CN109096411A - 一种植物多糖及用于促进猪***体外成熟的用途 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种植物多糖及用于促进猪***体外成熟的用途。本发明提供的纯化多糖A、B、D、E、F均一性较好,经HPGPC检测均只含一个主要的色谱峰,峰型对称且较窄;纯化多糖A、B、D、E、F对体外培养的猪***具有显著的促进成熟作用,可以用于体外诱导猪***成熟。
Description
技术领域
本发明属于畜牧领域,涉及一种植物多糖及用于促进猪***体外成熟的用途。
背景技术
水菖蒲Acorus calamus为天南星科Araceae多年水生草本植物,别名菖蒲,臭菖蒲,白菖蒲等。以根茎入药,具有开窍,化痰,健胃,益智,散风,活血等功效。生于海拔2600m以下的水边、沼泽湿地或湖泊浮岛上,在南北两半球的温带、亚热带,与我国各省均有分布。
***体外成熟是胚胎体外生产过程的关键环节,因为它决定***的质量,影响胚胎的发育。通过在培养液中添加激素、细胞因子或生长因子等促进***成熟已取得一定进展,但是体外成熟的***的发育能力仍然不及体内成熟的***,这说明***的体外成熟体系还不完善,仍需要进一步优化。
发明内容
本发明的目的在于克服现有技术的不足,提供一种植物多糖及用于促进猪***体外成熟的用途。
本发明上述目的通过如下技术方案实现:
一种多糖,通过如下方法制备得到:
S1、粗多糖的提取
将干燥的水菖蒲Acorus calamus根茎粉碎,热水沸腾提取,提取液过滤,滤液浓缩至1/5体积,以Sevag法除蛋白,离心去除中间有机相与水相交界处乳化层,合并上清液,加入无水乙醇沉淀多糖,静置,离心收集沉淀,用蒸馏水复溶、冷冻干燥得粗多糖;
S2、粗多糖的初步纯化
准确称取100mg上述麦胚粗多糖冻干粉充分溶解于10mL无菌水中,将配好的粗多糖溶液全部滴加上样至DEAE-Sepharose Fast Flow(3.6cm×20cm)纤维素阴离子交换层析柱中,依次用0,0.1mol/L的NaCl溶液分别洗脱10个柱体积,洗脱的流速为1.2mL/min,收集0.1mol/L的NaCl溶液洗脱液,冷冻干燥得到初步纯化多糖;
S3、初步纯化多糖的进一步纯化
称取0.1mol/L NaCl溶液洗脱得到的初步纯化多糖25mg,用5mL超纯水溶解,然后上样至SephacrylS-200HR凝胶柱,凝胶柱内径为2cm,柱床高度为75cm,用蒸馏水洗脱,洗脱的流速为0.4mL/min,收集第4~5个柱体积洗脱液,冷冻干燥得到纯化多糖。
优选地,步骤S1固液比为1:5。
优选地,步骤S1提取3次,每次2h。
优选地,步骤S1以Sevag法除蛋白,3000r/min离心10min去除中间有机相与水相交界处乳化层。
优选地,步骤S1加入4倍体积无水乙醇沉淀多糖。
优选地,步骤S1加无水乙醇后于4℃静置24h。
优选地,步骤S1加无水乙醇静置后以3000r/min离心10min收集沉淀。
上述多糖用于促进猪***体外成熟的用途。
有益效果:
本发明提供的纯化多糖A、B、D、E、F均一性较好,经HPGPC检测均只含一个主要的色谱峰,峰型对称且较窄;纯化多糖A、B、D、E、F对体外培养的猪***具有显著的促进成熟作用,可以用于体外诱导猪***成熟。
附图说明
图1为纯化多糖A的HPGPC图;
图2为纯化多糖B的HPGPC图;
图3为纯化多糖C的HPGPC图;
图4为纯化多糖D的HPGPC图;
图5为纯化多糖E的HPGPC图;
图6为纯化多糖F的HPGPC图;
图7为各组***核成熟率(%)。
具体实施方式
下面结合附图和实施例具体介绍本发明实质性内容。
实施例1:多糖的制备
一、实验材料
干燥的水菖蒲Acorus calamus根茎购自亳州中药材市场。
二、实验方法和结果
1、粗多糖的提取
将干燥的水菖蒲Acorus calamus根茎粉碎,热水沸腾提取,固液比为1:5,提取3次,每次2h;合并提取液,过滤,滤液浓缩至1/5体积,以Sevag法除蛋白,3000r/min离心10min去除中间有机相与水相交界处乳化层,合并上清液,加入4倍体积的无水乙醇沉淀多糖,4℃条件下静置24h,3000r/min离心10min离心收集沉淀,用蒸馏水复溶、冷冻干燥得粗多糖。
2、粗多糖的初步纯化
准确称取100mg上述麦胚粗多糖冻干粉充分溶解于10mL无菌水中,将配好的粗多糖溶液全部滴加上样至DEAE-Sepharose Fast Flow(3.6cm×20cm)纤维素阴离子交换层析柱中,依次用0,0.1,0.2,0.3,0.5,0.7,0.9mol/L的NaCl溶液分别洗脱10个柱体积,洗脱的流速为1.2mL/min,分别收集0.1,0.2,0.3,0.5,0.7,0.9mol/L的NaCl溶液洗脱液,分别冷冻干燥得到不同的初步纯化多糖。
3、初步纯化多糖的进一步纯化
称取0.1mol/L NaCl溶液洗脱得到的初步纯化多糖25mg,用5mL超纯水溶解,然后上样至SephacrylS-200HR凝胶柱,凝胶柱内径为2cm,柱床高度为75cm,用蒸馏水洗脱,洗脱的流速为0.4mL/min,收集第4~5个柱体积洗脱液,冷冻干燥得到纯化多糖A;
称取0.2mol/L NaCl溶液洗脱得到的初步纯化多糖25mg,用5mL超纯水溶解,然后上样至SephacrylS-200HR凝胶柱,凝胶柱内径为2cm,柱床高度为75cm,用蒸馏水洗脱,洗脱的流速为0.4mL/min,收集第6~7个柱体积洗脱液,冷冻干燥得到纯化多糖B;
称取0.3mol/L NaCl溶液洗脱得到的初步纯化多糖25mg,用5mL超纯水溶解,然后上样至SephacrylS-200HR凝胶柱,凝胶柱内径为2cm,柱床高度为75cm,用蒸馏水洗脱,洗脱的流速为0.4mL/min,收集第5~6个柱体积洗脱液,冷冻干燥得到纯化多糖C;
称取0.5mol/L NaCl溶液洗脱得到的初步纯化多糖25mg,用5mL超纯水溶解,然后上样至SephacrylS-200HR凝胶柱,凝胶柱内径为2cm,柱床高度为75cm,用蒸馏水洗脱,洗脱的流速为0.4mL/min,收集第7~8个柱体积洗脱液,冷冻干燥得到纯化多糖D;
称取0.7mol/L NaCl溶液洗脱得到的初步纯化多糖25mg,用5mL超纯水溶解,然后上样至SephacrylS-200HR凝胶柱,凝胶柱内径为2cm,柱床高度为75cm,用蒸馏水洗脱,洗脱的流速为0.4mL/min,收集第6~7个柱体积洗脱液,冷冻干燥得到纯化多糖E;
称取0.9mol/L NaCl溶液洗脱得到的初步纯化多糖25mg,用5mL超纯水溶解,然后上样至SephacrylS-200HR凝胶柱,凝胶柱内径为2cm,柱床高度为75cm,用蒸馏水洗脱,洗脱的流速为0.4mL/min,收集第5~6个柱体积洗脱液,冷冻干燥得到纯化多糖F。
纯化多糖A~F经HPGPC检测均只含一个主要的色谱峰,峰型对称且较窄,表明纯化多糖A~F的均一性较好。纯化多糖A~F的HPGPC图如图1~6所示。
实施例2:多糖的药效
一、实验材料和实验方法
从当地屠宰场搜集初情期前小母猪卵巢,然后用注射器抽取法采集卵巢表面直径2~6mm卵泡的***,挑选那些带有2层以上卵丘细胞、胞质均匀的卵丘细胞-***复合体(COCs),并随机分配于各试验组中。成熟液为TCM-199与猪***按照体积比9:1混合而成(还含有1%双抗),多糖实验组分别加入30mg/mL纯化多糖A~F,对照组不添加,做成100μL微滴,上盖矿物油,培养20~30枚***。培养箱条件为:5%CO2的空气、最大相对饱和湿度、38.5℃。COCs经44h成熟培养后,去除卵丘细胞,在50倍实体显微镜下检查第1极体排出情况。将排出第1极体的卵子判断为核成熟卵,并按照如下公式计算各组***核成熟率(%):***核成熟率(%)=核成熟卵数÷总检查卵数×100%。
为避免单次实验的误差,每组均设置5个平行。实验结果数据以均值±标准差表示,组间比较采用SPSS 17.0软件进行单因素方差分析和t检验,P<0.05表示差异有显著统计学意义。
二、实验结果
各组***体外成熟情况如表1和图7所示。纯化多糖A、B、D、E、F可以显著促进猪***体外成熟,而纯化多糖C不具备明显的促进作用。
表1各组***体外成熟情况
组别 | ***核成熟率(%) |
对照组 | 16.8±5.3 |
纯化多糖A组 | 53.5±7.1 |
纯化多糖B组 | 48.3±8.8 |
纯化多糖C组 | 18.2±6.5 |
纯化多糖D组 | 55.7±6.9 |
纯化多糖E组 | 58.1±7.5 |
纯化多糖F组 | 50.4±6.2 |
综上可见,本发明提供的纯化多糖A、B、D、E、F均一性较好,经HPGPC检测均只含一个主要的色谱峰,峰型对称且较窄;纯化多糖A、B、D、E、F对体外培养的猪***具有显著的促进成熟作用,可以用于体外诱导猪***成熟。
上述实施例的作用在于具体介绍本发明的实质性内容,但不应将本发明的保护范围局限于该具体实施例。
Claims (8)
1.一种多糖,其特征在于,通过如下方法制备得到:
S1、粗多糖的提取
将干燥的水菖蒲Acorus calamus根茎粉碎,热水沸腾提取,提取液过滤,滤液浓缩至1/5体积,以Sevag法除蛋白,离心去除中间有机相与水相交界处乳化层,合并上清液,加入无水乙醇沉淀多糖,静置,离心收集沉淀,用蒸馏水复溶、冷冻干燥得粗多糖;
S2、粗多糖的初步纯化
准确称取100mg上述麦胚粗多糖冻干粉充分溶解于10mL无菌水中,将配好的粗多糖溶液全部滴加上样至DEAE-Sepharose Fast Flow(3.6cm×20cm)纤维素阴离子交换层析柱中,依次用0,0.1mol/L的NaCl溶液分别洗脱10个柱体积,洗脱的流速为1.2mL/min,收集0.1mol/L的NaCl溶液洗脱液,冷冻干燥得到初步纯化多糖;
S3、初步纯化多糖的进一步纯化
称取0.1mol/LNaCl溶液洗脱得到的初步纯化多糖25mg,用5mL超纯水溶解,然后上样至SephacrylS-200HR凝胶柱,凝胶柱内径为2cm,柱床高度为75cm,用蒸馏水洗脱,洗脱的流速为0.4mL/min,收集第4~5个柱体积洗脱液,冷冻干燥得到纯化多糖。
2.根据权利要求1所述的多糖,其特征在于:步骤S1固液比为1:5。
3.根据权利要求1所述的多糖,其特征在于:步骤S1提取3次,每次2h。
4.根据权利要求1所述的多糖,其特征在于:步骤S1以Sevag法除蛋白,3000r/min离心10min去除中间有机相与水相交界处乳化层。
5.根据权利要求1所述的多糖,其特征在于:步骤S1加入4倍体积无水乙醇沉淀多糖。
6.根据权利要求1所述的多糖,其特征在于:步骤S1加无水乙醇后于4℃静置24h。
7.根据权利要求1所述的多糖,其特征在于:步骤S1加无水乙醇静置后以3000r/min离心10min收集沉淀。
8.权利要求1-7任一所述多糖用于促进猪***体外成熟的用途。
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CN201811051852.8A CN109096411A (zh) | 2018-09-10 | 2018-09-10 | 一种植物多糖及用于促进猪***体外成熟的用途 |
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Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN111840312A (zh) * | 2020-06-30 | 2020-10-30 | 芜湖职业技术学院 | 一种具有增强***及胚胎发育成熟的枸杞多糖组合物 |
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2018
- 2018-09-10 CN CN201811051852.8A patent/CN109096411A/zh not_active Withdrawn
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Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
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CN111840312A (zh) * | 2020-06-30 | 2020-10-30 | 芜湖职业技术学院 | 一种具有增强***及胚胎发育成熟的枸杞多糖组合物 |
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