ES2336026T3 - Polipeptidos con actividad endoglucanasa y polinucleotidos que codifican los mismos. - Google Patents
Polipeptidos con actividad endoglucanasa y polinucleotidos que codifican los mismos. Download PDFInfo
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Abstract
Polipéptido aislado que tiene actividad endoglucanasa, seleccionado del grupo que consiste en: (a) un polipéptido que comprende una secuencia de aminoácidos que tiene al menos un 80% de identidad con el polipéptido maduro de la SEC ID n.º: 2; y (b) un polipéptido que es codificado por un polinucleótido que se híbrida bajo condiciones de astringencia al menos media-alta con (i) la secuencia que codifica el polipéptido maduro de la SEC ID n.º: 1, (ii) la secuencia de ADN genómico que comprende la secuencia que codifica el polipéptido maduro de la SEC ID n.º: 1, o (iii) una cadena complementaria de (i) o (ii); caracterizado por el hecho de que las condiciones de astringencia media-alta son definidas como prehibridación e hibridación a 42ºC en 5X SSPE, 0,3% de SDS, 200 μg/ml de ADN de esperma de salmón cortado y desnaturalizado y 35% de formamida, y finalmente lavando el material portador tres veces cada uno durante 15 minutos usando 2X SSC, 0,2% de SDS a una temperatura de al menos 60ºC.
Description
Polipéptidos con actividad endoglucanasa y
polinucleótidos que codifican los mismos.
La presente invención se refiere a polipéptidos
aislados que tienen actividad endoglucanasa y a polinucleótidos
aislados que codifican los polipéptidos. La invención también se
refiere a constructos de ácido nucleico, vectores y células
huéspedes que comprenden los polinucleótidos así como métodos para
producir y usar los polipéptidos.
La celulosa es un polímero de la glucosa de
azúcar simple unido covalentemente por enlaces
beta-1,4. Muchos microorganismos producen enzimas
que hidrolizan los betaglucanos. Estas enzimas incluyen
endoglucanasas, celobiohidrolasas y
beta-glucosidasas. Las endoglucanasas digieren el
polímero de celulosa en lugares aleatorios, abriéndolo al ataque por
parte de celobiohidrolasas. Las celobiohidrolasas liberan
secuencialmente moléculas de celobiosa de los extremos del polímero
de celulosa. La celobiohidrolasa I es una actividad
1,4-D-glucano celobiohidrolasa (E.C.
3, 2, 1, 91) que cataliza la hidrólisis de los enlaces
1,4-beta-D-glucosídicos
en celulosa, celotetrosa o cualquier glucosa
beta-1,4-enlazada que contenga
polímero, liberando celobiosa de las extremidades reductoras de la
cadena. La celobiohidrolasa II es una actividad
1,4-D-glucano celobiohidrolasa (E.C.
3,2,1,91) que cataliza la hidrólisis de los enlaces
1,4-beta-D-glucosídicos
en celulosa, celotetrosa o cualquier glucosa beta
1,4-enlazada que contenga polímero, liberando
celobiosa de las extremidades no reductoras de la cadena. La
celobiosa es un dímero hidrosoluble
beta-1,4-enlazado de glucosa. Las
beta-glucosidasas hidrolizan la celobiosa a
glucosa.
La conversión de materias primas celulósicas en
etanol tiene las ventajas de la disponibilidad de grandes cantidades
de materia prima, la conveniencia de evitar la quema o vertido de
los materiales y la limpieza del combustible de etanol. La madera,
los residuos agrícolas, los brotes herbáceos y los residuos sólidos
municipales han sido considerados materias primas para la producción
de etanol. Estos materiales consisten principalmente en celulosa,
hemicelulosa y lignina. Una vez que la celulosa se convierte en
glucosa, la glucosa es fácilmente fermentada por levadura en
etanol.
etanol.
Kvesitadaze et al., 1995, Applied
Biochemistry and Biotechnology 50: 137-143,
describen el aislamiento y las propiedades de una endoglucanasa
termoestable de una cepa mutante termofílica de Thielavia
terrestris. Gilbert et al., 1992, Bioresource
Technology 39: 147-154, describen la
caracterización de las enzimas presentes en el sistema de la
celulosa de 255B de Thielavia terrestris. Breuil et
al., 1986, Biotechnology Letters 8:
673-676, describen la producción y la localización
de celulasas y beta-glucosidasas de cepas de
Thielavia terrestris C464 y NRRL 8126.
Sería una ventaja en la técnica identificar las
endoglucanasas nuevas que tienen propiedades mejoradas, tales como
índices de hidrólisis mejorados, mejor termoestabilidad, adsorción
reducida para lignina y la capacidad para hidrolizar componentes no
celulósicos de biomasa, tales como hemicelulosa, además de
hidrolizar celulosa. Las endoglucanasas con una amplia gama de
actividades laterales en la hemicelulosa pueden ser especialmente
provechosas para mejorar el rendimiento general de la hidrólisis de
sustratos de biomasa ricos en hemicelulosa complejos.
Es un objeto de la presente invención
proporcionar polipéptidos mejorados que tengan actividad de
endoglucanasa y polinucleótidos que codifiquen los polipéptidos.
La presente invención se refiere en un primer
aspecto a polipéptidos aislados que tienen actividad de
endoglucanasa seleccionada del grupo que consiste en:
- (a)
- un polipéptido que comprende una secuencia de aminoácidos que tiene al menos el 80% de identidad con la secuencia codificante del polipéptido maduro de SEC ID nº: 2;
- (b)
- un polipéptido que es codificado por una secuencia de nucleótidos que se híbrida bajo condiciones de astringencia media-alta al menos con (i) la secuencia codificante del polipéptido maduro de SEC ID nº: 1, (II) la secuencia de ADN genómico que comprende la secuencia codificante del polipéptido maduro de la SEC ID n.º: 1, o (iii) una cadena complementaria de (i) o (ii); caracterizada por el hecho de que las condiciones de astringencia media-alta son definidas como prehibridación e hibridación a 42ºC en 5X SSPE, 0,3% de SDS, 200 \mug/ml de ADN de esperma de salmón cortado y desnaturalizado y 35% de formamida, y finalmente lavando el material del portador tres veces cada uno durante 15 minutos usando 2X SSC, 0,2% de SDS a una temperatura de al menos 60ºC.
La presente invención también se refiere a
polinucleótidos aislados que comprenden una secuencia de nucleótidos
que codifica el polipéptido del primer aspecto.
En un aspecto preferido, el polipéptido maduro
son los aminoácidos 18 a 336 de la SEC ID n.º: 2. En otro aspecto
preferido, la secuencia codificante del polipéptido maduro son los
nucleótidos 52 a 1008 de la SEC ID n.º: 1.
La presente invención también se refiere a
constructos de ácidos nucleicos, vectores de expresión recombinantes
y células huéspedes recombinantes que comprenden los
polinucleótidos.
La presente invención también se refiere a
métodos para producir tal polipéptido que tiene actividad de
endoglucanasa que comprende: (a) cultivar una célula huésped
recombinante que comprende un constructo de ácidos nucléicos que
comprende un polinucleótido que codifica el polipéptido bajo
condiciones propicias para la producción del polipéptido; y (b)
recuperar el polipéptido.
La presente invención también se refiere a
métodos de uso de los polipéptidos que tienen actividad de
endoglucanasa en la degradación de biomasa con celulosa y
hemicelulosa.
Las Figuras 1A y 1B muestran la secuencia de
ADNc y la secuencia de aminoácidos deducida de una endoglucanasa
(CEL7F) de Thielavia terrestris NRRL 8126 (SEC ID n.º: 1 y 2,
respectivamente).
La Figura 2 muestra un mapa de restricción de
pTter7F.
La Figura 3 muestra un mapa de restricción de
pAILo1
La Figura 4 muestra un mapa de restricción de
pBANe10.
La Figura 5 muestra un mapa de restricción de
pAILo2.
La Figura 6 muestra un mapa de restricción de
pAILo22.
La Figura 7 muestra la conversión relativa de
betaglucano (1% p/v) después de 2 horas de hidrólisis a pH 5,5 y
60ºC.
La Figura 8 muestra la conversión relativa de
betaglucano (1% p/v) después de 24 horas de hidrólisis a pH 5,5 y
60ºC.
Actividad endoglucanasa: El término
"actividad endoglucanasa" es definido en la presente como una
endo-1,4-beta-D-glucano
4-glucanohidrolasa (E.C. Nº. 3,2,1,4) que cataliza
la endohidrólisis de enlaces
1,4-beta-D-glicosídicos
en celulosa, derivados de celulosa (tales como carboximetilcelulosa
e hidroxietil celulosa), liquenina, enlaces beta-1,4
en beta-1,3 glucanos mezclados tales como
beta-D-glucanos de cereales o
xiloglucanos y otra materia vegetal que contiene componentes
celulósicos. Para fines de la presente invención, la actividad
endoglucanasa es determinada utilizando hidrólisis de
carboximetilcelulosa (CMC) según el procedimiento de Ghose, 1987,
Pure and Appl. Chem. 59: 257-268. Una unidad
de actividad endoglucanasa es definida como 1,0 \mumol de azúcares
reducidos producidos por minuto a 50ºC, pH 4,8.
En un aspecto preferido, los polipéptidos de la
presente invención que tienen actividad endoglucanasa además tienen
actividad enzimática hacia uno o más sustratos seleccionados del
grupo que consiste en xilano, xiloglucano, arabinoxilano, galactano,
galactomanano, dextrano y quitina. La actividad de los polipéptidos
que tienen actividad endoglucanasa en estos sustratos polisacáridos
es determinada como la cantidad relativa de colorante liberado desde
distintos sustratos teñidos con AZCL después de incubar los
sustratos (5 g por litro) con un polipéptido que tiene actividad
endoglucanasa de la presente invención (1 mg de proteína por g de
sustrato) durante 1 y 92 horas sin agitar a pH 5,0 (50 mM de acetato
sódico) y 50ºC. La liberación de colorante fue determinada midiendo
la absorbencia
a 590 nm.
a 590 nm.
En un aspecto más preferido, los polipéptidos de
la presente invención que tienen actividad endoglucanasa además
tienen actividad enzimática hacia el xilano. En otro aspecto más
preferido, los polipéptidos de la presente invención que tienen
actividad endoglucanasa además tienen actividad enzimática hacia el
xiloglucano. En otro aspecto más preferido, los polipéptidos de la
presente invención que tienen actividad endoglucanasa además tienen
actividad enzimática hacia el arabinoxilano. En otro aspecto más
preferido, los polipéptidos de la presente invención que tienen
actividad endoglucanasa además tienen actividad enzimática hacia el
galactano. En otro aspecto más preferido, los polipéptidos de la
presente invención que tienen actividad endoglucanasa además tienen
actividad enzimática hacia el galactomanano. En otro aspecto más
preferido, los polipéptidos de la presente invención que tienen
actividad endoglucanasa además tienen actividad enzimática hacia el
dextrano. En otro aspecto más preferido, los polipéptidos de la
presente invención que tienen actividad endoglucanasa además tienen
actividad enzimática hacia la quitina. En otro aspecto más
preferido, los polipéptidos de la presente invención que tienen
actividad endoglucanasa además tienen actividad enzimática hacia el
xilano, el xiloglucano, el arabinoxilano, el galactano, el
galactomanano, el dextrano y la quitina.
Los polipéptidos de la presente invención tienen
como mínimo el 20%, preferiblemente al menos el 40%, más
preferiblemente al menos el 50%, más preferiblemente al menos el
60%, más preferiblemente al menos el 70%, más preferiblemente al
menos el 80%, incluso más preferiblemente al menos el 90%, de la
forma más preferible al menos el 95% e incluso de la forma más
preferible al menos 100% de la actividad endoglucanasa del
polipéptido que consiste en la secuencia de aminoácidos mostrada
como los aminoácidos 18 a 336 de la SEC ID n.º: 2.
Familia 7 de glicósido hidrolasa o familia
GH7: El término "Familia 7 de glucósido hidrolasa" o
"Familia GH7" o "CEL7F" es definida en la presente como un
polipéptido que cae dentro de la familia 7 de glucósido hidrolasa
según Henrissat B., 1991, A classification of glycosyl hydrolases
based on amino-acid sequence similarities, Biochem.
J. 280: 309-316, y Henrissat B., y Bairoch A., 1996,
Updating the sequence-based classification of
glycosyl hydrolases, Biochem. J. 316: 695-696.
Polipéptido aislado: El término
"polipéptido aislado" según se utiliza en este caso se refiere
a un polipéptido que es al menos un 20% puro, preferiblemente al
menos un 40% puro, más preferiblemente al menos un 60% puro, incluso
más preferiblemente al menos un 80% puro, más preferiblemente al
menos un 90% puro, e incluso más preferiblemente al menos un 95%
puro, según lo determina la SDS-PAGE.
Polipéptido substancialmente puro: El
término "polipéptido sustancialmente puro" denota en la
presente una preparación de polipéptido que contiene como máximo el
10%, preferiblemente como máximo el 8%, más preferiblemente como
máximo el 6%, más preferiblemente como máximo el 5%, más
preferiblemente como máximo el 4%, más preferiblemente como máximo
el 3%, incluso más preferiblemente como máximo el 2%, más
preferiblemente como máximo el 1% e incluso más preferiblemente como
máximo el 0,5% en peso de otro material de polipéptido con el cual
está originalmente asociado. Es preferible, en consecuencia, que el
polipéptido substancialmente puro sea al menos un 92% puro,
preferiblemente al menos un 94% puro, más preferiblemente al menos
un 95% puro, más preferiblemente al menos un 96% puro, más
preferiblemente al menos un 96% puro, más preferiblemente al menos
un 97% puro, más preferiblemente al menos un 98%, incluso más
preferiblemente al menos un 99%, más preferiblemente al menos un
99,5% puro e incluso más preferiblemente un 100% puro en peso del
material de polipéptido total presente en la preparación.
Los polipéptidos de la presente invención están
preferiblemente en una forma substancialmente pura. En particular,
se prefiere que los polipéptidos estén en "forma esencialmente
pura", es decir, que la preparación de polipéptido esté
esencialmente libre de otra materia polipeptídica con la cual esté
originalmente asociado. Este se puede conseguir, por ejemplo,
preparando el polipéptido mediante métodos recombinantes conocidos o
por métodos de purificación tradicionales.
En la presente, el término "polipéptido
sustancialmente puro" es sinónimo de los términos "polipéptido
aislado" y "polipéptido en forma aislada".
Polipéptido maduro: el término
"polipéptido maduro" es definido en la presente como un
polipéptido que tiene actividad endoglucanasa que está en su forma
final después de la traducción y cualquier modificación
postraduccional, tal como tratamiento del
N-terminal, truncamiento del
C-terminal, glicosilación, etc.
Identidad: la relación entre dos
secuencias de aminoácidos o entre dos secuencias de nucleótidos es
descrita por el parámetro "identidad".
Para objetivos de la presente invención, el
grado de identidad entre dos secuencias de aminoácidos es
determinado por el método Clustal (Higgins, 1989, CABIOS 5:
151-153) usando el software LASERGENE^{TM}
MEGALIGN^{TM} DNASTAR, Inc., Madison, Wl) con una tabla de
identidad y los siguientes parámetros de alineación múltiple:
Penalización por gaps de 10 y penalización por longitud del gaps de
10. Los parámetros de alineación por parejas son Ktuple = 1,
penalización porgaps = 3, ventanas = 5 y diagonales = 5.
Para objetivos de la presente invención, el
grado de identidad entre dos secuencias de nucleótidos se determina
por el método de Wilbur-Lipman (Wilbur and Lipman,
1983, Proceedings of the National Academy of Science USA 80:
726-730) usando el software LASERGENE^{TM}
MEGALIGN^{TM} DNASTAR, Inc., Madison, Wl) con una tabla de
identidad y los siguientes parámetros de alineación múltiple:
Penalización por gaps de 10 y penalización por longitud de gaps de
10. Los parámetros de alineación por parejas son Ktuple = 3,
penalización por gaps = 3 y ventanas = 20.
Fragmento polipeptídico: El término
"fragmento polipeptídico" es definido en la presente como un
polipéptido que tiene uno o más aminoácidos delecionado del extremo
amino y/o carboxilo de la SEC ID n.º: 2 o una secuencia homologa del
mismo, caracterizado por el hecho de que el fragmento tiene
actividad endoglucanasa. Preferiblemente, un fragmento contiene al
menos 270 residuos de aminoácidos, más preferiblemente al menos 285
residuos de aminoácidos
y más preferiblemente al menos 300 residuos de aminoácidos, p. ej., aminoácidos 18 a 336 de la SEC ID n.º: 2.
y más preferiblemente al menos 300 residuos de aminoácidos, p. ej., aminoácidos 18 a 336 de la SEC ID n.º: 2.
Subsecuencia: El término
"subsecuencia" es definido en la presente como una secuencia de
nucleótidos que tiene uno o más nucleótidos delecionados del extremo
5' y/o 3' de la SEC ID n.º: 1 o una secuencia homologa de la misma,
donde la subsecuencia codifica un fragmento de polipéptido que tiene
actividad endoglucanasa. Preferiblemente, una subsecuencia contiene
al menos 810 nucleótidos, más preferiblemente al menos 855
nucleótidos y más preferiblemente al menos 900 nucleótidos.
Variante alélica: El término "variante
alélica" denota en la presente cualquiera de dos o más formas
alternativas de un gen que ocupa el mismo locus cromosómico. La
variación alélica surge naturalmente a través de la mutación y puede
suponer polimorfismo dentro de las poblaciones. Las mutaciones de
genes pueden ser silenciosas (sin cambio en el polipéptido
codificado) o pueden codificar polipéptidos que tienen secuencias de
aminoácidos alteradas. Una variante alélica de un polipéptido es un
polipéptido codificado por una variante alélica de un gen.
Polinucleótido aislado: El término
"polinucleótido aislado" según se utiliza en este caso se
refiere a un polinucleótido que es al menos un 20% puro,
preferiblemente al menos un 40% puro, más preferiblemente al menos
un 60%, puro, incluso más preferiblemente al menos un 80% puro, de
la forma más preferible al menos un 90% puro e incluso de la forma
más preferible al menos un 95% puro, según lo determina la
electroforesis de agarosa.
Polinucleótido substancialmente puro: El
término "polinucleótido sustancialmente puro" según se utiliza
en este caso se refiere a una preparación de polinucleótido libre de
otros nucleótidos extraños o indeseados y en una forma adecuada para
el uso dentro de los sistemas de producción de proteínas creadas
genéticamente. De este modo, un polinucleótido substancialmente puro
contiene como máximo el 10%, preferiblemente como máximo el 8%, más
preferiblemente como máximo el 6%, más preferiblemente como máximo
el 5%, más preferiblemente como máximo el 4%, más preferiblemente
como máximo el 3%, incluso más preferiblemente como máximo el 2%,
más preferiblemente como máximo el 1% e incluso más preferiblemente
como máximo el 0,5% en peso de otra materia polinucleótida con la
cual está originalmente asociado. Un polinucleótido substancialmente
puro puede, no obstante, incluir regiones no traducidas 5' y 3' de
origen natural, tales como promotores y terminadores. Se prefiere
que el polinucleótido substancialmente puro sea al menos un 90%
puro, preferiblemente al menos un 92% puro, más preferiblemente al
menos un 94% puro, más preferiblemente al menos un 95% puro, más
preferiblemente al menos un 96% puro, más preferiblemente al menos
un 97%, puro, incluso más preferiblemente al menos un 98% puro, de
la forma más preferible al menos un 99% e incluso de la forma más
preferible al menos un 99,5% puro en peso. Los polinucleótidos de la
presente invención están preferiblemente en una forma
substancialmente pura. En particular, se prefiere que los
polinucleótidos descritos en la presente estén en "forma
esencialmente pura", es decir, que la preparación de
polinucleótido esté esencialmente libre de otra materia
polinucleótida con la cual está originalmente asociado. En la
presente, el término "polinucleótido sustancialmente puro" es
sinónimo de los términos "polinucleótido aislado" y
"polinucleótido en forma aislada". Los polinucleótidos pueden
ser de origen genómico, ADNc, ARN, semisintético, sintético, o
cualquier combinación de los mismos.
Secuencia codificante del polipéptido
maduro: El término "secuencia codificante del polipéptido
maduro" se define en la presente como una secuencia de
nucleótidos que codifica un polipéptido maduro que tiene actividad
endoglucanasa.
ADNc: El término "ADNc" es definido
en la presente como una molécula de ADN que puede ser preparada por
transcripción inversa de una molécula de ARNm maduro dividida
obtenida de una célula eucariótica. El ADNc no tiene secuencias de
intrón que normalmente están presentes en el ADN genómico
correspondiente. La transcripción de ARN inicial primaria es un
precursor de ARNm que se procesa a través de una serie de fases
antes de aparecer como ARNm maduro empalmado. Estas fases incluyen
la eliminación de secuencias de intrón por un proceso llamado
empalme. El ADNc derivado de ARNm en consecuencia carece de
cualquier secuencia de intrón.
Constructo de ácidos nucléicos: El
término "constructo de ácidos nucléicos" según se utiliza en
este caso se refiere a una molécula de ácido nucleico, única o
bicatenaria, que es aislada de un gen de origen natural o que es
modificada para contener segmentos de ácidos nucleicos que de otra
manera no existiría en la naturaleza. El término constructo de
ácidos nucléicos es sinónimo del término "cassette de
expresión" cuando el constructo de ácidos nucléicos contiene las
secuencias de control requeridas para la expresión de una secuencia
codificante de la presente invención.
Secuencia de control: El término
"secuencias de control" es definido en la presente para incluir
todos los componentes, que son necesarios o ventajosos para la
expresión de un polinucleótido que codifica un polipéptido de la
presente invención. Cada secuencia de control puede ser nativa o
extranjera a la secuencia de nucleótidos que codifica el polipéptido
o nativa o extranjera entre sí. Las secuencias de control de este
tipo incluyen, pero sin limitarse a ello, la secuencia de
poliadenilación líder, secuencia de propéptido, promotor, secuencia
de péptido señal y terminador de la transcripción. Como mínimo, las
secuencias de control incluyen un promotor y señales de terminación
transcripcionales y traduccionales. Las secuencias de control pueden
ser provistas de enlaces con el fin de introducir sitios de
restricción específicos que faciliten la ligadura de las secuencias
de control con la región codificante de la secuencia de nucleótidos
que codifica un polipéptido.
Operativamente enlazado: El término
"operativamente enlazado" denota en la presente una
configuración en la cual una secuencia de control se coloca en una
posición apropiada en relación a la secuencia codificante de la
secuencia de polinucleótido de manera que la secuencia de control
dirige la expresión de la secuencia codificante de un
polipéptido.
Secuencia codificante: Cuando se usa en
la presente el término "secuencia codificante", significa una
secuencia de nucleótidos que directamente especifica la secuencia de
aminoácidos de su producto de proteína. Los bordes de la secuencia
codificante son determinados generalmente por un marco de lectura
abierto, que normalmente se inicia con el codón de iniciación ATG o
codones de iniciación alternativos tales como GTG y TTG y
extremidades con un codón de detención tal como TAA, TAG y TGA. La
secuencia codificante puede ser una secuencia de ADN, de ADNc, o de
nucleótidos recombinantes.
Expresión: El término "expresión"
incluye cualquier fase implicada en la producción del polipéptido
incluyendo, pero sin limitarse a ello, la transcripción, la
modificación postranscripcional, la traducción, la modificación
postraduccional y la secreción.
Vector de expresión: El término "vector
de expresión " es definido en la presente como una molécula de
ADN lineal o circular que comprende un polinucleótido que codifica
un polipéptido de la invención, y que está operativamente enlazado a
nucleótidos adicionales que permiten su expresión.
Célula huésped: El término "célula
huésped", según se utiliza en este caso, incluye cualquier tipo
de célula susceptible a transformación, transfección, transducción y
similares con un constructo de ácidos nucléicos o vector de
expresión que comprenda un polinucleótido de la presente
invención.
Modificación: El término
"modificación" significa en la presente cualquier modificación
química del polipéptido que consiste en el polipéptido maduro de la
SEC ID n.º: 2 o una secuencia homologa de la misma al igual que la
manipulación genética del ADN que codifica ese polipéptido. La
modificación puede ser sustituciones, deleciones y/o inserciones de
uno o más aminoácidos al igual que sustituciones de una o más
cadenas laterales del aminoácido.
Variante artificial: Cuando se usa en la
presente, el término "variante artificial" significa un
polipéptido que tiene actividad de endoglucanasa producida por un
organismo que expresa una secuencia de nucleótidos modificada de la
SEC ID n.º: 1 o una secuencia homologa de la misma, o la región
codificante madura de la misma. La secuencia de nucleótidos
modificada se obtiene a través de intervención humana por
modificación de la secuencia de nucleótidos descrita en la SEC ID
n.º: 1 o una secuencia homologa de la misma, o la región codificante
madura de la misma.
En un primer aspecto, la presente invención se
refiere a polipéptidos aislados que comprenden una secuencia de
aminoácidos con un grado de identidad al polipéptido maduro de la
SEC ID nº: 2 de al menos el 80%, preferiblemente al menos el 85%,
más preferiblemente al menos el 90%, incluso más preferiblemente al
menos el 95% e incluso de la forma más preferible al menos el 97%,
98%, o 99%, que tiene actividad endoglucanasa (de ahora en adelante
"polipéptidos homólogos"). En un aspecto preferido, los
polipéptidos homólogos tienen una secuencia de aminoácidos que
difiere por diez aminoácidos, preferiblemente por cinco aminoácidos,
más preferiblemente por cuatro aminoácidos, incluso más
preferiblemente por tres aminoácidos, más preferiblemente por dos
aminoácidos, e incluso más preferiblemente por un aminoácido del
polipéptido maduro de la SEC ID n.º: 2.
Un polipéptido de la presente invención
preferiblemente comprende la secuencia de aminoácidos de la SEC ID
n.º: 2 o una variante alélica de la misma; o un fragmento de la
misma que tenga actividad endoglucanasa. En un aspecto preferido, un
polipéptido comprende la secuencia de aminoácidos de la SEC ID n.º:
2. En otro aspecto preferido, un polipéptido comprende el
polipéptido maduro de la SEC ID n.º: 2. En otro aspecto preferido,
un polipéptido comprende los aminoácidos 18 a 336 de la SEC ID nº:
2, o una variante alélica de la misma; o un fragmento de la misma
que tiene actividad endoglucanasa. En otro aspecto preferido, un
polipéptido comprende los aminoácidos 18 a 336 de la SEC ID nº: 2.
En otro aspecto preferido, un polipéptido consiste en la secuencia
de aminoácidos de la SEC ID n.º: 2 o una variante alélica de la
misma; o un fragmento de la misma que tenga actividad endoglucanasa.
En otro aspecto preferido, un polipéptido consiste en la secuencia
de aminoácidos de la SEC ID n.º: 2. En otro aspecto preferido, un
polipéptido consiste en el polipéptido maduro de la SEC ID n.º: 2.
En otro aspecto preferido, un polipéptido consiste en los
aminoácidos 18 a 336 de la SEC ID n.º: 2 o una variante alélica de
la misma; o un fragmento de la misma que tenga actividad
endoglucanasa. En otro aspecto preferido, un polipéptido consiste en
los aminoácidos 18 a 336 de la SEC ID n.º: 2.
En un segundo aspecto, la presente invención se
refiere a polipéptidos aislados que tienen actividad endoglucanasa
que son codificados por polinucleótidos que se hibridan bajo
condiciones de astringencia muy baja, preferiblemente condiciones de
astringencia baja, más preferiblemente condiciones de astringencia
media, más preferiblemente condiciones de astringencia
media-alta, incluso más preferiblemente condiciones
de astringencia alta, y de la forma más preferible condiciones de
astringencia muy alta con (i) la secuencia que codifica el
polipéptido maduro de la SEC ID n.º: 1, (ii) la secuencia de ADN
genómico que comprende la secuencia que codifica el polipéptido
maduro de la SEC ID n.º: 1, (iii) una subsecuencia de (i) o (ii), o
(iv) una cadena complementaria de (i), (ii), o (iii) (J. Sambrook,
E.F. Fritsch, and T. Maniatis, 1989, Molecular Cloning, A
Laboratory Manual, 2º edición, Cold Spring Harbor, New York).
Una subsecuencia de la SEC ID n.º: 1 contiene al menos 100
nucleótidos contiguos o preferiblemente al menos 200 nucleótidos
contiguos. Además, la subsecuencia puede codificar un fragmento de
polipéptido que tiene actividad endoglucanasa. En un aspecto
preferido, la secuencia que codifica el polipéptido maduro es los
nucleótidos 52 a 1008 de la SEC ID n.º: 1.
La secuencia de nucleótidos de la SEC ID n.º: 1
o una subsecuencia de la misma, al igual que la secuencia de
aminoácidos de la SEC ID n.º: 2 o un fragmento de la misma, puede
ser usado para diseñar una sonda de ácido nucleico para identificar
y clonar ADN que codifican polipéptidos con actividad endoglucanasa
de cepas de diferentes géneros o especies según métodos bien
conocidos en la técnica. En particular, las sondas de este tipo
pueden ser usadas para la hibridación con el ADN genómico o ADNc del
género o especies de interés, siguiendo procedimientos de
transferencia estándar de Southern, para identificar y aislar el gen
correspondiente allí. Las sondas de este tipo pueden ser
considerablemente más cortas que la secuencia entera, pero deben ser
al menos 14, preferiblemente al menos 25, más preferiblemente al
menos 35, y más preferiblemente al menos 70 nucleótidos en longitud.
No obstante, se prefiere que la sonda de ácido nucleico sea de al
menos 100 nucleótidos en longitud. Por ejemplo, la sonda de ácido
nucleico puede ser de al menos 200 nucleótidos, preferiblemente al
menos 300 nucleótidos, más preferiblemente al menos 400 nucleótidos,
o más preferiblemente al menos 500 nucleótidos en longitud. Incluso
se pueden utilizar sondas más largas, p. ej., sondas de ácido
nucleico que sean de al menos 600 nucleótidos, preferiblemente al
menos 700 nucleótidos, más preferiblemente al menos 800 nucleótidos,
o más preferiblemente al menos 900 nucleótidos en longitud. Se
pueden utilizar tanto sondas de ADN como de ARN. Las sondas
normalmente están marcadas para detectar el gen correspondiente (por
ejemplo, con ^{32}P, ^{3}H, ^{35}S, biotina o avidina). Las
sondas de este tipo están incluidas en la presente invención.
Un ADN genómico o biblioteca de ADNc obtenido a
partir de estos otros organismos puede, en consecuencia, ser
seleccionado para ADN que se híbrida con las sondas anteriormente
descritas y que codifica un polipéptido que tiene actividad
endoglucanasa. El ADN genómico u otro ADN de estos otros organismos
puede ser separado por electroforesis en gel de agarosa o
poliacrilamida, u otras técnicas de separación. El ADN de las
bibliotecas o el ADN separado puede ser transferido e inmovilizado
en nitrocelulosa u otro material portador adecuado. Para identificar
un clon o ADN homólogo con la SEC ID n.º: 1 o una subsecuencia de la
misma, el material portador se usa en una transferencia de
Southern.
Para objetivos de la presente invención, la
hibridación indica que la secuencia de nucleótidos híbrida a una
sonda de ácido nucleico marcada correspondiente a la secuencia de
nucleótidos mostrada en la SEC ID n.º: 1, la secuencia de ADN
genómico que comprende la SEC ID n.º: 1, su cadena complementaria, o
una subsecuencia de la misma, condiciones de astringencia muy baja a
muy alta. Las moléculas a las cuales la sonda de ácido nucleico se
híbrida bajo estas condiciones pueden ser detectadas usando, por
ejemplo, película radiográfica.
En un aspecto preferido, la sonda de ácidos
nucleicos es la secuencia que codifica de polipéptido maduro de la
SEC ID n.º: 1. En otro aspecto preferido, la sonda de ácidos
nucleicos es de los nucleótidos 52 a 1008 de la SEC ID nº: 1. En
otro aspecto preferido, la sonda de ácidos nucleicos es una
secuencia de polinucleótidos que codifica el polipéptido de la SEC
ID nº: 2, o una subsecuencia de la misma. En otro aspecto preferido,
la sonda de ácidos nucleicos es la SEC ID n.º: 1. En otro aspecto
preferido, la sonda de ácidos nucleicos es la secuencia que codifica
el polipéptido maduro de la SEC ID n.º: 1. En otro aspecto
preferido, la sonda de ácidos nucleicos es la secuencia de
polinucleótidos contenida en el plásmido pTter7F que está contenido
en E. coli NRRL B-30837, caracterizado por el
hecho de que la secuencia de polinucleótidos de la misma codifica un
polipéptido que tiene actividad lipásica. En otro aspecto preferido,
la sonda de ácidos nucleicos es la secuencia que codifica el
polipéptido maduro contenida en plásmido pTter7F que está contenido
en E. coli NRRL B-30837.
Para sondas largas de al menos 100 nucleótidos
de longitud, las condiciones de astringencia
media-alta a muy alta son definidas como
prehibridación e hibridación a 42ºC en 5X SSPE, 0,3% de SDS, 200
\mug/ml de ADN de esperma de salmón cortado y desnaturalizado y
bien 25% de formamida para astringencias muy bajas y bajas, 35% de
formamida para astringencias medias y medias-altas,
o 50% de formamida para astringencias altas y muy altas, siguiendo
procedimientos de transferencia de Southern estándar durante 12 a 24
horas óptimamente.
Para sondas largas de al menos 100 nucleótidos
de longitud, el material portador finalmente es lavado tres veces
cada una durante 15 minutos usando 2X SSC, 0,2% de SDS
preferiblemente al menos a 60ºC (astringencia
media-alta), incluso más preferiblemente al menos a
65ºC (astringencia alta) y más preferiblemente al menos a 70ºC
(astringencia muy alta).
Para las sondas cortas son de aproximadamente 15
nucleótidos a aproximadamente 70 nucleótidos de longitud, las
condiciones de astringencia son definidas como prehibridación,
hibridación, y lavado post-hibridación a
aproximadamente 5ºC a aproximadamente 10ºC por debajo de la T_{m}
calculada usando el cálculo según Bolton y McCarthy (1962,
Proceedings of the National Academy of Sciences USA 48:1390) en 0,9
M de NaCl, 0,09 M de tris-HCI pH 7,6, 6 mM de EDTA,
0,5% NP-40, 1X Solución de Denhardt, 1 mM de
pirofosfato de sodio, 1 mM de sodio fosfato monobásico, 0,1 mM de
ATP y 0,2 mg de ARN de levadura por ml siguiendo procedimientos de
transferencia de Southern estándar durante 12 a 24 horas
óptimamente.
Para las sondas cortas que son de
aproximadamente 15 nucleótidos a aproximadamente 70 nucleótidos de
longitud, el material portador se lava una vez en 6X SCC más 0,1%
SDS durante 15 minutos y dos veces cada una durante 15 minutos
usando 6X SSC a 5ºC a 10ºC por debajo de la T_{m} calculada.
En un tercer aspecto, la presente invención se
refiere a variantes artificiales que comprenden una sustitución,
deleción y/o inserción conservadora de uno o más aminoácidos de la
SEC ID n.º: 2 o una secuencia homologa de la misma; o el polipéptido
maduro de la misma. Preferiblemente, los cambios de los aminoácidos
son de una naturaleza menor, es decir, sustituciones o inserciones
conservadoras de aminoácidos que no afectan significativamente al
pliegue y/o a la actividad de la proteína; deleciones pequeñas,
normalmente de uno a aproximadamente 30 aminoácidos; pequeñas
extensiones amino-terminales o
carboxi-terminales, tal como un residuo de metionina
aminoterminal; un pequeño péptido de enlace de hasta
20-25 residuos aproximadamente; o una pequeña
extensión que facilita la purificación cam-
biando la carga neta u otra función, tal como un tracto de polihistidina, un epítopo antigénico o un dominio de unión.
biando la carga neta u otra función, tal como un tracto de polihistidina, un epítopo antigénico o un dominio de unión.
Los ejemplos de sustituciones conservadoras
están dentro del grupo de aminoácidos básicos (arginina, Usina e
histidina), aminoácidos acídicos (ácido glutámico y ácido
aspártico), aminoácidos polares (glutamina y asparagina),
aminoácidos hidrofóbicos (leucina, isoleucina y valina), aminoácidos
aromáticos (fenilalanina, triptófano y tirosina), y pequeños
aminoácidos (glicina, alanina, serina, treonina y metionina). En la
técnica se conocen sustituciones de aminoácidos que generalmente no
alteran la actividad específica y son descritas, por ejemplo, por H.
Neurath y R.L. Hill, 1979, In, The Proteins, Academic Press, New
York. Los cambios de aparición más frecuente son Ala/Ser, Val/Ile,
Asp/Glu, Thr/Ser, Ala/Gly, Ala/Thr, Ser/Asn, Ala/Val, Ser/Gly,
Tyr/Phe, Ala/pro, Lys/Arg, Asp/Asn, Leu/Ile, Leu/Val, Ala/Glu y
Asp/Gly.
Además de los 20 aminoácidos estándar, los
aminoácidos no estándar (tales como
4-hidroxiprolina, 6-N-metil lisina, ácido
2-aminoisobutírico, isovalina y
alfa-metil serina) pueden ser sustituidos por
residuos de aminoácidos de un polipéptido de tipo salvaje. Un número
limitado de aminoácidos no conservadores, los aminoácidos que no son
codificados por el código genético y los aminoácidos no naturales
pueden ser sustituidos por residuos de aminoácidos. Los
"aminoácidos no naturales" han sido modificados después de la
síntesis de proteína, y/o tienen una estructura química en su/s
cadena/s lateral/es diferente de la de los aminoácidos estándar. Los
aminoácidos no naturales pueden ser sintetizados químicamente y
preferiblemente, están disponibles comercialmente, e incluyen ácido
pipecólico, ácido carboxílico de tiazolidina, dehidroprolina, 3 y
4-metilprolina, y
3,3-dimetilprolina.
De forma alternativa, los cambios de los
aminoácidos son de una naturaleza tal que las propiedades
físico-químicas de los polipéptidos son alteradas.
Por ejemplo, los cambios de los aminoácidos pueden mejorar la
termoestabilidad del polipéptido, alterar la especificidad de
sustrato, cambiar el pH óptimo y similares.
Los aminoácidos esenciales en el polipéptido
progenitor pueden ser identificados según procedimientos conocidos
en la técnica, tales como mutagénesis dirigida o mutagénesis por
barrido de alanina (Cunningham y Wells, 1989, Science 244:
1081-1085). En ésta técnica, las mutaciones simples
de alanina se introducen en cada residuo en la molécula, y las
moléculas mutantes resultantes se evalúan para detectar la actividad
biológica (es decir, actividad endoglucanasa) para identificar los
residuos de aminoácidos que son críticos para la actividad de la
molécula. Ver también, Hilton et al., 1996, J. Biol. Chem.
271: 4699-4708. El sitio activo de la enzima u otra
interacción biológica también pueden ser determinados por análisis
físico de la estructura, como lo determinan las técnicas como
resonancia magnética nuclear, cristalografía, difracción
electrónica, o mareaje por fotoafinidad, conjuntamente con la
mutación de aminoácidos de sitio de contacto putativo. Ver, por
ejemplo, de Vos et al., 1992, Science 255:
306-312; Smith et al., 1992, J. Mol. Biol.
224: 899-904; Wlodaver et al., 1992, FEBS
Lett. 309: 59-64. Las identidades de los aminoácidos
esenciales también pueden ser inferidas de análisis de identidades
con polipéptidos que están relacionados con un polipéptido según la
invención.
Las sustituciones de aminoácidos simples o
múltiples pueden ser realizadas y evaluadas utilizando métodos de
mutagénesis, recombinación, y/o redistribución, seguidos de un
procedimiento de selección pertinente, tales como los descritos por
Reidhaar-Olson y Sauer, 1988 Science 241:
53-57; Bowie and Sauer, 1989, Proc. Natl. Acad. Sci.
USA 86: 2152-2156; WO 95/17413; o WO 95/22625. Otros
métodos que pueden ser usados incluyen PCR propensa al error,
exposición en el fago (p. ej., Lowman et al., 1991, Biochem.
30: 10832-10837; Patente U.S. n.º. 5 223 409; WO
92/06204) y mutagénesis dirigida (Derbyshire et al., 1986,
Gene 46: 145; Ner et al., 1988, DNA 7: 127).
Los métodos de mutagénesis/redistribución pueden
ser combinados con métodos de selección automatizados de alto
rendimiento para detectar actividad de polipéptidos mutagenizados
clonados expresados por células huéspedes (Ness et al., 1999,
Nature Biotechnology 17: 893-896). Las moléculas de
ADN mutagenizadas que codifican los polipéptidos activos pueden ser
recuperadas de las células huéspedes y ser rápidamente ordenadas
usando métodos estándares de la técnica. Estos métodos permiten la
rápida determinación de la importancia de residuos de aminoácidos
individuales en un polipéptido de interés y pueden ser aplicados a
polipéptidos de estructura desconocida.
La cantidad total de sustituciones de
aminoácidos, deleciones y/o inserciones del polipéptido maduro de la
SEC ID n.º: 2, tales como aminoácidos 18 a 336 de la SEC ID n.º: 2,
es 10, preferiblemente 9, más preferiblemente 8, más preferiblemente
7, más preferiblemente como máximo 6, más preferiblemente 5, más
preferiblemente 4, incluso más preferiblemente 3, de la forma más
preferible 2 e incluso de la forma más preferible 1.
Un polipéptido de la presente invención puede
ser obtenido a partir de microorganismos de cualquier género. Para
objetivos de la presente invención, el término "obtenidos a partir
de" según se utiliza en este caso en relación a una fuente dada
significará que el polipéptido codificado por una secuencia de
nucleótidos es producido por la fuente o por una cepa en la cual la
secuencia de nucleótidos de la fuente ha sido insertada. En un
aspecto preferido, el polipéptido obtenido de una fuente dada es
segregado extracelularmente.
Un polipéptido de la presente invención puede
ser un polipéptido bacteriano. Por ejemplo, el polipéptido puede ser
un polipéptido de bacterias gram positivas tales como un polipéptido
de Bacillus, p. ej., un polipéptido de Bacillus
alkalophilus, Bacillus amyloliquefaciens, Bacillus brevis, Bacillus
circulans, Bacillus coagulans, Bacillus lautus, Bacillus lentus,
Bacillus licheniformis, Bacillus megaterium, Bacillus
stearothermophilus, Bacillus subtilis, o de Bacillus
thuringiensis con actividad endoglucanasa; o un polipéptido de
Streptomyces con actividad endoglucanasa, p. ej., un
polipéptido de Streptomyces lividans o Streptomyces
murinus con actividad endoglucanasa; o un polipéptido de
bacterias gram negativas,p. ej., un polipéptido de E. coli o
Pseudomona sp. con actividad endoglucanasa.
Un polipéptido de la presente invención puede
también ser un polipéptido fúngico y más preferiblemente un
polipéptido de levadura tal como un polipéptido de Candida,
Kluyveromices, Pichia, Saccharomyces, Schizosacaromyces, o
Yarrowia con actividad endoglucanasa; o más preferiblemente
un polipéptido filamentoso fúngico tal como un polipéptido de
Acremonium, Aspergillus, Aureobasidium, Cryptococcus,
Filibasidium, Fusarium, Humicola, Magnaporthe, Mucor,
Myceliophthora, Neocallimastix, Neurospora, Paecilomyces,
Penicillium, Piromyces, Schizophyllum, Talaromyces, Thermoascus,
Thielavia, Tolypocladium o Trichoderma con actividad
endoglucanasa.
En un aspecto preferido, el polipéptido es un
polipéptido de Saccharomyces carlsbergensis, Saccharomyces
cerevisiae, Saccharomyces diastaticus, Saccharomyces douglasii,
Saccharomyces kluyveri, Saccharomyces norbensis, o
Saccharomyces oviformis con actividad endoglucanasa.
En otro aspecto preferido, el polipéptido es un
polipéptido de Aspergillus aculeatus, Aspergillus awamori,
Aspergillus fumigatus, Aspergillus foetidus, Aspergillus japonicus,
Aspergillus nidulans, Aspergillus niger, Aspergillus oryzae,
Fusarium bactridioides, Fusarium cerealis, Fusarium crookwellense,
Fusarium culmorum, Fusarium graminearum, Fusarium graminum, Fusarium
heterosporum, Fusarium negundi, Fusarium oxysporum, Fusarium
reticulatum, Fusarium roseum, Fusarium sambucinum, Fusarium
sarcochroum, Fusarium sporotrichioides, Fusarium suiphureum,
Fusarium torulosum, Fusarium trichothecioides, Fusarium venenatum,
Humicola insolens, Humicola lanuginosa, Mucor miehei, Myceliophthora
thermophila, Neurospora crassa, Penicillium purpurogenum,
Trichoderma harzianum, Trichoderma koningii, Trichoderma
longibrachiatum, Trichoderma reesei o Trichoderma viride
con actividad endoglucanasa.
En otro aspecto preferido, el polipéptido es un
polipéptido de Thielavia achromatica, Thielavia albomyces,
Thielavia albopilosa, Thielavia australeinsis, Thielavia fimeti,
Thielavia microspora, Thielavia ovispora, Thielavia peruviana,
Thielavia spededonium, Thielavia setosa, Thielavia subthermophila,
Thielavia terrestris, Thielavia terrícola, Thielavia thermophila,
Thielavia variospora o Thielavia wareingii con actividad
endoglucanasa.
En un aspecto más preferido, el polipéptido es
un polipéptido de Thielavia terrestris con actividad
endoglucanasa, y más preferiblemente un polipéptido de Thielavia
terrestris NRRL 8126 con actividad endoglucanasa, p. ej., el
polipéptido de la SEC ID n.º: 2 o el polipéptido maduro de la
misma.
Se entenderá que para las especies mencionadas
la invención incluye los estados perfecto e imperfecto y otros
equivalentes taxonómicos, p. ej., anamorfos, sin importar el nombre
de la especie por el cual se los conoce. Los expertos en la técnica
fácilmente reconocerán la identidad de los equivalentes
apropiados.
Las cepas de estas especies son fácilmente
accesibles al público en un número de colecciones de cultivo, tales
como American Type Culture Collection (ATCC), Deutsche Sammlung von
Mikroorganismen und Zellkulturen GmbH (DSM), Centraalbureau Voor
Schimmelcultures (CBS) y Agricultural Research Service Patent
Culture Collection, Northern Regional Research Center (NRRL).
Además, los polipéptidos de este tipo pueden ser
identificados y obtenidos a partir de otras fuentes incluidos los
microorganismos aislados de la naturaleza (p. ej., tierra, abonos,
agua, etc.) usando las sondas mencionadas más arriba. Las técnicas
para aislar microorganismos de hábitats naturales son bien conocidas
en la técnica. El polinucleótido entonces puede ser obtenido
seleccionando de forma similar un ADN genómico o una biblioteca de
ADNc de ese microorganismo. Una vez que se ha detectado una
secuencia de polinucléotidos que codifica un polipéptido con la/s
sonda/s, el polinucleótido puede ser aislado o clonado utilizando
técnicas que son bien conocidas por los expertos en la técnica (ver,
p. ej., Sambrook et al., 1989, supra).
Los polipéptidos de la presente invención
también incluyen polipéptidos fusionados o polipéptidos de fusión
seccionables en los cuales otro polipéptido se fusiona en el
N-terminal o el C-terminal del
polipéptido o fragmento del mismo. Un polipéptido fusionado es
producido fusionando una secuencia de nucleótidos (o una parte de la
misma) codificando otro polipéptido a una secuencia de nucleótidos
(o una parte de la misma) de la presente invención. Las técnicas
para producir polipéptidos de fusión son conocidas en la técnica e
incluyen ligar las secuencias codificantes que codifican los
polipéptidos de modo que estén dentro del marco y que la expresión
del polipéptido fusionado esté bajo control del/los mismo/s
promotor/es y terminador.
La presente invención también se refiere a
polinucleótidos aislados que comprenden o que consisten en una
secuencia de nucleótidos que codifica un polipéptido de la presente
invención con actividad endoglucanasa.
En un aspecto preferido, la secuencia de
nucleótidos comprende o consiste en la SEC ID n.º: 1. En otro
aspecto más preferido, la secuencia de nucleótidos comprende o
consiste en la secuencia contenida en el plásmido pTter7F que está
contenido en E. coli NRRL B-30837. En otro
aspecto preferido, la secuencia de nucleótidos comprende o consiste
en la región codificante del polipéptido maduro de la SEC ID n.º: 1.
En otro aspecto preferido, la secuencia de nucleótidos comprende o
consiste en los nucleótidos 52 a 1008 de la SEC ID n.º: 1. En otro
aspecto más preferido, la secuencia de nucleótidos comprende o
consiste en la región codificante del polipéptido maduro contenida
en el plásmido pTter7F que está contenido en E. coli NRRL B
30837. La presente invención también incluye secuencias de
nucleótidos que codifican un polipéptido que comprende o que
consiste en la secuencia de aminoácidos de la SEC ID n.º: 2 o el
polipéptido maduro de la misma, que difiere de la SEC ID n.º: 1 o la
secuencia codificante del polipéptido maduro de la misma en virtud
de la degeneración del código genético. La presente invención
también se refiere a subsecuencias de la SEC ID n.º: 1 que codifican
fragmentos de la SEC ID n.º: 2 que tiene actividad
endoglucanasa.
La presente invención también se refiere a
polinucleótidos mutantes que comprenden al menos una mutación en la
secuencia codificante del polipéptido maduro de la SEC ID n.º: 1, en
la cual la secuencia de nucleótidos muíante codifica el polipéptido
maduro de la SEC ID n.º: 2. En un aspecto preferido, el polipéptido
maduro son los aminoácidos 18 a 336 de la SEC ID n.º: 2.
Las técnicas usadas para aislar o clonar un
polinucleótido que codifica un polipéptido son conocidas en la
técnica e incluyen el aislamiento del ADN genómico, la preparación
de ADNc, o una combinación de los mismos. La clonación de los
polinucleótidos de la presente invención de ese ADN genómico puede
ser efectuada, p. ej., usando la reacción en cadena de la polimerasa
(PCR) bien conocida o selección de anticuerpos de bibliotecas de
expresión para detectar fragmentos de ADN clonados con
características estructurales compartidas. Ver, por ej., Innis et
al., 1990, PCR: A Guide to Methods and Application, Academic
Press, New York. Se pueden utilizar otros procedimientos de
amplificación de ácido nucleico tales como la reacción en cadena de
la ligasa (LCR), la transcripción activada ligada (LAT) y la
amplificación basada en la secuencia de nucleótidos (NASBA). Los
polinucleótidos pueden ser clonados a partir de una cepa de
Thielavia, u otro organismo o un organismo relacionado y de
ese modo, por ejemplo, puede ser una variante alélica o de especie
de la región codificante del polipéptido de la secuencia de
nucleótidos.
La presente invención también se refiere a
polinucleótidos que comprenden secuencias de nucleótidos que tienen
un grado de identidad con la secuencia codificante del polipéptido
maduro de la SEC ID n.º: 1 de al menos el 60%, preferiblemente al
menos el 65%, más preferiblemente al menos el 70%, más
preferiblemente al menos el 75%, más preferiblemente al menos el
80%, más preferiblemente al menos el 85%, más preferiblemente al
menos el 90%, incluso más preferiblemente al menos el 95% y de la
forma más preferible al menos el 97% de identidad, que codifica un
polipéptido activo. En un aspecto preferido, la secuencia que
codifica el polipéptido maduro es los nucleótidos 52 a 1008 de la
SEC ID n.º: 1.
Puede ser necesaria la modificación de una
secuencia de nucleótidos que codifica un polipéptido de la presente
invención para la síntesis de polipéptidos sustancialmente similares
al polipéptido. El término "sustancialmente similares" al
polipéptido se refiere a formas del polipéptido que no están
presentes de manera natural. Estos polipéptidos pueden diferir de
alguna manera creada genéticamente del polipéptido aislado de su
fuente nativa, p. ej., variantes artificiales que difieren en
actividad específica, termostabilidad, pH óptimo o similares. La
secuencia de la variante puede estar construida sobre la base de la
secuencia de nucleótidos presentada como la región codificante del
polipéptido de la SEC ID n.º: 1, p. ej., una subsecuencia de la
misma, y/o por introducción de sustituciones de nucleótidos que no
dan lugar a otra secuencia de aminoácidos del polipéptido codificado
por la secuencia de nucleótidos, pero que corresponde al uso del
codón del organismo huésped destinado para la producción de la
enzima, o por introducción de sustituciones de nucleótidos que
pueden dar lugar a una secuencia de aminoácidos diferente. Para
obtener una descripción general de sustitución de nucleótidos, ver,
p. ej., Ford et al., 1991, Protein Expression and
Purification 2: 95-107.
Resultará evidente para los expertos en la
técnica que las sustituciones de este tipo pueden ser realizadas
fuera de las regiones críticas a la función de la molécula y aún así
darán como resultado un polipéptido activo. Los residuos de
aminoácidos esenciales para la actividad del polipéptido codificado
por un polinucleótido aislado de la invención, y en consecuencia
preferiblemente no sometidos a la sustitución, pueden ser
identificados según procedimientos conocidos en la técnica, tales
como mutagénesis dirigida o mutagénesis por barrido de alanina (ver,
p. ej., Cunningham y Wells, 1989, Science 244:
1081-1085). En esta última técnica, las mutaciones
se introducen en cada residuo positivamente cargado en la molécula,
y las moléculas mutantes resultantes se evalúan para detectar
actividad endoglucanasa para identificar residuos de aminoácidos que
son críticos para la actividad de la molécula. Los sitios de
interacción de sustrato-enzima también pueden ser
determinados por análisis de la estructura tridimensional como lo
determinan técnicas tales como análisis por resonancia magnética
nuclear, cristalografía o mareaje por fotoafinidad (ver, p. ej., de
Vos et al., 1992, Science 255: 306-312; Smith
et al., 1992, Journal of Molecular Biology 224:
899-904; Wlodaver et al., 1992, FEBS Letters
309: 59-64).
La presente invención también se refiere a
polinucleótidos aislados que codifican un polipéptido de la presente
invención, que se hibridan bajo condiciones de astringencia muy
baja, preferiblemente condiciones de astringencia baja, más
preferiblemente condiciones de astringencia media, más
preferiblemente condiciones de astringencia
media-alta, incluso más preferiblemente condiciones
de astringencia alta y más preferiblemente condiciones de
astringencia muy alta con (i) la secuencia codificante del
polipéptido maduro de la SEC ID n.º: 1, (ii) la secuencia de ADN
genómico que comprende la secuencia codificante del polipéptido
maduro de la SEC ID n.º: 1, o (iii) una cadena complementaria de (i)
o (ii); o variantes alélicas y subsecuencias de las mismas (Sambrook
et al., 1989, supra), tal y como se define en la
presente. En un aspecto preferido, la secuencia codificante del
polipéptido maduro son los nucleótidos 52 a 1008 de la SEC ID n.º:
1.
\newpage
La presente invención también se refiere a
polinucleótidos aislados obtenidos (a) hibridando una población de
ADN bajo condiciones de astringencia muy baja, baja, media,
media-alta, alta o muy alta con (i) la secuencia
codificante del polipéptido maduro de la SEC ID n.º: 1, (ii) la
secuencia de ADN genómico que comprende la secuencia codificante del
polipéptido maduro de la SEC ID n.º: 1, o (iii) una cadena
complementaria de (i) o (ii); y (b) aislar el polinucleótido de
hibridación, que codifica un polipéptido que tiene actividad
endoglucanasa. En un aspecto preferido, la secuencia que codifica el
polipéptido maduro son los nucleótidos 52 a 1008 de la SEC ID n.º:
1.
La presente invención también se refiere a
constructos de ácidos nucleicos que comprenden un polinucleótido
aislado de la presente invención operativamente enlazados a una o
más secuencias de control que dirigen la expresión de la secuencia
codificante en una célula huésped adecuada bajo condiciones
compatibles con las secuencias de control.
Un polinucleótido aislado que codifica un
polipéptido de la presente invención puede ser manipulado en una
variedad de maneras para proporcionar la expresión del polipéptido.
La manipulación de la secuencia del polinucleótido antes de su
inserción en un vector puede ser deseable o necesaria dependiendo
del vector de expresión. Las técnicas para modificar las secuencias
de polinucleótidos utilizando métodos de ADN recombinante son bien
conocidas en la técnica.
La secuencia de control puede ser una secuencia
promotora apropiada, una secuencia de nucleótidos que sea reconocida
por una célula huésped para la expresión de un polinucleótido que
codifica un polipéptido de la presente invención. La secuencia del
promotor contiene secuencias de control transcripcional que median
la expresión del polipéptido. El promotor puede ser cualquier
secuencia de nucleótidos que muestre actividad transcripcional en la
célula huésped de elección incluidos promotores mutantes, truncados
e híbridos, y pueden ser obtenidos a partir de genes que codifican
polipéptidos extracelulares o intracelulares homólogos o heterólogos
a la célula huésped.
Ejemplos de promotores adecuados para dirigir la
transcripción de los constructos de ácidos nucleicos de la presente
invención, especialmente en una célula huésped bacteriana, son los
promotores obtenidos a partir del lac operon de E. coli, gen
de agarasa de Streptomyces coelicolor (dagA), gen de
levansucrasa de Bacillus subtilis (sacB), gen de
alfa-amilasa de Bacillus licheniformis
(amyL), gen de amilasa maltogénica de Bacillus
stearothermophilus (amyM), gen de alfa-amilasa
de Bacillus amyloliquefaciens (amyQ), gen de penicilinasa de
Bacillus licheniformis (penP), genes xylA y xylB de
Bacillus subtilis y gen procariótico de beta lactamasa
(Villa-Kamaroff et al., 1978, Proceedings of
the National Academy of Sciences USA 75: 3727-3731),
al igual que el promotor tac (DeBoer et al., 1983,
Proceedings of the National Academy of Sciences USA 80:
21-25). Otros promotores son descritos en "Useful
proteins from recombinant bacteria" en Scientific American, 1980,
242: 74-94; y en Sambrook et al., 1989,
supra.
Ejemplos de promotores adecuados para dirigir la
transcripción de los constructos de ácidos nucleicos de la presente
invención en una célula huésped filamentosa fúngica son promotores
obtenidos a partir de los genes para TAKA amilasa de Aspergillus
oryzae, proteinasa aspártica de Rhizomucor miehei,
alfa-amilasa estable en ácido de Aspergillus
niger, alfa-amilasa estable en ácido de
Aspergillus niger, glucoamilasa (glaA) de
Aspergillus niger o Aspergillus awamori, lipasa de
Rhizomucor miehei, proteasa alcalina de Arspergillus
oryzae, triosa fosfato isomerasa de Aspergillus oryzae,
acetamidasa de Aspergillus nidulans, amiloglucosidasa de
Fusaríum venenatum (WO 00/56900), Fusaríum venenatum
Daria (WO 00/56900), Fusaríum venenatum Quinn (WO 00/56900),
proteasa tipo tripsina de Fusaríum oxysporum (WO 96/00787),
beta-glucosidasa de Trichoderma reesei,
celobiohidrolasa I de Trichoderma reesei, celobiohidrolasa II
de Trichoderma reesei, endoglucanasa I de Trichoderma
reesei, endoglucanasa II de Trichoderma reesei,
endoglucanasa III de Trichoderma reesei, endoglucanasa IV de
Trichoderma reesei, endoglucanasa V de Trichoderma
reesei, xilanasa I de Trichoderma reesei, xilanasa II de
Trichoderma reesei, beta-xilosidasa de
Trichoderma reesei, al igual que el promotor
NA2-tpi (un híbrido de los promotores de los genes
para alfa-amilasa neutra de Aspergillus niger
e triosa fosfato isomerasa de Aspergillus oryzae); y
promotores mutantes, truncados e híbridos de los mismos.
En un huésped de levadura, promotores útiles se
obtienen de los genes para enolasa de Saccharomyces
cerevisiae (ENO-1), galactoquinasa de
Saccharomyces cerevisiae (GAL1), alcohol
deshidrogenasa/gliceraldehído-3-fosfato
deshidrogenasa de Saccharomyces cerevisiae (ADH1, ADH2/GAP),
triosa fosfato isomerasa de Saccharomyces cerevisiae (TPI),
metalotionina de Saccharomyces cerevisiae (CUP1) y
3-fosfoglicerato quinasa de Saccharomyces
cerevisiae. Otros promotores útiles para células huéspedes de
levadura son descritos por Romanos et al., 1992, Yeast 8:
423-488.
La secuencia de control también puede ser una
secuencia del terminador de la transcripción adecuado, una secuencia
reconocida por una célula huésped para terminar la transcripción. La
secuencia del terminador está operativamente enlazada al 3' término
de la secuencia de nucleótidos que codifica el polipéptido.
Cualquier terminador que sea funcional en la célula huésped de
elección puede ser usado en la presente invención.
Los terminadores preferidos para células
huéspedes filamentosas fúngicas se obtienen a partir de los genes
para TAKA amilasa de Aspergillus oryzae, glucoamilasa de
Aspergillus niger, antranilato sintasa de Aspergillus
nidulans, alfa-glucosidasa de Aspergillus
niger y proteasa tipo tripsina de Fusaríum oxysporum.
Los terminadores preferidos para células
huéspedes de levadura se obtienen a partir de los genes para enolasa
de Saccharomyces cerevisiae, citocromo C (CYC1) de
Saccharomyces cerevisiae y
gliceraldehído-3-dehidrogenasa
fosfato de Saccharomyces cerevisiae. Otros terminadores
útiles para las células huéspedes de levadura son descritos por
Romanos et al., 1992, supra.
La secuencia de control también puede ser una
secuencia líder adecuada, una región no traducida de un ARNm que es
importante para la traducción por la célula huésped. La secuencia
líder está operativamente enlazada al 5' término de la secuencia de
nucleótidos que codifica el polipéptido. En la presente invención se
puede utilizar cualquier secuencia líder que sea funcional en la
célula huésped de elección.
Líderes preferidos para células huéspedes
fúngicas filamentosas se obtienen de los genes para TAKA amilasa de
Aspergilius oryzae y triosa fosfato isomerasa de
Aspergilius nidulans.
Los líderes adecuados para células huéspedes de
levadura se obtienen a partir de los genes para enolasa
(ENO-1) de Saccharomyces cerevisiae,
fosfoglicerato-quinasa de Saccharomyces
cerevisiae, factor alfa de Saccharomyces cerevisiae y
alcohol
deshidrogenasa/gliceraldehído-3-fosfato
deshidrogenasa (ADH2/GAP) de Saccharomyces cerevisiae.
La secuencia de control también puede ser una
secuencia de poliadenilación, una secuencia operativamente enlazada
al 3' término de la secuencia de nucleótidos y que, transcrita, es
reconocida por la célula huésped como una señal para añadir residuos
de poliadenosina al ARNm transcrito. En la presente invención se
puede utilizar cualquier secuencia de poliadenilación que sea
funcional en la célula huésped de elección.
Las secuencias de poliadenilación preferidas
para las células huéspedes fúngicas filamentosas se obtienen a
partir de los genes para TAKA amilasa de Aspergilius oryzae,
glucoamilasa de Aspergilius niger, antranilato sintasa de
Aspergilius nidulans, proteasa tipo tripsina de Fusarium
oxysporum y alfa- glucosidasa de Aspergilius niger.
Secuencias de poliadenilación útiles para
células huéspedes de levadura son descritas por Guo y Sherman, 1995,
Molecular Cellular Biology 15:5983-5990.
La secuencia de control también puede ser una
región codificante del péptido señal que codifica para una secuencia
de aminoácidos enlazada al amino término de un polipéptido y dirige
el polipéptido codificado en la vía secretora de la célula. El
extremo 5' de la secuencia codificante de la secuencia de
nucleótidos puede contener intrínsecamente una región codificante
del péptido señal naturalmente enlazada en el marco de lectura de
traducción con el segmento de la región codificante que codifica el
polipéptido segregado. De forma alternativa, el extremo 5' de la
secuencia codificante puede contener una región codificante del
péptido señal que sea externa a la secuencia codificante. La región
codificante del péptido señal extranjero puede ser requerida donde
la secuencia codificante naturalmente no contiene una región
codificante del péptido señal. De forma alternativa, la región
codificante del péptido señal extranjero puede simplemente
reemplazar la región codificante del péptido señal natural para
aumentar la secreción del polipéptido. No obstante, en la presente
invención se puede utilizar cualquier región codificante del péptido
señal que dirige el polipéptido expresado a la vía secretora de una
célula huésped de elección, es decir, segregada en un medio
de cultivo.
de cultivo.
Las regiones codificantes del péptido señal
eficaces para células huéspedes bacterianas son las regiones
codificantes del péptido señal obtenidas a partir de los genes para
amilasa maltogénica de Bacillus NCIB 11837,
alfa-amilasa de Bacillus stearothermophilus,
subtilisina de Bacillus licheniformis,
beta-lactamasa de Bacillus licheniformis,
proteasas neutras de Bacillus stearothermophilus (nprT, nprS,
nprM), y prsA de Bacillus subtilis. Otros péptidos
señal son descritos por Simonen y Palva, 1993, Microbiological
Reviews 57: 109-137.
Las regiones codificantes del péptido señal
eficaces para células huéspedes fúngicas filamentosas son las
regiones codificantes del péptido señal obtenidas a partir de los
genes para TAKA amilasa de Aspergillus oryzae, amilasa neutra
de Aspergillus niger, glucoamilasa de Aspergillus
niger, proteinasa aspártica de Rhizomucor miehei,
celulasa de Humicola insolens, endoglucanasa V de Humicola
insolens, y lipasa de Humicola lanuginosa.
En un aspecto preferido, el péptido señal son
los aminoácidos 1 a 17 de la SEC ID nº: 2. En otro aspecto
preferido, la región codificante del péptido señal son los
nucleótidos 1 a 51 de la SEC ID n.º: 1 que codifica los aminoácidos
1 a 17 de la SEC ID n.º: 2.
Los péptidos señal útiles para las células
huéspedes de levadura se obtienen a partir de los genes para factor
alfa de Saccharomyces cerevisiae e invertasa de
Saccharomyces cerevisiae. Otras regiones codificantes del
péptido señal útiles son descritas por Romanos et al., 1992,
supra.
La secuencia de control también puede ser una
región codificante del propéptido que codifica una secuencia de
aminoácidos situada en el amino término de un polipéptido. El
polipéptido resultante es conocido como una proenzima o
propolipéptido (o un zimógeno en algunos casos). Un propolipéptido
generalmente está inactivo y puede ser convertido a un polipéptido
activo maduro por corte catalítico o autocatalítico del propéptido
del propolipéptido. La región codificante del propéptido puede ser
obtenida a partir de los genes para proteasa alcalina de Bacillus
subtilis (aprE), proteasa neutra de Bacillus
subtilis (nprT), factor alfa de Saccharomyces
cerevisiae, proteinasa aspártica de Rhizomucor miehei y
lacasa de Myceliophthora thermophila (WO 95/33836).
\newpage
Donde tanto las regiones del péptido señal como
del propéptido están presentes en el amino término de un
polipéptido, la región del propéptido está situada junto al amino
término de un polipéptido y la región del péptido señal está situada
junto al amino término de la región del propéptido.
También puede ser conveniente añadir secuencias
reguladoras que permitan la regulación de la expresión del
polipéptido relativa al crecimiento de la célula huésped. Ejemplos
de sistemas reguladores son los que causan que la expresión del gen
se active o desactive en respuesta a un estímulo químico o físico,
incluida la presencia de un compuesto regulador. Los sistemas
reguladores en sistemas procarióticos incluyen los sistemas de
operadores lac, tac y trp. En la levadura, se
puede utilizar el sistema ADH2 o el sistema GAL1. En hongos
filamentosos, se pueden utilizar el promotor de TAKA
alfa-amilasa, el promotor de glucoamilasa de
Aspergillus niger y el promotor de glucoamilasa de
Aspergillus oryzae como secuencias reguladoras. Otros
ejemplos de secuencias reguladoras son los que permiten la
amplificación génica. En sistemas eucarióticos, estos incluyen el
gen de la dihidrofolato-reductasa que se amplifica
en presencia de metotrexato y los genes de metalotioneína que se
amplifican con metales pesados. En estos casos, la secuencia de
nucleótidos que codifica el polipéptido estaría operativamente
enlazada con la secuencia reguladora.
La presente invención también se refiere a
vectores de expresión recombinantes que comprenden un polinucleótido
de la presente invención, un promotor y señales de terminación
transcripcionales y traduccionales. Los diferentes ácidos nucleicos
y secuencias de control descritos en la presente pueden ser unidos
para producir un vector de expresión recombinante que puede incluir
uno o más sitios de restricción convenientes para permitir la
inserción o la sustitución de la secuencia de nucleótidos que
codifica el polipéptido en esos sitios. De forma alternativa, una
secuencia de nucleótidos de la presente invención puede ser
expresada insertando la secuencia de nucleótidos o un constructo de
ácidos nucleicos que comprende la secuencia en un vector apropiado
para la expresión. En la creación del vector de expresión, la
secuencia codificante se localiza en el vector de modo que la
secuencia codificante esté operativamente enlazada con las
secuencias de control apropiadas para la expresión.
El vector de expresión recombinante puede ser
cualquier vector (p. ej., un plásmido o virus) que puede ser
convenientemente sometido a procedimientos de ADN recombinante y
puede provocar la expresión de la secuencia de nucleótidos. La
elección del vector normalmente dependerá de la compatibilidad del
vector con la célula huésped en la cual se introducirá el vector.
Los vectores pueden ser plásmidos circulares lineales o
cerrados.
El vector puede ser un vector de replicación
autónoma, es decir, un vector que existe como una entidad
extracromosómica, cuya replicación es independiente de la
replicación cromosómica, p. ej., un plásmido, un elemento
extracromosómico, un minicromosoma o un cromosoma artificial. El
vector puede contener cualquier medio para asegurar la
autorreplicación. De forma alternativa, el vector puede ser uno que,
introducido en la célula huésped, es integrado en el genoma y
replicado con el o los cromosomas en los cuales ha sido integrado.
Además, se puede utilizar un único vector o plásmido o dos o más
vectores o plásmidos que juntos contienen el ADN total que se
introducirá en el genoma de la célula huésped o un transposón.
Los vectores de la presente invención
preferiblemente contienen uno o más marcadores seleccionables que
permiten la fácil selección de células transformadas, modificadas,
transducidas o similares. Un marcador seleccionable es un gen cuyo
producto proporciona resistencia biocida o vírica, resistencia a
metales pesados, prototrofía a auxótrofos y similares.
Ejemplos de marcadores seleccionables
bacterianos son los genes dal de Bacillus subtilis o
Bacillus licheniformis, o marcadores que confieren
resistencia antibiótica tales como ampicilina, canamicina,
cloranfenicol o resistencia a la tetraciclina. Marcadores adecuados
para células huéspedes de levadura son ADE2, HIS3, LEU2, LYS2, MET3,
TRP1 y URA3. Marcadores seleccionables para el uso en una célula
huésped fúngica filamentosa incluyen, pero sin limitarse a ellos,
amdS (acetamidasa), argB
(ornitina-carbamoiltransferasa), bar
(fosfinotricina acetiltransferasa), hph (higromicina
fosfotransferasa), niaD (nitrato-reductasa),
pyrG (orotidina-5'-fosfato-
descarboxilasa), sC (sulfato adeniltransferasa), y
trpc (antranilato sintasa) y equivalentes de los mismos. Para
el uso en una célula de Aspergilius se prefieren los genes
amdS y pyrG de Aspergilius nidulans o
Aspergilius oryzae y el gen bar de Streptomyces
hygroscopicus.
Los vectores de la presente invención
preferiblemente contienen un elemento o elementos que permiten la
integración del vector en el genoma de la célula huésped o la
replicación autónoma del vector en la célula independiente del
genoma.
Para la integración en el genoma de la célula
huésped, el vector puede depender de la secuencia del polinucleótido
que codifica el polipéptido o cualquier otro elemento del vector
para la integración en el genoma por recombinación homologa o no
homologa. De forma alternativa, el vector puede contener secuencias
de nucleótidos adicionales para dirigir la integración por
recombinación homologa en el genoma de la célula huésped a una
ubicación o ubicaciones precisas en el o los cromosomas. Para
aumentar la probabilidad de integración en una ubicación precisa,
los elementos integracionales preferiblemente deberían contener un
número suficiente de ácidos nucleicos, tal como 100 a 10000 pares de
bases, preferiblemente 400 a 10000 pares de bases y más
preferiblemente 800 a 10000 pares de bases, que tienen un alto grado
de identidad con la secuencia objetivo correspondiente para aumentar
la probabilidad de recombinación homologa. Los elementos
integracionales pueden ser cualquier secuencia que sea homologa a la
secuencia objetivo en el genoma de la célula huésped. Además, los
elementos integracionales pueden ser secuencias de nucleótidos no
codificantes o codificantes. En cambio, el vector puede ser
integrado en el genoma de la célula huésped por recombinación no
homóloga.
Para la replicación autónoma, el vector además
puede comprender un origen de replicación que permita que el vector
se replique de manera autónoma en la célula huésped en cuestión. El
origen de la replicación puede ser cualquier plásmido replicador que
medie la replicación autónoma que funciona en una célula. El término
"origen de la replicación" o "replicador del plásmido" es
definido en la presente como una secuencia de nucleótidos que
permite que un plásmido o vector se replique in vivo.
Ejemplos de orígenes bacterianos de replicación
son los orígenes de replicación de los plásmidos pBR322; pUC19;
pACC177, y pACYC184 que permiten la replicación en E. coli y
pUB110; pE194; pTA1060 y pAM\beta1 que permiten la replicación en
Bacillus.
Ejemplos de orígenes de replicación para el uso
en una célula huésped de la levadura son los orígenes replicación de
2 mieras, ARS1, ARS4, la combinación de ARS1 y CEN3 y la combinación
de ARS4 y CEN6.
Ejemplos de orígenes de replicación útiles en
una célula fúngica filamentosa son AMA1 y ANS1 (Gems et al.,
1991, Gene 98: 61-67; Cullen et al., 1987,
Nucleic Acids Research 15: 9163-9175; WO 00/24883).
El aislamiento del gen AMA1 y la construcción de plásmidos o
vectores que comprenden el gen se puede lograr según los métodos
descritos en WO 00/24883.
Se puede insertar más de una copia de un
polinucleótido de la presente invención en la célula huésped para
aumentar la producción del producto genético. Se puede obtener un
aumento en el número de copias del polinucleótido integrando al
menos una copia adicional de la secuencia en el genoma de la célula
huésped o incluyendo un gen marcador seleccionable amplificable con
el polinucleótido donde las células que contienen copias
amplificadas del gen marcador seleccionable, y de ese modo copias
adicionales del polinucleótido, pueden ser seleccionadas cultivando
las células en presencia del agente seleccionable apropiado.
Los procedimientos usados para enlazar los
elementos descritos anteriormente para construir los vectores de
expresión recombinantes de la presente invención son conocidos por
el experto en la técnica (ver, p. ej., Sambrook et al., 1989,
supra).
La presente invención también se refiere a
células huéspedes recombinantes que comprenden un polinucleótido de
la presente invención, que son usadas ventajosamente en la
producción recombinante de los polipéptidos. Un vector que comprende
un polinucleótido de la presente invención se introduce en una
célula huésped de modo que el vector es mantenido como un integrante
cromosómico o como un vector extracromosómico autorreplicante como
se describe anteriormente. El término "célula huésped" incluye
cualquier progenie de una célula madre que no es idéntica a la
célula madre debido a mutaciones que ocurren durante la replicación.
La elección de una célula huésped dependerán en gran parte del gen
que codifica el polipéptido y su fuente.
La célula huésped puede ser un microorganismo
unicelular, p. ej., un procariota, o un microorganismo no
unicelular, p. ej., un eucariota.
Microorganismos unicelulares útiles son las
células bacterianas tales como bacterias gram positivas incluyendo,
pero sin limitarse a ellas, una célula de Bacillus, p. ej.,
Bacillus alkalophilus, Bacillus amyloliquefaciens, Bacillus
brevis, Bacillus circulans, Bacillus clausii, Bacillus coagulans,
Bacillus lautus, Bacillus lentus, Bacillus licheniformis, Bacillus
megaterium, Bacillus stearothermophilus, Bacillus subtilis y
Bacillus thuringiensis; o una célula de Streptomyces,
por ej., Streptomyces lividans y Streptomyces murinus
o bacterias gram negativas tales como E. coli y
Pseudomonas sp. En un aspecto preferido, la célula huésped
bacteriana es una célula de Bacillus lentus, Bacillus
licheniformis, Bacillus stearothermophilus o Bacillus
subtilis. En otro aspecto preferido, la célula de
Bacillus es un Bacillus alcalofílico.
La introducción de un vector en una célula
huésped bacteriana puede, por ejemplo, ser efectuada por
transformación de protoplasto (ver, p. ej., Chang y Cohen, 1979,
Molecular General Genetics 168: 111-115), usando
células competentes (ver, p. ej., Young y Spizizen, 1961, Journal of
Bacteriology 81: 823-829, o Dubnau y
Davidoff-Abelson, 1971, Journal of Molecular Biology
56: 209-221), electroporación (ver, por ej.,
Shigekawa y Dower, 1988, Biotechniques 6: 742-751),
o conjugación (ver, p. ej., Koehler y Thorne, 1987, Journal of
Bacteriology 169: 5771-5278).
La célula huésped también puede ser un
eucariota, tal como un mamífero, un insecto, una planta o una célula
fúngica.
En un aspecto preferido, la célula huésped es
una célula fúngica. "Hongos" según se utiliza en este caso
incluye los filos Ascomycota, Basidiomycota, Chytridiomycota y
Zygomycota (según lo definen Hawksworth et al., en, Ainsworth
and Bisby's Dictionary of The Fungi, 8º edición, 1995, CAB
International, University Press, Cambridge, Reino Unido) al igual
que el Oomycota (según lo citan Hawksworth et al., 1995,
supra, página 171) y todos los hongos mitospóricos
(Hawksworth et al., 1995, supra).
En un aspecto más preferido, la célula huésped
fúngica es una célula de levadura. "Levadura" según se utiliza
en este caso incluye levadura ascosporógena (Endomycetales),
levadura basidiosporógena y levadura de los Fungi Imperfecti
(Blastomycetes). Puesto que la clasificación de la levadura puede
cambiar en el futuro, para los objetivos de esta invención, la
levadura será definida como se describe en Biology and Activities of
Yeast (Skinner, F.A., Passmore, S.M., y Davenport, R.R., eds, Soc.
App. Bacteriol. Symposium Series No. 9, 1980).
En un aspecto más preferido, la célula huésped
de la levadura es una célula de Candida, Hansenula,
Kluyveromyces, Pichia, Saccharomyces, Schizosaccharomyces o
Yarrowia.
En un aspecto más preferido, la célula huésped
de la levadura es una célula de Saccharomyces carlsbergensis,
Saccharomyces cerevisiae, Saccharomyces diastaticus, Saccharomyces
dougiasii, Saccharomyces kluyveri, Saccharomyces norbensis o
Saccharomyces oviformis. En otro aspecto preferido, la célula
huésped de la levadura es una célula de Kluyveromyces lactis.
En otro aspecto preferido, la célula huésped de la levadura es una
célula de Yarrowia lipolytica.
En otro aspecto preferido, la célula huésped
fúngica es una célula fúngica filamentosa. "Hongos
filamentosos" incluyen todas las formas filamentosas de la
subdivisión Eumycota y Oomycota (según la definen Hawksworth et
al., 1995, supra). Los hongos filamentosos generalmente
están caracterizados por una pared micelial compuesta por quitina,
celulosa, glucano, quitosano, manano y otros polisacáridos
complejos. El crecimiento vegetativo es por alargamiento hifal y el
catabolismo de carbono es estrictamente aeróbico. Por el contrario,
el crecimiento vegetativo por levaduras tales como Saccharomyces
cerevisiae es por injerto de un talo unicelular y el catabolismo
de carbono puede ser fermentativo.
En un aspecto más preferido, la célula huésped
fúngica filamentosa es una célula de Acremonium, Aspergillus,
Aureobasidium, Bjerkandera, Ceriporiopsis, Coprinus, Coriolus,
Cryptococcus, Filibasidium, Fusarium, Humicola, Magnaporthe, Mucor,
Myceliophthora, Neocallimastix, Neurospora, Paecilomyces,
Penicillium, Phanerochaete, Phlebia, Piromyces, Pleurotus,
Schizophyllum, Talaromyces, Thermoascus, Thielavia, Tolypocladium,
Trametes o Trichoderma.
En un aspecto preferido, la célula huésped
fúngica filamentosa es una célula de Aspergillus awamori,
Aspergillus fumigatus, Aspergillus foetidus, Aspergillus japonicus,
Aspergillus nidulans, Aspergillus niger o Aspergillus
oryzae. En otro aspecto preferido, la célula huésped fúngica
filamentosa es una célula de Fusarium bactridioides, Fusarium
cerealis, Fusarium crookwellense, Fusarium culmorum, Fusarium
graminearum, Fusarium graminum, Fusarium heterosporum, Fusarium
negundi, Fusarium oxysporum, Fusarium reticulatum, Fusarium roseum,
Fusarium sambucinum, Fusarium sarcochroum, Fusarium
sporotrichioides, Fusarium sulphureum, Fusarium torulosum, Fusarium
trichothecioides o Fusarium venenatum. En otro aspecto
preferido, la célula huésped fúngica filamentosa es una célula
Bjerkandera adusta, Ceriporiopsis aneirina, Ceriporiopsis
aneirina, Ceriporiopsis caregiea, Ceriporiopsis gilvescens,
Ceriporiopsis pannocinta, Ceriporiopsis rivulosa, Ceriporiopsis
subrufa, Ceriporiopsis subvermispora, Coprinus cinereus, Coriolus
hirsutus, Humicola insolens, Humicola lanuginosa, Mucor miehei,
Myceliophthora thermophila, Neurospora crassa, Penicillium
purpurogenum, Phanerochaete chrysosporium, Phlebia radiata,
Pleurotus eryngii, Thielavia achromatica, Thielavia albomyces,
Thielavia albopilosa, Thielavia australeinsis, Thielavia fimeti,
Thielavia microspora, Thielavia ovispora, Thielavia peruviana,
Thielavia spededonium, Thielavia setosa, Thielavia subthermophila,
Thielavia terrestris, Thielavia terrícola, Thielavia thermophila,
Thielavia variospora, Thielavia wareingii, Trametes villosa,
Trametes versicolor, Trichoderma harzianum, Trichoderma koningii,
Trichoderma longibrachiatum, Trichoderma reesei o Trichoderma
viride.
Las células fúngicas pueden ser transformadas
por un proceso que implica la formación de protoplastos, la
transformación de los protoplastos y la regeneración de la pared
celular de manera conocida per se. Los procedimientos
adecuados para la transformación de células huéspedes de
Aspergilius y Trichoderma están descritos en EP 238
023 y Yelton etaAI., 1984, Proceedings of the National Academy of
Sciences USA 81: 1470-1474. Los métodos adecuados
para transformar las especies de Fusarium son descritas por
Malardier et al., 1989, Gene 78: 147-156 y WO
96/00787. La levadura puede ser transformada usando los
procedimientos descritos por Becker y Guarente, en Abelson, J.N. and
Simón, M.I., editors, Guide to Yeast Genetics and Molecular Biology,
Methods in Enzymology, Volume 194, pp 182-187,
Academic Press, Inc., New York; Ito et al., 1983, Journal of
Bacteriology 153: 163; y Hinnen et al., 1978, Proceedings of
the National Academy of Sciences USA 75: 1920.
La presente invención también se refiere a
métodos para producir un polipéptido de la presente invención, que
comprenden: (a) cultivar una célula, que en su tipo de forma salvaje
es capaz de producir el polipéptido, bajo condiciones propicias para
la producción del polipéptido; y (b) recuperar el polipéptido. En un
aspecto preferido, la célula es del género Thielavia. En un
aspecto preferido, la célula es Thielavia terrestris. En un
aspecto preferido, la célula es Thielavia terrestris NRRL
8126.
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La presente invención también se refiere a
métodos para producir un polipéptido de la presente invención, que
comprende: (a) cultivar una célula huésped bajo condiciones
propicias para la producción del polipéptido; y (b) recuperar el
polipéptido.
La presente invención también se refiere a
métodos para producir un polipéptido de la presente invención, que
comprende: (a) cultivar una célula huésped bajo condiciones
propicias para la producción del polipéptido, donde la célula
huésped comprende una secuencia de nucleótidos mutantes que
comprenden al menos una mutación en la secuencia codificadora de
polipéptido maduro de la SEC ID n.º: 1, donde la secuencia de
nucleótidos muíante codifica un polipéptido que consiste en el
polipéptido maduro de la SEC ID n.º: 2, y (b) recuperar el
polipéptido. En un aspecto preferido, el polipéptido maduro son los
aminoácidos 18 a 336 de la SEC ID n.º: 2.
En los métodos de producción de la presente
invención, las células son cultivadas en un medio nutritivo adecuado
para la producción del polipéptido usando métodos bien conocidos en
la técnica. Por ejemplo, la célula puede ser cultivada por cultivo
de matraz vibrante y fermentación a pequeña escala o gran escala
(incluidas fermentaciones continuas, por lote, por lote alimentado o
en estado sólido) en fermentadores de laboratorio o industriales
realizados en un medio adecuado y bajo condiciones que permitan que
el polipéptido sea expresado y/o aislado. El cultivo se desarrolla
en un medio nutritivo adecuado que comprende fuentes de nitrógeno y
carbono y sales inorgánicas, usando procedimientos conocidos en la
técnica. Se encuentran disponibles medios adecuados de proveedores
comerciales o pueden ser preparados según composiciones publicadas
(p. ej., en catálogos de la American Type Culture Collection). Si el
polipéptido es segregado en el medio nutritivo, el polipéptido puede
ser recuperado directamente del medio. Si el polipéptido no es
segregado en el medio, puede ser recuperado a partir de lisados
celulares.
Los polipéptidos pueden ser detectados usando
métodos conocidos en la técnica que son específicos para los
polipéptidos. Estos métodos de detección pueden incluir el uso de
anticuerpos específicos, la formación de un producto enzimático o la
desaparición de un sustrato enzimático. Por ejemplo, se puede
utilizar un ensayo enzimático para determinar la actividad del
polipéptido como se describe en la presente.
El polipéptido resultante puede ser recuperado
usando métodos conocidos en la técnica. Por ejemplo, el polipéptido
puede ser recuperado del medio nutritivo por procedimientos
convencionales incluyendo, pero sin limitarse a ello, centrifugado,
filtración, extracción, secado por pulverización, evaporación o
precipitación.
Los polipéptidos de la presente invención pueden
ser purificados por una variedad de procedimientos conocidos en la
técnica incluyendo, pero sin limitarse a ello, cromatografía (p.
ej., de intercambio iónico, de afinidad, hidrofóbico, cromatoenfoque
y por exclusión de tamaños), procedimientos electroforéticos (p.
ej., isoelectroenfoque preparatorio), solubilidad diferencial (p.
ej., precipitación de sulfato de amonio), SDS-PAGE,
o extracción (ver, p. ej., Protein Purification, J.-C. Janson and
Lars Ryden, editors, VCH Publishers, New York, 1989) para obtener
polipéptidos sustancialmente puros.
La presente invención también se refiere a una
planta transgénica, parte de planta, o célula vegetal que ha sido
transformada con una secuencia de nucleótidos que codifica un
polipéptido que tiene actividad endoglucanasa de la presente
invención para expresar y producir el polipéptido en cantidades
recuperables. El polipéptido puede ser recuperado de la planta o
parte de la planta. De forma alternativa, la planta o parte de la
planta que contiene el polipéptido recombinante puede ser usado como
tal para mejorar la calidad de un alimento o alimentos, p. ej.,
mejorar el valor nutritivo, la palatabilidad y las propiedades
reológicas o para destruir un factor antinutritivo.
La planta transgénica puede ser dicotiledónea
(una dicot) o monocotiledónea (una monocot). Ejemplos de plantas
monocotiledóneas son las hierbas, tales como poa de prados (poa
pratense, Poa), hierba forrajera tal como Festuca, Lolium, hierba
templada, tal como Agrostis, y cereales, p. ej., trigo, avena,
centeno, cebada, arroz, sorgo y mazorca (maíz).
Ejemplos de plantas dicotiledóneas son tabaco,
legumbres, tales como altramuces, patata, remolacha azucarera,
guisante, judía y semilla de soja, y plantas cruciferas (familia
Brassicaceae) tales como coliflor, semilla de colza, y el organismo
modelo estrechamente relacionado Arabidopsis thaliana.
Ejemplos de partes de planta son tallo, callo,
hojas, raíz, frutas, semillas y tubérculos al igual que los tejidos
individuales que comprenden estas partes, p. ej., epidermis,
mesófilo, parenquima, tejidos vasculares, meristemas. Compartimentos
de célula vegetal específicos, tales como cloroplastos, apoplastos,
mitocondria, vacuolas, peroxisomas y citoplasma son también
considerados parte de una planta. Además, cualquier célula vegetal,
cualquiera que sea el origen del tejido, se considera una parte de
la planta. De igual modo, las partes de la planta tales como tejidos
específicos y células aisladas para facilitar la utilización de la
invención también son consideradas partes de la planta, p. ej.,
embriones, endospermas, aleurona y revestimientos de semillas.
También están incluidas dentro del campo de la
presente invención la descendencia de tales plantas, partes de
planta y células vegetales.
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La planta transgénica o célula vegetal que
expresa un polipéptido de la presente invención puede ser construida
conforme a métodos conocidos en la técnica. En breve, la planta o
célula vegetal es construida incorporando uno o más constructos de
expresión que codifican un polipéptido de la presente invención en
el genoma huésped de la planta o genoma de cloroplasto y propagando
la planta modificada o célula vegetal resultante en una planta
transgénica o célula vegetal.
El constructo de expresión es convenientemente
un constructo de ácidos nucléicos que comprende un polinucleótido
que codifica un polipéptido de la presente invención operativamente
enlazado con secuencias reguladoras apropiadas requeridas para la
expresión de la secuencia de nucleótidos en la planta o parte de
planta de elección. Además, el constructo de expresión puede
comprender un marcador seleccionable útil para identificar las
células huéspedes en las cuales el constructo de expresión ha sido
integrado y las secuencias de ADN necesarias para la introducción
del constructo en la planta en cuestión (éste depende del método de
introducción de ADN que se utilizará).
La elección de secuencias reguladoras, tales
como secuencias de promotor y terminador y opcionalmente secuencias
de señal o de tránsito es determinada, por ejemplo, basándose en
cuándo, dónde y cómo se desea expresar el polipéptido. Por ejemplo,
la expresión del gen que codifica un polipéptido de la presente
invención puede ser constitutiva o inducible, o puede ser
desarrollable, específica de la fase o del tejido, y el producto
genético puede ser dirigido a un tejido específico o parte de la
planta tal como las semillas u hojas. Las secuencias reguladoras
son, por ejemplo, descritas por Tague et al., 1988, Plant
Physiology 86: 506.
Para la expresión constitutiva, se pueden
utilizar el promotor 35S-CaMV, de la ubiquitina de
maíz 1 y de la actina de arroz 1 (Franck et al., 1980, Cell
21: 285-294, Christensen et al., 1992, Plant
Mo. Biol. 18: 675-689; Zhang et al., 1991,
Plant Cell 3: 1155-1165). Los promotores específicos
de un órgano pueden ser, por ejemplo, un promotor de tejidos
sumidero de almacenamiento tales como semillas, tubérculos de patata
y frutas (Edwards & Coruzzi, 1990, Ann. Rev. Genet. 24:
275-303), o de tejidos sumideros metabólicos tales
como meristemas (Ito et al., 1994, Plant Mol. Biol. 24:
863-878), un promotor específico de las semillas tal
como el promotor de glutelina, prolamina, globulina o albúmina del
arroz (Wu et al., 1998, Plant and Cell Physiology 39:
885-889), un promotor de Vicia faba de la
legúmina B4 y el gen de proteína de semilla desconocida de Vicia
faba (Conrad et al., 1998, revista de Journal of Plant
Physiology 152: 708-711), un promotor de una
proteína de cuerpo de aceite de semilla (Chen et al., 1998,
Plant and Cell Physiology 39: 935-941), el promotor
napA de la proteína de almacenamiento de Brassica
napus, o cualquier otro promotor específico de semilla conocido
en la técnica, por ej., como se describe en WO 91/14772. Además, el
promotor puede ser un promotor específico de una hoja tal como el
promotor rbcs de arroz o tomate (Kyozuka et al., 1993,
Plant Physiology 102: 991-1000, el promotor del gen
de adenina metiltransferasa del virus de chlorella (Mitra y Higgins,
1994, Plant Molecular Biology 26: 85-93), o el
promotor del gen aidP de arroz (Kagaya et al., 1995,
Molecular and General Genetics 248: 668-674), o un
promotor inducible por herida tal como el promotor pin2 de la patata
(Xu et al., 1993, Plant Molecular Biology 22:
573-588). Asimismo, el promotor puede ser inducible
por tratamientos abióticos tales como temperatura, sequía, o
alteraciones en la salinidad o inducidas por sustancias aplicadas
exógenamente que activan el promotor, p. ej., etanol, estrógenos,
hormonas de planta tales como etileno, ácido abscísico y ácido
giberélico y metales pesados.
También se puede utilizar un elemento
intensificador del promotor para conseguir expresión más alta de un
polipéptido de la presente invención en la planta. Por ejemplo, el
elemento intensificador del promotor puede ser un intrón que esté
colocado entre el promotor y la secuencia de nucleótidos que
codifica un polipéptido de la presente invención. Por ejemplo, Xu
et al., 1993, supra, revelan el uso del primer intrón
del gen de la actina de arroz 1 para aumentar la expresión.
El gen marcador seleccionable y cualquier otra
parte del constructo de expresión puede ser elegido de aquellos
disponibles en la técnica.
El constructo de ácidos nucléicos se incorpora
en el genoma de la planta según técnicas convencionales conocidas en
la técnica, incluidas transformación mediada por
Agrobacterium, transformación mediada por virus,
microinyección, bombardeo de partículas, transformación biolística y
electroporación (Gasser et al., 1990, Science 244: 1293;
Potrykus, 1990, Bio/Technology 8: 535; Shimamoto et al.,
1989, Nature 338: 274).
Actualmente, la transferencia de genes mediada
por Agrobacterium tumefaciens es el método de elección para
generar dicotiledóneas transgénicas (para obtener una revisión, ver
Hooykas y Schilperoort, 1992, Plant Molecular Biology 19:
15-38) y también puede ser usado para transformar
monocotiledóneas, aunque frecuentemente se utilizan otros métodos de
transformación para estas plantas. Actualmente, el método de
elección para generar monocotiledóneas transgénicas es el bombardeo
de partículas (oro microscópico o partículas de tungsteno revestidas
con ADN transformante) de callos embrionarios o embriones en
desarrollo (Christou, 1992, Plant Journal 2:
275-281; Shimamoto, 1994, Current Opinión
Biotechnology 5: 158-162; Vasil et al., 1992,
Bio/Technology 10: 667-674). Un método alternativo
para la transformación de monocotiledóneas se basa en la
transformación del protoplasto como lo describe Omirulleh et
al., 1993, Plant Molecular Biology 21:
415-428.
Después de la transformación, los transformantes
que tienen incorporados el constructo de expresión son seleccionados
y regenerados en plantas enteras según métodos bien conocidos en la
técnica. Frecuentemente el procedimiento de transformación se diseña
para la eliminación selectiva de genes de selección durante la
regeneración o bien en las siguientes generaciones usando, por
ejemplo, cotransformación con dos constructos de
ADN-T separados o escisión específica del sitio del
gen de selección por una recombinasa específica.
La presente invención también se refiere a
métodos para producir un polipéptido de la presente invención que
comprende: (a) cultivar una planta transgénica o una célula vegetal
que comprende un polinucleótido que codifica un polipéptido que
tiene actividad endoglucanasa de la presente invención bajo
condiciones propicias para la producción del polipéptido; y (b)
recuperar el polipéptido.
La presente invención también se refiere a
composiciones que comprenden un polipéptido de la presente
invención. Preferiblemente, las composiciones se enriquecen en ese
polipéptido. El término "enriquecen" indica que la actividad de
la endoglucanasa de la composición ha sido aumentada, p. ej., con un
factor de enriquecimiento de al menos 1.1.
La composición puede comprender un polipéptido
de la presente invención como el componente enzimático más
importante, p. ej., una composición monocomponente. De forma
alternativa, la composición puede comprender actividades enzimáticas
múltiples, tales como una aminopeptidasa, amilasa, carbohidrasa,
carboxipeptidasa, catalasa, celulasa, quitinasa, cutinasa,
glicosiltransferasa de ciclodextrina, desoxiribonucleasa, esterasa,
alfa-galactosidasa,
beta-galactosidasa, glucoamilasa,
alfa-glucosidasa, beta-glucosidasa,
haloperoxidasa, invertasa, lacasa, lipasa, manosidasa, oxidasa,
enzima pectinolítica, peptidoglutaminasa, peroxidasa, fitasa,
polifenoloxidasa, enzima proteolítica, ribonucleasa,
transglutaminasa o xilanasa. Las enzimas adicionales pueden ser
producidas, por ejemplo, por un microorganismo del género
Aspergillus, preferiblemente Aspergillus aculeatus,
Aspergillus awamori, Aspergillus fumigatus, Aspergillus foetidus,
Aspergillus japonicus, Aspergillus nidulans, Aspergillus niger,
o Aspergillus oryzae; Fusarium, preferibemente Fusarium
bactridioides, Fusarium cerealis, Fusarium crookwellense, Fusarium
culmorum, Fusarium graminearum, Fusarium graminum, Fusarium
heterosporum, Fusarium negundi, Fusarium oxysporum, Fusarium
reticulatum, Fusarium roseum, Fusarium sambucinum, Fusarium
sarcochroum, Fusarium sulphureum, Fusarium toruloseum, Fusarium
tríchothecioides, o Fusarium venenatum; Humicola,
preferiblemente Humicola insolens o Humicola
lanuginosa; o Trichoderma, preferiblemente Trichoderma
harzianum, Trichoderma koningii, Trichoderma longibrachiatum,
Trichoderma reesei, o Trichoderma viride.
Las composiciones de polipéptido pueden ser
preparadas conforme a métodos conocidos en la técnica y pueden ser
en forma de un líquido o una composición seca. Por ejemplo, la
composición de polipéptido puede ser en forma de un granulado o un
microgranulado. El polipéptido que se incluirá en la composición
puede ser estabilizado conforme a métodos conocidos en la
técnica.
A continuación se presentan ejemplos de usos
preferidos de las composiciones de polipéptido de la invención. La
dosificación de la composición de polipéptido de la invención y
otras condiciones bajo las cuales se usa la composición pueden ser
determinadas basándose en métodos conocidos en la técnica.
La presente invención también está dirigida a
métodos para usar polipéptidos que tienen actividad endoglucanasa, o
composiciones de los mismos.
Los polipéptidos que tienen actividad
endoglucanasa, y las células huéspedes de la presente invención
pueden ser usados en la producción de monosacáridos, disacáridos y
polisacáridos como materias primas químicas o de fermentación de
biomasa para la producción de etanol, plástico u otros productos o
productos intermedios. Los polipéptidos que tienen actividad
endoglucanasa pueden ser en forma de un caldo de fermentación crudo
con o sin las células eliminadas o en forma de una preparación
enzimática semi-purificada o purificada. De forma
alternativa, una célula huésped de la presente invención puede ser
usada como una fuente del polipéptido que tiene actividad
endoglucanasa en un proceso de fermentación con la biomasa.
La biomasa puede incluir, de modo enunciativo y
no limitativo, recursos de madera, desperdicios sólidos municipales,
papel usado y residuos de cosecha (ver, por ejemplo, Wiselogel et
al., 1995, en Handbook on Bioethanol (Charles E. Wyman, editor),
pp.105-118, Taylor & Francis, Washington D.C.;
Wyman, 1994, Bioresource Technology 50: 3-16; Lynd,
1990, Applied Biochemistry and Biotechnology 24/25:
695-719; Mosier et al., 1999, Recent Progress
in Bioconversion of Lignocellulosics, in Advances in Biochemícal
Engineering/Biotechnology, T. Scheper, managing editor, Volume 65,
pp.23-40, Springer-Verlag, New
York).
El polisacárido predominante en la pared celular
primaria de la biomasa es la celulosa, el segundo más abundante es
la hemicelulosa y el tercero es la pectina. La pared celular
secundaria, producida después de que la célula ha dejado de crecer,
también contiene polisacáridos y se refuerza a través de lignina
polimérica reticulada de manera covalente a la hemicelulosa. La
celulosa es un homopolímero de anhidrocelobiosa y, por tanto, un
beta-(1-4)-D-glucano
lineal, mientras que las hemicelulosas incluyen una variedad de
compuestos, tales como xilanos, xiloglucanos, arabinoxilanos y
mananos en estructuras ramificadas complejas con un espectro de
sustituyentes. Aunque generalmente es polimorfa, la celulosa se
encuentra en el tejido vegetal principalmente como una matriz
cristalina insoluble de cadenas de glucano paralelas. Las
hemicelulosas normalmente tienen un enlace de hidrógeno a la
celulosa, al igual que otras hemicelulosas, lo cual ayuda a
estabilizar la matriz de la pared celular.
Se utilizan tres clases principales de
glicohidrolasas para descomponer la biomasa celulósica:
- (1)
- Las "endo-1,4-beta-glucanasas" o 1,4-beta-D-glucano-4-glucanohidrolasas (EC 3,2,1,4), que actúan de forma aleatoria en sustratos de 1,4-beta-glucano solubles e insolubles.
- (2)
- Las "exo-1,4-beta-D-glucanasas" incluidas las 1,4-beta-D-glucano glucohidrolasas (EC 3,2,1,74), que liberan D-glucosa de 1,4-beta-D-glucanos e hidrolizan D-celobiosa lentamente, y celobiohidrolasas (1-beta-D-glucano celobiohidrolasas, EC 3,2,1,91), que liberan D-celobiosa de 1,4-beta-glucanos.
- (3)
- Las "beta-D-glucosidasas" o beta-D-glucósido glucohidrolasas (EC 3.2.1.21), que actúan para liberar unidades de D-glucosa de celobiosa y celodextrinas solubles, al igual que un conjunto de glucósidos.
\vskip1.000000\baselineskip
Estas tres clases de enzimas trabajan juntas
sinergísticamente dando como resultado decristalización e hidrólisis
eficaces de la celulosa nativa de la biomasa para producir azúcares
reducidos.
Los polipéptidos que tienen actividad
endoglucanasa de la presente invención pueden ser usados
conjuntamente con las enzimas mencionadas más arriba para degradar
más aún el componente de celulosa del sustrato de biomasa, (ver, por
ejemplo, Brigham et al., 1995, en Handbook on Bioethanol
(Carlos E. Wiman, editor), pp. 119-141, Taylor &
Francis, Washington D.C.; Lee, 1997, Journal of Biotechnology 56:
1-24).
El etanol puede ser producido por degradación
enzimática de biomasa y conversión de los sacáridos liberados a
etanol. Este tipo de etanol frecuentemente es denominado bioetanol o
biocombustible. Puede ser usado como un aditivo de combustible o
suplemento en mezclas de menos de 1% y hasta 100% (un sustituto de
combustible).
Los polipéptidos que tienen actividad
endoglucanasa de la presente invención pueden ser añadidos a una
composición de detergente y así convertirse en un componente de la
misma.
La composición de detergente de la presente
invención puede ser, por ejemplo, formulada como una composición de
detergente de lavado a mano o a máquina incluida una composición de
aditivo de lavandería adecuada para el pretratamiento de las telas
manchadas y una composición de suavizante añadida al enjuague, o
formulada como una composición de detergente para el uso en tareas
limpieza de superficies duras del hogar en general, o formuladas
para operaciones de lavado a mano o de lavavajillas.
En un aspecto específico, la presente invención
proporciona un aditivo de detergente que comprende los polipéptidos
que tienen actividad endoglucanasa de la presente invención. El
aditivo de detergente al igual que la composición de detergente
puede comprender una o más enzimas adicionales tales como una
proteasa, lipasa, cutinasa, una amilasa, carbohidrasa, celulasa,
pectinasa, mananasa, arabinasa, galactanasa, xilanasa, oxidasa, p.
ej., una lacasa, y/o peroxidasa.
En general las propiedades de los componentes
enzimáticos deberían ser compatibles con el detergente seleccionado,
(es decir, pH óptimo, compatibilidad con otros ingredientes
enzimáticos y no enzimáticos, etc.), y los componentes enzimáticos
deberían estar presentes en cantidades eficaces.
Proteasas: Las proteasas adecuadas
incluyen las de origen animal, vegetal o microbiano. Se prefiere el
origen microbiano. Están incluidos los mutantes modificados
químicamente o creados genéticamente de proteínas. La proteasa puede
ser una serina proteasa o una metaloproteasa, preferiblemente una
proteasa alcalina microbiana o una proteasa tipo tripsina. Ejemplos
de proteasas alcalinas son subtilisinas, especialmente las derivadas
de Bacillus, p. ej., subtilisina Novo, subtilisina Carlsberg,
subtilisina 309, subtilisina 147 y subtilisina 168 (descrita en WO
89/06279). Ejemplos de proteasas tipo tripsina son tripsina (p. ej.,
de origen porcino o bovino) y la proteasa de Fusarium
descrita en WO 89/06270 y WO 94/25583.
Ejemplos de proteasas útiles son las variantes
descritas en WO 92/19729, WO 98/20115, WO 98/20116 y WO 98/34946,
especialmente las variantes con sustituciones en una o más de las
siguientes posiciones: 27, 36, 57, 76, 87, 97, 101, 104, 120, 123,
167, 170, 194, 206, 218, 222, 224, 235 y 274.
Las enzimas proteásicas disponibles
comercialmente preferidas incluyen Alcalase^{TM}, Savinase^{TM},
Primase^{TM},
Duralase^{TM}, Esperase^{TM} y Kannase^{TM} (Novozymes A/S), Maxatase^{TM}, Maxacal^{TM}, Maxapem^{TM}, Properase^{TM},
Purafect^{TM}, Purafect OxP^{TM}, FN2^{TM} y FN3^{TM} (Genencor International Inc.).
Duralase^{TM}, Esperase^{TM} y Kannase^{TM} (Novozymes A/S), Maxatase^{TM}, Maxacal^{TM}, Maxapem^{TM}, Properase^{TM},
Purafect^{TM}, Purafect OxP^{TM}, FN2^{TM} y FN3^{TM} (Genencor International Inc.).
Lipasas: Las lipasas adecuadas incluyen
aquellas de origen bacteriano o fúngico. Están incluidos los
mutantes modificados químicamente o creados genéticamente de
proteínas. Ejemplos de lipasas útiles incluyen lipasas de
Humicola (sinónimo Thermomyces), por ej., de H.
lanuginosa (T. lanuginosus) como se describe en EP 258
068 y
EP 305 216 o de H. insolens como se describe en WO 96/13580, una lipasa de Pseudomonas, por ej. de P. alcaligeries o P. pseudoalcaligenes (EP 218 272), P. cepacia (EP 331 376), P. stutzeri (GB 1,372,034), P. fluorescens, Pseudomonas sp. cepa SD 705 (WO 95/06720 y WO 96/27002), P. wisconsinensis (WO 96/12012), una lipasa de Bacillus, por ej., de B. subtilis (Dartois et al., 1993, Biochemica et Biophysica Acta, 1131, 253-360), B. stearothermophilus (JP 64/744992) o B. pumilus (WO 91/16422).
EP 305 216 o de H. insolens como se describe en WO 96/13580, una lipasa de Pseudomonas, por ej. de P. alcaligeries o P. pseudoalcaligenes (EP 218 272), P. cepacia (EP 331 376), P. stutzeri (GB 1,372,034), P. fluorescens, Pseudomonas sp. cepa SD 705 (WO 95/06720 y WO 96/27002), P. wisconsinensis (WO 96/12012), una lipasa de Bacillus, por ej., de B. subtilis (Dartois et al., 1993, Biochemica et Biophysica Acta, 1131, 253-360), B. stearothermophilus (JP 64/744992) o B. pumilus (WO 91/16422).
Otros ejemplos son variantes de lipasa tales
como aquellas descritas en WO 92/05249, WO 94/01541, EP 407 225, EP
260 105, WO 95/35381, WO 96/00292, WO 95/30744, WO 94/25578, WO
95/14783, WO 95/22615, WO 97/04079 y WO 97/07202.
Las lipasas preferidas disponibles
comercialmente incluyen Lipolase^{TM}, Lipex^{TM} y Lipolase
Ultra^{TM} (Novozymes A/S).
Amilasas: Las amilasas adecuadas
(\alpha y/o \beta) incluyen aquellas de origen bacteriano o
fúngico. Están incluidos los mutantes modificados químicamente o
creados genéticamente de proteínas. Las amilasas incluyen, por
ejemplo, \alpha- amilasas obtenidas a partir de Bacillus,
p. ej., una cepa especial de Bacillus licheniformis, descrita
en más detalle en GB 1 296 839.
Ejemplos de amilasas útiles son las variantes
descritas en WO 94/02597, WO 94/18314, WO 96/23873, y WO 97/43424,
especialmente las variantes con sustituciones en una o más de las
siguientes posiciones: 15, 23, 105, 106, 124, 128, 133, 154, 156,
181, 188, 190, 197, 202, 208, 209, 243, 264, 304, 305, 391, 408 y
444.
Las amilasas disponibles comercialmente son
Duramyl^{TM}, Termamyl^{TM}, Fungamyl^{TM} y BAN^{TM}
(Novozymes A/S), Rapidase^{TM} y Purastar^{TM} (de Genencor
International Inc.).
Celulasas: Las celulasas adecuadas
incluyen aquellas de origen bacteriano o fúngico. Están incluidos
los mutantes modificados químicamente o creados genéticamente de
proteínas. Las celulasas adecuadas incluyen celulasas de los géneros
Bacillus, Pseudomonas, Humicola, Fusarium, Thielavia,
Acremonium o Trichoderma, por ej., las celulasas fúngicas
producidas de Humicola insolens, Myceliophthora thermophila y
Fusarium oxysporum descritas en la patente U.S. n.º 4 435
307, la patente U.S. n.º 5 648 263, la patente U.S. n.º 5 691 178,
la patente U.S. n.º 5 776 757 y WO 89/09259.
Celulasas especialmente adecuadas son las
celulasas alcalinas o neutrales que tienen beneficios de cuidado del
color. Ejemplos de celulasas de este tipo son las celulasas
descritas en EP 0 495 257, EP 0 531 372, WO 96/11262, WO 96/29397,
WO 98/08940. Otros ejemplos son variantes de celulasa tales como las
descritas en WO 94/07998, EP 0 531 315, patente U.S. n.º. 5,457,046,
patente U.S. n.º. 5,686,593, patente U.S. n.º. 5,763,254, WO
95/24471, WO 98/12307 y PCT/DK98/00299.
Las celulasas disponibles comercialmente
incluyen Celluclast®, Celluzyme^{TM}, y Carezyme^{TM} (Novozymes
A/S), Clazinase^{TM} y Puradax HA^{TM} (Genencor International
Inc.) y KAC-500(B)^{TM} (Kao
Corporation).
Peroxidasas/oxidasas: Las
peroxidasas/oxidasas adecuadas incluyen las de origen vegetal,
bacteriano o fúngico. Están incluidos los mutantes modificados
químicamente o creados genéticamente de proteínas. Los ejemplos de
peroxidasas útiles incluyen peroxidasas de Coprinus, p. ej.,
de C. cinereus, y variantes de las mismas como las descritas
en WO 93/24618, WO 95/10602 y WO 98/15257.
Las peroxidasas disponibles comercialmente
incluyen Guardzyme^{TM} (Novozymes A/S).
El o los componente(s)
enzimático(s) puede(n) ser incluido(s) en una
composición de detergente añadiendo aditivos separados que contienen
una o más enzimas, o añadiendo un aditivo combinado que comprende
todas estas enzimas. Un aditivo de detergente de la presente
invención, es decir, un aditivo separado o un aditivo combinado,
puede ser formulado, por ejemplo, como un granulado, líquido,
mezcla, etc. Las formulaciones de aditivo de detergente preferidas
son granulados, en particular granulados no en polvo, líquidos, en
particular líquidos estabilizados, o pastas.
Los granulados no en polvo pueden ser
producidos, p. ej., como se describe en la patente U.S. n.º. 4 106
991 y 4 661 452 y opcionalmente pueden ser revestidos por métodos
conocidos en la técnica. Ejemplos de materiales de revestimiento
ceroso son productos de poli(óxido de etileno) (polietilenoglicol,
PEG) con pesos molares medios de 1000 a 20000; nonilfenoles
etoxilados que tienen de 16 a 50 unidades de óxido de etileno;
alcoholes etoxilados grasos en los cuales el alcohol contiene de 12
a 20 átomos de carbono y en los cuales hay 15 a 80 unidades de óxido
de etileno; alcoholes grasos; ácidos grasos; y mono- y di- y
triglicéridos de ácidos grasos. En GB 1483591 se presentan ejemplos
de materiales de revestimientos formadores de película adecuados
para la aplicación por técnicas de lecho fluidizado. Las
preparaciones enzimáticas líquidas pueden, por ejemplo, ser
estabilizadas añadiendo un poliol tal como propilenoglicol, un
azúcar o alcohol de azúcar, ácido láctico o ácido bórico según
métodos establecidos. Las enzimas protegidas pueden ser preparadas
según el método descrito en EP 238 216.
La composición de detergente de la presente
invención puede estar en cualquier forma conveniente, p. ej., una
barra, una pastilla, un polvo, un gránulo, una pasta o un líquido.
Un detergente líquido puede ser acuoso, normalmente con un 70% de
agua como máximo y un 0-30% de solvente orgánico, o
no acuoso.
La composición de detergente comprende uno o más
agentes tensioactivos, que pueden ser no iónicos incluyendo
semipolares y/o aniónicos y/o catiónicos y/o zwitteriónicos. Los
agentes tensioactivos normalmente están presentes en un nivel del
0,1% al 60% en peso.
Cuando está incluido, el detergente normalmente
contiene del 1% aproximadamente al 40% aproximadamente de un
tensioactivo aniónico tal como alquilbenceno sulfonato lineal, alfa
olefinsulfonato, sulfato de alquilo (sulfato de alcohol graso),
etoxisulfato de alcohol, alcanosulfonato secundario, éster
alfa-sulfo metílico de ácido graso, ácido alquilo- o
alquenilsuccínico o jabón.
Cuando está incluido, el detergente normalmente
contiene del 0,2% aproximadamente al 40% aproximadamente de un
tensioactivo no iónico tal como alcohol etoxilato, nonilfenol,
etoxilato, alquilpoliglicósido, óxido de alquildimetilamina,
monoetanolamida etoxilada de ácidos grasos, monoetanolamida de
ácidos grasos, polihidroxi alquilo amidas de ácidos grasos o
derivados de N-acilo N-alquilo de
glucosamina ("glucamidas").
El detergente puede contener un
0-65% de un constructor de detergente o agente
complejante tal como zeolita, difosfato, trifosfato, fosfonato,
carbonato, citrato, ácido nitrilotriacético, ácido
etilenodiaminatetraacético, ácido dietilenotriaminopentaacético,
ácido alquilo o alquenilsuccínico, silicatos solubles o silicatos
estratificados (p. ej., SKS-6 de Hoechst).
El detergente puede comprender uno o más
polímeros. Ejemplos son carboximetilcelulosa,
poli(vinilpirrolidona), poli(etileno glicol),
poli(vinil alcohol), poli(N-óxido de vinilpiridina),
poli(vinilimidazol), policarboxilatos tales como
poliacrilatos, copolímeros de ácido maléico/acrílico, y copolímeros
de lauril metacrilato/ácido acrílico.
El detergente puede contener un sistema
blanqueante que puede comprender una fuente de H_{2}O_{2} tal
como perborato o percarbonato que puede ser combinada con un
activador blanqueante formador de perácido tal como
tetraacetiletilenodiamina o nonanoiloxibencenosulfonato. De forma
alternativa, el sistema blanqueante puede comprender peroxiácidos,
por ejemplo, de tipo amida, imida o sulfona.
El o los componente(s)
enzimático(s) de la composición de detergente de la presente
invención pueden ser estabilizados usando agentes estabilizantes
convencionales, p. ej., un poliol tal como propilenoglicol o
glicerol, un azúcar o alcohol de azúcar, ácido láctico, ácido
bórico, o un derivado de ácido bórico, p. ej., un éster de borato
aromático, o un derivado de ácido fenil borónico tal como ácido
4-formilfenil borónico y la composición puede ser
formulada como se describe, por ejemplo, en WO 92/19709 y WO
92/19708.
El detergente también puede contener otros
ingredientes de detergentes convencionales tales como
acondicionadores de telas incluidas arcillas, reforzadores de
espuma, supresores de espuma, agentes anticorrosivos, agentes de
suspensión de suciedad, agentes contra la redeposición de suciedad,
tintes, bactericidas, blanqueadores ópticos, hidrótropos,
inhibidores de decoloración o perfumes.
En las composiciones detergentes cualquier
componente enzimático, en particular los polipéptidos que tienen
actividad endoglucanasa de la presente invención, puede ser añadido
en una cantidad correspondiente a 0,01-100 mg de
proteína enzimática por litro de solución de lavado, preferiblemente
0,05-5 mg de proteína enzimática por litro de
solución de lavado, en particular 0,1-1 mg de
proteína enzimática por litro de solución de lavado.
Los polipéptidos que tienen actividad
endoglucanasa de la presente invención adicionalmente pueden ser
incorporados en las formulaciones de detergente descritas en WO
97/07202 que están incorporadas en la presente a modo de
referencia.
La presente invención también se refiere a
constructos de ácidos nucleicos que comprenden un gen que codifica
una proteína operativamente enlazada a una secuencia de nucleótidos
que codifica un péptido señal que comprende o que consiste en los
aminoácidos 1 a 17 de la SEC ID n.º: 2, lo cual permite la secreción
de la proteína en un medio de cultivo, en el cual el gen es externo
a la secuencia de nucleótidos.
En un aspecto preferido, la secuencia de
nucleótidos comprende los nucleótidos 1 a 51 de la SEC ID n.º: 1. En
otro aspecto preferido, la secuencia de nucleótidos consiste en los
nucleótidos 1 a 51 de la SEC ID n.º: 1.
La presente invención también se refiere a
vectores de expresión recombinantes y células huéspedes
recombinantes que comprenden constructos de ácidos nucleicos de este
tipo.
La presente invención también se refiere a
métodos para producir una proteína que comprende: (a) cultivar esa
célula huésped recombinante bajo condiciones adecuadas para la
producción de la proteína; y (b) recuperar la proteína.
La proteína puede ser nativa o heteróloga a una
célula huésped. El término "proteína" no tiene como objetivo
referirse en la presente a una longitud específica del producto
codificado y, en consecuencia, comprende péptidos, oligopéptidos y
proteínas. El término "proteína" también comprende dos o más
polipéptidos combinados para formar el producto codificado. Las
proteínas también incluyen polipéptidos híbridos que comprenden una
combinación de secuencias de polipéptidos parciales o completas
obtenidas de al menos dos proteínas diferentes en las cuales una o
más pueden ser heterólogas o nativas a la célula huésped. Las
proteínas además incluyen variaciones alélicas de origen natural y
creadas genéticamente de las proteínas mencionadas anteriormente y
las proteínas híbridas.
Preferiblemente, la proteína es una hormona o
variante de la misma, enzima, receptor o parte del mismo, anticuerpo
o parte del mismo, o indicador. En un aspecto preferido, la proteína
es una oxidorreductasa, transferasa, hidrolasa, liasa, isomerasa o
ligasa. En un aspecto preferido, la proteína es una aminopeptidasa,
amilasa, carbohidrasa, carboxipeptidasa, catalasa, celulasa,
quitinasa, cutinasa, glicosiltransferasa ciclodextrina,
desoxirribonucleasa, esterasa, alfa-galactosidasa,
beta-galactosidasa, glucoamilasa, alfa- glucosidasa,
beta-glucosidasa, invertasa, lacasa, lipasa,
manosidasa, mutanasa, oxidasa, enzima pectinolítica, peroxidasa,
fitasa, polifenoloxidasa, enzima proteolítica, ribonucleasa,
transglutaminasa o xilanasa.
El gen puede ser obtenido a partir de cualquier
fuente procariótica, eucariótica u otra fuente.
La presente invención está descrita además por
los siguientes ejemplos que no deberían ser interpretados como
limitativos del alcance de la invención.
Los productos químicos usados como tampones y
sustratos fueron productos comerciales de al menos grado
reactivo.
Los geles SDS-PAGE, el tampón de
carga y el tampón de desplazamiento fueron obtenidos de
Invitrogen/Novex (Carlsbad, CA). La tripsina de grado de
secuenciación modificado fue de Princeton Separations (Aldelphia,
NJ). Las manchas de proteína BioSafe Commassie Blue G250 fueron
obtenidas de BioRad Laboratories (Hercules, CA).
La cepa Jal250 de Aspergillus oryzae (WO
99/61651) fue usada para la expresión de un polipéptido de
Thielavia terrestris con actividad endoglucanasa. La cepa
NRRL 8126 de Thielavia terrestris fue usada como la fuente de
un gen para un polipéptido de la familia 7F con actividad
endoglucanasa.
Las placas PDA fueron compuestas por litro de 39
gramos de agar dextrosa de patata.
El medio NNCYP fue compuesto por litro de 5,0 g
de NH_{4}NO_{3}) 0,5 g de MgSO_{4}\cdot7H_{2}O, 0,3 g de
CaCl_{2}, 2,5 g de ácido cítrico, 1,0 g de
Bacto-peptona, 5,0 g de extracto de levadura, 1 ml
de metales traza de COVE, y suficiente K_{2}HPO_{4} para
conseguir un pH final de aproximadamente 5,4.
El medio NNCYPmod fue compuesto por litro de 1,0
g de NaCl, 5,0 g de NH_{4}NO_{3}, 0,2 g de
MgSO_{4}\cdot7H_{2}O, 0,2 g de CaCl_{2}, 2.0 g de ácido
cítrico, 1,0 g de Bacto peptona, 5,0 g de extracto de levadura, 1 ml
de solución de metales traza de COVE y suficiente K_{2}HPO_{4}
para conseguir el pH final de aproximadamente 5,4.
La solución de metales traza de Cove fue
compuesta por litro de 0,04 g de
Na_{2}B_{4}O_{7}\cdot10H_{2}O, 0,4 g de
CuSO_{4}\cdot5H_{2}O, 1,2 g de FeSO_{4}\cdot7H_{2}O, 0,7
g de MnS_{4}\cdotH_{2}O, 0,8 g de
Na_{2}MoO_{2}\cdot2H_{2}O y 10 g de
ZnSO_{4}\cdot7H_{2}O.
Las placas LB fueron compuestas por litro de 10
g de triptona, 5 g de extracto de levadura, 5 g de cloruro sódico y
15 g de Bacto agar.
El medio MDU2BP fue compuesto por litro de 45 g
de maltosa, 1 g de MgSO_{4}\cdot7H_{2}O, 1 g de NaCl, 2 g de
K_{2}HSO_{4}, 12 g de KH_{2}PO_{4}, 2 g de úrea y 500 \mul
de metales de traza AMG, el pH fue ajustado a 5,0 y luego
esterilizado por filtro con una unidad de filtración de 0,22
\mum.
Los metales traza de AMG fueron compuestos por
litro de 14,3 g de ZnSO_{4}\cdot7H_{2}O, 2,5 g de
CuSO_{4}\cdot5H_{2}O, 0,5 g de NiCl_{2}\cdot6H_{2}O,
13,8 g de FeSO_{4}\cdot7H_{2}O, 8,5 g de
MnSO_{4}\cdot7H_{2}O y 3 g de ácido cítrico.
El medio Soc fue compuesto por 2% de triptona,
0,5% de extracto de levadura, 10 mM de NaCl, 2,5 mM de KCl, 10 mM de
MgCl_{2} y 10 mM de MgSO_{4}, esterilizado por autoclave y luego
se añadió glucosa esterilizada por filtro
a 20 mM.
a 20 mM.
El medio de congelación fue compuesto por 60% de
SOC y 40% de glicerol.
El medio 2X YT fue compuesto por litro de 16 g
de triptona, 10 g de extracto de levadura, 5 g de NaCl y 15 g de
Bacto agar, esterilizado por autoclave.
\vskip1.000000\baselineskip
Thielavia terrestris NRRL 8126 fue
cultivada en 50 ml de medio NNCYPmod suplementado con 1% de glucosa
en un matraz de 250 ml a 45ºC, 200 r.p.m. durante 24 horas. Se
utilizó una alícuota de dos ml del cultivo líquido de 24 horas para
cultivar un matraz de 500 ml con 100 ml de medio NNCYPmod
suplementado con 2% de Sigmacell-20 (Sigma Chemical
Co., St. Louis, MO). El cultivo fue incubado a 45ºC, 200 r.p.m.
durante 3 días. Los micelios fueron recolectados por filtración a
través de un embudo de Buchner con un prefiltro de fibra de vidrio
(Nalgene, Rochester, NY), lavados dos veces con 10 mM de
Tris-HCI-1 mM de EDTA pH 8 (TE, y
rápidamente congelados en nitrógeno líquido.
El ARN total fue aislado usando el siguiente
método. Los micelios congelados de Thielavia terrestris NRRL
8126 fueron triturados en un molinillo de café eléctrico. El
material triturado fue mezclado 1:1 v/v con 20 ml de Fenazol
(Ambion, Inc., Agustín, TX) en un tubo tipo Falcon de 50 ml. Una vez
que los micelios fueron suspendidos, fueron extraídos con cloroformo
y tres veces con una mezcla de
fenol-cloroformo-alcohol isoamílico
25:24:1 v/v/v. De la fase acuosa resultante, el ARN fue precipitado
añadiendo 1/10 volumen de 3 M de acetato sódico pH 5,2 y 1,25
volúmenes de isopropanol. El ARN precipitado fue recuperado por
centrifugado a 12 000 x g durante 30 minutos a 4ºC. El granulado
final fue lavado con 70% de etanol frío, secado al aire y
resuspendido en 500 ml de agua tratada con dietilpirocarbonato (agua
DEPC).
La calidad y la cantidad del ARN purificado
fueron evaluadas con un Agilent Bioanalyzer 2100 (Agilent
Technologies, Inc., Palo Alto, CA). El ARNm poliadenilado fue
aislado de 360 \mug de ARN total con la ayuda de un Poli (A)
Purist Magnetic Kit (Ambion, Inc., Austin, TX) según las
instrucciones del fabricante.
Para crear la biblioteca de ADNc, un kit
CloneMiner^{TM} (Invitrogen, Carlsbad, CA) fue empleado para
construir una biblioteca direccional que no requiere el uso de
clonación de enzimas de restricción, reduciendo así el número de
clones quiméricos y el sesgo de tamaño.
Para asegurar la síntesis exitosa de la primera
cadena de ADNc, se realizaron dos reacciones en paralelo con dos
concentraciones diferentes de ARNm (2,2 y 4,4 \mug de
poli(A)^{+} ARNm). Las muestras de ARNm fueron
mezcladas con un cebador
Biotin-attB2-Oligo(dt)
(CloneMiner^{TM} Kit, Invitrogen, Carlsbad, CA), 1X tampón de
primera cadena (Invitrogen, Carlsbad, CA), 2 \mul de 0,1 M de
ditiotreitol (DTT), 10 mM de cada dNTP y agua a un volumen final de
18 y 16 \mul, respectivamente. Las mezclas de reacción fueron
mezcladas cuidadosamente y luego 2 y 4 \mul de transcriptasa
inversa SuperScript^{TM} (Invitrogen, Carlsbad, CA) fueron
añadidos e incubados a 45ºC durante 60 minutos para sintetizar la
primera cadena complementaria.
Para la síntesis de la segunda cadena, a cada
reacción de primera cadena se añadieron 30 \mul de 5X tampón de
segunda cadena (Invitrogen, Carlsbad, CA), 3 \mul de 10 mM de cada
dNTP, 10 unidades de ADN ligasa de E. coli (Invitrogen,
Carlsbad, CA), 40 unidades de ADN polimerasa I de E. coli
(Invitrogen, Carlsbad, CA), y 2 unidades de ribonucleasa H de E.
coli (Invitrogen, Carlsbad,CA) en un volumen total de 150
\mul. Las mezclas luego fueron incubadas a 16ºC durante dos horas.
Después de la incubación de dos horas, se añadieron 2 \mul de T4
ADN polimerasa (Invitrogen, Carlsbad, CA) a cada reacción y se
incubaron a 16ºC durante 5 minutos para crear un ADNc de extremos
romos. Las reacciones de ADNc fueron extraídas con una mezcla de
fenol-cloroformo-alcohol isoamílico
25:24:1 v/v/v y precipitadas en presencia de 20 \mug de glicógeno,
120 \mul de 5 m de acetato amónico y 660 \mul de etanol. Después
del centrifugado a 12000 x g durante 30 minutos a 4ºC, los
granulados de ADNc fueron lavados con 70% de etanol frío, secados al
vacío durante 2-3 minutos y resuspendidos en 18
\mul de agua DEPC. A cada muestra de ADNc resuspendida se
añadieron 10 \mul de 5X tampón adaptado (Invitrogen, Carlsbad,
CA), 10 \mug de adaptador attB1 (Invitrogen, Carlsbad, CA)
mostrado más abajo, 7 \mul de 0,1 M de DTT y 5 unidades de T4 ADN
ligasa (Invitrogen, Carlsbad, CA).
Cadena superior de adaptador attB1:
- 5'-TCGTCGGGGACAACTTTGTACAAAAAAGTTGG-3' (SEQ ID N.º: 3)
\vskip1.000000\baselineskip
Cadena inferior de adaptador attB1:
- 3'-CCCCTGTTGAAACATGTTTTTTCAACCp-5' (SEQ ID N.º: 4)
\vskip1.000000\baselineskip
Las reacciones de ligadura fueron incubadas
durante toda la noche a 16ºC. Los adaptadores de exceso fueron
eliminados por cromatografía por exclusión de tamaños en 1 ml de
resina Sephacryl^{TM} S-500 HR (Amersham
Biosciences, Piscataway, NJ). Las fracciones de columna fueron
recogidas según las instrucciones del Kit CloneMiner^{TM} y las
fracciones 3 a 14 fueron analizadas con un Agilent Bioanalyzer para
determinar la fracción en las cuales los adaptadores attB1
comenzaron a eluir. Este análisis mostró que los adaptadores
comenzaron a eluir alrededor de la fracción 10 u 11. Para la primera
biblioteca se agruparon las fracciones 6 a 11 y para la segunda
biblioteca se agruparon las fracciones 4-11.
La clonación del ADNc fue realizada por
recombinación homologa de ADN según el Protocolo de Gateway System
(Invitrogen, Carlsbad, CA) usando BP Clonase^{TM} (Invitrogen,
Carlsbad, CA) como la recombinasa. Cada reacción de recombinación de
BP Clonase^{TM} contuvo aproximadamente 70 ng de ADNc flanqueado
por attB, 250 ng de pDONR^{TM}222, 2 \mul de 5X de tampón
BP Clonase^{TM}, 2 \mul de tampón TE y 3 \mul de BP
Clonase^{TM}. Todos los reactivos fueron obtenidos de Invitrogen,
Carlsbad, CA. Las reacciones de recombinación fueron incubadas a
25ºC durante toda la noche.
Las reacciones de recombinación BP inactivadas
por calor luego fueron divididas en 6 alícuotas y sometidas a
electroporación en células electrocompetentes ElectroMax^{TM}
DH10B (Invitrogen, Carlsbad, CA) BioRad Gene Pulser II (BioRad,
Hercules, CA) con los siguientes parámetros: voltaje: 2.0 kV;
resistencia: 200 \Omega; y Capacidad: 25 \muF. Las células
electroporadas fueron resuspendidas en 1 ml de medio SOC e incubadas
a 37ºC durante 60 minutos con agitación constante a 200 r.p.m.
Después del periodo de incubación, las células transformadas fueron
agrupadas y mezcladas 1:1 con medio de congelación. Una alícuota de
200 \mul fue eliminada para titulación de la biblioteca y luego el
resto de cada biblioteca fue dividido en alícuotas en crioviales de
1,8 ml (Wheaton Science Products, Millville, NJ) y almacenado
congelado a -80ºC.
Se prepararon cuatro diluciones en serie de cada
biblioteca: 1/100, 1/1000, 1/104, 1/105. De cada dilución 100 \mul
fueron colocados sobre placas LB de 150 mM suplementadas con 50
\mug de canamicina por ml e incubados a 37ºC durante toda la
noche. El número de colonias en cada placa de dilución fue contado y
usado para calcular el número total de transformantes en cada
biblioteca.
Se demostró que la primera biblioteca tenía 5,4
millones de clones independientes y se demostró que la segunda
biblioteca tenía 9 millones de clones independientes.
\vskip1.000000\baselineskip
Alícuotas de ambas bibliotecas fueron mezcladas
y colocadas sobre placas LB de 25 x 25 cm suplementadas con 50
\mug de canamicina por ml. Las colonias individuales fueron
seleccionadas sobre placas de 96 pocillos con 100 \mul de LB
suplementado con 50 \mug de canamicina por ml con la ayuda de un
Genetix QPix Robot (Genetix Inc., Boston, MA). Cuarenta y cinco
placas de 96 pocillos fueron obtenidas para un total de 4320 clones
individuales. Las placas fueron incubadas durante toda la noche a
37ºC con agitación a 200 r.p.m. Tras la incubación, se añadieron 100
\mul de glicerol estéril al 50% a cada pocillo. Los transformantes
fueron replicados con la ayuda de una herramienta de 96 espinas
(Boekel, Feasterville, PA) en placas de microcultivo de plato
profundo de 96 pocillos secundarios (Advanced Genetic Technologies
Corporation, Gaithersburg, MD) con 1 ml de Magnificent Broth^{TM}
(MacConnell Research, San Diego, CA) suplementado con 50 \mug de
canamicina por ml en cada pocillo. Las placas de microtitulación
primarias fueron almacenadas congeladas a -80ºC. Las placas de
plato profundo secundarias fueron incubadas a 37ºC durante toda la
noche con agitación vigorosa a 300 r.p.m. en un agitador giratorio.
Para prevenir el derrame y la contaminación cruzada y para permitir
aireación suficiente, cada placa de cultivo secundario fue cubierta
con una almohadilla de polipropileno (Advanced Genetic Technologies
Corporation, Gaithersburg, MD) y una cobertura plástica de plato de
microtitulación. El ADN plásmido fue preparado con un MWG
Robot-Smart 384 (MWG Biotech Inc., High Point, NC) y
Montage Plasmid Miniprep Kits (Millipore, Billerica, MA).
Las reacciones de secuenciación fueron
realizadas usando química de terminador
Big-Dye^{TM} (Applied Biosystems, Inc., Foster
City, CA) (Giesecke et al., 1992, Journal of Virology Methods
38: 47-60) y un cebador de secuenciación M13 Forward
(-20) mostrado más abajo.
- 5'-GTAAAACGACGGCCAG-3' (SEQ ID N.º: 5)
\vskip1.000000\baselineskip
Las reacciones de secuenciación fueron
realizadas en un formato de 384 pocillos con un
Robot-Smart 384 (MWG Biotech Inc., High Point, NC) y
la eliminación de terminador con Millipore MultiScreen Seq384
Sequencing Clean- up Kits (Millipore, Billerica, MA). Las reacciones
contuvieron 6 \mul de ADN plásmido y 4 \mul de mezcla maestra de
secuenciación que contiene 2 \mul de 5x de tampón de secuenciación
(Millipore, Billerica, MA), 1 \mul de terminador
Big-Dye^{TM} (Applied Biosystems, Inc., Foster
City, CA), 1,6 pmols de cebador M13 Forward y 1 \mul de agua. La
secuenciación del ADN de paso simple fue realizada con un
Secuenciador de ADN automatizado ABI PRISM Modelo 3700 (Applied
Biosystems, Foster City, CA).
\vskip1.000000\baselineskip
La lectura automática de nucleótidos, la
atribución de valor de calidad y el ajuste de vector fueron
realizados con la asistencia del software PHRED/PHRAP (University of
Washington, Seattle, WA). El análisis de agrupamiento del ESTs fue
realizado con un Parcel Transcript Assembler v. 2.6.2. (Paracel,
Inc., Pasadena, CA). El análisis del agrupamiento EST indicó 395
clusters independientes.
El análisis de homología secuencial de las
secuencias EST ensambladas contra la base de datos PIR fue realizado
con el programa Blastx (Altschul et. al., 1990, J. Mol. Biol.
215: 403-410) en un cluster Linux de 32 nodos
(Paracel, Inc., Pasadena, CA) usando la matriz BLOSUM 62 (Henikoff,
1992, Proc. Nati. Acad. Sci. USA 89: 10915-10919).
De los 395 clusters, 246 tuvieron hits de blast para genes conocidos
en bases de datos de proteínas de dominio público y 149 no tuvieron
hits significativos frente a estas bases de datos. Entre estos 246
genes, 13 tuvieron hits frente a homólogos caracterizados de genes
de glicosil hidrolasa.
\vskip1.000000\baselineskip
Un clon de ADNc que codifica una endoglucanasa
de Familia 7 (CEL7F) fue inicialmente identificado por su identidad
a la proteína de endoglucanasa EG-1 de Familia 7 de
Trichoderma longibrachiatum (NREF NF00756647). Este análisis
indicó que las dos proteínas fueron 44% idénticas en el nivel de
proteína sobre una extensión de 113 aminoácidos (339 pares de
bases). Después de que este clon de identificación inicial Tter08C4
fuera recuperado de la placa de materia prima congelada original y
mantenido sobre una placa LB suplementada con 50 \mug de
canamicina por ml. La placa fue incubada durante toda la noche a
37ºC y al día siguiente una colonia individual de la placa fue usada
para inocular 3 ml de LB suplementado con 50 \mug de canamicina
por ml. El cultivo líquido fue incubado durante toda la noche a 37ºC
y el ADN plásmido fue preparado con un BioRobot 9600 (QIAGEN, Inc.,
Valencia, CA). El ADN plásmido de Clon Tter08C4 fue secuenciado otra
vez con química de terminador Big-Dye^{TM} como se
ha descrito anteriormente, usando el M13 forward y un cebador
Poly-T mostrado más abajo para secuenciar el extremo
3' del clon.
- 5'-TTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTVN-3' (SEC ID n.º: 6)
Donde V = G, A, C y N = G, A, C, T.
El análisis de homología Blastx de la
información de secuencia indicó que la proteína codificada por el
clon Tter08C4 fue similar a la proteína EG1 de Trichoderma
reesei (NREF NF00494331). Estas proteínas fueron un 46%
idénticas sobre una extensión de 365 aminoácidos.
El análisis de la secuencia de proteína deducida
del clon Tter08C4 con el programa Interproscan (Zdobnov y Apweiler,
2001 Bioinformatics 17: 847-8) mostró que el gen
contenía la distinción de secuencia de las proteínas de Familia 7.
En esta distinción de la secuencia conocida como el modelo Pfam
PF00840 (Bateman et. al., 2002, Nucleic Acids Research 30:
276-280) se descubrió 18 aminoácidos desde el
aminoácido metionina inicial confirmando que el clon Tter08C4
codifica una endoglucanasa de Familia 7.
La secuencia de ADNc (SEC ID n.º: 1) y la
secuencia de aminoácidos deducida (SEC ID n.º: 2) de la
endoglucanasa de Thielavia terrestris se muestran en las
Figuras 1A y 1B. El clon de ADNc codifica un polipéptido de 336
aminoácidos. El contenido %G+C del clon de ADNc del gen es del 67,5%
y de la región codificante de la proteína madura (nucleótidos 55 a
1011 de la SEC ID n.º: 1) es del 67,5%. Usando el programa de
software SignalP (Nielsen et al., 1997, Protein Engineering
10: 1-6), se predijo un péptido señal de 17
residuos. La proteína madura predicha contiene 319 aminoácidos con
una masa molecular de 33,3 kDa.
Una alineación comparativa de secuencias de
endoglucanasa de Familia 7 fue determinada por el método Clustal W
(Higgins, 1989, supra) usando el software LASERGENE^{TM}
MEGALIGN^{TM} (DNASTAR, Inc., Madison, Wl) con una tabla de
identidad y los siguientes parámetros de alineación múltiple: la
penalización por gaps de 10 y penalización de longitud de gaps de
10. Los parámetros de alineación en pareja fueron Ktuple = 1,
penalización por gaps = 3, ventanas = 5 y diagonales = 5. La
alineación mostró que la secuencia de aminoácidos deducida del gen
maduro de CEL7F de Thielavia terrestris comparte un 46,7% de
identidad con la secuencia de aminoácidos deducida de la región
catalítica del gen de endoglucanasa I de Trichoderma reesei
(NREF NF00494331, Uniprot Q5BMS5) y el 44,9% de identidad con la
secuencia de aminoácidos deducida del gen de endoglucanasa I de
longitud completa de Trichoderma reesei (NREF NF00494331,
Uniprot Q5BMS5). El análisis de la alineación de las regiones
catalíticas de estas proteínas demostró que a la endoglucanasa CEL7F
de Thielavia terrestris le faltan al menos tres motivos de
secuencia distintos que se conservan en todos los otros elementos
conocidos de la familia 7 de glicosil hidrolasa de los hongos. Dos
de estos consisten en más de diez residuos de aminoácidos y
contienen residuos altamente conservados que no están presentes en
la endoglucanasa CEL7F de Thielavia terrestris.
Una vez que la identidad del clon Tter08C4 fue
confirmada, una alícuota de 0,5 \mul de ADN plásmido de este clon,
designada pTter7F (Figura 2), fue transferida en un frasco de
células TOPIO de E. coli (Invitrogen, Carlsbad, CA), fue
suavemente mezclada e incubada en hielo durante 10 minutos. Las
células luego recibieron un choque térmico a 42ºC durante 30
segundos y fueron incubadas nuevamente en hielo durante 2 minutos.
Las células fueron resuspendidas en 250 \mul de medio SOC y fueron
incubadas a 37ºC durante 60 minutos con agitación constante (200
r.p.m.). Después del periodo de incubación, dos alícuotas de 30
\mul fueron colocadas sobre placas LB suplementadas con 50 \mug
de canamicina por ml y fueron incubadas durante toda la noche a
37ºC. Al día siguiente, una colonia individual fue escogida y
sembrada sobre tres crioviales de 1,8 ml con aproximadamente 1,5 ml
de agarosa LB suplementada con 50 \mug de canamicina por ml. Los
frascos fueron sellados con PetriSeal^{TM} (Diversified Biotech,
Boston MA) y depositados en Agricultural Research Service Patent
Culture Collection, Northern Regional Research Center, 1815
University Street, Peoría, Illinois, 61604, como NRRL B 30802, con
fecha de depósito del 11 de abril 11 de 2005.
\vskip1.000000\baselineskip
El vector de expresión pAILo1 fue construido
modificando pBANe6 (patente U.S. n.º 6461837), que comprende un
híbrido de los promotores de los genes para
alfa-amilasa neutra de Aspergillus niger y
triosa fosfato isomerasa de Aspergillus oryzae (promotor
NA2-tpi), secuencia de terminador de
amiloglucosidasa de Aspergillus niger (terminador AMG) y gen
de acetamidasa de Aspergillus nidulans (amdS). Todas las
fases de mutagénesis fueron verificadas por secuenciación usando
química de terminador Big-Dye^{TM} según se
describe. La modificación de pBANe6 fue realizada eliminando primero
tres sitios de restricción Nco I en las posiciones 2051, 2722 y 3397
bp del marcador de selección amdS por mutagénesis dirigida.
Todos los cambios fueron diseñados para ser "silenciosos"
dejando la secuencia de proteína real del producto genético
amdS sin variación. La eliminación de estos tres sitios fue
realizada simultáneamente con un Kit de mutagénesis dirigida
GeneEditor^{TM} in vitro (Promega, Madison, WI) según las
instrucciones del fabricante usando los siguientes cebadores (el
nucleótido subrayado representa la base cambiada):
- AMDS3NcoMut (2050): 5'-GTGCCCCATGATACGCCTCCGG-3' (SEC ID N.º: 7)
- AMDS2NcoMut (2721): 5'-GAGTCGTATTTCCAAGGCTCCTGACC-3' (SEC ID N.º: 8)
- AMDS1NcoMut (3396): 5'-GGAGGCCATGAAGTGGACCAACGG-3' (SEC ID N.º: 9)
\vskip1.000000\baselineskip
Un plásmido que comprende los tres cambios de
secuencia previstos fue después sometido a mutagénesis dirigida,
usando un kit de mutagénesis dirigida QuickChange^{TM}
(Stratagene, La Jolla, CA), para eliminar el sitio de restricción
Neo I al final del terminador AMG en la posición 1643. Los
siguientes cebadores (el nucleótido subrayado representa la base
cambiada) fueron usados para la mutagénesis:
Cebador superior para mutagenizar la secuencia
del terminador AMG:
- 5'-CACCGTGAAAGCCATGCTCTTTCCTTCGTGTAGAAGACCAGACAG-3' (SEC ID N.º: 10)
\vskip1.000000\baselineskip
Cebador inferior para mutagenizar la secuencia
del terminador AMG:
- 5'-CTGGTCTTCTACACGAAGGAAAGAGCATGGCTTTCACGGTGTCTG-3' (SEC ID N.º: 11)
\vskip1.000000\baselineskip
La última fase en la modificación de pBANe6 fue
la adición de un nuevo sitio de restricción Nco I en el principio
del poliligador usando un kit de mutagénesis dirigida
QuickChange^{TM} y los siguientes cebadores (los nucleótidos
subrayados representan las bases cambiadas) para producir pAILo1
(Figura 3).
Cebador superior para mutagenizar el promotor
NA2-tpi:
- 5'-CTATATACACAACTGGATTTACCATGGGCCCGCGGCCGCAGATC-3' (SEC ID N.º: 12)
\vskip1.000000\baselineskip
Cebador inferior para mutagenizar el promotor
NA2-tpi:
- 5'-GATCTGCGGCCGCGGGCCCATGGTAAATCCAGTTGTGTATATAG-3' (SEC ID N.º: 13)
\vskip1.000000\baselineskip
El gen amdS de pAILo1 fue cambiado con el
gen pyrG de Aspergillus nidulans. El plásmido pBANe10
(Figura 4) fue usado como una fuente para el gen pyrG como un
marcador de selección. El análisis de la secuencia de pBANe10 mostró
que el marcador pyrG estaba contenido dentro de un fragmento
de restricción Nsi I y no contiene sitios de restricción Nco I ni
Pac I. Puesto que el amdS también es flanqueado por sitios de
restricción Nsi I, la estrategia para cambiar el marcador de
selección fue un simple cambio de los fragmentos de restricción Nsi
I. El ADN plásmido de pAILo1 y pBANe10 fue digerido con la enzima de
restricción Nsi I y los productos purificados por electroforesis en
gel de agarosa. El fragmento Nsi I de pBANe10 conteniendo el gen
pyrG fue ligado a la estructura principal de pAILo1 para
reemplazar el fragmento de ADN Nsi I original conteniendo el gen
amdS. Los clones recombinantes fueron analizados por
digestión de la restricción para determinar que tenían el inserto
correcto y también su orientación. Se seleccionó un clon con el gen
pyrG transcrito en el sentido contrario a las agujas del
reloj. El plásmido nuevo fue designado pAILo2 (Figura 5).
\vskip1.000000\baselineskip
Dos cebadores oligonucleótidos sintéticos,
mostrados más abajo, fueron diseñados para amplificar por PCR el
marco de lectura abierto en toda su longitud de EST Tter08C4 de
Thielavia terrestris que codifica una endoglucanasa de
Familia CEL7F. Un Kit de clonación In-Fusion (BD
Biosciences, Palo Alto, CA) fue usado para clonar el fragmento
directamente en pAILo2.
Cebador directo In-Fusion:
- 5'-ACTGGATTACCATGACCCTACGGCTCCCTGTCATCA-3' (SEC ID N.º: 14)
\vskip1.000000\baselineskip
Cebador inverso In-Fusion:
- 5'-TCACCTCTAGTTAATTAACTAGTTCTTCGTGGTAGACC-3' (SEC ID N.º: 15)
\vskip1.000000\baselineskip
Las letras en negrita representan la secuencia
codificante. La secuencia restante contiene la identidad de
secuencia comparada con los sitios de inserción de pAILo2.
Cincuenta picomoles de cada uno de los cebadores
mencionados fueron usados en una reacción de PCR que contiene 50 ng
de ADN pTter11C9, 1X de tampón de amplificación Pfx (Invitrogen,
Carlsbad, CA), 6 \mul de 10 mM de mezcla de DATP, dTTP, DGTP y
DCTP, 2,5 unidades de Pfx ADN polimerasa Platinum
(Invitrogen, Carlsbad, CA), 1 \mul de 50 mM de MgSO_{4} y 5
\mul de 10X de solución intensificadora pCRx (Invitrogen,
Carlsbad, CA) en un volumen final de 50 \mul. Un Eppendorf
Mastercicler 5333 (Eppendorf Scientific, Inc., Westbury, NY) fue
usado para amplificar el fragmento programado para un ciclo a 98ºC
durante 2 minutos; y 35 ciclos cada uno a 94ºC durante 30 segundos,
65ºC durante 30 segundos y 68ºC durante 1,5 minutos. Después del 35
ciclos, la reacción fue incubada a 68ºC durante 10 minutos y luego
enfriada a 10ºC hasta ser procesada adicionalmente. Un producto de
reacción de PCR de 1,4 kb fue aislado en un gel de agarosa GTG al
0,8% (Cambrex Bioproducts One Meadowlands Plaza East Rutherford, New
Jersey 07073) usando 40 mM de base tris -20 mM de acetato de sodio
-1 mM de tampón de disodio EDTA (TAE) y 0,1 \mug de bromuro de
etidio por ml. La banda de ADN fue visualizada con la ayuda de un
Dark Reader^{TM} (Clare Chemical Research, Dolores, CO) para
evitar mutaciones inducidas por UV. La banda de ADN de 1,4 kb fue
cortada con una hoja de afeitar desechable y purificada con una
unidad centrífuga Ultrafree-DA (Millipore,
Billerica, MA) según las instrucciones del fabricante.
El vector pAILo2 fue linealizado por digestión
con Nco I y Pac I. El fragmento fue purificado por electroforesis en
gel y ultrafiltración como se ha descrito anteriormente. La
clonación del fragmento de PCR purificado en el vector pAILo2
linealizado y purificado fue realizado con un kit de clonación
In-Fusion (BD Biosciences, Palo Alto, CA). La
reacción (20 \mul) contuvo 1X de tampón In-Fusion
(BD Biosciences, Palo Alto, CA), 1X de BSA (BD Biosciences, Palo
Alto, CA), 1 \mul de enzima In-Fusion (diluida
1:10) (BD Biosciences, Palo Alto, CA), 100 ng de pAILo2 digerido con
Nco I y Pac I y 50 ng del producto de PCR purificado de CEL7F de
Thielavia terrestris. La reacción fue incubada a la
temperatura ambiente durante 30 minutos. Se utilizó una muestra de 2
\mul de la reacción para transformar las células XL10 SoloPac®
Gold de E. coli (Stratagene, La Jolla, CA) según las
instrucciones del fabricante. Después del periodo de recuperación,
dos alícuotas de 100 \mul de la reacción de transformación fueron
colocadas sobre placas 2X YT de 150 mM suplementadas con 100 \mug
de ampicilina por ml. Las placas fueron incubadas durante toda la
noche a 37ºC. Un set de ocho clones recombinantes putativos fue
seleccionado al azar de las placas de selección y el ADN plásmido
fue obtenido a partir de cada una usando un BioRobot 9600. Los
clones fueron analizados por digestión de restricción Xho I.
Dos clones que tienen el modelo de digestión de restricción previsto
luego fueron secuenciados para confirmar que no había mutaciones en
el inserto clonado. El clon n.º 1 fue seleccionado y designado
pAILo22 (Figura 6).
\vskip1.000000\baselineskip
Los protoplastos de Aspergillus oryzae
Jal250 (WO 99/61651) fueron preparados según el método de
Christensen et al., 1988, Bio/Technology 6:
1419-1422. Cinco microgramos de pAILo22 (y pAILo2
como un control del vector) fueron usados para transformar
protoplastos de Aspergillus oryzae JAL250.
La transformación de de Aspergillus
oryzae Jal250 con pAILo2 produce aproximadamente 50
transformantes. Ocho transformantes fueron aislados en placas PDA
individuales e incubados durante cinco días a 34ºC.
Placas de esporas confluentes fueron lavadas con
5 ml de Tween 80 al 0,01% y la suspensión de esporas fue usada para
inocular 25 ml de medio MDU2BP en frascos de agitación de vidrio de
125 ml. Los cultivos transformantes fueron incubados a 34ºC con
agitación constante a 200 r.p.m. El día cinco después de la
inoculación, los cultivos fueron centrifugados a 6000 x g y sus
sobrenadantes recogidos. Cinco \mul de cada sobrenadante fueron
mezclados con un volumen igual de 2X tampón de carga (10% de
\beta-mercaptoetanol) y cargados sobre un 1,5 mm
de gel SDS-PAGE de Tris-glicina al
8%-16% y manchados con Simply Blue SafeStain (Invitrogen, Carlsbad,
CA). Los perfiles de SDS-PAGE de los caldos de
cultivo mostraron que seis de ocho transformantes tienen una banda
proteínica nueva de aproximadamente 40 kDa. El transformante número
7 fue seleccionado para estudios adicionales y fue designado
Jal250AILo22 de Aspergillus oryzae.
\vskip1.000000\baselineskip
Las esporas Jal250AILo22 de Aspergillus
oryzae fueron extendidas sobre una placa PDA e incubadas durante
cinco días a 34ºC. La placa de esporas confluentes fue lavada dos
veces con 5 ml de Tween 80 al 0,01% para maximizar el número de
esporas recogidas. La suspensión de esporas luego fue usada para
inocular 500 ml de medio MDU2BP en un matraz Fernbach de dos litros.
El cultivo de transformante fue incubado a 34ºC con agitación
constante (200 r.p.m.). El día cinco después de la inoculación, el
caldo de cultivo fue recogido por filtración en una unidad de filtro
de nilón de 75 mm de 500 ml con un tamaño de poro de 0,45 \mum con
un prefiltro de fibra de vidrio. Una muestra de 5 \mul del caldo
fue analizada por SDS-PAGE como se ha descrito
anteriormente para confirmar que el modelo de proteína fue el mismo
que el obtenido antes. Una vez que el caldo mostró que contenía la
banda proteínica de 40 kDa, el caldo fue sometido a caracterización
enzimática.
\vskip1.000000\baselineskip
El caldo de Aspergillus oryzae
Jal250AILo22 descrito en el ejemplo 8 fue filtrado a través de un
filtro de tamaño de poro de 0,22 \mum (Millipore, Billerica, MA),
concentrado usando una célula Amicon agitada equipada con una
membrana PM10 (Millipore, Billerica, MA) y desalado usando una
columna Econo-Pac 10DG (BioRad Laboratories,
Hercules, CA).
El caldo de Aspergillus oryzae Jal250
(vector solo), como un control negativo, fue tratado del mismo modo
que anteriormente.
Los sustratos teñidos usados para evalular la
especificidad de sustrato de la endoglucanasa CEL7F de Thielavia
terrestris incluyeron: AZCL-arabinoxilano
(trigo), AZCL-\beta-glucano,
AZCL-dextrano,
AZCL-HE-celulosa,
AZCL-galactano de patata,
AZCL-galactomanano (Carob),
AZCL-xilano (Birchwood),
AZCL-xiloglucano (Megazyme, Bray, Irlanda) y Chitin
Azure (Sigma, St Louis, MO).
Los ensayos de actividad fueron realizados en
placas de 96 pocillos profundos (Axygen Scientific, Union City, CA)
selladas por un sellador de placa (ALPS-300, Abgene,
Epsom, UK). Ochocientos \mul de los sustratos mencionados (6,25 g
por litro de 50 mM de acetato de sodio pH 5,0) fueron transferidos
en cada pocillo de la placa de 96 pocillos profundos, seguidos de
180 \mul de 50 mM de acetato de sodio pH 5,0 y 20 \mul de
solución de endoglucanasa CEL7F de Thielavia terrestris (0,25
g/l) para iniciar las reacciones. La concentración de sustrato y
carga enzimática en la mezcla reactiva final fue 5 g por litro y 1
mg de enzima por g de sustrato, respectivamente. El caldo de
Aspergillus oryzae Jal250 fue evaluado junto con el caldo de
endoglucanasa CEL7F de Thielavia terrestris bajo la misma
condición, sirviendo como un control negativo. Las reacciones fueron
incubadas a 50ºC sin mezcla. Antes del muestreo, las placas de
pocillos profundos fueron centrifugadas en un centrifugador de
placas (Sorvall RT7, Global Medical Instrumentation, Ramsey, MN) a
3000 r.p.m. durante 5 minutos. Una muestra de 150 \mul del
sobrenadante fue transferida en una placa de filtración de 96
pocillos (tamaño de poro de 0,45 \muM, Millipore, Billerica, MA),
fue aspirada y se recogió el filtrado. Una muestra de 100 \mul del
filtrado fue transferida a otra placa de 96 pocillos y se midió la
absorbencia a 590 nm usando un Spectra MAX340 (Molecular Devices,
Sunnyvale, CA).
Después de incubaciones de 1 hora y 92 horas, el
colorante liberado de los diferentes sustratos teñidos por
endoglucanasa CEL7F de Thielavia terrestris (después de
sustraer el colorante liberado por Aspergillus oryzae Jal250)
se muestra en la tabla 1 como valores de 590 nm relativos.
La endoglucanasa CEL7F de Thielavia
terrestris tuvo actividad hacia
AZCL-\beta-glucano y
AZCL-HE-celulosa después de 1 hora.
La endoglucanasa CEL7F de Thielavia terrestris también mostró
actividad en sustratos teñidos de arabinoxilano, xilano y
xiloglucano y actividad baja en el sustrato teñido de galactomanano
después de una incubación de 92 horas.
\vskip1.000000\baselineskip
El rastrojo de maíz fue pretratado en el
Department of Energy National Renewable Energy Laboratory (NREL) de
Estados Unidos usando ácido sulfúrico diluido. Se utilizaron las
siguientes condiciones para la pretratamiento: 0.048 g de ácido
sulfúrico/g de biomasa seca a 190ºC y 25% p/p de sólidos secos
durante alrededor de 1 minuto. Los sólidos insolubles en agua en el
rastrojo de maíz pretratado (PCS) contenían 52% de celulosa, 3,6% de
hemicelulosa y 29,8% de lignina. La celulosa y la hemicelulosa
fueron determinadas por una hidrólisis de ácido sulfúrico de dos
etapas con análisis posterior de azúcares por cromatografía en fase
líquida de alto rendimiento usando el procedimiento analítico
estándar n.º 002 de NREL. La lignina fue determinada
gravimétricamente después de hidrolizar la celulosa y fracciones de
hemicelulosa con ácido sulfúrico usando el procedimiento analítico
estándar n.º 003 de NREL. Antes de la hidrólisis enzimática, el PCS
fue lavado con un gran volumen de agua destilada doble hasta que el
pH fue superior a 4,0, y luego fue tamizado a través de una criba de
malla 100 y sometido a autoclave a 121ºC durante
30 minutos.
30 minutos.
La hidrólisis de PCS fue conducida en placas de
96 pocillos profundos, (Axygen Scientific, Union City, CA) sellada
por un sellador de placa (ALPS-300, Abgene, Epsom,
Reino Unido), con un volumen de reacción total de 1,0 ml. La
hidrólisis de PCS (10 mg/ml en 50 mM de tampón de acetato de sodio
pH 5,0) fue realizada usando 1,25 mg de endoglucanasa CEL7F de
Thielavia terrestris (preparada como se describe en el
ejemplo 9) por gramo de PCS. El caldo de de Aspergillus
oryzae Jal250 (preparado como se describe en el ejemplo 9) fue
realizado como un control. Se realizó la hidrólisis de PCS a 50ºC,
pH 5,0. Las reacciones fueron realizadas en duplicados y se tomaron
alícuotas durante el curso de la hidrólisis. Las reacciones de la
hidrólisis de PCS fueron detenidas mediante la mezcla de una
alícuota de 20 \mul de cada hidrolizado con 180 \mul de 0,11 M
de NaOH (reactivo de detención). Diluciones en serie apropiadas
fueron generadas para cada muestra y el contenido de azúcar reductor
determinado usando un ensayo de hidracida de ácido
para-hidroxibenzoico (PHBAH, Sigma, St. Louis, MO)
adaptado a un formato de microplaca de 96 pocillos como se describe
más abajo. Brevemente, una alícuota de 90 \mul de una muestra
apropiadamente diluida fue colocada en una microplaca de fondo
cónico de 96 pocillos. Las reacciones fueron iniciadas añadiendo 60
\mul de 1,5% (p/v) de PHBAH en NaOH al 2% a cada pocillo. Las
placas fueron calentadas descubiertas a 95ºC durante 10 minutos. Se
permitió que las placas se enfriaran a temperatura ambiente (RT) y
se añadieron 50 \mul de H_{2}O destilado a cada pocillo. Una
alícuota de 100 \mul de cada pocillo fue transferida a una placa
de 96 pocillos de fondo plano y se midió la absorbencia en
A_{410nm} usando un SpectraMax Microplate Reader (Molecular
Devices, Sunnyvale, CA). Se utilizaron los estándares de glucosa
(0,1-0,0125 mg/ml diluidos con hidróxido de sodio al
0,4%) para preparar una curva estándar para traducir los valores de
Amnm obtenidos en equivalentes de glucosa. Los equivalentes
resultantes fueron usados para calcular el porcentaje de conversión
de celulosa PCS para cada reacción. El grado de conversión de
celulosa a azúcar reductor (conversión, %) fue calculado usando la
siguiente
ecuación:
ecuación:
En esta ecuación, RS es la concentración de
azúcar reductor en la solución medida en equivalentes de glucosa
(mg/ml) y el factor 1.111 refleja el aumento de peso en la
conversión de celulosa a glucosa.
La hidrólisis de PCS por la endoglucanasa CEL7F
de Thielavia terrestris (1,25 mg/g de PCS) produjo una
conversión de celulosa de 2,1% después de 120 horas. Aspergilius
oryzae Jal250 (1,25 mg/g de PCS) produjo menos del 1% de
conversión después de 120 horas.
\vskip1.000000\baselineskip
La endoglucanasa de Thielavia terrestris
Cel7F fue evaluada en forma del caldo de Aspergilius oryzae
Jal250AIL
022 descrito en el ejemplo 8. El caldo fue concentrado y cambiado a 50 mM de acetato de sodio pH 5,0 usando el filtro centrífugo Centricon Plus-20 con membrana de polietersulfona Biomax-5 (5000 NMWL) de Millipore (Bedford, MA). El caldo de Aspergillus oryzae Jal250 (vector solo) fue tratado igual que más arriba.
022 descrito en el ejemplo 8. El caldo fue concentrado y cambiado a 50 mM de acetato de sodio pH 5,0 usando el filtro centrífugo Centricon Plus-20 con membrana de polietersulfona Biomax-5 (5000 NMWL) de Millipore (Bedford, MA). El caldo de Aspergillus oryzae Jal250 (vector solo) fue tratado igual que más arriba.
La concentración de proteínas en las soluciones
enzimáticas fue determinada usando el ensayo de microplaca de ácido
bicinconínico (BCA) según las instrucciones del fabricante para un
kit de reactivo de ensayo de proteína de BCA (Pierce Chemical Co.,
Rockford, IL).
Las diluciones enzimáticas fueron recién
preparadas antes cada experimento de soluciones de enzima de materia
prima, que fueron almacenadas a -20ºC.
La actividad de la endoglucanasa de Thielavia
terrestris Cel7F en beta-glucano soluble de
cebada (viscosidad media, 230 kDa, Megazyme International Ireland
Ltd., Bray, Irelanda) fue determinada a pH 5,5 (50 mM de acetato de
sodio con azida sódica al 0.02%) y 60ºC. Los resultados fueron
comparados con los de la endoglucanasa Trichoderma reesei
Cel7Bde (EGI). La endoglucanasa de Trichoderma reesei Cel7B
recombinante (EGI) puede ser preparada según Takashima et
al., 1998, Journal of Biotechnology 65:
163-171.
La concentración inicial de
beta-glucano en las reacciones de hidrólisis fue
1,0% (p/v). Se realizaron reacciones de un ml sin agitar en placas
de 96 pocillos profundos de Eppendorf (1,2 ml, VWR Scientific, West
Chester, PA). Las enzimas fueron usadas en tres cargas de proteínas,
0,05, 0,1 y 0,2 mg por g de glucano. En las reacciones de control,
las endoglucanasas fueron sustituidas con 50 mM de acetato de sodio
pH 5,5 con azida sódica al 0,02% (control de tampón) o con caldo de
Aspergillus oryzae Jal250 concentrado y con tampón cambiado
con enzimas no expresadas recombinantemente (control de Jal250).
Las alícuotas fueron eliminadas de las
reacciones de hidrólisis en 2 horas y 24 horas, diluidas con agua
desionizada y analizadas para detectar azúcares reducidos usando el
ensayo de hidracida de ácido p-hidroxibenzoico
(PHBAH) como se describe en el ejemplo 10. La conversión relativa
del beta-glucano como función de carga de proteína
en dos tiempos de incubación, 2 horas y 24 horas, se muestra en las
Figuras 7 y 8, respectivamente. La conversión relativa se muestra
como un porcentaje de conversión obtenido después de hidrólisis de
24 horas de beta-glucano por endoglucanasa de
Thielavia terrestris Cel7F (0,2 mg de proteína por g de
glucano).
La endoglucanasa de Thielavia terrestris
Cel7F mostró mayor conversión de beta-glucano que la
endoglucanasa de Trichoderma reesei Cel7B y continuó
produciendo nuevos grupos terminales reducidos más allá del período
de incubación de 2 horas. Por el contrario, la endoglucanasa de
Trichoderma reesei Cel7B no mostró casi ningún aumento
adicional en la concentración de azúcar reductor después de 2 horas
de hidrólisis.
El siguiente material biológico ha sido
depositado según las condiciones del Tratado de Budapest con
Agricultural Research Service Patent Culture Collection, Northern
Regional Research Center, 1815 University Street, Peoria, Illinois,
61604 y recibió el siguiente número de acceso:
\vskip1.000000\baselineskip
\newpage
La cepa ha sido depositada bajo condiciones que
aseguran que el acceso al cultivo estará disponible durante la
pendencia de esta solicitud de patente a una determinada por el
Comisiario de Patentes y marcas registradas para tener derecho a
ellas bajo 37 C.F.R. \NAK1.14 y 35 U.S.C. \NAK122. El depósito
representa un cultivo substancialmente puro de la cepa depositada El
depósito está disponible según lo requerido por las leyes
extranjeras de patentes en países donde se presentan duplicados de
la aplicación de referencia o su progenie. No obstante, debe
entenderse que la disponibilidad de un depósito no constituye una
licencia para poner en práctica la invención de referencia en
derogación de derechos de patentes concedidos por acción
gubernativa.
\vskip1.000000\baselineskip
Esta lista de referencias citada por el
solicitante ha sido recopilada exclusivamente para la información
del lector. No forma parte del documento de patente europea. La
misma ha sido confeccionada con la mayor diligencia; la OEP sin
embargo no asume responsabilidad alguna por eventuales errores u
omisiones.
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\sqbullet WO 9522625 A [0058]
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\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
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\vskip0.400000\baselineskip
<213> Escherichia coli
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 3
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskiptcgtcgggga caactttgta caaaaaagtt gg
\hfill32
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 27
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Escherichia coli
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 4
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcccctgttga aacatgtttt ttcaacc
\hfill27
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 5
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 16
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Escherichia coli
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400>5
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipgtaaaacgac ggccag
\hfill16
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 6
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 25
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Escherichia coli
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (25)..(25)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> N = A, C, G o T
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 6
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskiptttttttttt tttttttttt tttvn
\hfill25
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 7
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 22
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Aspergilius nidulans
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 7
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipgtgccccatg atacgcctcc gg
\hfill22
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 8
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 26
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Aspergilius nidulans
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 8
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipgagtcgtatt tccaaggctc ctgacc
\hfill26
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 9
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 24
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Aspergillus nidulans
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 9
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipggaggccatg aagtggacca acgg
\hfill24
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 10
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 45
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Aspergillus niger
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 10
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcaccgtgaaa gccatgctct ttccttcgtg tagaagacca gacag
\hfill45
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 11
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 45
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Aspergillus niger
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 11
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipctggtcttct acacgaagga aagagcatgg ctttcacggt gtctg
\hfill45
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 12
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 44
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Aspergillus niger
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 12
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipctatatacac aactggattt accatgggcc cgcggccgca gatc
\hfill44
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 13
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 44
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Aspergillus niger
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 13
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipgatctgcggc cgcgggccca tggtaaatcc agttgtgtat atag
\hfill44
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 14
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 36
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Thielavia terrestris
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 14
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipactggattac catgacccta cggctccctg tcatca
\hfill36
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 15
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 38
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Thielavia terrestris
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 15
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskiptcacctctag ttaattaact agttcttcgt ggtagacc
\hfill38
Claims (11)
1. Polipéptido aislado que tiene actividad
endoglucanasa, seleccionado del grupo que consiste en:
- (a)
- un polipéptido que comprende una secuencia de aminoácidos que tiene al menos un 80% de identidad con el polipéptido maduro de la SEC ID n.º: 2; y
- (b)
- un polipéptido que es codificado por un polinucleótido que se híbrida bajo condiciones de astringencia al menos media-alta con (i) la secuencia que codifica el polipéptido maduro de la SEC ID n.º: 1, (ii) la secuencia de ADN genómico que comprende la secuencia que codifica el polipéptido maduro de la SEC ID n.º: 1, o (iii) una cadena complementaria de (i) o (ii);
caracterizado por el hecho de que las
condiciones de astringencia media-alta son definidas
como prehibridación e hibridación a 42ºC en 5X SSPE, 0,3% de SDS,
200 \mug/ml de ADN de esperma de salmón cortado y desnaturalizado
y 35% de formamida, y finalmente lavando el material portador tres
veces cada uno durante 15 minutos usando 2X SSC, 0,2% de SDS a una
temperatura de al menos 60ºC.
\vskip1.000000\baselineskip
2. Polipéptido según la reivindicación 1, que
comprende o que consiste en el polipéptido maduro de la SEC ID n.º:
2; que tiene actividad endoglucanasa.
3. Polipéptido según la reivindicación 1, que es
codificado por el polinucleótido contenido en el plásmido pTter7F
que está contenido en E. coli NRRL
B-30837.
4. Polipéptido según cualquiera de las
reivindicaciones 1-3, caracterizado por el
hecho de que el polipéptido maduro es los aminoácidos 18 a 336 de la
SEC ID n.º: 2 y la secuencia que codifica el polipéptido maduro es
los nucleótidos 52 a 1008 de la SEC ID n.º 1.
5. Polinucleótido aislado que comprende una
secuencia de nucleótidos que codifica el polipéptido según
cualquiera de las reivindicaciones 1-4.
6. Constructo de ácidos nucléicos que comprende
el polinucleótido según la reivindicación 5 operativamente enlazado
a una o más secuencias de control que dirigen la producción del
polipéptido en un huésped de expresión.
7. Célula huésped recombinante que comprende el
constructo de ácidos nucléicos según la reivindicación 6.
8. Método para producir el polipéptido según
cualquiera de las reivindicaciones 1-4, que
comprende: (a) cultivar una célula huésped que comprende un
constructo de ácidos nucléicos que comprende una secuencia de
nucleótidos que codifica el polipéptido bajo condiciones propicias
para la producción del polipéptido; y (b) recuperar el
polipéptido.
9. Polinucleótido aislado obtenido (a)
hibridando una población de ADN bajo condiciones de astringencia al
menos media con (i) la secuencia que codifica el polipéptido maduro
de la SEC ID n.º: 1, (ii) la secuencia de ADN genómico que comprende
la secuencia que codifica el polipéptido maduro de la SEC ID n.º: 1,
o (iii) una cadena complementaria de (i) o (ii); y (b) aislar el
polinucleótido de hibridación, que codifica un polipéptido que tiene
actividad endoglucanasa.
10. Planta transgénica, parte de planta o célula
vegetal, que ha sido transformada con un polinucleótido que codifica
el polipéptido según cualquiera de las reivindicaciones
1-4.
11. Método para degradar biomasa con celulosa y
hemicelulosa, que comprende tratar la biomasa con una cantidad
eficaz del polipéptido según cualquiera de las reivindicaciones
1-4 o la célula huésped según la reivindicación 7 y
recuperar la biomasa degradada.
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