CN111040957A - 一株耐乙醇耐高糖的发酵菌株及构建方法 - Google Patents

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王莉
陈栋
李勇
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Abstract

本发明提供了一株耐乙醇耐高糖的发酵菌株,所述发酵菌株为SEB12,分类命名为酿酒酵母Saccharomyces cerevisiae,其保藏编号为CGMCC No.18216,保藏单位为中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心。本发明还提供了一种上述耐乙醇耐高糖的发酵菌株的构建方法。在乙醇葡萄糖共发酵、高糖或高温情况下,本发明的发酵菌株SEB12的乙醇发酵速率相对于出发菌株较高,说明所述菌株具有耐高糖、耐高乙醇的优势,对实现非粮生物质乙醇化工业化生产具有重要意义。

Description

一株耐乙醇耐高糖的发酵菌株及构建方法
技术领域
本发明涉及发酵菌株领域,具体涉及一株耐乙醇耐高糖的发酵菌株及构建方法。
背景技术
随着环境污染的加剧和全球化石能源的日渐枯竭,开发新的清洁能源势不容缓,生物乙醇作为一种新型的可再生能源,日益成为研究热点。以非粮生物质生产燃料乙醇替代化石燃料,可有效解决化石燃料带来的能源危机和环境污染,为了降低成本,则需提高终点乙醇浓度,采用超高浓度(VHG)乙醇发酵(培养基含糖量大于250g/L以期获得15%以上的乙醇)可以提高终点乙醇浓度从而提高生产设备使用率、节省精馏能耗和工业用水是一种节能减排的发酵技术。然而在VHG发酵过程中,酿酒酵母往往会受到各种因素胁迫,其中发酵初期高浓度底物的渗透作用以及终产物乙醇对菌株的毒性作用是制约酿酒酵母生产乙醇的重要瓶颈,尽管目前已有一些关于酿酒酵母对乙醇或高糖耐受能力的报道,但大多数研究以实验室酵母为出发菌株,且多针对单一物质,对多耐受性酿酒酵母的研究极少。而这些研究主要集中在酿酒酵母如何抵御乙醇毒性或高渗条件,但对于如何同时构建既耐受乙醇又耐受高糖的工业菌株尚不明确。由于在实际VHG发酵过程中,酿酒酵母会受到多种胁迫,因此,如何提高菌株在发酵初期的高糖耐受性和发酵末期的乙醇耐受性是实现非粮生物质能源转化的关键瓶颈。
选育同时具有耐受高糖和乙醇特性的工业菌株,对实现非粮生物质乙醇化工业化生产具有重要意义。
发明内容
本发明的目的在于克服现有技术中的缺陷,提供一株耐乙醇耐高糖的发酵菌株及构建方法,以耐高温工业菌株为出发菌株,拟通过常压室温等离子体(ARTP)技术获得耐乙醇、耐高糖突变菌株,并结合基因组重排等技术使突变菌株随机杂交,最终通过TTC显色反应、杜氏导管、摇瓶发酵等方法对突变酵母菌株进行筛选,获得一株高糖和乙醇耐受能力较强的突变菌SEB12。
为实现上述目的,本发明采用如下技术方案:
本发明的第一方面提供了一株耐乙醇耐高糖的发酵菌株,所述发酵菌株为SEB12,所述发酵菌株分类命名为酿酒酵母Saccharomyces cerevisiae,其保藏编号为CGMCCNo.18216,保藏日期为2019年07月12日,保藏单位为中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心,保藏单位地址为北京市朝阳区北辰西路1号院3号。
本发明的第二方面提供了一种上述耐乙醇耐高糖的发酵菌株的构建方法,其包括以下步骤:
步骤1,选取出发菌株:SEB1和IR-2,将SEB1和IR-2产生的孢子通过原生质体融合获得絮凝性融合子RHZ-1;
步骤2,挑选一环RHZ-1菌株培养,再诱导其突变;
步骤3,TTC初筛和杜氏导管复筛,筛选出在乙醇和高糖条件下均产气较快的菌株进行三角瓶发酵,选择产乙醇量有所提升的菌株;
步骤4,经过三轮基因组重排和步骤3的筛选方法获得耐受性能优良的突变菌株。
进一步地,步骤2的诱变菌株突变的方法为等离子体照射。
进一步地,等离子照射时间为50-70s。
进一步地,等离子照射时间为60s。
进一步地,步骤2的菌株培养至对数生长期与稳定期之间的过渡期。
进一步地,步骤3的具体实验步骤包括:
a.将经过ARTP诱变后的菌液涂布于2%YPD平板上培养后,倾倒在TTC上层培养基进行染色,避光培养0.5~1h,选择红色较深的菌株保存(颜色越深,其代谢越旺盛);
b.通过杜氏导管法,取无水乙醇对应加入到内含杜氏管的YPD培养基中,混匀,接入各突变酵母静置培养,观察产气情况;
c.配制含葡萄糖的内含杜氏管的YPD培养基,接入各突变酵母,静置培养,观察产气情况;
d.选择在乙醇和高糖条件下均产气较快的菌株进行发酵,选择产乙醇量有所提升的菌株进行下一步基因组重排。
进一步地,步骤4的具体实验步骤包括:
a.取活化后的突变菌株,接种于100mL的YPD液体培养基中,在30℃,180rpm条件下培养约11h至对数期,5000rpm离心30s去上清收集菌体,用无菌水洗涤三次后,接种于100mLYPK预产孢培养基中,28℃,180rpm条件下培养12h,5000rpm离心30s去上清收集菌体,无菌水洗涤三次后,将菌体重悬于100mL的高效液体生孢培养基中,28℃,180rpm条件下培养5d。
b.5000rpm离心30s去上清收集生孢后的细胞,用软化缓冲液重悬细胞使其最终浓度(OD600)为5,30℃条件下培养10min后,5000pm离心30s去上清收集菌体,用原生质体缓冲溶液重悬细胞使其最终浓度(OD600)为25。
c.加入浓度为3%的蜗牛酶使其最终浓度(OD600)为14.4,30℃条件下反应30min后,5000rpm离心30s去上清收集菌体,用等量的0.5%(v/v)的Triton X-100洗涤一次后,再用0.5%(v/v)的Triton X-100重悬使孢子反应液为总体积的1/4。
d.震荡该体系,使子囊壁充分破裂释放出孢子。
e.将孢子用无菌水洗涤三次后重新接入100mL YPD液体培养基中,30℃,100rpm条件下培养24h使孢子进行充分接合形成二倍体菌株,将所得菌液涂布于含乙醇的YPD平板上,待菌落长起后,通过步骤3的方法进行筛选,最后通过三角瓶发酵选择性能进一步提升的突变菌株进行第二轮基因组重排,重排后的菌株再进行筛选,以此往复,通过三轮基因组重排,获得耐受性能优良的突变菌株SEB12。
进一步地,步骤d中的震荡方法采用的是超声波,震荡至视野中无二倍体细胞时,终止超声破碎。
最后,本发明还提供了一种耐乙醇耐高糖的发酵菌株SEB12在非粮生物质乙醇化工业化生产的应用。
与现有技术相比,本发明采用上述技术方案具有以下有益效果:
本发明所提供的一株耐乙醇耐高糖的发酵菌株及其构建方法,提高了乙醇收率,对实现非粮生物质乙醇化工业化生产具有重要意义。
附图说明
本发明的公开的一株耐乙醇耐高糖的发酵菌株为SEB12,其已进行保藏,分类命名为酿酒酵母Saccharomyces cerevisiae,其保藏编号为CGMCC No.18216,保藏日期为2019年07月12日,保藏单位为中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心,保藏单位地址为北京市朝阳区北辰西路1号院3号。
图1是本发明一实施例中的出发菌株RHZ-1和突变菌株在乙醇葡萄糖共发酵的情况下乙醇含量和葡萄糖含量变化的对比图;
图2是本发明一实施例中的出发菌株RHZ-1和突变菌株在高糖条件下乙醇含量和葡萄糖含量变化的对比图;
图3是本发明一实施例中的出发菌株RHZ-1和突变菌株在高温条件下乙醇含量和葡萄糖含量变化的对比图。
具体实施方式
本发明涉及一株耐乙醇耐高糖的发酵菌株及构建方法。
下面结合附图和实施例,对本发明的具体实施方式作进一步描述。以下实施例仅用于更加清楚地说明本发明的技术方案,而不能以此来限制本发明的保护范围。
实施例1
本实施例为发酵菌株SEB12的构建方法,其包括如下步骤:
(1)出发菌株:出发菌株SEB1和IR-2,SEB1保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心,保藏号为CGMCC NO.11321,IR-2分离自印度尼西亚发酵食品中,具有乙醇生产能力,有絮凝性,来源记载在下述文献中:Hiroshi K,Yoshio S,Toshio M,Harumi K,Yorikazu S.1985.Continuous ethanol fermentation with cell recycling usingflocculating yeast.J.Ferment.Technol.63:159-165;本实施例中的IR-2生物材料从日本产业技术综合研究所(National Institute of Advanced Industrial Science andTechnology,AIST)获得。将SEB1和IR-2产生的孢子通过原生质体融合获得絮凝性融合子RHZ-1。
(2)ARTP诱变处理:挑选一环RHZ-1菌株至2%YPD液体培养基中,放入160rpm的30℃恒温摇床中进行预培养。预培养16h后取1mL菌液,8000×g离心2min,收集菌体,转接至2%YPD中,放入160rpm的30℃恒温摇床中培养。培养24h时,菌株RHZ-1处于对数生长期与稳定期之间的过渡期。此阶段的酵母菌,生长繁殖旺盛,是基因复制和重组的重要阶段,对外界环境的影响相对比较敏感,此时进行等离子体照射,可增加基因突变与稳定遗传的几率。
取菌液1mL,经4000rpm离心3min,去清液,加入1mL EDTA和5%甘油混合溶液打散菌体。取0.01mL菌悬液均匀涂抹至照射玻片上,照射时间为60s(酵母菌株的存活率约为10%)。照射三组平行样,将照射后的玻片放入1mL的生理盐水中混匀,保存。取0.1mL混合后的菌悬液于2%YPD固体培养基上,均匀涂布,于30℃培养箱中培养48h。
(3)TTC初筛和杜氏导管复筛:将步骤(2)经过ARTP诱变后的菌液涂布于2%YPD平板,于30℃培养48h,待菌落长起后,倾倒10mL TTC上层培养基,30℃下避光培养0.5~1h,选择红色较深的菌株保存(颜色越深,其代谢越旺盛)。然后通过杜氏导管法,取0.9mL的无水乙醇对应加入到9.1mL YPD培养基中(内含杜氏管),混匀,使乙醇体积分数为9%,接入各突变酵母,30℃静置培养,观察产气情况。另配制葡萄糖浓度为30%(w/v)的YPD培养基(内含杜氏管),接入各突变酵母,30℃静置培养,观察产气情况。最后,选择在乙醇和高糖条件下均产气较快的菌株进行三角瓶发酵,选择产乙醇量有所提升的菌株进行下一步基因组重排。
(4)基因组重排:取活化后的突变菌株,接种于100mL的YPD液体培养基中,在30℃,180rpm条件下培养约11h至对数期,5000rpm离心30s去上清收集菌体,用无菌水洗涤三次后,接种于100mL YPK预产孢培养基中,28℃,180rpm条件下培养12h,5000rpm离心30s去上清收集菌体,无菌水洗涤三次后,将菌体重悬于100mL的高效液体生孢培养基中,28℃,180rpm条件下培养5d。5000rpm离心30s去上清收集生孢后的细胞,用软化缓冲液重悬细胞使其最终浓度为(OD600)为5,30℃条件下培养10min后,5000pm离心30s去上清收集菌体,用原生质体缓冲溶液重悬细胞使其最终浓度(OD600)为25,加入浓度为3%的蜗牛酶使其最终浓度(OD600)为14.4,30℃条件下反应30min后,5000rpm离心30s去上清收集菌体,用等量的0.5%(v/v)的Triton X-100洗涤一次后,再用0.5%(v/v)的Triton X-100重悬使孢子反应液为总体积的1/4,用超声波震荡该体系,使子囊壁充分破裂释放出孢子,期间不断观察破壁效率,待视野中无二倍体细胞时,终止超声破碎,用无菌水洗涤三次后,重悬于0.5%(v/v)的Triton X-100中并将其4℃进行保存。将保存在Triton X-100中的孢子用无菌水洗涤三次后重新接入100mL YPD液体培养基中,30℃,100rpm条件下培养24h使孢子进行充分接合形成二倍体菌株,将所得菌液涂布于含乙醇的YPD平板上,待菌落长起后,通过步骤(3)描述的方法进行TTC平板染色初筛和杜氏导管复筛,最后通过三角瓶发酵选择性能进一步提升的突变菌株进行第二轮基因组重排,重排后的菌株再进行筛选,以此往复,通过三轮基因组重排,最终获得耐受性能优良的突变菌株SEB12。
实施例2
本实施例为验证发酵菌株SEB12的性质,具体步骤如下:
(1)乙醇葡萄糖共发酵
以工业酿酒酵母菌株RHZ-1为出发菌株,对其进行ARTP诱变,通过TTC显色反应、杜氏导管、三角瓶发酵等对突变菌株进行筛选,获得乙醇耐受性菌株,并对乙醇耐受性菌株进行三轮基因组重排,获得最佳耐受菌株SEB12。在9%(v/v)初始乙醇和151g/L葡萄糖条件下(初始OD660为1.5)共发酵96h后,其产生乙醇13.41g/L,残糖含量为117.6g/L,较出发菌株RHZ-1分别提高了119.2%(6.118g/L),降低了14.35%(137.3g/L)。该结果表明,在乙醇葡萄糖共发酵条件下SEB12产乙醇量显著高于出发菌株RHZ-1,具有较强的乙醇耐受性(表1和图1)。
表1 9%(v/v)乙醇和151g/L葡萄糖混合条件下菌株发酵96h结果对比
Figure BDA0002223688940000061
(2)VHG乙醇发酵结果
为了进一步探究菌株SEB12的高糖耐受性,对其进行了高糖条件下的发酵研究。菌株SEB12在264.9g/L葡萄糖条件下(初始OD660为1.5)发酵前48h,产乙醇量与出发菌株RHZ-1无明显差异,72h后,其进一步将残糖耗尽,终点乙醇浓度高达135.1g/L,较出发菌株提高7.25%(125.3g/L),而此时,RHZ-1还剩余16.46g/L葡萄糖,乙醇量不再累积(图2)。基于消耗糖的乙醇收率,两株菌收率均达到98%以上,说明其代谢乙醇的能力较强。基于总糖的乙醇收率,SEB12为99.99%,而RHZ-1仅为92.8%(表2)。以上结果说明SEB12具有较强的高糖耐受性,并且在VHG发酵后期乙醇积累量显著高于出发菌株。
表2 264.9g/L葡萄糖条件下菌株发酵96h结果对比
Figure BDA0002223688940000071
(3)42℃高温发酵结果
接下来对菌株SEB12的高温耐受性进行探究,在42℃、葡萄糖浓度为100g/L和125g/L时(初始OD660为1.5),发酵24h,菌株RHZ-1和SEB12均能将葡萄糖耗尽,且乙醇收率高于94%。当葡萄糖浓度提高至150g/L时,发酵72h后,其产乙醇64.05g/L,基于总糖的乙醇收率高达83.38%,而RHZ-1为79.64%(表3和图3)。结果表明,菌株SEB12不仅具有较强的耐乙醇性,其耐温性也较好,相比RHZ-1有一定程度的提高。
表3 42℃条件下菌株发酵72h结果对比
Figure BDA0002223688940000072
根据以上结果可知,突变菌株SEB12,与出发菌株RHZ-1相比,具有耐高糖、耐乙醇性、耐温性的优势。
以上对本发明的具体实施例进行了详细描述,但其只作为范例,本发明并不限制于以上描述的具体实施例。对于本领域技术人员而言,任何对本发明进行的等同修改和替代也都在本发明的范畴之中。因此,在不脱离本发明的精神和范围下所作的均等变换和修改,都应涵盖在本发明的范围内。

Claims (9)

1.一株耐乙醇耐高糖的发酵菌株,其特征在于,所述发酵菌株为SEB12,分类命名为酿酒酵母Saccharomyces cerevisiae,其保藏编号为CGMCC No.18216,保藏日期为2019年07月12日,保藏单位为中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心。
2.一种构建如权利要求1所述的耐乙醇耐高糖的发酵菌株的方法,其特征在于,所述方法包括以下步骤:
步骤1,选取出发菌株:SEB1和IR-2,将SEB1和IR-2产生的孢子通过原生质体融合获得絮凝性融合子RHZ-1;
步骤2,挑选一环RHZ-1菌株培养,再诱导其突变;
步骤3,TTC初筛和杜氏导管复筛,筛选出在乙醇和高糖条件下均产气较快的菌株进行发酵,选择产乙醇量有所提升的菌株;
步骤4,经过三轮基因组重排和步骤3的筛选方法,获得耐受性能优良的突变菌株。
3.根据权利要求2所述的构建耐乙醇耐高糖的发酵菌株的方法,其特征在于,步骤2的诱变菌株突变的方法为等离子体照射。
4.根据权利要求3所述的构建耐乙醇耐高糖的发酵菌株的方法,其特征在于,所述的等离子照射时间为50-70s。
5.根据权利要求2所述的构建耐乙醇耐高糖的发酵菌株的方法,其特征在于,步骤2的菌株培养至对数生长期与稳定期之间的过渡期。
6.根据权利要求2所述的构建耐乙醇耐高糖的发酵菌株的方法,其特征在于,步骤3的具体实验步骤包括:
a.将经过ARTP诱变后的菌液涂布于2%YPD平板上培养后,倾倒在TTC上层培养基进行染色,避光培养0.5~1h,选择红色较深的菌株保存;
b.通过杜氏导管法,取无水乙醇对应加入到内含杜氏管的YPD培养基中,混匀,接入各突变酵母静置培养,观察产气情况;
c.配制含葡萄糖的内含杜氏管的YPD培养基,接入各突变酵母,静置培养,观察产气情况;
d.选择在乙醇和高糖条件下均产气较快的菌株进行发酵,选择产乙醇量有所提升的菌株进行下一步基因组重排。
7.根据权利要求2所述的构建耐乙醇耐高糖的发酵菌株的方法,其特征在于,步骤4的具体实验步骤包括:
a.取活化后的突变菌株,接种于YPD液体培养基中,培养至对数期,离心去上清收集菌体,用无菌水洗涤后,接种于YPK预产孢培养基中,培养11-13h,离心,去上清收集菌体,无菌水洗涤后,将菌体重悬于高效液体生孢培养基中进行培养;
b.离心,去上清收集生孢后的细胞,用软化缓冲液重悬细胞使其最终浓度OD600为5,30℃条件下培养后,离心,去上清收集菌体,用原生质体缓冲溶液重悬细胞使其最终浓度OD600为25;
c.加入浓度为3%的蜗牛酶使其最终浓度OD600为14.4,30℃条件下反应后,离心,去上清收集菌体,用等量的Triton X-100洗涤一次后,再用Triton X-100重悬使孢子反应液为总体积的1/4;
d.震荡该体系,使子囊壁充分破裂释放出孢子;
e.将孢子用无菌水洗涤三次后重新接入YPD液体培养基中培养至孢子进行充分接合形成二倍体菌株,将所得菌液涂布于含乙醇的YPD平板上,待菌落长起后,通过步骤3的方法进行筛选,最后通过三角瓶发酵选择性能进一步提升的突变菌株进行第二轮基因组重排,重排后的菌株再进行筛选,以此往复,通过三轮基因组重排,获得耐受性能优良的突变菌株SEB12。
8.根据权利要求7中所述的构建耐乙醇耐高糖的发酵菌株的方法,其特征在于,步骤d中的震荡方法采用的是超声波,震荡至视野中无二倍体细胞时,终止超声破碎。
9.一种如权利要求1所述的发酵菌株SEB12在非粮生物质乙醇化工业化生产的应用。
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