DE2609611A1 - Verfahren zur herstellung eines neuen antibiotikums - Google Patents
Verfahren zur herstellung eines neuen antibiotikumsInfo
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Description
CiBA-GEiGY
Case 4-9824/1+2/+
Deutschland
Verfahren zur Herstellung evines neuen Antibiotikums
Die Erfindung betrifft das neue wasserunlösliche Antibiotikum Papulacandin, das in Form seiner
Hauptkomponenten A und B sowie mehrerer Nebenkomponenten,
darunter Komponenten C, D und E, oder von Mischungen von 2 oder mehreren dieser Komponenten vorliegt (solche
Mischungen werden der Einfachheit halber im folgenden als "Papulacandin" [Antibiotikum A 32283] bezeichnet),
und Derivate des Antibiotikums sowie Präparate, welche diese Verbindungen enthalten, und Verfahren zur Herstellung
dieser Stoffe.
Das Antibiotikum Papulacandin entsteht bei der Züchtung eines neuen Mikroorganismus, der in unseren
Laboratorien unter der Bezeichnung A 32283 aufbewahrt wird. Der Stamm A 32283 ist der Art Papularia sphaerosperma
(Pers.) Höhnel, früher als Arthriniutn phaesospermum (Corda)
Ellis bezeichnet, zuzuordnen. Die Art ist von Ellis in Ellis M.B." Dematious Hyphoaiycetes" 1971, p. 569 unter Arthrinium
60983 9/1031 original inspected
phaeospermutn eingehend beschrieben. Der Stamm A 32283
wurde beim Northern Regional Research Lab. US-Department of Agriculture, Peoria, Illinois unter der Nr. NRRL J-8086
deponiert.
Das Antibiotikum Papulacandin wird bei der Züchtung der Art Papularia sphaerosperma, insbesondere
des Stammes NRRL 8086 gebildet. Zur Herstellung von Papulacandin wird Papularia sphaerosperma oder eine
Papulacandin bildende Mutante in einer wässerigen, eine Kohlenstoff- oder Stickstoffquelle sowie anorganische
Salze enthaltenden Nährlösung aerob gezüchtet, bis die Nährlösung eine wesentliche antibiotische Wirkung zeigt,
und das Antibiotikum Papulacandin hierauf isoliert. Das Antibiotikum Papulacandin bildende Mutanten können z.B.
unter der Einwirkung von Ultraviolett- oder Röntgenstrahlen oder von Stickstoff-Senfölen gewonnen werden. Vorzugsweise
verwendet man den Stamm NRRL 8086 (A 32283).
Als Kohlenstoffquelle sind beispielsweise zu nennen: assimilierbare Kohlenhydrate, z.B. Glucose,
Saccharose, Lactose, Mannit, Stärke, Glycerin, ferner Inosit. Als
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stickstoffhaltige K'ährstoffe seien genannt: Aminosäuren,
Peptide und Proteine sowie deren Abbauprodukte* wie.'Pcpton
oder Trypton, ferner Fleischextrakte, wasserlösliche Anteile
von Getreidekornern, wie Mais und YJeizen, von.DestillationsrUcksC'a'nden
der Alkoholherstellung, von Hefe, Bohr.en, insbesondere der Sojapflanze, von Samen, beispielsweise der
Baumwallpflanze usw., aber auch Ammoniumsalze und Nitrate.
Von anderen anorganischen Salzen kann die Nährlösung beispielsweise
Chloride, Carbonate, Sulfate, Phosphate von Alkali- oder Erdalkalimetallen, von Magnesium, Eisen, Zink
und Mangan enthalten.
Die Züchtung erfolgt aerob, also beispielsweise in ruhender Ober flä'chenkul tür oder vorzugsweise submers unter
Schütteln oder Rühren mit Luft oder Sauerstoff in Schutte.lkolben
oder den bekannten Fermentern. Als Temperatur eignet
sich eine solche zwischen 18 und 400C, vorzugsweise
ca. 23°C. Eine wesentliche anuifungische Wirkung zeigt
die nährlösung dabei im allgemeinen nach 1 1/2 bis 5 Tagen.
Vorzugsweise kultiviert man in mehreren Stufen, d.h.
man stellt zunächst eine -oder mehrere Vorkulturen in
flüssigem Na'hrmcdium her, die dann in das eigentliche Pro-
• *
duktionsmedium, z.B. im Verhältnis 1:20, überimpft werden.
Die Vorkultur erhält man beispielsweise,*-.indem "man ein durch
ca. 14-tligiges Wachstum auf einem festen Nährboden erhalte-
€09839/1031
•-26096.Π
nes versportes Mycel in ein flüssiges Medium überimpft'und
48 Stunden wachsen l'dsst. '. . *
. Die Isolierung des Antibiotikums aus dem Kulturmedium
erfolgt nach an sich bekannten Methoden unter Berücksichtigung der chemischen, physikalischen und biologischen
Eigenschaften des Antibiotikums.
So kann das Anti-biotikum beispielsweise aus der
unfiltrierten Kulturbrühe mit einem mit Wasser wenig mischbaren
organischen Lösungsmittel, z.B. Essigester, extrahiert v?erden. Dieses sogenannte "whole-broth"-Verfahren wird vor-.
zugsweise .angewendet, weil sich'das Anti-biotikum sowohl
im Mycel als auch im Kulturfiltrat befindet. Das Antibiotikum
sammelt sich in der wasserhaltigen organischen Phase, z.B. im Essigester, an und diese Phase wird von der extrahierten
Kulturflüssigkeit und dem "Schlamm" (extrahiertes Mycel·
und Kährlösungsfestbestandteile) abgetrennt. Der bei der
Extraktion erhaltene Rückstand kann einer oder mehreren erneuten Extraktionen mit dem gleichen oder einem anderen
Lösungsmittel unterworfen werden. ·
Man kann auch das z.B. mit Filterhilfsmitteln abfiltrierte Mycel oder das Kulturfiltrat allein extrahieren.
Das mit Wasser gewaschene Mycel (mitsamt dem Filterhilfsmittel)
wird vorzugsweise mit einem mit Wasser mischbaren organischen Lösungsmittel, z.B. einem Niederalkanol mit
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1-4 Kohlenstoffatomen, wie Methanol, Aethanol, Propanol,
Isopropanol, ferner Dimethylsulfoxid, Formamid, Dimethylformamid,
Methylacetamid, Dioxan, Tetrahydrofuran, Aceton, oder mit Mischungen dieser Lösungsmittel mit Wasser, insbesondere
ir.iL wasserhaltigem Methanol, extrahiert. Das Kulturfiltrat
wird mit einem mit Wasser nicht mischbaren Lösungsmittel z.B. mit Essigester, mit Wasser nicht mischbaren Alkohol
wie n-Butanol, höheren aliphatischen Ketonen z.B. Methylisopropylketon,
extrahiert.
Zur Reinigung des nach Abdampfen des Lösungsmittels
erhaltenen Rohproduktes kann man sich z.B. der Extraktion, der Fällung, der Verteilung zwischen nicht-mischbaren Lösungsmittel
phasen oder der Absorption, vor aller« Cliroir.atngraphie
bedienen. So können aus dem Rohprodukt, z.B. Essigesterextrakt:
der KulturbrUhe, erhebliche Anteile an Begleitstoffen durch aufeinanderfolgende einfache Reinigungsprozesse wie Extraktion
des getrockneten oder gelösten Rohproduktes mit Lösungsmitteln, in denen das Antibiotikum unlöslich ist, z.B. Kohlenwasserstoffen
wie Petrolä'ther, Cyclohexan, oder wasserfreien halogenierten
Kohlenwasserstoffen wie Methylenchlorid, Chloroform,
Tetrachlorkohlenstoff, entfernt werden. Man kann auch das Rohprodukt lösen, z.B. in Methanol, und durch Adsorptionsmittel
wie Aktivkohle, Kieselgel, Magnesiumsilikat, Aluminiumoxid oder Mischungen davon oder Adsorptionsharze, z.B.
609839/1031 ."·■-"
vernetzte Dextranc wie "Sephadex" (der Fa. Pharmacia Fine
Chemicals, Uppsala) von Beglcitstoffen abtrennen. Beispielsweise
kann das Rohprodukt -durch wiederholte Sä'ulenchrc.natographie
unter Verwendung von Kieselgel, zwecknüissig mit geringen
Zus'atzen von Aktivkohle, gereinigt v:erden. Das Antibiotikum
wird vorzugsweise nach dem Gradientenverfahren mit Mischungen von Chloroform oder Tetrakohlenstoff und Methanol
eluiert, wobei der prozentuale Gehalt des stärker polaren Lösungsmittels stufenweise gesteigert wird. Wenn man den
durch Extraktion der Kulturbrühe gewonnenen Extrakt an einer Mischung von Kieselgel mit z.B. 5 Gew.Prozent Aktivkohle'und z.
Chloroform/Methanol als ElutionsflUssigkeit chromatographisre}
findet man nahezu die gesamte Menge des aus der Kulturbrlihs
extrahierten Antibiotikums auf die Eluate der Methanolkonjsentrationen
5 - 20% verteilt.
Die oben erwähnte Verteilung zwischen nicht-mischbaren
Lösungsmittelphasen kann auch als Gegenstromverteilung
mit einer Craig-Apparatur vorgenommen werden. Als Lö'sungsmittelsystem
dient beispielsweise eine Mischung von Essigester, Cyclohexan, Methanol und Wasser.
Zur Gewinnung der einzelnen einheitlichen Komponenten des Antibiotikums kann ihre Trennung und Isolierung z.B.
nach der Methode der präparativen Dünnschichtchromatographie
609839/1031 .
unter den für den analytischen Nachweis beschriebenen Bedingungen
erfolgen. Vorteilhafter ist die Trennung» mittels Säu-enchror.-.r.tograhie, wobei als Adsorptionsmittel z.B. Kieselgel
mit einem Gehalt von 1-5 Prozent Aktivkohle benutzt und eic
Elution vorzugsweise- nach dem Gradientenverfahren mit einer
'Mischung von Chloroform und Methanol bewirkt wird..Die Steigerung der Konzentration des polareren Lösungsmittels erfolgt
zweckmä'ssig in kleineren prozentualen Abstufungen, z.B. 5-20 Methanol, oder man arbeitet nach der kontinuierlichen
Gradient enelutionsmethode. Das Antibiotikum wird vorzugsweise
bei einer Methanolkonzentration von 10% eluiert. Das Reinigungsverfahren
kann gegegebenenfalls wiederholt werden.
Bei der Dünnschichtchromatographie auf Silicagel
(z.B. mit Chloroform-Methanol oder mit Essigester-Aceton-Wasser als Elutionsmittel) und Bioautographie mit Candida
albicans kann man mindestens fünf antibiotisch aktive Komponenten isolieren, deren Rf-Werte im Dünnschichtchromatogramm
auf Silicagel in Tabelle I angegeben sind: System 1 bezeichnet Chloroform-Methanol (4:1), zweimaliges Durchlaufen;
System 2 bezeichnet Essigester-Aceton-Wasser (72:24:4), zweimaliges Durchlaufen.
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Tabelle I | • • « System 2. |
0,41 | |
Substanz | System 1 | • | 0,32 |
Papuläcandin | 0,28 | ||
Komponc-ntCi A | 0,35 | 0,74 | |
Komponente B | 0,27 | 0,51 | |
Komponente C | 0,24' | ||
Komponente D | 0,45 | ||
Komponente E | 0,47 | ||
Ca. 75% des Antibiotikums besteht aus der Hauptkomponente B, ca. 10%.aus der Komponente Ä.
» a
Für die Komponenten A und B wurden im Reihenverdlinnungs-•
test mit Candida albicans als Testorganismus minimale Hemmkonzentratioiien (MIC) zv?ischen 0,006 und 0,1 γ/ml gefunden.
Zum Testieren der Antibiotikawirkung in den einzelnen Isolierungsstufen - wie auch im Kulturmedium - eignet
sich als TestOrganismus besonders gut Candida albicans.
Das Antibiotikum besteht - der Elementaranalyse der Hauptkcmponenten A, B, D und E zufolge - nur aus den
Elementen C, H und 0.
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Das Antibiotikum Papulacandin B weist folgende
chemische und physikalische Eigenschaften auf:
Es ist eine schwach saure, in Pulverform weisse Substanz. Sie ist löslich in Alkoholen, z.B. Niederalkanolen
wie Methanol, Aethanol, n-Propanol, sowie in Ketonen, z.B.
Diniederalky!ketonen wie Aceton, Methylisobutylketon, ferner
in Dimethylformamid und Dimcthylsulfoxid; sie ist schwer
löslich in' Essigester und chlorierten Kohlenwasserstoffen wie Methylenchlorid, Chloroform und Tetrachlorkohlenstoff
(10 - 100 mg/Liter); in Wasser, Petroläther, Aether, .Hexan
.ist die Verbindung praktisch unlöslich. F. 193-197° (Zers.).
Elementaranalyse (berechnet für C, 7H,., Oi 7)
C ber. 62,65%; gef. 61,28%,
H ber. 7,16%; gef. 7,18%.
H ber. 7,16%; gef. 7,18%.
[a] = + 50,0 + 1° (c= 0,46 in Methanol)
UV-Spektrum in Aethanol:
rj max 232 nm (£ = 42 000)
240 nm (έΓ - 42 400)
268 nm (üt = 44' 800)
300 nm (£ = 31 200).
IR-Spektrum in KBr, s. Beispiel 3
100 MHz - NMR-Spektrum, s.Fig. 1.
IR-Spektrum in KBr, s. Beispiel 3
100 MHz - NMR-Spektrum, s.Fig. 1.
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Aufgrund der dampfdruck-ostnometrischen Molekulargewichtsbestimmung
des Acetylderivats kann das Molekulargewicht zu etwa 900 - 950 geschätzt werden. Das Antibiotikum
besitzt keine freien Carboxyl- und keine O-Methylgruppen.
Im Massenspektrum, sind nur kleinere Fragmente erkennbar. Ein Molekülion fehlt. Im C-NMR.-Spektrum sind die
Signale von 45 - 48 C-Atomen feststellbar. Zusammen mit den Ergebnissen der Elementaranalyse und der Abbauversuche von
Papulacandin lässt sich folgende Bruttoformel berechnen C47H64°17·
Mit Essigsäureanhydrid und Pyridin konnten mehrere
Hydroxylgruppen, davon 2 phenolische, acetyliert werden. Die Anzahl der Acetylgruppen lässt sich spektroskopisch nur
schwer abschätzen. Im 100 MHz -NMR-Spektrum sind bei ca. 2 ppm die Signale mehrerer Acetylgruppen sichtbar. Aufgrund der
Abbauversuche dürften 9 Acetylgruppen vorhanden sein. Das Molekulargewicht wurde osmometrisch zu 1267 bestimmt. Für
das Acetylderivat wurden folgende physikalisch-chemische Daten erhalten
Elementaranalyse (berechnet für C65Hgo026 ^
C: ber. 61,02% gef. C = 6Q,74%
H: ber. 6,46 gef. H = 6,50%
UV-Spektrum (in Aethanol)
H: ber. 6,46 gef. H = 6,50%
UV-Spektrum (in Aethanol)
tfmax 216nm ^ = 23 20°) ...
242 nm (£ = 25 600)
268 nm (£ » 27 600) . .
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295 nm (Schulter).
IR-Spektrum, s. Beispiel 6. >
[α]?;0 = -6 + 1° (c= 0,765 in Chloroform).
Bei der Hydrierung von Papulacandin B wurden 7 Mol Wasserstoff aufgenommen. Im H-NMR.-Spektrum des Hydrierungs-'produktes
sind alle Signale von olefinischen Protonen verschwunden. Zwei aromatische Protonen bei 6,3 ppm sind noch
sichtbar. Das IR-Spektrum in KBr ist in Beispiel 7 angegeben. Das Hydrierungsprodukt weist folgende physikalisch-chemische
Daten auf:
Elementaranalyse (berechnet flir ^αί^ίοΡλί)
C: ber. 61,69% gef.: 60,94%
H: ber, 8,59% gef.: 8,56%
O: ber. 29,72% gef.: 30,10%
H: ber, 8,59% gef.: 8,56%
O: ber. 29,72% gef.: 30,10%
F. 125-1300C ·
UV-Spektrum (in Aethanol)
/) max. 270 nm (£ = 3100)
[a]^ = + 7 + 1° (c= 0,214 in Methanol).
/) max. 270 nm (£ = 3100)
[a]^ = + 7 + 1° (c= 0,214 in Methanol).
Das Antibiotikum Papulacandin Komponente A weist folgende chemische und physikalische Eigenschaften auf: Es
ist eine schwach saure, in kristalliner Form weisse Substanz, die die gleichen Löslichkeitseigenschaften wie die Komponente
B aufweist.
F. 171 - 173° C (Zersetzung)
F. 171 - 173° C (Zersetzung)
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Elementaranalyse
C gef. 61,88% .
H gef. 7,34% ' . ■'
UV.-Spektrum (in x\ethanol):
η max 232 nm Schulter
η max 232 nm Schulter
242 nm (E = 425)
265 nm (E = 520)
IR-Spektrum in KBr, s. Beispiel 3
[ct]^° = + 30 + 1° (c= 0,419 in Methanol). Die Figur 2 zeigt das 100 MHz-NMR. -Spektrum. .Papulacandin A besitzt keine freien Carboxyl- und 0-Methylgruppen. Im Massenspektrum sind nur kleinere Fragmente erkennbar. Ein MolekUlion fehlt. Folgende Bruttoformel ist wahrscheinlich für Papulacandin A C^n „Η,λ ,.0,^ ,„.
265 nm (E = 520)
IR-Spektrum in KBr, s. Beispiel 3
[ct]^° = + 30 + 1° (c= 0,419 in Methanol). Die Figur 2 zeigt das 100 MHz-NMR. -Spektrum. .Papulacandin A besitzt keine freien Carboxyl- und 0-Methylgruppen. Im Massenspektrum sind nur kleinere Fragmente erkennbar. Ein MolekUlion fehlt. Folgende Bruttoformel ist wahrscheinlich für Papulacandin A C^n „Η,λ ,.0,^ ,„.
Mit Essigsäureanhydrid und Pyridin konnten verschiedene Hydroxylgruppen acetyliert werden. Das IR-Spektrum des
Acetylderivates in Methylenchlorid ist im Beispiel 9 angegeben.
Die Anzahl der Acetylgruppen lässt sich nur schwer abschätzen. Vermutlich sind 9.-11 Acetylgruppen vorhanden. Das
Acetylderivat von Papulacandin A. weist folgende physikalischchemische Eigenschaften auf:
Elementaranalyse:
C gef.: 61,91%
Elementaranalyse:
C gef.: 61,91%
H gef.: 7,22% -
0 gef.: 30,81%
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UV-Spektrum (in Aethanol)
/? max 240 nm (E = 270)
v max '
■ 262 nm (Emax - 33O>
[a]20 = -15 + 1° (c= 0,249 in Chloroform)
Bei der Mikrohydrierung von Papulacandin. A werden 7 Mol Wasserstoff
aufgenommen.
Das Antibiotikum Papulacandin Komponente D weist folgende
chemische und physikalische Eigenschaften auf. Es ist eine schwach saure, in Pulverform weisse Substanz, die ähnliche
Löslichkeitseigenschaften wie die Komponente B hat.
F. 127 - 1300C.
ElementaranaIyse C gef. 62,32%
H gef. 7,59%.
UV.-Spektrum (in Aethanol)
ElementaranaIyse C gef. 62,32%
H gef. 7,59%.
UV.-Spektrum (in Aethanol)
/9 max 230 nm (E - 340) ■■ max
235 nm Schulter
261 nra (1W " 32O)
[«Iß0 + 7 ± 1° ( c = 0,250 in Chloroform)
Das IR-Spektrum in KBr ist in Beispiel 5 angegeben.
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Das Antibiotikum PapuLacandin Komponente E weist folgende chemische und physikalische Eigenschaften auf: Eg ist
eine schwach saure, in Pulverform weisse Substanz,-die ähnliche
Lö'slichkeitseigenschaften wie die Komponente B hat. Elementaranalyse
C gef.: 64,71%
H gef.: 8,43%
UV. -Spektrum (in Aethanol)
/? max: 230 nm (E1nIx 270) . ■
C gef.: 64,71%
H gef.: 8,43%
UV. -Spektrum (in Aethanol)
/? max: 230 nm (E1nIx 270) . ■
237 nm (Schulter)
267 nm (^x 300)
292 nm (Schulter)
Das IR.-Spektrum in Methylenchlorid ist in Beispiel 5 angegeben.
Das IR.-Spektrum in Methylenchlorid ist in Beispiel 5 angegeben.
Strukturaufklärung von Papulacandin B
Bei der alkalischen Hydrolyse von Papulacandin B in 0,5 N.-methanolischer Kaliumhydroxid-Lösung lassen sich
3 Bruchstücke isolieren.
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Formelschema 1 Alkalische Hydrolyse von Papulacandin B
Papulacandin B
ROOC £. 4-Ib:
R = CH3 1^306
6-Hydroxy-7,13-dimethylpentadeca-1,3,7,9-tetra-en-carbonsäure
.0,5 N KOH
CH3OH/H2O 2 Std./RT
^ C19H26°13
2a: · R-H
2b: R=CH
säure
1)
carbonsäure-methylester
, 5-trien-carbon-
7,9-tetra-en-
Die Verbindung wurde durch Extraktion der Reaktionslösung mit Essigester bei pH 7,5'und anschliessende Veresterung
mit Diazomethan erhalten.
60 9839/103 1
- . COPY
- . COPY
Die Struktur dieser 4-fach ungesättigten C-16-Fett-Sciure
v.'urda folgonderr.assen bewiesen (s. Formelschema* 2):
1,3 .T^-tetra-en-carbonsäure-taethylester.
CH_O0C
H_
OAc
(
CH.
CHqOOC
OH.·
"43
Ib
• M+ :
-7O°C
2)
(CH COO)0 + CH
8
8
CH.
CH
CH OGC(CH ) CH-C
OAcl
f ,CHCtLCH. Pi 2 j
CK,
M : 356
(CII5CO).
CHXOC (CH ) CH-CH (CH2) CHCH CH,
OH CH CH
Wj
M+ :
609839/1 03 1
',!609611
Acetyl5.c-rung des Mcthylestiers ll>
ergab das Monoacetat 5^ mit der Masse 34S. Die 13-Stellung der Methylgruppe ergab
sich aus der Interpretation des C-NMR.-Spektrums von J5. Das Hydrierungsprodukt JS' von 5^ zeigte im MS ein
Molekül ion bei m/e 356. Hydrierung des Methylesters lb_
anderseits ergab 7-Hydroxy-8,14-dimethyl-palmitinsäuremethylester
7_, dessen Molekül ion im MS bei m/e 314 gefunden
wurde. Dessen Monoacetat war wiederum identisch mit der oben beschriebenen Verbindung j>. Die postulierte
Struktur des aliphatischen Restes wurde dann durch einen .Ozon-Abbau des Methylesters lb_ bewiesen. Dabei konnten
aus dem Reaktionsgeraisch gaschromatographisch Oxalsäuredimethylester
8> und 4-Methylcapronsäüre-methylester 9_
durch Vergleich mit authentischem Material nachgewiesen
werden. "...
2) 7-Hydroxy-nona-l>3,5-trien-carbonsä"uremethylester
Die Verbindung wurde durch Extraktion der Reak· • tionslösung mit Essigester bei pH 2,5 und anschliessende
• Veresterung mit Diazomethan erhalten.. Mit Hilfe von UV.-, IR-, und MasseiiSpektrum (MS, mit Hochauflb'sung) und NMR.-Spektroskopie
(mit Doppelresonanzversuchen) des Methylesters konnte die oben postulierte Struktur aufgestellt
werden.
609839/103 1 ' · ·
Die Struktur dieser 3-fach ungesättigten Fettsäure wurde durch
Oxidation des Methyl estors mit
sprechenden Keton 4_ bestätigt:
sprechenden Keton 4_ bestätigt:
Oxidation des Methylestors mit CrO (Jones-Reagens)» zum ent-
I)CrO /H
\y\*A^\*/\ Aceton
■ a. Jh 2)ch 2V
11* lh 3 M :
CllHl6°5 M+ : 196 "
In MS acs Ketons ist ein xMolekülion bei m/e 194 vorhanden. Im
.VMR-Spektruni ist das Proton in 7-Stellung verschwunden.
3) Zuckerteil C^g H26°13
Dieses Bruchstück wurde aus der restlichen Reaktionslb'sung
nach Neutralisation, auf pH 7,5 durch Chromatographie an Sephadex - LH-20 erhalten.
Die Interpretation des MS, der 100 MHz- und 360 MHz-
' 13 '
HbIR. -Spektren und des C-NMR-Spektrums mit off-Resonanz-Entkopplung
des Acetats IQa (siehe Formelschema 3)
609839/1031 ' '
COPY
Formelschema 3: Abbau des ZuckerbruchstUcks
2: R = H
CH N 2 2
CH OH/Ae
30 Min. / O0C
]Oa: R
. 840
10b: R = COCO, M : 867 3
OR
13a; R «= H : o-D-For«
13b; R - H : ß-D-Form
14a:" R «= COCH,: a-D-Form
14b: R = COCH,: ß- · 0
11: R - H
12: R:- COCH : K 784
1,5 N HCl / abs. CH 48 Std. / RT 6 Std. / 50°C
J5? R - H: M - 328 IB: R - -COCH : M+: 496
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134
COPY
-- 20 -
spricht für die vorgeschlagene Struktur. Im MS des Acetats IQa wird ein Moleklilion bei m/e 840 gefunden. Acetylierung
mit Deutero-Essigsäureanhydrid ergab 10b, dessen Molekülion im MS bei m/e 867 gefunden wurde.. Damit ist die Anwesenheit von
9 Acetylgruppen bewiesen.
Die Methanolyse von J3 ergab keine befriedigenden Ergebnisse.
Vor allem konnte das aromatische Bruchstück nicht isoliert werden. Daher wurde 3_ 111^t Diazomethan in das Dimethylderivat
11. übergeführt, das nach Acetylierung ein Hepta-acetat 12_ mit M+ bei m/e 784 lieferte. Methanolyse .
von 11 lieferte dann 3 Bruchstücke, nämlich Methyl-a-D-galactopyranosid
13a, wenig Methyl-B-D-galacto-pyranosid 13b, deren
Tetraacetate 14a und 14b mit authentischem Material identisch waren, und Verbindung 15, die im MS ein Moleklilion bei m/e
328 (Hochauflö.sung: C, Λ^λΟο) lieferte. Acetylierung von
1J5 lieferte das Tetraacetat Ij5 mit M bei m/e 496.
•Perjodatspaltung schliesslich von 15 mit Perjodsäure ergab
Verbindung \J_, die im MS ein Molekülion bei m/e 194 zeigte.
Auf Grund der Interpretation des 360-MHz-NMR.-Spektrums von
IQa ist der Galactoserest ß-glycosidisch mit dem restlichen
Teil des Moleküls verknüpft.
Addiert man die Bruttoformeln der 3 gefundenen Bruchstücke unter der Annahme, dass die beiden Fettsäuren esterartig
mit dem Zuckerbruchstück verknüpft sind, kommt man zu folgender Bruttoformel für Papulacandin B: C47H64°i7 *** 900·
Sie stimmt mit den Ergebnissen der Elementaranalyse überein.
609839/1031'
4J
α | • | cd |
co | ||
O) | (U | |
bO | 1U | |
4J | C | g |
U | ||
cd | ||
Vi | Q) | O |
(U | bO | O |
4-J | ||
(O | ,—< | |
ω | ||
O | C | |
•D | » Vi | d |
Ό | ||
^> | Cu | |
(O | I | Zi |
C | Vi | Jg |
O) | V-I | |
^) | O) | |
d | O | > |
co | d | |
4J | Nl | (U |
4-1 | T3 | |
(U | ||
4J | ||
CM | O | |
O
II.
X O
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Struktur von Papulacandin A
Nach spektroskopischen Vergleichen von Papulacandin A und Papulacandin B und präliminären Hydrolyseversuchen
enthält Komponente A ebenfalls 6-Hydroxy-7,13-dimethylpentadeca-1,3,7,9-tetraen-carbonsäure
und das gleiche Zuckerbruchstück und unterscheidet sich vermutlich in der zweiten
Fettsäure durch 1 zusätzliche Methyl- und 3-4 zusätzliche Methylengruppen^
Unter Derivaten d&s Antibiotikums sind im vorangehenden
v?ie im folgenden Ester und Aether sowie Hydrie- rungsprodukte
und deren Ester und Aether zu verstehen. Ester sind beispielsweise solche, in denen die alkoholischen
Hydroxylgruppen mit Carbonsäurren oder Thiocarbonsäuren
mit 1-20 Kohlenstoffatomen verestert sind. Solche S£
s5.nd vor allein gegebenenfalls substituierte Niederaikansciuren
mit 1-6 Kohlenstoffatomen wie Ameisensäure, Essigsäure, Propion sMure,
Pivalinsäure, ferner gegebenenfalls substituierte ir.ono-
oder bicyclische aromatische oder araliphatisch^ Säuren wie
Bcnuoesüure, Thiobenzoesäure, Naphthalinsäure, Phcnylniederalkans'a'uren
v.-ie Phenylesslgs'a'ure, PhenylpropionsSure. Substituer
ton der Säuren sind beispielsweise Halogen wie Fluor, Chlor, Brom-, Jod, Trifluormethyl, Nitro, freie, veresterte oder ver-
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Hthertc Hydroxylgruppen, z.B. .Niederalkanoyloxy* wie .Acecoxy,
Niederalkoxy wie Methoxy, Niederalky!mercapto wie Methylmercapto,
freie oder funktionell abgewandelte Carboxylgruppen, z.B. Niederalkoxy
carbonyl v?ie Methoxycarbonyl, Carbamoyl, Cyan, gegebenenfalls
substituierte Aminogruppen, z.B. mono- oder di-niecc"
alkylierte oder N-acylierte Aminogruppen, z.B. Methylamino,
Dimethylamine), Niederalkanoylamino, z.B. Acetylatnino.
Aether sind insbesondere Verbindungen, in denen eine oder
'beide phenolische Hydroxylgruppeimit Alkoholen, in erster Linie "".: Niederalkanolen, vor allem Methanol, veräthert sind.
Das Antibiotikum Papulacandin und seine Derivate weisen neben ihrer antifungischen Wirkung auf Fadenpilze (Hyphornyceten)
wie z.B. Trichoderma mentagrophytes, -----
vor allem eine sehr gute spezifische Wirkung gegenüber verschiedenen
Arten hefeartiger Pilze wie Candida albicans, Torulopsis dattila, Torulopsis famata, und Hansenula
anomala auf. So betragt z.B. bei der in vitro-Prüfung
im Gradienten-Platten-Strichtest (W- Szibalski, Science 116»,
46 [1952] gegenüber ca. 20. verschiedenen klinisch vorkommenden
Stammen von Candida albicans die minimale Hemmkonzentration 0,005 bis 0,1 γ/ml. Papulacandin zeichnet sich
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ORIGINAL INSPECTED
durch sehr geringe Toxität im Vergleich zu bekannten antifungisch
wirkenden Antibiotika aus. Das neue Antibiotikum und
seine Derivate können daher zur Bekämpfung von Infektionen, die
durch die genannten Pilze, insbesondere Candida albicans, hervorgerufen
werden oder als Desinfektionsmittel verwendet werden.
Das Antibiotikum Papulacandin und seine Derivate können,
wie erwähnt als Heilmittel, z.B. in Form pharmazeutischer Präparate, Verwendung finden. Diese enthalten die genannten
Verbindungen in Mischung mit einem für die topische, enterale oder parenterale Applikation'geeigneten pharmazeutischen organischen
oder anorganischen Trägermaterial. Für dasselbe kommen solche Stoffe in Betracht, dia mit der neuen Verbindung
nicht reagieren, wie z.B, Gelatine, Milchzucker, Stärke,
Magnesiumstearat, pflanzliche OeIe, Benzylalkohol, oder andere
bekannte Arzneimittelträ'ger. Die pharmazeutischen Präparate
können z.B. als Tabletten, Dragees, Pulver, Suppositories oder in flüssiger Form als Lösungen, Suspensionen, Emulsionen,
Cremen oder Salben vorliegen. Gegebenenfalls sind sie sterilisiert und/oder enthalten Hilfsstoffe wie Konservierungsmittel,
Stabilisierungs-, Netz- oder Emulgiermittel. Sie kön-
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nen auch noch andere therapeutisch wertvolle Stoffe enthalten.
Die Erfindung wird in den nachfolgenden Beispielen
beschrieben. Die Temperaturen sind in Celsiusgraden angegeben.
Die Figuren stellen dar:
Fig. ;1 : H-NMR-Spektrum in Methanol mit schwerem Wasserstoff,
CDoOD, von Papulacandin B
Fig. 2 : NMR-Spektrum in CD3OD von Papulacandin A
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Ein gut; bewachsenes Schrägagarröhrchen des Päpularia
sphaerosperr«:a a 32233 wird mit 5 ml 0,2-m. " Phosphatpuf fer
pH 7 aufgeschwemmt. 3 Erlenmeyerkclben mit 1 Schikane
.(Einbuchtung, "baffle")mit je 100 ml Nährlösung, welche pro
Liter Leitungswasser 20 g Sojabohnenmehl· und 20 g Mannit
enthält und deren pH vor der Sterilisation mit 1-n. Natronlauge auf 8,5 eingestellt wurde, werden mit je 5 ml der
Papularia-Suspension beimpft und 48 Stunden auf einer rotierenden Schilt, telrcaschine mit 250 upm bei 23° inkubiert. Je 25 ml
der so gewonnenen Kultur werden in 6 2-Liter Erlenrneyerkolben
mit 4 Schikanen und 500 ml der obigen Nährlösung geimpft. Die Kolben werden anschliessend bei 23°C auf einer rotierenden
Schüttelmaschine mit 120 upm 48 Standen Inkubiert.
1,5 Liter der Kultur aus den 2 Liter-Kolben werden in einen 50-Liter Fermenter, der 30 Liter der obigen Nährlösung
enthält, Übertragen und 48 Stunden bei 23° inkubiert. Dann werden 15 Liter der Kultur in einen Fermenter mit 300 Liter
der obigen Nährlösung übertragen. Dieser Fermenter v/eist ein Totalvolumen von 500 Liter· auf und besitzt einen 6-blättrigen
TurbinenrUhrer und 4 Schikanen (Prallbleche "baffles'). Die ZUchtungsbedingungen im Fermenter sind: Druck 1 atll, RUhrgeschwindigkeit
450 -uprn, Temperatur 23°C, Luftdurchsatz 1 Liter
V/V/Min. Die Bedingungen entsprechen einer in Sulfitlösung
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gemessenen Sauerstoffabsorpticnsrate von 200 rcM Orjl/h. Die
optimale"Bildung des Antibiotikums A 32283 erfolgt nach ca.
60. Stunden Inkubation. Die Kulturlösung weist dann-'ein pH von
0,7 auf. Sie hat eine Aktivität von 10-12 mm Hemmhof im
Agardiffusionstest mit Candida albicans unter Verwendung
Von VJhatmsnn A discs 0 6 mm.
600 Liter der nach Beispiel 1 erhaltenen Kulturlösung
werden unter Zugabe von 2% Filterhilfsmittel "Decalite"
(D5.atomeenerde) filtriert. 560 Liter Kulturf iltrat werden mit
Katronaluge auf pH 8,6 gestellt und auf einem kontinuierlichen
Extraktor zweimal mit Essigester im Verhältnis 2:1 extrahiert.
Das inaktive wässerige Raffinat wird verworfen. 600 L'iter Essigesterphase worden im Vakuum konzentriert. Es resultiert
ein Konzentrat von 45 Litern.
91 kg Mycel aus obiger Filtration werden 1 χ mit
200 -Liter und 1 χ mit 100 Litern Methanol verrUhrt und jeweils
filtriert. Das inaktive Myeel wird verworfen. 300 Liter
Methanolextrakt werden, im Vakuum konzentriert. Es resultiere
ein wässeriger Mycel-Extrakt von 33 Litern, der mit NaOH auf pH 8,4 gestellt und 2 χ mit je 66 Litern Essigester extrahiere
wird.. Das inaktive wässerige Raffinat wird verworfen.
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120 Liter Mycel-Essigesterextrakt werden mit obigen
45 Liter Kulturfiltrat-Essigester-Extrakt vereinigt und im
Vakuum konzentriert. Es resultieren 1,85 Liter Es-s'igesterextrakt-Konzentrat,
die mit 2 Liter 85%igem Methanol versetzt und 3 κ mit je 2 Liter Petroläther extrahiert werden.
Die inaktiven Petrolätherphasen werden verworfen und die Methanolphase wird im Vakuum zur Trockne eingedampft. Es
resultieren 51 g dunkelbrauner, zähflüssiger Rückstand, der in 200 ml 85%igem Methanol gelöst und 2 χ mit je 300 ml Heptan
extrahiert wird. Die inaktiven Heptanphasen werden verworfen. ,Die Methanolphase wird eingedampft und im Hochvakuum getrocknet.
Es resultieren Al,8 g Extrakt-Rückstand.
Von dem nach Beispiel 2 erhaltenen Extrakt-Rückstand
werden 18 g auf einer Säule (0 5,4 cm, h = 140 cm), welche
aus einer (95:5 Gew.:Gew.)-Mischung von 1000 g Silicagel (Merck Korngrösse 0,05 - 0,2 mm) und 50 g Aktivkohle
Noriu besteht, chrornatographiert. Die Mischung von Silicagel-Akt
iwkohle wurde vorher 3 mal mit Methanol und an- .
schliessend 3 mal mit Chloroform aufgeschlämmt und filtriert:.
Die 12,3 g Extrakt-Rückstand werden in 50 ml Methanol gelöst:,
mit 50 g Silicagel vermischt und das Gemisch wird zur Trockne eingedampft. Der getrocknete pulverige Rückstand wird auf
die Säule gegeben. Die Elution erfolgt in Fraktionen zu je
609839/1031-
L Liter mit Chlorofortn-Methanolraischungen unter stufenweiser
Steigcrung der Konzentration von Methanol. Man beginnt mit
einem McthanoLgehaLi: von 4 % und hört auf mit 507» Methanol.
Die Durchlaufgeschwindigkeit betragt 500 ml/Std. Die Fraktionen
werden im Vakuü-.n eingedampft und der Rückstand im Hoch-.
vakuum getrocknet. Die Fraktionen werden dann aufgrund dünnschichtchroraatographisdi
er und bioautographisch«jr Prüfung vereinigt. Die Fraktionen 1-16 (eluiert mit 1-4% Methanol)
sind nur schwach aktiv und werden verworfen. Die Fraktionen 17-23 (eluiert mit 4 bis 7% Methanol) enthalten Papulacandin D
und £ (weitere Reinigung siehe Beispiel 5). Die Fraktionen 24 27 (eluiert mit 7% Methanol) enthalten Papulacandin A. Die
Fraktion 28 (eluiert mit 10% Methanol) enthält ein Gemisch von Papulacandin A und B. Die Fraktionen 29-31 (eluiert mit 10%
Methanol) enthalten Papulacandin B. Die Fraktionen 32 und 36 (eluiert mit 10 - 20% Methanol) enthalten neben Papulacandin
B auch Papulacandin C mit kleinerem Rf-Wert. Die restlichen
Fraktionen (eluiert mit 20-50% Methanol) enthalten noch weitere aktive Substanzen in kleinen Mengen.
Zur Isolierung von Papulacandin B wird der Rückstand der Fraktionen 29-31 (1,86'g) aus Aceton/Aether gefällt. Es
resultieren 1,5 g reines Papulacandin B als farbloses Pulver vom F. 193-197°C (Zersetzung). Zur Isolierung von reinem Papulacandin
A wird der Rückstand der Fraktionen 24-27 (1,5 g) aus Aceton/Aether kristallisiert. Es resultieren 1,2 g reines
Papulacandin A als farbloses Pulver vom F. 171-173°C.
i 609839/1031
Papulacandin B
Die Elementaranalyse ergibt folgende Werte: · C: 60,457ο H = 6,99% 0 = 32,62%. Das Antibiotikum zeigt im
IR-Spektrum in Kaliumbromid Banden bei 3450, 2975, 2925,.
2875, 1690, 1640 (Schulter), 1615, 1465, 1380, 1345,. 1300,
1260, 1180, 1150, 1070, 1035, 1005, 970, 865 und 845 cm"1. Im UV-Spektrum in Aethanol sind folgende Maxima vorhanden:
232 nm (ε " 4200°)>
240 nm <£ " 42 400), 268 nm
(£ = 44 800), 300 nm (£ = 31 200). Die optische Drehung beträgt
[a]D = + 50 + 1° (c= 0,458 in Methanol). Die
Bruttoformel lautet C, η Yi,( 0,·7·
Das H-NMR-Spektrum in CD3OD ist in Fig. 1 gegeben.
Im DUnnschichtchromatogramm an Silicagel (Kieselfertigplatten
F25/ der Fa. Merck) im System Chloroform-Methanol (4:1)
ist der Rf-Wert =0,4 bei dreimaligem Durchlaufen. Nachweis
mit UV, Jod oder konz. Schwefelsäure und Erhitzen. Bei der Microhydrierung werden 7 Aequivalente Wasserstoff verbraucht,
Papulacandin A
Die Elementaranalyse ergibt folgende Werte: C = 62,98% H = 7,45% 0 =-29,09%.
Das Antibiotikum zeigt im IR.-Spektrum in Kaliumbromid Banden bei 3450, 2950, 2870, 1690, 1630, 1610, 1465, 1410,
1380, 1340, 1300, 1265, 1155, 1075, 1035, 1010, 975, 860
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und 845 cm . Im UV-Spektrum in Aethanol sind die folgenden
Maxima vorhanden: A> ( E 1^ ): 232 nm (Schulter) ,
max N lern ·
242 nm (E = 425) und 265 nm ( E = 520). Das 1H-NiQl.
-Spektrum in CD OD ist in Fig. 2 wiedergegeben. Die
20
Verbindung zeigt eine optische Drehung.[α]β = + 31 + 1°
•(c = 0,451 in Methanol). Im Dünnschichtchromatogramm an
Silicagel (Kieselgelfertig^platten F254 der Fa. Merk ) im
System Chloroform-Methanol (4:1) ist der Rf-Wert = 0,50
bei dreimaligem Durchlaufen. Nachweis mit W, Jod oder konz. Schwefnls'äure und Erhitzen. Bei der Microhydrierung
werden 6-7 Aequ. Wasserstoff verbraucht. Die ungefähre Bruttoforiviel lautet C50-53^72-78°L7-Γ9'
Von den nach Beispiel 3 erhaltenen Fraktionen 67-70, • die Papulacandin B enthalten, werden 2,1 g auf eine Säule
(0=4 cm, h = 50 cm), gefüllt mit Sephadex^-LH-20 (5,5
Liter) chromatographiert. Sephadex-LH-20 (alkyliertes
vernetztes Dextran),wurde vorher 4 Stunden in Methanol
gequollen. Die 2,1 g Papulacandin B werden in 5 ml Methanol gelöst und auf die Säule gegeben: Die Elution erfolgt mit
Methanol in Fraktionen von 22 ml. Die Geschwindigkeit betragt 90 ml/Stunde. Die Fraktionen werden im Vakuum vom
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Lösungsmittel befreit und der Rückstand im Hochvakuum ge
trocknet. Die Eluate der Fraktionen 1-15 (120 mg) sind nur
schwach aktiv und werden verworfen. Die Fraktionen 16-27 enthalten 1,9 g reines Papulacandin B, die aus Aceton/Aether gefällt
wird. Eigenschaften siehe Beispiel 3.
Die nach Beispiel 4 erhaltenen Fraktionen 17-23 .(1,5 g), die in kleinen Mengen Papulacandin D und E enthalten,
werden in Aceton gelöst. Nach längerem Stehen bei 00C kristallisiert eine inaktive Substanz aus. Die Mutterlauge
enthält angereichertes Papulacandin D und E. Durch präparative Dickschichtchromatographie auf Kieselplatten
(100 cm χ 20 cm, 1 mm Schichtdicke) im System Essigester-Aceton-Wasser-(72:24:4)
können die beiden Komponenten voneinander getrennt werden. Papulacandin D und E wird aus
Aceton/Aether/Hexan als farblose Substanz gefällt.
Papulacandin D: Das IR-Spektrum zeigt u.a. Banden bei 3500,
2950, 2870, 1705, 1675, 1640, 1620, 1465, 1385, 1350, 1300,
1260, 1205, 1150, 1070, 1035, 1005, 975 cm"1. Weitere phys.·
ehem. Eigenschaften, siehe im allgemeinen Teil der Beschreibung.
Papulacandin E: Das IR-Spektrum weist u.a. folgende Banden auf: 3500, 2950, 2870, 1710, 1640 (Schulter), 1615, 1465,
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1385, 1350, 1300, 1240, 1185 (Schulter), 1150, 1070, 1040,
1010, 975 cm . Weitere phys.-chem. Eigenschaften, siejie
im allgemeinen Teil der Beschreibung.
Papulacandin B wird wie folgt acetyliert: 250 mg Papulacandin B werden mit je 2 ml. Pyridin und Essigsäureanhydrid
während 3 Stunden bei Raumtemperatur stehen gelassen. Dann wird das Reaktionsgemisch im Vakuum eingedampft und an 30 g
Kieselgel mit Chloroform, welches 1% Methanol enthält, chromatographiert.
Es werden 300 mg farbloses, amorphes Acetat erhalten, welches zweimal aus Aether und Hexan gefällt wird.
Im IR-Spektrum in Methylenchlorid des Acetylderivats sind folgende Banden vorhanden: 2970, 2870, 1755, 1645, 1620, 1425,
1375, 1225, 1195, 1125, 1080, 1050, 1015, 970 und 890 cm"1.
Das UV,Spektrum in Aethanol weist Maxima bei 216 nm (C = 23200),
242 nm (E= 25600), 268 nm (£ = 27600) und 295 nm (Schulter)
auf. Die Elementaranalyse ergibt: C = 60,74% H = 6,51%. Osmometrisch wird ein Molekulargewicht von 1250 gefunden.
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Papulacandin B wird wie folgt hydriert. Zu 50·rag Platinoxid, die in 15 ml Aethanol in einer Hydrierungsapparatur vorhydriert wurden, gibt man 250 mg Papulacandin
B. Es werden 44 ml Wasserstoff aufgenommen, was 6,8 Aequivalenten
entspricht. Nach Filtration und Eindampfen des Filtrates werden 243 mg farbloser Rückstand erhalten, der
an 50 g Kieselgel mit Chloroform, welches 8% Methanol enthält, chromatographiert wird. Es werden 106 mg reines
Hydrierungsprodukt erhalten.
Das IR.-Spektrum (in KBr) zeigt Banden bei : 3500, 2950, 2860, 1720, 1610, 1465, 1385, 1250, 1185, 1150,
1095, 1070, 1030, 1005, 980 cm"1. Im 1H-IJMR.-Spektrum sind
die Signale der olefinischen Protonen der Komponente B verschwunden. - ..
Weitere physikalisch-chemische Eigenschaften: siehe
den allgemeinen Teil der Beschreibung.
Das Antibiotikum Papulacandin B wird wie folgt methy-
liert: 200 mg Komponente B*, gelöst in 2 ml Methanol wird bei
00C während mit einer Lösung von Diazomethan in Aether stehen
gelassen. Nach Eindampfen werden 210 mg Rückstand erhalten.
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Das Methylätherderivat wird durch präparative Dünnschichtchromatographie auf Silicagel-Dickschichtplatten im System
Chloroform-Methanol (5:1) erhalten. Es werden 106 mg farbloser, amorpher Papulacandin B-Monomethyläther erhalten, welcher aus
Aceton/Aether/Hexan gefällt wird. Im IR-Spektrum (in KBr) sind
folgende Banden vorhanden: 3450, 2950, 1700, 1640 (Schulter), 1610, 1460, 144O5 1345, 1300, 1260; 1155, 1070, 1030, 1010 cm"1.
Das UV-Spektrum in Aethanol weist folgende Maxima auf:
pi a_, (tmax.): 235 (37 600), 267 (39-000), 295 (Schulter).
• max
Aufgrund des H-NMR. -Spektrums ist eine phenolische- Methylgruppe vorhanden.
Als weiteres Produkt wird auch Papulacandin B-dimethyläther
erhalt en, in welchem auf Grund des H-NMR- Spektrums beide phenolischen Hydrox}Tlgruppen methyliert worden sind.
Das Antibiotikum Papulacandin A wird wie folgt acetyliert: 100 mg Papulacandin A werden mit je 1 ml Pyridin
und EssigsMureanhydrid während 3 Stunden bei Raumtemperatur
stehen gelassen. Dann wird das Reaktionsgemisch im Vakuum
eingedampft und an 20 g Kieselgel mit Chloroform, welches 1% Methanol enthält, chromatographiert. Es werden 75 mg
farbloses, amorphes Acetat erhalten, welches zweimal aus Aether und Hexan gefällt wird. Im IR.-Spektrum (in Methylenchlorid)
des Acety!derivates sind folgende Banden vorhanden:
2920, 2S60, 1755, 1690, 1640, 1605, 1510, 1460, 1370,
965 cm" . Das I
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1225, 1175, 1125, 1040, 965 cm"1. Das UV.-Spektrum
Vi
in AethanoL weist Maxima bei 242 nm ( E ι ° — 240)
1 cm
und 262 (E ?^ = 370) auf. Die Anzahl der Acetylgmppen
.'1 liess sich nicht eindeutig bestimmen. Aufgrund des H-NMR.
Spektrums sind 9-11 Acetylgruppen anzunehmen.
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Claims (6)
1. Verfahren zur Herstellung eines neuen Antibiotikums,
dadurch gekennzeichnet, dass man Papularia sphaerosperma (Pers.) Höhnel oder eine das Antibiotikum Papulacandin bildende
Mutante in einer wässerigen, eine Kohlenstoff- und Stickstoffquelle sowie anorganische Salze enthalten Nährlösung
aerob züchtet, bis diese eine wesentliche antibiotische Wirkung aufweist, und das Antibiotikum Papulacandin
hierauf isoliert und, wenn erwünscht, in seine Komponenten auftrennt und/oder in Derivate überführt.
2. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, dass man den Stamm Papularia sphaerosperma (Pers.) Höhnel
NRRL 8086 ( A 32283) züchtet.
3. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, dass, man zur Prüfung auf Anwesenheit des Antibiotikums
Candida albicans verwendet.
4. Verfahren nach Anspruch 1 oder 2, dadurch gekennzeichnet,
dass das Kulturfiltrat mit einem mit Wasser nur wenig mischbaren organischen Lösungsmittel extrahiert wird.
5. Verfahren nach einem oder mehreren der Ansprüche 1-3, dadurch gekennzeichnet, dass das Kulturfiltrat mit Essigester
extrahiert wird.
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6.- Verfahren nach Anspruch 1 oder 2, dadurch gekennzeichnet,
dass das Myeel mit einem mit Wasser mischbaren organischen
Lösungsmittel oder einer Mischung davon mit Wasser extrahiert
wird. -
7-* Verfahren nach Anspruch 6, dadurch gekennzeichnet,
dass das Kycel mit wässerigem Methanol extrahiert wird.
8.s " Verfahren nach den Ansprüchen 1-7, dadurch gekennzeichnet,
dass das Antibiotikum durch Chromatographie gereinigt wird.
9:.«. . Verfahren nach den -Ansprüchen 1 - 8, dadurch gekennzeichnet
>t dass das Antibiotikum durch Chromatograhie an
Kieselgel·, gegebenenfalls in Mischung mit Aktivkohle, gereinigt " wird.
10. Verfahren nach Anspruch 1 - 9y dadurch gekennzeichnet,
dass das Antibiotikuni durch Chromatographie an Adsorptions-
- harzen gereinigt wird. " ·
11. Verfahren nach Anspruch 1 - IQ., dadurch gekennzeichnet,
dass das Antibiotikum durch Chromatographie an vernetzten Dextranen gereinigt wird. ' . - .
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12. Verfahren nach den Ansprüche 8-11, dadurch gekennzeichnet,
dass man das Antibiotikum mit Mischungen von Chloroform und Methanol eluiert.
13"i Verfahren nach den Ansprüchen 1-12, dadurch gekennzeichnet,
dass das Antibiotikum durch Chromatographie an Kieselgel, gegebenenfalls in Mischung mit Aktivkohle,
in die Komponenten aufgetrennt wird.
14. Verfahren zur Herstellung des Antibiotikums Papulacandin
und/oder seiner Komponenten und Derivate wie in den Beispielen beschrieben.
15. Verfahren nach den Ansprüchen 1-12, dadurch gekennzeichnet, dass man die Komponente B des Antibiotikums
Papulacandin isoliert und, wenn erwünscht, in seine Derivate überführt.
16.. Verfahren nach den Ansprüchen 1-12, dadurch gekennzeichnet, dass man die Komponente A des Antibiotikums
Papulacandin isoliert un.d, wenn erwünscht, in seine Derivate überführt.
17. Verfahren nach den Ansprüchen 1-12,· dadurch gekennzeichnet, dass man die Komponente C des Antibiotikums Papulacandin
isoliert und, wenn erwünscht, in seine Derivate überführt .
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18· Verfahren nach den Ansprüchen 1-12, dadurch gekennzeichnet,
dass man die Komponente D des Antibiotikums, Papulacandin isoliert und, wenn erwünscht, in seine Derivate
überführt.
19* Verfahren nach den Ansprüchen 1-12, dadurch gekennzeichnet,
dass man die Komponente E des Antibiotikums Papulacandin isoliert und, wenn erwünscht, in seine Derivate überführt
.
20. Das Antibiotikum Papulacandin und seine Derivate.
21· Die Komponente B des Antibiotikums Papulacandin und seine Derivate.
22· Die Komponente A des Antibiotikums Papulacandin
und seine Derivate.
23. Die Komponente C des Antibiotkums Papulacandin und
seine Derivate.
24·· Die Komponente D des Antibiotikums Papulacandin
und seine Derivate.
609839/103
• - 4L -
25. Die Komponente E des Antibiotikums Papulacandin
und seine Derivate.
26.· Die in den Beispielen beschriebenen neuen anti-
biotisch aktiven Verbindungen.
"27· Pharmazeutische Präparate, enthaltend das Antibiotikum
Papulacandin oder seine Komponenten oder Derivate dieser Verbindungen.
28. Die Verwendung des Antibiotikums Papulacandin als
antifungisches Mittel.
Der Stamm Papularia sphaerosperma (Pers) Hb'hnel
NRRL 8086 (A 32283) und dessen das Antibiotikum Papulacandin bildende Mutanten.
CIBA-GEIGY AG
6 0 9839/1031
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8128 | New person/name/address of the agent |
Representative=s name: REDIES, B., DIPL.-CHEM. DR.RER.NAT., PAT.-ANW., 40 |
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8131 | Rejection |