HU227509B1 - A method for the production of dicarboxylic acids - Google Patents

A method for the production of dicarboxylic acids Download PDF

Info

Publication number
HU227509B1
HU227509B1 HU0001997A HUP0001997A HU227509B1 HU 227509 B1 HU227509 B1 HU 227509B1 HU 0001997 A HU0001997 A HU 0001997A HU P0001997 A HUP0001997 A HU P0001997A HU 227509 B1 HU227509 B1 HU 227509B1
Authority
HU
Hungary
Prior art keywords
organism
acid
carbon source
anaerobic
succinic acid
Prior art date
Application number
HU0001997A
Other languages
English (en)
Inventor
Mark Donnelly
Cynthia S Millard
Lucy Stols
Nhuan Phu Nghiem
Original Assignee
Univ Chicago
Ut Battelle
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Univ Chicago, Ut Battelle filed Critical Univ Chicago
Publication of HUP0001997A2 publication Critical patent/HUP0001997A2/hu
Publication of HUP0001997A3 publication Critical patent/HUP0001997A3/hu
Publication of HU227509B1 publication Critical patent/HU227509B1/hu

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P7/00Preparation of oxygen-containing organic compounds
    • C12P7/40Preparation of oxygen-containing organic compounds containing a carboxyl group including Peroxycarboxylic acids
    • C12P7/44Polycarboxylic acids
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/20Bacteria; Culture media therefor
    • C12N1/205Bacterial isolates
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/0004Oxidoreductases (1.)
    • C12N9/0006Oxidoreductases (1.) acting on CH-OH groups as donors (1.1)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P7/00Preparation of oxygen-containing organic compounds
    • C12P7/40Preparation of oxygen-containing organic compounds containing a carboxyl group including Peroxycarboxylic acids
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P7/00Preparation of oxygen-containing organic compounds
    • C12P7/40Preparation of oxygen-containing organic compounds containing a carboxyl group including Peroxycarboxylic acids
    • C12P7/44Polycarboxylic acids
    • C12P7/46Dicarboxylic acids having four or less carbon atoms, e.g. fumaric acid, maleic acid
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12RINDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
    • C12R2001/00Microorganisms ; Processes using microorganisms
    • C12R2001/01Bacteria or Actinomycetales ; using bacteria or Actinomycetales
    • C12R2001/185Escherichia
    • C12R2001/19Escherichia coli
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02EREDUCTION OF GREENHOUSE GAS [GHG] EMISSIONS, RELATED TO ENERGY GENERATION, TRANSMISSION OR DISTRIBUTION
    • Y02E50/00Technologies for the production of fuel of non-fossil origin
    • Y02E50/10Biofuels, e.g. bio-diesel
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/8215Microorganisms
    • Y10S435/822Microorganisms using bacteria or actinomycetales
    • Y10S435/848Escherichia
    • Y10S435/849Escherichia coli
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/8215Microorganisms
    • Y10S435/822Microorganisms using bacteria or actinomycetales
    • Y10S435/853Lactobacillus

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Organic Low-Molecular-Weight Compounds And Preparation Thereof (AREA)

Description

A találmány tárgya eljárás dikarbonsavak előállítására, közelebbről egy fermentációs eljárás egy Escherichia coli törzs alkalmazásával, amely eljárás során nagy mennyiségben keletkeznek dikarbonsavak. mint almasav, fumársav és borosés származékaikat kiterjedten használják különösen mint olyan vegyszereket, amelyek a polimerek területén, az élelmiszer- és gyógyszeriparban és kozmetikumok előállítására alkalmazhatók. A borostyánkősav pl felhasználható olyan műanyag prekurzorok gyártására, amilyen az i ,4-bután-díoí /BDOZ, tetrahidrofurán és a gamma-butírolakton. A borostyánkösavból folyamatosan fejlesztenek ki űj termékeket, ideértve a poliészter kifejlesztését. A poliésztert a borostyánkősav és a BDO összekapcsolásával állítják elő. A borostyánkösav-észterek általában - új, „zöld” oldószerek lévén - képesek, arra, hogy felváltsák a károsabb oldószereket és prekurzofként szolgáljanak évente több millió kilogramm vegyszer előállításához, amelynek teljes piaci értéke több, mint 1 milliárd dollár.
Az említett karbonsavak, mint almasav, fumársav és borostyánkősav megújítható tápanyagokból (ebben az esetben fermentációs eljárásokkal) való előállítása alternatívát képvisel azokhoz az intenzívebb energia-felhasználást igénylő eljárásokhoz képest, amelyekkel nem reoíklizálható forrásokból termelnek Ilyen savakat.
A borostyánkósav-só köztítermékként képződik propionsav baktériumokkal végzett anaerób fermentációk esetében, de ezek az eljárások alacsony kitermeléseket és koncentrációkat eredményeznek.
Számos borostyánkősav-termelő organizmust különítettek el, igy a kérőzök gyomrából az anaerób Bacteroides ruminicola és Bacteroides amylophílus baktériumot. A kérőzök gyomrából származó organizmusok azonban a fermentációs eljárásokban általában nem stabilak. Egy borostyánkősavat termelő másik ismert organizmus az Anaeroblospinllum sucoiniproducens /A. suecmíproducens/, Több szabadalom született ezen organizmusnak borostyánkősav anaerob fermentációs eljárással valő előállítására történő felhasználása alapján. Az egyik ilyen szabadalmi leirés /US 5 143 834/ ezen organizmus fermentációs eljárásokban való alkalmazását tárgyalja borostyánkösav természetes úton, mérsékelt kitermelésekkel való előállítására, Az A, suceiniproóueens-t alkalmazó fermentációs eljárások azonban egy sor nehézséggel járnak. Az egyik probléma az, hegy az organizmus szigorúan anaorőb, tenyésztését oxigéntől teljesen mentes közegben kell végezni Ezen organizmus tenyésztése ipari méretű fermentációs özemben bonyolult és magas szakképzettségű munkaerőt Igényel. Az A. succlniproőucens még a laboratóriumi gyakorlatban is nehezen kezelhető és kedvezőtlen körtömények között degenerálódásra hajlamos, amely irreverzibilis. Az organizmust üzemi méretű fermentációs eljárásban még soha nem használták, Más szóval: ezzel a konkrét organizmussal kapcsolatban nem ismeretes üzemi léptékű fermentációs gyakorlat. Ezenkívül: magas bomstyánkösav kitermeléshez az organizmusnak külső széndioxid betáplálásra van szüksége: a fermentációs eljárás során tiszta széndioxid áramot kell, buborékolfatással, bevezetni a ferrnenflébe. Az A, sucoiniproducens bomstyánkösav és eeelsav elegyét termeli szukeínát/aoefát kb, 2 mól-arányban- Bcetsav magas koncentrációban való jelenléte a íermenflében növeli a borostyánkősav tisztítási költségeit. Az ecetét melléktermék termelése arra mutat, hogy a drága glukóz 1/3-a nem alakul át sxukcináftá. Az A, sucoiniproducens gazdatörzsről továbbá kimutatták, hogy nem nagyon ozmotoleráns, azaz nem visel el magas sókonoenfrációkaf és a termék még mérsékelt koncentrációban is gátolja a törzset. Az A, succiniprodueens alkalmazásának további hátránya hogy az inokulum táptalaj előkészítéséhez trlpfofán adagolásra van szükség és emellett 4 különböző oldatot kell összekeverni, amelyek közül az egyik a korrozív és toxikus R?S-t tartalmazza.
·»*>·>
¢. Φ φ > X φ φ X φ y X φ
ΦΦΦ X .*· y φφ φφ
Régóta Ismert, hogy az E. coli fermentációja során savkeverék képződik AJ.L, Stokes, X Bact. 57, p, 147-158, 1948/, Minden mól fermentált glukózból azonban csak 1,2 mól hangyasav, 0,.1-0,2 mól tejsav és 0,3-0,4 mól borostyánkősav keletkezik. A karbonsavak fermentáció útján való előállítására Irányuló kísértetek ezért arra az eredményre vezettek, hogy aránylag nagy mennyiségű tápanyag (pl. a glukóz) nem alakul át a keresett termékké,
Egy vizsgálat /3. Bact. 171, p. 342-348,1939/, amelyet a fermentativ NAO-hez kötött laktát-dehidrogenázra ,/ldh/ deficiens Izolált E, coli mutánsokkal végeztek, arra mutatott, hogy a növekedés anaerob körülmények között nem károsodik, ha nem áll fenn egyidejűleg píruvátdonníát-liáz /pfl/ deficiencia. Kettős - /pfl Idh/ - mutánsok nem képesek anaerob módon glukózon vagy más cukrokon növekedni még akkor sem, ha aoetátot adunk a táptalajhoz, míg a pfl mutánsok képesek orré. Az említett tanulmány nem tárgyalta vagy nem tette vizsgálat tárgyává a borostyánkősav vagy díkarhonsavak termelését.
Bár a szukcinát ion közös köztitermék több anaerób mikroorganizmus metabolizmusában, szükség van ezen a technikai területen egy olyan fermentációs eljárásra, amellyel gazdaságosan, nagy mennyiségben vagy magas kitermeléssel állítható elő a horostyánkősav, valamint más karbonsavak, pk az almasav és a fumársav. Az eljárás során célszerűen olcsó tápanyagokat és szubsztrátumokat kellene alkalmazni és a magas termelékenység érdekében a fermentáció sebességének és a forroentléhen a termék koncentrációjának magasnak kellene lennie,
Az előbbiekkel összhangban a találmány tárgya javított, praktikus és gazdaságos eljárás díkarhonsavak /borostyánkősav, almasav és fumársav/ magas kitermelésekkel való előállítására, amely mentes a technika állása szerinti hátrányoktól ás problémáktól.
V Φ*
A találmány szerint fermentációs eljárást hajtunk végre, két változatban, az említett E. coli mutáns alkalmazásával, az oxigén-bevitel, a glukóz-szintek, a pH és a tápanyag adagolási sebességek pontos meghatározása mellett.
A találmány egyik vonatkozása szerint az előbbi célokat egy olyan karbonsav előállítási módszerrel érjük el, amely a következő lépésekből áll;
i) egy szénforrást tartalmazó táptalajt beoltunk a biomasszával rendelkező, dikarbonsav-termelő organizmussal;
II) a dtkarhonsav-iermeiő organizmust stabil pH érték mellett aerob atmoszférában inkubáljuk az organizmus gyors növekedésének - ezzel a biomassza tömege növekedésének - elősegítésére;
III) az aerob atmoszféra fenntartására ellenőrzött módon oxigént vezetünk be;
iv) a megnővekedett biomasszával rendelkező organizmust tartalmazó farmentiébe ellenőrzött módon hozzáadjuk a szénforrást tartalmazó oldatot, mi mellett a szénforrás koncentrációját a kb, Q,5 g/l - kb. 1 g/t tartományban tartjuk:
v) az oxlgéntartaímü aerob atmoszférát megszüntetjük és anaerob atmoszférát alakítunk ki, ami az organizmus anaerob metahoh'zmusra való áttérését Idézi elő; és vi) a megnövekedett biomasszával rendelkező organizmust tartalmazó fermentléhez ellenőrzött módon a szénfonrást tartalmazó oldatot adunk, mi mellett a táptalajban a szénforrás koncentrációját a legalább 1 g/í értéken tartjuk.
Az organizmus anaerob mefabollzmusa segítségével a szónforrást ily módon dikarbonsavakká aiakitjuk át.
A találmány egy másik megvalósítási módja szerint a karbonsav előállítási módszer a következő lépésekből áll:
I) egy szénforrást tartalmazó táptalajt beoltunk a dikarbonsav-termelő, biomasszával rendelkező organizmussal;
fr fr XX fr frfrfr fr frfrfrfr %· fr fr « fr fr fr frXfr fr frXfr X fr fr frfrfr frfr Xfr.fr Xfr.
il) az organizmust stabil pH értékű közegben aerob atmoszférában Inkubáljuk az organizmus gyors növekedésének - ezzel a biomassza tömege növekedésének elősegítésére;
isi) az aeréb atmoszféra fenntartására ellenőrzött módon oxigént vezetünk be;
iv) ellenőrzött módon beadagoljuk a szánforrást tartalmazó oldatot, ml mellett a táptalajban a szénfwás koncentrációját a kb, 0,5 g/l - kb. 1 g/l tartományban tartjuk;
v) a megnövekedőit biomasszával rendelkező organizmust áfuisszuk egy anaerob atmoszférája termelő fermentorba, ami az organizmus anaerob metabollzmusra való áttérését idézi elő; és vi) ellenőrzött módon szénforrást tartalmazó oldatot adagolunk, ml mellett a termelő fermentorban a szénforrás koncentrációját legalább 1 g/l értéken tartjuk.
Az organizmus anaerob rnetabollzmusa segítségével a szénforrást ily módon dikarbonsavakké alakítjuk át
A találmány jobb megértése érdekében a következő leírásra és igénypontokra hivatkozunk, amelyeket a rajzokkal együtt kell ágyelembe venni; ez utóbbiak közül az 1, ábra az 1. példában leírt kisédet eredményeit mutatja be;
a 2. ábra a 2, példában leírt kísérlet eredményeit mutatja be;
a 3, ábra a 3. példában leírt kísérlet eredményeit mutatja be;
a 4. ábra a 4, példában leírt kísérlet eredményeit mutatja be;
az. 5, ábra az 5. példában leírt kísérlet eredményeit mutatja be;
a 8. ábra a 6. példában leírt kísértet eredményeit mutatja be;
a 7. ábra a 7, példában leírt kísérlet eredményeit mutatja be..
A találmány tárgya tehát új, praktikus ás gazdaságos eljárás borostyánkösav, almasav és fumársav nagy mennyiségekben való előállítására, a technika állása szerinti problémák kiküszöbölésére, egy ellenőrzött fermentációs folyamatban. A találmány szerinti fermentációs eljárásban az előbbiek szerint egy E. coli törzset - AFP-111 ~ alkalφ φ Φ φ Α φ Φ χ χ. «Φ mázunk Az AFP-111 - egy ΝΖΝ-111 Ε, coli mutáns - fakultatív- aerób organizmus. Az
E. coli nagyon könnyen kezelhető; molekuláris biológiája és fiziológiája jórészt Ismert. Az. eljárás javítása ezért könnyen elérhető a molekuláris biológia, az eljárás paramétereinek módosítása vagy mindkét eszköz segítségével. Az E. colit: továbbá kiterjedten használják fermentációs eljárásokban gyógyszerek és vegyszerek előállítására. Ezzel az organizmussal kapcsolatban igen sok üzemi léptékű tapasztalat áll rendelkezésre.
Az E. coli tehát borostyánkősav és ecetsav keverékét termeli, a borostyánkősav/ecetsav mólarány azonban még nem optimalizált körülmények között is 3 vagy ennél nagyobb. Ez az arany lényegesen növelhető. A fermenflé alacsonyabb ecetsav-koncentrációja lényegesen csökkenti a borostyánkösav tisztítási költségeit. .Az E. eoii-nek ezenkívül nem feltétlenül van szüksége külső széndioxiddal való ellátásra ahhoz, hogy magas borostyánkösav kitermelést érjünk el. A borostyánkösav kitermelés - széndioxid átbuborékoitatás nélkül - a termelés csúcs-periódusában azzal hasonlítható össze, amelyet A. suocíníproducens-szel széndioxid bevezetés mellett érünk ei.
A vad E. coli típus anaerob körülmények kőzett rendszerint fermentációs termékek keverékét eredményezi, amelyek között a borostyánkösav viszonylag kisebb mennyiségű. Ha azonban az AFP-111-ei anaerób körülmények között tenyésztjük, a borostyánkösav a nagyobb mennyiségben termelt metabolit. Az.AFP-1 11-ben egyetlen helyen spontán kromoszóma mutáció következett be és ennek eredményeként a törzs borostyánkősav, ecetsav és etanol keverékét állítja elő, ahol a fő termék a borostyánkösav. Az AFP-111-gyel elérhető maximális kitermelés 99 tömeg% borostyánkősav/glukóz tömeg. Az AFP-111 alkalmazása jelentősen csökkenti a borostyánkösav fennentációs úton történő előállítása költségeit,
A fermentációs eljárás E. coli-vei .2 lépésből áll Az elsőben az AFP-111 törzset aeröb körülmények között tenyésztjük, alacsony glukóz tartalmú táptalajban annak érdekében, hogy a ferment.orban magas sejtsűruseget érjünk el A találmány szerint a glukózt széntörrásként alkalmazzuk mind az organizmus tömege növesztéséhez, mind a dikarbonsavak előállításához. A kívánt sejtsőröség elérése után a második lépésben a levegő-bevezetést megszüntetjük és igy kényszerítjük az organizmust az anaerőb metabolizmusra való áttérésre, ami dikarbonsavak termelését eredményezi, Ideértve az almasavat, fumársavat és borostyánkősavat mint végterméket. A találmány szerinti egyik megvalósítási mód esetében ezt a kétfázisú eljárást egyetlen készülékben hajtjuk végre, .Az. E> colí-val végzett borostyánkősav előállítás biokémiai útja egy ser konverziós lépést foglal magában, A píroszőíösav először oxáíecetsawá, ez almasavvá, ez fumársavvá alakul át és a végtennék a borostyénkősav, Ezen savak közül iparilag az almasav, a fumársav és a borostyánkősav fontos. Az AFP-111 végtermékként, borostyánkösavat halmoz fel a közegben. Ha a keresett termék a fumársav, ki kell küszöbölnünk azt a gént /deléció/, amely a fumársav borostyánkősavvá való konverziójáért felelős enzimet kódolja és a kapott organizmus fumársavat termel borostyánkősav helyett. Hasonlóképpen: ha a keresett termák az almasav, ki keli küszöbölnünk azt a gént /deléció/, amely az almasav fumársawé való konverziójáért felelős enzimet kódolja és így almasavat termelő organizmust állítunk elő, A molekuláris biológiai módszerekre vonatkozó jelenlegi technika állása és az. E. coli teljes géntérképe ismeretében agy konkrét gén delécíója egyszerit feladat, Egy borostyénkősav előállítására Irányuló fermentációs eljárás könnyen alkalmazható almasav ill, fumársav előállítására, ha az almasavat ili. fumársavat termelő organizmust alkalmazzuk,
A teljes eljárás szakaszos betápláláson alapul. Ezen eljárás szerint egy tömény glukóz oldatot - amely híg kukoricalekvárt (áztatóvlzef) Is tartalmaz szerves nitrogén és növekedési faktor forrásként és a szervetlen tápanyagokat betápláljuk a fermentorba kellő sebességgel ahhoz, hogy a maradék glukóz koncentrációt 1 g/l vagy ennél alacsonyabb értéken tartsuk. Alacsony glukóz koncentrációra azért van fr fr frfr « frfrfr fr-fr X « fr X fr «Xfr fr-fr szükség, hogy megelőzzük az eoeísav nagy mennyiségben való képződését. Az ecetsav négy mennyiségben való képződése ez anaerob növekedési fázisban végül leállítja az organizmus növekedését és nem tudunk elérni magas sejtsörűséget Az. anaerob termelési fázisban magas ecetsav koncentrációk csökkentik a borostyánkősav termelődés sebességét és végül teljesen le is állíthatják azt Az AFP-111 alkalmazása jelentősen csökkentheti a fermentációs úton történő borostyánkősav termelés költségét.
Az alacsony glukóz koncentráció fenntartása kereskedelmi fermentorokban könnyen elérhető a glukóz adagolási sebesség számítógépes ellenőrzése révén /a kimenő gáz elemzése vagy az on-ilne glukóz elemzés alapján/, Ez nagyon elterjedt gyakorlattá vélt az Iparban,
Az anaerob fermentáció a legősibb anyagcsere-öt energia nyerésére olyan kiindulási anyagokból,, amilyen a glukóz. Anaerob sejtekben ez az egyetlen energiatermelő eljárás. A legtöbb fakultatív sejtben ez a kötelező első lépés a glukózlebontásban, amelyet a fermentációs termékek aerob oxidációja követ a fríkarbonsavciklusban.
A legelterjedtebben alkalmazott fermentációs típus a glikoiizis, amelyben utolsó előtti termékként piroszőiösav képződik. A plruvát kiválasztás attól függ, hogy az organizmusban milyen gének vannak jelen, Lakiát-dehidrogenáz enzim /Idh/ jelenlétében a glikoiizis azzal feleződik be, hogy a plruvát NADH és H' hatására laktatta redukálódik, Piruvát-dekarboxiléz és aikohol-dehidrogenáz jelenlétében etanol képződik. Pirnvál-formiát-liáz Zpfl/ jelenlétében a fermentáció acetát, etanol és fenéiét vagy hidrogén és széndioxid képződésével fejeződik be.
Ha a bakteriális genomban egy vagy több mutáció révén kiiktatódnak az organizmusnak a piruvát-lehonlásért felelős génjei, a plruvát felhalmozódik. Az anaerób módon tenyésztett E, coléban ezek a gének a pfl és a Idh, Az E, coll NZN-111 mindkét génben mutációt hordoz, amennyiben az E. coll kromoszóma DNS szekvenciában <«· φφ Φ
Λ «· * végbement változások hatására mind a ptl mind az Idh inaktlválódoti Így az NZN-111 fermentációs úton nem tenyészthető. Az AFP-111, amelyet további genetikai változtatások: segítségével az NZN-W-hö! éllitnltonk elő# anaerob körülmények között borostyánkösav, ecetsav és etanol keverékét termeli, amelyek közül a borosiyánkősav a több termék.
Azt találtok, hogy az NZN-111-ben történő további változások - amelyek spontán módon következnek be, vagy szelektív tenyésztés vagy plazmid transzformáció révén - eredményezik végső soron az AFP 111 megjelenését, amely fö termékként borostyánkősavat állít elő.
Spontán kromoszóma mutációk, amelyek az AFP-111 típusú jellemzőkhöz vezetnek, akkor fordulnak elő az NZN-111-ben, amikor sorozattenyésztési technikák során szelektív környezeti feltételeket alkalmazunk, Az első lépésben az NZN-111 biomasszát növeljük aerob körülmények közöli tápanyagokban gazdag táptalajon, amilyen a Luria Bertáin! /LB/ húsleves ; 0,5% élesztőkívonat, 1% Inpton, 1% NaCI, pH
7,5, Az elérni kívánt kitermelés kb. 10&~10u' seji/mt, Az inkubáíési periódus változhat ugyan, az 5-7 őrás időtartamú növekedési fázis 3?°C~on és standard nyomáson azonban biztosítja az előbbi koncentrációkat
Második lépésben a felhalmozódott biomasszát anaerób körülmények közé visszük át, glukózban gazdag táptalajban, csupán azon sejtek /mutánsok/ növekedésének megkönnyítésére, amelyek képesek pimvátot metabolizálni. Ügy járunk el pl,, hogy a sejteket 1,5%-os agar lemezeken szélesztjük, amelyek kb. 1-30 g/l - előnyösen 10 g/l - glukózt és 30 pg/ml kanamicint tartalmaznak. A kanamicin rezisztencia gént az NZN-111 laktát-dehidrogenáz génjébe visszük be. A tenyészeteket 24 órán át 37’C-on tenyésztjük ellenőrzött anaerób atmoszférában. Az egyik, jó eredményeket szolgáltató anaerób atmoszféra egy széndioxid/Wdrogén elegy, amelyet egy atmoszféra-ellenőrző berendezés alkalmazásával állítottunk elő /Becton-Dickrnson, oekeysviile, Maryland, GASPÁK*/..
* X ί
φ * ••φ ίο
Az inkubálási periódus során számos AFP-111 (kb, 2/W sejt) telep képződött és ezeknek kb. fele képes volt arra, hogy folyékony táptalajban növesztve a termékek keresett keverékét termelje,
Plazmiddal végzett transzformáció esetében, amikor az ΝΖΝ-111-et a pMDH13 plazmiddal transzformáljuk - ez tartalmazza a mdh gént a mutáns malátdehldrogenáz enzimhez - újra Indul a plruvát lebontás laktál termelése .közben. Ennek a transz-formánsnak <NZN-111{pMDH13)) a sorozattenyésztése a spontán kromoszóma-mutációt hordozó AFP-111-hez vezet. Az AFP-111 borostyánkősav, ecetsav és etanol mint fermentációs termékek keverékét termeli; ezek közöl a borostyánkősav a táptalajba bevitt glukóz tömegére vonatkoztatva max. 99 f% mennyiségben képződik. A pMDH13 kifejlesztése és a transzformációs eljárás hasonló ahhoz, amelyet W,E, Boernke et al, ír le /Archives of Biochemlstry and Blophysics 322, No. 1, p. 4352,1995/, amelyet e hivatkozás révén a leírás részévé teszünk.
Az itt leírt törzsek kísérleti értékelésére a sejteket aerób módon tenyésztettük glukóz mentes táptalajban /túrta Broth/, amíg 0,5-10 ODmo értéket nem értőnk el
Miután az AFP-111-gyel elértük ezt a megfelelő biomassza tömeget, a sejtekét lezárt fermentációs reaktorkamrába injektáltuk vagy más módon ebbe vittük, át és ebben tartottuk, A húslevest glukózzal vagy más megfelelő szénhidráttal - amilyen a xilóz, galaktőz vagy arabinóz - kevertük össze kh. 10-30 g/l között változó koncentrációban, A kapott keveréket atmoszféra-váltásnak vetettük alá, amelynek során anaerob körülményeket teremtettünk. Az atmoszféra-váltás végrehajtásának egyik eszköze egy olyan szellőztető berendezés, amelynek segítségével a széndioxidot környezeti levegőre cseréljük ki,
Mielőtt a keveréket bevezetnénk a fermentációs reaktorkamrába, a kamrába megfelelő mennyiségű puffer-kőzeget töltünk /MgCOs, CaCO3 vagy CaMg/CtW közel semleges pH fenntartására. Általában kh. 4-8 tömeg% megfelelő pufferkapaciiásü puffer-kőzeget alkalmazunk. Különösen jő eredményeket érünk el, ha a
Φ ψΜφ **·>*
X Φ Φ'*)Φ Φ ? φ φ φφφ * · * ' ** Μ putter-közeg szilárd alakban van jelen, így időben elnyújtott puffer-kapacítást biztosít a fermentációs közegnek.
Az előbbi eljárás magas böFostyánkősav-kítermeléseket eredményez. így pl 6:1 tömegaránya borostyánkősav/ecetsav termelés érhető el, 99%~os kitermeléssel. A borostyánkősav/ecetsav arány még tovább növelhető, ha a fermentációt hidrogéngáz jelenlétében végezzük, kb, 26-100% közötti Hs koncentrációk mellett. Ezek az eredmények ama mutatnak, hogy a technika állása szerinti organizmusoktól eltérően a mutáns AFP-111 redukáló-szerként exogén hidrogént használ fel. Ha pl. túrta húsleves, glukóz, puffer és hídrogén/széndioxid gázkeverék van jelen /a CO2 a pufféiból szabadul fel/: 9:1 körüli borostyánkősav/ecetsav arányok érhetők el. Ez az eredmény a glukóz keresett termékekké - nem kívánt, aeetát-termelő mellékreakciök nélkül - való lebontása kiválasztásának egy további előnyére mutat rá.
Az 1. táblázat a dikarbonsav-termékek eloszlását mutatja be a kiindulási W148S törzs /amely a Southern Illinois Uníversiiy-től is beszerezhető/, az NZ.N-111 és az AFP-111 esetében..
1, Táblázat
A kiindulási glukózra vonatkoztatott termék-kitermelés /mól6/»/
Termék Eredeti szülő WUSS Közvetlen szülő NZH411 ktutáns AFP-111
borostyánkősav 17 2 109
tejsav 24 0 0
piroszülösav 1 17 0
hangyasav 26 0 0
ecetsav 51 6 49
etanol _80 47_
ossz-kitermelés 193% 41 % 296 %*
* A moláris kitermelési értékek elméletben 200%-osak lehetnek, mivel 1 molekula glukóz valamennyi termékből 2 moh szolgáltat.
Ha 1 öö%-os széndioxid atmoszférát alkalmazunk, a borostyánkösav-tenmelés fokozódik: a borostyánkósav-konmnbádó megközelítheti a kb, 45 g/i értéket, a termelékenység kb, 1,6 g/l/őra értéket érhet el, a gramm borostyánkősav/gramm glukóz %-os kitermelés 99%-ot ér et a borostyánkősav/eeetsav tömeg arány pedig kb, 6,
Borostyánkősav akkor is termelődik, ha az IMZN-111-ben E, coli NAD-függő aímasav enzim van jelen /a maeA gén bevitele és indukciója hatására/. Ebben az esetben a pMEE2-1 indukálható plazmidot alkalmazzuk az almasav enzim génnek a transzformans NZN-111 (pMEE2-1)-ben való kifejeződése tehetővé tételére.
Az E. coli MCI 061-bői izolált genom DNS-t használtuk templátként az almasav enzim PCR-rel való klónozásához. Az E, coli MC1ö6t-et Hind III és Pst I restrikciós endonukleázzal emésztettük, és a kapott emésztett anyag méretet 1%-os TAE agaróz gélen határoztuk meg. Az almasav enzim gént. tartalmazó genom DNS méretét Southern Biot elemzés segítségével határoztuk meg a PbotoGene Nucteíc Acid Detection System-mel /Kát, 8192SAZ az előbbiekben leírtak szerint,
A primerek a gén ismert részleges DNS szekvenciáján alapultak: szenz:CGAAGAACAAGCGGAACGAGCAT; entiszenz; GGCAGCAGGTTCGGCATCTTGTC,
Ezeket a primereket 1 mtkmliterben /μ.Μ/ kb, 20 nanogramm /ng/ genom ONSsel keverjük össze standard 100 mikroílteres PCR reakcióban, amellyel az almasav gén várt 0,8 kilobázis nagyságú fragmentumát állítottuk elő. A PCR terméket Üiaex Gél Extrae-tion Kit /Qiagen, Inc., Chatswerth, CA/ alkalmazásával tisztítottuk és BioNick Labeiling System /GibcoBRL, Gaithersburg, Marytand/ alkalmazásával hiötiniieztük, A blotinilezett PCR terméket használtuk mintaként az E. coli DNS Southern Biot elemzésében, amelyet Hind lll-mnt és még egy másik endonukleázzal t φφ V Φφ *>
* Φ. X φ Φ hasítottunk, A maghatározás szerint az almasav enzim gén a 2,0-2,6. kb /Hind lil-mal és Pst i-gyel emésztett/ DNS fragmentumot tartalmazó régióban helyezkedik el, mikrogramm E, coll DNS-t Hind llbmal és Psi 1-gyel emésztünk és 1%-os preparativ TAE agaróz gélen szélesztünk. A 2,0-2,5 kb tartományba tartozó DNS fragmentumokat elkülönítjük és a öiaex Gél Extrec-tion Kit alkalmazásával tisztítjuk. A tisztított DNS fragmentumokat a pUG19 polilinker régiójába itgáljnk, amelyet Hind ill-maí és Pst í-gyei emésztettünk és garnélarák lúgos foszfafázzal hasítottunk. A ligáit anyagot használtuk tamplátként a teljes almasav enzim gén PCR reakcióban való amplifikálásához. Egy mikrollter ligációs keveréket használtunk tempiátként 1 μΜ GATGCCCCATGGATATTCAAAAAAGAGTGAGT szenz primőrrel, amely ez almasav enzim gént célozta meg és 0,25 μΜ
TTTTCCGAGTCACGACGTTG antíszenz primamal, amely a ligáit pUGIS DNS-t célozta meg. Az amplífikálásl paraméterek; denalurálás 94*C~on, hlhhélzáiés 55»C-on 1 percen át és extenzié ?2*C-on 3 percen át összesen 36 ciklusban. A PCR terméket 1%-os TAE agaróz gélen elemeztük és elkülönítettük az 1,8 kh fragmentumot, amelyet Qiaex Gél Exfracfion Kit alkalmazásával tisztítottunk. A PCR termék egy részét Bci-lel és Bgi-lel emésztettük annak kimutatására, hogy a tennék nem tartalmazza az almasav enzim gént. A PCR termék fennmaradó részét Pst 1-gyel és Neo Τ-gyei elbontottuk, gélből elkülönítettük, ismét tisztítottuk, majd ligáink a pTRGÜOa/ Pharmacia, Piscataway, New Jersey/ expressziós vektor polilinker régiójába, amelyet Neo 1-gyel és Pst 1-gyel hasítottunk. Az E. coll NZN 111 törzset a ligációs keverékkel standard módszerekkel transzformáltuk és a kapott telepeket /4 telep a kísérletből és 2 telep a kontroliból/ restrikciós fragmentum elemzéssel Xmn alkalmazásával screeneltük az almasav enzim gén jelenlétére /0,7 kb, 1,4 kb és 3,9 kb nagyságú fragmentumokra számítottunk/, A klónozott almasav enzim gént tartalmazó plazmidot pMEE3-nak neveztük el.
$ φ X φ * * φ *· X ** *** Α<
ΝΖΝ{ρΜΕΕ3)4 100 mi-es tenyészkőzeghen 1 éjszakán át tenyésztettünk és a plazmidot Qíagen Plasmid' Kit alkalmazásával izoláltuk. Az elkülönített plazmidot templátként használtak a PCR reakcióhoz, Egy éj prímért terveztünk egy alternatív Mterminálissal, amely 81 bázispárral lejjebb helyezkedett ei az. almasav enzim első klónozásakor alkalmazott phmerhez képest. Templátként 20 nanogramm plazmidot használtunk 1 μΜ
AGGATCCATGGAACCAAAACAAAAAC szenz primőrrel és
CGCCAGGGTTTTCCCAGTCACGAC antíszenz primerrel Az amplifikációs paraméterek a fent megadottakhoz hasonlók voltak, A PCR termák egy hányadát Ismét azonosítottuk restrikciós feltérképezéssel, Bd I ás Bd II alkalmazásával, és azt az eredményt kaptuk, hogy a termék tartalmazza az almasav enzim gént A PCR termék fennmaradó részét Pst 1-gyel és Nco 1-gyel elbontottuk, gélből elkülönítettük. Ismét tisztítottuk, majd ligáitok a pTRC99a/ Pharmacia, Píscataway, New Jersey/ expressziós vektor elkülönítettük, ismét tisztítottuk, majd ligáitok a pTRCOÜa/ Pharmacia, Plscatawey, New Jersey/' expressziós vektor poiiiinker régiójába, amelyet Nco 1-gyel és Pst 1-gyel hasítottunk. Az E. coli JM 109 törzset a ligáoíés keverékkel standard módszerekkel transzformáltuk és a kapott telepeket /3 kísérleti klón és 1 kontroll klón / restrikciós fragmentum elemzéssel screeneitük a keresett ínszert jelenlétére. Az almasav enzim gén ezen változatát tartalmazó plazmidot pMEE2-nak neveztük el ml - 1ÖÖ pg/rnl ampiciiíinl tartalmazó - L.B húslevest beoltunk 1,8 ml egy éjszakán át tenyésztett pMEE2 kultúrával. 2 órai növesztés után a 30 ml-nyi tenyészetet szétosztottuk három, 10-10 mi-es alkvotra. 0, 100 uM és 10 μΜ ízopropil-tíogalak-tozlddal ZIPTG/ Indukáltuk az enzlmakfivitásl Ö, 1, 2, 3 és 4 óra időpontban 2 mi-es mintát veszünk mindegyik tenyészetből. A fehérjét standard módszerek szerint különítjük el és az aktivitást a fent leírtak szerint határozzuk meg.
Az enzimtermelést az idő függvényében a 2, táblázatban muta fr φ >· φ φ χ Φ * φ >
2, Táblázat
PTG-vat LB húslevessel Indukált almasav enzim termelés
Idő (óra) l IPTG nélkül | 100 μΜ IPTG í ug/perc/mg fehérje 10 μΜ 1RTG pg/perc/mg fehérje
0 1 3,09 | 4,83 | 28,6 5,84
*3 ií. | 4,26 | 38,2 10,06
3 | 8,46 | 75.3 32,7
4 l 0,92 | 88,2 38,95
Két-két aerób tenyésztést végeztünk az N2 111{pMEE2)--vei és kontrollként N2M 111 (pTRC99a)-val 2 ml, amplcillint tartalmazó 18 táptalajban. A két tenyészet kézül ez egyiket 10 μΜ IFTG-vel indukáltuk. 3 éra múlva az ÖDseo 0,6-ről 4,8-re nőtt, A tenyészetek 1 ml-éval lezárt 58 ml-es fiolákat oltottunk be, amelyek 10 ml 18 táptalajt /összetétel: 20 g/l glukóz, 1 g/l acetát és 0,5 g szilárd MgCCV tartalmaznak. Az atmoszféra levegő:bídrogén:széndiox!d ™ 1:1:2, a nyomás a normát /atmoszfénkus/ nyomás kétszerese, A tenyészetből mintát vettünk azonnal, majd az Inkubálás során időközönként, 3?*Oon 100 forrt,/perc sebességgel végzek rézatés mellett. A 3. Táblázat a termék-kitermelés összehasonlítását szemlélteti nyers (pTRCOOa) vektorral ill, oMEE2-vel transzformáit NZN 111 esetében.
χ. ΦΦΦΧ ΦΧΦΦ
almasav enztm expreesziojara
Termék 1 Vektor g/I i maeA g/
borostyánkősav j 0,3 I 6,5
tejsav i 0,4 ! 0,4
eoetsav j 0 0
etanol Ϊ 0 ΐ Λ
A 3. táblázatban bemutatott adatok kb. 19-42 órás inkubálás! periódus eredményei.
Az almasav; a borostyánkősav prekorzora elvben előnyösebb végtermék, mint a borostyánkősav, mivel termelése eggyel kevesebb reduktív lépést Igényét Az almasav termelés elméleti sztöchiometdája: 1 mól glukóz és 2 mél CO2 alakul át 2 mél almasavvá. Ily mérten az almasav termelésé glukóz-veszteség nélkül mehet végbe. Fumársav, amely az almasav debldratációs terméke és a borostyánkősav prekurzora a redukciós sorban, ugyancsak keletkezhet Mind az almasav, minő a fumársav tehát melléktermék nélkül képződhet, de a nagyüzemi termelési folyamatokhoz a magasabb oldhatóság miatt az almasavat részesítjük előnyben.
Megfelelő baktériumoknak az almasav enzim termelődéséért felelés génnel /amilyen a maeA/ való transzformációja malát felesleghez vezethet.
A következő, a karbonsavak előállítására vonatkozó példákban alkalmazott vegyszerek;
w élesztőkivonat és Inpton /Difco/, • glukóz /A..E, Staley kukorioacfaldolgozé özem, London, Tn/( * híg kukoncslekvér /Α.Ε» Staley kukohcafelrtolgozé özem, London, Tn/,
ΦΦ X Φ XX ΦX * szervetlen vegyszerek /£.. Merck Science vagy d.T, Baker, reagens minőség/. Az alkalmazott berendezések:
L fermentor A/irtis/,
L fermentor /New Bronswok, Blottow 3000/, szivattyúk /Cole-Parmen Mester Ftexó pH mintavevők /Cole-Rarmer/, pH ellenőrzők /Cole-Farmer, Chem, Cadet/, oldott oxigén mérek /Cole-Parmer 01971-00/, oldott oxigén mintavevők /Ingeid/', autoklávok /Amsco, Eagle 3000/, rézéherendezések /New Brunswick/, kriogén fiolák /Colé Farmer/,
A glukóz-elemző a Yellow Springs Instrument Company terméke ZYS1 2700 Select/. Az OD mérésekhez használt spektrofotométer a Milton Roy /SFEC 21D/ gyártmánya.
Az AFP-111 E. coli törzset az Argonná National Laboratory-töl szereztük he. Ez a törzs az N2N-111 származéka. A törzstenyészet előállítására 1 g magnéziumkarbonátot AMgCO-y' bemérünk egy 250 ml-s lombikba, ezt lezárjuk egy hab-dugóval és 20 percen át 121*C~on aaloklávozzuk. Ezután előállítunk 500 ml, következő öszszetéteiü táptalajt:
Inpton 10 g/l, élesztőkivonat 5 g/l, glukóz 5 g/l, nátrium-klorid /NaCI/10 g/l, dikálíum-foszfát /KJ-IPOd 7 g/1, kálium-foszfát /ΚΗ ^ΡΟ,ν 3 g/l .
<· ν »
IS
A táptalajt 121*C-on 20 percen át auiöklávozzuk és hagyjuk lehűlni szoba mérsékletre. 50 ml táptalajt sterilen áfviszünk az első, a magnézium-karbonátot tartalmazó lombikba, A lombikot ezután beoltjuk egy teljes oltökacsnyl AEP-W-gyel egy, az. Argonná National Laboratory-ból származó ferdeagsrró!, A beoltott lombikot 25ö férd, /perc sebességgel 37°C-on főzőgépen Inkubáljuk.
Ezután 1 liter táptalajt állítunk elő, amelynek összetétele a következe: inpton 10 g/l, élesztökivcnat 5 g/l, glukóz 5 g/l,
HaCI 10 g/l,
O1PÖ4 7 g/l,
KH2PÖ4 3 g/l és magnézium-szulfát /MgSCW 0,2 g/l
A táptalajt 12PC-on 20 percen át eutoklávozzuk és hagyjuk lehűlni 350 ml táptalajt sterilen átviszünk egy 1 literes fennentorba.
A 250 ml-es lombik 16 órás inkubálása után a lombik teljes tartalmát sterilen átvisszük az 1 literes fermentorba. A fermentorf 37°C~on és pH 7,0-n működtetjük, A fermentor aljába levegőt buborékoltatunk és a keverő sebességét 500 íorrt,/pero vagy ennél magasabb értékre állítjuk be annak érdekében, hogy biztosítsuk az oxigén megfelelő átvitelét a ferrnenflébe és elkerüljük az oxigénhiányos állapotot. A pH értékét 7-en tartjuk egy pH-beállítö segítségével, amely szükség esetén egy szivattyút hoz működésbe és ez bázisos oldatot adagol a fermentorba,
A bázisos oldatot úgy sülijük elő, hogy 250 ml ionmentesített vizet bemérünk egy keverőrudat tartalmazó 500 ml-es kalibrált hengerbe, A kalibrált hengert befedjük rélegnyí autoklávezott papír fedővel és 12ΓΟ-οη 20 percen át eutoklávozzuk, majd hagyjuk lehűlni szobahőmérsékletre. Ezután 250 ml 30%-os ammőnlum-hidroxidot /NH^ÖH/ adagolunk. Az ammónia eltávozásának megelőzésére egy felső olajréteget alakítunk ki. Az olajat a hengerbe való bevitel előtt 12ΓΟ-οη 20 percen át autoklávozzuk. Az. oldatot mágneslapon keverjük. A kapott bázisos oldat 15%-os NH4OH oldat
Glicerin oldat előállítására 15 g glicerint bemérünk egy kis lombikba, amely 15 ml ionmentesített vizet tartalmaz. Egy kisméretű keverőrúdat viszünk be a lombikba, majd befedjük habdugóval és mágneses lapon keverjük 50%-os glicerin oldat előállítására. A glicerin oldatot 121’C-on 20 percen át autoklávozzuk, majd hagyjuk lehűlni szobahőmérsékletre.
Amikor a fermenforban a glukóz koncentráció kb, 1 g/1 értéket ér el, a fermeníor tartalmából 30 rnl-t sterilen kiveszünk és beadagolunk az 50%-os glicerint tartalmazó lombikba. Ezután az elegyet mágneses lapon keverjük. A keveréket ezután sterilen bemérjük kriogén fiolákba Ab, 1,2 ml/üola/, amelyeket csomagolás előtt a gyártó sterilezőit A fiolákat lezárjuk és -?CEC-ös hűtőben tároljuk. Ezek a fiolák szolgáltak ΑΕΡΙ 11 törzsíenyészeíként a kővetkező példákhoz.
Az inokulumot rázólombikban készítettük elő, A táptalaj összetétele a következő:
Inpton 10 g/l, élesztőkivonat 5 g/1, glukóz 5 g/l,
NaC110 g/l,
K.HPÖ4 14 g/l,
KH2PÖ4 5 g/I, /NH4/5SO4 2 g/l és
MgSG4 0,2 g/l.
ml táptalajt bemérünk egy 250 ml-es lombikba, A lomblkot lezárjuk, 12VC~on 20 percen át autoklávozzuk, szobahőmérsékletre hagyjuk lehűlni és beoltjuk 1 ml200 χχ-Φ φ φφφ
ΧΦΦ φφ X X X φ
X Φ ΐ.φ rci egy, a törzstenyészetet tartalmazó ampullából A tenyésztést 37:>C~on forck/pere mellett 16 erén át folytatjuk, A fermentációs táptalaj összetétele:
Inpton 10 g/l, élesztőklvonat S g/l. glukóz 5 g/l
NaC110 g/l, K2HPÖ41,4 g/1, KH2PÖ4 0,5 g/1, /NbUCSCC 2 g/1 és MgSÜU 0/2 g/l.
liter táptalajt állítunk elé, ezt 121X»on 20 percen át aufoklávozzuk és hagyjuk lehűlni szobahőmérsékletre, majd 860 ml-t átviszünk agy 1 literes fermentorba. A fermenforf a lombik teljes tártaiméval inokuíáljuk. /A fermentációs táptalaj alacsony, 10 g/1 alatti koncentrációban tartalmaz glukózt/. A fermentációt 37cC-on végezzük pH 7,0 értéken levegőztetés mellett.. A pH-t 15%-os NH4OH oldat szükség szehnti adagolásával a pH beállító segítségével levegőztetés közben 7,0 értéken tartjuk.. Ha a fermentlé kiindulási glukóz-tartalma kimerül, bekapcsolunk egy fápszlvaityüt tápoídatnak a fermentorba való adagolásához.
A tápoídat /1. oldat/ összetétele:. 250 g glukóz ós 50 g híg kukorlcalekvar 400 ml ionmentesitett vízben. Ezt az 1. oldatot 12VC-00 20 percen át autokíavozzuk és szobahőmérsékletre bűfjük, A 2, oldat előállításához a következőket:.
NaCI 0 g/n K.HFCu 7 g.'l KH2PO4 3 g/í< /NH4ÁSÖ4 22,5 g/l és MgSO.41 g/l
Φ X frfrfr frfrfrfr frfr * x frfrfr fr
Ϊ fr fr fr fr *
5« ** χ frfr ** frfr χχ·
108 ml ionmentesltett vízben oldjuk. Ezt az oldatot 121°C-on 20 percen át auloktávozzuk, szobahőmérsékletre hűljük és hozzáadjuk az 1. oldathoz. A kapott oldatot használjuk fel a fermentor táplálására.
A tápszívattyű sebességét kézi úton ellenőriztük annak érdekében, hogy a fermentorban a maradék glukóz koncentrációt 1 g/l vagy ennél alacs< tartsuk. Ha a glukóz koncentrációja 1 .g/l fölé emelkedett, a szivattyú sebességét csökkentettük. Ha a glukóz koncentrációja fúl magas, kb. 5 g/l vagy ennél magasabb, a szivattyút leállítottuk, amíg a glukóz koncentráció 1 g/l alá csökken. Az első 24 órában a fermentöít levegőztetjük aeréb viszonyok megteremtése érdekében, amely lehetővé tette a magas sejtsürüség eléréséig való növekedést. A 24, órában a 800 nm-en mért optikai sűrűség /O(W 24, Ekkor leállítjuk a levegő bevezetést, anaerob környezet megteremtése érdekében, hegy kényszentsük az organizmust a borostyánkősav termeléshez szükséges anaerob metabolizniusra. .Az eneeröb viszonyokat a kísérlet végéig fenntartottuk. Az anaerob fázisban a glukóz koncentrációt 1 g/l vagy ennél magasabb értéken tartottuk.
Az 1. példa eredményeit az 1, ábrán mutatjuk be és a 4. Táblázatban összegezzük.
Végső borostyánkösav koncentráció fg/ij összkitermelés (g hörosfyánkősav/g glukóz)
Kitermelés a termelő fázisban (g borostyánkősav/g glukóz)
Ossz-fermelékenység (g/iiter, óra)
Tennelékenység a termelő fázisban (g/titer, óra) Borostyánkösav koncentráció a 47, órában (g/liter) Kitermelés a 47. órában (g/líter; éra)
Végső borostyánkősav/acetát móiarány
40,5
0,54
0,95
0,21
0,24
17,9
0,38
1,36 •'ϊ ·>
*φ φ φ * * * -φ φ * φ φ φ X * φφφ X φ φ: Φ
Φ ΧΦ ¥Φ ,χ
A kísérletet pontosan ugyanúgy végeztük, mint az 1,. példában, azzal a különbséggel, hogy a levegőt 24 óra helyett 6 óra után kapcsoltuk ki. A levegő bevezetés leállítása időpontjában az optikai sűrűség /00W 6.
Az eredményeket a 2. ábrán mutatjuk be és az 5, tábk
Fermentációs idő (őre) i 24 | 47
Borostyánkősav koncentráció (g/l) | 16,0 29,20
Kitermelés (g/liter, ere) 1 0,67 0,02
ények arra mutatnak, hogy jelentős javulás következik be, ha korábban térünk át az aerob viszonyokról az anaerob viszonyokra a fermentorban.
Az ebben a példában alkalmazott fermentációs táptalaj összetétele.'
NaCI 2 g/l <
KHsRÜ4 1,3 g/l /NH4/2SO4 2 g/l
MgSÖ4 0,5 g/l,
CaCix ö,u g/l és
MnCI2 0,01 g/l.
Az 5 literes fermentorban 4 fermentációt végeztünk. Ezekben a kísérletekben a pH-t 0,2; 6,6; 7,0 és 7,4 értékre állítottuk be szükség esetén 5N NaOH adagolásával.
Az inokulumot rázőlombikban állítottuk elő ugyanilyen, pH 7,0 táptalajjal, A fennen··$
Φ
Χφ '*
I , , φφ * φ* φ* ί ♦ φ φφφ φΧ*Φ *
* * *·* torokban a sejteket aerób módon tenyésztettük levegő bevezetésével és 500 íonl/perc keverö-sebesség mellett, amíg az OD® 6 értéket ér el /kb. 5-6 óra/. A keverést ezután 250 lord./perc értékre csökkentjük és az öl váltjuk fel
A 3. példa eredményeit a 3, ébrén mutatjuk be és a 6. tébláz«ru«i zük. A 6, Táblázatban a különböző pH értékek mellett a 1ÖÖ. órára elért fermentációs eredményeket hasonlítjuk össze.
| pH i Bomsiyankősav kaicenkádó (g/l) í Ecetsav koncentráció (g/l)
I Felhasznált g glukóz i Á fenrsentlé térfogata /liter/ i Kitermelés (g borosiyánkősav/g glukóz) | Bomstyánkösav/acetát mólarány
6,2 6,0 7,0 7,4
‘7<3 O 35,7 30,1 27,5
3,3 6,3 6,3 6,0
123 224 133 164
4,3 4,4 4,5
0,67 0,66 0,60 0,67
3,0 3,4 2,4 2,3
Az eredmények arra mutatnak, hogy a borostyánkösav tág pH-tartományban, előnyösen kb. pH 6,6-7,0 értéken előállítható.
Ebben a példában az élesztőkivonatot és a triptont híg kukoricalekvárral helyettesítjük, amely a kukorica feldolgozó iparban nagyon olcsó melléktermék. A híg áztató levet úgy készítjük el, hogy az áztató víz pH-ját 50%-os HaOH-öal 7,0-ra állítjuk be. A * ¥ fr* © ifrfr fr-fr frfrfr x frfr*fr frfr fr * *.*'* -κ * V * * * Λ .Λ frfr « 99 szuszpendált szilárd anyagokat Whatman Nö.2 szűrőpapíron való szűréssel távolitjuk et A fermentációs kísérletekben a tiszta szürletet használjuk fel
Az Inokuiumot rázéiombikhan készítjük el. A táptalaj összetétele a következő; NaCI 20 g/l, &2HPÖ4 20 g/l,
KH2PÖ412 g/l, /NH4ASO4 4 g/l és MgSÖ4 0,4 g/f.
Az oldatot 1.2VC~on 20 percen át autokiávozzuk, Ezután egy 250 ml-es lombikba 30 ml big áztatőlé szürletet adagolunk, A lombikot lezárjuk. 121öC-on 20 percen át autokiávozzuk, majd hagyjuk szobahőmérsékletre hűlni. Ezután a lombikba 30 ml
1. oldatot /I. az 1, példát/ adagolunk. Ez a közeg tehát 50% híg áztató viz szürletet tartalmaz. A lombikot beoltjuk a glicerines törzstenyészetet tartalmazó ampullából 0,1 mi-rei /1 példa/ és 10 órán át 35aC»on 200 forct/perc mellett tenyésztjük.
Előállítunk egy 2. oldatot, amelynek összetétele a következő;
NaCI 20 g/l,
K2HPO4 2,8 g/l,
KW2PÖ4 1,2 g/l, /NH4/SSO4 4 g/l és MgSCU 0,4 g/1
Ezt az oldatot 121aC-cn 20 percen át autokiávozzuk és hagyjuk szobahőmérsékletre hűlni. Az 1 literes fermentorba beadagolunk 425 ml híg áztatőlé szűrletet, A fermentort 121°C~on 20 percen át autokiávozzuk és hagyjuk szobahőmérsékletre hűlni. Ezután az. 1 literes fermentorba beadagolunk 425 ml 2, oldatot, igy a fermentációs közeg 50% hig áztatőlé szürletet tartalmaz. A fermentort beoltjuk a rázólomhik teljes tartalmával. A fermentációt 37°C~on pH 7,0-n végezzük. A pH-t szükség esetén 1 <5 M nátrium-karbonát oldat adagolásával 7,0 érléken tadjuk. Ezt az oldatot előzőleg
ΧνΦ * «β X* Χ»φ*
ΦΦ Φ«Φ **
121*C~on végzett autöklávozással sterilizáltuk, A sejteket kezdetben aerób úton tenyésztjük oly módon, hogy 6 órán át levegőt vezetünk he a fermentorha. Ezen idő alatt mérjük az oldott oxigént. Az oldott oxigén színt esetenként a telítési érték 6%-a alá csökkent, de a levegő folyamatos bevezetése hatására a fermentorban még aerób viszonyok álltak fenn. Ezen időszak végén a levegő bevezetését leállítottuk annak érdekében, hogy az organizmus anaerób metabolizmusa segítségével meginduljon a borostyánkősav termelés. Ugyanekkor beindítottuk a szivattyút, amely kb. 590 g/l glukózt tartalmazó oldatot táplál a fermentorhe, A tápszivattyú sebességét kézi úton állítottuk be acélból, hogy a fermentlében a glukóz-koncentrációt 1 g/l vagy ennél nagyobb értéken tartsuk,
A 4. példa eredményeit a 4. ábrán mutatjuk he és a 7. táblázatban összegezzük. A 7, táblázat, a feorostyánkősav felhalmozódását mutatja be olyan fermentációs táptalajban, amely 50% híg áztató levet tartalmaz.
j Fennentáclós k lő /óra/ 1 24 48 99
I Borostyánkősav koncentráló (g/í) 1 11,9 25,5 51,9
| Kitermelés (g/lít er, óra) j 0,60 0,53 0,52
Ezek az eredmények arra mutatnak, hogy a borostyánkősav előállítható egy olcsó táptalajban, amelyben a drága élasztöklvonatot és tríptont az olcsó hig áztató lével helyettesítettük.
Ebben a példában a híg áztató lé koncentrációját mind a rázélombikban, mind a fermentációs táptalajban 25%~ra csökkentettük, A többi körülmény teljesen azonos ,SV φ Φφ Ν <Χ φ φ * ** ** φ Φ Φ ' ' zh volt a 4, példában megadottal. A kisebb mennyiségű híg áztató lével összefüggő térfogathiány kompenzálására vizet adagoltunk.
Az eredményeket az 5, ábrán mutatjuk be és a 8. Táblázatban összegezzük. A 8. táblázat a borostyánkősav felhalmozódását mutatja be olyan fermentációs táptalajban, amely 25% híg áztató levet tartalmaz.
Fermentációs idő /óra/ | 48 I 97 i
Öorostyánkősav koncentráció (g/l) | 20,9 35,7 | 46,3
Kitermelés (g/liter, őrá l 0,87 I 0,74 | I 0.48
Az eredmények arra mutatnak, hogy a borostyánkősav előállítható egy még gazdaságosabb közegben is, amelyben a híg áztató lé koncentrációját 25%-ra csökkentettük.
Ebben a példában a híg áztató lé koncentrációját mind a rázól· a fermentációs táptalajban 25%-ra állítottuk be és bázisként 1,5 M ammónlum-karhónától alkalmaztunk. A körülmények egyébként azonosak voltak a 4, példában leinAz eredményeket a 6, ábrán mutatjuk be és a 9. tábla amely a borostyánkösav felhalmozódását mutatja be olyan fermentációs táptalajban, amely 25% hig áztató levet tartalmaz és amelyben ammónium-karbonátoi tünk a pH szabályozására.
Φ ΑΦ s «·'-· -Síit Φ ii Φ Φ x*x ·. v. Φ * . •>..v V
9, Táblázat
Fermentációs idő (óra) ΐ .24 | 48 !
5 Borostyánkösav koncentráció (g/l) I 14,8 I 24,9
Kitermelés (g/IHer, óra) | 0,82 I 0,52
Az eredmények arra mutatnak, hogy a nátrium-karbonáttól különböző karbonátok, pl. az ammönium-karbonát, magnézium-karbonát stb. Is felhasználhatók a pH beállítására a borostyánkösav fermentációs eljárásban.
Ebben a példában 4 kísérletet írunk le, 2 kísérletben a híg áztató lé koncentrációját mind a rázólombikban, mind a fermentációs táptalajban 25%-ra állítottuk be és bázisként 2 M NaOH-t alkalmaztunk. A másik két kísérletben a híg áztató lé koncentrációja 5ö% és bázisként 15%-os NH«OH-í használtuk fel. Mindkét kísédetsomzaton beiül, amelyekben ugyanazt a bázist alkalmaztuk a pH ellenőrzésére, az egyik összeállításban tiszta széndioxidot buborékoltatok a fermentorba kb. 100 ml/perc sebességgel az anaerób fázisban,· a borostyánkösav anaerób meiabolizmus keretében való előállítására.
Az eredményeket a 7, ébrén mutatjuk be ás a 10, táblázatban Össze* lö, táblázat a borostyánkösav felhalmozódását mutatja be olyan fermentációs táptalajban, amely hig áztató levet tartalmaz és amelyben ammánlum-hidrcxidof és náfrium-bídroxidöt alkalmaztunk a pH beállításéra.
Φ »
Λ .♦
Φφχ *χ * φφ
X Φ χχ
10. Táblázat
Bázis; NaOH
QOg-dal Cögnélkül
Fermentációs Idő /éra/ 48 72 48 '72
Bomsíyánkosav konr^ntnádó (g/l) 17,5 23,9 8,0 6,0
Kitermelés (g/iíler, óra 0,38 0,33 0,13 0,08
Bázis: NH<OH
Cözdal CO? nélkül
Fermentációs idő /óra/ 48 72 48 52
22 8 84 4 ö 7 ÍS 4.
Kitermelés (g/lifer, óra 0,47 0,46 0,19 0,18
Az eredmények arra mutatnak., hogy karbonátnak a pH beállítására való alkalmazása esetén jelentős horostyánkősav termelés eléréséhez arra van szükség, hogy az anaerob fázisban széndioxid gázt buborékolfassunk be a farmentorba,
A találmány tehát eljárást biztosít almasav fermentációs ütőn való előállítására. Az almasav, a horostyánkősav prekurzora elvben jobb végtermék, mint a borostyánkősav, mivel előállítása eggyel kevesebb reduktív tépést Igények Az almasavtermelés elméleti szíoehlometríája; 1 mól glukóz és 2 mól széndioxid alakul át 2 mól almasavvá. Ily mórion az almasav-termelés glukóz-veszteség nélkül mehet végbe. Fumársav, amely az almasav dehidratádós terméke és a szűkeinél prekurzora a redukciós metabollzmusban, ugyancsak keletkezhet Almasav ás fumársav tehát egyaránt keletkezhet melléktermék képződése nélkül, de az almasavat a nagyüzemi termeléshez magasabb oldhatósága előnyösebbé teszi.
Φ X
A találmány tárgya lehet egy folytonos eljárás Is, amelynek során egy fermentort és egy ülepítő tankot alkalmazunk. Az ülepítő tank aljára kiülepedő sejteket visszaviszszük a fermentorba a sejtkoncenfráció nevelésére, ami viszont fokozza a termelékenységet, Megfigyeltük, hegy a sejtek a keverés leállítása után összecsapódtak és enjótük
A borostyánkősav ugyancsak előállítható folytonos fermentációs eljárásseb amelynek során egy fermentort és egy ultraszürö egységet alkalmazunk. Az ebben az egységben összegyűjtött sejteket visszaosszuk a fermentorba a sejlkoncentrácáó növelésére, amely viszont fokozza a termelékenységet. A fermentációs termék/ek/ ultraszűréssel való eltávolításé a fermentléböl csökkenti a termék gátló hatását és növeli a kitermelést.
A borostyánkősav előállítható olyan folytonos fermentációs eljárással is, amelynek során egy adszorbenst adagolunk és ezt folyamatosan eltávolítjuk a fermentorbót A fermentációs termék/ek/ eltávolítása a fermentléböl csökkenti a termék gátló hatását és növeli a kitermelést.
A borostyánkősav előállítható szakaszos eljárással is, amelynek során 2 sorba kapcsolt fermentort alkalmazunk. Az első fermentorban /tenyésztő fermentor/ az organizmust magas sejtsőrüségig tenyésztjük. A biomasszát ezután étvisszük a második fermentorha /termelő fermentor/,, amelyben anaerób körülményeket alkalmazunk a borostyánkösav termelésének elősegítésére. A tenyésztő fermentor eközben kitisztítható és felhasználható további biomassza előállításához, amelyet egy másik termelő fermentorba vihetünk át, Mivel a termelési idő sokkal hosszabb, mint tenyésztési idő, ogy tenyésztő fermentor több termelő fermentor biomasszával való ellátására használható fel.
Az előbbiekben a találmány jelenleg kitüntetettnek tekintett megvalósítási módjait mutattok be és irtuk le. A szakember számára azonban nyilvánvaló, hegy ezekben *<>
ΦΦΧΦ χ*ΦΦ Φ Φ φ
χχχ Φφ^ különböző változtatások ás módosítások hajthatók végre anélkül, hogy a találmány nak az igénypontok által meghatározott oltalmi köréből kik
ΦΦ X *
SS,$63/DE
POOGIte?
W, öklébe!'

Claims (16)

1. Eljárás karbonsavak előállítására, azzal jellemezve, hogy
I) egy szénforrást tartalmazó táptalajt beoltunk egy biomasszával rendelkező, karbonsav-termelő organizmussal;
II) az organizmust aerób atmoszférában inkubáljuk az organizmus gyors növekedésének - ezzel a biomassza tömege növekedésének - elősegítésére;
iii) az aerób atmoszféra fenntartására ellenőrzött módon oxigént, vezetünk be; ív) az organizmust ellenőrzött módon a szénforrást tartalmazó oldattal látjuk el, mimellett a táptalajban a szénforrás koncentrációját a 0,5 g/l - 1 g/i
v) az oxigéntartalmö aerób atmoszférát megszűntetjük és anaerób atmoszférát alakítunk ki, ami az organizmus anaerób metabolizmusra való áttérését Idézi elő;
vi) az organizmust ellenőrzött módon a szénforrást tartalmazó oldattal látjuk el, mimellett a táptalajban a szénforrás koncentrációját az 1 g/l vagy ennél nagyobb értéken tartjuk, és vlí) az organizmus anaerob metabolízmusa segítségével a szénforrást karbonsavakká alakítjuk át
2, Az 1, igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy organizmusként
Escherichla colit vegy Lacfebacillusokat alkalmazunk, s: <
3, Az M. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy ozmoíoleráns organizmusokat alkalmazunk, amelyek a metaboiízmus bármiféle gátlása nélkül k« szerves savak termelésére.
4, A 2. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy Escherichla colikéi olyan baktériumot alkalmazunk, amelyet a píruvát-formiát-líáz és a laktáf-dehidrecenáz gének nélküli szülő törzsből állítottuk elő.
SS.S-S3/0E »0001» 2Ö10. október * X «*«» * x XX X
X X y χ χ * > X χχ«χ χ χ <. * X X XX χ χ χ χ <
8. A 2. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy génmanipulált organizmust alkalmazunk, amelyben kifejeződik egy enzim és ez képessé teszi az organizmust a piruvát dlkarbonsawá velő átalakítására.
6. Az 5. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy olyan génmanipulált organizmust alkalmazunk, amelyben az almasav enzim fejeződik ki.
7, A 6. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy anaerob metabolizmus útján fötermékként borostyánkósavat, valamint ecetsavat és etanolt állítunk elő,
8. A 6. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy anaerőb metabolizmus útján fötermékként almasavat, valamint ecetsavat és etanolt állítunk elő.
9. A 8, igénypont szerinti eljárás, azzaí jellemezve, hogy anaerob mefabolizmus útján főtermékként fumársaval, valamint ecetsavat és etanolt állítunk elő.
10. Eljárás karbonsavak előállítására, azzal jellemezve, hogy
I) egy szénforrást tartalmazó táptalajt beoltunk egy biomasszával rendelkező, karbonsav-termelö organizmussal;
ii) az organizmust rögzített pH érték mellett aerób atmoszférában inkubáijuk az organizmus gyors növekedésének - ezzel a biomassza tömege növekedésének elősegítésére;
iii) . az. aeréb atmoszféra fenntartására ellenőrzőit módon oxigént vezetünk be;
ív) az organizmust ellenőrzött módon a szénforrást tartalmazó oldattal latjuk el, mimelleit a táptalajban a szénforrás koncentrációját a kb. 0,5 g/1 - kb. 1 g/1 tarv) a megnövekedőt! biomasszával rendelkező organizmust álvisszük egy anaerőb afmoszférájű termelő fermenforba, ami az organizmus anaerőb metabolizmusra való áttérését idézi elő;
ví) az organizmust ellenőrzött módon a szénforrást tartalmazó oldattal látjuk el, mimellett a táptalajban a szénforrás koncentrációját az 1 g/l vagy ennél nagyobb értéken tartjuk és
SS.5S3/OS FOÖOIW 2010. október »«'♦ 0 0 < .♦ * « V **#·
00CX 00 « vii) az organizmus anaerób metabolizmusa segítségével a szénforrást karbonsavakká alakítjuk át
11. A 18, igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy organizmusként Escherichia colit vagy Laotobaoillusokaf alkalmazunk.
12. A 10. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy ozmotoleráns organizmusokat alkalmazunk, amelyek a metabolizmus bármiféle gátlása nélkül képesek szerves savak termelésére.
13. A 11, Igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy Escherichia coliként olyan baktériumot alkalmazunk, amelyet a plruvát-formiát-líáz és a iaktát-dehidrogenáz gének nélküli szülő törzsből állítottunk elő.
14. A 10. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy génmanipulált organizmust alkalmazunk, amelyben kifejeződik egy enzim és ez képessé teszi az organizmust a piruvát dikarbonsavvá való átalakítására.
15. A 14. Igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy olyan génmanipulált organizmust alkalmazunk, amelyben az almasav enzim fejeződik ki.
18, A lő, igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy az organizmus anaerób metabolizmus útján főtermékként borostyánkösavat, valamint ecetsavat és etanolt állítunk elő.
17, A 16, igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy az organizmus anaerob metabolizmus útján fofermékként almasavat, valamint eoetsavat és etanolt állítunk elő.
18. A lő, igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy az organizmus anaerób metabolizmus útján főtermékként fumársavat, valamint ecetsavat és etanolt állítunk elő,
HU0001997A 1997-01-31 1998-01-30 A method for the production of dicarboxylic acids HU227509B1 (en)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US08/792,655 US5869301A (en) 1995-11-02 1997-01-31 Method for the production of dicarboxylic acids
PCT/US1998/001877 WO1998033930A1 (en) 1997-01-31 1998-01-30 A method for the production of dicarboxylic acids

Publications (3)

Publication Number Publication Date
HUP0001997A2 HUP0001997A2 (hu) 2000-10-28
HUP0001997A3 HUP0001997A3 (en) 2002-01-28
HU227509B1 true HU227509B1 (en) 2011-07-28

Family

ID=25157624

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
HU0001997A HU227509B1 (en) 1997-01-31 1998-01-30 A method for the production of dicarboxylic acids

Country Status (14)

Country Link
US (1) US5869301A (hu)
EP (1) EP1012323B1 (hu)
JP (1) JP3681404B2 (hu)
CN (1) CN1121500C (hu)
AT (1) ATE360084T1 (hu)
AU (1) AU724274B2 (hu)
BR (1) BR9806822B1 (hu)
CA (1) CA2278892C (hu)
DE (1) DE69837607T2 (hu)
DK (1) DK1012323T3 (hu)
ES (1) ES2285757T3 (hu)
HU (1) HU227509B1 (hu)
PT (1) PT1012323E (hu)
WO (1) WO1998033930A1 (hu)

Families Citing this family (86)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE10129711B4 (de) * 2001-06-22 2007-08-23 Forschungszentrum Jülich GmbH Verfahren zur fermentativen Herstellung von Pyruvat
US8183350B2 (en) 2002-05-04 2012-05-22 Acorda Therapeutics, Inc. Compositions and methods for promoting neuronal outgrowth
DE10220234B4 (de) * 2002-05-06 2013-05-23 Forschungszentrum Jülich GmbH Verfahren sowie Mikroorganismen zur mikrobiellen Herstellung von Pyruvat aus Kohlenhydraten sowie Alkoholen
WO2004017044A2 (en) * 2002-08-15 2004-02-26 Acorda Therapeutics, Inc. Chimeric protein
US7959914B2 (en) 2003-05-16 2011-06-14 Acorda Therapeutics, Inc. Methods of reducing extravasation of inflammatory cells
CA2525804C (en) * 2003-05-16 2017-04-25 Acorda Therapeutics, Inc. Use of chondroitinase abc enzyme for the treatment of cns injuries
AU2004247026B2 (en) * 2003-05-16 2009-09-24 Acorda Therapeutics, Inc. Proteoglycan degrading mutants for treatment of CNS
JP4469568B2 (ja) * 2003-07-09 2010-05-26 三菱化学株式会社 有機酸の製造方法
WO2005010182A1 (ja) * 2003-07-29 2005-02-03 Research Institute Of Innovative Technology For The Earth コリネ型細菌形質転換体及びそれを用いるジカルボン酸の製造方法
EP1672077B1 (en) * 2003-08-28 2015-01-21 Mitsubishi Chemical Corporation Process for producing succinic acid
EP1672067B1 (en) * 2003-09-17 2015-11-11 Mitsubishi Chemical Corporation Process for producing non-amino organic acid
JP4631706B2 (ja) * 2003-09-30 2011-02-16 味の素株式会社 発酵液からのコハク酸の精製方法
WO2005045049A1 (ja) * 2003-11-07 2005-05-19 Mitsubishi Chemical Corporation 有機酸アンモニウム溶液の製造方法
JP2005295998A (ja) * 2003-11-07 2005-10-27 Mitsubishi Chemicals Corp 有機酸アンモニウム溶液の製造方法
WO2005112986A2 (en) * 2004-05-18 2005-12-01 Acorda Therapeutics, Inc. Purifying chondroitinase and stable formulations thereof
CN1989239B (zh) * 2004-05-20 2013-07-10 味之素株式会社 生产琥珀酸的细菌和生产琥珀酸的方法
BRPI0510919A (pt) * 2004-05-20 2008-05-20 Ajinomoto Kk bactéria produtora de ácido succìnico e processo para produzir ácido succìnico
EP3130676A1 (en) 2004-08-27 2017-02-15 Rice University Mutant e. coli strain with increased succinic acid production
WO2006034156A2 (en) * 2004-09-17 2006-03-30 Rice University High succinate producing bacteria
JP4537862B2 (ja) * 2005-01-18 2010-09-08 財団法人地球環境産業技術研究機構 好気性細菌による高効率な有機酸の製造方法
EP3925996A3 (en) 2005-04-22 2022-04-20 Mitsubishi Chemical Corporation Biomass-resource-derived polyester and production process thereof
JP4380654B2 (ja) * 2005-04-22 2009-12-09 三菱化学株式会社 ポリエステル及びその製造方法
JP4380653B2 (ja) * 2005-04-22 2009-12-09 三菱化学株式会社 ポリエステル及びその製造方法
US20070111294A1 (en) * 2005-09-09 2007-05-17 Genomatica, Inc. Methods and organisms for the growth-coupled production of succinate
ES2393748T3 (es) 2005-09-26 2012-12-27 Acorda Therapeutics, Inc. Composiciones y métodos de uso de condroitinasa ABCI mutantes
BRPI0617491B1 (pt) * 2005-10-18 2021-04-27 Ajinomoto Co., Inc Processo para produção de ácido succínico
US7335066B2 (en) * 2005-12-16 2008-02-26 James A. Carroll Network connector and connection system
US7993888B2 (en) * 2006-02-24 2011-08-09 Mitsubishi Chemical Corporation Bacterium having enhanced 2-oxoglutarate dehydrogenase activity
EP1842843A1 (de) * 2006-04-04 2007-10-10 Basf Aktiengesellschaft Verfahren zur Herstellung eines Carbonsäurealkylesters
CN104962586A (zh) 2006-07-21 2015-10-07 希乐克公司 生物质转化***
CA3009034C (en) 2006-10-10 2020-08-18 Acorda Therapeutics, Inc. Compositions and methods of using chondroitinase abci mutants
WO2008091627A2 (en) * 2007-01-22 2008-07-31 Genomatica, Inc. Methods and organisms for growth-coupled production of 3-hydroxypropionic acid
LT2821494T (lt) 2007-03-16 2017-04-25 Genomatica, Inc. 1,4-butandiolio ir jo pirmtakų biosintezės būdai ir kompozicijos
KR101631719B1 (ko) * 2007-03-20 2016-06-24 유니버시티 오브 플로리다 리서치 파운데이션, 인크. 유효한 숙시네이트 및 말레이트 제조를 위한 물질 및 방법
DE102007019184A1 (de) 2007-04-20 2008-10-23 Organo Balance Gmbh Mikroorganismus zur Herstellung von Bernsteinsäure
DK2164975T3 (da) 2007-07-06 2012-05-29 Basf Se Fremgangsmåde til fremstilling af en koncentreret vandig glukoseopløsning af majs
US7947483B2 (en) 2007-08-10 2011-05-24 Genomatica, Inc. Methods and organisms for the growth-coupled production of 1,4-butanediol
WO2009045637A2 (en) * 2007-08-10 2009-04-09 Genomatica, Inc. Methods for the synthesis of acrylic acid and derivatives from fumaric acid
US8735112B2 (en) * 2007-11-20 2014-05-27 Dsm Ip Assets B.V. Dicarboxylic acid production in a recombinant yeast
FR2925068B1 (fr) * 2007-12-13 2010-01-08 Roquette Freres Procedes de production d'acide succinique
BRPI0722315A2 (pt) * 2007-12-28 2014-06-10 Roquette Freres Método de cultura microbiana em larga escala
JP2011509691A (ja) 2008-01-22 2011-03-31 ジェノマティカ, インコーポレイテッド 合成ガスまたは他のガス状炭素源およびメタノールを利用するための方法および生物体
EP2262901B1 (en) 2008-03-05 2018-11-21 Genomatica, Inc. Primary alcohol producing organisms
CN102066551B (zh) 2008-03-27 2013-10-09 基因组股份公司 用于产生己二酸和其他化合物的微生物
JP2011519561A (ja) 2008-05-01 2011-07-14 ジェノマティカ, インコーポレイテッド メタクリル酸の産生のための微生物
EP2304039B1 (en) * 2008-06-17 2019-08-21 Genomatica, Inc. Microorganisms and methods for the biosynthesis of fumarate, malate, and acrylate
CN107267562A (zh) 2008-07-08 2017-10-20 帝斯曼知识产权资产管理有限公司 通过在低pH下发酵生产二羧酸
US20100021978A1 (en) * 2008-07-23 2010-01-28 Genomatica, Inc. Methods and organisms for production of 3-hydroxypropionic acid
WO2010030711A2 (en) 2008-09-10 2010-03-18 Genomatica, Inc. Microorganisms for the production of 1,4-butanediol
DE102008051727A1 (de) 2008-10-17 2010-04-22 Organo Balance Gmbh Mikroorganismus zur Herstellung von Bernsteinsäure
WO2010057022A1 (en) * 2008-11-14 2010-05-20 Genomatica, Inc. Microorganisms for the production of methyl ethyl ketone and 2-butanol
AU2009327490A1 (en) * 2008-12-16 2011-07-28 Genomatica, Inc. Microorganisms and methods for conversion of syngas and other carbon sources to useful products
FR2941959B1 (fr) * 2009-02-12 2013-06-07 Roquette Freres Procedes de production d'acide succinique
JP2012522515A (ja) 2009-04-02 2012-09-27 ユニバーシティ オブ フロリダ リサーチ ファンデーション インコーポレーティッド コハク酸生産経路の工学処理
JP2012525156A (ja) 2009-04-30 2012-10-22 ゲノマチカ, インク. イソプロパノール、n−ブタノール、及びイソブタノールの産生のための微生物
US9017983B2 (en) * 2009-04-30 2015-04-28 Genomatica, Inc. Organisms for the production of 1,3-butanediol
JP5773990B2 (ja) 2009-05-07 2015-09-02 ゲノマチカ, インク. アジペート、ヘキサメチレンジアミン、及び6−アミノカプロン酸の生合成のための微生物及び方法
WO2010132845A1 (en) * 2009-05-15 2010-11-18 Genomatica, Inc. Organisms for the production of cyclohexanone
CN107384846B (zh) 2009-06-04 2021-08-10 基因组股份公司 生产1,4-丁二醇的微生物和相关方法
CA2764368C (en) * 2009-06-04 2017-08-01 Genomatica, Inc. Process of separating components of a fermentation broth
EP2440669A4 (en) * 2009-06-10 2013-08-28 Genomatica Inc MICROOGANISMS AND PROCEDURES FOR THE CARBON EFFECTIVE BIOSYNTHESIS MEK AND 2-BUTANOL
WO2011017560A1 (en) 2009-08-05 2011-02-10 Genomatica, Inc. Semi-synthetic terephthalic acid via microorganisms that produce muconic acid
EA026438B1 (ru) * 2009-08-27 2017-04-28 ДСМ АйПи АССЕТС Б.В. Способ ферментативного получения дикарбоновых кислот
JP2013504326A (ja) 2009-09-09 2013-02-07 ジェノマティカ・インコーポレイテッド イソプロパノールならびに第一級アルコール、ジオールおよび酸の共生成のための微生物ならびに方法
CN105441374A (zh) * 2009-10-13 2016-03-30 基因组股份公司 生产1,4-丁二醇、4-羟基丁醛、4-羟基丁酰-coa、腐胺和相关化合物的微生物及其相关方法
KR20180014240A (ko) 2009-10-23 2018-02-07 게노마티카 인코포레이티드 아닐린의 제조를 위한 미생물
WO2011066076A1 (en) 2009-11-25 2011-06-03 Genomatica, Inc. Microorganisms and methods for the coproduction of 1,4-butanediol and gamma-butyrolactone
WO2011071682A1 (en) 2009-12-10 2011-06-16 Genomatica, Inc. Methods and organisms for converting synthesis gas or other gaseous carbon sources and methanol to 1,3-butanediol
MX2012008738A (es) * 2010-01-29 2012-08-31 Genomatica Inc Microorganismos y metodos para la biosintesis de p-toluato y tereftalato.
US8048661B2 (en) * 2010-02-23 2011-11-01 Genomatica, Inc. Microbial organisms comprising exogenous nucleic acids encoding reductive TCA pathway enzymes
US8637286B2 (en) * 2010-02-23 2014-01-28 Genomatica, Inc. Methods for increasing product yields
US9023636B2 (en) 2010-04-30 2015-05-05 Genomatica, Inc. Microorganisms and methods for the biosynthesis of propylene
WO2011140171A2 (en) 2010-05-05 2011-11-10 Genomatica, Inc. Microorganisms and methods for the biosynthesis of butadiene
US20110306734A1 (en) 2010-06-02 2011-12-15 Bayer Materialscience Ag Thermoplastically processable polyurethanes based on succinic acid propionates
CN103038302B (zh) 2010-06-08 2014-07-09 由俄勒冈州高等教育管理委员会代表的俄勒冈州立大学 植物油基压敏粘合剂
MX2013001071A (es) 2010-07-26 2013-06-28 Genomatica Inc Microorganismos y metodos para la biosintesis de aromaticos, 2, 4-pentadienoato y 1, 3-butadieno.
EP2686293A1 (en) 2011-03-14 2014-01-22 Dow Global Technologies LLC Processes for producing terephthalic acid and terephthalic esters
CN102242074B (zh) * 2011-04-12 2014-08-06 叶春 一种兼性厌氧菌的筛选方法
US8580096B2 (en) 2011-09-29 2013-11-12 Uchicago Argonne, Llc Bioprocess utilizing carbon dioxide and electrodeionization
WO2013045546A1 (de) 2011-09-30 2013-04-04 Bayer Intellectual Property Gmbh Homogene extrudierte artikel aus thermoplastisch verarbeitbaren polyurethanen auf basis von polyesterdiolen aus bernsteinsäure und 1,3 -propandiol
AU2012376541B2 (en) 2012-04-09 2016-05-12 Avery Dennison Corporation Pressure sensitive adhesives based on renewable resources, UV curing and related methods
WO2013166075A1 (en) 2012-04-30 2013-11-07 Woods Hole Oceanographic Institution Cobalamin acquisition protein and use thereof
WO2013184602A2 (en) 2012-06-04 2013-12-12 Genomatica, Inc. Microorganisms and methods for production of 4-hydroxybutyrate, 1,4-butanediol and related compounds
WO2017192925A1 (en) * 2016-05-05 2017-11-09 William Marsh Rice University Improved microbial production of fats
CN110951660B (zh) * 2019-12-19 2021-12-03 江南大学 一株固定co2产苹果酸的大肠杆菌工程菌的构建及应用
CN114350718B (zh) * 2021-12-31 2024-06-07 安徽丰原发酵技术工程研究有限公司 一种发酵生产苹果酸的方法

Family Cites Families (15)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS5543759B2 (hu) * 1972-06-28 1980-11-07
US4190495A (en) * 1976-09-27 1980-02-26 Research Corporation Modified microorganisms and method of preparing and using same
JPS60114197A (ja) * 1983-11-25 1985-06-20 Agency Of Ind Science & Technol 微生物によるジカルボン酸の製造法
US4871667A (en) * 1984-11-26 1989-10-03 Agency Of Industrial Science & Technology Process for preparing muconic acid
US5143834A (en) * 1986-06-11 1992-09-01 Glassner David A Process for the production and purification of succinic acid
US5168055A (en) * 1986-06-11 1992-12-01 Rathin Datta Fermentation and purification process for succinic acid
EP0249773B1 (en) * 1986-06-11 1992-12-16 Michigan Biotechnology Institute A process for the production of succinic acid by anaerobic fermentation
US5182199A (en) * 1987-05-27 1993-01-26 Hartley Brian S Thermophilic ethanol production in a two-stage closed system
WO1990012888A1 (en) * 1989-04-27 1990-11-01 Biocontrol Systems, Incorporated Precipitate test for microorganisms
US5416020A (en) * 1992-09-29 1995-05-16 Bio-Technical Resources Lactobacillus delbrueckii ssp. bulgaricus strain and fermentation process for producing L-(+)-lactic acid
FR2702492B1 (fr) * 1993-03-12 1995-05-24 Rhone Poulenc Chimie Procédé de production par fermentation d'acide itaconique.
NZ267894A (en) * 1993-06-25 1997-10-24 Du Pont Enzymatic preparation of pyruvic acid
WO1995001449A1 (en) * 1993-07-01 1995-01-12 E.I. Du Pont De Nemours And Company An improved method of preparing glyoxylic acid/aminomethylphosphonic acid mixtures using a microbial double-transformant
US5521075A (en) * 1994-12-19 1996-05-28 Michigan Biotechnology Institute Method for making succinic acid, anaerobiospirillum succiniciproducens variants for use in process and methods for obtaining variants
US5504004A (en) * 1994-12-20 1996-04-02 Michigan Biotechnology Institute Process for making succinic acid, microorganisms for use in the process and methods of obtaining the microorganisms

Also Published As

Publication number Publication date
JP2000515389A (ja) 2000-11-21
EP1012323A4 (en) 2002-01-16
AU724274B2 (en) 2000-09-14
EP1012323A1 (en) 2000-06-28
DE69837607D1 (de) 2007-05-31
DE69837607T2 (de) 2007-12-27
HUP0001997A2 (hu) 2000-10-28
BR9806822B1 (pt) 2009-05-05
DK1012323T3 (da) 2007-06-18
CN1121500C (zh) 2003-09-17
ATE360084T1 (de) 2007-05-15
CA2278892C (en) 2009-02-24
US5869301A (en) 1999-02-09
PT1012323E (pt) 2007-05-31
CN1246155A (zh) 2000-03-01
AU6052398A (en) 1998-08-25
WO1998033930A1 (en) 1998-08-06
EP1012323B1 (en) 2007-04-18
CA2278892A1 (en) 1998-08-06
JP3681404B2 (ja) 2005-08-10
ES2285757T3 (es) 2007-11-16
BR9806822A (pt) 2000-05-09
HUP0001997A3 (en) 2002-01-28

Similar Documents

Publication Publication Date Title
HU227509B1 (en) A method for the production of dicarboxylic acids
AU724822B2 (en) A mutant E.coli strain with increased succinic acid production
CN101883853B (zh) 具有生产1,4-丁二醇能力的突变体和使用该突变体制备1,4-丁二醇的方法
WO2004043881A2 (en) A method to produce succinic acid from raw hydrolysates
CN111635898A (zh) 谷氨酸脱羧酶突变体及其在制备γ-氨基丁酸中的应用
CN110373370B (zh) 一种耦合atp再生***的催化体系及其在生产谷胱甘肽过程中的应用
KR20100109902A (ko) 대규모 미생물 배양 방법
CN110387379B (zh) 一种用于生产谷胱甘肽的重组大肠杆菌的混合培养工艺及其应用
CN113122488B (zh) 克雷伯氏菌工程菌及其生产甘油和二羟基丙酮的应用
JPH09508013A (ja) 乳酸桿菌属に表現型が密接に関係した桿菌属の細菌株、培養方法および使用
KR20010102256A (ko) L-소르보스의 제조 방법
CN117645985B (zh) 一种乙酰氨基葡萄糖-6磷酸磷酸酶突变体及其应用
Zeman et al. Enzyme synthesis of L-tryptophan
CN110872595A (zh) 抗酸表达盒及其在发酵产有机酸中的应用
CN113957073B (zh) 一种tkt基因启动子突变体及其在生产L-赖氨酸中的应用
CN115125180B (zh) 一种利用双途径产乙偶姻的重组运动发酵单胞菌及其构建方法与应用
RU2731289C2 (ru) Способ конструирования на основе бактерий рода Rhodococcus штамма-биокатализатора, обладающего нитрилазной активностью и повышенной операционной стабильностью, рекомбинантный штамм бактерий Rhodococcus rhodochrous, полученный таким способом, способ синтеза акриловой кислоты с использованием этого штамма в качестве биокатализатора
CN117304283A (zh) 一种mreC突变体及其在L-缬氨酸发酵生产中的应用
CN117802025A (zh) 一种生产丁二胺的重组大肠杆菌及其构建方法与应用
CN116640810A (zh) 一种赖氨酸生产方法、突变体及重组微生物与应用
MXPA99007104A (en) A method for the production of dicarboxylic acids
WO2023168233A1 (en) Genetically modified yeast and fermentation processes for the production of 3-hydroxypropionate
CN117737028A (zh) 一种β-1,3-半乳糖基转移酶突变体及利用该突变体制备乳糖-N-四糖的应用
CN118525102A (zh) 用于发酵制备邻氨基苯甲酸的葡萄糖和木糖的混合物
JP2016503650A (ja) Dl−アラニンを生産する遺伝子操作細菌、及び前記遺伝子操作細菌を用いることによってdl−アラニンを生産する方法

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A Lapse of definitive patent protection due to non-payment of fees