DE2834893C2 - - Google Patents
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Description
Die Erfindung betrifft ein stabilisiertes, immuntherapeutisches
Mittel mit Adjuvans- und Antitumoraktivität auf der
Basis von an Trägeröl gebundenem Mikroben-Zellwandgerüst vom
Genus Nocardia, das als immuntherapeutisches Mittel gegen
den Humantumor eingesetzt werden kann.
Es ist bereits bekannt, daß das Zellwandgerüst von bestimmten
Mikroorganismen (nachfolgend abgekürzt als "CWS" bezeichnet),
z. B. solchen des Genus Mycobacterium, wie Mycobacterium
bovis BCG, oder Nocardia, wie Nocardia rubra, Adjuvans-
und Antitumor-Aktivitäten aufweist. Da das CWS jedoch
eine wasserunlösliche Substanz ist, konnte sie bisher
nicht in Form eines konventionellen wäßrigen Injektionsprä
parats an Menschen verabreicht werden. Es mußte daher bei
der Antitumor-Therapie in Form einer Suspension an Menschen
verabreicht werden. Das CWS wurde daher als ein an ein Trägeröl
gebundenes Präparat formuliert und dann zu einer Öl-in-
Wasser-Suspension verarbeitet, die als Präparat verabreicht
wurde.
So stellt beispielsweise das CWS von Mycobacterium bovis
BCG, das mit einem Mineralöl behandelt und in einer Lösung
von Kochsalz-0,2% Polyoxyethylensorbitanmonooleat
suspendiert worden ist, ein wirksames Mittel für die Unter
drückung des Tumorwachstums oder für die Rückbildung
eines bereits vorhandenen Tumors bei Tieren dar (vgl.
I. Azuma et al, "Gann (Cancer)", 65, 493-505 (1974);
T. Yoshimoto et al, "Gann (Cancer)", 67, 441-445 (1976),
und B. Zbar et al, "J. Nath. Cancer Inst.", 52, 1571-1577
(1974)). Es hat sich gezeigt, daß dieses an ein Trägeröl
gebundene BCG-CWS wirksam ist in bezug auf die Verlängerung
der Lebensdauer und in bezug auf die Verbesserung des immu
nologischen Zustandes von einen Tumor tragenden Patienten
(vgl. Y. Yamamura et al, "Gann (Cancer)", 67, 669-677 (1976);
Y. Yamamura et al, "Gann (Cancer)", 66, 355-363 (1975), und
K. Yasumoto et al, "Gann (Cancer)", 67, 787-795 (1976).
Vor kurzem wurde ferner gefunden, daß die Suspension des an
ein Trägeröl gebundenen Mikroben-Zellwandgerüstes (CWS) von
Nocardia, das im wesentlichen auf die gleiche Weise wie oben
angegeben hergestellt wurde, wirksam ist als immunotherapeu
tisches Mittel bei Humantumor (vgl. I. Azuma et al, "Gann
(Cancer)", 67, 669-677 (1976)).
Obgleich das an ein Trägeröl gebundene CWS viele Vorteile
in bezug auf Komplikationen und die Qualitätskontrolle als
immuntherapeutisches Mittel im Vergleich zu lebenden Mikro
organismen aufweist, ist es dennoch mit Mängeln behaftet,
wie z. B. dem, daß die Suspension des an ein Trägeröl gebundenen
CWS instabil ist und nicht länger als einen Tag unter
den gleichen Bedingungen haltbar ist, so daß die Qualität
des Präparats ebenso wie die Stärke seiner Aktivität bei
längerer Lagerung abnimmt. Es war daher bisher erforderlich,
die Suspension des an ein Trägeröl gebundenen CWS jedesmal
unmittelbar vor ihrer Verwendung, d. h. unmittelbar vor der
Verabreichung an den damit zu behandelnden Patienten, herzu
stellen. Ein solches Präparat ist aber für die Therapie, ins
besondere in einem Krankenhaus, zu umständlich und daher in
der Praxis nicht verwendbar.
Aufgabe der Erfindung war es daher, die Mängel des Suspen
sionspräparats des an ein Trägeröl gebundenen Mikroben-
Zellwandgerüsts vom Genus Nocardia zu beseitigen und ein
stabilisiertes immuntherapeutisches Mittel auf der Basis
dieses Suspensionspräparats zu entwickeln, das über einen
längeren Zeitraum hinweg haltbar ist und seine Adjuvans-
und Antitumoraktivität beibehält, so daß es für die
therapeutische Verwendung insbesondere in einem
Krankenhaus verwendbar ist.
Nach umfangreichen Untersuchungen auf diesem Gebiet wurde
nun gefunden, daß diese Aufgabe durch ein stabilisiertes,
immuntherapeutisches Mittel mit einer spezifischen
Zusammensetzung gelöst werden kann, das durch Gefrier
trocknen verfestigt worden ist.
Gegenstand der Erfindung ist ein stabilisiertes, immun
therapeutisches Mittel mit Adjuvans- und Antitumoraktivität
auf der Basis von an Trägeröl gebundenem Mikroben-
Zellwandgerüst vom Genus Nocardia, das dadurch gekenn
zeichnet ist, daß es aus einer Suspension besteht, die
sich zusammensetzt aus dem Mikroben-Zellwandgerüst von
Nocardia rubra mit dem Trägeröl, einem Polyalkoholester
als Suspendiermittel und einem Zuckeralkohol oder Zucker
als Dispergiermittel und wobei die Suspension durch Ge
friertrocknen verfestigt worden ist.
Das erfindungsgemäße stabilisierte immuntherapeutische
Mittel ist im verfestigten Zustand für einen viel längeren
Zeitraum stabil und kann daher über einen viel längeren
Zeitraum hinweg aufbewahrt werden als die bisher
verwendete, stets frisch herzustellende Suspension des
an das Trägeröl gebundenen CWS, wobei es nicht nur seine
physikalische Stabilität, sondern auch seine Adjuvans-
und Antitumoraktivität praktisch unverändert beibehält.
Es kann leicht zu einer einheitlichen Suspension des an
das Trägeröl gebundenen CWS verarbeitet werden, die ebenso
stabil und wirksam ist wie die frisch hergestellte
Suspension durch einfache Zugabe von sterilisiertem Wasser
auch nach Ablauf eines längeren Lagerungszeitraums,
ohne daß seine Aktivität darunter leidet. Außerdem kann
das erfindungsgemäße stabilisierte, immuntherapeutische Mittel
in großtechnischem Maßstab hergestellt werden, ohne daß
die Produktqualität darunter leidet.
Gemäß einer bevorzugten Ausgestaltung der Erfindung handelt
es sich bei dem Trägeröl um ein tierisches Öl, ein pflanz
liches Öl, ein Mineralöl oder ein halbsynthetisches Öl, ins
besondere um Drakeol 6VR, Squalen, Squalan, Miglyol oder
Vitamin A-Palmitat.
Bei dem erfindungsgemäß verwendeten Suspendiermittel handelt
es sich vorzugsweise um einen Polyoxyethylensorbitanester,
insbesondere um Polyoxyethylensorbitan-monolaurat, -monapal
mitat, -monostearat, -monooleat, Sorbitan-monolaurat, -mono
palmitat, -monostearat und -monooleat.
Gemäß einer weiteren bevorzugten Ausgestaltung der Erfindung
handelt es sich bei dem Dispergiermittel um einen Zuckeralkohol
oder um einen Zucker, insbesondere um Mannit, Sorbit oder
Glukose.
Gemäß einer weiteren bevorzugten Ausgestaltung der Erfindung
besteht das stabilisierte, immuntherapeutische Mittel aus einer
Suspension, die sich zusammensetzt aus dem Mikroben-Zell
wandgerüst (CWS) von Nocardia rubra, Squalen, Polyoxyethylen
sorbitanmonooleat und Mannit.
Es eignet sich besonders gut für die Herstellung einer inji
zierbaren Suspension.
Wenn in der Beschreibung und in den Ansprüchen hier von der
"Zusammensetzung" des erfindungsgemäßen stabilisierten, immun
therapeutischen Mittels die Rede ist, so ist dies stets
so auszulegen, daß es selbstverständlich auch noch andere
übliche Bestandteile enthalten kann.
Das erfindungsgemäß verwendete Mikrobenzellwandgerüst von
Nocardia rubra kann hergestellt werden durch Fraktionieren
und Reinigen von Zellwänden der Zellen des kultivierten
Mikroorganismus Nocardia rubra auf konventionelle Weise
(vgl. I. Azuma et al, "J. Nath. Cancer Inst.", 52, 95
(1974), und I. Azuma et al, "Biken J.", 18, 1 (1975)).
Ein Beispiel für eine solche Herstellung des erfindungs
gemäß verwendeten CWS von Nocardia rubra wird weiter unten
näher beschrieben.
Unter dem erfindungsgemäß verwendeten Trägeröl ist ein Öl
zu verstehen, das die Fähigkeit hat, die Anjuvans- und
Antitumor-Aktivitäten des erfindungsgemäßen stabilisierten,
immuntherapeutischen Mittels zu stimulieren. Ein
solches Trägeröl kann umfassen ein natürliches und synthe
tisches oder halbsynthetisches Öl und Beispiele für geeignete
Öle sind in "Immunology", 27, 311-329 (1924), beschrieben
und besonders bevorzugt werden verwendet ein
tierisches Öl (wie Squalen, Vitamin A-Öl, Vitamin E-Öl und
Ubichinon) und ein Metabolit davon, ein pflanzliches Öl (wie
Miglyol, eine Mischung aus Erdnußöl, Aracel und Aluminiummo
nostearat), ein synthetisches oder halbsynthetisches Öl (wie
Squalan, Vitamin A-Palmitat), ein Mineralöl (wie flüssiges
Paraffin und Drakeol 6VR), wobei besonders bevorzugt sind
Squalen, Squalan, Miglyol, Drakeol 6VR und Vitamin A-Palmi
tat.
Bezüglich des erfindungsgemäß verwendeten Trägeröls sei be
merkt, daß dieses wirksam und brauchbar ist zum Stimulieren
des Transports des CWS in den Wirkungsbereich (beispielsweise
in den Thymuszellenbereich), wobei es die Funktion hat,
das CWS in diesem Bereich für einen ziemlich langen Zeitraum
zu halten und das Immunisierungsvermögen desselben zu ver
längern. Unter den obengenannten beispielhaften Trägerölen
ist ein tierisches Öl, insbesondere Squalen, erfindungsgemäß
besonders bevorzugt, weil ein solches Trägeröl aus einer
natürlichen Quelle stammt und daher eine natürliche Affinität
gegenüber dem menschlichen Körper hat.
Bei dem erfindungsgemäß verwendeten Suspendiermittel
handelt es sich um einen Polyalkoholester, wie z. B. Poly
oxyethylensorbitanmonolaurat, -monopalmitat, -monostearat,
-monooleat, Sorbtitan-monolaurat, -monopalmitat, -monostearat
und -monooleat, wobei unter diesen Polyalkoholestern
das Polyoxyethylensorbitanmonooleat besonders bevorzugt
ist.
Bei den erfindungsgemäß verwendbaren Dispergiermitteln handelt
es sich um Zuckeralkohole, wie Mannit und Sorbit, und
Zucker, wie Glukose, wobei Mannit als Zuckeralkohol besonders
bevorzugt ist.
Bezüglich der Wirksamkeit des Dispergiermittels, das in dem
erfindungsgemäßen verfestigten stabilisierten, immuntherapeutischen
Mittel enthalten ist, sei bemerkt, daß es nicht nur
dazu dient, die Überführung des stabilisierten immuntherapeu
tischen Mittels in eine Suspension zu erleichtern, sondern
auch dazu, die frisch hergestellte Suspension isotonisch zu
machen.
Das Mengenverhältnis der Komponenten des erfindungsgemäßen
stabilisierten, immuntherapeutischen Mittels untereinander,
d. h. von CWS, Trägeröl, Suspendiermittel und Dispergiermittel,
kann in beliebiger Weise festgelegt werden und bevorzugte
und in der Praxis bewährte Verhältnisse der Komponenten
untereinander gehen aus den weiter unten beschriebenen Aus
führungsbeispielen hervor.
Das erfindungsgemäße stabilisierte, immuntherapeutische Mittel
kann beispielsweise hergestellt werden durch Suspendieren
einer Mischung der obengenannten Komponenten auf konventionelle
Weise und Lyophilisieren der dabei erhaltenen Suspension.
Dabei wird beispielsweise das CWS in einen Gewebehomogenisator
eingeführt und das Trägeröl wird zugegeben, wonach die Mischung
gewünschtenfalls zu einer glatten Paste gemahlen wird; zu der
Mischung wird eine wäßrige Lösung des Dispergiermittels, die ein
Suspendiermittel enthält, zugetropft und die Mischung wird ge
mahlen und homogenisiert zur Erzielung einer gleichmäßigen
Suspension und dann wird die so hergestellte Suspension in eine
Phiole überführt, unter Verwendung von beispielsweise flüssigem
Stickstoff schnell ausgefroren (abgekühlt) und lyophilisiert.
Das erfindungsgemäß hergestellte erstarrte pharmazeutische Mittel
kann durch Zugabe von sterilisiertem Wasser vor der Verabreichung
an Patienten wieder suspendiert werden und es weist einige Anwendungs
gebiete und Vorteile auf, die aus den nachfolgend angegebenen
Punkten hervorgehen:
- 1.) Das erfindungsgemäße erstarrte pharmazeutische Mittel kann für einen viel längeren Zeitraum aufbewahrt werden als die frisch hergestellte Suspension des an Öl gebundenen CWS, wobei es nicht nur seine physikalische Stabilität, sondern auch die Stärke der Aktivitäten im wesentlichen unverändert beibehält. In diesem Zusammenhang sei bemerkt, daß die frisch hergestellte Suspension des an Öl gebundenen CWS in der Regel mindestens eine Stunde zersetzt wird zu einer uneinheitlichen und ungleichmäßigen Suspension, aus der nur schwer wieder eine einheitliche und gleichmäßige Suspension hergestellt werden kann, was dazu führen kann, daß sie daher nach Ablauf einer längeren Konservierungs dauer derselben nicht die ursprüngliche therapeutische Wirksamkeit des CWS selbst mehr aufweist;
- 2.) das erfindungsgemäße erstarrte pharmazeutische Mittel kann leicht wieder zu einer einheitlichen Suspension des an Öl gebundenen CWS verarbeitet werden, die in dem gleichen Zustand hochstabil ist wie die frisch hergestellte Suspension durch einfache Zugabe von sterilisiertem Wasser dazu auch nach Ablauf eines längeren Konservierungszeitraumes (Aufbewahrungszeitraumes) und das wieder suspendierte Präparat kann die gleiche Aktivität wie die frisch hergestellte Suspension des an Öl gebundenen CWS und eine höhere therapeutische Wirksamkeit des CWS selbst auf weisen als die Suspension des an Öl gebundenen CWS, die für einen langen Zeitraum aufbewahrt worden ist, wie oben angegeben;
- 3.) bisher wurde die Suspension des an Öl gebundenen CWS jedesmal unmittelbar vor der Verabreichung wie oben angegeben hergestellt. Da eine Einzeldosis des CWS eine sehr kleine Menge ist (z. B. von etwa 100 bis 300 µg), ist die Herstellung der Suspension des an Öl gebundenen CWS sehr umständlich, und es ist andererseits sehr schwierig, eine Suspension der gleichen Qualität, welche die gegebene Menge enthält, herzustellen. Auch wenn eine größere Menge der Suspension des an Öl gebundenen CWS auf einmal hergestellt wird, um diese Menge zu überwinden, ist die Suspension selbst sehr instabil und kann nicht über einen langen Zeitraum hinweg wie oben angegeben aufbewahrt werden und deshalb kann ein Teil der Suspension nicht therapeutisch verwendet werden und wird weggeworfen. Erfindungsgemäß ist es jedoch leicht und möglich, ein erstarrtes (festes) Mittel herzu stellen, welches die gegebene geringe Menge des an Öl gebundenen CWS enthält, in einem großen Maßstabe und die Produktqualität zu kontrollieren.
Wegen der höheren Stabilität und der größeren Stärke der Aktivi
täten der aus dem erfindungsgemäßen erstarrten (festen) Mittel
wieder hergestellten Suspension besteht einer der erfindungsgemäßen
Vorteile oder eine der unerwarteten und überraschenden
Eigenschaften, wie oben erläutert, darin, daß diese beibehaltene
höhere Stabilität und Stärke offenbar auf die Tatsache
zurückzuführen sind, daß das an Öl gebundene CWS in einer solchen
wiederhergestellten Suspension gleichmäßig dispergiert sein kann
und daß das dispergierte, an Öl gebundene CWS in Form von feinen
Kügelchen (mit einem Durchmesser von beispielsweise etwa 5µm)
vorliegen kann, ohne daß eine Agglutination desselben zu größeren
Teilchen auftritt.
Wie aus der obigen Erläuterung der Erfindung ersichtlich, sei
darauf hingewiesen und betont, daß es mit der vorliegenden Er
findung zum erstenmal gelungen ist, leicht in einem großtechnischen
Maßstabe ein Antitumormittel des an Öl gebundenen CWS in einer
guten Qualität herzustellen und dadurch die praktische Verwendung
des CWS im Krankenhaus zu ermöglichen. Diese Tatsache ist epoche
machend und bedeutet, daß die vorliegende Erfindung eine Hoffnung
für die Krebspatienten ist.
Die nachfolgend angegebenen pharmakologischen und pharmazeutischen
Testergebnisse sollen die erfinderischen und technischen Vorteile
des erfindungsgemäßen erstarrten pharmazeutischen Mittels erläutern.
Adjuvantien:
Die Herstellung des CWS von Nocardia rubra (nachfolgend abgekürzt mit N. rubra) ist vorstehend beschrieben.
Drakeol 6VR, Squalen und Squalan wurden als Öle für die Herstellung des an Öl gebundenem CWS von N. rubra verwendet.
Antigene:
m-[4-(4′-Monophenylazo)phenyl]-N-acetyl-L-tyrosin (ABA-N-Acetyltyrosin) und ABA-bakterielle α-Amylase (ABA-B- αA) wurden nach dem in "J. Biol. Chem", 238, 1726-1730 (1959), beschriebenen Verfahren hergestellt. Die bakterielle α-Amylase (vom Verflüssigungs-Typ, Charge Nr. E5X01), gereinigt, von Bacillus subtilis wurde von der Firma Seikagaku Kogyo Co., Ltd., Japan, bezogen.
Tumore:
Leukemia EL4 von C57BL/6J-Mäusen, Mastocytoma P815-X2 von DBA/2-Mäusen, Meth A von BALB/c-Mäusen, Fibrosarcom, indu ziert durch 3-Methyl-cholanthren in C57BL/6J-Mäusen, bezeichnet als MC104, wurden verwendet. EL4, Mastocytoma P815-X2 und Meth A wurden serienmäßig aufrechterhalten durch Passage des Ascites in jeweils syngenetischen weiblichen Mäusen. MC104 wurde serien mäßig aufrechterhalten durch subkutane Transplantation in synge netischen Mäusen.
Mäuse:
Die Mäuse waren 6 bis 8 Wochen alte weibliche Mäuse von BALB/c, C578BL/6J und DBA/2. Den Tieren wurde Futter und Wasser zur freien Verfügung gegeben.
Mediumlösung:
Das Eagle-Minimal-Essential-Medium (MEM), enthielt 100 U/ml Penicillin und 100µg/ml Streptomycin, Medium RPMI-1640. Das Fötus-Kalbserum (Charge Nr. 4055722) wurde durch 30-minütiges Erhitzen vor der Verwendung auf 56°C inaktiviert.
Direkter Zytotoxizitäts-Test:
Eine Tumorzellen (MethA)-Suspension in einer MEM-Lösung wurde mit einer gleichen Volumenmenge an Öl gebundenem CWS oder Öltröpfchen gemischt und 60 Minuten lang in einem eiskalten Wasserbad gehalten. Die Lebensfähigkeit der Tumorzellen wurde durch den Eosin Y-Ausschlußtest bestimmt.
Bestimmung der Adjuvans-Aktivität bei der Induktion der Hyper sensibilität vom verzögerten Typ:
In die vier Fußpfoten von Meerschweinchen wurde eine primäre Immunisierung verabreicht unter Verwendung einer Gesamtmenge von 50µg ABA-N-Acetyltyrosin mit der ohne das CWS von N. rubra in verschiedenen Trägerölen als Wasser-in-Öl-Emulsion. Zwei Wochen später wurden Hauttests mit 100µg ABA-BαA durchgeführt und die Reaktion wurde 24 Stunden und 48 Stunden nach der intradermalen Injektion des Testantigens bestimmt.
Zellen-induzierter Zytotoxizitätstest:
C57BL/6J-Mäuse (H-2b) wurden intraperitoneal immunisiert mit lebensfähigen Zellen von Mastocytoma P815-X2 (H-2d) mit oder ohne an Öl gebundenes CWS von N. rubra. Am 11. Tage nach der Immunisierung wurde der Zellen-induzierte Zytotoxizitätsversuch durchgeführt unter Verwendung der Milzzellen von immunisierten Mäusen und von ⁵¹Cr- markiertem Mastozytoma P815-X2-Zellen nach dem Verfahren von Brunner et al, "Immunology", 18, 501-515 (1970), mit einigen Modifikationen (vgl. T. Taniyama et al, "Jpn. J. Microbiol.", 19, 255-264 (1975)). Das Verhältnis zwischen den Milzzellen (Effektor-Zellen) und den 51Cr-markierten Mastocytoma P815-X2- Zellen (Target-Zellen) betrug 100 : 1. Die Target-Zellenlysis wurde ausgedrückt in % der spezifischen Target-Zellenlysis unter Anwendung der folgenden Formel:
Die Herstellung des CWS von Nocardia rubra (nachfolgend abgekürzt mit N. rubra) ist vorstehend beschrieben.
Drakeol 6VR, Squalen und Squalan wurden als Öle für die Herstellung des an Öl gebundenem CWS von N. rubra verwendet.
Antigene:
m-[4-(4′-Monophenylazo)phenyl]-N-acetyl-L-tyrosin (ABA-N-Acetyltyrosin) und ABA-bakterielle α-Amylase (ABA-B- αA) wurden nach dem in "J. Biol. Chem", 238, 1726-1730 (1959), beschriebenen Verfahren hergestellt. Die bakterielle α-Amylase (vom Verflüssigungs-Typ, Charge Nr. E5X01), gereinigt, von Bacillus subtilis wurde von der Firma Seikagaku Kogyo Co., Ltd., Japan, bezogen.
Tumore:
Leukemia EL4 von C57BL/6J-Mäusen, Mastocytoma P815-X2 von DBA/2-Mäusen, Meth A von BALB/c-Mäusen, Fibrosarcom, indu ziert durch 3-Methyl-cholanthren in C57BL/6J-Mäusen, bezeichnet als MC104, wurden verwendet. EL4, Mastocytoma P815-X2 und Meth A wurden serienmäßig aufrechterhalten durch Passage des Ascites in jeweils syngenetischen weiblichen Mäusen. MC104 wurde serien mäßig aufrechterhalten durch subkutane Transplantation in synge netischen Mäusen.
Mäuse:
Die Mäuse waren 6 bis 8 Wochen alte weibliche Mäuse von BALB/c, C578BL/6J und DBA/2. Den Tieren wurde Futter und Wasser zur freien Verfügung gegeben.
Mediumlösung:
Das Eagle-Minimal-Essential-Medium (MEM), enthielt 100 U/ml Penicillin und 100µg/ml Streptomycin, Medium RPMI-1640. Das Fötus-Kalbserum (Charge Nr. 4055722) wurde durch 30-minütiges Erhitzen vor der Verwendung auf 56°C inaktiviert.
Direkter Zytotoxizitäts-Test:
Eine Tumorzellen (MethA)-Suspension in einer MEM-Lösung wurde mit einer gleichen Volumenmenge an Öl gebundenem CWS oder Öltröpfchen gemischt und 60 Minuten lang in einem eiskalten Wasserbad gehalten. Die Lebensfähigkeit der Tumorzellen wurde durch den Eosin Y-Ausschlußtest bestimmt.
Bestimmung der Adjuvans-Aktivität bei der Induktion der Hyper sensibilität vom verzögerten Typ:
In die vier Fußpfoten von Meerschweinchen wurde eine primäre Immunisierung verabreicht unter Verwendung einer Gesamtmenge von 50µg ABA-N-Acetyltyrosin mit der ohne das CWS von N. rubra in verschiedenen Trägerölen als Wasser-in-Öl-Emulsion. Zwei Wochen später wurden Hauttests mit 100µg ABA-BαA durchgeführt und die Reaktion wurde 24 Stunden und 48 Stunden nach der intradermalen Injektion des Testantigens bestimmt.
Zellen-induzierter Zytotoxizitätstest:
C57BL/6J-Mäuse (H-2b) wurden intraperitoneal immunisiert mit lebensfähigen Zellen von Mastocytoma P815-X2 (H-2d) mit oder ohne an Öl gebundenes CWS von N. rubra. Am 11. Tage nach der Immunisierung wurde der Zellen-induzierte Zytotoxizitätsversuch durchgeführt unter Verwendung der Milzzellen von immunisierten Mäusen und von ⁵¹Cr- markiertem Mastozytoma P815-X2-Zellen nach dem Verfahren von Brunner et al, "Immunology", 18, 501-515 (1970), mit einigen Modifikationen (vgl. T. Taniyama et al, "Jpn. J. Microbiol.", 19, 255-264 (1975)). Das Verhältnis zwischen den Milzzellen (Effektor-Zellen) und den 51Cr-markierten Mastocytoma P815-X2- Zellen (Target-Zellen) betrug 100 : 1. Die Target-Zellenlysis wurde ausgedrückt in % der spezifischen Target-Zellenlysis unter Anwendung der folgenden Formel:
Die maximale Chromfreisetzung wurde gemessen durch vollständige
Zellenlysis, wo nur Target-Zellen zweimal eingefroren und aufge
taut wurden.
Herstellung des an Öl gebundenen CWS von N. rubra:
Das erstarrte (feste) Präparat des CWS von N. rubra wurde herge stellt wie in den nachfolgend angegebenen Ausführungsbeispielen beschrieben.
Herstellung des an Öl gebundenen CWS von N. rubra:
Das erstarrte (feste) Präparat des CWS von N. rubra wurde herge stellt wie in den nachfolgend angegebenen Ausführungsbeispielen beschrieben.
Einfluß des mit verschiedenen Ölen behandelten CWS von N. rubra
auf die Zellen induzierte Zytoxizität bei allogenetischen Mäusen.
Das CWS von N. rubra wurde mit Sqalen oder Drakeol 6VR behandelt
und in einer 0,9 %igen Kochsalzlösung suspendiert, die 0,2%
einer Tween 80-Lösung enthielt. C57BL/6J-Mäuse wurden mit einer
Mischung von Mastocytoma-Zellen und Adjuvantien, wie oben angegeben
immunisiert. Wie in der folgenden Tabelle I angegeben,
waren die Präparate von CWS von N. rubra, die mit Drakeol 6VR-
Kochsalz, Squalen-Kochsalz oder Squalen-Mannit behandelt worden
waren, eindeutig wirksam als Adjuvans für die Induktion der
Effektor-Zellen in der Milz von allogenetischen Mäusen. Es wurde
auch gezeigt, daß die lyophilisierten Adjuvantien, die durch
Zugabe von sterilisiertem Wasser vor der Verwendung wieder
suspendiert wurden, ebenso wirksam waren wie die vor der Ver
wendung frisch hergestellten Adjuvantien.
Wie in der folgenden Tabelle II angegeben, wiesen alle getesteten
Präparate, welche das CWS von N. rubra enthielten, keine Zyto
toxizität auf, wenn diese Adjuvantien und Tumorzellen (MethA von
BALB/c) 60 Minuten lang in einem Eiswasserbad gehalten wurden,
das lyophilisierte Präparat von Squalen-0,9% Kochsalzlösung,
das 0,2% Tween 80 enthielt, zeigte jedoch eine gewisse Toxizität
gegenüber Tumorzellen. Das frisch hergestellte Präparat war unter
den gleichen Bedingungen nicht zytotoxisch. Das lyophilisierte
Präparat des CWS von N. rubra, das mit Squalen-Mannit behandelt
worden war, war nicht zytotoxisch.
Die Antitumor-Aktivität von N. rubra-CWS, das mit Squalen,
Squalan oder Trakeol 6VR behandelt und in einer 5,6 %igen
Mannit-Lösung, die 0,2% Tween 80 enthielt, suspendiert worden
war, wurde unter Verwendung von transplantierbaren Tumoren in
syngenetischen Mäusen getestet. Wie in den folgenden Tabellen
III, IV, V und VI angegeben, wiesen die Präparate von N. rubra-
CWS, die mit verschiedenen Arten von Ölen behandelt worden
waren, nahezu die gleiche Aktivität für die Unterdrückung des
Tumorwachstums von EL 4-Leukämie, Meth A und MC 104 in den
jeweiligen syngenetischen Mäusen auf. Wie in der Tabelle III
angegeben, war die Unterdrückungsaktivität des CWS von N. rubra
auf das Wachstum von Meth A bei BALB/c-Mäusen, wie gefunden
wurde, nicht unterschiedlich zwischen einem frisch herge
stellten Drakeol-Kochsalz-Präparat und den Squalen-Mannit-
oder Squalan-Mannit-Präparaten, die vor der Verwendung lyophili
siert und in sterilisiertem Wasser suspendiert worden waren.
Wirksamkeit der Ölzusammensetzung auf die Hypersensibilität
vom verzögerten Typ bei Meerschweinchen.
Das CWS von N. rubra wurde in der Mischung als Öl (wie z. B.
Trakeol 6VR, Squalen oder Squalan) und Arlacel A in einem
Verhältnis 85 : 15 suspendiert und dann mit einer Lösung
von ABA-N-Acetyltyrosin mit oder ohne das CWS von N. rubra
als Wasser-in-Öl-Emulsion gemischt. Die Meerschweinchen wurden
durch intramuskuläre Injektion der obigen Mischung aus dem
Adjuvans und dem Antigen immunisiert. Zwei Wochen später wurde
der Hauttest mit ABA-BαA durchgeführt und die Hautreaktion wurde
24 und 48 Stunden nach der intradermalen Injektion des Testantigens
bestimmt. Wie in der Tabelle VII angegeben, wurde eine
positive Hautreaktion gegenüber ABA-BaA bei Meerschweinchen
beobachtet, die mit ABA-N-Acetyltyrosin zusammen mit dem CWS
von N. rubra und Squalen oder Squalan sowie Drakeol 6VR als
Wasser-in-Öl-Emulsion immunisiert worden waren.
Die bei den Tests erhaltenen Daten sind in den folgenden Tabellen
angegeben.
Das in den folgenden Beispielen verwendete Nocardia rubra-CWS
wurde wie folgt hergestellt:
Nocardia rubra wurde in einem Medium, das 2% Polypepton und
1% Hefeextrakte enthielt (pH 7,0) 3 Tage lang bei 30°C kultiviert
(gezüchtet) und die Kulturbrühe (18 l) wurde filtriert.
Etwa 400 g feuchtes Mycel wurden in 1 l Wasser suspendiert
und mit einer Dynomühle (0,1 bis 0,2 mm-Perlen, 3000 UpM,
2 l/Std.) 3 mal gemahlen. Die dabei erhaltene Substanz wurde
abgepuffert (pH 7,5), mit Nukleinacidase (DN-ase und RN-ase)
30 Minuten lang behandelt und dann zentrifugiert (800 × g,
15 Minuten). Die überstehende Flüssigkeit wurde abgetrennt und
weiter zentrifugiert (10 000 bis 20 000 × g, 30 Minuten).
Die Niederschläge wurden gesammelt und in 1 l Aceton suspendiert
und 24 Stunden lang gerührt. Die Niederschläge wurden durch
Filtrieren gesammelt, in 2% Triton X-100(1 l) suspendiert,
24 Stunden lang gerührt und dann zentrifugiert (10 000 bis
20 000 × g, 30 Minuten). Die Niederschläge wurden erneut mit
Triton X-100 auf die gleiche Weise wie vorstehend angegeben
behandelt. Die dabei erhaltenen Niederschläge wurden mit einer
Mischung (1 l) von Äthanol und Wasser (1 : 1) und danach zweimal
mit 1 l Wasser gewaschen und zentrifugiert (10 000 bis 20 000 × g,
30 Minuten). Die Niederschläge wurden in Veronal-Puffer
(pH 9,5) suspendiert, mit Pronase (50 mg) unter Rühren bei
Raumtemperatur für einen Zeitraum von 24 Stunden behandelt und
dann zentrifugiert (10 000 bis 20 000 × g, 30 Minuten). Die
Niederschläge wurden mit 1 l Wasser 3 mal gewaschen und zen
trifugiert (10 000 bis 20 000 × g, 30 Minuten). Die Niederschläge
wurden mit einer Mischung (1 l) von Diäthyläther und Äthanol (1 : 1)
gewaschen, unter vermindertem Druck bei Raumtemperatur 3 Tage lang
getrocknet, pulverisiert und dann gesiebt, 125 µm), wobei
ein feines Pulver von N. rubra-CWS (etwa 7 g) erhalten wurde.
Das erstarrte (feste) erfindungsgemäße Mittel (Zubereitung)
wurde in sterilem Wasser wieder suspendiert und intrapleural,
intralesional, intradermal, subkutan, intramuskulär
oder intraperitoneal in einer Einzeldosis von 10 bis 2000 µg,
vorzugsweise von 100 bis 200 µg CWS an Patienten verabreicht.
Die folgenden Beispiele sollen die Erfindung näher erläutern,
ohne sie jedoch darauf zu beschränken.
N. rubra-CWS4 mg
Miglyol2 Tropfen
5,6 %ige Mannitol-Lösung,
enthaltend 0,2% Tween 801 ml
enthaltend 0,2% Tween 801 ml
Das CWS von N. rubra (140 mg) wurde in einen Gewebehomogenisator
eingeführt, der mit einem Teflon-Pistill
ausgestattet war. Miglyol (70 Tropfen)
wurden mittels einer 27 Gauge-Injektionsnadel einer Spritze
dem CWS zugesetzt und diese Mischung wurde mit 1000 UpM zu einer
glatten Paste gemahlen. Dann wurde eine 5,6 %ige wäßrige Mannit-
Lösung (35 ml), die 0,2% Tween 80 enthielt, zu der Paste zugegeben
und das Mahlen wurde fortgesetzt, bis eine gleichmäßige
Suspension von kleinen Öltröpfchen, die an CWS von N. rubra
assoziiert waren, erhalten wurde. Zur Herstellung des lyophili
sierten Materials wurde die an Öl gebundene Suspension von
N. rubra-CWS in 35 Phiolen (mit einem Volumen von 10 ml) über
führt, unter Verwendung von flüssigem Stickstoff schnell ausge
froren und dann bei Raumtemperatur lyophilisiert. Zur Herstellung
einer Suspension vor der Verwendung wurde 1 ml sterilisiertes
Wasser dem lyophilisierten Material zugesetzt.
N. rubra-CWS4 mg
Drakeol-6VR2 Tropfen
5,6 %ige Mannit-Lösung,
enthaltend 0,2% Tween 801 ml
enthaltend 0,2% Tween 801 ml
Anstelle des in dem obigen Beispiel 1 verwendeten Miglyols wurde
Drakeol-6VR verwendet und die Mischung wurde auf die gleiche
Weise wie in Beispiel 1 behandelt, wobei man ein erstarrtes
(festes) Präparat (Mittel) erhielt.
N. rubra-CWS4 mg
Squalen2 Tropfen
5,6 %ige Mannit-Lösung,
die 0,2% Tween 80 enthielt1 ml
die 0,2% Tween 80 enthielt1 ml
Anstelle des in dem obigen Beispiel 1 verwendeten Miglyol wurde
Squalen verwendet und die Mischung wurde auf die gleiche Weise
wie in Beispiel 1 behandelt, wobei man eine erstarrte (feste)
Zubereitung (Mittel) erhielt.
N. rubra-CWS4 mg
Vitamin A-Palmitat2 Tropfen
5,6 %ige Mannit-Lösung,
die 0,2% Tween 80 enthielt1 ml
die 0,2% Tween 80 enthielt1 ml
Anstelle des in dem Beispiel 1 verwendeten Miglyols wurde
Vitamin A-Palmitat verwendet und die Mischung wurde auf die
gleiche Weise wie in Beispiel 1 behandelt, wobei man ein er
starrtes (festes) Präparat (Mittel) erhielt.
N. rubra-CWS4 mg
Miglyol2 Tropfen
5,6 %ige Glukose-Lösung,
die 0,2% Tween 80 enthielt4 ml
die 0,2% Tween 80 enthielt4 ml
Anstelle der in Beispiel 1 verwendeten 5,6 %igen wäßrigen Mannit-
Lösung wurde eine 5 %ige wäßrige Glukoselösung verwendet und die
Mischung wurde auf die gleiche Weise wie in Beispiel 1 behandelt,
wobei man ein erstarrtes (festes) Präparat (Mittel) erhielt.
Bevorzugt ist "Miglycol 812". Es handelt sich um
ein neutrales Öl, das ein Gemisch von Triglyceriden von ge
sättigten pflanzlichen Fettsäuren mittlerer Kettenlänge ist.
Die Säurezahl beträgt maximal 0,1; Verseifungszahl 325 bis 345;
Jodzahl miximal 1; Jodfarbzahl maximal 2,0; Dichte bei 20°C
0,94 bis 0,96; Viskosität bei 20°C 28-32cP; Refraktion
bei 20°C 21,448 bis 21,450.
Drakeol 6VR ist im einzelnen u. a. beschrieben in Iyakuhin
Kaihatsu Kiso Koza XI, Yakuzai Seizoho (last volume),
page 599, (published by Chÿin Shokan in Tokyo).
Es handelt sich um ein flüssiges Paraffin. Eine ähnliche
Zusammensetzung hat das Produkt Bayol F.
Die für das Zellwand-Gerüst verwendete Abkürzung "CWS"
ist abgeleitet von der englischen Bezeichnung "cell wall
skeleton" von Mikroorganismen.
Claims (6)
1. Stabilisiertes, immuntherapeutisches Mittel mit Adjuvans-
und Antitumoraktivität auf der Basis von an Trägeröl
gebundenem Mikroben-Zellwandgerüst von Genus Nocardia,
dadurch gekennzeichnet, daß es aus
einer Suspension besteht, die sich zusammensetzt aus dem
Mikroben-Zellwandgerüst von Nocardia rubra mit dem Träger
öl, einem Polyalkoholester und einen Zuckeralkohol
oder Zucker und wobei die Suspension durch Gefriertrocknen
verfestigt worden ist.
2. Mittel nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß
es sich bei dem Trägeröl um Drakeol 6VR, Squalen, Squalan,
Miglyol oder Vitamin A-Palmitat handelt.
3. Mittel nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß
es sich bei dem Polyalkoholester um einen Polyoxyethylen
sorbitanester handelt.
4. Mittel nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß
es sich bei dem Zuckeralkohol um Mannit oder Sorbit und
bei dem Zucker um Glukose handelt.
5. Mittel nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß
es aus einer Suspension besteht, die sich zusammensetzt
aus dem Zellwandgerüst von Nocardia rubra, Squalen, Poly
oxyethylensorbitanmonooleat und Mannit.
6. Mittel nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß
es in Form einer sterilisierten injizierbaren Suspension
vorliegt.
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