CN118272257A - 一种萎缩芽孢杆菌bgb-s1及其在大姜连作障碍土壤修复中的应用 - Google Patents
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Abstract
本申请涉及微生物及其应用的技术领域，具体公开了一种萎缩芽孢杆菌BGB‑S1及其在大姜连作障碍土壤修复中的应用。本申请的萎缩芽孢杆菌BGB‑S1于2023年12月21日保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心，保藏编号为CGMCC No.29366；本申请还提供了利用萎缩芽孢杆菌BGB‑S1制得的发酵物、菌悬液、菌粉和菌剂，以及上述菌剂在大姜栽培试验中的应用。本申请的萎缩芽孢杆菌BGB‑S1对疫霉菌、腐霉菌、大姜镰孢菌及灰霉菌具有显著的抑制作用，能有效防治大姜的茎基腐、姜瘟病、软腐病，促进大姜生长，提高大姜产量；此外，本申请的萎缩芽孢杆菌BGB‑S1对大姜连作障碍土壤还具有很好的改良作用。
Description
技术领域
本申请涉及微生物及其应用的技术领域，具体涉及一种萎缩芽孢杆菌BGB-S1及其在大姜连作障碍土壤修复中的应用。
背景技术
大姜又称为生姜，在我国作为一年生经济作物，是我国特产的重要蔬菜品种。大姜具有防氧化、抗衰老的作用。近些年，随着大姜重茬种植的频率越来越高，大姜的病害越来越严重，特别是茎基腐、姜瘟病、软腐病等土传病害，给种植农户带来了巨大的经济损失，严重制约了大姜产业的发展。
目前，针对大姜的病害的防治措施主要包括倒茬轮作、农药防治及生物防治；其中，倒茬轮作是指通过交替种植大姜与其他作物，从而减少病虫害，但是该方法的整地成本与人工成本较大，并且需要较大的种植面积，还可能面临无地可种的问题，因此该方法无法大范围推广使用；农药防治是采用化学农药防治大姜病害，然而农药防治会给土壤造成一定的破坏，同时也会大大影响大姜的产量；生物防治是指在植物种植过程中施用微生物菌剂，从而实现对病原菌的抑制；然而目前市面上的微生物菌剂对大姜病原菌的抑制效果并不理想，无法达到预期的防治效果。
发明内容
为了克服目前大姜病害防治中存在的缺陷，提高大姜的质量与产量，本申请提供一种萎缩芽孢杆菌BGB-S1及其在大姜连作障碍土壤修复中的应用。
第一方面，本申请提供一种萎缩芽孢杆菌，采用如下的技术方案：
一种萎缩芽孢杆菌，所述萎缩芽孢杆菌为萎缩芽孢杆菌（Bacillus atrophaeu）BGB-S1；保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心（CGMCC），保藏编号为CGMCC No.29366，保藏时间为2023年12月21日。
本申请的萎缩芽孢杆菌BGB-S1是从甘肃省陇南市武都区马街镇姜家山村（东经104°55′49″，北纬33°26′22″）大姜连作区域中的非连作障碍区域土壤中分离获得。通过试验探究发现，本申请提供的萎缩芽孢杆菌BGB-S1对大姜的茎基腐、姜瘟病和软腐病具有很好的防治作用，从而能够缓解大重茬种植过程中的连作障碍问题，促进大姜植株正常生长；此外，本申请提供的萎缩芽孢杆菌不会对人体与环境造成危害，并且还能够改善土壤的微生物群落，丰富土壤的菌群多样性，进一步提高大姜产量，具有很好的应用前景。
本申请中，萎缩芽孢杆菌BGB-S1的菌株呈杆状、圆端，多数为单个、少数成对或链状排列，细胞壁为革兰阳性结构；最佳生长温度为28-32℃，最高生长温度为37℃，最低生长温度为18℃，需氧或兼性厌氧，在营养琼脂培养基28℃培养20h的菌落表面粗糙不透明，污白色，边缘形成皱醭，挑取为粘稠状或冻状，如图1。
本申请中，萎缩芽孢杆菌BGB-S1的分离、筛选方法，包括以下步骤：
（1）取样：从甘肃省陇南市武都区马街镇姜家山村（东经104°55′49″，北纬33°26′22″大姜连作区域中的非连作障碍区域采集土样；取上述土壤10g，于无菌条件下加入到预先灭菌的盛有100mL生理盐水的三角瓶中，28℃、160rpm条件下充分振荡30min后，然后静置1.5-2.5h，取上清液；
（2）培养：按浓度梯度将上清液分别稀释至10-2、10-3、10-4、10-5，然后分别吸取每个梯度浓度的稀释液各100μL涂布于营养琼脂培养基中进行涂布平板，待液体吸尽，30℃倒置培养15-30h。
（2）纯化：于平板上挑取单克隆，根据板上微生物形态，挑取不同菌落划线分离纯化（按照上述培养条件培养）2-3次，直至菌落单一，保存、备用。
对上述菌株进行16S rDNA序列测序，其16S rDNA的序列如SEQ ID NO.1所示；从NCBI(GenBank) 数据库中获取参比菌株序列，运用软件 BioEdit 和 MEGA11 对分离菌株和参比菌株的16SrDNA 序列进行分析，构建分离菌株与参比菌株的***发育树，如图2所示；经过鉴定，判定该菌株为萎缩芽孢杆菌（Bacillus atrophaeu），并将其命名为萎缩芽孢杆菌BGB-S1。
第二方面，本申请提供一种培养物，所述培养物包括所述萎缩芽孢杆菌BGB-S1。
第二方面，本申请提供一种发酵物，所述培养物包括所述萎缩芽孢杆菌BGB-S1。
第四方面，本申请提供一种菌悬液，所述菌悬液包括所述萎缩芽孢杆菌BGB-S1。
第五方面，本申请提供一种菌粉，所述菌粉包括所述萎缩芽孢杆菌BGB-S1。
第六方面，本申请提供一种菌剂，所述菌剂包括所述萎缩芽孢杆菌BGB-S1。
可选地，所述菌剂中还包括载体，所述载体选自加益粉和硅藻土；所述菌剂中萎缩芽孢杆菌的活菌数≥2亿CFU/g。
一种菌剂的制备方法，包括以下步骤：利用液体发酵罐对萎缩芽孢杆菌BGB-S1进行发酵培养，发酵培养结束后，获得发酵物；通过对发酵液进行离心，获得上清液与沉淀物；通过对沉淀物进行重悬，获得菌悬液；然后向上清液或菌悬液中加入保护剂，经干燥，获得菌粉；向所述菌粉中加入载体，获得菌剂。
第七方面，本申请提供一种萎缩芽孢杆菌、培养物、发酵物、菌悬液、菌粉或菌剂在病原菌防治、大姜连作障碍土壤修复与促进植物生长中的应用。
可选地，所述病原菌包括疫霉菌、腐霉菌镰刀菌、镰孢菌和灰霉菌。
本申请通过试验探究发现，萎缩芽孢杆菌BGB-S1对疫霉菌、腐霉菌、镰刀菌和灰霉菌具有很好的抑制作用。由于生姜茎基腐病主要由疫霉菌、腐霉菌等真菌与少量细菌复合侵染引起。因此，将本申请提供的含有萎缩芽孢杆菌BGB-S1的菌剂施加至具有连作障碍的大姜种植土壤中，能够使大姜的茎基腐、姜瘟病、软腐病得到明显改善，大姜的产量显著提高。
第七方面，本申请提供一种大姜的栽培方法，采用了所述菌剂，所述菌剂在大姜种植土壤中的添加量为5-10kg/亩。
可选地，所述菌剂采用冲施的方式施加至大姜种植土壤中。
在一些实施方案中，所述菌剂在大姜种植土壤中的添加量可以为5-6kg/亩、5-8kg/亩、5-9kg/亩、5-10kg/亩、-8kg/亩、6-9kg/亩、6-10kg/亩、8-9kg/亩、8-10kg/亩、或9-10kg/亩。
在一个具体的实施方案中，所述菌剂在大姜种植土壤中的添加量还可以为5kg/亩、6kg/亩、8kg/亩、9kg/亩或10kg/亩。综上所述，本申请具有以下有益效果：
1. 本申请提供一种萎缩芽孢杆菌（Bacillus atrophaeu）BGB-S1，保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心（CGMCC），保藏编号为CGMCC No.29366，保藏时间为2023年12月21日。
2. 本申请提供的萎缩芽孢杆菌BGB-S1对疫霉菌、腐霉菌、镰刀菌和灰霉菌等病原菌具有很好的抑制作用，能够改良大姜连作障碍土壤，缓解大姜的茎基腐、姜瘟病、软腐病等，促进大姜植株及根系生长，进而提高大姜的产量。
3. 本申请提供的萎缩芽孢杆菌BGB-S1可在液体发酵罐中正常培养，安全且满足常规生产工艺需求，能够适合工业化生产，在活化土壤养分、促进作物生长、减少作物病害发病率及缓解大姜土壤连作障碍上具有显著的效果，在农业健康安全种植方面具有较大的应用潜力。
附图说明
图1为分离菌株的镜检观察结果（1000×）（其中，A为分离菌株培养15h的结果-对数生长期；B为分离菌株培养40h的结果-产孢期）。
图2为分离菌株在营养琼脂培养基上的生长状态。
图3为分离菌株的***发育树。
图4为体现菌种BGB-S1对大姜的促生作用（其中，A为示范区1-3；B为对照区1-2）。
图5为体现菌种BGB-S1对连作障碍的改良作用（其中，A为示范区2-1；B为对照区2-2）。
具体实施方式
本申请提供一种萎缩芽孢杆菌（Bacillus atrophaeu）BGB-S1；保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心（CGMCC），保藏编号为CGMCC No.29366，保藏时间为2023年12月21日。
上述萎缩芽孢杆菌的分离、筛选方法，包括以下步骤：
（1）取样：从甘肃省陇南市武都区马街镇姜家山村（东经104°55′49″，北纬33°26′22″大姜连作地区非连作障碍区域采集土样；取上述土壤10g，于无菌条件下加入到预先灭菌的盛有100mL生理盐水的三角瓶中，28℃、160rpm条件下充分振荡30min后，然后静置1.5-2.5h，取上清液；
（2）培养：按浓度梯度将上清液分别稀释至10-2、10-3、10-4、10-5，然后分别吸取每个梯度浓度的稀释液各100μL涂布于营养琼脂培养基中进行涂布平板，待液体吸尽，30℃倒置培养15-30h。
（3）划线纯化：于平板上挑取单克隆，根据板上微生物形态，挑取不同菌落划线分离纯化（按照上述培养条件培养）2-3次，直至菌落单一，编号，保存、备用。
本申请还提供了包含上述萎缩芽孢杆菌的培养物、发酵物、菌悬液、菌剂或菌粉，以及其在病原菌防治、大姜连作障碍土壤修复与促进植物生长中的应用。
本申请中所用到的培养基来源、配方或制备方法如下：
（1）营养液体培养基：称取蛋白胨10g、牛肉膏5g、NaCl 10g，溶于1L纯水中，pH：6.8-7.5。
（2）营养琼脂培养基：称取蛋白胨10g、牛肉膏5g、NaCl 10g、琼脂 20g，溶于1L纯水中，pH：6.8-7.5。
（3）PDA培养基：称取去皮新鲜土豆200g，将土豆切小块并煮沸，用纱布过滤土豆残渣，将滤液重新加热，加入琼脂并持续搅拌直至溶解，加入葡萄糖20g、琼脂15g，溶于1L纯水中，pH：6.8-7.5。
（4）发酵罐发酵培养基：酵母浸出粉5-15g/L、糖蜜10-20g/L、玉米蛋白粉1-10g/L、K2HPO40.2-0.8g/L、MgSO4·7H2O 0.1-0.9g/L、NaCl 0.2-0.5g/L、CaCO32-8g/L、消泡剂0.5-2g/L，溶剂为纯水。
本申请实施例中所使用的试剂、溶剂和其他实验材料均可通过商购获得。
本申请中所用到的仪器设备：培养箱（上海精宏-DHG-9030A）、低速离心机（四川蜀科-DD5000）、振荡培养箱（上海知楚-ZQZY-78BV）、pH计（上海雷磁PHS-3E）、紫外可见分光光度计（青岛-聚创UV759CRT）、液体发酵罐***（上海国强生化工程装备有限公司-FUS-50L-300L）、喷雾干燥机（上海豫明仪器有限公司-YM-5L）。
为使本申请的目的、技术方案和优点更加清楚，下面将结合附图对本申请实施例中的技术方案进行清楚、完整地描述。基于本申请的实施例，本领域技术人员在没有做出创造性劳动的前提下所获得的所有其他实施例，都属于本申请保护的范围。
以下结合实施例、说明书附图以及性能检测试验对本申请作进一步详细说明。
实施例
实施例1
菌株的分离、筛选
实施例1提供了一种新菌株的分离、筛选过程。具体如下：
（1）取样：从甘肃省陇南市武都区马街镇姜家山村（东经104°55′49″，北纬33°26′22″大姜连作地区中的非连作障碍区域采集土样；取上述土壤10g，于无菌条件下加入到预先灭菌的盛有100mL生理盐水的三角瓶中，28℃、160rpm条件下充分振荡30min后，然后静置1.5-2.5h，取上清液。
（2）培养：按浓度梯度将上清液分别稀释至10-2、10-3、10-4、10-5，然后分别吸取每个梯度浓度的稀释液各100μL涂布于营养琼脂培养基中进行涂布平板，待液体吸尽，30℃倒置培养20h。
（3）划线纯化：于平板上挑取单克隆，根据板上微生物形态，挑取不同菌落划线分离纯化（按照上述培养条件培养）2-3次，直至菌落单一，保存、备用。
实施例2
菌株的鉴定
（一）形态学特征
利用显微镜观察实施例1分离、纯化的菌种，在显微镜下观察，结果如图1所示。
观察结果显示，实施例1获得的菌株呈杆状、圆端，多数为单个、少数成对或链状排列，细胞壁为革兰阳性结构；经检测，该菌株的最佳生长温度为28-32℃，最高生长温度为35℃，最低生长温度为18℃，需氧或兼性厌氧。将实施例1获得的菌株在营养琼脂培养基28℃培养20h的菌落表面粗糙不透明，污白色，边缘形成皱醭，挑取为粘稠状或冻状，如图2所示。
上述结果可知，该菌株的特征与芽孢杆菌菌属的特征接近，在显微镜下进行观察（×1000）如图1，因此可以初步判定该菌株为芽孢杆菌。
（二）16SrDNA序列测序
为鉴定实施例1获得的菌株的***发育地位，对该菌株进行PCR扩增以及16S rDNA测序。
实施例1获得的菌株的16SrDNA序列，如SEQ ID NO.1所示。从NCBI（GenBank）数据库中获取9个参比菌株序列，运用软件BioEdit和MEGA11对分离菌株的16S rDNA序列和参比菌株的16S rDNA序列进行分析，构建分离菌株与参比菌株的***发育树，如图3所示。通过***发育树可知，实施例1的分离菌株和萎缩芽孢杆菌（Bacillus atrophaeus）表现的亲缘关系最近，可信度为100%。基于16S rDNA***发育树，确定实施例1分离筛选获得的菌株为萎缩芽孢杆菌（Bacillus atrophaeus），并将其命名为萎缩芽孢杆菌BGB-S1。将该菌株保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心（CGMCC），保藏编号为CGMCC No.29366，保藏时间为2023年12月21日。
实施例3
实施例3提供一种萎缩芽孢杆菌BGB-S1的发酵液。
上述发酵液制备方法具体如下：
（1）将萎缩芽孢杆菌BGB-S1进行活化，并转接于营养液体培养基中，于30℃的温度下培养20h，获得萎缩芽孢杆菌BGB-S1的发酵种子液。
（2）将发酵罐发酵培养基加入发酵罐中，灭菌前，将发酵液pH值调整为7.0±0.4。发酵开始，调节溶氧量为0.6-1.2vvm，温度为30℃，转速180-250rpm，接入体积为总发酵0.5％的发酵种子液，开始发酵。前期发酵液溶氧自然下降，15-20h后控制溶氧在30-50％。待发酵开始生长30-40h时，以80-150g/h流速流加质量百分数为20-35％的无菌葡萄糖溶液，总的补糖浓度约40-50g/L，pH值和溶氧量达到最低点，发酵持续进行，待40-55h芽孢逐渐形成，芽孢逐渐成型时，缓慢降低溶氧量，溶氧量保持在40％-50％。45-55h左右镜检，孢子量达到90％以上时，发酵完成，下罐，此时得到发酵液，冷藏，保存备用。
实施例4
实施例4提供一种萎缩芽孢杆菌BGB-S1的发酵上清液。
上述发酵上清液的制备方法如下：将实施例3获得的发酵液进行离心，转速为5000r/min，离心完毕，获得上清液与沉淀物，该上清液即为发酵上清液。
实施例5
实施例5提供了一种萎缩芽孢杆菌BGB-S1的菌悬液。
上述菌悬液的制备方法如下：将实施例4获得的沉淀物用生理盐水或纯水重悬，即得到菌悬液。
实施例6
实施例6提供了一种萎缩芽孢杆菌BGB-S1的菌粉。
上述菌粉的制备方法具体如下：
向实施例5获得的菌悬液中加入质量分数为20%的保护剂（保护剂为质量比为5：4.5：1的糊精、无水硫酸钠、偏重亚硫酸钠的混合物），并回补菌浆质量70%的发酵上清液，均匀混合，于喷雾干燥机中喷雾干燥（进风温度235℃，出风温度88℃），获得菌含量为2000亿/g的菌粉，保存，待用。
实施例7
实施例7提供一种萎缩芽孢杆菌BGB-S1的菌剂。
上述菌剂的制备方法具体如下：
将菌粉与载体按照1:1000的重量比混合，搅拌均匀，获得菌含量为2亿cfu/g的菌剂；其中，所述载体为重量比为2:8的加益粉和硅藻土。
性能检测试验
（一）病原菌拮抗试验
对萎缩芽孢杆菌BGB-S1进行病原菌拮抗试验，试验过程如下：
（1）待测菌株：将-80℃萎缩芽孢杆菌BGB-S1在营养琼脂培养基中进行活化，在30℃条件下培养48h，得到萎缩芽孢杆菌BGB-S1菌板，备用。
病原菌：将-80℃保存的疫霉菌、腐霉菌、镰孢菌和灰霉菌分别接种于PDA培养基平板上，置于30℃的恒温培养箱中培养3-7d，得到病原菌菌板，备用。
（2）将培养好的萎缩芽孢杆菌BGB-S1的营养琼脂培养基平板打孔，取直径5mm圆形菌饼接种到新的PDA培养基平板距离平板中心2 .5cm的位置。同理，将培养好的疫霉菌、腐霉菌、镰孢菌和灰霉菌的PDA培养基平板打孔，取直径5mm圆形菌饼分别接种到新的PDA培养基平板距离平板中心2.5cm的位置，作为处理组。新的PDA培养基平板中的病原菌和萎缩芽孢杆菌BGB-S1的位置对称。同时，以接种疫霉菌、腐霉菌、镰孢菌和灰霉菌的PDA培养基平板作为对照组。置于30℃的恒温培养箱中培养至病原菌长满整个平板，观察抑菌效果，计算抑菌率。抑菌率的计算公式如下：
抑菌率=（Rp-Rt）/Rp×100%
其中，Rp表示对照组病原菌菌丝生长的半径，Rt表示处理组病原菌菌丝生长的半径（近萎缩芽孢杆菌BGB-S1的一侧）。
（3）试验结果如表1所示。
表1 萎缩芽孢杆菌BGB-S1对病原菌的拮抗效果
根据表1的检测结果可知，萎缩芽孢杆菌BGB-S1对疫霉菌的抑菌率为54.84%，对腐霉菌的抑菌率为67.49%，对镰孢菌的抑菌率为61.33%，对灰霉菌的抑菌率为63.37%。因此，说明本申请提供的萎缩芽孢杆菌BGB-S1对病原菌疫霉菌、腐霉菌、镰孢菌和灰霉菌均具有显著的抑制效果。
（二）大姜种植试验
考察对本申请提供的萎缩芽孢杆菌BGB-S1对大姜植株的抗病害、促生和连作障碍防治效果，具体试验过程如下：
（1）于2023年3月，在河北省石家庄市无极县罗尚村选取2块试验田（命名为试验田一和试验田二），试验田一为普通病害土壤，试验田二为连作障碍较为严重的土壤，分别在试验田中种植供试作物大姜，并设对照试验，然后正常田间管理。
（2）于2023年5月15日，从实验田一中划出7块面积相等的区域，每块区域0.5亩；其中5块作为示范区（编号为：示范区1-1、示范区1-2、示范区1-3、示范区1-4、示范区1-5），2块作为对照区（编号为：对照区1-1对照区1-2）。然后向示范区分别冲施实施例7提供的萎缩芽孢杆菌BGB-S1菌剂，5块示范区的区别在于，菌剂的施加量分别为：5kg/亩、6kg/亩、8kg/亩、9kg/亩、10kg/亩；对照区1-1冲施市售微生物菌肥8kg/亩（包含枯草芽孢杆菌，有效活菌数为2亿CFU/g）；对照区1-2不进行任何施肥处理。
（3）同理，在试验田二，划归出3块面积相等的区域，每块区域0.5亩；其中1块作为示范区（编号为：示范区2-1），另2块作为对照区（编号为：对照区2-1、对照区2-2）。然后向示范区2-1冲施实施例7提供的萎缩芽孢杆菌BGB-S1菌剂8kg/亩；对照区2-1冲施市售微生物菌肥8kg/亩（包含枯草芽孢杆菌，有效活菌数为2亿CFU/g）；对照区2-2仅冲施保护剂和载体的混合物8 kg/亩（保护剂和载体的重量比为1：1000）。
（4）上述两个试验田块于2023年6月25日，测量各区域大姜植株的株高、头芽茎粗，计算平均值，结果如下表2，表3所示。
（5）上述两个试验田块于2023年8月18日，对各试验区域的大姜植株进行观察，是否出现茎秆枯萎、干叶、茎基腐病死苗等病株现象，统计各区域的病株数量。观察大姜根系的纤维根数量及大姜膨大效果，结果如下表2与表3所示。
表2 试验田一中BGB-S1菌剂对大姜的抗病害和促生效果的考察结果
根据表2的检测结果可知，对照区1-1和对照区1-2的大姜植株出现大量的枯萎干叶、茎基腐病死苗现象，而示范区1-1~示范区1-5的大姜植株的长势旺、叶绿、无茎基腐病。因此，说明本申请提供萎缩芽孢杆菌BGB-S1可以抑制大姜茎基腐病的发生，并且还能够改良土壤、促进大姜植株及根系生长，进而提高大姜的产量。
进一步对比发现，示范区随着大姜种植土壤中施加菌剂量的增加，大姜植株的株高与径粗呈现先增大后减小的趋势。尤其是示范区1-2~示范区1-4获得的大姜株高能够达到70cm以上，头牙茎粗达到12mm以上。因此，说明本申请进一步将菌剂在大姜种植土壤中的添加量控制在6-9kg/亩的范围内，能够保证低成本的情况下，获得更高质量与产量的大姜。
表3试验田二中BGB-S1菌剂对大姜连作障碍防治效果的考察结果
根据表3的检测结果可知，示范区2-1的大姜长势明显优于对照区2-1与对照区2-2，说明本申请提供的萎缩芽孢杆菌BGB-S1菌剂能够有效防治大姜的连作障碍问题，有效促进大姜的植株与根系生长。
虽然，上文中已经用一般性说明及具体实施方案对本发明作了详尽的描述，但在本发明基础上，可以对之作一些修改或改进，这对本领域技术人员而言是显而易见的。因此，在不偏离本发明精神的基础上所做的这些修改或改进，均属于本发明要求保护的范围。
Claims (10)
1. 一种萎缩芽孢杆菌，其特征在于，所述萎缩芽孢杆菌为萎缩芽孢杆菌（Bacillus atrophaeu）BGB-S1；保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心（CGMCC），保藏编号为CGMCC No.29366，保藏时间为2023年12月21日。
2.一种培养物，其特征在于，所述培养物包括权利要求1所述的萎缩芽孢杆菌BGB-S1。
3.一种发酵物，其特征在于，所述发酵物包括权利要求1所述的萎缩芽孢杆菌BGB-S1。
4.一种菌悬液，其特征在于，所述菌悬液包括权利要求1所述的萎缩芽孢杆菌BGB-S1。
5.一种菌粉，其特征在于，所述菌粉包括权利要求1所述的萎缩芽孢杆菌BGB-S1。
6.一种菌剂，其特征在于，所述菌剂包括权利要求1所述的萎缩芽孢杆菌BGB-S1。
7.根据权利要求6所述的菌剂，其特征在于，所述菌剂中还包括载体，所述载体选自加益粉和硅藻土；所述菌剂中萎缩芽孢杆菌的活菌数≥2亿CFU/g。
8.如权利要求1所述的萎缩芽孢杆菌、权利要求2所述的培养物、权利要求3所述的发酵物、权利要求4所述的菌悬液、权利要求5所述的菌粉、权利要求6或7所述的菌剂在病原菌防治、大姜连作障碍土壤修复与促进植物生长中的应用。
9.根据权利要求8所述的应用，其特征在于，所述病原菌包括疫霉菌、腐霉菌、镰孢菌和灰霉菌。
10.一种大姜的栽培方法，其特征在于，采用了权利要求7所述的菌剂，所述菌剂在大姜种植土壤中的添加量为5-10kg/亩。
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