、所望の治療ができるように薬学的に許容される形態において組み合すことができる。本発明の種々の機能を有する多様なポリペプチドは、所望の治療ができるように薬学的に許容される形態において組み合すことができる。本発明のポリペプチドは静脈注射または静脈注入用に製剤するのが好ましいが、他の投与方法、例えば皮下投与や筋肉内投与が、循環系に徐々に放出しようとするときには望ましい。また、生長ホルモンなどの投与に用いられるように、植え込み調節放出での使用のためにポリペプチドを製剤することも可能である。ある製剤においては、本発明のポリペプチドと結合した侵出血液を範囲１ｎＭ −６０μＭの濃度で含有し得る。この血液は、外科処置の間あるいはその直後に血栓形成を防がねばならないときに、輸血用に血液を迅速かつ簡便に供給できるように貯蔵することができる。第７の態様において、医薬としての使用のために上記のポリペプチドを提供する。第８の態様において、本発明は、血栓症に関連する疾患を処置するのための医薬品の製造に上記のポリペプチドを使用することを提供する。関連疾患には、固有の血栓症、心筋梗塞、網膜血管新生、内皮損傷、異制御アポトーシス、異常細胞移動、白血球動員、免疫系活性化、組織線維症、腫瘍発生などがある。本発明はまた、血栓症に関連する疾患を処置する方法を提供する。関連疾患には、具体的な血栓症、心筋梗塞、網膜血管新生、内皮損傷、異制御アポトーシス、異常細胞移動、白血球動員、免疫系活性化、組織線維症、腫瘍発生などがある。この方法は、上記したポリペプチドの医療的有効量を投与することを含む。本発明の好ましい実施態様は、下記の実施例および図に記載する。図１は、デンドロアスピン分子の基本的三次元構造を示す。Ｎは−ＮＨ末端を意味し、Ｃは−Ｃ末端を意味する。アミノ酸残基を番号付けする。図２Ａは、デンドロアスピンのヌクレオチドおよび対応アミノ酸配列を示す。個々の合成オリゴヌクレオチドを番号１−１０で表す。図２Ｂは、プラスミドｐＧＥＸ−ＤＥＧの部分的制限地図である。図３Ａは、修飾デンドロアスピンの配置を含み、挿入アミノ酸配列がデンドロアスピンのアミノ酸配列の下に記載されている。図３Ｂは、図３Ａと同様で、種々の修飾デンドロアスピンのアミノ酸配列（１文字表記）の配置である。図３Ｃは、図３Ａと同様で、本発明の修飾分子を示す。図３Ｄは、本発明の修飾分子の種々の活性を示す表である。図４は、デンドロアスピン融合タンパク質をクーロン化し、発現するのに用いられる発現プラスミドｐＧＥＸ−３Ｘを示す。図５Ａは、１２．５％ＳＤＳ−ＰＡＧＥゲルを示し、修飾デンドロアスピン遺伝子を含有する組換えプラスミドｐＧＥＸ−ＤＥＧで形質転換した細菌について、誘導細菌（レーン１）と非誘導細菌（レーン２）の全細胞溶解物を比較する。図５Ｂは、１０％ＳＤＳ−ＰＡＧＥゲルを示し、ｐＧＥＸ−ＤＥＧで形質転換した誘導細菌からの全細胞溶解物（レーン１）と該溶解物のアフィニティ精製抽出物（レーン２）を比較する。図５Ｃは、アフィニティ精製および因子Ｘａ消化ＧＳＴ修飾デンドロアスピン溶融タンパク質の２０％ＳＤＳ−ＰＡＧＥゲルを示す。レーン１はデンドロアスピン、レーン２はＧＳＴ−Ｄｅｎ、レーン３は因子Ｘａ消化ＧＳＴ−Ｄｅｎである。図６Ａは、勾配アセトニトリルで展開したＶｙｄａｃＣ１８カラムで精製した組換えデンドロアスピンの逆相ＨＰＬＣ溶出図である。４４分での組換えデンドロアスピンの保持時間を矢印で示す。図６Ｂは、図６Ａと同様の条件で行われた４４分での溶出のピーク分画の逆相ＨＰＬＣ溶出図である。図７は、ループＩに対する抗体Ｒ３８およびＲ６５と、ループＩおよびループ IIIに対する抗体Ｒ５１とを用いて、ＰＤＧＦループＩを含有するデンドロアスピンの免疫沈降を示す。ＧＳＴ変異デンドロアスピンに対応する３２ｋＤａのタンパク質が観察された。レーン１はＲ３８で、レーン２はＲ６５で、レーン３はＲ５１でプローブされたＤＥＮ−ＰＤＧＦである。図８は、ヒト線維芽細胞のＰＤＧＦ誘導増殖をＰＤＧＦ−デンドロアスピンにより阻害する実験結果を示す棒グラフである。「ペプチド１」は、ＰＤＧＦループＩの直線状アミノ酸配列に対応する。デンドロアスピンは、神経毒性を欠くメガネヘビ（Elapidae）毒液に由来する短鎖の神経毒同族体である。神経毒と異なり、この同族体は、Ａｒｇ−Ｇｌｙ− Ａｓｐ−(ＲＧＤ)モチーフを含有し、血小板凝集および血小板接着の阻害物質として機能する。その効力はクサリヘビ（Viperidae）毒液由来のジスインテグリン（disintegrin）に匹敵する。溶液中のデンドロアスピンの構造は、ＮＭＲ分光法を用いて決定されている（Sutcliffe M J et al（1994）Nature Struct Bio l 1：802-807）。その構造は、短鎖神経毒のコアに類似するコアを含むが、新しい配置のループと溶媒遭遇ＲＧＤモチーフを有する。デンドロアスピンは、神経毒スカフォルドを基とするインテグリン・アンタゴニストであって、ジスインテグリンのヒダ（fold）と異なる明確なヒダを有する。デンドロアスピンの構造は、３個のループ、すなわちループＩ、II、III（領域４−１６、２３−３６、４０−５０）が外側に向かって伸びているコア領域からなる（図１）。コアは、互いに位置的に近接し、かつ各ループを結びつける４個のジスルフィド結合を含有する。デンドロアスピンのアミノ酸配列を図２に示す。下記の実施例において、用いられる材料として次のものがある。制限酵素、Ｔ４ポリヌクレオチドキナーゼ、Ｔ４ＤＮＡリガーゼ、ＩＰＴＧ（イソプロピル−β−Ｄ−チオ−ガラクトピラノシド）およびＤＨ５α形質転換能細胞は、Life Technologies社（英国）またはPromega社（Southampton、英国）から購入した。ベント（エクソー）ＤＮＡポリメラーゼは、New England Biolab s（Hitchin、英国）により供給された。オリゴヌクレオチドは、King's College School of Medicine & Dentistry（London、英国）またはCruachem社（Glasgow 、英国）でつくられ、１５％アクリルアミド／８Ｍ尿素ゲルの変性ＰＡＧＥでさらに精製した。デオキシヌクレオチド・トリホスフェート（ｄＮＰＴ）、ジデオキシヌクレオチド・トリホスフェート（ｄｄＮＴＰ）、プラスミドｐＧＥＸ−３Ｘ、グルタチオンＳ−トランスフェラーゼ（ＧＳＴ）およびグルタチオン−セファローゼＣＬ−４Ｂと結合した融合タンパク質としてクローン遺伝子を発現するベクターは、Pharmacia Biotech社（Herts、英国）から購入した。「ジーンクリーン（geneclean）」キットおよびプラスミド・マクシ・キットは、それぞれBio 101（La Jolla CA、米国）とQiagen社（Surrey、英国）から購入した。配列決定シクナーゼ２．０は、Cambridge Bioscience（Cambridge、英国）から入手した。[³⁵S]dATP[αS]および¹²⁵Ｉ(15.3mCi/mg iodine)は、それぞれ NEN DuPont（Herts、英国）とAmersham International Plc(Amersham，Bucks、英国)から供給された。実施例１．デンドロアスピン変種をコードする発現ベクターの構築野生型デンドロアスピンをプラスミドｐＧＥＸ−３Ｘ（図２）にうまく挿入し、Lu et al.，(1996)J Biol Chem 271:289-295の方法に従い発現した。デンドロアスピンの野生型から始めて、組み替えＤＮＡ技術を用いて、デンドロアスピン遺伝子の変種を作った。長い挿入変種については、非デンドロアスピンすなわち異種のアミノ酸をコードするオリゴヌクレオチドを、適当に制限消化した野生型デンドロアスピン遺伝子に単に直接挿入し、次いで連結した。少数のアミノ酸の挿入や置換、欠失を含む修飾などの小さい変更については、Clonetech社のTrans former（商標）部位特異的変異導入キットを使用説明書に従って用いた。図２Ａは、合成デンドロアスピン（Ｄｅｎ）遺伝子のヌクレオチド配列を示す。既知のアミノ酸配列を基にして遺伝子を設計し（Williams J A et al．(1992) Biochem Soc Trans 21：73s）、大腸菌中で高度に発現さしたものから各アミノ酸のコドンを採用した（Fiers W（1982）Gene 18：199-209）。１０種の合成オリゴヌクレオチドをワクで示し、コーディング鎖の上か非コーディング鎖の下かに１から１０までの番号をそれぞれ付した。終止コドンは米印で表した。３文字表記のアミノ酸コードを用い、Ｄｅｎの計５９個のアミノ酸のついて、Ｎ末残基アルギニンの１とＣ末残基ロイシンの５９とにのみを番号を付けた。図２Bは、ｐＧＥＸ−ＤＥＧの部分的制限地図である。デンドロアスピン（Ｄｅｎ）遺伝子および関連上流領域のみを示す。図３Ａは、種々の修飾デンドロアスピンのアミノ酸配列を示す。その詳細は下記する。各事例において修飾された挿入残基は、デンドロアスピンのアミノ酸配列の下に表した。実施例２．血小板誘導生長因子（ＰＤＧＦ）ドメインを含有する修飾デンドロアスピン血小板誘導生長因子（ＰＤＧＦ）は、３０ｋＤａのポリペプチドであり、間葉細胞の主要血清マイトジェン・走化性因子である。ＰＤＧＦは、最初ヒト血小板から精製されたが、後に他の細胞でつくられることが判明した。平滑筋細胞、胎盤栄養層細胞、線維芽細胞、結合組織細胞などでつくられる。ＰＤＧＦは細胞の移動と増殖を促進することが知られており、これらは胚形成や創傷治癒などの自然過程における重要な事象である。ＰＤＧＦは、動脈硬化症、線維症、リウマチ様関節炎などの多くの病理状態に関連づけられている（Heldin C H and Westerm ark B（1990）Cell Regul 1:555-566 and Engstrom U et al（1991）J Biol Che m 267:16581-16587）。ＰＤＧＦはＡ鎖およびＢ鎖と名づけられた２つの類似する鎖からなる二量体である。図３Ａおよび３Ｃに示すように、ＰＤＧＦのＢ鎖由来のアミノ酸配列をデンドロアスピンのループIIに挿入する。デンドロアスピン内でループIIIのＲＧＤ配列の接着性は保持される。修飾デンドロアスピンについてＰＤＧＦの競合阻害を知るために、平滑筋および線維芽細胞の増殖とインテグリン・アンタゴニスト活性を調べた。図３Ｄに、図３Ｃのサンプルで得た結果を要約する。修飾デンドロアスピン分子は、ＡＤＰ誘導の血小板凝集およびＰＤＧＦ誘導の線維芽細胞増殖を阻害する。ＰＤＧＦループＩを含有するデンドロアスピン遺伝子の会合およびクローニング：ＰＤＧＦループＩ含有のデンドロアスピン遺伝子は、ＢａｍＨＩ、ＥｃｏＲＩ、ＨｉｎｆＩおよびＨｐａ IIでの消化後の、野生型遺伝子の断片（７７量体、７６量体、４２量体および４４量体）と１対の相補的リン酸化変異誘発性オリゴ（８１量体および８０量体）から会合した。全６個の断片の混合物を８５ ℃で５分間加熱し、徐々に室温まで冷やしアニールした。連結反応を１６℃で１５時間行った。反応全量は、５０μｌで、約１ｎＭの各断片、５０ｍＭのＴｒｉｓ−HCl（ｐＨ７．６）、１０ｍＭのＭｇＣｌ₂、１ｍＭのＤＴＴ、１ｍＭのＡＴＰ、５％ＰＥＧ、５単位のＴ４リガーゼである。連結反応後に、反応混合物１μ ｌを鋳型として、２個の５’−突出オリゴヌクレオチドをプライマーとして、および２単位のＶｅｎｔポリメラーゼをＰＣＲに用いた。得た単一産物の予測サイズを２％アガロースゲルで調べた。ハイブリダイゼーション遺伝子をベクターｐＧＥＸ−３Ｘ中にクローンすると、ＰＤＧＦ修飾デンドロアスピン遺伝子含有の組換えプラスミドｐＧＥＸ−３Ｘを得た。形質転換およびプラスミドＤＮＡ単離：ＰＤＧＦ修飾デンドロアスピン遺伝子含有のｐＧＥＸ−３Ｘ（約５ｎｇ）を用いて、５０μｌの大腸菌株ＤＨ５αを形質転換した。対照設定に、形質転換能細胞のみを含有するバイアル、非連結反応プラスミドＤＮＡを含有するバイアル、野生型プラスミドＤＮＡを含有するバイアルを用いた。細菌インキュベーション培地は、ＳＯＣ培地（２０ｇ／ｌのバクト−トリプトン、５ｇ／ｌのバクト−イースト抽出物、０．５ｇｌのＮａＣｌ、２．５ｍＭのＫＣｌ、２０μＭのＭｇＣｌ₂、２０ｍＭのグルコース）である。形質転換に続く回収時に、細菌培養基をアンピシリンなしで１時間インキュベートした。形質転換後、十分な量の各細菌培養基をプレートに置いた。アンピシリン含有のＳＯＣ寒天培地で細菌を培養した。ｐＧＥＸ−３Ｘのアンピシリン選択マーカーによって、いずれの形質転換菌もアンピシリン抵抗性を有し、菌が生育する。一方、形質転換されていない細菌は消滅する。一夜のインキュベーション後、対照プレートに菌は認められなかった。個々のコロニーをプレートからとり、修飾デンドロアスピン遺伝子を提示せしめた。アンピシリン含有のＳＯＤ培地で数時間培養した。それぞれから少量をとり、アンピシリン含有の新しいＳＯＣ培地に移した。無菌のグリセロールを元の細菌培養基に加え、−７０℃で貯蔵供給源とした。残りの培養基を一夜インキュベートした。形質転換細菌培養基からのプラスミドＤＮＡの単離は、プラスミド・ミニ・プレプ（迅速試験について）またはマクシ・プレプ（ＤＮＡ配列決定について）で、製造業者（ＱＩＡＧＥＮ）の指示どうりに行った。プラスミド・ミニ・プレプを各々に行い、プラスミドＤＮＡを１度以上単離した。その多くは修飾デンドロアスピン遺伝子を含有していた。ＤＮＡ配列決定をデンドロアスピン遺伝子断片含有のプラスミド領域について行い、修飾が存在し、正しいことを確認した。挿入断片について完全なＤＮＡの配列を決定するのに、ジデオキシ鎖終末法（Sanger et al（1977）Proc Natl Acad Sci 74：5463-5467）を用いた。タンパク質の発現：大腸菌ＤＨ５αを修飾プラスミドｐＧＥＸ−３Ｘで、Samb rookら（１９８９、Molecular cloning:A Laboratory Manual，Cold Spring Har bor Laboratory Press，NY）に記載の方法を用いて形質転換した。形質転換培養基をタンパク質発現に用いた。培地を一夜種培養基（１％ｖ／ｖ）でインキュベートし、ＬＢ／アンピシリン培養基（１００μｇ／ｍｌ）中で生育し、３７℃で振盪して、０．７のＡ₆₀₀を得た。次いでＩＰＴＧを加え、誘導の最終濃度を０．１ｍＭとした。細胞を更に４時間３０℃の低温で生育し、遠心分離で採取した。融合タンパク質の精製：組換えデンドロアスピンを下記のように精製した。１％ＴｒｉｔｏｎＸ−１００、プロテアーゼ阻害剤フェニルメチルスルフォニル・フルオリド（１ｍＭ）、ペプスタチン（１μＭ）、アプロチニン（２μｇ／ｍｌ）、大豆由来のトリプシン阻害剤（１μｇ／ｍｌ）および１ｍＭのＥＤＴＡを含有するリン酸緩衝塩（ＰＢＳ）液（ｐＨ７．４）に細胞ペレットを懸濁し、氷上で音波破壊した。音波破壊混合物を７，８００ｘｇ、４℃で１０分間遠心分離し、細胞片および不溶性物質をペレット化した。上澄み液からの組換えＧＳＴデンドロアスピンおよびＧＳＴ修飾デンドロアスピンは、グルタチオン−セファローズＣＬ−４Ｂカラムのアフィニティークロマトグラフィーで１５０ｍＭのＮａＣｌを含有するＰＢＳ中の吸収、および１０ｍＭの還元グルタチオンを含有する５０ｍＭのＴｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ８．０）での溶出により、精製した。グルタチオン（ｐＨ８．０）で吸収物質を溶出すると、ポリアクリルアミドゲルにおける３２ｋＤａでの主要バンドの移動（ＧＳＴ−デンドロアスピン融合タンパク質）が見られた（図５Ａおよび図５Ｂ）。３２−ｋＤａの融合タンパク質を含有する適当な分画を、１５０ｍＭのＮａＣｌ、１ｍＭのＣａＣｌ₂および因子Ｘａ（１：１００、ｗ／ｗ、因子Ｘａ：融合タンパク質）の存在下で４℃、２４時間、消化した。精製ＧＳＴタンパク質を因子Ｘａで処理すると、７−ｋＤａバンドとして移動する組換えタンパク質を放出た（図５Ｃ）。このタンパク質は、ほぼデンドロアスピンの大きさであり、遊離ＧＳＴがＳＤＳポリアクリルアミドゲル電気泳動で２８−ｋＤａバンドとして同定された。消化混合物をＶｙｄａｃＣ₁₈逆層ＨＰＬＣ分析カラム（ＴＰ１０４）に充填し、０．１％トリフルオロ酢酸含有の０−２６％アセトニトリルの直線勾配液（毎分１．７８％）で溶出し、次いで０．１％トリフルオロ酢酸中の２６ −３６％アセトニトリル（毎分０．２５％）で溶出した。必要があれば、追加の分析カラムを同じ条件で操作した。図６Ａおよび６Ｂは、逆層ＨＰＬＣの溶出像を示す。ウエスタンブロッティング法：融合タンパク質（１０μｇ）をＳＤＳ−ＰＡＧＥ（１２％）ゲル上で電気泳動し、半乾燥ブロッティングによりニトロセルローズ膜に電流密度０．８ｍＡ／ｃｍ²で移動せしめた。ニトロセルローズ膜を２時間室温で５％乾燥ミルクのＴＢＳ／Ｔｗｅｅｎ緩衝液（２０ｍＭのTris、５００ｍＭのＮａＣｌ、０．１％Ｔｗｅｅｎ）で阻害し、対応する第一抗体で一夜プローブし、次いでホースラディッシュ・ペルオキシダーゼに結合した抗ウサギまたは抗マウスの第２抗体で２時間プローブした。ブロットをアミノエチルカルバゾールで展開した（図７）。Ｒ５１抗体の製造：ペプチド１（ＰＤＧＦループの直線状アミノ酸配列）をウシ・チログロブリン（Ｔｇ）に、ウサギ血清アルブミン（ＲＳＡ）またはチオール基を介して結合した。その際、ヘテロ２重官能性架橋剤であるスルフホサクシニミジル４−（Ｎマレイミドメチル）シクロヘキサン−１−カルボキシレート（Ｓｕｌｐｈｏ−ＳＭＣＣ）またはγ−マレイミドブチラートサクシニミド（ＧＭＢＳ）をそれぞれ用いた。製造業者の用法に従った。複合体はＰＢＳ中に１ｍｇ／ｍｌつくられ、−２０℃で保存した。ニュージランド白色ウサギをＴｇペプチド１（１００μｇを各ウサギに皮下注射した。ＰＢＳ：フロインド完全アジュバンド１：１の１ｍｌ中に含まれる）で免疫した。ウサギの免疫を６および１２週後に同量（ただしフロインド不完全アジュバンド中）で強化した。最終強化注射から１０日後に採血した。抗血清を一定量で取り、−２０℃で保存した。Ｒ３８およびＲ６５抗体の製造：上記抗血清からＩｇＧ（Ｒ３８およびＲ６５）を、タンパク質Ｇアフィニティクロマトグラフィー（Hi-TRAP Protein-G，Pha rmacia，Upsala，Sweden）を用い製造者の説明に従って、精製した。純度はＳＤＳ−ＰＡＧＥで調べた。ＩｇＧのＰＢＳ溶液をフィルターで滅菌し、分割し、− ２０℃で保存した。実施例３．ＲＧＤ機能の同定（デンドロアスピン活性）血小板凝集：血小板凝集をLu et al（1994）Biochem J 304:929-936に記載の光伝達増大により測定し、ＲＧＤ機能の同定に用いた。簡単にいうと、血小板に富む血漿（ＰＲＰ）を、健常人のクエン酸塩加血液から２００ｇで１５分間遠心分離してつくった。血小板はＰＲＰから１２００ｇで１５分間遠心分離してつくった。ペレットを洗い、接着／凝集用緩衝液（１４５ｍＭのＮａＣｌ、５ｍＭのＫＣｌ、１ｍＭのＭｇＣｌ₂、２ｍＭのＣａＣｌ₂、１０ｍＭのグルコース、３．５ｍｇ／ｍｌのＢＳＡ、１０ｍＭのＨＥＰＥＳ、ｐＨ７．３５）に再懸濁し、３ｘ１０⁸に数を調節した。血小板凝集（３２０μｌインキュベーション）は１０ μＭのＡＤＰで１．６７ｍｇ／ｍｌのフィブリノーゲンの存在で誘導され、チャート・レコーダに連結したPayton Dual-Aggregometerで測定した。血小板接着：血小板接着も測定されて、Lu et al（1994）(前出)に記載のようにＲＧＤ機能を更に同定した。簡単にいうと、ＰＢＳから再生成したヒト・フィブリノーゲンまたはフィブロネクチオン（ｐＨ７．４）（濃度：約２−１０μｇ／ｍｌ、用量：１００μｌ）で９６ウエル・プレートを一夜４℃で被覆した。血小板を適当な濃度のアンタゴニストで３分間処理し、この混合物９０μｌを５００μＭのＡＤＰ１０μｌ充填のマイクロタイタープレートに加え、最終濃度を５０μＭとし、接着血小板の数を調べた。１３０μｌ／ウエルの展開緩衝液（酢酸ナトリウム、１０ｍＭのｐ−ニトロフェニルリン酸塩、０．１％トリトンＸ−１００、ｐＨ５．５）を用いて外因性酸ホスファターゼを測定し、自動プレートリーダにより４１０／６３０ｎｍで読み取った。リガンドのヨウ素化試験およびリガンド結合検定：すべての変種のデンドロアスピンのヨウ素化を、Enzymobead Radioiodination Reagent(Biorad Laboratori es)を用い、製造業者の説明にしたがって、行った。¹²⁵Ｉ標識ジスインテグリン、デンドロアスピンおよび修飾デンドロアスピンの洗浄血小板との結合を、Lu e t al．(1994)（前出）に記載のように基本的に平衡条件で行った。インキュベーション混合物は、洗浄血小板（３ｘ１０⁸／ｍｌ）３００μｌ、アゴニスト（１．７５ｍＭのＡＤＰで最終濃度５０μＭ）１０μｌ、¹²⁵Ｉ標識タンパク質サンプル１０μｌ、再懸濁緩衝液５−２０μｌを含み、最終容量を３５０μｌとした。抗体阻害試験において、血小板懸濁液を抗体で３０分間処理し、ＡＤＰに曝し、¹²⁵Ｉ標識タンパク質サンプルを加え、混合物を室温でさらに６０分間インキュベートした。インキュベーションの終了には混合物を２５％（ｗ／ｖ）スクロース、１％ＢＳＡクッション上に充填し、１２０００ｇで１０分間遠心分離した。血小板のペレットと上澄み液とを数えて、結合および遊離のリガンドを測定した。規定となる結合レベルを５０倍過剰の冷タンパク質サンプルまたはジスインテグリンまたは１０ｍＭのＥＤＴＡの存在下で測定した。移植ループの同定：移植ループの機能の同定は、移植ループの親タンパク質の機能に依存する。実施例４．デンドロアスピン中のＰＤＧＦループＩの作用の検定競合ＥＬＩＳＡ（ＣＥＬＩＡ）：適当な量のＤｅｎ−ＰＤＧＦすなわち競合剤としてのＰＤＧＦを適当に希釈したウサギ抗ＰＤＧＦ抗血清と同時に加え、２時間インキュベートした。各ウサギ抗血清を標準直接ＥＬＩＳＡ曲線の直線部分内での希釈において用い、４０５ｎｍでＯＤ１．２から１．５を得て、基質と３０分間インキュベートして、適当なＲＳＡ−ペプチド複合体に対して検定した。細胞培養および［³Ｈ］−チミジン取りこみ検定：ヒト***線維芽細胞（経路番号７−１０を用いる）を１０％ＦＢＳ含有の完全ＤＭＥＭに保持した。７５ｃｍ³組織培養フラスコからのサブコンフルエント単層をトリプシン処理し、数え、２４ウエル（Costar）または４８ウエル（Falcon）平底組織培養プレートに細胞濃度１０，０００細胞／ウエルで播き、約６５％コンフルエントに生育した（２日間）。０．２％または０．５％ＦＢＳ含有の完全ＤＭＥＭに４８−７２時間置いて、細胞を休止した。すべての細胞培養を３７℃で空気中８％ＣＯ₂含有の加湿大気において行った。生長因子誘導細胞増殖を阻害するために、種々の濃度のＤｅｎ−ＰＤＧＦおよびペプチドＰ１（ＰＤＧＦドメインの直線配列）をそれぞれ含有する完全ＤＭＥＭに、ゼロ時点で培地を入れた。誘導のＰＤＧＦ濃度は１０−２０ｎｇ／ｍｌを用いた。［³Ｈ］−チミジン（０．３ｍＣｉ／１００μｌ／ウエル）を２０−２２時間後に加え、２７．５−２８時間までインキュベートした。媒質を吸引し、細胞を冷ＰＢＳで２回洗い、１０％ＴＣＡ５００μｌを加えて固定し、３０分間４℃でインキュベートした。細胞を７０％エタノール５ｍｌで１回洗い、−２０℃で保存した。０．１ＮのＮａＣｌ５００μｌを各ウエルの加え、３０分間室温で細胞を可溶化した。細胞取りこみ［³Ｈ］−チミジンを、各ウエルからのサンプル４００μｌにつきシンチレーション計数で定量した。細胞増殖の阻害百分率は次のように算出された。図８は試験結果を示す。ＰＤＧＦ−デンドロアスピンは、６．５−６０μＭでＰＤＧＦ誘導増殖を１０−３４％阻害した（対照の野生型デンドロアスピンを用いたときは阻害が見られなかった）。実施例５．トロンボモジュリンの第５ＥＧＦ様ドメインから誘導された配列を含有する修飾デンドロアスピントロンボモジュリンはトロンビンの受容体として働く。トロンビンはトリプシン様セリンプロテアーゼであって、止血と血栓症の両方に中心的役割を演じる。凝固カスケードにおいて、トロンビンは最終の重要因子であり、タンパク分解的にフィブリノーゲンを分割して、フィブリノペプチドＡおよびＢを放出し、フィブリン一量体を形成し、これが重合して止血栓を作る。フィブリノーゲンの分割に加えて、トロンビン活性の補因子として作用する凝固因子ＶａおよびＶIIIａをトロンビンは生成して、自己生産にフィードバックを行う。因子ＸIIIもトロンビンにより活性化されて、架橋し、フィブリンポリマーを安定にする。自然の抗凝固メカニズムはこれらの過程を、ヤルピン、アンチトロンビンIIIによる阻害を介して、またトロンビン／トロンボモジュリン複合体によるタンパク質Ｃの活性化を介して制限する。トロンボモジュリンは、内皮細胞表面に存在する細胞受容体であり、トロンビンと結合し、その分子特性を変え、血餅形成を触媒する能力を低下せしめ、また、トロンビンを強力なタンパク質Ｃアクチベーターに変える。活性タンパク質Ｃは因子ＶａおよびＶIIIａを破壊して、カスケードを終了する。このように、プロ／アンチ凝固メカニズムのバランスが、正常な生理的状態を維持してトロンビンの局所的生成をもたらし、同時に、トロンビンの生成が全身的となって危険性を有するのを防いでいる。さらに、トロンビンは血小板および内皮細胞も活性化する。トロンビンによる血小板活性化で、血小板は激しい変化を受け、凝集を起こし、貯蔵顆粒内容物（例えば、血小板因子４、ＡＤＰ、５−ヒドロキシトリプタミン）を放出する。トロンビンはまた、トロンボキサンＡ２および血小板活性化因子の合成と分泌を増加する。トロンビンと内皮細胞との相互作用は、種々の物質（例えば、組織プラスミノーゲン・アクチベーター、ＰＤＧＦ、エンドセリン）の分泌をもたらす。またトロンボモジュリンとのタンパク質Ｃの結合の加速化をもたらし、タンパク質Ｃ抗凝固経路が開かれる。例として、トモンボモジュリンの第５表皮成長因子（ＥＧＦ）様ドメインから誘導された配列をデンドロアスピンに移殖した。この新規タンパク質のトロンビン結合親和性をフィブリノーゲン血餅阻害で測定した。適当なプラスミド発現ベクターを実施例１の方法に従ってつくった。ただ、トロンボモジュリン・ドメインは図３Aに示すようにデンドロアスピン中に挿入した。図３AはデンドロアスピンのループII中に移殖された配列を示す。ＴＭ修飾デンドロアスピンの発現、単離および精製も実施例１のように行った。修飾タンパク質のＲＧＤ機能は実施例２のように試験した。ヒトトロンボモジュリンは、約１００ｋＤａのＭｒを有し、Ｃ型レクチン・ファミリーに相同のＮ−末ドメイン、６個のタンデム状繰り返し表皮成長因子（ＥＧＦ）様ドメイン、Ｓｅｒ／Ｔｈｒに富むドメイン、膜透過ドメイン、短い細胞質テイルからなる。図３Ｃに示す特定の例において、トロンボモジュリンの第５ＥＧＦ様ドメインから誘導された配列をデンドロアスピン中に挿入し、デンドロアスピンの適当な部分を追加的に修飾して、生物的機能の喪失を起こす立体障害を防止した。図３Ｄに示すように、修飾デンドロアスピン分子はＡＤＰ−およびトロンビン誘発血小板凝集活性を有し、トロンビン血餅時間を長くする。実施例６．デンドロアスピン中のトロンボモジュリン・ドメインの作用についての検定トロンビン誘発フィブリノーゲン血餅時間：トロンビン誘発フィブリノーゲン血餅時間をＡｍｅｌｕｎｇＫＣ−１０で、下記のように測定した。トロンビン（３．３μｇ／ｍｌ）の５０ｍＭトリスＨＣｌ溶液（ｐＨ７．５、１５０ｍＭのＮａＣｌおよび５ｍＭのＣａＣｌ₂含有）５０μｌを種々の濃度の修飾デンドロアスピン（Ｄｅｎ−ＴＭ）および野生型デンドロアスピン（比較用対照として）１０μｌに混合した。２分間３７℃でインキュベートした後、フィブリノゲン（１６０μｇ／ｍｌ）の同じ緩衝溶液１００μｌを加え、血餅時間を測定した。タンパク質Ｃ活性化：Ｄｅｎ−ＴＭがタンパク質Ｃ活性化に影響を与えるかどうかを調べるために、Tsiang et al．(1990)Biochemistry 29:10602-10612に記載のように２段階検定を行った。第１段階で、トロンビンおよびタンパク質Ｃを適当な最終濃度に、野生型または変異デンドロアスピンのいずれかの反応液１１０μｌに、２ｍＭのＣａＣｌ₂または１ｍＭのＮａ₂ＥＤＴＡいずれかと共に加えた。反応混合物を３０分間インキュベートし、アンチトロンビンIIIおよびヘパリンを加えて停止した。生成した活性タンパク質Ｃを基質Ｓ−２３６６の加水分解により検定した。トロンビン誘発血小板凝集：野生型および変異デンドロアスピンについて洗浄血小板中のトロンビン誘発血小板凝集を実施例３記載のように測定した。ただ、トロンビンをアゴニストとして用いた。トロンボモジュリン結合：トロンボモジュリン結合をTsing et al．(1990)（上出）記載のように行った。実施例７．糖タンパク質（ＧＰ）ＩＢから誘導された配列を含む修飾デンドロアスピン血小板の高親和性α−トロンビン結合部位を発現さすには糖タンパク質（ＧＰ）ＩＢαが必要である（Marco et al．(1994)J Biol Chem 269:6478-6484）。この機能は、止血および血栓が始まるのに非常に重要で、病理的血管咬合の発達に一つの役割を演じる。修飾デンドロアスピンにＧＰ・ＩＢ由来の配列を含有するよう設計すると、トロンビンおよびインテグリン・アンタゴニストの両活性を生成した。適当なプラスミド発現ベクターを実施例１記載のようにつくった。ただ、糖タンパク質ＩＢαドメインをデンドロアスピン分子のループＩ中に、図３Ａおよび３Ｃに示すように挿入した。図中、移殖ドメインのアミノ酸残基をデンドロアスピンの完全アミノ酸配列と並記した。図３Ｄに要約するように、修飾デンドロアスピン分子はトロンビン活性および血小板凝集を阻害する。糖タンパク質ＩＢ（ＧＩＩＢ）ドメインを含有するデンドロアスピン遺伝子の会合およびクローン化：ＧＰＩＢドメインを含有するデンドロアスピン遺伝子を、ＢａｍＨＩ、ＥｃｏＲＩ、ＨｉｎｆＩおよびＨｐａ IIでの消化後の、野生型遺伝子の断片（８１、８２、４２、４４量体）と、１対のリン酸化変異生成オリゴ（８３および８４量体）とから会合した。アニーリング、連結反応、ＰＣＲおよび会合の実験手法は、Ｄｅｎ−ＰＤＧＦについて前に記載されたのと同様である。ＧＰＩＢα修飾デンドロアスピンの発現、単離および精製を実施例Ｉに記載のように行い、分子のＲＧＤ機能を実施例３のように行った。実施例８．デンドロアスピンのＧＰＩＢドメインの作用についての検定血小板とのトロンビン結合の測定：トロンビンの洗浄血小板との結合をカルシウムなしの凝集／接着緩衝液で測定した（実施例３の血小板凝集の測定を参照）。洗浄血小板を検定前１０分間３７℃に保ち、¹²⁵Ｉ−α−トロンビンで１０分間２５℃でインキュベートした。リガンド濃度の関数としての結合を、一定濃度（０．１ｎＭ）の¹²⁵Ｉ−α−トロンビンと、濃度を変えた（１から２００ｎＭ）非標識トロンビンとの混合物で、測定した。結合を始めるために、血小板をトロンビン混合物に加えた。１０分間のインキュベーション後に血小板と結合トロンビンを非結合トロンビンから、２０％スクロース層を介して１２０００ｇ、４分間の遠心で分離した（Lu et al．(1994)前出）。血小板へのトロンビン結合に対するＧＰＩＢドメイン含有デンドロアスピンの作用を、種々の濃度の変異体を洗浄血小板と混合すること、および一定濃度の１２５１−α−トロンビンを加えることにより調べた。結果を前に記載（Lu et al．(1996)前出）のように分析した。血小板凝集および分泌の測定：血小板の濃い顆粒からのＡＴＰ放出をルシフェリンールシフェラーゼ検定で測定した。洗浄血小板をカルシウムなしの凝集／接着緩衝液０．４ｍｌに２．５ｘ１０⁸／ｍｌの数で再懸濁し、分割液０．４ｍｌを発光血小板凝集計（Chrono-Log Corp）を用いて測定した。ルシフェリン−ルシフェラーゼ試薬５０μｌを加え、α−トロンビンを最終濃度０．２６ｎＭとした。ＡＴＰの放出の測定は発光血小板凝集計（Chrono-Log Corp）を用い、ルミネセンスの変化により行った。血小板凝集を実施例３に記載のように測定した。ＡＴＰ放出および血小板凝集に対するＧＰＩＢドメイン含有の変異デンドロアスピンの阻害作用を試験するために、変異タンパク質を加え、血小板と５分間３７℃で混合し、ルシフェリン／ルシフェラーゼおよびトロンビンを加えた。トロンビンのアミド分解活性およびフィブリノーゲンの血餅：トロンビンのアミド分解活性およびフィブリノーゲンの血餅を実施例１０に記載のように測定した。実施例９．ヒルジンのドメインを含有する修飾デンドロアスピンヒルジンは、吸血ヒルHirudo medicinalisから得られる強力なトロンビン阻害剤で、６５個のアミノ酸残基を含有する単一ポリペプチド鎖タンパク質である（ Maraganore et al．(1989)J．Biol．Chem．264:8692-8698）。ヒルジンからアミノ酸残基Ａｓｎ⁵²−Ｌｅｕ⁶⁴またはＰｈｅ⁴⁵−Ｇｌｎ⁶⁵を含む修飾デンドロアスピンをつくった。新規の構成体は抗トロンビン結合ドメインと血小板抗接着ドメインとを含有する。プラスミド発現ベクターを実施例７に記載のようにつくった。ただ、デンドロアスピンのループIIでのアミノ酸残基ＰＲＰに対応する小変化のために、さらに変異部位を作った。小変化については、Clonetech社のTransformer（商標）部位指向性変異形成キットを用いた。試験方法は、ヒルジンドメインをデンドロアスピンのループＩおよびIIに移殖した以外、製造業者の指示どおりに行った。修飾分子を図３Ａおよび３Ｃに示す。図中、ヒルジン誘導アミノ酸残基を元のデンドロアスピン配列に並記する。図３Ｄは、図３Ｃの分子がトロンビン血餅時間を遅らし、ＡＤＰまたはトロンビン誘発血小板凝集を阻害することを表す。Ｄｅｎ−ＨＲの発現、単離および精製は、基本的に実施例１に記載のように行った。Ｄｅｎ−ＨＲのＲＧＤ機能を実施例３の検定法により明らかにした。実施例１０．デンドロアスピンのヒルジンドメイン作用についての検定トロンビンのアミド分解活性およびフィブリノーゲン血餅：α−トロンビンのアミド分解活性を形成するのに、色素産生性基質Ｓ−２２３８（Chromogenix）およびα−トロンビンを最終濃度０．０６単位／ｍｌで使用した。トロンビンは基質からｐ−ニトロアニリンを放出する。放出速度を自動分光計（Autoreader I II，Ortho Diagnostic Systems）を用いて４０５ｎｍでミクロタイタープレートで監視した。色素産生性基質のトロンビン分解に対するＤｅｎ−ＨＲ阻害作用は、最終濃度ｎＭ−ｍＭ間で測定した。トロンビンおよびＤｅｎ−ＨＲを予め混合し、基質を加えて反応を開始した。フィブリノーゲン血餅活性を検討するために、α−トロンビン（最終濃度１ｎＭ）の０．０５Ｍリン酸ナトリウム液（ｐＨ６．５、ＢＳＡ最終濃度１％）２００μｌを５分間室温でインキュベートし、正常血漿（抗凝固剤として０．０１１Ｍのクエン酸トリナトリウムを含有）２００μ ｌを加えた。フィブリノーゲン血餅（トロンビン時間）の開始が認められる時間を、自動凝固測定計を用いて３７℃で測定した。トロンビンによるフィブリノーゲン血餅に対する変異体の作用を、ある濃度範囲の変異体で最初の混合物中のＨＥＰＥ緩衝液を置き換えて測定した。実施例１１．トロンビン由来のペプチドを含有する修飾デンドロアスピン、トロンビンの凝固促進活性を遮断するヒト・トロンビン内のトロンボモジュリン結合部位は、トロンビンのＢ−鎖中の一つの領域に局在している。図３Ｂに示すように、この配列はデンドロアスピン中に導入されて、二重機能の分子を生成する。すなわち、トロンビン凝固促進活性を阻害するとともに、ＡＤＰ／トロンビン誘発血小板凝縮を阻害する。この変異体の特性は、実施例６記載のようにトロンビン誘発フィグリノーゲン血餅時間の測定、および実施例３および６記載のようにＡＤＰ／トロンビン誘発血小板凝縮の測定により調べられる。図３Ｄは、二重機能の分子についての特性を要約している。この分子は、トロンビン血餅の遅延とＡＤＰまたはトロンビンによる誘発血小板凝固の阻害とをなし得る。図３Ｃの分子の場合、ループの修飾が必要となるのは、「異物」配列の導入によって起きる立体作用のためである。例えば、ＰＤＧＦ由来の配列をデンドロアスピン中に導入したとき、抗ＰＤＧＦ活性が生じたが、抗血小板活性が失われた。この立体作用を設計して、デンドロアスピンのループIIIに類似のＲＧＤループをループＩに導入した。デンドロアスピン・スカフォルドを基としてつくられた分子の配列およびその機能を表１および図１にそれぞれ要約する。実施例１２．修飾デンドロアスピンの部位指向変異生成上記の修飾デンドロアスピンの各々は、部位指向変異生成によって、所望に応じて分子のＲＧＤループまたは他の部分の辺りで修飾できる。手法はLu et al（ 1996）(前出)に記載されている。可能なＲＧＤフランキング領域修飾をデンドロアスピン活性検定とともに図３Ｂに示す。ある修飾は活性を増加し、他方、ある修飾は活性をなくする。実施例１３．モルモットの動脈血栓症モデルにおける修飾デンドロアスピンの抗血栓活性上記実施例でつくられた４種の修飾デンドロアスピンについて、モルモット動脈血栓症モデル系でインビボでの抗血栓活性を調べることができる。このモデル系はCarteaux J P et al（1995）Circulation 91:1568-1574に詳記されている。各修飾デンドロアスピンの投与量は、体重当り０．１ｍｇ／ｋｇから１ｍｇ／ｋｇであり、モルモットに個々に静脈注入される。対照試験は５０−１５０ＩＵ／ｋｇのヘパリンとプラセボであり、平行的に行うことができる。実施例１４．ウサギ動脈硬化症モデルにおける動脈損傷後の細胞増殖に対する修飾デンドロアスビンの活性Ｄｅｎ−ＰＤＧＦ、Ｄｅｎ−ＴＭ、Ｄｅｎ−ＧＰおよびＤｅｎ−ＨＲは、ウサギのインビボモデルで試験できる。モデルはRagosla M et al（1996）Circulati on 93:1194-1200に記載されている。動脈硬化症を形成した後、これらの修飾デンドロアスピンをウサギに０．１ｍｇ−０．５ｍｇ／ｋｇ静脈投与する。対照動物の第１組にヘパリンの１回量（１５０ＩＵ／ｋｇ）動脈投与する。第２組の対照動物には修飾デンドロアスピンの代わりに塩類液を与える。試験動物および対照動物にバルーン血管形成を施し、定量的血管形成術、活性部分的トロンボプラスチン時間（ａＰＴＴ）、３Ｈチミジンの傷害動脈への取込およびルミナール・ナロイング試験を行った。実施例１５．ブタモデルにおけるインビボでの修飾デンドロアスピンの血栓溶解活性 Mruk et al（1995）Circulation 93:792-799のモデル系を採用した。閉塞性血栓のあるブタに、実施例１２の修飾デンドロアスピン０．１−１ｍｇを静脈投与する。ヘパリンまたはヒルジン（１００ＩＵ／ｋｇ、２０ＩＵ／ｋｇ）を対照動物に投与する。塩類液のみを投与した動物を対照とする。

【手続補正書】特許法第１８４条の８第１項【提出日】平成１１年３月１１日（１９９９．３．１１）【補正内容】各挿入追加アミノ酸配列すなわち追加アミノ酸配列部分は、アミノ酸残基の長さが好ましくは３−４０、より好ましくは３−１６、さらにより好ましくは３− １４個の範囲のアミノ酸配列である。挿入の追加アミノ酸配列の出発点は、デンドロアスピン・スカフォルドのアミノ酸残基１−５７のいずれでもよい。挿入の追加アミノ酸配列の終了点は、デンドロアスピン・スカフォルドのアミノ酸残基３−５９のいずれでもよい。２個の追加アミノ酸配列がデンドロアスピン・スカフォルドに挿入されるときは、両者間の隔たりは好ましくは１−３５個のアミノ酸、より好ましくは１−１４個のアミノ酸である。３個以上の追加アミノ酸配列が挿入されるときは、好ましくは少なくとも１個の天然デンドロアスピンのアミノ酸残基で各追加アミノ酸配列をが隔てられる。ＲＧＤ含有ループは、１個以上のアミノ酸残基の挿入、欠失あるいは置換により修飾されることがあり、好ましくは、最大で８、最小で１個のアミノ酸がデンドロアスピンのループIII内で修飾され得る。ＲＧＤループは、好ましくは図３Ｂに示すアミノ酸配列を有する。ＲＧＤループ領域を修飾する利点は、インテグリン結合活性が高められて、特定の糖タンパク質リガンドに対してさらに特異的になり得ることである。また、デンドロアスピン・スカフォルドに移植された１以上の「異物」の追加アミノ酸配列がＲＧＤモチーフに対する立体作用を有すると、ＲＧＤ周辺のループIIIは立体障害を無くすように修飾することが可能であり、そうしてＲＧＤ機能が回復し、さらにＲＧＤ機能が上昇する。ループＩおよび／またはループIIは、１個以上のアミノ酸残基の挿入、欠失または置換により修飾される。適当な数のアミノ酸をデンドロアスピン・スカフォルドに挿入することができ、所望の二重または多重機能性活性が得られる。範囲１４−３６数の残基がデンドロアスピン・スカフォルドに１以上の部位で挿入されるのが好ましい。デンドロアスピン・スカフォルドに移植された「異物」の追加アミノ酸配列が他の移植ドメインまたはＲＧＤ含有ループのいずれかに対して立体障害作用を有すると、ループの修飾が必要となることがある。インサイトIIソフトウェアーおよび/またはルーIII、または（ｄ）ループＩ、ループIIおよびループIIIに組み込まれる、請求項１−６のポリペプチド。８．該追加配列がループＩまたはループIIに組み込まれる、請求項７のポリペプチド。９．ＲＧＤ含有ループが含まれて１以上のアミノ酸残基の挿入、欠失または置換により修飾され、好ましくは最大８個、最低１個のアミノ酸がデンドロアスピンのループIII中で修飾され得る、請求項１−８のポリペプチド。１０．ＲＧＤループが図３Ｂに示すアミノ酸配列を有する、請求項９のポリペプチド。１１．ループＩおよび／またはループIIが１以上のアミノ酸残基の挿入、欠失または置換により修飾され、好ましくは範囲１４−３６の数のアミノ酸残基により修飾されている、請求項１−１０のポリペプチド。１２．該追加配列が１以上の２−１６、２１−３６、２１−３１、２８−３２、９−１３、２１−３３から選ばれるアミノ酸残基の間で、または残基５０後のデンドロアスピン・スカフォルドの末端でデンドロアスピンに挿入される、請求項１−１１のポリペプチド。１３．請求項１−１２のポリペプチドをコードする核酸分子。１４．プロモーターに操作的に連結し、異種のタンパク質またはペプチドをコードする核酸配列に所望により連結して、融合産物をコードする核酸。１５．プロモーターがＩＰＴＧを誘発でき、所望により異種タンパク質またはペプチドがグルタチオンＳ−トランスフェラーゼである、請求項１４の核酸。１６．請求項１３−１５の核酸を含むプラスミド。１７．請求項１３の核酸を含むプラスミドｐＧＥＸ−３X。１８．請求項１６−１７のプラスミドで形質転換した宿主細胞。１９．大腸菌である、請求項１８の宿主細胞。２０．請求項１８または１９の宿主細胞を含む細胞培養物。２１．請求項１８または１９の宿主細胞を培養して、該ポリペプチドを発現し、培養基からポリペプチドを抽出し、精製することを含む、請求項１−１２のポリペプチドを製造する方法。２２．多重機能性抗凝固剤を製造する方法であって、ａ）プロモーターに操作可能的に連結し、異種タンパク質をコードする核酸に所望により連結したデンドロアスピン・スカフォルドをコードする核酸配列を含有する発現ベクターを共発現のために構築すること、ｂ）デンドロアスピン・スカフォルドをコードするベクターの核酸配列の少なくとも一部分を、ＲＧＤモチーフは除外して、核酸残基の１以上の挿入、欠失または置換によって修飾し、発現時にデンドロアスピン・スカフォルドが発現スカフォルド上に血小板結合に加えて第２の機能を付与するグルタチオンＳ−トランスフェラーゼ活性以外の追加アミノ酸配列を含むように修飾すること、ｃ）このベクターで宿主細胞を形質転換し、宿主細胞に修飾デンドロアスピン核酸配列を発現せしめること、を含む方法。２３．次の工程、ｄ）宿主細胞培養物から修飾デンドロアスピンを抽出すること、ｅ）細胞培養抽出物から修飾デンドロアスピンを精製すること、をさらに含む、請求項２２の方法。２４．異種のタンパク質がグルタチオンＳ−トランスフェラーゼ（ＧＳＴ）であり、精製にはＧＳＴアフィニティークロマトグラフィーを行い、ＧＳＴから修飾デンドロアスピンの開裂を行う、請求項２３の方法。２５．部位指向性変異形成を用いて、置換または欠失で１以上の選択されたアミノ酸残基を変更することを含む、請求項２１−２４の方法。２６．発現した多重機能性抗凝固剤を医薬製剤に処方することをさらに含む請求項２１−２５の方法。２７．請求項２１−２５の方法により得ることのできる、請求項１−１２のポリペプチド。２８．請求項１−１２または２７のポリペプチドの医療上の有効量を含む、医薬組成物。２９．薬学的に許容される賦形剤または担体をさらに含む、請求項２８の組成物。３０．医薬としての使用のための請求項１−１２または２７のポリペプチド。３１．血栓症関連疾患の治療および予防のための薬剤の製造における請求項１− １２または２７のポリペプチドの使用。３２．該疾患が１以上の血栓症、心筋梗塞、網膜血管新生、内皮損傷、異制御アポトーシス、異常細胞移動、白血球動員、免疫系活性化、組織線維症および腫瘍発生である、請求項３１の使用。【手続補正書】特許法第１８４条の８第１項【提出日】平成１１年４月１９日（１９９９．４．１９）【補正内容】請求の範囲１．ＲＧＤモチーフを含有して血小板結合活性を付与する最初のアミノ酸配列と、血小板結合活性またはグルタチオンＳ−トランスフェラーゼ活性以外の活性を付与する追加のアミノ酸配列と、を含むハイブリド・デンドロアスピン由来のポリペプチド。２．１つのドメインにインテグリン結合活性を有してデンドロアスピン・スカフォルドと、他のドメインにグルタチオンＳ−トランスフェラーゼ活性以外の第２機能を付与する非デンドロアスピン・アミノ酸配列と、を含むハイブリド・ポリペプチド。３．少なくとも２個の該追加アミノ酸配列を含み、所望により該追加配列が同じである、請求項１または２のポリペプチド。４．該追加アミノ酸配列が、デンドロアスピンの少なくとも１個のアミノ酸残基により隔てられている２個以上のアミノ酸配列部分を含む、請求項１−３のポリペプチド。５．該追加の配列が、血小板由来増殖因子（ＰＤＧＦ）、糖タンパク質ＩＢα 、ヒルジン、トロンボモジュリン、血管内皮増殖因子、トランスフォーミング増殖因子β１、塩基性繊維芽細胞増殖因子、アンギオテンシンII、第８因子およびフォンビルブラント因子から選択される、請求項１−４のポリペプチド。６．図３Ａまたは３Ｃに示されるアミノ酸配列を含む、請求項１−５のポリペプチド。７．該追加アミノ酸配列が、デンドロアスピン・スカフォルドの、(ａ)ループＩおよび/またはループII、(ｂ)ループＩおよび/またはループIII、(ｃ)ループII 【手続補正書】【提出日】平成１１年１１月２２日（１９９９．１１．２２）【補正内容】

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.⁷ 識別記号ＦＩテーマコート゛(参考）Ａ６１Ｐ 35/00 Ａ６１Ｐ 37/04 35/04 43/00 １０７ 37/04 Ｃ０７Ｋ 14/49 43/00 １０７ 14/495 Ｃ０７Ｋ 14/49 14/52 14/495 14/705 14/52 14/755 14/705 14/815 14/755 Ｃ１２Ｎ 1/15 14/815 15/00 ＺＮＡＡＣ１２Ｎ 1/15 Ａ６１Ｋ 37/02 (81)指定国ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＩ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，ＩＴ，ＬＵ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ，ＣＦ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＭＬ，ＭＲ，ＮＥ，ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＰ(ＧＨ，ＧＭ，ＫＥ，ＬＳ，ＭＷ，ＳＤ，ＳＺ，ＵＧ，ＺＷ)，ＥＡ(ＡＭ，ＡＺ，ＢＹ，ＫＧ，ＫＺ，ＭＤ，ＲＵ，ＴＪ，ＴＭ)，ＡＬ，ＡＭ，ＡＴ，ＡＵ，ＡＺ，ＢＡ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＢＹ，ＣＡ，ＣＨ，ＣＮ，ＣＵ，ＣＺ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＥ，ＥＳ，ＦＩ，ＧＢ，ＧＥ，ＧＨ，ＧＭ，ＧＷ，ＨＵ，ＩＤ，ＩＬ，ＩＳ，ＪＰ，ＫＥ，ＫＧ，ＫＰ，ＫＲ，ＫＺ，ＬＣ，ＬＫ，ＬＲ，ＬＳ，ＬＴ，ＬＵ，ＬＶ，ＭＤ，ＭＧ，ＭＫ，ＭＮ，ＭＷ，ＭＸ，ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ，ＰＴ，ＲＯ，ＲＵ，ＳＤ，ＳＥ，ＳＧ，ＳＩ，ＳＫ，ＳＬ，ＴＪ，ＴＭ，ＴＲ，ＴＴ，ＵＡ，ＵＧ，ＵＳ，ＵＺ，ＶＮ，ＹＵ，ＺＷ (72)発明者カカー，ビジャイ・ビールイギリス、エスオー３・６エイチエヌ、ハンプシャー、ウォーサッシュ、ブルック・アベニュー、ハンブルズ・エッジ (72)発明者オーシ，カルウォント・シンイギリス、アイジー３・９エスゼット、エセックス、イルフォード、グッドメイズ、ウッドストック・ガーデンズ19番

Claims

【特許請求の範囲】１．ＲＧＤモチーフを含有してデンドロアスピン活性を付与する最初のアミノ酸配列と、デンドロアスピン活性以外の活性を付与する追加のアミノ酸配列と、を含むハイブリド・ポリペプチド。２．デンドロアスピン・スカフォルドと追加の非デンドロアスピン・アミノ酸配列とを含み、インテグリン結合活性を有するハイブリド・ポリペプチド。３．少なくとも２個の該追加アミノ酸配列を含み、所望により該追加配列が同じである、請求項１または２のポリペプチド。４．該追加アミノ酸配列が、デンドロアスピンの少なくとも１個のアミノ酸残基により隔てられている２個以上のアミノ酸配列部分を含む、請求項１−３のポリペプチド。５．該追加の配列が、血小板由来増殖因子（ＰＤＧＦ）、糖タンパク質ＩＢα 、ヒルジン、トロンボモジュリン、血管内皮増殖因子、トランスフォーミング増殖因子β１、塩基性繊維芽細胞増殖因子、アンギオテンシンII、第８因子およびフォンビルブラント因子から選択される、請求項１−４のポリペプチド。６．図３Ａ、３Ｂまたは３Ｃに示されるアミノ酸配列を含む、請求項１−５のポリペプチド。７．該追加アミノ酸配列が、デンドロアスピン・スカフォルドの、(ａ)ループＩおよび/またはループII、(ｂ)ループＩおよび/またはループIII、(ｃ)ループII および/またはループIII、または（ｄ）ループＩ、ループIIおよびループIIIに組み込まれる、請求項１−６のポリペプチド。８．該追加配列がループＩまたはループIIに組み込まれる、請求項７のポリペプチド。９．ＲＧＤ含有ループが１以上のアミノ酸残基の挿入、欠失または置換により修飾され、好ましくは最大８個、最低１個のアミノ酸がデンドロアスピンのループ III中で修飾され得る、請求項１−８のポリペプチド。１０．ＲＧＤループが表Ｉに示すアミノ酸配列を有する、請求項９のポリペプチド。１１．ループＩおよび／またはループIIが１以上のアミノ酸残基の挿入、欠失または置換により修飾され、好ましくは範囲１４−３６の数のアミノ酸残基により修飾されている、請求項１−１０のポリペプチド。１２．該追加配列が１以上の２−１６、２１−３６、２１−３１、２８−３２、９−１３、２１−３３から選ばれるアミノ酸残基の間で、または残基５０後のデンドロアスピン・スカフォルドの末端でデンドロアスピンに挿入される、請求項１−１１のポリペプチド。１３．請求項１−１２のポリペプチドをコードする核酸分子。１４．プロモーターに操作的に連結し、異種のタンパク質またはペプチドをコードする核酸配列に所望により連結して、融合産物をコードする核酸。１５．プロモーターがＩＰＴＧを誘発でき、所望により異種タンパク質またはペプチドがグルタチオンＳ−トランスフェラーゼである、請求項１４の核酸。１６．請求項１３−１５の核酸を含むプラスミド。１７．請求項１３の核酸を含むプラスミドｐＧＥＸ−３X。１８．請求項１６−１７のプラスミドで形質転換した宿主細胞。１９．大腸菌である、請求項１８の宿主細胞。２０．請求項１８または１９の宿主細胞を含む細胞培養物。２１．請求項１８または１９の宿主細胞を培養して、該ポリペプチドを発現し、培養基からポリペプチドを抽出し、精製することを含む、請求項１−１２のポリペプチドを製造する方法。２２．多重機能性抗凝固剤を製造する方法であって、ａ）プロモーターに操作可能的に連結し、異種タンパク質をコードする核酸に所望により連結したデンドロアスピン・スカフォルドをコードする核酸配列を含有する発現ベクターを共発現のために構築すること、ｂ）デンドロアスピン・スカフォルドをコードするベクターの核酸配列の少なくとも一部分を、ＲＧＤモチーフは除外して、核酸残基の１以上の挿入、欠失または置換によって修飾し、発現時にデンドロアスピン・スカフォルドがデンドロアスピン活性以外の活性の追加アミノ酸配列を含むように修飾すること、ｃ）このベクターで宿主細胞を形質転換し、宿主細胞に修飾デンドロアスピン核酸配列を発現せしめること、を含む方法。２３．次の工程、ｄ）宿主細胞培養物から修飾デンドロアスピンを抽出すること、ｅ）細胞培養抽出物から修飾デンドロアスピンを精製すること、をさらに含む、請求項２２の方法。２４．異種のタンパク質がグルタチオンＳ−トランスフェラーゼ（ＧＳＴ）であり、精製にはＧＳＴアフィニティークロマトグラフィーを行い、ＧＳＴから修飾デンドロアスピンの開裂を行う、請求項２３の方法。２５．請求項２１−２４の方法により得ることのできる、請求項１−１２のポリペプチド。２６．請求項１−１２または２５のポリペプチドの医療上の有効量を含む、医薬組成物。２７．薬学的に許容される賦形剤または担体をさらに含む、請求項２６の組成物。２８．医薬としての使用のための請求項１−１２または２５のポリペプチド。２９．血栓症関連疾患の治療および予防のための薬剤の製造における請求項１− １２または２５のポリペプチドの使用。３０．該疾患が１以上の血栓症、心筋梗塞、網膜血管新生、内皮損傷、異制御アポトーシス、異常細胞移動、白血球動員、免疫系活性化、組織線維症および腫瘍発生である、請求項２９の使用。