CN113292636A - 抗菌六肽及其应用 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了八种抗菌六肽及其应用,这八种抗菌六肽的氨基酸序列分别为:R‑W‑W‑R‑W‑W‑NH2,R‑W‑W‑R‑W‑F‑NH2,R‑W‑W‑R‑F‑W‑NH2,R‑W‑W‑R‑L‑F‑NH2,R‑W‑W‑R‑F‑F‑NH2,W‑L‑R‑W‑F‑R‑NH2,W‑W‑L‑F‑R‑R‑NH2,R‑W‑W‑R‑I‑W‑NH2。这八种抗菌六肽具有强力的杀菌性能,并保证较小的细胞毒性以及溶血性,且实际成本低,可用于制备治疗和/或预防细菌感染的药物。
Description
技术领域
本发明涉及生物技术领域,具体涉及八种抗菌六肽及其应用。
背景技术
抗生素的滥用导致了细菌耐药性的产生,从而使细菌感染再一次成为一项威胁人类健康的重大安全问题。如今,由耐药菌引起的疾病已经越来越多,更为严重的是,多重耐药菌甚至超级细菌的出现,意味着目前的抗生素治疗体系濒临崩溃。为了应对这一问题,急需开发新型抗菌药物用于细菌感染的治疗。
细菌的耐药性作用主要有4类:
1、产生灭活酶分解进入细菌内部的抗生素;
2、改变细菌细胞膜通透性阻止抗生素的进入;
3、形成外排泵排除抗生素;
4、改变药物靶点使抗生素失效。
抗菌肽是一种具有特定氨基酸序列的抗菌生物分子,抗菌肽一般携带正电荷并且具有σ-螺旋或者β折叠等二级结构。抗菌肽的正电性使得其更易吸附并聚集于带负电的细菌细胞膜表面,而二级结构则使得抗菌肽可以***细菌细胞膜的磷脂双分子层并自组装形成孔洞结构杀死细菌。所以,抗菌肽的杀菌机理是破坏细菌细胞膜,与上述提到的细菌获得耐药性的4个方面毫无关联,因此抗菌肽不易产生耐药性,并被认为是下一代抗生素的替代物。
目前,抗菌肽大多包含10-60个氨基酸或以上序列(如公开号为CN 111892646 A、CN 109180794 A的专利技术等)。然而,抗菌肽的序列过长一方面容易产生较大的生物毒性,另一方面也增加了工业生产成本,这限制了抗菌肽的应用。但是,抗菌肽序列长度缩短容易导致抗菌肽的抗菌活性降低。
发明内容
针对上述技术问题以及本领域存在的不足之处,本发明提供了八种抗菌六肽,具有强力的杀菌性能,并保证较小的细胞毒性以及溶血性,且实际成本低。
八种抗菌六肽的氨基酸序列分别为下述之一:
抗菌肽1:R-W-W-R-W-W-NH2,
抗菌肽2:R-W-W-R-W-F-NH2,
抗菌肽3:R-W-W-R-F-W-NH2,
抗菌肽4:R-W-W-R-L-F-NH2,
抗菌肽5:R-W-W-R-F-F-NH2,
抗菌肽6:W-L-R-W-F-R-NH2,
抗菌肽7:W-W-L-F-R-R-NH2,
抗菌肽8:R-W-W-R-I-W-NH2。
上述八种抗菌六肽因其独特的氨基酸序列,可表现出显著的杀菌活性,并且在高浓度下表现出较低的细胞毒性以及溶血性,能够应用于治疗因细菌引起的肺炎、败血症等疾病的药物中。
本发明还提供了所述的八种抗菌六肽在制备治疗和/或预防细菌感染的药物中的应用。
本发明还提供了一种适用于治疗和/或预防细菌感染的药物,所述药物含有所述的八种抗菌六肽中的至少一种。
本发明提供的八种抗菌六肽具有对细菌的抗/杀菌普适性,其主要作用机理为破坏细菌细胞膜。这八种抗菌六肽的净电荷为正,可以吸附到表面带负电的细菌细胞膜。而当吸附在细胞膜表面的这八种抗菌六肽达到一定浓度时,两亲性的多肽就会***细胞膜的磷脂层并在其中自组装产生孔洞破坏细菌细胞膜,从而杀死细菌。因此本发明八种抗菌六肽具有抗菌广谱性,对多种细菌均具有杀灭作用。
所述细菌可为革兰氏阳性菌和/或革兰氏阴性菌,具体可为金黄色葡萄球菌和/或大肠杆菌等。
所述治疗和/或预防细菌感染的药物还可包括药学上可接受的载体和/或辅料。
本发明与现有技术相比,主要优点包括:
1)本发明通过大量研究,发现了上述八种特定序列的抗菌六肽具有强效、广谱的抗/杀菌活性,且细胞毒性以及溶血毒性弱,能够应用于治疗或者预防因细菌引起的疾病的药物中。
2)本发明的抗菌六肽可人工合成(可采用现有常规技术,如采用固相法合成等),操作方便,肽链短,不论是制备成本还是原料成本、应用成本,都非常低,具有非常好的应用前景。
附图说明
图1-8分别依次为抗菌肽1-8的HPLC(a)与质谱(b)结果图。
具体实施方式
下面结合附图及具体实施例,进一步阐述本发明。应理解,这些实施例仅用于说明本发明而不用于限制本发明的范围。下列实施例中未注明具体条件的操作方法,通常按照常规条件,或按照制造厂商所建议的条件。
实施例1
抗菌肽1-8的固相合成:
一、树脂溶涨
称取取代度为0.4mmol/g的0.6g 2-Chlorotrityl Chloride Resin树脂,将树脂放入反应管中,加二氯甲烷(DCM)(15mL/g),振荡30分钟.
二、接第一个氨基酸
通过沙芯抽滤掉溶剂,加入3倍摩尔过量的Fmoc-L-Leu-OH氨基酸,再加入10倍摩尔过量的二异丙基乙胺(DIEA),最后加入少量二甲基甲酰胺(DMF)溶解,振荡1小时。用DMF和DCM交替清洗6遍。
三、脱保护
加15mL 20%哌啶DMF溶液(15mL/g),5分钟,去掉再加15mL 20%哌啶DMF溶液(15mL/g),15分钟。
四、检测
抽掉哌啶溶液,取十几粒树脂,用乙醇洗三次,加入茚三酮,KCN,苯酚溶液各一滴,105℃-110℃加热5分钟,变深蓝色为阳性反应。
五、洗
DMF(10mL/g)两次,甲醇(10mL/g)两次,DMF(10mL/g)两次。
六、缩合
保护氨基酸(Fmoc-L-Gly-OH)三倍过量,O-苯并三氮唑-四甲基脲六氟磷酸盐(HBTU)三倍过量,均用尽量少DMF溶解,加入反应管,立刻加入N-甲基***啉(NMM)十倍过量。反应30分钟.
七、洗
DMF(10mL/g)一次,甲醇(10mL/g)两次,DMF(10mL/g)两次。
八、重复二至六步操作,从右到左依次连接序列中的氨基酸。
九、最后一个氨基酸连接后,脱保护,按照下列方法洗树脂。
DMF(10mL/g)两次,甲醇(10mL/g)两次,DMF(10mL/g)两次,DCM(10mL/g)两次,抽干10分钟。
十、从树脂上切割多肽
配制切割液(10/g)TFA94.5%;水2.5%;EDT 2.5%;TIS 1%。
将树脂装入烧瓶或者离心管中,树脂和切割液比例按照10mL/g,恒温震荡,时间:120分钟。
十一、吹干洗涤
将裂解液用氮气尽量吹干,用***层析出来,再用***洗六次,然后常温挥干。即得粗品肽序。
十二、用HPLC纯化多肽
具体操作步骤:
1,取粗品肽200mg放入器皿中。用2-5mL 50%的乙腈水溶液溶清。可以稍微超声2分钟。
2,用0.45μm滤膜过滤溶解液。
3,分析:取3μL用分析级HPLC分析粗品。流动相是水和乙腈,时间30分钟,梯度洗脱,先将HPLC用起始梯度平衡5分钟然后进样,起始梯度水95%,乙腈5%,结束比例水5%,乙腈95%
4,制备:将溶解好的样品,做进样准备。制备HPLC平衡10分钟,起始梯度水95%,乙腈5%,结束梯度水25%,乙腈75%梯度时间40分钟。收集从检测器出来的样品。
5,鉴定:将收集下来的样品,取样进行纯度和MS的鉴定。
十三、最后将纯化后的溶液冻干,既得到成品。
十四、将白色粉末状的多肽,密封包装,-20℃保存。
图1-8分别依次为抗菌肽1-8的HPLC(a)与质谱(b)结果图。
实施例2
抗菌肽的抗菌活性检测。
以下的所使用的标准菌株均购于广东省微生物菌种保存中心。
采用96孔板法对实施例1合成的抗菌六肽的抗菌活性进行检测,并用经FDA批准的抗菌肽短杆菌肽、多黏菌素作为革兰氏阳性菌、革兰氏阴性菌对照,以评价抗菌肽1-8的抗菌活性。
按以下步骤测试抗菌肽的抗菌活性。
一、将金黄色葡萄球菌(S.aureus)、大肠杆菌(E.coli)在灭菌的TSA培养基平板上培养过夜,挑取单菌落接种于灭菌的TSB培养基中37℃,150rpm,18小时过夜培养。
二、将抗菌肽1-8分别用PBS配成1024μg/mL,并按照2倍连续稀释的方式用PBS稀释成1024,512,256,128,64,32,16,8,4μg/mL并吸取100μL加入96孔板的2-9列孔位并重复6组加入B-G行。将培养后的细菌用TSB稀释成5×10^5CFU/mL,并在B2-D9孔中加入100μL稀释后的菌液作为实验组。此时,待测的肽的浓度(μg/mL)如下:
列数 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 | 8 | 9 |
浓度 | 512 | 256 | 128 | 64 | 32 | 16 | 8 | 4 |
在E2-G9孔中加入100μL TSB溶液作为对照组,并在B10-D10孔中分别加入100μLPBS以及TSB作为阴性对照,在E10-G10孔中分别加入100μL PBS以及稀释后的菌液作为阳性对照。将96孔板用封口膜封口后装入自封袋置于37℃,150rpm,18小时过夜培养。用酶标仪分别测B2-D9孔的OD600值,最小的OD600值所对应的最小浓度便为该抗菌肽对应细菌的MIC值。
表1示出了抗菌肽1-8、短杆菌素、多黏菌素对不同细菌的最低抑菌浓度(MIC,μg/mL,0-32:+,32-512:++)
表1
抗菌肽1 | 抗菌肽2 | 抗菌肽3 | 抗菌肽4 | 抗菌肽5 | |
S.aureus | + | + | + | + | + |
E.coli | ++ | ++ | + | ++ | ++ |
抗菌肽6 | 抗菌肽7 | 抗菌肽8 | 短杆菌肽 | 多黏菌素 | |
S.aureus | ++ | + | + | + | N/A |
E.coli | ++ | ++ | ++ | N/A | + |
表1中的MIC越小,代表抑菌能力越强。表1显示本发明的八种抗菌肽对革兰氏阳性菌、革兰氏阴性菌均可表现出良好的抑菌能力,具有强效性、广谱性。
实施例3
抗菌肽1-8的细胞毒性检测。
本实施例用于检测实施例1合成的八种抗菌多肽对人体3T3细胞的细胞毒性,并用经FDA批准的短杆菌肽作为对比。
细胞毒性检测步骤:
一、将NIH-3T3细胞以5000/孔的密度接枝于96孔板中培养24小时使其充分贴壁。
二、配制200μg/mL抗菌肽1-8PBS溶液,并用DMEM培养基稀释为100μg/mL。除去96孔板中的培养基后,加入200μL 100μg/mL的含药培养基后继续培养24小时,每个组5个平行样。
三、吸除药物培养基后用PBS清洗3次,并在每孔中加入20μL噻唑蓝(MTT)溶液及100μL DMEM培养基,孵育4小时。吸除上清液,加入150μL DMSO充分溶解紫色甲瓒结晶。使用酶标仪读取OD 490nm吸收值。
细胞毒性计算公式为:
细胞存活率=样品池吸收值/PBS池吸收值×100%。
表2示出了抗菌肽1-8细胞毒性检测结果(药物浓度100μg/mL),并以短杆菌肽、PBS作为对照,其中细胞存活率80-100%:+,<80%:++。
表2
抗菌肽1 | 抗菌肽2 | 抗菌肽3 | 抗菌肽4 | 抗菌肽5 | |
细胞存活率 | + | + | + | + | + |
抗菌肽6 | 抗菌肽7 | 抗菌肽8 | 短杆菌肽 | PBS | |
细胞存活率 | + | + | + | ++ | + |
表2中,细胞存活率越大代表抗菌肽的细胞毒性越小。表2表明,抗菌肽1-8相比于短杆菌肽均表现出了明显更小的细胞毒性,为成药提供了强力的支撑。
实施例4
抗菌肽1-8的体外溶血性检测。
本实施例用于检测实施例1合成的八种抗菌六肽对红细胞的溶血性,并用经FDA批准的短杆菌肽作为对比。使用的血样取于无菌兔子血。
溶血性检测的步骤是:
一、取1mL全血,用1500rpm离心5分钟吸去上清液重复3次,加入20mL PBS配成血细胞溶液。
二、将抗菌肽1-8配成200μg/mL,并取100μL加入96孔板作为实验组,取Triton-X100(1wt%)100μL,PBS 100μL加入96孔板分别作为阳性对照以及阴性对照,每个样品重复5组。向加入样品的孔板中分别加入100μL血细胞溶液(此时所有样品的浓度减半,所有实验组的浓度为100μg/mL),孔板封口后装入自封袋,并在37℃下150rpm孵育1小时。
三、孵育完毕后,吸取混合溶液于1.5mL离心管,并在1500rpm离心8分钟后吸取上清液用酶标仪测试OD 570nm值。
溶血率=(Am-An)/(Ap-An)
其中,Am为实验组OD值,Ap为阳性对照OD值,An为阴性对照OD值。
表3示出了抗菌肽1-8溶血性检测结果(药物浓度100μg/mL),并以短杆菌肽、Triton-X100为对照,其中溶血率0-30%:+,>30%:++。
表3
抗菌肽1 | 抗菌肽2 | 抗菌肽3 | 抗菌肽4 | 抗菌肽5 | |
溶血率 | + | + | + | + | + |
抗菌肽6 | 抗菌肽7 | 抗菌肽8 | 短杆菌肽 | Triton-X100 | |
溶血率 | + | + | + | ++ | ++ |
溶血率越大代表抗菌肽对血细胞的毒性越大。表3表明,抗菌肽1-8相比于短杆菌肽均表现出了明显更小的溶血性,为成药提供了强力的支撑。
此外应理解,在阅读了本发明的上述描述内容之后,本领域技术人员可以对本发明作各种改动或修改,这些等价形式同样落于本申请所附权利要求书所限定的范围。
序列表
<110> 浙江大学
<120> 抗菌六肽及其应用
<160> 8
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 6
<212> PRT
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 1
Arg Trp Trp Arg Trp Trp
1 5
<210> 2
<211> 6
<212> PRT
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 2
Arg Trp Trp Arg Trp Phe
1 5
<210> 3
<211> 6
<212> PRT
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 3
Arg Trp Trp Arg Phe Trp
1 5
<210> 4
<211> 6
<212> PRT
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 4
Arg Trp Trp Arg Leu Phe
1 5
<210> 5
<211> 6
<212> PRT
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 5
Arg Trp Trp Arg Phe Phe
1 5
<210> 6
<211> 6
<212> PRT
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 6
Trp Leu Arg Trp Phe Arg
1 5
<210> 7
<211> 6
<212> PRT
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 7
Trp Trp Leu Phe Arg Arg
1 5
<210> 8
<211> 6
<212> PRT
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 8
Arg Trp Trp Arg Ile Trp
1 5
Claims (8)
1.抗菌六肽,其特征在于,所述抗菌六肽的氨基酸序列为下述之一:
抗菌肽1:R-W-W-R-W-W-NH2,
抗菌肽2:R-W-W-R-W-F-NH2,
抗菌肽3:R-W-W-R-F-W-NH2,
抗菌肽4:R-W-W-R-L-F-NH2,
抗菌肽5:R-W-W-R-F-F-NH2,
抗菌肽6:W-L-R-W-F-R-NH2,
抗菌肽7:W-W-L-F-R-R-NH2,
抗菌肽8:R-W-W-R-I-W-NH2。
2.根据权利要求1所述的抗菌六肽在制备治疗和/或预防细菌感染的药物中的应用。
3.根据权利要求2所述的应用,其特征在于,所述细菌为革兰氏阳性菌和/或革兰氏阴性菌。
4.根据权利要求2所述的应用,其特征在于,所述药物还包括药学上可接受的载体。
5.根据权利要求2所述的应用,其特征在于,所述药物还包括药学上可接受的辅料。
6.一种适用于治疗和/或预防细菌感染的药物,其特征在于,所述药物含有权利要求1所述的抗菌六肽中的至少一种。
7.根据权利要求6所述的药物,其特征在于,所述细菌为革兰氏阳性菌和/或革兰氏阴性菌。
8.根据权利要求6所述的药物,其特征在于,所述药物还包括药学上可接受的载体和/或辅料。
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CN113292636B (zh) | 2022-12-06 |
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