CN114507264A - 金丝***的提取单体***素a及其提取方法和应用 - Google Patents

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CN114507264A CN202210009896.4A CN202210009896A CN114507264A CN 114507264 A CN114507264 A CN 114507264A CN 202210009896 A CN202210009896 A CN 202210009896A CN 114507264 A CN114507264 A CN 114507264A
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Abstract

本发明涉及中药技术,公开了一种金丝***的提取单体***素A及其提取方法和应用。本发明提供的金丝***的提取单体***素A如式(I)所示,具体的提取方法包括以下步骤:将金丝黄菊花经干燥、粉碎后,与提取溶剂I混合进行提取得到提取液,将所述提取液浓缩后得到提取浸膏;将所述提取浸膏依次经石油醚、乙酸乙酯和正丁醇萃取后进行浓缩得到石油醚浸膏、乙酸乙酯浸膏和正丁醇浸膏;将所述乙酸乙酯浸膏进行梯度洗脱分离I得到组分Fr.1‑Fr.M,将所述组分Fr.7进行梯度洗脱分离II得到组分Fr.7.1‑Fr.7.N,然后将所述组分Fr.7.4进行梯度洗脱分离III得到组分Fr.7.4.1‑Fr.7.4.Q,将所述组分Fr.7.4.8过半制备高效液相分离。***素A具有良好的抗氧化能力和保肝活性。
Figure DDA0003458615490000011

Description

金丝***的提取单体***素A及其提取方法和应用
技术领域
本发明涉及中药技术,具体涉及一种金丝***的提取单体***素A及其提取方法和应用。
背景技术
菊花为菊科植物菊花的干状头状花序,是我国的传统名花,其集观赏、食用和保健于一身,具有巨大的开发利用价值。《神农本草经》记载菊花“久服利血气,轻身耐老延年”,药典记载其性凉、味甘、苦,微寒,有散风清热、平肝明目、清热解毒的作用。
金丝***属于菊花的一种,发源于位于江西西北部奉新县,不仅具有很好的观赏价值,而且气味芬芳,属药、茶两用佳品,更因其个大形美、口感清香甘甜被誉为菊花中的上品。金丝***中黄酮素的含量极高,且富含多种氨基酸、维生素和微量元素,具有“香、甜、润”三大特点,还有散风热、清肝明目等功效,深受消费者的青睐。
肝脏是人体消化***中最大的消化腺,也是新陈代谢的重要器官,肝脏对来自体内和体外的许多非营养性物质如各种药物、毒物以及体内某些代谢产物,具有生物转化作用;通过新陈代谢将它们彻底分解或以原形排出体外。因此,肝脏在人的代谢、消化、解毒、凝血、免疫调节等方面均起着非常重要的作用。随着生活压力的增加和环境污染的加重,肝炎、肝硬化、肝脓肿、原发性肝癌等肝脏相关的疾病正侵蚀着人类的身体健康。经文献检索,迄今尚未见有金丝***提取物用于肝脏相关疾病或者在保肝、护肝方面的报道。
发明内容
本发明的目的是为了克服现有技术存在的问题,提供一种金丝***的提取单体***素A及其提取方法和应用,该***素A具有良好的抗氧化能力和保肝活性。
为了实现上述目的,本发明第一方面提供一种金丝***的提取单体***素A,所述***素A的结构式如式(I)所示:
Figure BDA0003458615470000021
本发明第二方面提供一种金丝***的提取单体***素A的提取方法,包括以下步骤:
(1)将金丝黄菊花经干燥、粉碎后,与提取溶剂I混合进行提取得到提取液,将所述提取液浓缩后得到提取浸膏;
(2)将所述提取浸膏依次经石油醚、乙酸乙酯和正丁醇萃取后进行浓缩得到石油醚浸膏、乙酸乙酯浸膏和正丁醇浸膏;
(3)将所述乙酸乙酯浸膏进行梯度洗脱分离I得到组分Fr.1-Fr.M,将所述组分Fr.7进行梯度洗脱分离II得到组分Fr.7.1-Fr.7.N,然后将所述组分Fr.7.4进行梯度洗脱分离III得到组分Fr.7.4.1-Fr.7.4.Q,将所述组分Fr.7.4.8过半制备高效液相分离得到如式(I)所示的***素A;
其中,M≥11,N≥8,Q≥9,
Figure BDA0003458615470000022
优选地,步骤(1)中所述提取溶剂I为乙醇-水溶液。
优选地,所述提取溶剂I中乙醇与水的体积比为10-20:1。
优选地,所述提取的次数为2-3次,每次所述提取的过程中所述提取溶剂I与所述金丝黄菊花的质量比为3-8:1、时间为4-6天。
优选地,步骤(2)中所述石油醚、所述乙酸乙酯和所述正丁醇各自与所述提取浸膏的质量比为3-8:1。
优选地,步骤(3)中所述梯度洗脱分离I的过程包括:将所述乙酸乙酯浸膏装样硅胶柱,然后用洗脱剂I进行梯度洗脱,再经点板合并得到所述组分Fr.1-Fr.M。
优选地,所述洗脱剂I为二氯甲烷-甲醇溶液。
优选地,所述梯度洗脱中二氯甲烷与甲醇的体积比依次为100:1,50:1,20:1,10:1,5:1,2:1,1:1,0:1。
优选地,步骤(3)中所述梯度洗脱分离II的过程包括:将所述组分Fr.7过反相柱,用洗脱剂II进行梯度洗脱,再经点板合并得到所述组分Fr.7.1-Fr.7.N。
优选地,所述洗脱剂II为甲醇-水溶液。
优选地,所述梯度洗脱中甲醇-水的体积比依次为0:1,1:9,2:8,3:7,4:6,5:5,6:4,7:3,8:2,9:1,1:0。
优选地,步骤(3)中所述梯度洗脱分离III的过程包括:将所述组分Fr.7.4过硅胶柱,用洗脱剂III进行梯度洗脱得到所述组分Fr.7.4.1-Fr.7.4.Q。
优选地,所述洗脱剂III为石油醚-乙酸乙酯溶液。
优选地,所述梯度洗脱中石油醚与乙酸乙酯的体积比依次为5:1,4:1,3:1,2:1,1:1,0:1。
优选地,所述半制备高效液相分离的流速为2-4mL/min。
本发明第三方面提供上述的金丝***的提取单体***素A在制备抗氧化药物中的应用。
本发明第四方面提供上述的金丝***的提取单体***素A在制备保肝药物中的应用。
通过上述技术方案,本发明的有益效果为:
本发明采用多次硅胶柱梯度洗脱和半制备高效液相分离技术,从金丝***花中分离、纯化得到一种新的单体化合物——***素A,并利用现代波谱方法确定***素A的结构,鉴定为1'-O-苯甲基-4'-O-E-咖啡酰基-β-D-葡萄糖苷(1'-O-benzyl-4'-O-E-caffeoyl-β-D-glucopyranoside);经ABTS+自由基清除活性筛选和保肝活性筛选,发现***素A具有良好的抗氧化能力和保肝能力,对人肝癌细胞HepG2的增殖具有促进作用。
有关本发明的其他优点以及优选实施方式的技术效果,将在下文的具体实施方式中进一步说明。
附图说明
图1是实施例1中组分JS-2-119-36的HR-ESI-MS谱图;
图2是实施例1中组分JS-2-119-36的IR谱图;
图3是实施例1中组分JS-2-119-36的1H-NMR谱图;
图4是实施例1中组分JS-2-119-36的13C-NMR谱图;
图5是实施例1中组分JS-2-119-36的Dept谱图;
图6是实施例1中组分JS-2-119-36的HSQC谱图;
图7是实施例1中组分JS-2-119-36的HMBC谱图;
图8是实施例1中组分JS-2-119-36的1H-1H COSY谱图;
图9是实施例1中D-葡萄糖衍生物的HPLC谱图;
图10是实施例1中L-葡萄糖衍生物的HPLC谱图;
图11是实施例1中组分JS-2-119-36的酸水解衍生物的HPLC谱图。
具体实施方式
在本文中所披露的范围的端点和任何值都不限于该精确的范围或值,这些范围或值应当理解为包含接近这些范围或值的值。对于数值范围来说,各个范围的端点值之间、各个范围的端点值和单独的点值之间,以及单独的点值之间可以彼此组合而得到一个或多个新的数值范围,这些数值范围应被视为在本文中具体公开。
本发明第一方面提供一种金丝***的提取单体***素A,所述***素A的结构式如式(I)所示:
Figure BDA0003458615470000051
本发明提供的金丝***的提取单体——***素A为浅黄色固体,薄层色谱(TLC)在254nm紫外下有荧光;高分辨电喷雾质谱(HR-ESI-MS):m/z 455.1314[M+Na]+(计算值C22H24O9Na+,455.1318),确定其分子式为C22H24O9,不饱和度为11;红外谱图(IR谱图)显示该化合物含有羟基(3361cm-1),烯烃(1676cm-1)和芳香烃(699cm-1)等基团。
***素A的核磁共振谱图特征为:
1H-NMR(600MHz,CD3OD):δH7.60(1H,d,J=15.6Hz,H-7”),7.44(2H,dd,J=7.8Hz,H-2,6),7.34(2H,t,J=7.8Hz,H-3,5),7.28(1H,t,J=7.8Hz,H-4),7.05(1H,d,J=1.8Hz,H-2”),6.96(1H,dd,J=8.4,1.8Hz,H-6”),6.78(1H,d,J=8.4Hz,H-5”),6.30(1H,d,J=15.6Hz,H-8”),4.96(1H,d,J=12.0Hz,H-7a),4.86(1H,m,H-4'),4.70(1H,d,J=12.0Hz,H-7b),4.43(1H,d,J=7.8Hz,H-1'),3.64(1H,m,H-6'a),3.62(1H,m,H-3'),3.58(1H,m,H-6'b),3.51(1H,m,H-5'),3.37(1H,m,H-2')。
13C-NMR(150MHz,CD3OD):δC 168.6(C-9”),149.7(C-4”),147.6(C-7”),146.9(C-3”),139.0(C-1),129.3(C-3,5),129.2(C-2,6),128.7(C-4),127.7(C-1”),123.1(C-6”),116.5(C-5”),115.2(C-2”),114.7(C-8”),103.3(C-1'),76.2(C-5'),75.8(C-3'),75.3C-2'),72.6(C-4'),62.6(C-6')。
本发明第二方面提供一种金丝***的提取单体***素A的提取方法,包括以下步骤:
(1)将金丝黄菊花经干燥、粉碎后,与提取溶剂I混合进行提取得到提取液,将所述提取液浓缩后得到提取浸膏;
(2)将所述提取浸膏依次经石油醚、乙酸乙酯和正丁醇萃取后进行浓缩得到石油醚浸膏、乙酸乙酯浸膏和正丁醇浸膏;
(3)将所述乙酸乙酯浸膏进行梯度洗脱分离I得到组分Fr.1-Fr.M,将所述组分Fr.7进行梯度洗脱分离II得到组分Fr.7.1-Fr.7.N,然后将所述组分Fr.7.4进行梯度洗脱分离III得到组分Fr.7.4.1-Fr.7.4.Q,将所述组分Fr.7.4.8过半制备高效液相分离得到如式(I)所示的***素A;
其中,M≥11,N≥8,Q≥9,
Figure BDA0003458615470000061
根据本发明,金丝黄菊花指的是菊科菊属菊花(Chrysanthemum morifoliumRamat.)——金丝***的花朵部分,其具体的干燥、粉碎可以采用本领域内常规的干燥和粉碎的方式,例如干燥可以采用烘干、晒干或者真空干燥等方式,粉碎可以采用粉碎机、研磨等方式。步骤(1)和步骤(2)中浓缩的方式均可以采用减压蒸馏的方式,也可以采用其他常规的浓缩方式。
根据本发明,提取溶剂I可以采用低级脂肪醇或者低级脂肪醇的水溶液,其中,低级脂肪醇可以是甲醇、乙醇、正丙醇、异丙醇、正丁醇等。为了提高***素A从金丝黄菊花中溶出与提取的效果,优选地,步骤(1)中所述提取溶剂I为乙醇-水溶液。进一步优选地,所述提取溶剂I中乙醇与水的体积比为10-20:1。
根据本发明,对金丝黄菊花进行提取的次数、提取溶剂的用量和时间没有特殊的限定,能够将包括***素A在内的物质进行有效提取即可。优选地,所述提取的次数为2-3次,每次所述提取的过程中所述提取溶剂I与所述金丝黄菊花(干重)的质量比为3-8:1、时间为4-6天。在进行多次提取时,将每次获得的提取液合并后,进行浓缩得到提取浸膏。
根据本发明,在提取溶剂I对金丝黄菊花进行提取后,通过固液分离的方式获得提取液,例如采用过滤、离心的方式。
根据本发明,步骤(2)中提取浸膏在利用石油醚进行萃取前,与适量水混合进行悬浮,以提高石油醚、乙酸乙酯和正丁醇的萃取效率。优选地,步骤(2)中所述石油醚、所述乙酸乙酯和所述正丁醇各自与所述提取浸膏的质量比为3-8:1。
根据本发明,优选地,步骤(3)中所述梯度洗脱分离I的过程包括:将所述乙酸乙酯浸膏装样硅胶柱,然后用洗脱剂I进行梯度洗脱,再经点板合并得到所述组分Fr.1-Fr.M。
根据本发明,优选地,所述洗脱剂I为二氯甲烷-甲醇溶液。
根据本发明,优选地,所述梯度洗脱中二氯甲烷与甲醇的体积比依次为100:1,50:1,20:1,10:1,5:1,2:1,1:1,0:1。
根据本发明,优选地,步骤(3)中所述梯度洗脱分离II的过程包括:将所述组分Fr.7过反相柱,用洗脱剂II进行梯度洗脱,再经点板合并得到所述组分Fr.7.1-Fr.7.N。
根据本发明,优选地,所述洗脱剂II为甲醇-水溶液。
根据本发明,优选地,所述梯度洗脱中甲醇-水的体积比依次为0:1,1:9,2:8,3:7,4:6,5:5,6:4,7:3,8:2,9:1,1:0。
根据本发明,优选地,步骤(3)中所述梯度洗脱分离III的过程包括:将所述组分Fr.7.4过硅胶柱,用洗脱剂III进行梯度洗脱得到所述组分Fr.7.4.1-Fr.7.4.Q。
根据本发明,优选地,所述洗脱剂III为石油醚-乙酸乙酯溶液。
根据本发明,优选地,所述梯度洗脱中石油醚与乙酸乙酯的体积比依次为5:1,4:1,3:1,2:1,1:1,0:1。
根据本发明,半制备高效液相分离可以采用本领域内常规的方法和仪器设备进行;优选地,所述半制备高效液相分离的流速为2-4mL/min。
根据本发明一种特别优选的实施方式,金丝***的提取单体***素A的提取方法,包括以下步骤:
(1)将金丝黄菊花经干燥、粉碎后,与乙醇-水溶液(乙醇与水的体积比为19:1)混合进行2-3次提取,每次提取的过程中提取溶剂I与金丝黄菊花的质量比为3-8:1、时间为4-6天,经固液分离后得到提取液,将提取液浓缩后得到提取浸膏;
(2)将步骤(1)得到的提取浸膏加入适量水悬浮后,依次经石油醚、乙酸乙酯和正丁醇萃取后进行浓缩得到石油醚浸膏、乙酸乙酯浸膏和正丁醇浸膏,其中,石油醚、乙酸乙酯和正丁醇各自与提取浸膏的质量比为3-8:1;
(3)将步骤(2)得到的乙酸乙酯浸膏装样硅胶柱,然后以二氯甲烷-甲醇溶液为洗脱剂I进行梯度洗脱(二氯甲烷与甲醇的体积比依次为100:1,50:1,20:1,10:1,5:1,2:1,1:1,0:1),再经点板合并得到所述组分Fr.1-Fr.M;将组分Fr.7过反相柱,以甲醇-水溶液为洗脱剂II进行梯度洗脱(甲醇-水的体积比依次为0:1,1:9,2:8,3:7,4:6,5:5,6:4,7:3,8:2,9:1,1:0),再经点板合并得到所述组分Fr.7.1-Fr.7.N;然后将组分Fr.7.4过硅胶柱,以石油醚-乙酸乙酯溶液为洗脱剂III进行梯度洗脱(石油醚与乙酸乙酯的体积比依次为5:1,4:1,3:1,2:1,1:1,0:1)得到组分Fr.7.4.1-Fr.7.4.Q,然后将所述组分Fr.7.4.8用半制备高效液相(流速为2-4mL/min)分离得到***素A。
基于上述提供的金丝***的提取单体***素A,本发明第三方面提供上述的***素A在制备抗氧化药物中的应用。
基于上述提供的金丝***的提取单体***素A,本发明第四方面提供上述的***素A在制备保肝药物中的应用。
以下将通过实施例对本发明进行详细描述。
以下实施例中,核磁共振分析采用Bruker AV-600核磁共振光谱仪,紫外光谱分析采用Hewlett-Packard 8452AUV-vis紫外光谱仪,红外光谱分析采用Bruker Tensor 27和MIRacleATR FT-IR红外分析仪,高效液相色谱分析采用美国Agilent 1260高效液相色谱仪,半制备高效液相分离采用美国Agilent 1260,Agilent ZORBAX XDB C18色谱柱(9.4×250mm,5μm);金丝***花采自湖南省永州市宁远县,经湖南中医药大学药学院王炜教授鉴定为菊科菊属菊花(Chrysanthemum morifolium Ramat.),D-葡萄糖和L-葡萄糖采购自默克公司,ABTS试剂盒采购自索莱宝(Solarbio)公司,人肝癌细胞HepG2采购自索莱宝(Solarbio)公司,在无特别说明的情况下,其他试剂和原料均为常规的市售品。
以下实施例中,在无特别说明的情况下,室温为25±5℃。
实施例1
(1)取9.9kg金丝***花,经干燥、粉碎后,用乙醇-水溶液(乙醇与水的体积比为19:1)浸提2次,每次浸提的过程中乙醇-水溶与金丝黄菊花干重的质量比为5:1、浸提时间为5天,两次浸提后分别进行过滤,合并滤液得到提取液,将提取液进行减压浓缩得到提取浸膏;
(2)将步骤(1)得到的提取浸膏加入适量水悬浮,依次用石油醚,乙酸乙酯,正丁醇萃取后进行浓缩得到石油醚浸膏、乙酸乙酯浸膏和正丁醇浸膏,其中,石油醚、乙酸乙酯和正丁醇各自与提取浸膏的质量比为5:1;
(3)将步骤(2)得到的乙酸乙酯浸膏(475.87g)装样硅胶柱,然后以二氯甲烷-甲醇溶液为洗脱剂I进行梯度洗脱(二氯甲烷与甲醇的体积比依次为100:1,50:1,20:1,10:1,5:1,2:1,1:1,0:1),再经点板(采用青岛海洋化工厂生产的GF254薄层板,20×20cm)合并得到11个组分,分别为组分Fr.1-Fr.11;
将组分Fr.7(30.46g)过反相柱,以甲醇-水溶液为洗脱剂II进行梯度洗脱(甲醇-水的体积比依次为0:1,1:9,2:8,3:7,4:6,5:5,6:4,7:3,8:2,9:1,1:0),再经点板合并得到8个组分,分别为组分Fr.7.1-Fr.7.8;
将组分Fr.7.4(3.65g)过硅胶柱,以石油醚-乙酸乙酯溶液为洗脱剂III进行梯度洗脱(石油醚与乙酸乙酯的体积比依次为5:1,4:1,3:1,2:1,1:1,0:1)得到组分Fr.7.4.1-Fr.7.4.9,然后将组分Fr.7.4.8用半制备高效液相(流速为3mL/min)分离得到组分JS-2-119-36(8.3mg,tR=15.1min;CH3CN/H2O,32:68)。
组分JS-2-119-36为浅黄色固体;薄层色谱(TLC)在254nm紫外下有荧光;将高分辨电喷雾质谱(HR-ESI-MS)分析结果见图1,HR-ESI-MS谱图显示m/z 455.1314[M+Na]+(计算值C22H24O9Na+,455.1318),确定其分子式为C22H24O9,不饱和度为11;红外(IR)分析结果见图2,IR谱图显示该化合物含有羟基(3361cm-1),烯烃(1676cm-1)和芳香烃(699cm-1)等基团。
组分JS-2-119-36的核磁共振(NMR)分析结果见图3-图8,NMR谱图显示:
1H-NMR(600MHz,CD3OD):δH7.60(1H,d,J=15.6Hz,H-7”),7.44(2H,dd,J=7.8Hz,H-2,6),7.34(2H,t,J=7.8Hz,H-3,5),7.28(1H,t,J=7.8Hz,H-4),7.05(1H,d,J=1.8Hz,H-2”),6.96(1H,dd,J=8.4,1.8Hz,H-6”),6.78(1H,d,J=8.4Hz,H-5”),6.30(1H,d,J=15.6Hz,H-8”),4.96(1H,d,J=12.0Hz,H-7a),4.86(1H,m,H-4'),4.70(1H,d,J=12.0Hz,H-7b),4.43(1H,d,J=7.8Hz,H-1'),3.64(1H,m,H-6'a),3.62(1H,m,H-3'),3.58(1H,m,H-6'b),3.51(1H,m,H-5'),3.37(1H,m,H-2')。
13C-NMR(150MHz,CD3OD):δC168.6(C-9”),149.7(C-4”),147.6(C-7”),146.9(C-3”),139.0(C-1),129.3(C-3,5),129.2(C-2,6),128.7(C-4),127.7(C-1”),123.1(C-6”),116.5(C-5”),115.2(C-2”),114.7(C-8”),103.3(C-1'),76.2(C-5'),75.8(C-3'),75.3C-2'),72.6(C-4'),62.6(C-6')。
1H-NMR谱图中,推测存在1个苄基基团[δH7.44(2H,d,J=7.8Hz;H-2,6),7.34(2H,t,J=7.8Hz),7.28(1H,t,J=7.8Hz),4.96(1H,d,J=12.0Hz),4.70(1H,d,J=12.0Hz)];1个咖啡酰基基团[δH7.05(1H,d,J=1.8Hz),6.96(1H,dd,J=8.4,1.8Hz),6.78(1H,d,J=8.4Hz),δH7.60(1H,d,J=15.6Hz)and 6.30(1H,d,J=15.6Hz)];1个葡萄糖苷基团[δH4.86(1H,overlapped),4.43(1H,d,J=7.8Hz),3.62(1H,m),3.51(1H,m),3.37(1H,m)and 3.64(1H,m),3.58(1H,m)]。在13C NMR谱中显示有22个碳信号,推测存在1个酯基(δc168.6),14个芳香碳(2个苯基和1个烯烃基团),5个连氧次甲基碳(δC103.3,76.2,75.8,75.3和72.6)和2个连氧亚甲基碳(δC71.8和62.6),具体数据见表1。
表1
Figure BDA0003458615470000111
Figure BDA0003458615470000121
将组分JS-2-119-36进行酸水解及高效液相色谱法分析:
a、取1.2mg组分JS-2-119-36,加入10mL浓度为2mol/L的盐酸溶液,在80℃水浴加热回流5h,然后将回流得到的溶液减压浓缩至干得到反应产物;
b、将反应产物加入适量的水溶解,用乙酸乙酯萃取后得到水层溶液,将水层溶液减压浓缩至干后加入无水吡啶1mL溶解,再加入2mg的L-半胱氨酸甲酯,然后置于60℃烘箱内反应1h后,再加入2mg异硫氰酸酯盐,继续置于60℃烘箱内反应1h,得到反应液。
c、将反应液取出放冷,过0.22μm微孔滤膜,进高效液相色谱(HPLC)进行分析,HPLC色谱条件为:C18反相色谱柱,流动相:25%乙腈-0.05%乙酸水,检测波长入=250nm,流速v=0.8mL/min,进样量10μL;
取D-葡萄糖和L-葡萄糖作为标准品,分别按上述步骤a-步骤c的衍生化方法进行处理,并进行HPLC分析。
组分JS-2-119-36、D-葡萄糖和L-葡萄糖的衍生物HPLC谱图如图9-图11所示,D-葡萄糖衍生物的出峰时间为17.0min,L-葡萄糖衍生物的出峰时间为15.6min,组分JS-2-119-36的酸水解衍生物的出峰时间为17.2min,与D-葡萄糖衍生物出峰时间相似,故确定该化合物的糖苷为D-葡萄糖苷(tR=17.19min)。
根据以上HR-ESI-MS谱图、IR谱图、NMR谱图以及HPLC谱图的数据,推测组分JS-2-119-36的结构为1'-O-苯甲基-4'-O-E-咖啡酰基-β-D-葡萄糖苷(1'-O-benzyl-4'-O-E-caffeoyl-β-D-glucopyranoside),结构式如式(I)所示,并命名为***素A,
Figure BDA0003458615470000131
组分JS-2-119-36的1H-1HCOSY,HMBC相关性如式(II)所示,
Figure BDA0003458615470000132
实施例2组分JS-2-119-36的ABTS+自由基清除活性筛选
采用ABTS+自由基清除法(ABTS试剂盒)评价金丝***花中分离得到的组分JS-2-119-36的抗氧化能力。
将组分JS-2-119-36配制成浓度分别为1.0、0.5、0.2、0.1、0.05mmol/L的溶液,阳性对照药维生素C(Vc)配制成浓度分别为1.0、0.8、0.6、0.4、0.2mmol/L的溶液,各取10μL分别独立地添加到96孔板中,再分别取190μL的ABTS+溶液添加到96孔板的各孔中,混匀后在室温下避光静置6min,然后检测96孔板的各孔在405nm处的吸光度(A),计算自由基清除率和IC50值,结果见表2,
自由基清除率=[A空白-(A测定-A对照)]/A空白
表2的数据显示,组分JS-2-119-36具有ABTS+自由基清除活性,其IC50为11.34±1.56μM/L,强于阳性对照药Vc的IC50(22.00±1.29μM/L)。
表2
Figure BDA0003458615470000141
实施例3
采用对乙酰氨基酚(APAP)诱导人肝癌细胞HepG2损伤模型,利用MTT法测定组分JS-2-119-36的保肝活性。
将人体肝癌细胞HepG2细胞添加到含10%胎牛血清的MEM培养基中,置于含有5体积%CO2,温度为37℃的恒温培养箱中培养过夜;将培养得到的细胞经浓度为0.25重量%的胰蛋白酶溶液和浓度为0.02重量%的EDTA溶液进行消化,将消化得到的细胞以1×105个/孔的密度接种在96孔板中,在温度为37℃,含有5体积%CO2的恒温培养箱中培养过夜后,分为三组,每组10个孔,分别为模型组、阳性对照组(双环醇)和处理组(组分JS-2-119-36),将阳性对照组每孔加入组分双环醇和APAP,使得双环醇的浓度为10μM、APAP的浓度为6mM,将处理组每孔加入组分JS-2-119-36和APAP,使得组分JS-2-119-36的浓度为10μM、APAP的浓度为6mM;再继续培养48h,取下培养基后,每孔加入100μL浓度为0.5mg/mL的MTT溶液,孵育4h,再加入100μL的DMSO溶解,最后用微孔板读卡器分别在490nm和630nm处测定福马赞溶液的光密度(OD)。
结果显示,与模型组(存活率为50.74%)相比,组分JS-2-119-36对APAP诱导的HepG2细胞损伤具有显著的保护作用,在10μM时细胞存活率为61.53%,阳性对照组的细胞存活率仅为58.41%。
以上详细描述了本发明的优选实施方式,但是,本发明并不限于此。在本发明的技术构思范围内,可以对本发明的技术方案进行多种简单变型,包括各个技术特征以任何其它的合适方式进行组合,这些简单变型和组合同样应当视为本发明所公开的内容,均属于本发明的保护范围。

Claims (10)

1.一种金丝***的提取单体***素A,其特征在于,所述***素A的结构式如式(I)所示:
Figure FDA0003458615460000011
2.一种金丝***的提取单体***素A的提取方法,其特征在于,包括以下步骤:
(1)将金丝黄菊花经干燥、粉碎后,与提取溶剂I混合进行提取得到提取液,将所述提取液浓缩后得到提取浸膏;
(2)将所述提取浸膏依次经石油醚、乙酸乙酯和正丁醇萃取后进行浓缩得到石油醚浸膏、乙酸乙酯浸膏和正丁醇浸膏;
(3)将所述乙酸乙酯浸膏进行梯度洗脱分离I得到组分Fr.1-Fr.M,将所述组分Fr.7进行梯度洗脱分离II得到组分Fr.7.1-Fr.7.N,然后将所述组分Fr.7.4进行梯度洗脱分离III得到组分Fr.7.4.1-Fr.7.4.Q,将所述组分Fr.7.4.8过半制备高效液相分离得到如式(I)所示的***素A;
其中,M≥11,N≥8,Q≥9,
Figure FDA0003458615460000012
3.根据权利要求2所述的提取方法,其特征在于,步骤(1)中所述提取溶剂I为乙醇-水溶液;
优选地,所述提取溶剂I中乙醇与水的体积比为10-20:1;
优选地,所述提取的次数为2-3次,每次所述提取的过程中所述提取溶剂I与所述金丝黄菊花的质量比为3-8:1、时间为4-6天。
4.根据权利要求2所述的提取方法,其特征在于,步骤(2)中所述石油醚、所述乙酸乙酯和所述正丁醇各自与所述提取浸膏的质量比为3-8:1。
5.根据权利要求2至4中任意一项所述的提取方法,其特征在于,步骤(3)中所述梯度洗脱分离I的过程包括:将所述乙酸乙酯浸膏装样硅胶柱,然后用洗脱剂I进行梯度洗脱,再经点板合并得到所述组分Fr.1-Fr.M;
优选地,所述洗脱剂I为二氯甲烷-甲醇溶液;
优选地,所述梯度洗脱中二氯甲烷与甲醇的体积比依次为100:1,50:1,20:1,10:1,5:1,2:1,1:1,0:1。
6.根据权利要求2至4中任意一项所述的提取方法,其特征在于,步骤(3)中所述梯度洗脱分离II的过程包括:将所述组分Fr.7过反相柱,用洗脱剂II进行梯度洗脱,再经点板合并得到所述组分Fr.7.1-Fr.7.N;
优选地,所述洗脱剂II为甲醇-水溶液;
优选地,所述梯度洗脱中甲醇-水的体积比依次为0:1,1:9,2:8,3:7,4:6,5:5,6:4,7:3,8:2,9:1,1:0。
7.根据权利要求2至4中任意一项所述的提取方法,其特征在于,步骤(3)中所述梯度洗脱分离III的过程包括:将所述组分Fr.7.4过硅胶柱,用洗脱剂III进行梯度洗脱得到所述组分Fr.7.4.1-Fr.7.4.Q;
优选地,所述洗脱剂III为石油醚-乙酸乙酯溶液;
优选地,所述梯度洗脱中石油醚与乙酸乙酯的体积比依次为5:1,4:1,3:1,2:1,1:1,0:1。
8.根据权利要求2至4中任意一项所述的提取方法,其特征在于,所述半制备高效液相分离的流速为2-4mL/min。
9.权利要求1所述的金丝***的提取单体***素A在制备抗氧化药物中的应用。
10.权利要求1所述的金丝***的提取单体***素A在制备保肝药物中的应用。
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