CN103479875A - 一种高活性玉竹浓缩液的制备方法及其应用 - Google Patents

Abstract

本发明提供了高活性玉竹浓缩液的制备方法，包括玉竹酶水解反应、动态循环提取、微孔膜过滤技术、一次减压浓缩、高速离心及二次减压浓缩。玉竹酶水解反应条件为玉竹与纯净水重量比1：6～12，25～45℃下酶水解1～4h；85～95℃下提取两次；微孔膜过滤，输送压力0.3～0.6Mpa，膜过滤孔径0.5～1.5μm；过滤液减压60～75℃、-0.06～-0.08Mpa下一次浓缩，浓缩至固形物含量15～25%Brix；浓缩液输送到离心机中纯化分离，转速12000～20000rpm，分离因数11000～15000；二次减压浓缩，温度60～75℃，真空度-0.06～-0.08Mpa，当浓缩液固形物含量达60～65%Brix时，浓缩结束。

Description

一种高活性玉竹浓缩液的制备方法及其应用

技术领域

本发明属于属医药、保健食品领域，特别提供一种高活性玉竹浓缩液的制备方法及其应用。

背景技术

玉竹为百合科黄精属玉竹Polygonatumodoratum(Mill.)Druce多年生草本植物的干燥根。作为中药被列为上品始载于《神农本草经》，主要含有玉竹多糖、甾体皂苷、黄酮、鞣质、甾醇、粘液质、生物碱和强心苷等成分，其中玉竹多糖、甾体皂苷为玉竹的主要活性成分，具有养阴润燥、生津止咳之功效，多用于治疗咽干口渴、肺胃阴伤、内热消渴、心烦心悸、燥热咳嗽、皮肤粗糙等症，对糖尿病有良好的治疗效果。玉竹被列入***颁布的既是食品又是药品的物品名单中，安全性高。近年来的药理研究表明，玉竹具有增强免疫力、抗动脉粥样硬化、调节心肌搏动频率和强度、降血脂、延缓衰老、抗菌、扩张血管、降血压等作用。

目前国内外对玉竹的研究及利用主要有以下几种方法：一是将玉竹烘干磨粉，直接食用或添加到面粉等食物中食用；二是离子交换树脂法，该方法是把玉竹用纯化水浸泡过夜，用离子交换树脂吸附玉竹浸泡液，再用有机溶剂洗脱，收集洗脱液进行减压蒸馏，制成玉竹浓缩液；三是有机溶剂提取法，把玉竹在提取器中用乙醇浸泡提取，将提取液过滤后，置于减压浓缩器中进行蒸馏，得到玉竹浓缩液。上述三种方法的共性问题是，工艺比较粗放，技术比较落后，自动化程度低，产品无效杂质含量较高，玉竹有效成分的含量较低（玉竹多糖含量3%～6%，玉竹甾体皂苷含量0.3%～0.8%），规模化、标准化生产难以实现。

发明内容

本发明的目的是为克服现有技术中存在的加工工艺比较粗放，技术比较落后，自动化程度低，产品无效杂质含量较高，玉竹有效成分含量较低等问题，而发明的一种技术工艺路线成熟、产品有效成分大幅提高、自动化程度较高的一种高活性玉竹浓缩液的制备方法及其应用，该方法易于实现规模化、标准化生产。

本发明具体提供了一种高活性玉竹浓缩液的制备方法，其特征在于，包括下述步骤：

（1）玉竹酶水解反应：把清洗过的玉竹投入强制外循环式提取罐中，加入6～12倍玉竹重量的纯净水，利用玉竹植株内存在的天然生物酶，在25～45℃下保温，酶水解反应1～4h，使玉竹生物酶对玉竹多糖、甾体皂苷与蛋白、淀粉等络合物质充分反应，释放多糖、皂苷成分，提高玉竹多糖、玉竹甾体皂苷等有效高活性成分含量；

（2）动态循环提取：玉竹酶水解反应完全后，开启提取罐循环泵，提取液通过换热片进行循环动态加热，提取温度85～95℃，提取时间2～6h；过滤后的残渣按上述工艺参数再提取一次，合并两次提取液；

（3）微孔膜过滤：将上述提取液高压输送并通过微孔膜过滤器，输送压力为0.3～0.6MPa，膜过滤孔径0.5～1.5μm，以除掉固体颗粒杂质和大分子有机物质，然后把滤液输送到暂存罐中；

（4）一次减压浓缩：开启真空泵，使减压浓缩罐保持负压状态，真空度大于等于-0.03Mpa时将暂存罐中的提取液吸入减压浓缩罐中，开启蒸汽阀进行浓缩，浓缩温度60～75℃，真空度-0.06～-0.08Mpa，浓缩至固形物含量至15%～25%Brix（w/w），输送到暂存罐中，将温度降至4～12℃；

（5）高速离心：将暂存罐中的料液输送到离心机中进行离心，去除淀粉等大分子颗粒，转速12000～20000rpm，分离因数10000～15000，1～3h清洗一次离心机，离心液置于暂存罐中；

（6）二次减压浓缩：将暂存罐中离心分离后的低浓度浓缩液吸入减压浓缩罐中，进行二次减压浓缩，浓缩温度60～75℃，真空度-0.06～-0.08Mpa，当浓缩液的固形物含量达到60%～65%Brix（w/w）时，浓缩结束。

采用蒽酮-硫酸比色法检测本发明所述方法制得的高活性玉竹浓缩液，其玉竹多糖含量为8%～12%；采用薄层-分光光度法检测，玉竹甾体皂苷含量1.0%～2.5%。

本发明还提供了所述高活性玉竹浓缩液制备的最佳工艺方法，具体如下：（1）玉竹酶水解反应：把清洗过的玉竹投入强制外循环式提取罐中，加入10倍玉竹重量的纯净水，利用玉竹植株内存在的天然生物酶，在35℃下保温，酶水解反应2.5h；

（2）动态循环提取：玉竹酶水解反应完全后，开启提取罐循环泵，提取液通过换热片进行循环动态加热，提取温度92℃，提取时间5h；过滤后的残渣按上述工艺参数再提取一次，合并两次提取液；

（3）微孔膜过滤：将上述提取液高压输送并通过微孔膜过滤器，输送压力为0.4MPa，膜过滤孔径1.0μm，把滤液输送到暂存罐中；

（4）一次减压浓缩：开启真空泵，使减压浓缩罐保持负压状态，真空度达到-0.03Mpa时将暂存罐中的提取液吸入减压浓缩罐中，开启蒸汽阀进行浓缩，浓缩温度65℃，真空度-0.07Mpa，浓缩至固形物含量至20%Brix（w/w），输送到暂存罐中，将温度降至8℃；

（5）高速离心：将暂存罐中的料液输送到高速管式离心机中进行离心，转速16000rpm，分离因数12000，1.5h清洗一次离心机，离心液置于暂存罐中；

（6）二次减压浓缩：将暂存罐中离心分离后的低浓度浓缩液吸入减压浓缩罐中，进行二次减压浓缩，浓缩温度68℃，真空度-0.07Mpa，当浓缩液的固形物含量达到65%Brix（w/w）时，浓缩结束。

本发明所述高活性玉竹浓缩液的制备方法，其特征在于：所述的玉竹包括关玉竹、湘玉竹及其加工品。

由本发明所述高活性玉竹浓缩液制备方法所制备得到的高活性玉竹浓缩液可用于制作降血糖药品、增强免疫力药品及保健食品等产品。

在本发明的高活性玉竹浓缩液的制备工艺中，创造性的发明、使用了玉竹酶水解反应技术、动态循环提取技术、二次浓缩技术、微孔膜过滤技术、高速离心技术，使加工工艺更加先进，提高了自动化控制程度，有效提高了浓缩液玉竹多糖与玉竹甾体皂苷的含量，增加了产品的理化指标稳定性，使产品质量得到明显提高。本发明优化了高活性玉竹浓缩液的制备工艺参数，研究了玉竹天然生物酶对玉竹多糖、甾体皂苷与蛋白、淀粉等络合物质反应温度、时间，最大限度释放玉竹多糖、甾体皂苷等高活性成分；对微孔滤膜的压力及其流速、高速离心机分离因数的选择、低温处理待离心浓缩液、浓缩次数及浓度控制等参数进行了***的优化，明显提高了产品的得率、有效活性成分含量及产品品质，可用于制作降血糖、增强免疫力的药品及保健食品等产品。本发明的工艺技术流程可广泛应用于中药材深加工行业，有利于提高中药材的附加值，促进中药加工现代化发展。

具体实施方式

实施例1

（1）玉竹酶水解反应：把已精选、清洗并称重过的关玉竹净片500kg投入强制外循环式提取罐（实施例中简称提取罐）中，加入纯净水3000kg，利用玉竹植株内存在的天然生物酶，在25℃下保温，酶水解反应时间1h。

（2）动态循环提取：玉竹酶水解反应完全后，开启提取罐循环泵，提取液通过换热片进行循环动态加热，提取温度85℃，提取时间2h；过滤后的残渣按上述工艺参数再提取一次，合并两次提取液；

（3）微孔膜过滤：将上述提取液高压输送并通过微孔膜过滤器，输送压力为0.3MPa，膜过滤孔径0.6μm，以除掉固体颗粒杂质和大分子有机物质，然后把滤液输送到暂存罐中；

（4）一次减压浓缩：开启真空泵，使减压浓缩罐保持负压状态，真空度达到-0.03Mpa时将暂存罐中的提取液吸入减压浓缩罐中，开启蒸汽阀进行浓缩，浓缩温度60℃，真空度-0.06Mpa，浓缩至固形物含量至15%Brix（w/w），输送到暂存罐中，将温度降至4℃；

（5）高速离心：将暂存罐中的料液输送到GQLB-105N型管式离心机（本发明实施例均采用该离心机，以下简称离心机）中进行离心，去除淀粉等大分子颗粒，转速12000rpm，分离因数11000，1h清洗一次离心机，离心液置于暂存罐中；

（6）二次减压浓缩：将暂存罐中离心分离后的低浓度浓缩液吸入浓缩罐中，进行二次减压浓缩，浓缩温度60℃，真空度-0.06Mpa，当浓缩液的固形物含量达到60%Brix（w/w）时，浓缩结束。

通过本提取工艺的实施，获得高活性玉竹浓缩液305.5kg，固形物含量为60%Brix（w/w），产品得率为61.1%，玉竹多糖含量为8.7%，玉竹甾体皂苷含量为1.1%。

实施例2

（1）玉竹酶水解反应：把已精选、清洗并称重过的湘玉竹净片500kg投入提取罐中，加入纯净水6000kg，利用玉竹植株内存在的天然生物酶，在45℃下保温，酶水解反应时间4h。

（2）动态循环提取：玉竹酶水解反应完全后，开启提取罐循环泵，提取液通过换热片进行循环动态加热，提取温度95℃，提取时间6h；过滤后的残渣按上述工艺参数再提取一次，合并两次提取液；

（3）微孔膜过滤：将上述提取液高压输送并通过微孔膜过滤器，输送压力为0.5MPa，膜过滤孔径1.5μm，以除掉固体颗粒杂质和大分子有机物质，然后把滤液输送到暂存罐中；

（4）一次减压浓缩：开启真空泵，使减压浓缩罐保持负压状态，真空度达到-0.03Mpa时将暂存罐中的提取液吸入减压浓缩罐中，开启蒸汽阀进行浓缩，浓缩温度72℃，真空度-0.08Mpa，浓缩至固形物含量至25%Brix（w/w），输送到暂存罐中，将温度降至12℃；

（5）高速离心：将暂存罐中的料液输送到离心机中进行离心，去除淀粉等大分子颗粒，转速19000rpm，分离因数14000，2.5h清洗一次离心机，离心液置于暂存罐中；

（6）二次减压浓缩：将暂存罐中离心分离后的低浓度浓缩液吸入浓缩罐中，进行二次减压浓缩，浓缩温度72℃，真空度-0.08Mpa，当浓缩液的固形物含量达到62%Brix（w/w）时，浓缩结束。

通过本提取工艺的实施，获得高活性玉竹浓缩液301.0kg，固形物含量为62%Brix（w/w），产品得率为60.2%，玉竹多糖含量为9.1%，玉竹甾体皂苷含量为1.3%。

实施例3

（1）玉竹酶水解反应：把已精选、清洗并称重过的关玉竹净片500kg投入提取罐中，加入纯净水5000kg，利用玉竹植株内存在的天然生物酶，在35℃下保温，酶水解反应时间2.5h。

（2）动态循环提取：玉竹酶水解反应完全后，开启提取罐循环泵，提取液通过换热片进行循环动态加热，提取温度92℃，提取时间5h；过滤后的残渣按上述工艺参数再提取一次，合并两次提取液；

（3）微孔膜过滤：将上述提取液高压输送并通过微孔膜过滤器，输送压力为0.4MPa，膜过滤孔径1.0μm，以除掉固体颗粒杂质和大分子有机物质，然后把滤液输送到暂存罐中；

（4）一次减压浓缩：开启真空泵，使减压浓缩罐保持负压状态，真空度达到-0.03Mpa时将暂存罐中的提取液吸入减压浓缩罐中，开启蒸汽阀进行浓缩，浓缩温度65℃，真空度-0.07Mpa，浓缩至固形物含量至20%Brix（w/w），输送到暂存罐中，将温度降至8℃；

（5）高速离心：将暂存罐中的料液输送到离心机中进行离心，去除淀粉等大分子颗粒，转速16000rpm，分离因数12000，1.5h清洗一次离心机，离心液置于暂存罐中；

（6）二次减压浓缩：将暂存罐中离心分离后的低浓度浓缩液吸入浓缩罐中，进行二次减压浓缩，浓缩温度68℃，真空度-0.07Mpa，当浓缩液的固形物含量达到65%Brix（w/w）时，浓缩结束。

通过本提取工艺的实施，获得高活性玉竹浓缩液355.2kg，固形物含量为65%Brix（w/w），产品得率为71.04%，玉竹多糖含量为12%，玉竹甾体皂苷含量为2.5%。

对比例

（1）把已精选、清洗并称重过的关玉竹净片500kg投入提取罐中，加入纯净水5000kg，开启提取罐循环泵，提取液通过换热片进行循环动态加热，提取温度92℃，提取时间5h；过滤后的残渣按上述工艺参数再提取一次，合并两次提取液；

（2）微孔膜过滤：将上述提取液高压输送并通过微孔膜过滤器，输送压力为0.4MPa，膜过滤孔径1.0μm，以除掉固体颗粒杂质和大分子有机物质，然后把滤液输送到暂存罐中；

（3）一次减压浓缩：开启真空泵，使减压浓缩罐保持负压状态，真空度达到-0.03Mpa时将暂存罐中的提取液吸入减压浓缩罐中，开启蒸汽阀进行浓缩，浓缩温度65℃，真空度-0.07Mpa，浓缩至固形物含量至20%Brix（w/w），输送到暂存罐中，将温度降至8℃；

（4）高速离心：将暂存罐中的料液输送到离心机中进行离心，去除淀粉等大分子颗粒，转速16000rpm，分离因数12000，1.5h清洗一次离心机，离心液置于暂存罐中；

（5）二次减压浓缩：将暂存罐中离心分离后的低浓度浓缩液吸入浓缩罐中，进行二次减压浓缩，浓缩温度68℃，真空度-0.07Mpa，当浓缩液的固形物含量达到65%Brix（w/w）时，浓缩结束。

通过本提取工艺的实施，获得玉竹浓缩液310.9kg，固形物含量为61%Brix（w/w），产品得率为62.8%，玉竹多糖含量为3.8%，玉竹甾体皂苷含量为0.35%。

（一）、高活性玉竹浓缩液（简称玉竹膏，下同）降血糖作用的实验研究（以下实验均采用实施例3制备的玉竹膏作为供试药剂）

实施例4

玉竹膏对正常小鼠血糖的影响：

1.材料与方法：选取正常昆明种小鼠50只，体重23～25g，随机分为5组，每组10只（雌雄各半），分别经口灌胃玉竹膏62.5g/kg、18.75g/kg、6.25g/kg，阳性对照药降糖药2.5mg/kg及生理盐水，各给药组连续给药15d，末次给药24h后眼眶去血（取血前禁食12h），用磷钼酸比色法测定血糖。

2.结果：结果见表1。

表1玉竹膏连续给药15d后对正常小鼠血糖值的影响

与生理盐水组比较*P<0.05、**P<0.01。

结果表明，连续经口灌胃玉竹膏15d后，对正常小鼠均有明显的降血糖作用，高、中、低剂量组玉竹膏与对照生理盐水组相比均有显著差异（高剂量组P<0.01，中剂量组P<0.05，低剂量组P<0.01），降糖药也有明显的降血糖作用（P<0.01），高剂量组玉竹膏与降糖药组的降糖水平相似，其他剂量组降糖效果不及降糖药组，但统计意义上均无显著差异（P>0.05）。

实施例5

玉竹膏对四氧嘧啶高血糖小鼠的影响：

1.建模：取禁食24h以上的昆明种小鼠，尾静脉注射四氧嘧啶生理盐水溶液75mg/kg(0.1ml/10g)，30S内注射完毕，注射后48h眼眶取血测血糖，取血前禁食12h，采用磷钼酸比色法测定血糖，选择血糖值高于11.0mmol/L的小鼠进行实验。

2.材料与方法：取50只建模后血糖值符合要求的昆明种小鼠，雌雄各半，体重25～28g，随机分为5组，每组10只，领取10只正常小鼠，亦雌雄各半，作为正常对照组，从分组当天起开始分别经口灌胃给药玉竹膏62.5g/kg、18.75g/kg、6.25g/kg、降糖药7.5mg/kg及生理盐水，分别测定各建模组2d、7d、14d、21d时的血糖值，每次测定血糖时间均为末次给药后24h，测定血糖前禁食12h，眼眶取血，采用磷钼酸比色法测定血糖值。

3.结果：结果见表2。

表2玉竹膏不同给药时间对四氧嘧啶糖尿病小鼠血糖值的影响（n=10）

与生理盐水组比较，*P<0.05、**P<0.01。

结果表明，玉竹膏需较长时间给药才能对四氧嘧啶导致的高血糖小鼠显示出降血糖的作用。从实验结果可以看出给药7d时玉竹膏各剂量组与模拟组之间无显著差异（P<0.05），给药14d时高剂量组与对照生理盐水组相比有显著差异（P<0.05），其他剂量组有降糖表现，但在统计学意义上无显著差异（P>0.05）；21d时，高剂量组、中剂量组与模型组有显著差异（P<0.01），低剂量组也有降糖作用，但在统计学意义上无显著差异（P>0.05）；降糖药组给药后显示出较快的降血糖作用，给药21d后，能使血糖保持在较低的水平，降血糖作用比玉竹各剂量组要好。模型组与正常组相比有极显著的差异，且模型组血糖均大于11.1mmol/L，符合实验要求。

（二）玉竹膏增强免疫力作用的实验研究

实验例6

玉竹膏给药对小鼠增强免疫力的影响

1.材料与方法：选取正常昆明种小鼠40只，体重23～25g，随机分4组，每组10只（雌雄各半），分别经口灌胃玉竹膏62.5g/kg、18.75g/kg、6.25g/kg，阳性对照为蒸馏水，各给药组连续给药30d，测定各组小鼠免疫能力指标。

1.1迟发型***反应实验方法和考察指标：绵羊红细胞诱发小鼠DTH(足跖增厚法)，取羊血，用生理盐水洗涤3次，并用离心机2000rpm离心10min，每只小鼠经腹腔注射绵阳红细胞（SRBC）0.2ml，致敏4d后，测量左后足跖部厚度，同一部位测量3次，取平均值。在测量部位皮下注射20%积压SRBC（v/v）20ml，于注射后24h测量左后足跖部厚度，以注射SRBC前后足跖厚度的差值来表示DTH的程度。

1.2抗体生成细胞检测（Jerne载片法）：将压积SRBC用配制成2%（v/v）细胞悬浮液，每只小鼠腹腔注射0.2ml，进行免疫。4d后，将小鼠颈椎脱臼处死，取出脾脏，用Hank’s液洗涤2遍，然后将细胞悬浮在5ml RPMI1640培养液中，计细胞数，将细胞浓度调整为5×10⁶个/ml。将表层培养基溶解后，45℃水浴保温，与pH7.2～7.4等量2倍浓度的Hank’s液混合，分装每管0.5ml，再向管内加入50μl 10%SRBC（v/v）和25μl脾细胞悬浮液（5×10⁶个/ml），混合均匀，置于琼脂糖玻片，置于CO₂培养箱中温育1.5h后，加入SA缓冲液稀释补体（1:6），继续温育1.5h，计算溶血空斑数。

1.3小鼠腹腔巨噬细胞吞噬鸡红细胞试验（体外法）：实验前4d给每只小鼠腹腔注射2%压积绵羊红细胞0.2ml。用颈椎脱臼法处死小鼠，经腹腔注射给予小鼠含有5%小牛血清的Hank’s液5ml/只，2min后抽取腹水1～2ml，将Hank’s液配制成1%鸡RBC悬浮液0.5ml和0.5ml的腹水加入试管内，混匀，取混悬液0.5ml涂片，37℃保温25min，取出后用生理盐水从玻片背面冲洗，固定、染色、阅片，计算吞噬率和吞噬指数。

2、结果

2.1结果见表3：

表3玉竹膏给药对绵羊红细胞诱导小鼠DTH的作用（n=10）

与蒸馏水组比较，*P<0.05、**P<0.01。

玉竹膏给药对绵羊红细胞（SRBC）诱导小鼠DTH的影响由表3可以看出，玉竹膏高剂量组、中剂量组的足跖肿胀度高于蒸馏水对照组，差异均有显著性意义（P<0.05，P<0.01），表明本实验中玉竹膏给药能增强小鼠的迟发型***反应。

2.2结果见表4：

表4玉竹膏给药对抗体生成细胞数的影响（n=10）

与蒸馏水组比较，*P<0.05、**P<0.01。

玉竹膏给药对抗体生成细胞的影响由表4可以看出，玉竹膏高剂量组溶血斑数/全脾高于溶剂对照组，差异具有显著意义（P<0.05），表明玉竹膏高剂量组、中剂量组对小鼠抗体生成细胞的增殖具有促进作用。

2.3结果见表5：

表5玉竹膏给药对小鼠腹腔巨噬细胞吞噬鸡红细胞试验的影响（n=10）

与蒸馏水组比较，*P<0.05、**P<0.01。

玉竹膏给药对小鼠腹腔巨噬细胞吞噬鸡红细胞试验的影响由表5可以看出，玉竹膏处理高剂量组小鼠巨噬细胞吞噬鸡红细胞能力（吞噬率和吞噬指数）高于蒸馏水对照组，差异具有显著性意义（吞噬率P<0.05、吞噬指数P<0.01），表明玉竹膏高剂量组、中剂量组对小鼠巨噬细胞吞噬鸡红细胞能力有显著提高作用。

3.结论

试验结果显示，玉竹膏对昆明种小鼠的迟发型***反应、抗体生成细胞数、巨噬细胞吞噬鸡红细胞能力均有显著作用；玉竹膏高剂量组、中剂量组、低剂量组与对照蒸馏水组比较，高剂量组、中剂量组表现显著性差异（P<0.05，P<0.01）。综上所述，玉竹膏具有较强增强机体免疫力的作用。

上述实验证明玉竹膏具有降血糖及增强免疫力作用。综合各试验结果，可以初步认为小鼠有效给药剂量为62.5g/kg时，能够降低糖尿病小鼠的血糖水平，增强小鼠机体免疫力。

上述实施例只为说明本发明的技术构思及特点，其目的在于让熟悉此项技术的人士能够了解本发明的内容并据以实施，并不能以此限制本发明的保护范围。凡根据本发明精神实质所作的等效变化或修饰，都应涵盖在本发明的保护范围之内。

Claims (4)

1.一种高活性玉竹浓缩液的制备方法，其特征在于，包括下述步骤：

（1）玉竹酶水解反应：把清洗过的玉竹投入强制外循环式提取罐中，加入6～12倍玉竹重量的纯净水，利用玉竹植株内存在的天然生物酶，在25～45℃下保温，酶水解反应1～4h；

（2）动态循环提取：玉竹酶水解反应完全后，开启提取罐循环泵，提取液通过换热片进行循环动态加热，提取温度85～95℃，提取时间2～6h；过滤后的残渣按上述工艺参数再提取一次，合并两次提取液；

（3）微孔膜过滤：将上述提取液高压输送并通过微孔膜过滤器，输送压力为0.3～0.6MPa，膜过滤孔径0.5～1.5μm，把滤液输送到暂存罐中；

（4）一次减压浓缩：开启真空泵，使减压浓缩罐保持负压状态，真空度大于等于-0.03Mpa时将暂存罐中的提取液吸入减压浓缩罐中，开启蒸汽阀进行浓缩，浓缩温度60～75℃，真空度-0.06～-0.08Mpa，浓缩至固形物含量至15%～25%Brix（w/w），输送到暂存罐中，将温度降至4～12℃；

（5）高速离心：将暂存罐中的料液输送到离心机中进行离心，转速12000～20000rpm，分离因数10000～15000，1～3h清洗一次离心机，离心液置于暂存罐中；

（6）二次减压浓缩：将暂存罐中离心分离后的低浓度浓缩液吸入减压浓缩罐中，进行二次减压浓缩，浓缩温度60～75℃，真空度-0.06～-0.08Mpa，当浓缩液的固形物含量达到60%～65%Brix（w/w）时，浓缩结束。

2.按照权利要求1所述高活性玉竹浓缩液的制备方法，其特征在于：所述的玉竹包括关玉竹、湘玉竹及其加工品。

3.按照权利要求1所述高活性玉竹浓缩液的制备方法，其特征在于，具体步骤为：

（1）玉竹酶水解反应：把清洗过的玉竹投入强制外循环式提取罐中，加入10倍玉竹重量的纯净水，利用玉竹植株内存在的天然生物酶，在35℃下保温，酶水解反应2.5h；

（2）动态循环提取：玉竹酶水解反应完全后，开启提取罐循环泵，提取液通过换热片进行循环动态加热，提取温度92℃，提取时间5h；过滤后的残渣按上述工艺参数再提取一次，合并两次提取液；

（3）微孔膜过滤：将上述提取液高压输送并通过微孔膜过滤器，输送压力为0.4MPa，膜过滤孔径1.0μm，把滤液输送到暂存罐中；

（4）一次减压浓缩：开启真空泵，使减压浓缩罐保持负压状态，真空度达到-0.03Mpa时将暂存罐中的提取液吸入减压浓缩罐中，开启蒸汽阀进行浓缩，浓缩温度65℃，真空度-0.07Mpa，浓缩至固形物含量至20%Brix（w/w），输送到暂存罐中，将温度降至8℃；

（5）高速离心：将暂存罐中的料液输送到离心机中进行离心，转速16000rpm，分离因数12000，1.5h清洗一次离心机，离心液置于暂存罐中；

（6）二次减压浓缩：将暂存罐中离心分离后的低浓度浓缩液吸入减压浓缩罐中，进行二次减压浓缩，浓缩温度68℃，真空度-0.07Mpa，当浓缩液的固形物含量达到65%Brix（w/w）时，浓缩结束。

4.一种权利要求1所述高活性玉竹浓缩液的制备方法在制作降血糖药品、增强免疫力药品及保健食品方面的应用。