DE2357345A1 - Verfahren zur biotechnischen herstellung von hefe und deren verwendung - Google Patents
Verfahren zur biotechnischen herstellung von hefe und deren verwendungInfo
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Description
"Verfahren zur biotechnischen Herstellung von Hefe und deren
Verwendungir
Priorität: 17. November 1972, Japan, Nr, 115 270/72
Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur Herstellung von Hefe und deren Verwendung.
Es sind eine Reihe von als Pröteinquellen verwendbare Hefen bekannt,
die neben saccharoiden Materialien η-Paraffine verwerten
können. Jedoch weisen Hefezellen, die unter Verwendung von η-Paraffinen als Kohlenstoffquellen hergestellt sind, viele
Nachteile auf. Beispielsweise haftet diesen Hefen häufig ein Petroleurageruch an, der durch Waschen nur schwierig entfernt
werden kann. Außerdem muß wegen der geringen Löslichkeit der η-Paraffine und wegen des hohen Sauerstoffbedarfs eine hohe
Rührenergie während des Hefewachstums aufgebracht werden0
Schließlich- tritt bei der Herstellung einer Einheitszelimen^e
409821/041S
eine erhöhte Wärmeentwicklung auf, welche auf die Abwesenheit
von Sauerstoff im Paraffinmolekül zurückzuführen ist, was ein-Ansteigen der Energiekosten für den Sauerstoffnachschub und die
Wärmeabführung bewirkt. . .
Im Verlauf der Untersuchungen zur vorliegenden Erfindung wurde
festgestellt, daß Äthanol eine wertvolle Kolilensto ff quelle zur
Nahrungs- und Herstellung von Hefen ist. Da Äthanol in/Futtermitteln erlaubt .
ist, brauchen geringe Restmengen an Äthanol in der Hefe nicht entfernt v/erden. Außerdem ist Äthanol vollständig wasserlöslich
im Vergleich zu n-Psraffinen
und weist/einen geringen Sauerstoffbedarf und eine geringe Wärmeentwicklung
auf. Dies ist auf die Anwesenheit des im Äthanolmolekül enthaltenen Sauerstoffatoms, das in η-Paraffinen nicht
vorhanden ist, zurückzuführen. Aus diesen Gründen ist Äthanol
als-wertvolle Kohlenstoffquelle zur Züchtung von Hefen zu betrachten.
Außerdem ist der Preis von Äthanol in letzter Zeit gesunken, da es großtechnisch durch Wasseranlagerung an Äthylen
hergestellt werden kann.
Die Züchtung von Hefestämmen wird im allgemeinen bei Temperaturen von etwa 30 bis etwa höchstens 35°C durchgeführt. Es ist
aber wünschenswert, die Züchtung bei etwa M-O0G durchzuführen,
um die Kosten für die Kühlung zu reduzieren.
Bei der großtechnischen Herstellung von Hefezellen müssen Ver-
durch
imreinigungan / infektiöse Mikroorganismen möglichst verhindert werden. Daher ist es erwünscht, die Züchtung unter sterilen Bedingungen durchzuführen, was aber mit sehr hohen Kosten für die
imreinigungan / infektiöse Mikroorganismen möglichst verhindert werden. Daher ist es erwünscht, die Züchtung unter sterilen Bedingungen durchzuführen, was aber mit sehr hohen Kosten für die
409821/0415
entsprechenden Einrichtungen verbunden ist. Es wurde festgestellt,
daß sich Verunreinigungen durch infektiöse Mikroorganismen durch Einstellen des pH-Wertes des Mhrmediums unter 4,0 auf
ein Minimum senken lassen.
Aufgabe der Erfindung ist es, Hefestamme zur Verfügung zu stellen,
die unter Verwendung von Äthanol als Kohlenstoffquelle
rasch und unter hohen Zellausbeuten gezüchtet werden können. Die Züchtung soll auch bei einer Zuchtungstemperatur von 40°C
und einem pH-Wert des Hähermediums unter 4,0 unter hoher Wachstumsgeschwindigkeit
und mit guten Zellausbeuten durchführbar
sein. - ■
Bei der Suche nach Hefestämmen, die den vorgenannten Anforderungen
genügen, wurde festgestellt, daß viele Hefen unter diesen Bedingungen überhaupt nicht .wachsen oder nur ein so geringes
Wachstum zeigen, daß sie praktisch nicht zu verwerten sind.
Gegenstand der Erfindung ist ein Verfahren zur biotechnischen Herstellung von Hefezellen, das dadurch gekennzeichnet ist,
EY-IOlO daß man Candida ethanothermophilum/ATCC 20 380 oder Candida
EY-1130
acidothermophiluin/ATCG 20 38Ί in einem Äthanol enthaltenden
acidothermophiluin/ATCG 20 38Ί in einem Äthanol enthaltenden
Nährmedium unter aeroben Bedingungen züchtet.
In Tabelle I sind die erfindungsgemäßen Hefestamme näher beschrieben.
.
409821/0415
ο to οο ro
Tabelle I Morphologische und physiologische Eigenschaften
Stamm * | C. ethanothermophilum ΞΥ-1010 |
2,5 - 5 x 5 - 10 | C, acidothermophilum EY-1130 |
ATCC Nr. | 20380 | oral | 20381 |
Hinterlegungs-Nr. in Japan . (Technical Research Institute of Microbial Industry) |
1677 ' | nein | 1679 |
CBS LTr. | ; 6520 | reichlich | 6521 |
I. Mikroskopische Beobachtunge | η | ||
Größe (u) *1 | rund | 3 - 5x5- 10 | |
Gestalt . *1 | wellenförmig nein |
oval | |
Ascosporenbildung *2 | nein • rauh ■ |
nein | |
Pseudomycel *3 | spärlich | ||
II.Kolonien "4 | |||
Gestalt | rund | ||
Rand erhabener Vertikal— schnitt |
glattrandig oder leicht well f örinig ja |
||
. Glanz L oberfläche |
matt ■ glatt |
ο co
OO
ο cn
Stamm, | 0. ethano.thermophilum EY-1010 |
C. acidothermophilum EI-1130 |
gut , |
III. Aufstre'ichkultur . *5 | • | cremefarben | |
Wachstum | gut | ||
Pigment | cremefarben | nein | |
IY. Züchtung in flüssigem Medium | nein | ||
Hautbildung | da ". | ^a | |
Trübung ■ ■ , | nein . | ||
Sediment | Ja | aerob , · ■ | |
V. Physiologische Eigenschaften | 8 - 4-80C | ||
(1) Sauerstoffbedarf | aerob | 35 - 4O0C | |
(2) Wachstumstemperatur | 8 - 48°C | 2 - 10 | |
.(3) Optimale Wachstumstempe- ; ' . ■ ratur . , ■ . . ;. .. · |
35 _ 409C | 3- 8 | |
: (4) Wachstum "bei pH-Wert' | 2-10 | ||
(5) Optimales Wachstum bei pH-Wert |
3 - 8 ■ , |
VJi
I
I
CJ
cn
CO
cn
Stamm
(6) Vitaminbedarf _
(7) Carotenoidbildung
(8) Osmo-Toleranz (KaCl-Test)
(9) Stickstoffverwertung "
Kaliumnitrat Harnstoff ·
Ammoniumsulfat
Asparagin , Pepton
(10) Lackmusmilch-Test
(11) Gelatinenydrolyse
(12) Bildung yon überschüssiger ■Säure
(13) Bildung von stärkeähnlichen Verbindungen
Fettspaltung ' (15) Arbutinspaltung
G. ebhanothermophilum
EY-1010
nein nein 10 - 12%
Blaufärbung
nein
nein
nein
nein
nein
C. acido the rmophilum EY-1130
nein nein - 12%
keine Veränderung
nein nein
nein nein nein
cn •-j co
OO PO
cn
Stamm | O. ethanothermophilum ET-IO-IO |
C. acidothermophilum EY-1130 |
■ | + |
VI. Bildung von Kohlenhydraten | - | |||
Glucose | • + | . - ■ . | ||
Galactose | - | - | ||
Saccharο se | - | |||
Maltose ' | ||||
Lactose | — | |||
Raffinose | - | + | ||
Trehalose | - | + | ||
VII. Verwertung von Kohlenstoff- ' quellen D-Glucose |
+ | ' - | ||
D-GaIactose | + · | + | ||
L-Sorbose | ■ - | — | ||
Saccharose | + | |||
Maltose. | — |
L·
cn co cn
(O
00
ro
cn
Stamm | Cellobiose | C. eth.anothermoph.ilum EY-1010 |
0. acidoth.ermoph.ilum EY-1130 |
Trehalose | - | '- | |
Lactose | - | — | |
Melibiose | - | - | |
Eaffiriose | - | - | |
Melecitose | .+ | + · | |
Inulin | + | + | |
Lösliche Stärke | ' + ■ | + | |
Xylose | - | - | |
L-Arabinose | ' + | - | |
D-Ribose | - | - | |
Glycerin > | — | ||
Erythrit | + | + | |
Adonit | - | - | |
Galactit | - | - | |
- | — |
OJ
N3
cn co cn
Stamm | Sorb it | 0. ethanothermophiium EI-1Q10 |
- | 0. acidothermophilum EI-1150 |
■Ina sin | ■ · . | - | - ■ ■ | |
s*. -Methylglucosid | ||||
Salicin | - | |||
Läctat · | H- | |||
Succinat | + . | + | ||
Oitrat | + | + | ||
lthanol | + | |||
+ |
Beobachtet nach dreitägiger Züchtung bei 250O, in einem Malsextraktmerdium (Ballg,-Grad 10,
pBt-VJert N5,0) .
Gips,■Gorodkowa-Agar ' ■ ·
Objektträgerkultur auf, Kartoffelglucose-Agar-Medium
Malzextrakt-Medium (Ballg,-Grad 10, pH-Wert 5,0) mit 2% Agar
Gleiches Medium wie in *4
Gleiches .Verfahren wie in *1 ,
Malzextrakt-Medium* (BaI Ig.-Grad 10, pHr-Wert 5,0), mit 20% Gelatine
unter Verwendung von Rindertalg .. .
cn Cn
Unter Berücksichtigung von "The Yeast", J. Loder S; J.l-J. Kreger-VanRij,
1970? wurde festgestellt, daß die "beiden erfindungsgemäßen
Stämme zwei vei-schledene Arten der Gattung Candida, darstellen.
Dies wird durch die morphologischen Eigenschaften, wie ovale Gestaltt keine Sporenbildung und Bildung von Pseudo:r;/cel,
gestützt. Weitere Hinweise sind die fehlende Bildung von
"Odium" und physiologische Eigenschaften, wie fehlende Bildung
von Carotenoiden, starken Säuren und stärkeähnlichen Verbindungen.
. .
Aus den weiteren morphologischen und physiologischen .Untersuchungen
ergibt sich, daß zu den Stämmen ΒΪ-1010 und EY-II30 bisher
keine identischen oder ähnlichen.Stämme bekannt sind. Diese
Stämme sind daher als neu anzusehen.
Aus einem Vergleich des Stammes EY-1010 mit dem Stamm EY-II30
ergibt sich, daß beide Stämme verschiedenen Arten angehören. Dies geht aus den verschiedenen morphologischen Eigenschaften
der Kolonien, der Pseudomycelbildung und der Haut bildung sowie
aus ihren unterschiedlichen physiologischen Eigenschaften, wie Verhalten gegen Lackmusmilch und Xylose hervor. Wie bereits
aus Tabelle I hervorgeht, wurden die erfindungsgemäßen Stämme
bei drei verschiedenen Hinterlegungsstellen hinterlegt:
1. Technical Research Institute of Microbial Industry,
Agency of Industrial Science &. Technology, Ministry of International
Trade and Industry, Kr. I6.77 und 1679,
2. American Type.Culture. Collection, ATCC 20380 und 20JSI,
3· Centraalbureau Voor Schimmelcultures, Delft, Niederlande,
CBS 6520 und 6521. '
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Bei der Züchtung der erfindungsgemäßen Stämme beträgt die Äthanolkonzentration
im Nährmedium im allgemeinen höchstens 5 Prozent und. vorzugsweise höchstens 2 Prozent.
Außer einer Kohlenstoffquelle werden andere !Nährstoffe verwendet,
wie sie zur Züchtung von Hefen üblich sind. Als Stickstoffquel3ei
können beliebige assimilierbare Stickstoffquellen verwendet werden, z.B. Sojabohnenmehl, entfettetes Sojabohnenmehl,
Mehl aus Baumwollsaat, Polypepton, Fleischextrakt, Hefeextrakt,
Maisquellflüssigkeit, Caseinhydrolysat, Harnstoff, Ammoniak
oder dessen Salze. Als anorganische Salze können beispielsweise Salze der Phosphorsäure, Magnesium-, Kalium- oder Eisensalze verwendet
werden. Gegebenenfalls können verschiedene anorganische oder organische Verbindungen, die das Wachstum.der Hefen begünstigen,
dem Hährmedium zugesetzt werden.
Die Züchtung im erfindungsgemäBen Verfahren wird Vorzugspreise
unter Belüftung und Rühren durchgeführt. Die Züchtung kann chargenweise, halbchargenweise oder kontinuierlich durchgeführt werden.
Die Züchtungstemperatur liegt vorzugsweise bei etwa 4ü°C,
es können aber auch Temperaturen von 30 bis 35°C angewendet werden.
Bei der Wahl des pH-Werts des Nährmediums wird das.Material des
Fermentationsbehälters berücksichtigt. Weiterhin soll der pH-Wert
so gewählt werden, daß eine Verunreinigung durch infektiöse Mikroorganismen möglichst ausgeschlossen wird. Der pH-Wert liegt
im. allgemeinen im Bereich von 2,5 bis 4-,O und vorzugsweise im
409821/041" S
Bereich von 3?O bis 3ι5·
Die Hefezellen können aus der Gärmaische nach, üblichen Verfahren
abgetrennt und. gereinigt werden. Beispielsweise können die Zellen durch Filtration oder Zentrifugation abgetrennt werden und
anschließend durch Vaschen mit Wasser oder gegebenenfalls anderen
Waschflüssigkeiten gereinigt werden. Einer der Vorteile des erfindungsgemäßen Verfahrens besteht darin, daß das Waschen mit
Wasser ausreichend ist.
Nach dem Abtrennen und der Reinigung der Hefezellen können diese je nach ihrem Verwendungszweck- auf übliche Weise weiterbehandelt
werden. Beispielsweise kommen Lagern im Rohzustand ohne läfeiterbehandlung, Erhitzen, Trocknen und Gefriertrocknen in
Frage.
Nach dem erfindungsgemäßen Verfahren lassen sich Hefen von hohem Nährwert unter Verwendung von Äthanol leicht großtechnisch
herstellen. Die nach dem erfindungsgemäßen Verfahren hergestellten Hefen eignen sich zur Verwendung als Nahrungs- und Futtermittel
bzw. als Zusätze zu Nahrungs- und Futtermitteln.
Die Beispiele erläutern die Erfindung. Sofern nicht anders angegeben,
beziehen sich Prozentangaben auf Gewicht pro Volumen.
Ein flüssiges Nährmedium, das 0,15 Prozent KH2PO4, 0,15 Prozent
, 0,1 Prozent MgSO4.7H2O, 0,005 Prozent FeSO4^TH2O,
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0,001" Prozent MnSO4^H2O5 0,001 Prozent CaCl2* 2ΙΙ2Ο, 0,1 Prozent
Maisquellflüssigkeit und 0,025 Prozent (HH^)2SO4 enthält,· wird
durch Zusatz vqn Schwefelsäure auf den pH-Wert 3,5 eingestellt.
In ein 30 Liter fassendes ITermentationsgef aß werden I7 Liter
des vorgenannten Mhrmediums gegeben. Nach 10minütiger Dampfsterilisation
bei 1200C werden I70 g A'thanol zugesetzt. Sodann
v/erden. 200 cm einer Anzuchtkultur von Candida ethanothermophi-
ATCC 20"580 ■
Ium/zügesetzt, die durch 15stündiges· Züchten bei JO0C in einem flüssigen Nährmedium der vorgenannten Zusammensetzung (mit der Ausnahme, daß 0,4 Prozent 00(ΝΙί2)2 anstelle von (KH^)2SO4 verwendet wird und der pH-Wert 4,0 beträgt) hergestellt worden ist, als Inoculum unter aseptischen Bedingungen in das Fermentationsgefäß gegeben. Die Züchtung wird 13 Stunden bei einer !Temperatur von 400C und einem pH-Wert von 3,5 "bei 5OO U/min und einer Belüftungsgeschwindigkeit von I7 Liter/min durchgeführt.
Ium/zügesetzt, die durch 15stündiges· Züchten bei JO0C in einem flüssigen Nährmedium der vorgenannten Zusammensetzung (mit der Ausnahme, daß 0,4 Prozent 00(ΝΙί2)2 anstelle von (KH^)2SO4 verwendet wird und der pH-Wert 4,0 beträgt) hergestellt worden ist, als Inoculum unter aseptischen Bedingungen in das Fermentationsgefäß gegeben. Die Züchtung wird 13 Stunden bei einer !Temperatur von 400C und einem pH-Wert von 3,5 "bei 5OO U/min und einer Belüftungsgeschwindigkeit von I7 Liter/min durchgeführt.
Nach beendeter Züchtung wird eine 50 ml-Probe der Gärmaische
'entnommen und "10 Minuten bei 4000 Ü/min zur Abtrennung der Zellen
zentrifugiert. Die so abgetrennten Zellen werden einmal iait destilliertem Wasser gewaschen und nochmals zentrifugiert. Sodann
werden sie bei 7O0C und 20 Torr getrocknet. Man erhält .
0,42 g trockene Zellen, was 84 Gewichtsprozent des verwendeten
Äthanols entspricht. Die spezifische Wachstumsgesehwindigkeit
-1
CyU max) bei der Züchtung beträgt 0,45 Stunde während
der logarithmischen Phase.
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Beispiele 2 und 3
Die Züchtung wird gemäß Beispiel 1 durchgeführt, mit der Ausnahme,
daß eine Züchtungstemperatur von 35°C anstelle von 4O°C angewendet wird. Die Ergebnisse sind in Tabelle II zusammengestellt.
Stamm
Zellausbeute
(Gew.%)
(Gew.%)
ι-max
(Std."')
2 3
Candida ethanothermophilum 85 Candida acidothermophilum 86
0,4-6 0,42
Beispiel 4 Die Züchtung wird im wesentlichen gemäß Beispiel 1 durchgeführt,
mit der Ausnahme, daß beim Erreichen eines Zellgehalts von 8,0 g/Liter ein Bahrmedium der gleichen Zusammensetzung wie in
Beispiel 1 zusammen mit 1 Prozent Äthanol mit einer bestimmten Geschwindigkeit dem Fermentationsgefäß zugesetzt und gleichzeitig
Gärmaische abgezogen wird, wobei eine Raumgeschwindigkeit
-1
von 5,1 Std. aufrechterhalten wird. Die entfernte Gärmaische wird gemäß Beispiel 1 behandelt. Man erhält pro 100 cm Gärmaische 0,93 g trockene Zellen. Die Analysendaten der so erhaltenen Zellen sind in den Tabellen III und IV zusammengestellt.
von 5,1 Std. aufrechterhalten wird. Die entfernte Gärmaische wird gemäß Beispiel 1 behandelt. Man erhält pro 100 cm Gärmaische 0,93 g trockene Zellen. Die Analysendaten der so erhaltenen Zellen sind in den Tabellen III und IV zusammengestellt.
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Feuchtigkeit
Gesamtstickstoff
Fett
Gesamtphosphor
Asche
Gesamtzucker
3,78 Prozent 8,46 Prozent 0,61 Prozent 1,49 Prozent 7,97 Prozent 29,10 Prozent
Tabelle IV Aminosäurezusammensetzung der Zellen
Ly s
His-Arg
Asp
Thr
Ser
Väl
Met
lie
His-Arg
Asp
Thr
Ser
Väl
Met
lie
10,6 Prozent
2.8 Prozent
5.9 Prozent 11,1 Prozent
6,1 Prozent
5.5 Prozent
5.6 Prozent 1,6 Prozent
5,0 Prozent
Leu | 7,2 | Prozent |
Tyr | 3,7 | Prozent |
Phe | 4,2 | Prozent |
GlU | 15,1 | Prozent |
Pro | 2,4 | Prozent |
GIy | 4,7 | Prozent |
AIa | 6,1 | Prozent |
MH, | 2,4 | Prozent |
100,0 Prozent
(Die Aminosäurereste mit Ausnahme von Try und Cys werden als 100 angesetzt.) ·■" '
409821/0415
Beispiel 5
Die Züchtung wird gemäß Beispiel 4- durchgeführt, mit der Ausnahme,
daß anstelle von reinem Äthanol ein Hvdratationsprodukt
von Äthylen (24,6 Prozent Äthanol, 71,5 Prozent Wasser und 3,9
Prozent andere Bestandteile) in einer der Äthanolkonzentration in Beispiel 4 entsprechenden Konzentration verwendet wird. Die
3 '
Gärmaische enthält 0,95 g/100 cm trockene Zellen, was 95 Prozent
des verwendeten Äthanols entspricht.
40982 1 /04 1 S
Claims (9)
- PatentansprücheVerfahren zur biotechnischen Herstellung von Hefezellen', dadurch gekennzeichnet , daß man Candida ethanothermophj.luni EY-IOlO ATCC 20.3580 oder Candida acidothermophilum ΕΥ-1Γ50 ATCC 20281 in einem Äthanol enthaltenden Nährmedium unter aeroben Bedingungen züchtet.
- 2. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß man durch Gärung erhaltenes Äthanol oder ein Hydratationsprodukt von Äthylen, das mindestens 20 Prozent Äthanol enthält, als Kohlenstoffquelle verwendet.
- 3* Verfahren nach Anspruch Λ , dadurch gekennzeichnet, daß man die Züchtung bei einem pH-Bereich des Nährmediums von 2,5 bis 4,0 durchführt'.
- 4-, Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß man die Züchtung bei Temperaturen von 30 bis 4-00C durchführt.
- 5· Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß das Hährmedium als Stickstoffquelle Sojabohnenmehl, entfettetes Sojabohnenmehl, gemahlene Baumwollsaat, Polypepton, Fleischextrakt, Hefeextrakt, Maisquellflüssigkeit, Caseinhydrolysat, Harnstoff, Ammoniak oder dessen Salze enthält.
- 6. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch'gekennzeichnet, daß man ein Nährmedium verwendet, das als anorganisches SaIa Mag-nesiumphosphat, Kaliumphosphat oder Eisenphosjxhat enthält.
- 7. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß man die Züchtung chargenweise> halbchargenweise oder kontinuierlich durchführt.
- 8. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß man ein Nährmedium verwendet, das höchstens 2 Prozent (Gewicht/ Volumen) Äthanol enthält.
- 9. Verwendung der nach Anspruch .1 bis 8 hergestellten He/*"Kellen iu Futter- oder Nahrungsmitteln.409821/0415
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Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP11527072A JPS5610028B2 (de) | 1972-11-17 | 1972-11-17 |
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JP (1) | JPS5610028B2 (de) |
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DE (1) | DE2357345A1 (de) |
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GB (1) | GB1417074A (de) |
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