DE2158261C3 - Verfahren zur Verbesserung der Nähreigenschaft und der funktionellen Eigenschaften von Einzelzellenproteinmaterial - Google Patents
Verfahren zur Verbesserung der Nähreigenschaft und der funktionellen Eigenschaften von EinzelzellenproteinmaterialInfo
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Description
Gegenstand der Erfindung ist ein Verfahren zur Verbesserung der Nähreigenschaften und der funktioneilen Eigenschaften von Einzelzellenproteinmaterial
gemäß den Patentansprüchen.
Ein großes Problem für die Weltbevölkerung ist dasjenige, die schnell ansteigende Zahl der Menschen zu
ernähren. Das Problem besteht darin, pro Kopf der
Bevölkerung eine ausreichende Kalorienaufnahme und eine ausgeglichene Diät zur Verfügung zu stellen, wobei
insbesondere berücksichtigt werden muß, da in vielen Teilen der Welt ein Mangel an genügend Protein
zuführenden Nahrungsmitteln besteht Eine Möglichkeit zur Schaffung der erforderlichen Proteinvorräte besteht
in der Züchtung von Einzelzellenprotein bildenden Mikroorganismen, wie Hefe, Bakterien und Algen, die
entweder als Nahrungsmittel oder als Zusatznahrung dienen.
Die Bildung von Einzelzellenproteinmateriaüen in großer Menge kann durch Fermentationsverfahren
(Gährverfahren) erfolgen, bei denen Kohlenhydrate,
Kohlenwasserstoff oder oxydierte Kohlenwasserstoffe als Substrat verwendet werden. Die hauptsächlichen
Erfordernisse sind, daß das Substratmaterial billig ist und leicht von den ausgewählten Mikroorganismen
konsumiert wird, so daß die Verfahrenskosten niedrig
liegen. Gleich wichtig ist die Zugänglichkeit und die Nützlichkeit des Einzelzellenproteinmateriels als Nahrungsmittel oder als NahrungsmittelbestandteiL Diese
ίο letzteren Erfordernisse umfassen Geschmacks- und
Geruchsfaktoren, die die Aufnahme in der Öffentlichkeit beeinflussen als auch Stoffwechselfaktoren und
Toxizitätsfaktoren, die mit der Eignung des Einzelzellenproteinmaterials als Zusatz für menschliche Nahrung
is verknüpft sind.
Sowohl in der technischen Literatur als auch in der
Patentliteratur sind Fermentationsverfahren zur Herstellung von Mikroorganismen beschrieben, die leicht zu
nützlichen EinzelzeUenproteinmaterialien führen. Zum
Beispiel wurden Hefen auf Kohlehydraten, die in
Sulfitablaugen enthalten sind, auf Normalalkanbestandteilen eines Gas-Öl-Kohlenwasserstoff-Brennstoffs und
auf einer Mischung oxydierter Kohlenwasserstoffe gezüchtet Die Herstellung von Bakterien in ähnlicher
Weise wurde ebenfalls beschrieben. Die Fermentation bzw. Gärung unter Bildung von Hefen oder Bakterien
umfaßt ein Oxydationsverfahren, bei dem erhebliche Wärmemengen freigesetzt werden und sowohl eine
wesentliche Sauerstoffübertragung und eine gute
Steuerung der Fermentationstemperatur erforderlich
sind. Bevorzugte Substratmaterialien enthalten bereits die höchstmögliche Menge an kombiniertem Sauerstoff,
um die Wärmefreisetzung und den Sauerstoffbedarf so klein wie möglich zu machen. Die Herstellung von
Einzelzellenproteinmaterial in Nahrungsmittelqualität kann auch eine Extraktionsstufe erforderlich machen,
um die Anwesenheit unerwünschter verbliebener Substratmaterialien, wie Kohlenwasserstoffe mit hohem
Molekulargewicht oder langsam vergärende oxydierte
Eine Anzahl von geplanten oder zur Zeit im Betrieb befindlichen Fermentationsverfahren zur Herstellung
von Einzelzellenproteinmaterial sind darauf ausgerichtet, hauptsächlich Tierfuttermittel herzustellen und das
Protein für den menschlichen Verbrauch nur indirekt zu liefern. Jedoch sind gewisse Mikroorganismen, insbesondere gewisse Hefen der Saccharomycetoideae- und
Cryptococcoideae-Unterfamilien von der Food and Drug Administration zur direkten Verwendung in für
den menschlichen Verbrauch bestimmten Nahrungsmitteln zugelassen worden.
Das menschliche Stoffwechselsystem bildet aus Ribonucleinsäure Harnsäure. Da der Mensch kein
Uricaseenzymsystem zur Verfügung hat, wird die
Harnsäure nicht weiter abgebaut und mit dem Urin ausgeschieden. Da Harnsäure in Wasser eine sehr
geringe Löslichkeit besitzt, sammelt sie sich, wenn sie in
größeren Mengen, als der Körper ausscheiden kann, gebildet wird, in kristalliner Form im Körper an. Dies
ω kann zu dem als Gicht bekannten Zustand führen. Es
wird daher von vielen Ernährungsfachleuten empfohlen,
daß die Aufnahme von Ribonucleinsäure in die
enthalten in Abhängigkeit von ihrer Wachstumsgeschwindigkeit und der Wachstumsphase 4 bis 30% oder
mehr Nucleinsäuren. Üblicherweise ergeben sich in den Mikrobenzellen höhere Nucleinsäuregehalte in den
Phasen schnellen Wachstums. Von den Ernährungsfachleuten
wird im allgemeinen vorgeschlagen, daß, wenn die Mikrobenzellen als Proteinquelle für die menschliche
Ernährung verwendet werden sollen, die Menge an durch Einzelzellenproteinmaterialien der Diät zugeführten
Nucleinsäuren, 2 g täglich nicht übersteigen sollte.
Die berechneten Ribonucleinsäuregehalte einiger üblicher Proteinquellen sind in der folgenden Tabelle I
angegeben. Sie variieren von 0 bis 4%. Der Gehalt an
Ribonucleinsäure in Einzelzellenprotein beträgt für Zellen in der expontieUen Wachstumsphase 8 bU 18%.
Der Gehalt an Ribonucleinsäure in Einzelzellenprotein, das für den menschlichen Verbrauch verwendet werden
soll, sollte vorzugsweise auf etwa 2%, bezogen auf das Gewicht der trockenen Zellen, vermindert werden.
Gehalt an Ribonucleinsäure (berechnet)
für verschiedene Proteinquellen
für verschiedene Proteinquellen
Milch | 0 |
Bohnen | 1,7 |
Lachs | 2,4 |
Huhn | 2,9 |
Rind | 3,7 |
Schwein | 4,1 |
Leber | 93 |
Sardellen | 14,5 |
Einzelzellenprotein | 8-18 |
Ein bevorzugtes Verfahren zur Verwendung von Einzelzellenproteinmaterial besteht in der Verwendung
der ganzen Zellen. Demzufolge besteht die Notwendigkeit der Entwicklung eines Verfahrens zur Entfernung
der Nucleinsäuren aus den.Mikrobenzellen. Dies muß wünschenswerterweise mit einem minimalen Verlust
von Proteinmaterialien aus den Zellen erfolgen, um die Vorteile derartiger Einzelzellenproteinmaterialien als
Nahrungsmittel beizubehalten.
Der vorliegenden Erfindung liegt eine neue Arbeitsweise zur Abtrennung von Nucleinsäuren aus einzelligen
Mikroorganismen zugrunde, gemäß der gleichzeitig in überraschender Weise die funktionellen Eigenschaften
der behandelten Einzelzellenproteinnahrungsmaterialien verbessert werden. Dabei werden ferner neue
Nahrungsmittelprodukte erhalten, die für den menschlichen Verbrauch geeignet sind und die ein Einzelzellenproteinmaterial
mit einem stark verminderten Gehalt an Nucleinsäuren enthalten.
Das erfindungsgemäße Verfahren umfaßt die Hitzebehandlung einer alkalischen Ammoniakaufschlämmung
von Einzelzellenmikroorganismen bei einer Temperatur im Bereich von 90 bis 125° C unter
autogenem Druck. Die Zersetzung der Nucleinsäurebestandteile wird dadurch in Gang gesetzt und das
Austreten der Nucleinsäurefragmente durch die Zellwandung erfolgt mit einem relativ geringen Verlust an
Proteinmaterial aus den Zellen.
Es wurde gefunden, daß die Hauptmenge der in Einzelzellmikroorganismen enthaltenen Nucleinsäure
durch Behandeln mit wäßrigem Ammoniak bei oder in der Nähe des Siedepunktes unter autogenem Druck
entfernt werden kann. Der geeignete Temperaturbereich
erstreckt sich von etwa 90° C bis etwa 125° C. Obwohl die Entfernung der Nucleinsäuren aus den
Einzelzellenorganismen offensichtlich eine Folge der hydrolytischen Wirkung des Ämmoniakmediums ist,
wurde überraschenderweise festgestellt, daß das Proteinmaterial,
das in den Zellen enthalten ist, nicht im gleichen Ausmaß beeinflußt wird. Es ist somit möglich,
durch Anwendung'des erfindungsgemäßen Verfahrens ein Einzelzellenproteinmaterial in Form von intakten
Zellen zu erhalten, die einen Nucleinsäuregehalt aufweisen, der wesentlich unterhalb 2 Gew.-% liegt
Das erfindungsgemäße Verfahren ist auf eine Vielzahl von Mikroorganismen, insbesondere auf diejenigen
Organismen, die als Bakterien, Hefen: und Fungi bezeichnet werden, anwendbar. Zur Erläuterung sind in
der Tabelle II Bakterien der Tabelle III Hefen und in der Tabelle IV Fungi bzw. Pilze als geeignete Mikroorganismen
angegeben.
Tabelle II — Geeignete Bakterien
Acetobacter sp.
Arthrobacter sp.
Bacillus subtilus
Corynebacteria sp.
Micrococcus sp.
Pseudomonas sp.
Arthrobacter sp.
Bacillus subtilus
Corynebacteria sp.
Micrococcus sp.
Pseudomonas sp.
Tabelle III - Geeignete Hefen
Candida curvata
Candida lipolytica
Candida pulcherima
Candida utilis
Hansenula anomala
Hansenula miso
Oidium lactis
Candida lipolytica
Candida pulcherima
Candida utilis
Hansenula anomala
Hansenula miso
Oidium lactis
Saccharomyces carlsbergensis
Saccharomyces fragilis
Trichosporon cutaneum
Saccharomyces cerevisiae
Candida parapsilosis
Hansenula wickerhamii
Pichia pastoris
Pichia haplophyla
Saccharomyces fragilis
Trichosporon cutaneum
Saccharomyces cerevisiae
Candida parapsilosis
Hansenula wickerhamii
Pichia pastoris
Pichia haplophyla
Tabelle IV — Geeignete Fungi
Aspergillus niger
Aspergillus glaucus
Aspergillus oryzae
Aspergillus terreus
Aspergillus itaconicus
Penicillium notatum
Penicillium chrysogenum
Penicillium glaucum
Penicillium griseofulvum
Aspergillus glaucus
Aspergillus oryzae
Aspergillus terreus
Aspergillus itaconicus
Penicillium notatum
Penicillium chrysogenum
Penicillium glaucum
Penicillium griseofulvum
Die bevorzugten Ausgangsmaterialien für das erfindungsgemäße
Verfahren sind jedoch Candida utilis, Saccharomyces cerevisiae, Saccharomyces fragilis und
Saccharomyces carlsbergensis, da diese Materialien von der Food and Drug Administration zur Verwendung als
Nahrungsmittelprodukte freigegeben wurden.
Das erfindungsgemäße Verfahren kann entweder auf isoliertes Zellmaterial oder auf in einem Fermentationsverfahren
frisch gezüchtete Zellen angewandt werden. W"nn das Zellmaterial zuvor isoliert wurde, sollte es mit
Wasser aufgeschlämmt werden, um die gewünschte Zellkonzentration einzustellen. Wenn frische Zellen
verwendet werden, sollte der Gäreinrichtungsabstrom
z.B. durch Zentrifugieren aufkonzentriert werden, so daß man eine geeignete Aufschlämmung erhält
Die Konzentration der Zellen in der wäßrigen Aufschlämmung kann variieren und wird in einem
Bereich von 5 bis 15 Gew.-% Zellen (Trockenbasis) gehalten.
Die ursprüngliche Zellenaufschlämmung weist typischerweise einen pH-Wert von 7,0 oder weniger auf.
Zur Durchführung des erfindungsgemäßen Verfahrens wird die Aufschlämmung auf einen pH-Wert im Bereich
von 9,0 bis 10,5 durch Zugabe einer wäßrigen Ammoniaklösung eingestellt Um eine übermäßige
Verdünnung zu vermeiden, wird vorzugsweise eine konzentrierte Ammoniaklösung verwendet z. B. eine
30%ige Lösung von Ammoniak in Wasser. Gegebenenfalls kann gasförmiger Ammoniak verwendet werden.
Die Abtrennung des Nucbinsäurematerials erfolgt durch Erhitzen der Zellenaufschlämmung in dem
alkalischen Ammoniakmedium auf eine Temperatur im Bereich von etwa 90 bis 125° C Wegen des erheblichen
Dampfdrucks des Ammoniaks bei diesen Temperaturen erfolgt die Wärmebehandlung vorzugsweise in einem
geschlossenen Gefäß bei autogenem Druck. Die Aufschlämmung wird vorzugsweise während mindestens
etwa 5 Minuten bei der ausgewählten erhöhten Temperatur gehalten. Im allgemeinen übersteigt die
bevorzugte Zeit für eine wirksame Behandlung etwa 60 Minuten nicht Bei höheren Temperaturen verläuft die
Abtrennung der Nucleinsäuren aus den Mikrobenzellen schneller. Arbeitet man in einem typischen T;il des
Temperaturbereichs, wie z. B. bei einer Temperatur von etwa 90 bis 1000C, so beträgt die Behandlungszeit etwa
20 bis 60 Minuten. Bevorzugte Betriebsbedingungen, die diesen typischen Temperaturbereich anwenden, umfassen
ein Erhitzen der Aufschlämmung während etwa 30 Minuten auf etwa 1000C. Wenn man im oberen Teil des
Temperaturbereichs, z.B. bei etwa 1150C bis etwa
125° C arbeitet, sollte man die Aufschlämmung während
etwa 5 bis 15 Minuten auf der ausgewählten Temperatur halten. Bevorzugte Betriebsbedingungen im höheren
Temperaturbereich umfassen ein Erhitzen der Ammoniakauf schlämmung während etwa 10 Minuten auf etwa
1200C
Nach Ablauf der Wärmebehandlungszeit werden die Zellen durch Zentrifugieren von der wäßrigen Phase
abgetrennt. Die behandelten Zellen können dann in der Zentrifuge mit Wasser gewaschen werden oder können
durch ein getrenntes Aufschlämmen, gefolgt von einer zusätzlichen Abtrennstufe, wie durch Zentrigugieren,
gewaschen werden. Die gewaschenen Zellen werden dann in üblicher Weise getrocknet, wobei darauf
geachtet werden sollte, daß sie keinen übermäßig hohen Temperaturen ausgesetzt werden. Es ist z. B. bevorzugt,
die Zellen durch Erhitzen auf etwa 700C zu trocknen.
Gewünschtenfalls können eine Vakuumtrocknung oder eine Sprühtrocknung angewandt werden.
Die ursprüngliche Abtrennung der behandelten Zellen von der Ammoniakaufschlämmung kann dadurch
erfolgen, daß man das Material bei der erhöhten Behandlungstemperatur zentrifugiert oder vorzugsweise
indem man die Aufschlämmung zunächst auf etwa Raumtemperatur abkühlt. Wenn in dem erfindungsgemäßen
Verfahren frisch gezüchtete Einzelzellmikroorganismen verwendet werden, kann die durch Zentrifugieren
abgetrennte Ammoniakphase in die Fermentiereinrichtung zurückgeführt werden, um als Nähr- und
Substrat-Material für das Wachstum weiterer Mikroorganismen zu dienen. Wenn diese wäßrige Phase, die
sowohl Ammoniak als auch die aus den Zellen entfernten Substanzen, wie Nucleinsäuren enthält
durch Zentrifugieren bei einer Temperatur, die bei der
ί Temperatur des Behandlungsverfahrens oder in der
Nähe dieser Temperatur liegt abgetrennt wird, kann dieser wäßrige Strom direkt ganz oder teilweise ohne
dazwischenliegende Sterilisierung in die Fermentiereinrichtung zurückgeführt werden. Wenn jedoch die
ίο wäßrige Phase zunächst auf etwa Raumtemperatur
abgekühlt wurde, kann es erforderlich sein, den Teil, der in die Fermentiereinrichtung geführt wird, durch
Erhitzen auf etwa 60 bis 700C während etwa 10 bis 25
Minuten zu pasteurisieren.
Bei dem erfindungsgemäßen Verfahren kann man ein Einzelzellenproteinmaterial einsetzen, das in einer
aeroben Fermentiereinrichtung in einer Fermentierungsbrühe gezüchtet wird, die ein organisches Substrat
als Kohlenstoffquelle und ein anorganisches Ammoniak-Nährstoffmedium enthält, wobei man den Abstrom
der Fermentiereinrichtung zentrifugiert, um überschössige Fermentierungsbrühe zu entfernen, und eine
Aufschlämmung mit 5 bis 15 Gew.-% Zellen erhält Dabei kann man der Fermentierungsbrühe in der
Fermentiereinrichtung mindestens einen Teil der wäßrigen Ammoniakphase zusetzen, die beim erfindungsgemäßen
Verfahren in der Zentrifuge zugleich mit der Sedimentphase anfällt und die die aus der Zelle
ausgetretenen Nucleinsäureprodukte enthält
Das erfindungsgemäße Verfahren erfolgt sowohl schnell als auch in verläßlicher Weise. Das gewonnene
Zellmaterial enthält durchwegs weniger als 2% (Trockenbasis) an Nucleinsäuren. Der Proteingehalt der
behandelten Zellen liegt üblicherweise in einem Bereich von 45 bis 50 Gew.-% (Trockenbasis), was im
wesentlichen dem Proteingehalt der ursprünglichen Zellen entspricht Wünschenswerte physikalische Eigenschaften
einschließlich der Geschmack und der Geruch werden durch das erfindungsgemäße Verfahren nicht
beeinträchtigt und das erhaltene Einzelzellenproteinnahrungsmittelmaterial
zeigt erheblich verbesserte Nähreigenschaften. Überraschenderweise werden die
funktionellen Eigenschaften, d. h. die Textureigenschaften,
die Wasser und Öl-Retentionseigenschaften, die
geringe Dispergierbarkeit in Wasser adgL, erheblich
verbessert Demzufolge besitzen die erfindungsgemäßen Einzelzellenproteinnährmaterialien eine vielseitige
Verwendungsmöglichkeit für die Einarbeitung in übliche Nahrungsmittelprodukte und für die Entwicklung
neuer Nahrungsmittelprodukte.
Die folgenden Beispiele sollen die vorliegende Erfindung weiter erläutern, ohne sie jedoch zu
beschränken.
Candida utilis (ATCC 9256) wurden in einer 14 Liter
fassenden Fermentiereinrichtung in einem Mineralmedium und einem Äthanolsubstrat mit ?iner Raumgeschwindigkeit
von 0,3 Stunden-' getfichtet Die aus der Fermentiereinrichtung erhaltenen Zellen wurden zentrifugiert
und wieder zu einer Zellaufschlämmung mit einem Gehalt von 10 Gew.-% (Trockenbasis) verdünnt
10 ml Anteile der Aufschlämmung wurden in Ampullen
gegeben und dann wurden Ammoniak, Phosphorsäure
und Glucose in die Ampullen eingebracht Die Ampullen wurden versiegelt und wahrend 10 Minuten bei einem
Druck von 103 kg/cm2 (14,7 pji) auf 121°C erhitzt Die
Ampullen wurden auf Raumtemperatur abgekühlt und
die Zellen durch Zentrifugieren abgetrennt. Der Rückstand wurde zweimal mit destilliertem Wasser
gewaschen und bei 700C getrocknet. Die trockenen Zellen wurden zu einem Pulver vermählen und ihre
Nucleinsäuregehalte wurden bestimmt und die dabei erhaltenen Werte sind in der folgenden Tabelle V
zusammengefaßt.
Nucleinsäureentfernung durch Extraktion
Probe | Additiv | pH | In den Zellen |
zurückbleibende | |||
Nucleinsäuren % | |||
des Trocken | |||
gewichts | |||
Kontrolle | 10,5% | ||
(keine Behandlung) | |||
10 ml 10% frische | keines | 6 | 8,3 |
Zellaufschlämmung | |||
desgl. | 0,2 ml konz. H3PO4 | 1,9 | 3,3 |
desgl. | 0,2 ml | 9,5 | 1,7 |
30% wäßriger Ammoniak | |||
desgl. | 0,5 ml | 9,9 | 1,3 |
30% wäßriger Ammoniak | |||
desgl. | 1,0 ml | 10,3 | 1,3 |
30% wäßriger Ammoniak | |||
desgl. | 0,2 g Glucose | 5,8 | 8,45 |
Die behandelten Zellen besaßen einen milden und nicht bitteren Geschmack. Die behandelten Zellen
konnten zu einer wäßrigen Paste verarbeitet werden, die in Wasser nicht dispergierbar war, wodurch eine
wesentliche Verbesserung der funktioneilen Eigenschaften ersichtlich ist.
Frische Torulahefe (Candida utilis) wurde durch Zentrifugieren zu einer Aufschlämmung mit einem
Gehalt von 10 Gew.-% (Trockenbasis) konzentriert. Eine 10 ml Probe ohne Zusatz und eine 10 ml Probe mit
einem ml Ammoniak (30%) wurden 30 Minuten in einem siedenden Wasserbad erhitzt. (Die pH-Werte der
Proben betrugen 6,1 bzw. 9,2.) Die Zellenaufschlämmungen wurden dann abgekühlt und zentrifugiert. Die
Rückstände wurden zweimal in 10 ml destilliertem Wasser suspendiert und erneut zentrifugiert. Die
«ι überstehenden Flüssigkeiten wurden für jede Probe
vereinigt und die Nucleinsäuregehalte der vereinigten überstehenden Flüssigkeiten wurden bestimmt und die
Mengen der Nucleinsäuren, die aus den Zellen ausgetreten waren, wurden berechnet. Die frischen
π Zellen aus der Fermentiereinrichtung enthielten etwa 9,5% Nucleinsäure, bezogen auf ihr Trockengewicht.
Das Austreten aus der Probe, die nicht mit einem Additiv versetzt wurde, entsprach 3,4% des ursprünglichen
Zellemrockengewichtes, während die Probe, die mit Ammoniak versetzt worden war, einen Nucleinsäureverlust
aufwies, der 8,1% des ursprünglichen Zellentrockengewichts entsprach. Die entsprechenden Nucleinsäuregehalte
der behandelten Hefeproben betrugen demzufolge 6,1 bzw. 1,4 Gew.-%.
Claims (8)
1. Verfahren zur Verbesserung der Nähreigenschaften und der funkLonellen Eigenschaften von
Einzelzellenproteinmaterial, dadurch gekennzeichnet, daß man eine wäßrige Aufschlämmung
von 5 bis 15 Gew.-% eines Einzslzellenproteinmaterials mit wäßrigem Ammoniak auf einen pH-Wert
im Bereich von 9,0 bis 10,5 einstellt, bei Eigendampfdruck auf eine Temperatur im Bereich von 90 bis
125°C erhitzt, während 5 bis 60 Minuten auf der erhöhten Temperatur hält, zentrifugiert, die hierbei
erhaltene Sedimentphase aus Einzelzellenproteinmaterial mit einem verminderten Gehalt an
Nucleinsäuren mit Wasser wäscht und schließlich das gewaschene Einzelzellenproteinmaterial mit
vermindertem Nucleinsäuregehalt trocknet
2. Verfahren gemäß Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß man eine Aufschlämmung von 10
Gew.-% Einzelzellenproteinmaterial einsetzt und den pH-Wert der Aufschlämmung mit 30%igem
wäßrigem Ammoniak auf einen Bereich von 94 bis 103 einstellt
3. Verfahren gemäß Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß man eine Temperatur im Bereich von
90 bis 100° C während 20 bis 60 Minuten einhält
4. Verfahren gemäß Anspruch 3, dadurch gekennzeichnet, daß man eine Temperatur von 1000C
während 30 Minuten einhält
5. Verfahren gemäß Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß man eine Temperatur im Bereich von
115 bis etwa 1250C während 5 bis 15 Minuten
einhält
6. Verfahren gemäß Anspruch 5, dadurch gekennzeichnet, daß man eine Temperatur von 120" C
während 10 Minuten einhält
7. Verfahren gemäß Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß man als Einzelzellenproteinmaterial
Bakterien oder Hefen einsetzt
8. Verfahren gemäß Anspruch 7, dadurch gekennzeichnet, daß man als Hefen Saccharomyces
cerevisiae, Saccharomyces carlsbergensis, Saccharomyces fragilis oder Candida utilis einsetzt
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
US9494170A | 1970-12-03 | 1970-12-03 |
Publications (3)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
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