ES2301581T3 - Aislamiento de acidos nucleicos. - Google Patents
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Abstract
Método de extracción de ácido nucleico a partir de un lisado celular, método que comprende: poner el lisado celular en contacto con una fase sólida a un primer pH al que la fase sólida tiene una carga positiva de modo que el ácido nucleico se une a la fase sólida con preferencia con respecto a los contaminantes en el lisado celular; liberar el ácido nucleico a un segundo pH superior por encima del pKa de la fase sólida para invertir o neutralizar la carga positiva para liberar el ácido nucleico unido de la fase sólida; en el que la fase sólida es vidrio de poro controlado, un polisacárido, un material cerámico, un material plástico poroso, un material plástico, perlas de poliestireno, perlas paramagnéticas o un tapón de plástico poroso que es una única pieza moldeada o es una pieza de inserción para un recipiente; y en el que el ácido nucleico se libera usando un tampón de baja salinidad.
Description
Aislamiento de ácidos nucleicos.
La presente invención se refiere a un método
para extraer ácidos nucleicos a partir de material biológico,
particularmente sangre.
Existe una demanda muy grande de análisis de ADN
para una gama de fines y esto ha conducido al requisito de métodos
rápidos, seguros y de alto rendimiento para el aislamiento y la
purificación de ADN y otros ácidos nucleicos.
Pueden tomarse muestras para su uso para la
identificación o el análisis de ADN de una amplia gama de fuentes
tales como material biológico tal como tejido, heces, células de
animales y plantas, etc., también pueden tomarse muestras de suelo,
productos alimenticios, agua, etc.
Los métodos existentes para la extracción de ADN
incluyen el uso de fenol/cloroformo, precipitación con sales, el
uso de sales caotrópicas y resinas de sílice, el uso de resinas de
afinidad, cromatografía de intercambio iónico y el uso de perlas
magnéticas. Se describen métodos en las patentes estadounidenses
5057426, 4923978, las patentes europeas 0512767 A1 y EP0515484B y
los documentos WO 95/13368, WO 97/10331 y WO 96/18731. Estas
patentes y solicitudes de patente dan a conocer métodos de adsorción
de ácidos nucleicos sobre un soporte sólido y luego el aislamiento
de los ácidos nucleicos. Los métodos usados previamente usan algún
tipo de disolvente para aislar los ácidos nucleicos y estos
disolventes son inflamables, combustibles o tóxicos.
El documento EP 0 707077A describe la captura y
liberación selectiva de ácido nucleico a partir de un lisado usando
un polímero soluble en agua, débilmente básico para formar un
precipitado con el polímero. Entonces se separa el precipitado y se
libera el ácido nucleico del polímero usando condiciones de
salinidad extremadamente alta, una base fuerte o calentamiento.
La sangre es una de las fuentes de muestra más
abundantes para el análisis de ADN ya que se extraen muestras de
sangre rutinariamente por una amplia gama de motivos. Sin embargo,
debido a la naturaleza viscosa y proteínica de la sangre, se ha
demostrado que el uso de métodos de extracción de ADN conocidos es
difícil de conseguir usando automatización debido a las
dificultades del manejo de grandes volúmenes que contienen
cantidades relativamente pequeñas de ADN. Hasta la fecha, se ha
automatizado parcialmente la extracción de ácidos nucleicos
solamente mediante el uso de reactivos peligrosos y tiempos de
procesamiento lentos.
Se ha ideado ahora un método mejorado para la
extracción de ácidos nucleicos y otras biomoléculas a partir de la
sangre y otros materiales biológicos.
Por consiguiente, la presente invención
proporciona un método de extracción de ácido nucleico a partir de
un lisado celular tal como se expone en las reivindicaciones.
El método es particularmente útil si el material
biológico es sangre, pero puede usarse el método para una gama de
sustancias de aplicaciones tales como el aislamiento de plásmidos y
vectores y la extracción de ADN de plantas.
Preferiblemente, se lisan las células en la
sangre para liberar ácidos nucleicos y pueden usarse métodos y
agentes de lisado conocidos, tales como la puesta en contacto con
detergentes iónicos y no iónicos, disoluciones hipotónicas de
sales, proteasas, agentes caotrópicos, disolventes, el uso de
cambios de pH o calor. Se describe un método de lisado de células
para aislar ácido nucleico en el documento WO 96/00228.
Cuando el material biológico consiste en sangre,
las muestras pueden diluirse opcionalmente con agua u otro
diluyente con el fin de hacerlo más fácil de manipular y
procesar.
Pueden usarse diluciones de hasta diez veces y
en general puede ser mejor una mayor dilución y es una
característica de la presente invención que permite que sea posible
una baja dilución de la sangre.
La fase sólida con la que se pone en contacto la
sangre puede estar formada por un material que tiene una afinidad
natural por los ácidos nucleicos o puede estar formada por un
material cuya superficie se ha tratado con un agente que provocará
que los ácidos nucleicos se unan a ella o aumentará su afinidad por
los ácidos nucleicos. Los materiales adecuados incluyen vidrio de
poro controlado, polisacárido (agarosa o celulosa), otros tipos de
sílice/vidrio, materiales cerámicos, materiales plásticos porosos
tales como tapones de plástico poroso que están en una única pieza
moldeada o como una pieza de inserción en un tubo convencional,
perlas de poliestireno, perlas paramagnéticas, etc. El tamaño y la
porosidad no son críticos y pueden variar y seleccionarse para
aplicaciones particulares.
Los medios adecuados para tratar la superficie
de la fase sólida o para derivatizarla incluyen tratarla con una
sustancia que puede introducir una carga, por ejemplo una carga
positiva sobre la superficie o una superficie hidrófila o hidrófoba
sobre la fase sólida, por ejemplo grupos hidroxilo, grupos nitrato,
grupos autorreactivos, colorantes y otros compuestos
aromáticos.
\newpage
En una realización preferida de la invención, la
fase sólida provocará que el ADN se una a ella a un pH con
preferencia con respecto a los contaminantes en la muestra de sangre
y permitirá que el ácido nucleico unido se libere cuando se ponga
en contacto con un eluyente a un pH diferente. Este sistema puede
usarse con una fase sólida que incorpora histidina o una
polihistidina que tenderá a unirse a ácidos nucleicos a un pH bajo,
por ejemplo inferior a 6 y luego se liberarán los ácidos nucleicos
unidos cuando el pH se aumenta, por ejemplo, hasta más de 8.
Alternativamente, los ácidos nucleicos se unen a pH sustancialmente
neutro a una superficie aminada y se liberan a pH muy alto.
En otra realización de la invención, una pieza
moleada de plástico puede incorporar un agente de unión, por
ejemplo en un pocillo en una placa, etc., de modo que el agente de
unión se incorpora en la superficie, entonces se pone en contacto
la muestra de sangre con la superficie de modo que se provoca que
los ácidos nucleicos se unan a la superficie. Entonces se retira la
muestra de sangre y se trata la superficie con un agente de elución
para liberar los ácidos nucleicos unidos. Cuando la superficie es
parte de un pocillo en una placa de múltiples pocillos, el sistema
total puede adaptarse fácilmente para técnicas de extracción y toma
de muestras a gran escala rápidas.
Los agentes de unión que pueden usarse incluyen
resinas de intercambio iónico de carga conmutable que usan una fase
sólida cargada positivamente que puede invertirse o neutralizarse
cambiando el pH por encima de su pKa, por ejemplo nucleótidos,
poliaminas, grupos imidazol y otros reactivos similares con un valor
de pKa adecuado.
Además, pueden unirse ácidos nucleicos mediante
la intercalación usando una variedad de compuestos de intercalación
incorporados en la fase sólida, por ejemplo actinomicina D, bromuro
de etidio, etc.
En una realización adicional de la invención,
puede modificarse una superficie de plástico para que incluya
grupos funcionales. El plástico puede ser cualquier plástico usado
para contener muestras, por ejemplo polipropileno. Los grupos
funcionales pueden estar cargados positiva o negativamente, de modo
que se unan a los ácidos nucleicos en la disolución tampón
correcta.
Alternativamente, los grupos funcionales pueden
ser grupos químicos que pueden acoplarse covalentemente a otros
ligandos o polímeros.
Cuando el plástico se usa en una pieza moldeada
de plástico, por ejemplo en un pocillo en una placa, o como un tubo
de reacción en cadena de la polimerasa (PCR), las características de
superficie del plástico pueden modificarse adecuadamente para su
uso en la presente invención incluyendo o añadiendo los productos
químicos apropiados en el compuesto de moldeo, por ejemplo como en
un compuesto de moldeo por inyección.
Cuando esto se usa en un tubo de PCR o en una
placa con pocillos profundos, pueden usarse los tubos o los
pocillos para aislar e inmovilizar pequeñas cantidades de ADN o ARN
que generan un molde puro para una PCR posterior u otros análisis y
manipulación genéticos.
Cuando el plástico es polipropileno, por ejemplo
está en forma de un tubo de PCR de pared fina, la superficie de
polipropileno puede modificarse oxidando la superficie con un agente
oxidante tal como permanganato de potasio y ácido sulfúrico para
crear una superficie carboxilada (grupos COOH). Entonces puede
usarse este tubo para mejorar el aislamiento de ADN a partir de
disoluciones o a partir de muestras en bruto, por ejemplo sangre.
Ajustando el pH, la constante dieléctrica, solubilidad o fuerza
iónica, puede inmovilizarse el ADN o ARN sobre las paredes del
tubo, lavado libre de contaminantes, listo para PCR u otras técnicas
analíticas.
Los grupos carboxilo pueden modificarse
adicionalmente acoplando covalentemente un grupo aniónico tal como
imidazol o polihistidina o cualquier intercambiador iónico fuerte o
débil, para permitir la unión de ácidos nucleicos mediante una
interacción de cargas. Entonces podría usarse este tubo para mejorar
el aislamiento de ADN a partir de disoluciones o a partir de
muestras en bruto, por ejemplo de sangre. De nuevo, ajustando el
pH, la constante dieléctrica o fuerza iónica, puede inmovilizarse el
ADN o ARN sobre las paredes del tubo, lavado libre de
contaminantes, listo para PCR u otras técnicas analíticas.
Los ácidos nucleicos pueden eluirse en un tampón
de baja salinidad de modo que esté listo para PCR u otros
análisis.
La fase sólida puede ponerse en contacto con una
muestra de sangre mezclando con la fase sólida en un dispositivo de
mezclado/agitación, haciendo pasar la muestra de sangre sobre la
fase sólida o la fase sólida puede ser paramagnética y manipularse
mediante un campo magnético. Aunque la invención es particularmente
adecuada para la separación o el aislamiento de ácidos nucleicos a
partir de la sangre, puede usarse con una gama de biomoléculas,
particularmente aquéllas que requieren la eliminación de los
desechos de paredes celulares o partículas insolubles.
En una realización preferida de la invención, la
fase sólida está en forma granular en una columna y la muestra de
sangre se extrae a través de la columna por medio de una presión
diferencial que está aplicándose a través de la columna, se extrae
la muestra de sangre con aire y el material sólido granular puede
fluidizarse aumentando así las tasas de mezclado y puesta en
contacto y minimizando la obstrucción.
El método de la invención es adecuado para su
uso en un formato de múltiples pocillos cuando puede tener lugar
sustancialmente de manera simultánea una serie de extracciones a
partir de diferentes muestras y esto facilitará la automatización
del procedimiento de extracción permitiendo que tenga lugar una
extracción rápida de alto rendimiento y permitiendo que se realice
química combinatoria. Esto posibilitará que exista un alto
rendimiento en una serie de pocillos convencionales, por ejemplo
una serie de ocho por doce de modo que puedan tratarse
automáticamente un gran número de tipos de muestras al mismo
tiempo.
La invención se describe en los ejemplos.
Ejemplo
1
Se preparó un intercambiador iónico de carga
conmutable acoplando covalentemente polihistidina a perlas de
vidrio de 100 \mum usando glutaraldehído mezclando 1 gramo de las
perlas de vidrio aminadas con glutaraldehído al 0,01% (v/v) en
bicarbonato de sodio 0,1 M a pH 8 que contiene 20 mg de
polihistidina. Tras la incubación durante la noche, se lavaron las
perlas exhaustivamente para eliminar el material unido no
covalentemente y se almacenaron en MES 10 mM, pH 5 que contenía
Tween 20 al 0,1% (v/v).
Se añadieron aproximadamente 300 mg de las
perlas de vidrio derivatizadas de 100 \mum a una columna de
plástico de 1 ml cerrada en ambos extremos.
Se incubó una muestra de sangre con un volumen
igual de MES 10 mM pH 5, que contenía Tween 20 al 1%, proteasas
(200 \mug/ml) y EDTA 1 mM. Tras completarse la digestión, se
aspiró la sangre de la columna que contenía las perlas de vidrio y
se inmovilizó el ADN permitiendo que las proteínas contaminantes
pasaran hasta el desecho.
Se lavaron las perlas de vidrio que contenían el
ADN inmovilizado con un tampón que comprendía MES 10 mM pH 5, que
contenía Tween 20 al 1% y EDTA 1 mM y se repitió esto hasta que la
disolución de lavado era incolora.
Tras el lavado, se secaron las perlas con aire y
se eluyó el ADN con una pequeña cantidad de Tris HCl 10 mM, pH 8,5
y se recogieron en un tubo estéril listo para análisis. Por tanto,
se separó el ADN de la sangre.
Para diferentes biomoléculas, el tampón, etc.
pueden modificarse de manera adecuada.
Ejemplo
2
Se lavó un gramo de perlas paramagnéticas
carboxiladas en tampón imidazol 50 mM pH 6 y luego se mezclaron con
100 mg de polihistidina en 50 ml de tampón imidazol 50 mM pH 6. Se
añadió un agente de acoplamiento químico (EDC) a una concentración
final de 5 mg por ml y se mezcló durante la noche. Se lavaron las
perlas en agua, cloruro de sodio 0,5 M, Tween 20 al 1%, Tris HCl
100 mM pH 8 y se almacenaron en MES 10 mM, Tween 20 al 0,1% pH
5.
Para extraer el ADN de la sangre, se mezcló 1 mg
de perlas con sangre diluida en Tween 20 al 10% con MES 25 mM, EDTA
1 mM pH 5. Se separaron las perlas con un imán y se lavaron
resuspendiendo en MES 1 mM, Tween 20 al 0,1%. Para eluir el ADN, se
resuspendieron las perlas en Tris HCl 10 mM pH 8,5 y se separaron
con un imán dejando el ADN en la disolución.
Claims (23)
1. Método de extracción de ácido nucleico a
partir de un lisado celular, método que comprende:
- poner el lisado celular en contacto con una fase sólida a un primer pH al que la fase sólida tiene una carga positiva de modo que el ácido nucleico se une a la fase sólida con preferencia con respecto a los contaminantes en el lisado celular;
- liberar el ácido nucleico a un segundo pH superior por encima del pKa de la fase sólida para invertir o neutralizar la carga positiva para liberar el ácido nucleico unido de la fase sólida;
en el que la fase sólida es vidrio de poro
controlado, un polisacárido, un material cerámico, un material
plástico poroso, un material plástico, perlas de poliestireno,
perlas paramagnéticas o un tapón de plástico poroso que es una
única pieza moldeada o es una pieza de inserción para un recipiente;
y
en el que el ácido nucleico se libera usando un
tampón de baja salinidad.
2. Método según la reivindicación 1, en el que
el lisado celular es un lisado de células vegetales o células
animales.
3. Método según la reivindicación 1, en el que
el ácido nucleico es un plásmido.
4. Método según la reivindicación 1, en el que
el ácido nucleico es ADN.
5. Método según la reivindicación 1, en el que
el ácido nucleico es ARN.
6. Método según la reivindicación 1, en el que
el lisado celular es un lisado de células sanguíneas.
7. Método según una cualquiera de las
reivindicaciones anteriores, en el que el material plástico está en
forma de una punta de pipeta, una placa con pocillos o una placa
con pocillos profundos, o un tubo de PCR.
8. Método según una cualquiera de las
reivindicaciones anteriores, en el que el ácido nucleico eluido está
listo para análisis o amplificación usando PCR sin necesidad de
purificación adicional.
9. Método según una cualquiera de las
reivindicaciones anteriores, en el que el ácido nucleico se une a la
fase sólida a un pH inferior a 6 y se libera de la fase sólida a un
pH superior a 8.
10. Método según una cualquiera de las
reivindicaciones anteriores, en el que el ácido nucleico se une a
la fase sólida a un pH sustancialmente neutro y se libera de la fase
sólida a un pH superior a 10.
11. Método según una cualquiera de las
reivindicaciones anteriores, en el que la fase sólida está formada
por un material que tiene una afinidad natural por los ácidos
nucleicos.
12. Método según una cualquiera de las
reivindicaciones anteriores, en el que la fase sólida está formada
por un material cuya superficie se ha tratado con un agente que
introduce una carga positiva para provocar que los ácidos nucleicos
se unan a ella o para aumentar su afinidad por los ácidos
nucleicos.
13. Método según una cualquiera de las
reivindicaciones anteriores, en el que la fase sólida es una resina
de intercambio iónico de carga conmutable que tiene una carga
positiva que puede invertirse o neutralizarse cambiando el pH por
encima de su pKa.
14. Método según la reivindicación 13, en el que
la resina de intercambio iónico comprende un nucleótido, una
poliamina o un compuesto que contiene un resto de imidazol.
15. Método según la reivindicación 12, en el que
la superficie del material sólido se trata con histidina o una
polihistidina.
16. Método según una cualquiera de las
reivindicaciones anteriores, en el que la fase sólida comprende una
superficie de plástico modificada para que incluya grupos
funcionales.
17. Método según la reivindicación 15 o la
reivindicación 16, en el que el material plástico es
polipropileno.
18. Método según la reivindicación 17, en el que
la superficie de polipropileno se modifica oxidando la superficie
con un agente oxidante para crear una superficie carboxilada.
19. Método según la reivindicación 18, en el que
los grupos carboxilo se modifican adicionalmente acoplando
covalentemente un grupo de intercambio aniónico para permitir la
unión de ácidos nucleicos mediante una interacción de carga.
20. Método según la reivindicación 19, en el que
el grupo de intercambio aniónico es imidazol, polihistidina o un
intercambiador iónico fuerte o débil.
21. Método según una cualquiera de las
reivindicaciones anteriores, en el que la fase sólida es un tubo de
PCR o una placa con pocillos que se usa para aislar e inmovilizar
cantidades pequeñas de ácido nucleico, generando de ese modo un
molde para una PCR posterior u otros análisis y manipulación
genéticos.
22. Método según una cualquiera de las
reivindicaciones anteriores, en el que la fase sólida es una placa
con múltiples pocillos que permite de ese modo que tenga lugar
sustancialmente de manera simultánea una serie de extracciones de
ácido nucleico de diferentes muestras.
23. Método según una cualquiera de las
reivindicaciones anteriores, que comprende además amplificar dicho
ácido nucleico liberado usando PCR.
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Families Citing this family (116)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
GB9425138D0 (en) * | 1994-12-12 | 1995-02-08 | Dynal As | Isolation of nucleic acid |
US6914137B2 (en) * | 1997-12-06 | 2005-07-05 | Dna Research Innovations Limited | Isolation of nucleic acids |
JP2002541839A (ja) * | 1999-04-21 | 2002-12-10 | アノビス, インコーポレイテッド | 植物についての磁気dna抽出キット |
US6383783B1 (en) * | 1999-09-21 | 2002-05-07 | 3M Innovative Properties Company | Nucleic acid isolation by adhering to hydrophobic solid phase and removing with nonionic surfactant |
SE9904539D0 (sv) * | 1999-12-10 | 1999-12-10 | Alphahelix Ab | Method and device for the handling of samples and reagents |
JP2001221721A (ja) * | 2000-02-09 | 2001-08-17 | Sapporo Imuno Diagnostic Laboratory:Kk | 乾燥濾紙便による遺伝子診断 |
DE10006590B4 (de) * | 2000-02-11 | 2007-10-18 | Qiagen North American Holdings, Inc. | Verwendung funktionalisierter Membranen bzw. Matrizes zur Aufreinigung von Nukleinsäuren sowie entsprechende Verfahren |
EP1349951A4 (en) * | 2001-01-09 | 2005-08-24 | Whitehead Biomedical Inst | METHOD AND REAGENTS FOR ISOLATING NUCLEIC ACIDS |
US7829025B2 (en) | 2001-03-28 | 2010-11-09 | Venture Lending & Leasing Iv, Inc. | Systems and methods for thermal actuation of microfluidic devices |
US8895311B1 (en) | 2001-03-28 | 2014-11-25 | Handylab, Inc. | Methods and systems for control of general purpose microfluidic devices |
US8110351B2 (en) | 2002-01-16 | 2012-02-07 | Invitrogen Dynal As | Method for isolating nucleic acids and protein from a single sample |
GB0212825D0 (en) * | 2002-05-31 | 2002-07-10 | Dna Res Innovations Ltd | Methods compositions and kits for cell separation |
GB0212826D0 (en) * | 2002-05-31 | 2002-07-10 | Dna Res Innovations Ltd | Materials and methods relating to polyions and substance delivery |
GB0229287D0 (en) * | 2002-12-16 | 2003-01-22 | Dna Res Innovations Ltd | Polyfunctional reagents |
US7601491B2 (en) | 2003-02-06 | 2009-10-13 | Becton, Dickinson And Company | Pretreatment method for extraction of nucleic acid from biological samples and kits therefor |
US20040197780A1 (en) * | 2003-04-02 | 2004-10-07 | Agencourt Bioscience Corporation | Method for isolating nucleic acids |
CN100395257C (zh) * | 2003-05-08 | 2008-06-18 | 慈溪市中鼎生物技术有限公司 | 钾离子酸性水溶液和利用这种溶液的dna提取方法和试剂盒 |
EP3718635A1 (en) | 2003-07-31 | 2020-10-07 | Handylab, Inc. | Processing particle-containing samples |
US8470586B2 (en) * | 2004-05-03 | 2013-06-25 | Handylab, Inc. | Processing polynucleotide-containing samples |
US8852862B2 (en) | 2004-05-03 | 2014-10-07 | Handylab, Inc. | Method for processing polynucleotide-containing samples |
WO2005111246A1 (en) * | 2004-05-11 | 2005-11-24 | Wyeth | Oligonucleotide arrays to monitor gene expression and methods for making and using same |
US20060024712A1 (en) * | 2004-06-25 | 2006-02-02 | Invitrogen Corporation | Separation of nucleic acid |
CN101027413B (zh) | 2004-07-28 | 2016-08-17 | 佳能美国生命科学公司 | 用于监测生物的基因组dna的方法 |
EP1776458A2 (en) * | 2004-07-30 | 2007-04-25 | Agencourt Bioscience Corporation | Methods of isolating nucleic acids using multifunctional group-coated solid phase carriers |
CA2575446C (en) * | 2004-08-03 | 2014-03-25 | Becton, Dickinson And Company | Use of magnetic material to direct isolation of compounds and fractionation of multipart samples |
KR100647306B1 (ko) * | 2004-12-23 | 2006-11-23 | 삼성전자주식회사 | 아미노기와 카르복실기를 포함하고 제1 pH에서 양전하를띠는 물질을 이용하여 핵산을 분리하는 방법 |
US7964380B2 (en) | 2005-01-21 | 2011-06-21 | Argylia Technologies | Nanoparticles for manipulation of biopolymers and methods of thereof |
US20060166223A1 (en) * | 2005-01-26 | 2006-07-27 | Reed Michael W | DNA purification and analysis on nanoengineered surfaces |
KR100647315B1 (ko) * | 2005-02-02 | 2006-11-23 | 삼성전자주식회사 | 실란화된 고상 물질을 이용한 핵산의 분리 및 증폭 방법 |
CN101163800B (zh) * | 2005-02-18 | 2013-04-17 | 佳能美国生命科学公司 | 鉴定生物的基因组dna的装置和方法 |
US20060234251A1 (en) * | 2005-04-19 | 2006-10-19 | Lumigen, Inc. | Methods of enhancing isolation of RNA from biological samples |
KR100668337B1 (ko) | 2005-05-21 | 2007-01-12 | 삼성전자주식회사 | 단백질에 비하여 핵산에 대한 결합력이 선택적으로 높은pH 의존성 이온 교환물질, 그가 고정화되어 있는 고체기판, 및 상기 물질 및 고체 기판을 이용하여 핵산을분리하는 방법 |
WO2007028084A2 (en) | 2005-09-01 | 2007-03-08 | Canon U.S. Life Sciences, Inc. | Method and molecular diagnostic device for detection, analysis and identification of genomic dna |
GB0522193D0 (en) | 2005-10-31 | 2005-12-07 | Axis Shield Asa | Method |
US20100021974A1 (en) * | 2005-12-05 | 2010-01-28 | Hideji Tajima | Method for Preparation of cRNA |
US11806718B2 (en) | 2006-03-24 | 2023-11-07 | Handylab, Inc. | Fluorescence detector for microfluidic diagnostic system |
ES2692380T3 (es) | 2006-03-24 | 2018-12-03 | Handylab, Inc. | Método para realizar PCR con un cartucho con varias pistas |
US8883490B2 (en) | 2006-03-24 | 2014-11-11 | Handylab, Inc. | Fluorescence detector for microfluidic diagnostic system |
US7998708B2 (en) | 2006-03-24 | 2011-08-16 | Handylab, Inc. | Microfluidic system for amplifying and detecting polynucleotides in parallel |
US10900066B2 (en) | 2006-03-24 | 2021-01-26 | Handylab, Inc. | Microfluidic system for amplifying and detecting polynucleotides in parallel |
KR100785010B1 (ko) * | 2006-04-06 | 2007-12-11 | 삼성전자주식회사 | 수소 결합을 이용하여 고체 지지체의 친수성 표면 상에서핵산 정제 방법 및 장치 |
BRPI0710637A2 (pt) * | 2006-04-21 | 2012-03-13 | Wyeth | análise do perfil de expressão diferencial de fenótipos de cultura celular e seus usos |
US7608399B2 (en) | 2006-06-26 | 2009-10-27 | Blood Cell Storage, Inc. | Device and method for extraction and analysis of nucleic acids from biological samples |
US8158411B2 (en) | 2006-08-21 | 2012-04-17 | Samsung Electronics Co., Ltd. | Method of separating microorganism using nonplanar solid substrate and device for separating microorganism using the same |
KR100813264B1 (ko) * | 2006-08-21 | 2008-03-13 | 삼성전자주식회사 | 비평면 형상의 고체 지지체를 이용하여 미생물로부터핵산을 증폭하는 방법 |
KR100837401B1 (ko) * | 2006-08-21 | 2008-06-12 | 삼성전자주식회사 | 비평면 형상의 고체 지지체를 이용하여 미생물로부터핵산을 분리하는 방법,상기 분리된 핵산을 주형으로 하여핵산을 증폭하는 방법 및 상기 고체 지지체를 포함하는핵산 분리 및 증폭 장치 |
US20080070282A1 (en) | 2006-08-21 | 2008-03-20 | Samsung Electronics Co., Ltd. | Method and device for obtaining or amplifying nucleic acid from a cell using a nonplanar solid substrate |
KR100813265B1 (ko) * | 2006-08-21 | 2008-03-13 | 삼성전자주식회사 | 비평면 형상의 고체 지지체를 이용하여 미생물로부터핵산을 증폭하는 방법 |
WO2008035991A2 (en) * | 2006-09-19 | 2008-03-27 | Michael Ronald Cook | A nucleic acid extraction method |
GB2445441B (en) * | 2006-09-26 | 2010-06-30 | Ge Healthcare Bio Sciences | Nucleic acid purification method |
WO2008061165A2 (en) * | 2006-11-14 | 2008-05-22 | Handylab, Inc. | Microfluidic cartridge and method of making same |
US8999636B2 (en) * | 2007-01-08 | 2015-04-07 | Toxic Report Llc | Reaction chamber |
GB0701253D0 (en) | 2007-01-23 | 2007-02-28 | Diagnostics For The Real World | Nucleic acid amplification and testing |
CA2629589C (en) * | 2007-04-20 | 2016-03-29 | F.Hoffmann-La Roche Ag | Isolation and purification of nucleic acid molecules with a solid phase |
US20090017460A1 (en) * | 2007-06-15 | 2009-01-15 | Wyeth | Differential expression profiling analysis of cell culture phenotypes and uses thereof |
WO2009009127A2 (en) * | 2007-07-12 | 2009-01-15 | U.S. Genomics, Inc. | Method and system for transferring and/or concentrating a sample |
US9618139B2 (en) | 2007-07-13 | 2017-04-11 | Handylab, Inc. | Integrated heater and magnetic separator |
US8287820B2 (en) | 2007-07-13 | 2012-10-16 | Handylab, Inc. | Automated pipetting apparatus having a combined liquid pump and pipette head system |
US8105783B2 (en) | 2007-07-13 | 2012-01-31 | Handylab, Inc. | Microfluidic cartridge |
US8182763B2 (en) | 2007-07-13 | 2012-05-22 | Handylab, Inc. | Rack for sample tubes and reagent holders |
WO2009012185A1 (en) | 2007-07-13 | 2009-01-22 | Handylab, Inc. | Polynucleotide capture materials, and methods of using same |
US9186677B2 (en) | 2007-07-13 | 2015-11-17 | Handylab, Inc. | Integrated apparatus for performing nucleic acid extraction and diagnostic testing on multiple biological samples |
US10125388B2 (en) | 2007-10-31 | 2018-11-13 | Akonni Biosystems, Inc. | Integrated sample processing system |
WO2009086215A2 (en) * | 2007-12-21 | 2009-07-09 | Wyeth | Pathway analysis of cell culture phenotypes and uses thereof |
WO2009117167A1 (en) | 2008-01-02 | 2009-09-24 | Blood Cell Storage, Inc. | Devices and processes for nucleic acid extraction |
GB0814570D0 (en) | 2008-08-08 | 2008-09-17 | Diagnostics For The Real World | Isolation of nucleic acid |
KR101015502B1 (ko) | 2008-09-09 | 2011-02-22 | 삼성전자주식회사 | 제1 pH에서 양전하 및 제2 pH에서 음전하를 띠는 화합물 및 그를 이용하여 핵산을 분리하는 방법 |
CN102177237B (zh) | 2008-09-12 | 2013-10-30 | 金沃特公司 | 用于贮存和稳定生物分子的基质和介质 |
US8361716B2 (en) * | 2008-10-03 | 2013-01-29 | Pathogenetix, Inc. | Focusing chamber |
US20100204462A1 (en) | 2008-10-13 | 2010-08-12 | Thomas Walter | Pipette tip with separation material |
DE102008063001A1 (de) | 2008-12-23 | 2010-06-24 | Qiagen Gmbh | Nukleinsäureaufreinigungsverfahren |
DE102008063003A1 (de) * | 2008-12-23 | 2010-06-24 | Qiagen Gmbh | Nukleinsäureaufreinigungsverfahren |
US9464319B2 (en) | 2009-03-24 | 2016-10-11 | California Institute Of Technology | Multivolume devices, kits and related methods for quantification of nucleic acids and other analytes |
US9447461B2 (en) | 2009-03-24 | 2016-09-20 | California Institute Of Technology | Analysis devices, kits, and related methods for digital quantification of nucleic acids and other analytes |
WO2010111265A1 (en) | 2009-03-24 | 2010-09-30 | University Of Chicago | Slip chip device and methods |
US10196700B2 (en) | 2009-03-24 | 2019-02-05 | University Of Chicago | Multivolume devices, kits and related methods for quantification and detection of nucleic acids and other analytes |
EP2256195A1 (de) * | 2009-05-12 | 2010-12-01 | Qiagen GmbH | Nukleinsäureaufreinigungsverfahren |
IN2012DN03431A (es) | 2009-09-21 | 2015-10-23 | Akonni Biosystems | |
JP2013513400A (ja) * | 2009-12-14 | 2013-04-22 | ベティ ウー | 核酸物質を分離する方法および物質 |
KR101878749B1 (ko) | 2010-03-05 | 2018-07-17 | 삼성전자주식회사 | 표적 세포의 분리 방법 및 키트 |
EP2596135A2 (en) | 2010-07-23 | 2013-05-29 | Beckman Coulter, Inc. | System and method including analytical units |
EP3709025A1 (en) | 2011-04-15 | 2020-09-16 | Becton, Dickinson and Company | Scanning real-time microfluidic thermocycler and methods for synchronized thermocycling and scanning optical detection |
WO2013004710A2 (en) * | 2011-07-04 | 2013-01-10 | Qiagen Gmbh | Reagent usable for the isolation and/or purification of nucleic acids |
EP4159857A1 (en) | 2011-09-26 | 2023-04-05 | QIAGEN GmbH | Rapid method for isolating extracellular nucleic acids |
WO2013049706A1 (en) | 2011-09-30 | 2013-04-04 | Becton, Dickinson And Company | Unitized reagent strip |
WO2013062476A1 (en) | 2011-10-27 | 2013-05-02 | Ge Healthcare Bio-Sciences Ab | Purification of nucleic acid |
WO2013067202A1 (en) | 2011-11-04 | 2013-05-10 | Handylab, Inc. | Polynucleotide sample preparation device |
BR112014011044A2 (pt) | 2011-11-07 | 2017-04-25 | Beckman Coulter Inc | amortecimento magnético para sistema de transporte de espécime |
CN104040352B (zh) | 2011-11-07 | 2016-09-07 | 贝克曼考尔特公司 | 机械臂 |
JP6320926B2 (ja) | 2011-11-07 | 2018-05-09 | ベックマン コールター, インコーポレイテッド | 遠心分離機システムおよびワークフロー |
KR20140092377A (ko) | 2011-11-07 | 2014-07-23 | 베크만 컬터, 인코포레이티드 | 분취기 시스템 및 작업흐름 |
BR112014011043A2 (pt) | 2011-11-07 | 2017-06-13 | Beckman Coulter Inc | detecção de recipiente de espécime |
CN104053997B (zh) | 2011-11-07 | 2016-12-21 | 贝克曼考尔特公司 | 用于处理样本的***和方法 |
CA2863637C (en) | 2012-02-03 | 2021-10-26 | Becton, Dickinson And Company | External files for distribution of molecular diagnostic tests and determination of compatibility between tests |
US8685708B2 (en) | 2012-04-18 | 2014-04-01 | Pathogenetix, Inc. | Device for preparing a sample |
EP2839260B1 (en) | 2012-04-20 | 2018-07-18 | Talis Biomedical Corporation | Fluidic devices and systems for sample preparation or autonomous analysis |
WO2013159116A1 (en) | 2012-04-20 | 2013-10-24 | University Of Chicago | Fluidic devices for biospecimen preservation |
US9803237B2 (en) | 2012-04-24 | 2017-10-31 | California Institute Of Technology | Slip-induced compartmentalization |
WO2014035090A1 (ko) | 2012-08-28 | 2014-03-06 | 주식회사 바이오큐브시스템 | 생물학적 시료로부터 핵산 증폭 반응용 생물학적 분자를 신속하게 분리하기 위한 다공성 고체상 및 이의 용도 |
US9719082B2 (en) * | 2013-10-31 | 2017-08-01 | General Electric Company | Substrates and associated methods for elution of nucleic acids |
KR102344395B1 (ko) * | 2014-06-24 | 2021-12-29 | (주)바이오니아 | 자성 입자를 이용한 핵산 분리 방법 |
CN104513819B (zh) * | 2014-12-17 | 2020-05-05 | 吉林大学 | 一种选择性提取dna的方法 |
CN107690481B (zh) | 2015-06-10 | 2021-08-13 | 凯杰有限公司 | 利用阴离子交换粒子分离细胞外核酸的方法 |
KR101696549B1 (ko) * | 2015-07-31 | 2017-01-13 | 전북대학교산학협력단 | 수소이온농도 대응 검체 스왑 장치 |
KR102190922B1 (ko) * | 2015-09-01 | 2020-12-14 | 삼성전자주식회사 | 핵산 분리 방법 |
WO2017162518A1 (en) | 2016-03-19 | 2017-09-28 | Qiagen Gmbh | Stabilization of rna |
US11161107B2 (en) | 2016-05-25 | 2021-11-02 | Integrated Micro-Chromatography Systems, Inc. | Dispersive pipette extraction system for purification of large biomolecules |
CN106520522A (zh) * | 2016-12-06 | 2017-03-22 | 厦门华厦学院 | 一种dna萃取装置及方法 |
EP3502274A1 (de) * | 2017-12-22 | 2019-06-26 | Attomol GmbH | Probenträger und verfahren zu dessen herstellung |
CN108660074B (zh) * | 2018-05-28 | 2022-04-29 | 嘉兴市艾科诺生物科技有限公司 | 核酸提取pcr扩增检测一体化解决方案 |
EP3916397B1 (en) * | 2019-01-25 | 2023-08-30 | Sekisui Chemical Co., Ltd. | Method for isolating nucleic acid, nucleic acid isolation kit, and inspection chip |
JP2020124129A (ja) * | 2019-02-01 | 2020-08-20 | 積水化学工業株式会社 | 核酸の単離方法及び核酸単離用デバイス |
CN110129314B (zh) * | 2019-04-24 | 2021-04-13 | 合肥欧创基因生物科技有限公司 | 一种氨基酸缓冲液及血浆游离dna提取试剂盒 |
CN114845957A (zh) * | 2019-09-18 | 2022-08-02 | 南科征途有限公司 | 用于按尺寸富集和分离核酸的设备***和方法 |
EP4077659A1 (en) | 2019-12-16 | 2022-10-26 | QIAGEN GmbH | Enrichment method |
EP4355873A1 (en) | 2021-06-17 | 2024-04-24 | QIAGEN GmbH | Method for isolating non-vesicular mirna |
Family Cites Families (46)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US3797202A (en) * | 1971-08-27 | 1974-03-19 | Gen Electric | Microporous/non-porous composite membranes |
US4055469A (en) * | 1976-12-10 | 1977-10-25 | Eastman Kodak Company | Purification of microbial enzyme extracts using synthetic polyelectrolytes |
US4843012A (en) * | 1986-09-17 | 1989-06-27 | Genetics Institute, Inc. | Novel composition for nucleic acid purification |
DE3639949A1 (de) * | 1986-11-22 | 1988-06-09 | Diagen Inst Molekularbio | Verfahren zur trennung von langkettigen nukleinsaeuren |
US5599667A (en) * | 1987-03-02 | 1997-02-04 | Gen-Probe Incorporated | Polycationic supports and nucleic acid purification separation and hybridization |
JPH01125395A (ja) * | 1987-07-29 | 1989-05-17 | Life Technol Inc | 核酸浦獲試薬 |
US4921805A (en) * | 1987-07-29 | 1990-05-01 | Life Technologies, Inc. | Nucleic acid capture method |
US4908318A (en) * | 1987-09-04 | 1990-03-13 | Integrated Genetics, Inc. | Nucleic acid extraction methods |
US4923978A (en) * | 1987-12-28 | 1990-05-08 | E. I. Du Pont De Nemours & Company | Process for purifying nucleic acids |
US5234809A (en) * | 1989-03-23 | 1993-08-10 | Akzo N.V. | Process for isolating nucleic acid |
US5334499A (en) * | 1989-04-17 | 1994-08-02 | Eastman Kodak Company | Methods of extracting, amplifying and detecting a nucleic acid from whole blood or PBMC fraction |
US5124444A (en) * | 1989-07-24 | 1992-06-23 | Microprobe Corporation | Lactam-containing compositions and methods useful for the extraction of nucleic acids |
US5128247A (en) * | 1989-08-14 | 1992-07-07 | Board Of Regents, The University Of Texas System | Methods for isolation of nucleic acids from eukaryotic and prokaryotic sources |
US5433847A (en) * | 1989-11-01 | 1995-07-18 | Board Of Supervisors Of Louisiana State University And Agricultural And Mechanical College | Radial flow chromatography |
US5641628A (en) * | 1989-11-13 | 1997-06-24 | Children's Medical Center Corporation | Non-invasive method for isolation and detection of fetal DNA |
IT1240870B (it) * | 1990-02-14 | 1993-12-17 | Talent | Procedimento per l'estrazione e la purificazione di dna genomico umano |
JPH06510363A (ja) * | 1990-10-29 | 1994-11-17 | ディカルブ プラント ジェネティクス | 磁気性粒子を使用する生物学的材料の単離 |
US5654179A (en) * | 1990-11-14 | 1997-08-05 | Hri Research, Inc. | Nucleic acid preparation methods |
US5204246A (en) * | 1990-12-26 | 1993-04-20 | Pioneer Hi-Bred International, Inc. | Dna isolation method |
US6051380A (en) * | 1993-11-01 | 2000-04-18 | Nanogen, Inc. | Methods and procedures for molecular biological analysis and diagnostics |
US5710028A (en) * | 1992-07-02 | 1998-01-20 | Eyal; Nurit | Method of quick screening and identification of specific DNA sequences by single nucleotide primer extension and kits therefor |
WO1995027718A2 (en) * | 1994-04-08 | 1995-10-19 | Hybridon, Inc. | Purification of oligodeoxynucleotide phosphorothioates using anion exchange chromatography |
US5622822A (en) * | 1994-09-13 | 1997-04-22 | Johnson & Johnson Clinical Diagnostics, Inc. | Methods for capture and selective release of nucleic acids using polyethyleneimine and an anionic phosphate ester surfactant and amplification of same |
US5582988A (en) * | 1994-09-15 | 1996-12-10 | Johnson & Johnson Clinical Diagnostics, Inc. | Methods for capture and selective release of nucleic acids using weakly basic polymer and amplification of same |
US5705628A (en) * | 1994-09-20 | 1998-01-06 | Whitehead Institute For Biomedical Research | DNA purification and isolation using magnetic particles |
US5652348A (en) * | 1994-09-23 | 1997-07-29 | Massey University | Chromatographic resins and methods for using same |
US5660984A (en) * | 1994-12-09 | 1997-08-26 | Davis; Thomas E. | DNA isolating apparatus comprising a non-porous DNA binding, anion exchange resin and methods of use thereof |
US5631146A (en) * | 1995-01-19 | 1997-05-20 | The General Hospital Corporation | DNA aptamers and catalysts that bind adenosine or adenosine-5'-phosphates and methods for isolation thereof |
US5612473A (en) * | 1996-01-16 | 1997-03-18 | Gull Laboratories | Methods, kits and solutions for preparing sample material for nucleic acid amplification |
US5981735A (en) * | 1996-02-12 | 1999-11-09 | Cobra Therapeutics Limited | Method of plasmid DNA production and purification |
SE9600590D0 (sv) * | 1996-02-19 | 1996-02-19 | Pharmacia Biotech Ab | Sätt för kromatografisk separation av peptider och nukleinsyra samt ny högaffin jonbytesmatris |
US5916746A (en) * | 1996-05-09 | 1999-06-29 | Kirkegaard & Perry Laboratories, Inc. | Formazan-based immunoassay |
US5981235A (en) * | 1996-07-29 | 1999-11-09 | Promega Corporation | Methods for isolating nucleic acids using alkaline protease |
JP3793287B2 (ja) * | 1996-08-22 | 2006-07-05 | ペンタックス株式会社 | プラスミドdnaの単離方法 |
CA2214495C (en) * | 1996-09-25 | 2002-02-05 | Daniel L. Woodard | Hydrated zirconium silicate composition for purification of nucleic acids |
US6060246A (en) * | 1996-11-15 | 2000-05-09 | Avi Biopharma, Inc. | Reagent and method for isolation and detection of selected nucleic acid sequences |
US5770712A (en) * | 1997-03-14 | 1998-06-23 | Virginia Tech Intellectual Properties, Inc. | Crosslinked hydrogel beads from chitosan |
EP0897978A3 (en) * | 1997-08-22 | 2001-10-17 | Becton, Dickinson and Company | Zirconium oxide and related compounds for purification of nucleic acids |
JP4304348B2 (ja) * | 1997-09-22 | 2009-07-29 | 独立行政法人理化学研究所 | Dnaの単離方法 |
DE19743518A1 (de) * | 1997-10-01 | 1999-04-15 | Roche Diagnostics Gmbh | Automatisierbare universell anwendbare Probenvorbereitungsmethode |
US7078224B1 (en) * | 1999-05-14 | 2006-07-18 | Promega Corporation | Cell concentration and lysate clearance using paramagnetic particles |
US6194562B1 (en) * | 1998-04-22 | 2001-02-27 | Promega Corporation | Endotoxin reduction in nucleic acid purification |
US6534262B1 (en) * | 1998-05-14 | 2003-03-18 | Whitehead Institute For Biomedical Research | Solid phase technique for selectively isolating nucleic acids |
AU2862100A (en) * | 1999-01-27 | 2000-08-18 | Folim G. Halaka | Materials and methods for the purification of polyelectrolytes |
US6310199B1 (en) * | 1999-05-14 | 2001-10-30 | Promega Corporation | pH dependent ion exchange matrix and method of use in the isolation of nucleic acids |
US6270970B1 (en) * | 1999-05-14 | 2001-08-07 | Promega Corporation | Mixed-bed solid phase and its use in the isolation of nucleic acids |
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