ES2340807T3 - Oligonucleotidos sinteticos utiles terapeuticamente. - Google Patents
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Abstract
Una composición que comprende una secuencia aislada de nucleótidos fosfodiéster sintéticos 3''-OH, 5''-OH de la SEQ ID NO: 45:gggagg y que además comprende un vehículo farmacéuticamente aceptable.
Description
Oligonucleótidos sintéticos útiles
terapéuticamente.
La presente invención se relaciona con una
composición de oligonucleótidos para tratar el cáncer.
El cáncer es una acumulación neta aberrante de
células atípicas, que pueden resultar de un exceso de proliferación,
una insuficiencia de muerte celular, o una combinación de las
dos.
La proliferación es la culminación de una
progresión de la célula durante el ciclo celular dando por resultado
la división de una célula en dos células. Las 5 fases principales
del ciclo celular son G_{0}, G_{1}, S, G_{2} y M. Durante la
fase G_{0}, las células son inactivas. La mayoría de las células
en el cuerpo, en cualquier momento, están en esta etapa. Durante la
fase G_{1}, las células, que responden a las señales de división,
producen el ARN y las proteínas necesarias para la síntesis del ADN.
Durante la fase-S (SE, fase-S
temprana; SM, fase-S media; y SL,
fase-S tardía) las células replican su ADN. Durante
la fase G_{2}, las proteínas se elaboran en la preparación para
la división celular. Durante la fase (M) mitótica, la célula se
divide en dos células hijas. Las alteraciones en la progresión del
ciclo celular ocurre en todos los cánceres y puede resultar de la
sobre expresión de los genes, la mutación de los genes reguladores,
o abrogación del punto de inspección de daño del ADN (Hochhauser D.
Anti-El cáncer Chemotherapeutic Agents 8:903,
1997).
Diferente de las células cancerosas, la mayoría
de las células normales no pueden proliferar indefinidamente debido
a un proceso llamado senectud celular. La senectud celular es una
respuesta de muerte celular programada que conduce a la detención
del crecimiento de células (Dimri et al. Proc. Natl. Acad.
Sci. USA 92:20, 1995). La lesión del ADN, la exposición de células
cancerosas del colon, pecho y ovarios en los inhibidores de
toposiomerasa y exposición de células cancerosas nasofaríngeas al
cisplatino se reportan para prevenir la proliferación de estas
células por inducción de la senectud (Wang et al. El cáncer
Res. 58:5019, 1998; Poele et al. Br. J. El cáncer 80:9,
1999).
Los oligonucleótidos sintéticos son secuencias
polianiónicas que se internan en las células (Vlassov et al.
Biochim. Biophys. Acta 1197:95, 1994). Se reporta que los
oligonucleótidos sintéticos se unen selectivamente a los ácidos
nucleicos (Wagner, R. Nature: 372:333, 1994), a las proteínas
celulares específicas (Bates et al. J. Biol. Chem.
274:26369, 1999) y a las proteínas nucleares específicas, para
inhibir la proliferación de células cancerosas (Scaggiante et
al. Eur. J. Biochem. 252:207, 1998).
Las secuencias sintéticas de 27 bases que
contienen guanina (G) y cantidades variables de timina (T)
(oligonucleótido GTn), en donde n es \geq1 o \leq7 y en donde
el número de bases es \geq20 (Scaggiante et al. Eur. J.
Biochem. 252:207, 1998), se reportan para inhibir el crecimiento del
líneas de células cancerosas por el enlace específico de la
secuencia a una proteína nuclear de 45 kDa, mientras el GTn, en
donde el número de bases es \leq20, se reporta que es inactivo
contra las líneas de células cancerosas (Morassutti et al.
Nucleosides y Nucleotides 18:1711, 1999). Se reportan dos
oligonucleótidos GT-ricos sintéticos de 15 y 29
bases con modificaciones aminoalquil 3', para formar
G-cuartetos que se unen a la nucleolina y para
inhibir la proliferación de líneas de células cancerosas (Bates
et al. J. Biol. Chem. 274:26369, 1999). La
TTAGGG-fosforotioato sintética de 6 bases, que
tiene una secuencia idéntica a aquella de la secuencia repetida del
telómero de mamífero, se describe para inhibir la proliferación de
células de linfoma de Burkitt in vitro e in vivo
(Mata et al. Toxicol. Applied Pharmacol. 144:189, 1997). Sin
embargo, se describe que la TTAGGG-fosfodiester
sintética de 6 bases, no tiene actividad
anti-telomerasa (US Patent No: 5, 643,890).
La muerte celular se lleva a cabo por
mediadores-inmunes que promueven la apoptosis, y por
inductores de apoptosis que directamente inician las rutas que
conducen a la muerte celular (Muzio et al. Cell 85:817, 1996;
Levine, A. Cell 88:323, 1997). La apoptosis es un proceso activo de
muerte celular caracterizado por cambios morfológicos distintivos
que incluye condensación de cromatina nuclear, contracción celular,
desintegración nuclear, vesiculación de la membrana plasmática, y
la formación de cuerpos apóptoticos unidos a la membrana (Wyllie
et al. Int. Rev. Cytol. 68:251, 1980). Una característica
típica molecular de la apoptosis es la degradación del ADN nuclear
de las células en fragmentos de longitud oligonucleosomal como el
resultado de la activación de las endonucleasas endógenas (Wyllie A.
Nature 284:555, 1980).
Las caspasas (proteasas
cisteina-aspartil-específicas) se
han implicado como enzimas claves en la ejecución de la etapa
tardía de la apoptosis. La familia caspasa consiste de al menos
catorce proteasas aspartil cisteina relacionadas. Todas las
caspasas contienen un motivo de sitio pentapéptido activo conservado
QACXG (donde X es R, Q o G) (Cohen G. Biochim. Biophys. Acta
1366:139, 1997). Un número de caspasas se sintetizan como
proenzimas inactivas que son activadas continuando con la división
en los sitios de división específicos de la caspasa (Cohen G.
Biochim. Biophys. Acta 1366:139, 1997) o como enzimas inactivas que
requieren de la asociación con moléculas reguladoras para la
activación (Stennicke et al. J. Biol. Chem. 274:8359,
1999).
Además de su papel en la apoptosis, las caspasas
se involucran en la activación y proliferación de los linfocitos B
y T, en la maduración de la citoquina durante la inflamación, en la
diferenciación de las células madre durante la eritropoyesis y en
el desarrollo de fibras de lentes (Fadeel et al. Leukemia
14:1514, 2000). Con respecto a los linfocitos B y T, la caspasa 3
se procesa durante la activación de los linfocitos B y de CD4 (+),
CD8 (+), CD45RA (+) y CD45RO (+) subconjuntos de los linfocitos T
(Alam et al. J. Exp. Med. 190:1879, 1999). Por otra parte,
la estimulación de los linfocitos T por mitógenos y por la
interleuquina-2 se asocia con la activación de la
ruta de la caspasa y con la división de PARP (Wilheim et al.
Eur. J. Immunol. 28:891, 1998). Con respecto a las citoquinas, la
actividad de la caspasa 3 es necesaria para la liberación de
IL-2 por los linfocitos T activados (Posmantur
et al. Exp. Cell Res. 244:302, 1998) y para el proceso y
maduración de la interleuquina-16 citoquina
pro-inflamatoria (Zhang et al. J. Biol. Chem.
273:1144, 1998). Con respecto a la eritropoyesis, la activación de
la caspasa se involucra en la regulación de la eritropoyesis y se ha
mostrado que modula GATA-1, una proteína reguladora
nuclear crucial para la maduración de los precursores eritroides (De
Maria, et al. Nature 401:489, 1999).
La citólisis es la destrucción completa o
parcial de una célula y se media por el sistema inmune. Los
macrófagos y monocitos activados producen moléculas bioáctivas que
incluyen, pero no limitan a las citoquinas. Las citoquinas,
incluyen, pero no limitan a, interleuquina (IL)-1,
IL-1beta, IL-6,
IL-10, IL-12, y
TNF-alfa.
IL-1beta reduce la sensibilidad
de la célula de la médula ósea a los fármacos citoreductivos, a la
radiación y a la depuración de la célula del tumor in vitro
con fármacos en transplante de médula ósea autólogo (Dalmau et
al. Bone Marrow Transplant. 12:551, 1993).
IL-6 induce la diferenciación de
la célula B, estimula la secreción de IgG (Taga et al. J.
Exp. Med. 166:967, 1987), induce la diferenciación de la célula T
citotóxica (Lee et al. Vaccine 17:490, 1999), promueve la
maduración del megacariocito (Ishibashi et al. Proc. Natl.
Acad. Sci. USA 86:8953, 1989) y funcionan ambos como un factor
anti-proliferativo (Mori et al. Biochem.
Biophys. Res. Comm. 257:609, 1999; Alexandroff et al.
Biochem. Soc. Trans. 25:270, 1997; Takizawa et al. Cancer
Res. 53:18, 1993: Novick et al. Cytokine 4:6, 1992) y como un
factor pro-proliferativo (Okamoto et al.
Cancer Res. 57:141, 1997; Okamoto et al. Int. J. Cancer
72:149, 1997; Chiu et al. Clin. Cancer Res. 2:215, 1996; Lu
et al. Clin. Cancer Res. 2: 1417, 1996) para las células
cancerosas.
IL-10 mejora la efectividad de
las vacunas en modelos de tumor murina (Kauffman et al. J.
Immunother. 22: 489, 1999) y favorece la expresión de respuesta
autoreactiva de la célula T anti-cáncer (Alleva
et al. Immunobiol. 192:155, 1995).
IL-12, sola y en combinación con
otras citoquinas, promueve la maduración de los leucocitos e induce
la secreción del interferón-gama. Se describe que
IL-12 tiene actividad anti-cáncer
(Stine et al. Annals NY Academy of Science 795:420, 1996;
Chen et al. Journal of Immunol. 159:351, 19977 que incluye,
pero no limita a, la activación de linfocitos-T
citolíticos específicos, activación de las células destructoras
naturales (NK) e inducción de las proteínas
anti-angiogénicas IP-10 y MiG.
TNF-alfa causa necrosis de los
tumores sólidos (Porter et al. Trends in Biotech. 9:158,
1991), sensibiliza las células cancerosas a la apoptosis inducida
por la irradiación gama (Kimura et al. Cancer Res. 59:1606,
1999) y protege las células precursor de la médula ósea de los
efectos de agentes antineoplásticos (Dalmau et al. Bone
Marrow Transplant. 12:551, 1993).
Sin embargo, la mayoría de las terapias
anti-cáncer previas al oficio, están dirigidas a la
inducción de la detención del ciclo celular, inhibición de la
proliferación, inducción de la apoptosis o estimulación del sistema
inmune, han probado ser menos que adecuadas para las aplicaciones
clínicas. Muchas de estas terapias son ineficientes o tóxicas,
tienen significantes efectos secundarios adversos, dan lugar al
desarrollo de la resistencia de medicamentos o inmuno
sensibilización, y se debilitan para el receptor.
Por consiguiente, existe una continua necesidad
de composiciones novedosas y métodos que inducen la detención del
ciclo celular en las células cancerosas, inhiben la proliferación de
células cancerosas, activan las caspasas en las células cancerosas,
inducen la apoptosis en las células cancerosas y estimulan la
producción de la citoquina por las células del sistema inmune.
La presente invención cumple a cabalidad esta
necesidad proporcionando una composición y método que comprende un
oligonucleótido sintético 3'-OH,
5'-OH de la SEQ ID NO: 45: gggagg y en donde la
secuencia induce una respuesta seleccionada del grupo que consiste
de la inducción de la detención del ciclo celular, la inhibición de
proliferación, activación de caspasas y la inducción de apoptosis
en las células cancerosas y la producción de citoquinas por las
células del sistema inmune. Una composición que comprende la
secuencia SEQ ID NO: 45 y un vehículo farmacéuticamente aceptable
se administra a un animal, que incluye un humano, que tiene cáncer
en una cantidad efectiva para tratar el cáncer en el animal. La
inesperada y sorprendente habilidad de la secuencia para inducir la
detención del ciclo celular, inhibe la proliferación, activa las
caspasas e induce la apoptosis y en las células cancerosas y de
estimular la producción de la citoquina por direccionamiento de las
células del sistema inmune una necesidad no lograda experimentada
durante un tiempo en los oficios médicos y proporciona un beneficio
importante para los animales, incluyendo humanos.
Por consiguiente, un propósito de la presente
invención es proporcionar una composición y un método efectivo para
tratar una enfermedad en un animal, incluyendo un humano.
Otro propósito de la presente invención es
proporcionar una composición y un método efectivo para tratar el
cáncer.
Otro propósito de la presente invención es
proporcionar una composición y un método que induce la senectud en
las células.
Otro propósito de la presente invención es
proporcionar una composición y un método que induce la detención del
ciclo celular en las células.
Otro propósito de la presente invención es
proporcionar una composición y un método que induce la detención del
ciclo celular en las células cancerosas.
Otro propósito de la presente invención es
proporcionar una composición y un método que inhibe la proliferación
de células.
Otro propósito de la presente invención es
proporcionar una composición y un método que inhibe la proliferación
de células cancerosas.
Otro propósito de la presente invención es
proporcionar una composición y un método que induce la apoptosis en
las células.
Otro propósito de la presente invención es
proporcionar una composición y un método que induce la apoptosis en
las células cancerosas.
Otro propósito de la presente invención es
proporcionar una composición y un método que induce la apoptosis en
las células cancerosas independientes de Fas.
Otro propósito de la presente invención es
proporcionar una composición y un método que induce la apoptosis en
las células cancerosas independientes de TNFR1.
Otro propósito de la presente invención es
proporcionar una composición y un método que induce la apoptosis en
las células cancerosas independientes de p53/p21.
Otro propósito de la presente invención es
proporcionar una composición y un método que induce la apoptosis en
las células cancerosas independientes de
p21/waf-1/CIP.
Otro propósito de la presente invención es
proporcionar una composición y un método que induce la apoptosis en
las células cancerosas independientes de p15^{ink4B}.
Otro propósito de la presente invención es
proporcionar una composición y un método que induce la apoptosis en
las células cancerosas independientes de p16^{ink4}.
Otro propósito de la presente invención es
proporcionar una composición y un método que induce la apoptosis en
las células cancerosas independientes de la caspasa 3.
Otro propósito de la presente invención es
proporcionar una composición y un método que induce la apoptosis en
las células cancerosas independientes del receptor
TGF-beta 1.
Otro propósito de la presente invención es
proporcionar una composición y un método que induce la apoptosis en
las células cancerosas independientes de la dependencia
hormonal.
Otro propósito de la presente invención es
proporcionar una composición y un método que induce la apoptosis en
las células cancerosas independientes de la resistencia de
medicamentos.
Otro propósito de la presente invención es
proporcionar una composición y un método que activa las caspasas en
las células.
Otro propósito de la presente invención es
proporcionar una composición y un método que activa las caspasas en
las células cancerosas.
Otro propósito de la presente invención es
proporcionar una composición y un método para tratar una enfermedad
autoinmune.
Otro propósito de la presente invención es
proporcionar una composición y un método para tratar una enfermedad
linfoproliferativa.
Otro propósito de la presente invención es
proporcionar una composición y un método para tratar una
infección.
Otro propósito de la presente invención es
proporcionar una composición y un método para tratar una
inflamación.
\global\parskip0.900000\baselineskip
Otro propósito de la presente invención es
proporcionar una composición y un método para modular la activación
de la célula T- o B-.
Otro propósito de la presente invención es
proporcionar una composición y un método para modular la maduración
de la célula madre.
Otro propósito de la presente invención es
proporcionar una composición y un método para modular la
eritropoyesis.
Otro propósito de la presente invención es
proporcionar una composición y un método para modular la
transcripción de los factores en las células.
Otro propósito de la presente invención es
proporcionar una composición y un método que potencia el efecto de
otros agentes terapéuticos en las células.
Otro propósito de la presente invención es
proporcionar una composición y un método que potencia el efecto de
agentes quimioterapéuticos en las células cancerosas.
Otro propósito de la presente invención es
proporcionar una composición y un método que potencia el efecto
antineoplástico de la radiación.
Otro propósito de la presente invención es
proporcionar una composición y un método que estimula la producción
de la citoquina por las células del sistema inmune.
Otro propósito de la presente invención es
proporcionar una composición y un método que estimula producción de
IL-1beta por las células del sistema inmune.
Otro propósito de la presente invención es
proporcionar una composición y un método que estimula la producción
de IL-6 por las células del sistema inmune.
Otro propósito de la presente invención es
proporcionar una composición y un método que estimula la producción
de IL-10 por las células del sistema inmune.
Otro propósito de la presente invención es
proporcionar una composición y un método que estimula la producción
de IL-12 por las células del sistema inmune.
Otro propósito de la presente invención es
proporcionar una composición y un método que estimula la producción
de TNF-\alpha por las células del sistema
inmune.
Otro propósito de la presente invención es
proporcionar una composición que es simple de preparar.
Otro propósito de la presente invención es
proporcionar una composición que es tóxica en forma mínima al
receptor.
Estos y otros objetivos, características y
ventajas de la presente invención serán aparentes después de una
revisión de la siguiente descripción detallada de la modalidad
revelada y las reivindicaciones anexas.
Fig. 1. Fluorescencia
[Fluo-3-AM] de células humanas de
leucemia T Jurkat incubadas con 0 \mug/ml y 100 \mug/ml de la
base 6 GT SEQ ID NO: 25 (comparación).
Fig. 2. Activación de la Caspasa 3 en células
humanas de leucemia T Jurkat incubadas sin 0 \mug/ml y 100
\mug/ml de GT SEQ ID NOs: 66, 67, 81, 82 y 83 medida
citométricamente (A) y colorimétricamente (B) (comparación).
Fig. 3. Activación de la caspasa en células
humanas de leucemia T Jurkat. (A) Activación de la Caspasa 3 en las
células incubadas con 0 \mug/ml y 100 \mug/ml de la base 6 GT
SEQ ID NO: 25; (B) activación (a) de la Caspasa 7 y contenido de
PARP (b) en las células incubadas con 0 \mug/ml y 100 \mug/ml de
la base 6 GT SEQ ID NO: 25. (comparación).
La presente invención proporciona una
composición que comprende una 3'-OH, 5'OH secuencia
sintética nucleótido fosfodiéster de la SEQ ID NO: 45: gggagg
en donde la secuencia induce una respuesta
seleccionada del grupo que consiste de la inducción de la detención
del ciclo celular, la inhibición de proliferación, activación de las
caspasas y la inducción de la apoptosis en las células cancerosas y
la producción de citoquinas por las células del sistema inmune. Una
composición que comprende la secuencia SEQ ID NO: 45 y un vehículo
farmacéuticamente aceptable se administra a un animal, incluyendo
un humano, que tiene cáncer en una cantidad efectiva para tratar el
cáncer en un animal, incluyendo un humano. La inesperada y
sorprendente habilidad de la secuencia para inducir la detención del
ciclo celular, inhibir la proliferación, inducir la apoptosis y
activar las caspasas en las células cancerosas y estimular la
producción de la citoquina por direccionamiento de las células del
sistema inmune una necesidad no lograda experimentada durante un
tiempo en los oficios médicos y proporciona un beneficio importante
para los animales, incluyendo humanos.
\global\parskip1.000000\baselineskip
Según se utiliza aquí la palabra
"secuencia" se refiere a un oligonucleótido sintético
3'-OH, 5'-OH de 2 a 20 bases que
comprende las bases A, C, G y T.
Según se utiliza aquí, las abreviaciones
"GT", "AG" "CG", "GG", "AGT" y "CGT"
se refieren a las secuencias que comprenden las bases sintetizadas
designadas en cualquier orden.
Según se utiliza aquí, la palabra
"respuesta" se refiere a la inducción de la detención del ciclo
celular, inhibición de proliferación, activación de caspasas e
inducción de apoptosis, en las células cancerosas y a la
estimulación de la producción de la citoquina por las células del
sistema inmune.
Según se utiliza aquí, las frases "tratamiento
terapéutico" y "cantidad efectiva a" se refieren a una
cantidad de una secuencia efectiva para inducir la detención del
ciclo celular, inhibir la proliferación, activar las caspasas e
inducir la apoptosis en las células cancerosas y estimular la
producción de la citoquina por las células del sistema inmune.
Según se utiliza aquí, las frases "modelo de
tumor en suspensión" y "modelos de tumor sólido" se refieren
a carcinomas o sarcomas primarios o secundarios.
Según se utiliza aquí, la frase
"quimioterapéutico" es cualquier agente aprobado por una
agencia reguladora de un país o un estado gubernamental o enumerado
en la Farmacopea U.S u otras farmacopeas usualmente reconocidas para
tratar el cáncer en un animal, incluyendo un humano.
Según se utiliza aquí, la palabra
"antineoplástico" se refiere a la prevención del desarrollo,
maduración, proliferación o dispersión de las células
cancerosas.
Según se utiliza aquí, la palabra
"potencializar" se refiere a un grado de sinergismo que es
mayor que la actividad del aditivo de cada agente.
Según se utiliza aquí, la palabra
"sinergismo" se refiere a la acción coordinada de dos o más
agentes. La administración de una cantidad efectiva de la secuencia
SEQ ID NO:45 de la presente invención a un animal, incluyendo un
humano, es un tratamiento terapéutico que previene, trata o elimina
una enfermedad que incluye, pero no limita a, cáncer, artritis
reumatoide, desórdenes linfo-proliferativo y asma.
Los cánceres incluyen, pero no limitan a, célula carcinoma
escamosa, fibrosarcoma, carcinoma sarcoido, melanoma, cáncer
mamario, cáncer pulmonar, cáncer colorectal, cáncer renal,
osteosarcoma, melanoma cutáneo, carcinoma de célula basal, cáncer
pancreático, cáncer de vejiga, cáncer de cerebro, cáncer de ovarios,
cáncer de próstata, leucemia, linfoma y metástasis derivados de
estos.
La efectividad terapéutica de una secuencia se
puede incrementar por métodos que incluyen, pero no limitan a,
modificación química de la base, estructura de azúcar o fosfato,
suplementar químicamente o amplificar biotecnológicamente las
secuencias utilizando plásmidos bacterianos que contienen las
secuencias apropiadas, formando complejos de las secuencias con
vehículos biológicos o químicos o acoplando las secuencias a los
ligandos o anticuerpos dirigidos al tipo de tejido o tipo de
célula.
Las composiciones que contienen la secuencia SEQ
ID NO: 45 y un vehículo farmacéuticamente aceptable se preparan
llevando uniforme e íntimamente en asociación la secuencia y el
vehículo farmacéuticamente aceptable. Los vehículos
farmacéuticamente aceptables incluyen vehículos líquidos, vehículos
sólidos o ambos. Los vehículos líquidos son vehículos acuosos,
vehículos no acuosos o ambos e incluyen, pero no limitan a,
suspensiones acuosas, emulsiones en aceite, emulsiones agua en
aceite, emulsiones
agua-en-aceite-en-agua,
emulsiones de sitio-específico, emulsiones de
larga-duración, emulsiones pegajosas,
microemulsiones y nanoemulsiones. Los vehículos sólidos son
vehículos biológicos, vehículos químicos o ambos e incluyen, pero no
limitan a, sistemas de vector viral, partículas, micropartículas,
nanopartículas, microesferas, nanoesferas, minibombas, extractos de
pared celular bacteriana y polímeros naturales o sintéticos
biodegradables o no-biodegradables que permiten la
liberación sostenida de las secuencias. Los métodos utilizados para
acomplejar una secuencia a un vehículo sólido incluyen, pero no
limitan a, adsorción directa a la superficie del vehículo sólido;
acoplamiento covalente a la superficie del vehículo sólido, tanto
directamente como vía una fracción de enlace; y el acoplamiento
covalente al polímero utilizado para hacer el vehículo sólido.
Opcionalmente, una secuencia se puede estabilizar por la adición de
polímeros no-iónicos o iónicos tales como
polioxietilensorbitan monooleatos (Tweens) o ácido hialurónico.
Los vehículos acuosos preferidos incluyen, pero
no limitan a, agua, solución salina y soluciones reguladoras
farmacéuticamente aceptables. Los vehículos
no-acuosos preferidos incluyen, pero no limitan a,
un aceite mineral y un aceite neutral y mezclas de estos.
Opcionalmente, los excipientes pueden ser incluidos
independientemente del vehículo farmacéuticamente aceptable
utilizado para presentar la secuencia a las células que responden.
Estos excipientes incluyen, pero no limitan a, antioxidantes,
soluciones reguladoras, y bacteriostáticos, y pueden incluir agentes
de suspensión y agentes de espesamiento.
Secuencia SEQ ID NO: 45 puede ser administrada
sola, o en combinación con otras modalidades terapéuticas que
incluyen, pero no limitan a, agentes quimioterapéuticos,
inmunoagentes terapéuticos, agentes antimicrobianos, agentes
antivirales o en combinación con terapia de radiación. Los agentes
quimioterapéuticos incluyen, pero no limitan a,
anti-metabolitos, lesiones del ADN,
desestabilización de microtúbulos, estabilización del microtúbulos,
despolimerización de la actina, inhibición del crecimiento,
inhibición de la topoisomerasa, inhibición de la
HMG-CoA, inhibición de la purina, inhibición de la
pirimidina, inhibición de la metaloproteinasa, inhibición de CDK,
inhibición de angiogénesis y diferenciación de los agentes de
mejora.
Las rutas de administración incluyen, pero no
limitan a, oral, tópica, subcutánea, transdérmica, subdérmica,
intra-muscular, intra-peritoneal,
intra-vesical, intra-articular,
intra-arterial, intra-venosa,
intra-dérmica, intra-craneal,
intralesional, intra-tumoral,
intra-ocular, intra-pulmonar,
intra-espinal, intra-prostática,
colocación dentro de las cavidades del cuerpo, inhalación nasal,
inhalación pulmonar, impresión en la piel y electrocorporación.
Dependiendo de la ruta de administración, el
volumen por dosis es preferiblemente cerca de 0.001 a 100 ml por
dosis, más preferiblemente cerca de 0.01 a 50 ml por dosis y la
mayoría preferiblemente cerca de 0.1 a 30 ml por dosis.
Preferiblemente, la cantidad de la secuencia administrada por dosis
es de aproximadamente 0.001 a 100 mg/kg, más preferiblemente de
aproximadamente 0.01 a 10 mg/kg y la mayoría preferiblemente de
aproximadamente 0.1 a 5 mg/kg. La secuencia SEQ ID NO: 45 o la
secuencia plus un agente terapéutico se puede administrar en un
tratamiento de dosis única, en tratamientos de dosis múltiples o en
infusión continua en un horario y durante un periodo de tiempo
apropiado a la enfermedad que se trata, la condición del receptor y
la ruta de administración. Por otra parte, la secuencia se puede
administrar antes, al mismo tiempo que, o después de la
administración del agente terapéutico.
La secuencia SEQ ID NO: 45 en combinación con un
agente quimioterapéutico se administra a un animal que tiene cáncer
en una cantidad efectiva para potenciar el efecto
anti-neoplástico del agente quimioterapéutico.
Preferiblemente, la cantidad de agente terapéutico administrado por
dosis es de aproximadamente 0.001 a 1000 mg/m^{2} o de
aproximadamente 0.01 a 1000 mg/kg, más preferiblemente de
aproximadamente 0.01 a 500 mg/m^{2} o de aproximadamente 0.01 a
500 mg/kg y la mayoría preferiblemente de aproximadamente 0.1 a 100
mg/m^{2} o de aproximadamente 0.1 a 100 mg/kg. La secuencia
particular y el agente terapéutico particular administrado, la
cantidad por dosis, el horario de dosis y la ruta de administración
se debe decidir por el practicante utilizando métodos conocidos por
aquellos de habilidad en el oficio y dependerá del tipo de cáncer,
la severidad del cáncer, la localización del cáncer y otros
factores clínicos tales como el tamaño, peso y condición física del
receptor. Además, se pueden emplear ensayos in vitro
opcionalmente para ayudar a identificar los rangos óptimos para la
administración de la secuencia y para la administración de la
secuencia más el agente terapéutico.
Aunque no quiere ser unido por la siguiente
hipótesis, se piensa que la secuencia SEQ ID NO: 45 de la presente
invención pertenece a una nueva familia de estructuras y que no
funciona como ARN antisentido, ADN, ADN que forma una triple hélice,
inhibidor de la telomerasa, activador de la transcripción o
inhibidor de la transcripción.
Los siguientes ejemplos además servirán para
ilustrar la presente invención sin, al mismo tiempo, sin embargo,
constituir ninguna limitación de estos.
\vskip1.000000\baselineskip
Las secuencias fosfodiéster y fosforotioato se
prepararon HUKABEL Scientific Ltd, (Montréal, Québec, Canada)
utilizando el sistema de síntesis del ADN EXPEDITE^{TM} 8900
automatizado (PersSeptive Biosystems, Inc., Farminghan, MA) y
Sigma-Genosys (Woodlands, TX) utilizando Abacus
Segmented Synthesis Technology. A menos que se indique de otra
manera, la secuencias utilizadas eran secuencias fosfodiéster. A
menos que se indique de otra manera, inmediatamente previo al uso,
la secuencias se dispersaron en agua desionizada esterilizada en
autoclave o en una solución reguladora farmacéuticamente aceptable
esterilizada en autoclave tal como, pero no limita a, solución
salina.
\vskip1.000000\baselineskip
Todas las líneas celulares se obtuvieron a
partir de American Type Culture Collection (ATCC, Rockville, MD) y
se cultivaron en el medio recomendado por la ATCC. La tabla 1
muestra las líneas celulares, sus orígenes y sus propiedades.
Las células se sembraron en microplacas de fondo
plano de 6 (1 ml/pozo), 24 (0.5 ml/pozo) o 96 (0.1 ml/pozo) pozos y
se mantuvieron a 37ºC en una atmósfera al 5% de CO_{2}. A menos
que se indique de otra manera, 2.5 X 10^{5} células/ml se
incubaron con 0 \mug/ml (control) y 100 \mug/ml (tratado) de
secuencias de 2 a 45 base que contienen A, C, G y T por 48 h.
La proliferación celular se midió utilizando
reducción de dimetiltiazol-difeniltetrazolio (MTT)
(Mosman et al. J. Immunol. Methods 65:55, 1983). MTT se midió
a una longitud de onda de 570 nm utilizando un lector
espectrofotométrico multiplaca (ELX800, Bio-TEK
Instruments Inc., Winooski, VT).
Las células T de leucemia humana Jurkat son un
modelo de célula neoplásica de suspensión humana resistentes a
multifármaco atípico. Las células Jurkat se incuban con secuencias
GT y CT de 27 bases (Tabla 2).
\vskip1.000000\baselineskip
Como se muestra en la Tabla 2, la proliferación
de célula T Jurist se inhibe por las secuencias GT probadas, pero no
por la secuencia CT probada.
Las células T Jurkat se incuban con secuencias
GT de 3, 6, 9, 12, 14, 15, 18, 21 y 24 bases (Tabla 3).
\vskip1.000000\baselineskip
Como se muestra en la Tabla 3, las secuencias GT
de 3, 6, 9, 12, 14, 15 y 18 bases inhiben la proliferación de célula
T Jurkat tan efectivamente como las secuencias GT de 21 y 24
bases.
Las células T Jurkat se incuban con secuencias
GT, AG, CG, GG, AGT y CGT de 6 bases (Tabla 4)
Como se muestra en la Tabla 4, las secuencias GT
de 6 bases inhiben la proliferación de célula T Jurkat. La GT SEQ ID
NO: 25 inhibe 60% de la proliferación y la AGT SEQ ID NO: 49 inhibe
45% de la proliferación. La comparación de la potencia relativa de
la GT SEQ ID NO: 25 y AGT SEQ ID NO: 49 utilizando el Software
PHARM/PCS-4 (Microcomputer Specialists,
Philadelphia, PA) muestra que la potencia de la GT SEQ ID NO: 25 es
3.4 veces aquella de la AGT SEQ ID NO: 49. Se reporta que la AGT SEQ
ID NO: 49-fosforotioato inhibe la actividad de
telomerasa e induce apoptosis en células de linfoma Burkitt (Mata
et al. Toxicol. Appl. Pharmacol. 144: 189, 997).
\newpage
Para determinar la actividad de telomerasa, los
extractos de 2 x10^{5} células T Jurkat se ensayan utilizando el
protocolo de amplificación de repetición telomérica PCR (TRAP)
(Roche, Laval, Québec, Canadá). En concentraciones entre 1 y 100
\mug/ml, la GT SEQ ID NO: 25-fosfodiéster muestra
entre 0 y 10% de actividad de anti-telomerasa,
mientras que la AGT SEQ ID NO: 49-fosforotioato
muestra entre 30 y 75% de actividad de
anti-telomerasa. La GT SEQ ID NO:
25-fosforotioato y la GT SEQ ID NO:
49-fosfodiéster no muestran alguna actividad
anti-telomerasa.
Las células T Jurkat se incuban con secuencias
GT de 2, 3, 4, 5, 6 y 7 bases (Tabla 5).
\vskip1.000000\baselineskip
Como se muestra en la Tabla 5, las secuencias GT
de 2, 3, 4, 5, 6 y 7 base inhiben la proliferación de célula T
Jurkat.
\vskip1.000000\baselineskip
Las células de leucemia promielocítica
HL-60 son un modelo de tumor humano de suspensión
mutado p53. Las células HL-60 se incuban con
secuencias GT de 6 bases (Tabla 6).
Como se muestra en la Tabla 6, las secuencias GT
de 6 bases inhiben la proliferación de célula
HL-60.
\vskip1.000000\baselineskip
Las células humanas de cáncer de mama
MCF-7 son un modelo de tumor sólido humano
dependiente de estrógeno, de caspasa 3 negativa. Las células
MCF-7 (5 x 10^{5} células/ml) se incuban con
secuencias GT de 3 y 6 bases (Tabla 7).
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
Como se muestra en la Tabla 7, las secuencias GT
de 6 y 7 bases inhiben la proliferación de célula
MCF-7.
\newpage
Las células de cáncer de próstata
PC-3 son un modelo de tumor sólido humano
independiente de andrógeno, mutado p53. Las células
PC-3 (5 x 10^{5} células/ml) se incuban con
secuencias GT de 3 y 6 bases (Tabla 8).
\vskip1.000000\baselineskip
Como se muestra en la Tabla 8, las secuencias GT
de 3 y 6 bases inhiben la proliferación de célula
PC-3.
\newpage
Las células de cáncer de próstata LNCaP son un
modelo de tumor sólido humano metastásico, independiente de
andrógeno, de receptor TGF-beta 1 negativo, las
células LNCaP (5 x 10^{5} células/ml) se incuban con secuencias GT
de 6 bases (Tabla 9).
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
Como se muestra en la Tabla 9, las secuencias GT
de 6 bases inhiben la proliferación de célula LNCaP.
\newpage
Las células de leucemia monocítica aguda
THP-1 son un modelo de tumor de suspensión humano
nulas p53. Las células THP-1 (1.6 X 10^{6}
células/ml) se incuban con secuencias GT de 6 bases (Tabla 10).
Como se muestra en la Tabla 10, las secuencias
GT de 6 bases inhiben la proliferación de célula
THP-1.
\vskip1.000000\baselineskip
Las células de cáncer de ovario
OVCAR-3 son un modelo de tumor sólido humano
metastásico, p21/waf-1/Cip eliminado, p53 mutado.
Las células OVCAR-3 (5 x 10^{5} células/ml) se
incuban con secuencias GT de 2, 6 y 18 bases y con una secuencia AGT
de 6 bases (Tabla 11).
Como se muestra en la Tabla 11, las secuencias
GT de 2, 6 y 18 bases y una secuencia AGT de 6 bases inhiben la
proliferación de de célula OVCAR-3.
\newpage
Las células de cáncer de ovario
SK-OV-3 son un modelo de tumor
sólido humano metastásico, p15ink4B eliminado, p16ink4 eliminado,
p21/waf-1/Cip eliminado, p53 mutado. Las células
SK-OV-3 (5 x 10^{3} células/ml) se
incuban con secuencias GT de 2, 6 y 18 bases (Tabla 12).
\vskip1.000000\baselineskip
Como se muestra en la Tabla 12, las secuencias
GT de 2, 6 y 18 bases inhiben la proliferación de célula
SK-OV-3.
\vskip1.000000\baselineskip
Se ha reportado que la modificación de
secuencias de fosfodiéster naturales mediante sustitución de un
átomo de azufre por un átomo de oxígeno no puenteado en uno o más de
los grupos fosfato incrementa la estabilidad de secuencias de
oligonucleótido a endonucleasas en fluidos biológicos y células
(Crooke et al. Anticancer Drugs 6: 609,1991).
Las células T de leucemia humana Jurkat (Tabla
13), células de cáncer de próstata humanas LNCaP (5 x 10^{5}
células/ml) (Tabla 14) y células humanas de cáncer de mama
MCF-7 (5 x10^{5} células/ml) (Tabla 15) se incuban
con secuencias GT de 6 bases, que tienen ya sea oxígeno
(fosfodiéster) o azufre (fosforotioato) como un átomo no puenteado
en el grupo fosfato.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\newpage
Como se muestra en las Tablas 13, 14 y 15, las
secuencias GT-fosfodiéster de 6 bases inhiben la
proliferación de células Jurkat T, LNCaP y MCF-7 más
efectivamente que las secuencias GT-fosforotioato de
6 bases.
\vskip1.000000\baselineskip
Las células T de leucemia humana Jurkat (Tabla
16) y células humanas de cáncer de mama MCF-7 (5 x
10^{5} células/ml) (Tabla 17) se incuban con la GT SEQ ID NO: 25
de 6 bases, en donde ya sea el oxígeno (fosfodiéster) o azufre
(fosforotioato) es el átomo no puenteado en el grupo fosfato.
\newpage
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\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
Como se muestra en las Tablas 16 y 17, la
sustitución de un átomo de azufre por un átomo de oxígeno no
puenteado en uno o más grupos fosfato de GT SEQ ID NO: 25 de 6 bases
resulta en una disminución significativa en la inhibición de
proliferacón de célula Jurkat T y MCF-7.
\vskip1.000000\baselineskip
Las células T de linfoma de murino
EL-4 son un modelo de tumor de suspensión. Las
células T de linfoma de murino EL-4 se incuban con
secuencias GT de 6, 18, 27 y 33 bases y con una secuencia ACG de 15
bases (Tabla 18).
\vskip1.000000\baselineskip
Como se muestra en la Tabla 18, las secuencias
GT de 6, 18, 27 y 33 bases y una secuencia ACG de 15 bases no inhibe
la proliferación de célula de murino EL-4.
Las células B de leucemia de murino A20 son un
modelo de tumor de suspensión. Las células B de leucemia de murino
A20 se incuban con secuencias GT de 6 bases (Tabla 19).
\vskip1.000000\baselineskip
Como se muestra en la Tabla 19, las secuencias
GT de 6 bases inhiben la proliferación de células de leucemia B de
murino A20.
\newpage
Las células de osteosarcoma de canino
D-17 y células de cáncer de glándula mamaria de
canino CF-51 son modelos de tumor sólido. Las
células de osteosarcoma de canino D-17 (5 x 10^{5}
células/ml) (Tabla 20) y las células de cáncer de glándula mamaria
de canino CF-51 (5 x 10^{5} células/ml) (Tabla 21)
se incuban con secuencias GT de 6, 9, 17, 27 y 33 bases y con una
secuencia ACG de 15 bases.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
Como se muestra en las Tablas 20 y 21, las
secuencias GT de 6, 9, 17, 27 y 33 bases y una secuencia ACG de 15
bases inhiben la proliferación de ambas células de canino
D-17 y CF-51.
\newpage
La inhibición de la proliferación de células de
cáncer humanas, de murino y de canino mediante GT SEQ ID NO: 25 de 6
bases se resume en la Tabla 22.
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\vskip1.000000\baselineskip
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Como se muestra en la Tabla 22, las células de
cáncer humanas son más sensibles que las células de cáncer de canino
y células de cáncer de murino para la inhibición de la proliferación
mediante GT SEQ ID NO: 25 6 bases.
\newpage
Las células T de leucemia humana Jurkat se
incuban con concentraciones subóptimas (5.0 \mug/ml) de secuencias
GT de 6 bases (Tabla 23).
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
Como se muestra en la Tabla 23, el uso
simultáneo de dos secuencias GT de 6 bases tiene un efecto sinérgico
en la inhibición de la proliferación de célula T Jurkat.
\newpage
Las células T de leucemia humana Jurkat se
incuban con 1.0 \mug/ml de GT SEQ ID NO: 25 de 6 bases y de GT SEQ
ID NO: 1 de 27 bases en la presencia de 0, 0.1, 1.0 o 10.0 \mug/ml
de 5-fluorouracilo o cisplatina (Tabla 24). El
5-fluorouracilo es un antimetabolito que interfiere
con la síntesis del ADN y ARN. La cisplatina es un agente de
alquilación que reticula el ADN e inhibe los precursores de ADN.
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\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
Como se muestra en la Tabla 24, la GT SEQ ID NO:
25 de 6 bases y la GT SEQ ID NO: 1 de 27 bases potencian el efecto
antineoplásico de .0.1 y 1.0 \mug/ml de
5-fluorouracilo en la proliferación de célula T
Jurkat y Sla EQ ID NO: 25 GT potencia el efecto antineoplásico de
0.1 y 1.0 \mug/ml de cisplatina en la proliferación de célula T
Jurkat.
Las células humanas de cáncer de mama
MCF-7 (5 X 10^{5} células/ml) se incuban con 1.0
\mug/ml de GT SEQ ID NO: 25 de 6 bases y de GT SEQ ID NO: 1 de 27
bases en la presencia de 0, 0.1, 1.0 o 10.0 \mug/ml de
5-fluorouracilo o tamoxifen (Tabla 25). El tamoxifen
es un antagonista de estrógeno.
Como se muestra en la Tabla 25, la SEQ ID NO: 25
de 6 bases potencia el efecto antineoplásico de 0.1 \mug/ml de
5-flurouracilo y de 0.1 \mug/ml tamoxifen en la
proliferación de célula MCF-7. La SEQ ID NO: 1 de
veintisiete bases no potencia la actividad antineoplásica de
5-fluorouracilo o de tamoxifen en la proliferación
de célula MCF-7.
\vskip1.000000\baselineskip
Las células T de leucemia humana Jurkat se
incuban con 1, 2, 3 y 4 repeticiones de
GG(GT)_{1}GG(SEQ ID NO: 25) de 6 bases (Tabla
26).
Como se muestra en la Tabla 26, la inhibición de
la proliferación de célula T Jurkat es 60% con GT SEQ. ID NO: 25 de
6 bases y disminuye con GT SEQ ID NO: 69 de 12 bases, GT SEQ ID NO:
69 de 18 bases y GT SEQ ID NO: 70 de 24 bases. La temperatura de
fusión (Tm) de la GT SEQ TD NO: 25 de 6 bases es 2.5ºC e incrementa
a 56.8ºC con GT SEQ ID NO: 69, a 76.3ºC con GT SEQ ID NO: 69 y a
86.3ºC con GT SEQ ID NO: 70.
\vskip1.000000\baselineskip
Se reporta que las secuencias derivadas de BCG
inhiben el crecimiento de tumor in vivo (Kataoka et al
Jpn. J. Cancer Res. 83: 244, 1992). Adicionalmente, se reporta que
el A-2 (SEQ ID NO: 72) y BCO A-4
(SEQ ID NO: 74), cuando se premezclan con células IMC y se inyectan
en ratones CDF-1, inhiben el crecimiento de tumor
IMC al 88% y 37% respectivamente.
Las células T de leucemia humana Jurkat se
incuban con secuencias de 45 bases derivadas de BCG (tabla 27).
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
Como se muestra en la Tabla 27, las secuencias
derivadas de BCG inhiben la proliferación de célula T Jurkat \leq
24%.
\vskip1.000000\baselineskip
Se determina la etapa de ciclo celular
utilizando un equipo comercial CYCLETEST^{TM} PLUS DNA (Becton
Dickinson). Brevemente, los núcleos de las células se obtienen al
disolver la membrana celular en un detergente no iónico, eliminar el
citoesqueleto de la célula y las proteínas naturales con tripsina,
digerir el ARN celular con RNasa y estabilizar la cromatina nuclear
con espermina. Se agrega yoduro de propicio a los núcleos celulares
y se analiza su fluorescencia en un citómetro de flujo equipado con
capacidad de discriminación de doblete electrónico (FACSCalibur,
Becton Dickinson, San Jose, CA). La acumulación de células en fases
G_{0}/G1, temprana S (SE), media S (SM), última S (SL) o fase
G_{2}/M del ciclo celular se analiza utilizando software MODFIT LT
(Verity Software House Inc., Topsham, MA).
Las células T de leucemia humana Jurkat (Tabla
28) y las células humanas de cáncer de mama MCF-7 (5
X 10^{5} células/ml) que crecen exponencialmente (Tabla 29) se
incuban durante 24 h con secuencias de 2, 6, 15,18, 27 y 45 bases
que contienen A, C, G y T. Las células se recolectan y se
centrifugan y se determina la etapa de ciclo celular.
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\vskip1.000000\baselineskip
Como se muestra en la Tabla 28, en las células T
Jurkat, las secuencias GT de 2, 6 y 27 bases inducen la detención en
la fase SE del ciclo celular, las secuencias CG y AGT de 6 bases, GT
de 18 bases y BCG A-1 de 45 bases inducen la
detención en la fase SM del ciclo celular y una secuencia AG de 6
bases induce la detención en la fase G_{0}/G_{1} del ciclo
celular.
\vskip1.000000\baselineskip
Como se muestra en la Tabla 29, en las células
MCF-7, secuencias GT de 2 y 6 bases inducen la
detención en la fase SE del ciclo celular, una secuencia AGT de 6
bases y una secuencia GT de 18 bases inducen la detención en la fase
SM del ciclo celular.
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Las células T de leucemia de célula humana
Jurkat (1 X 10^{6} células/ml) se incuban durante 24 h con GT SEQ
ID NO: 25 de 6 bases, SEQ ID NO: 79 AC de 6 bases complementarias y
la GT SEQ ID NO: 25 de 6 bases + SEQ ID NO: 79 AC de 6 bases. GT SEQ
ID NO: 25 y SEQ ID NO: 79 AC se hibridan al mezclar los
oligonucleótidos (1: 1) y al calentar durante 10 minutos a 65ºC.
Como controles, la GT SEQ ID NO: 25 y SEQ ID NO: 79 AC se calientan
durante 10 minutos a 65ºC (Tabla 30).
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Como se muestra en la Tabla 30, la GT SEQ ID NO:
25 de 6 bases induce la detención al fin de la fase SE del ciclo
celular, mientras que la SEQ ID NO: 79 AC de 6 bases complementaria
no tiene efecto en el ciclo celular. La hibridación de la GT SEQ ID
NO: 25 y SEQ ID NO: 79 AC neutraliza por la GT SEQ ID NO: 25
inducción de la detención del ciclo celular. Estos datos demuestran
que son efectivos, las secuencias de la presente invención podrían
ser monocatenarias.
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La redistribución de fosfatidilserina en la
membrana de plasma y liberación de la proteína de matriz nuclear
(NuMA) son características de las células que experimentan apoptosis
(Martin et al. J. Exp. Med., 182: 1545, 1995; Miller et
al. Biotechniques, 15: 1042,1993).
La redistribución de la fosfatidilserina en la
membrana de plasma durante la apoptosis se mide mediante citometría
de flujo utilizando una anexina V conjugada con FITC (BD Pharmingen,
San Diego, CA). La liberación de NuMA en el sobrenadante se
determina utilizando un equipo ELISA comercial (Oncogen/Calbiochem,
Cambridge, MA).
Las células T de leucemia humana Jurkat se
incuban con 50 \mum de secuencias GT de 3.4, 5, 6 y 7 bases, una
secuencia ACGT de 5 bases, secuencias de AG, GG, AGT y CGT 6 bases y
una secuencia GG de 7 bases. La Tabla 31 muestra el % de células en
apoptosis (positivo para teñido con
fosfatidil-serina/anexina V
(PS/A-V)) y % de NuMA liberado de las células.
Como se muestra en la Tabla 31, las secuencias
GT, AG, CG y AGT de 3, 4, 5, y 6 bases inducen apoptosis de las
células T Jurkat. Las secuencias ACGT de cinco bases y CGT y GG de 6
bases no inducen apoptosis de células T Jurkat.
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Se reporta que los incrementos en el calcio
intracelular (Ca^{2+})_{i} están asociados con la
inducción de apoptosis (Lam et al. Mol. Endocrinol. 7: 686,
1993). El (Ca^{2+})_{i} se sigue utilizando la prueba
fluorescente Fluo-3-AM (Cell
Permaant, Molecular Probes, Inc., Eugene, OR). Un incremento en la
fluorescencia Fluo-3-AM es
indicativo de un incremento en (Ca^{2+})_{L}
Las células T de leucemia humana Jurkat se
incuban durante 24 h con SEQ. NO: 25 GT de 6 bases. Las células se
recolectan mediante centrifugación, se suspenden en PBS que contiene
1% de FBS y se cargan con 10 \mum de
Fluo-3-AM durante 1 h a 37ºC. Se
mide la fluorescencia celular a 488 am de excitación y 530 nm de
emisión (detector FL1). Los datos se analizan en un FACSCALIBUR
utilizando el programa CellQUEST (Becton Dickinson).
Como se muestra en la Figura 1, la incubación de
las células T Jurkat con la GT SEQ ID NO: 25 de 6 bases origina un
88% de incremento en la fluorescencia celular, indicativo de un
incremento en (Ca^{2+})_{i}.
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La apoptosis se puede iniciar mediante ligandos
que unen a los receptores de superficie celular que incluyen, pero
no se limitan a, Fas (CD95) y factor de necrosis de tumor (TNF).
Ligando Fas que se une a Fas y TNF que se une al receptor TNF 1
iniciando la señalización intracelular que resulta en la activación
de proteasas de aspartil cisteína (caspasas). Las caspasas inician
la cascada proteolítica letal de ejecución de apoptosis asociada con
fragmentación de ADN nuclear, liberación de proteínas de matriz
nuclear (NuMA) y pérdida de contacto e sustrato celular.
Las células T de leucemia humana Jurkat (1 x
106/ml) se incuban con secuencias GT de 6 y 27 base (Tabla 32).
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Como se muestra en la Tabla 32, el % de
liberación de NuMA con la GT SEQ ID NO: 25 de 6 bases es mayor que
el % de liberación NuMA con GT SEQ ID NOs: 1, 2, 3 y 4 de 27
bases.
\newpage
Las células T de leucemia de célula humana
Jurkat se incuban durante 24 h con GT SEQ ID NO: 25 6 bases, SEQ ID
NO: 79 AC de 6 bases complementaria, y GT SEQ ID NO: 25 de 6 bases +
SEQ ID NO: 79 AC de 6 bases. La GT SEQ ID NO: 25 y SEQ ID NO: 79 AC
se hibridan al mezclar las secuencias (1: 1) y calentar durante 10
minutos a 65ºC. como controles, la GT SEQ ID NO: 25 y SEQ ID NO: 79
AC se calientan durante 10 minutos a 65ºC (Tabla 33). Se evalúa la
apoptosis como en el Ejemplo 23.
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Como se muestra en la Tabla 33, la GT SEQ ID NO:
25 de 6 bases induce apoptosis de células T Jurkat, mientras que la
SEQ ID NO: 79 AC complementaria no tiene efecto en la apoptosis. Más
aún, la hibridación de la GT SEQ ID NO: 25 y SEQ ID NO: 79 AC
neutralizan la inducción de apoptosis por SEQ ID NO: 25 GT. Estos
datos muestran que para ser efectivas, las secuencias de la presente
invención deben ser monocatenarias.
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Las células T de leucemia humana Jurkat se
incuban con secuencias ricas en GT o AC derivadas del gen de
Mycobacterium phlei (GenBank: Número de Acceso X99776). La
inhibición de la proliferación se mide mediante la reducción de MTT
como en el Ejemplo 3, la detención del ciclo celular se detecta
mediante citometría de flujo utilizado yoduro de propicio como en el
Ejemplo 21 y se evalúa la apoptosis mediante citometría de flujo
utilizando anexina-V-FITC como en el
Ejemplo 23.
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Como se muestra en la Tabla 34, las SEQ ID NOs:
81, 82 y 83, ricas en GT, inhiben la proliferación de, detención del
ciclo celular inducido en y apoptosis de células T Jurkat inducidas,
mientras que la SEQ ID NO: 15; rica en AC, no inhibe la
proliferación de, induce detención del ciclo celular en o induce
apoptosis de células T Jurkat.
\vskip1.000000\baselineskip
Las caspasas reconocen las tres secuencias
principales de sustratos de péptidos: 1)
Tyr-Val-Ala-Asp
(YVAD, caspasa-1, -4 y -5)(SEQ ID NO:84); 2)
Asp-Glu-Val-Asp
(DEVD, caspasa-2, -3 y -7) (SEQ ID NO:85); y, 3)
Ile-(Leu)-Glu-X-Asp
(I (L) EXD; caspasa-8 y -10) (SEQ ID NO:86)
(Thornberry et al. J. Biol. Chem. 272:17907, 1997). El
reconocimiento de secuencias en un objetivo de proteína resulta en
una proteólisis específica y limitada del objetivo, en un primer
ejemplo, la modulación de activación de caspasa 7 por caspasa 3 o,
con un segundo ejemplo, la degradación de objetivos de proteína
estructurales se incluyen, pero no se limitan, a láminas, como en un
tercer ejemplo, la activación de enzimas incluyen, pero no se
limitan a, PARP.
Construcciones de secuencia
NH_{2}-XXXD-COO-GT
se generan por conjugación química de una secuencia GT químicamente
protegida o de una secuencia AC químicamente protegida para un
péptido químicamente protegido seleccionado del grupo que consiste
de NH_{2}-YVAD-COOH (SEQ ID
NO:84), NH_{2}-DEVD-COOH (SEQ ID
NO:85) y
NH_{2}-IEGD-COOH(SEQ ID
NO:87) utilizando un oligonucleótido sintetizado con un brazo
separador amida 5'-C2 y técnicas de conjugación de
carboheximida soluble en agua de amida-carboxilo
estándar (Guy et al. J. Chromatography. B. Biomed. Sci. Appl.
706: 149, 1998). Los grupos amina reactivos y carboxilato reactivos
se protegen luego de la conjugación.
Las construcciones de secuencia de
péptido-GT (en adelante PGT) incluyen, pero no se
limitan,
NH2-YVAD-COO-GT;
NH2-DEVD-COO-GT; y,
NH2-I (L) EXD-COO-GT
se dividen en la función carboxilato en la función entre la
secuencia D y GT mediante enzimas que incluyen, pero no se limitan
a, caspasas, encimas asociadas con metástasis de cáncer, colagenasa
y metaloproteinasas. Tales resultados tal división resuelta en la
liberación de la secuencia GT que activa caspasa desde el PGT. El
incremento resultante en la actividad de caspasa intracelular puede,
por ejemplo, mejorar el efecto terapéutico de agentes
quimioterapéuticos en células neoplásicas resistentes a
multifármacos o la respuesta inmunológica a estímulos antigénicos
débiles.
Para determinar la activación de la caspasa, se
lavan células de control y células tratadas, se fijan, se
permeabilizan e incuban con un anticuerpo conjugado FITC que
reconoce la forma activa de la caspasa (Pharmingen, San Diego, CA)
utilizando las condiciones recomendadas por el fabricante. La
fluorescencia asociada con la caspasa 3 activa se analiza mediante
citometría de flujo en un FACSCALIBUR utilizando el programa
CellQUEST (Becton Dickinson). Alternativamente, la activación de la
caspasa, se determina colorimétricamente.
Utilizando un ensayo basado en la división de un
péptido específico de caspasa conjugado con la molécula indicadora
de color p-nitroanilida, que se puede cuantificar
espectrofotométricamente en una longitud de onda de 405 NM.
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(Para
comparación)
Se incuban células de leucemia, las células T
Jurkat durante 72 H con GT SEQ ID NO: 66 de 33 bases; GT SEQ ID NO:
81 de 11 bases (bases 1-11 de la GT SEQ ID NO: 66),
GT SEQ ID NO: 82 de 11 bases (bases 12-22 de GT SEQ
ID NO: 66), GT SEQ ID NO: 83 11 de base (bases 23-33
de GT SEQ ID NO: 66) y ACG SEQ ID NO: 67 de 15 bases. La caspasa 3
activa (17-22 kDa) se determina utilizando
anticuerpo FITC conjugado (Clon: C92-605) como en el
ejemplo 28.
Como se muestra en la figura 2 A, la GT SEQ ID
NO: 66 de 33 bases y GT SEQ ID NOs: 81, 82 y 83 de 11 bases, cada
una inducen procesamiento de procaspasa 3 inactiva para activar
caspasa 3, mientras que la ACG SEQ ID NO: 67 de 15 bases no induce
el procesamiento de una procaspasa 3 inactiva para activar la
caspasa 3.
También se determina la activación de la caspasa
3 colorimétricamente como en el ejemplo 28. Como se muestra en la
figura 2b, la actividad de la caspasa 3 en GT SEQ ID NO: 66 de 33
bases y GT SEQ ID NOs: 81, 82 y 83 de 11 bases, las células tratadas
fueron 105%, 73%, 100% y 60% mayores que aquellas en las células de
control, aunque en la ACG SEQ ID NO: 67 de 15 bases la activación de
la caspasa 3 en células tratadas fue aproximadamente igual que en
las células de control.
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Se incuban células de leucemia, células T Jurkat
durante 72 H con GT SEQ ID NO: 25 de 6 bases. La activación de la
caspasa 3 se determina colorimétricamente como en el ejemplo 28.
Como se muestra en la figura 3ª, la activación de la caspasa 3 en GT
SEQ ID NO: 25 de 6 bases, las células tratadas fueron 323% mayores
que en las células de control.
\vskip1.000000\baselineskip
Se incuban células de leucemia, células T Jurkat
durante 72 H con GT SEQ ID NO: 25 de 6 bases. Las células se lavan
3x con PBS, se lisan con 10 mM de HEPES, pH 7.5 que contiene 5 mM
MgCl_{2}, ditiotreitol, 1.5 nM de aprotilina, 10 mM, de leupeptina
y 2.5 \mum de ortovanadato, y se determina el contenido de la
proteína del lisato (Bradford J. Anal. Biochem.72: 248, 1976).
La división PARP y la caspasa 7 activada se
detectan mediante análisis de inmunotransferencia Western blot. El
lisato se mezcla con amortiguador Laemmli (Laemmli U. Nature 15:
680, 1970), se agita, y se calienta a 100ºC durante 4 min. Se agrega
50 \mug de cada línea y se separan las proteínas mediante
electroforesis en un 10% (caspasa) o un 17% (PARP) geles de
poliacrilamida geles de dodecilsulfatopoliacrilamida de sodio
(SDS-PAGE) aun voltaje constante de 100V durante
aproximadamente 1.5 H. las proteínas separadas se electrotransfieren
sobre una membrana PVDF. Se monitorea la carga potencial al igual
mediante teñido rojo ponceau mediante la membrana.
La membrana se bloquea durante la noche 4ºC con
un amortiguador que contiene 1% de solución salina
tris-amortiguada (2 mM Tris-HCl,
13.7 mM NaCl, pH 7.6, y 0.1% de monolaurato poletilenosorbitano
(TWEEN 20) (TBST) +5% de leche descremada en polvo. La membrana se
lava y se incuba durante un 1 h a RT con un anticuerpo monoclonal
IgG anti-caspasa 7 (Pharmingen) (diluido 1: 1000 en
TBST+1% BSA) o con un anticuerpo IgG anti-PARP
monoclonal de ratón (diluido 1: 1000 en TBST+1%BSA) (Pharmingen). El
IgG unido a la caspasa 7 o al PARP se detecta con IgG de anti ratón
de oveja conjugado con peroxidasa de rábano (diluido 1:1000 in
TBST+5% de leche descremada en polvo) (Pharmingen). Se desarrollan
inmunotransferencias utilizando un sistema de detección
quimioluminiscente mejorado (ECL, Amersham, Corp., Amersham,
UK).)
Como se muestra en la figura 3B, la base 6 GT
SEQ ID NO: 25, induce el procesamiento de las
pro-caspasas 7 inactivas (30 kDa) para activar la
caspasa 7 (19-20 kDa) y activar PARP a su producto
de degradación de 85 kDa inactivo.
\vskip1.000000\baselineskip
Se incuban células T de leucemia humana Jurkat
durante 72 h con NH2-YV
AD-CO-GG (GT) GG,
NH2-DEVD-CO-GG (GT)
GG, NH2-IEGD-COO-GG
(GT) GG,
NH2-YVAD-CO-AACCACAAGCCCAAC,
NH2-DVED-CO-AACCACAAGCCCAAC
y
NH2-IEGD-CO-AACCACAAGCCCAAC.
Se determina la activación de la caspasa 3 y la caspasa 7.
NH2-YVAD-CO-GT,
NH2-DEVD-CO-GT y
NH2-IEGD-COO-GT cada
una induce el procesamiento de la caspasa inactiva 3 para activar la
caspasa 3 y de inactivar la caspasa 7 para activar la caspasa 7,
aunque
NH2-YVAD-CO-ACG,
NH2-DVED-COACG y
NH2-IEGD-CO-ACG no
inducen el procesamiento de la pro-caspasa 3
inactiva para activar la caspasa 3 o de activar la caspasa 7 para
activar la caspasa 7.
Aunque no se desea estar limitado por la
siguiente hipótesis, se considera que la actividad de la caspasa
basal dentro de las células que contienen caspasa media la
liberación de las secuencias GT que activan la caspasa de las
construcciones
NH2-XXXD-COO-GT
mediante proteólisis/hidrólisis. Esto resulta en la amplificación
positiva de la actividad caspasa (niveles incrementados de caspasa 3
y caspasa 7) dentro de las células mediante las secuencias GT que
activan la caspasa liberada.
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A menos que se establezca otra cosa, se incuban
1 x 10^{6} células con 100 \mug/ml de cada una de las secuencias
probadas durante 48 h a 37ªC en 5% de CO_{2}. La producción de
citocinas IL-6, IL-10,
IL-12, IL-1beta y
TNF-alfa se determinan en pg/ml en 100 \mul de
sobrenadante de cultivo utilizando el ELISA comercial adecuado
(BioSource, camarillo, CA). El Elisa IL-12 mide
tanto el complejo IL-12 p70 como la sub unidad p40
libre. Los resultados se expresan como el incremento en "veces"
(x) la producción de citocinas mediante células tratadas comparadas
con células de control.
Se incuban células de leucemia monocítica aguda
humana THP-1 con las secuencias GT base 2, 3,6,
9,12, 14, 15 y 18 se determina la producción IL-6 de
citocina (Tabla 35).
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Como se muestra en la Tabla 35, las secuencias
GT de 2, 3, 6, 9, 12, 14, 15 y 18 bases incrementa la producción de
células THP-1 de la citocina
IL-6.
Las células de leucemia monocítica aguda humana
THP-1 se incuban con secuencias GT, AG, CG, GG, AGT
y CGT de 6 bases y se determina la producción de las citocinas
IL-12 y IL-6 (Tabla 36).
Como se muestra en la Tabla 36, las secuencias
GT, AG, CG, GG, AGT y CGT de 6 bases incrementan la producción de
célula THP-1 de las citocinas IL-12
y IL-6.
La Tabla 37 resume la inducción de la síntesis
de IL-12 y IL-6 mediante secuencias
de 6 bases.
Las secuencias derivadas de BCG
A-3 (SEQ ID NO: 73), A-4 (SEQ ID NO:
74), A-6 (SEQ ID NO: 75), A-7 (SEQ
ID NO: 76), M3 (SEQ ID NO: 77) y Alfa 1 (SEQ ID NO: 78) se reportan
por activar las células NK in vivo (Kataoka et al.
Jpn. J. Cancer Res. 83: 244, 1992). Las células de leucemia
monocítica aguda humana THP-1 se incuban con
secuencias derivadas de BCG de 45 bases y se determina la producción
de las citocinas IL-12 y IL-6 (Tabla
38).
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Como se muestra en la Tabla 38, secuencias
derivadas de BCG d 45 bases incrementan minimamente la producción de
células THP-1 de IL-12 y
IL-6.
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Las células de leucemia monocítica aguda humana
THP-1 se incuban con secuencias GT de 6 bases, que
tienen ya sea un átomo de oxígeno (fosfodiéster) o un azufre
(fosforotioato) como el átomo no puenteado en los grupos fosfatos y
se determina producción de la citocina IL-12 (Tabla
39).
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Como se muestra en la Tabla 39, la sustitución
de un átomo de azufre (fosforotioato) por un átomo de oxígeno no
puenteado (fosfodiéster) en los grupos fosfatos resulta en una
disminución significativa en la producción de IL-12
en célula THP-1.
Las células de leucemia monocítica aguda humana
THP-1 se incuban con GT SEQ ID NO: 25 de 6 bases,
que tiene ya sea oxígeno (fosfodiéster) o un azufre (fosforotioato)
como el átomo no puenteado en los grupos fosfatos y se determina la
producción de la citocina IL-12 (Tabla 40).
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Como se muestra en la Tabla 40, la sustitución
de un átomo de azufre (fosforotioato) por un átomo de oxígeno no
puenteado (fosfodiéster) en GT SEQ ID NO: 25 de 6 bases; resulta en
una disminución significativa en producción de IL-12
de la célula THP-1.
\vskip1.000000\baselineskip
Las células mononucleares de sangre periférica
humana (aquí adelante, "PBMC") se aíslan de 7 humanos
saludables mediante Ficoll-Hypaque (Amersham
Pharmacia Biotech, Baie d'Urfée, Québec, Canadá) mediante
centrifugación gradiente de densidad de sangre completa. Los PBMC se
incuban con secuencias GT, AGT, CGT, AG, CG y GG de 6 bases y se
determina la producción de las citocinas IL-1beta,
IL-6, IL-10 y
IL-12.
Como se muestra en la Tabla 41, las secuencias
GT, AGT, CGT, AG, CG y GG de 6 bases incrementan la producción de la
célula PBMC humana de las citocinas IL-1beta,
IL-6, IL-10 y
IL-12.
\vskip1.000000\baselineskip
Se aíslan los PBMC de 4 chimpancés saludables
como en el Ejemplo 35. Los PBMC de chimpancé se incuban con
secuencias de GT, AGT, CGT, AG, CG y GG de 6 bases y se determina la
producción de las citocinas IL-10,
IL-12 y TNF-alfa (Tabla 41).
Como se muestra en la Tabla 41, secuencias de
GT, AGT, CGT, AG, CG y GG de 6 bases incrementan la producción de
célula PBMC de chimpancé de las citocinas IL-10 y
IL-12 y TNF-alfa.
\vskip1.000000\baselineskip
Se aíslan los PBMC de 4 monos rhesus saludables
como en el Ejemplo 35. Los PBMC se incuban con secuencias GT, AGT,
CGT, AG, CG y GG de 6 bases y se determina la producción de las
citocinas IL-6, IL-12 y
TNF-alfa (Tabla 42).
\newpage
Como se muestra en la Tabla 42, las secuencias
GT, AGT, CGT, AG, CG y GG de 6 bases incrementan la producción de
célula PBMC de mono rhesus de las citocinas IL-10,
IL-12 y TNF-alfa.
\vskip1.000000\baselineskip
Se implantan células humanas de cáncer de mama
MCF-7 subcutáneamente como xenoinjertos, en ratones
hembra sin pelo BALB/c. los ratones se dividen en 6 grupos de 10
ratones. En el día 0, los ratones del grupo 1 reciben solución
salina, los ratones del grupo 2 reciben GT SEQ ID NO: 25 de 6 bases,
los ratones del grupo 3 reciben 5-fluorouracilo, los
ratones del grupo 4 reciben tamoxifeno, los ratones del grupo 5
reciben GT SEQ ID NO: 25 de 6 bases +
5-fluorouracilo y los ratones del grupo 6 reciben GT
SEQ ID NO: 25 de 6 bases + tamoxifeno. Después de 4 semanas de
tratamiento, se sacrifican los ratones y se determina la masa del
tumor. Los ratones del grupo 1 tienen la mayor masa de tumor, los
ratones de los grupos 2, 3 y 4 tienen menos masa de tumor que los
ratones del grupo 1 y los ratones de los grupos 5 y 6 tienen menos
masa de tumor que los ratones de los grupos 1, 2, 3 y 4.
\vskip1.000000\baselineskip
Se implantan células de cáncer de próstata
humano LNCaP subcutáneamente, como xenoinjertos en ratones machos
sin pelo nu/nu. los ratones se dividen en 5 grupos de 10 ratones. En
el día 0, los ratones del grupo 1 reciben solución salina, los
ratones del grupo 2 reciben SEQ ID NO: 8 de 3 bases, los ratones del
grupo 3 reciben GT SEQ ID NO: 25 de 6 bases, los ratones del grupo 4
reciben AG SEQ ID NO: 45 de 6 bases y los ratones del grupo 5
reciben BCG A-3 SEQ ID NO: 69 de 45 bases. Después
de 4 semanas de tratamiento, se sacrifican los ratones y se
determina la masa del tumor. Los ratones del grupo 1 tienen la mayor
masa de tumor, los ratones del grupo 5 tienen la menor masa de tumor
que los ratones del grupo 1 y los ratones de los grupos 2, 3 y 4
tienen menos masa de tumor que los ratones de los grupos 1 y 5.
\vskip1.000000\baselineskip
Se implantan células de linfoma T de murinos
L-4 en ratones C57/BL6. Los ratones se dividen en 6
grupos de 10 ratones. En el día 0, los ratones del grupo 1 reciben
solución salina, los ratones del grupo 2 reciben base 3 SEQ ID NO:
8, los ratones del grupo 3 reciben GT SEQ ID NO: 25 de 6 bases, los
ratones del grupo 4 reciben AG SEQ ID NO: 45 de 6 bases, los ratones
del grupo 5 reciben GT SEQ ID NO: 18 de 18 bases y los ratones del
grupo 6 reciben GT SEQ ID NO: 1 de 27 bases. Después de 4 semanas de
tratamiento, se sacrifican los ratones y se determina la masa del
tumor. Los ratones del grupo 1 tienen la mayor masa de tumor, los
ratones del grupo 2, 3 ,4 ,5 y 6 tienen menos masa de tumor que los
ratones del grupo 1.
\vskip1.000000\baselineskip
Se mantienen estirpes celulares de cáncer de
colon humano como cultivos celulares adherentes. Las células en la
fase de crecimiento exponencial se tratan con GT, GA, GC o GG de
2-20 bases de secuencia en el rango de dosis de 0
\mug/ml a 100 \mul/ml durante 24-72 horas. Se
inhibe la inhibición de la proliferación celular mediante reducción
MTT, detención del ciclo celular mediante citometría de flujo y
apoptosis por mediante unión Anexina V o liberación de nuMa. Las
secuencias GT, GA, GC o GG inhiben la proliferación, inducen la
detención del ciclo celular e inducen la apoptosis en las estirpes
de las células de cáncer de colon.
Ratones SCID que llevan estirpes celulares de
cáncer de colorectal humano subcutáneas se tratan con solución
salina o con base 2-20 de las secuencias GT, GA, GC
o GG, que tienen actividad antineoplásica contra estirpes celulares
de cáncer colorectal humano in vitro. Los ratones tratados
con base 2-20 de las secuencias GT, GA, GC o GG
tienen actividad neoplásica contra estirpes de células neoplásicas
colorectales humanas in vitro, que muestra una reducción
significativa en la masa de tumor comparado con ratones tratados con
solución salina.
\vskip1.000000\baselineskip
Esta lista de referencias citadas por el
aspirante es únicamente para conveniencia del lector. No forma parte
del documento de la Patente Europea. Aún cuando se ha tomado gran
cuidado en recopilar las referencias, los errores u omisiones no se
pueden excluir y la EPO desconoce toda responsabilidad en este
respeto.
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<400> 1
\vskip1.000000\baselineskip
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<212> ADN
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<213> Oligonucleótido Sintético
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<212> ADN
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<213> Oligonucleótido Sintético
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<212> ADN
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<213> Oligonucleótido Sintético
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<211> 6
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<212> ADN
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<213> Oligonucleótido Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
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<213> Oligonucleótido Sintético
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<213> Oligonucleótido Sintético
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\hfill45
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<213> Oligonucleótido Sintético
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<400> 80
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\hskip-.1em\dddseqskipcggta
\hfill5
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<210> 81
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<211> 11
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<212> ADN
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<213> Oligonucleótido Sintético
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<400> 81
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\hskip-.1em\dddseqskipgtgtgtttgg t
\hfill11
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<210> 82
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<211> 11
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<212> ADN
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<213> Oligonucleótido Sintético
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<400> 82
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\hskip-.1em\dddseqskipggttttgttt g
\hfill11
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<210> 83
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<211> 12
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<212> ADN
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<213> Oligonucleótido Sintético
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\hskip-.1em\dddseqskipttgttttttt tg
\hfill12
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<210> 84
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<211> 4
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<212> PRT
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<213> Péptido Sintético
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<400> 84
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<210> 85
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<211> 4
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<212> PRT
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<213> Péptido Sintético
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<400> 85
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\hskip1cm
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<210> 86
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<211> 5
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<212> PRT
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<213> Péptido Sintético
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<220>
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<221> SITE
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<222> (4)..(4)
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<223> X = cualquier Aminoácido
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<400> 86
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<211> 4
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<212> PRT
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<213> Péptido Sintético
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<400> 87
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
Claims (7)
1. Una composición que comprende una secuencia
aislada de nucleótidos fosfodiéster sintéticos
3'-OH, 5'-OH de la SEQ ID NO:
45:gggagg y que además comprende un vehículo farmacéuticamente
aceptable.
2. La composición de la reivindicación 1, que
además comprende un agente quimioterapéutico.
3. La composición de las reivindicaciones 1 o 2,
en donde el agente quimioterapéutico se selecciona del grupo que
consiste de un antimetabolito, un agente alquilante y un antagonista
hormonal.
4. El uso de la composición de cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 3 en la preparación de un medicamento para
inducir una respuesta seleccionada del grupo que consiste de la
inducción de la detención del ciclo celular, la inhibición de la
proliferación, la activación de las caspasas y la inducción de la
apoptosis en células cancerosas, y la producción de citoquinas por
las células del sistema inmune, en donde las citoquinas se
seleccionan del grupo que consiste de
IL-1-beta, IL-6,
IL-10, IL-12, y
TNF-alfa.
5. Uso de la composición de cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 3 en la preparación de un medicamento para
tratar el cáncer.
6. El uso de cualquiera de las reivindicaciones
4 a 5, en donde el cáncer se selecciona del grupo que consiste de un
carcinoma primario, un carcinoma secundario, un sarcoma primario y
un sarcoma secundario.
7. El uso de la reivindicación 6, en donde el
cáncer se selecciona del grupo que consiste de leucemia, linfoma,
cáncer de pecho, de próstata, colorectal, ovarios y de hueso.
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2006
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