CN105218377B - 一种羟基酪醇no供体衍生物及其制备方法和应用 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种羟基酪醇NO供体衍生物及其制备方法和应用,其用于制备在降血糖和血管内皮保护方面的药物。经过体内外药理实验证实,上述化合物具有以下药理活性:(1)清除活性氧自由基;(2)释放NO,舒张血管;(3)抑制葡萄糖苷酶活性,有一定的降血糖作用。体内药动学实验结果表明其能在体内迅速释放NO,使其达到较高的水平。本发明提供羟基酪醇NO供体衍生物的制备方法,通过4步有机合成即可得到改衍生物,具有原料易得,反应条件温和,反应过程操作简单,所用试剂便宜的优点。该衍生物具有明显的降糖及血管舒张作用,可用于防治糖尿病及其血管并发症,具有较大的临床应用价值。
Description
技术领域:
本发明属于新药研发领域,具体涉及一种羟基酪醇NO供体衍生物及其制备方法和在降血糖和血管内皮保护方面的应用。
背景技术:
羟基酪醇(hydroxytyrosol,HT)化学名3,4-二羟基苯乙醇,是橄榄油中具有强抗氧化性的一种天然多酚类化合物,广泛存在于木犀科植物橄榄的果实和枝叶中,对多种活性氧具有消除作用,具有较强的抗氧化活性。除此之外,大量研究证实羟基酪醇还在预防心脑血管疾病、抗炎抗癌等方面有良好的作用。羟基酪醇因其特殊的生物和药理活性,已广泛应用于食品工业、营养保健和化妆品中。目前国外已经相继有羟基酪醇的胶囊和片剂问世。
一氧化氮(NO)供体型药物是在体内经酶或非酶作用释放NO。经典药物是***、硝普钠等单一结构直接释放NO,目前通过各种连接基团与已知药物或活性药效团与NO供体形成药物日趋受到关注。已证明:给予NO底物或外源性NO供体药物能明显改善血管病变中舒血管效应并延缓病变过程。美国Merck公司研究的已经进入Ⅱ期临床NO-供体型COX-2抑制剂,就是通过释放NO保护血管内皮细胞,而且还可以降低胃肠道粘膜刺激。目前作用于NO环节的NO供体药物是改善内皮功能有效方法之一。
发明内容:
本发明的目的在于提供一种羟基酪醇NO供体衍生物及其制备方法,以及其在降低血糖、抗氧化应激和修复内皮功能障碍方面的应用。
为达到上述目的,本发明采用如下技术方案来实现的:
一种羟基酪醇NO供体衍生物,其化学结构式为:
R为其中n=1~6。
上述一种羟基酪醇NO供体衍生物的制备方法,包括:
当n=1时,合成步骤如下:
1)3,4-二羟基苯甲醇经取代反应制得4-氯甲基-1,2-苯二酚;
2)4-氯甲基-1,2-苯二酚与二氯二苯甲烷反应制得5-氯甲基-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯;
3)5-氯甲基-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯与硝酸银发生亲核取代反应制得5-硝酰氧基甲基-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯;
4)5-硝酰氧基甲基-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯经过酸性水解制得4-硝酰氧基甲基)-1,2-苯二酚;
当n=2时,合成步骤如下:
1)3,4-二羟基苯乙醇经取代反应制得4-(2-氯乙基)-1,2-苯二酚;
2)4-(2-氯乙基)-1,2-苯二酚与二氯二苯甲烷反应制得5-(2-氯乙基)-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯;
3)5-(2-氯乙基)-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯与硝酸银发生亲核取代反应制得5-(2-硝酰氧基乙基)-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯;
4)5-(2-硝酰氧基乙基)-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯经过酸性水解制得4-(2-硝酰氧基乙基)-1,2-苯二酚;
当n=3时,合成步骤如下:
1)3,4-二羟基苯丙醇经取代反应制得4-(3-氯丙基)-1,2-苯二酚;
2)4-(3-氯丙基)-1,2-苯二酚与二氯二苯甲烷反应制得5-(3-氯丙基)-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯;
3)5-(3-氯丙基)-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯与硝酸银发生亲核取代反应制得5-(3-硝酰氧基丙基)-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯;
4)5-(3-硝酰氧基丙基)-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯经过酸性水解制得4-(3-硝酰氧基丙基)-1,2-苯二酚;
当n=4时,合成步骤如下:
1)3,4-二羟基苯丁醇经取代反应制得4-(4-氯丁基)-1,2-苯二酚;
2)4-(4-氯丁基)-1,2-苯二酚与二氯二苯甲烷反应制得5-(4-氯丁基)-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯;
3)5-(4-氯丁基)-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯与硝酸银发生亲核取代反应制得5-(4-硝酰氧基丁基)-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯;
4)5-(4-硝酰氧基丁基)-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯经过酸性水解制得4-(4-硝酰氧基丁基)-1,2-苯二酚;
当n=5时,合成步骤如下:
1)3,4-二羟基苯戊醇经取代反应制得4-(5-氯戊基)-1,2-苯二酚;
2)4-(5-氯戊基)-1,2-苯二酚与二氯二苯甲烷反应制得5-(5-氯戊基)-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯;
3)5-(5-氯戊基)-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯与硝酸银发生亲核取代反应制得5-(5-硝酰氧基戊基)-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯;
4)5-(5-硝酰氧基戊基)-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯经过酸性水解制得4-(5-硝酰氧基戊基)-1,2-苯二酚;
当n=6时,合成步骤如下:
1)经取代反应制得4-(6-氯己基)-1,2-苯二酚;
2)4-(6-氯己基)-1,2-苯二酚与二氯二苯甲烷反应制得5-(6-氯己基)-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯;
3)5-(6-氯己基)-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯与硝酸银发生亲核取代反应制得5-(6-硝酰氧基己基)-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯;
4)5-(6-硝酰氧基己基)-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯经过酸性水解制得4-(6-硝酰氧基己基)-1,2-苯二酚。
上述一种羟基酪醇NO供体衍生物的应用,在制备预防和治疗糖尿病血管并发症的药物中的应用。
本发明进一步的改进在于:作为抗氧化剂的应用。
本发明进一步的改进在于:在制备血管扩张药物中的应用。
本发明进一步的改进在于:在制备用于血管内皮保护药物中的应用。
本发明进一步的改进在于:在制备降血糖药物中的应用。
相对于现有技术,本发明具有如下的优点:
本发明是以天然多酚类化合物羟基酪醇为母核,在其4位侧链上引入不同长度的碳链,合成一系列羟基酪醇NO供体衍生物。通过4步有机合成即可得,具有原料易得,反应条件温和,反应过程操作简单,所用试剂便宜的优点。本发明经过体内外药理实验证实,上述化合物具有以下药理活性:(1)清除活性氧自由基;(2)释放NO,舒张血管;(3)抑制葡萄糖苷酶活性,有一定的降血糖作用。体内药动学实验结果表明其能在体内迅速释放NO,使其达到较高的水平。
本发明提供的羟基酪醇NO供体衍生物有良好的降血糖及血管舒张作用,可用于防治糖尿病及其血管并发症,具有较大的临床应用价值。
附图说明:
图1为4-(2-硝酰氧基甲基)-1,2-苯二酚的合成路线图;
图中标注的具体为:
(a)CCl4,PPh3,MeCN;(b)Ph2CCl2,PhMe;(c)AgNO3,MeCN;(d)AcOH:H2O(4:1)。
图2为4-(2-硝酰氧基乙基)-1,2-苯二酚的合成路线图;
图中标注的具体为:
(a)CCl4,PPh3,MeCN;(b)Ph2CCl2,PhMe;(c)AgNO3,MeCN;(d)AcOH:H2O(4:1)。
图3为4-(2-硝酰氧基丙基)-1,2-苯二酚的合成路线图;
图中标注的具体为:
(a)CCl4,PPh3,MeCN;(b)Ph2CCl2,PhMe;(c)AgNO3,MeCN;(d)AcOH:H2O(4:1)。
图4为4-(2-硝酰氧基丁基)-1,2-苯二酚的合成路线图;
图中标注的具体为:
(a)CCl4,PPh3,MeCN;(b)Ph2CCl2,PhMe;(c)AgNO3,MeCN;(d)AcOH:H2O(4:1)。
图5为4-(2-硝酰氧基戊基)-1,2-苯二酚的合成路线图;
图中标注的具体为:
(a)CCl4,PPh3,MeCN;(b)Ph2CCl2,PhMe;(c)AgNO3,MeCN;(d)AcOH:H2O(4:1)。
图6为4-(2-硝酰氧基己基)-1,2-苯二酚的合成路线图;
图中标注的具体为:
(a)CCl4,PPh3,MeCN;(b)Ph2CCl2,PhMe;(c)AgNO3,MeCN;(d)AcOH:H2O(4:1)。
图7为HT-NO体外NO释放曲线。
图8为HT-NO对大鼠胸主动脉环舒张活性的影响。
图9为HT-NO对人脐静脉内皮细胞活性的影响。
图10为HT-NO对高糖诱导的人脐静脉内皮细胞活性的影响。
图11为HT-NO对人脐静脉内皮细胞NO水平的影响。
图12为HT-NO对高糖诱导的人脐静脉内皮细胞NO水平的影响。
图13-1为HT在-20℃条件下加入1%抗坏血酸冻存一周的浓度变化曲线。
图13-2为HT-NO在-20℃条件下加入1%抗坏血酸冻存一周的浓度变化曲线。
图14为大鼠灌胃HT的血药浓度-时间曲线。
图15为大鼠灌胃HT-NO的血药浓度-时间曲线。
图16为大鼠灌胃HT-NO后HT的血药浓度-时间曲线。
图17为大鼠灌胃HT-NO、HT和生理盐水24h内血浆中NO水平变化曲线。
具体实施方式:
下面用过实施例来对本发明作进一步说明,应当指出的是这些实施例仅用于对本发明进行举例说明,不应理解为对本发明的限制。
HT-NO的合成步骤:
实施例1
4-氯甲基-1,2-苯二酚的合成
将3,4-二羟基苯甲醇溶解于25mL无水乙腈中,依次加入三苯基磷、四氯化碳,氮气保护,室温搅拌10h,待反应完全后,减压除去乙腈溶剂,加入H2O(20mL),用二氯甲烷萃取,饱和NaCl溶液洗涤,无水硫酸钠干燥,过滤,减压浓缩得黄色油状物。柱层析分离得4-氯甲基-1,2-苯二酚;
5-氯甲基-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯的合成
将4-氯甲基-1,2-苯二酚溶解于甲苯中,加入二氯二苯甲烷,氮气保护,回流搅拌24h,待反应完全后,冷却至室温,反应体系用H2O(50mL)洗涤,水相用甲苯(20mL×3)萃取,合并有机相,无水硫酸钠干燥,过滤,减压浓缩得黄色油状物。柱层析分离得5-氯甲基-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯;
5-硝酰氧基甲基-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯的合成
将5-氯甲基-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯溶解于25mL无水乙腈中,加入硝酸银(2.50g),氮气保护下,避光,57℃下搅拌至反应完全,加入NaCl溶液室温搅拌1h,过滤出去固体,减压除去乙腈溶剂,加入H2O(20mL),用乙酸乙酯(20mL×3)萃取,合并有机相,无水硫酸钠干燥,过滤,减压浓缩得黄色油状物。柱层析分离得5-硝酰氧基甲基-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯;
4-硝酰氧基甲基-1,2-苯二酚的合成
将5-硝酰氧基甲基-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯加入到AcOH/H2O(20mL/5mL)的混合溶液中,氮气保护下,回流搅拌4-5h,待反应完全后,冷却至室温,加入乙酸乙酯(50mL)和H2O(50mL),有机相用碳酸氢钠饱和溶液(20mL×3)洗涤,无水硫酸钠干燥,过滤,减压浓缩得黄色油状物。柱层析分离得4-硝酰氧基甲基-1,2-苯二酚。
实施例2
4-(2-氯乙基)-1,2-苯二酚的合成
将3,4-二羟基苯乙醇溶解于25mL无水乙腈中,依次加入三苯基磷、四氯化碳,氮气保护,室温搅拌10h,待反应完全后,减压除去乙腈溶剂,加入H2O(20mL),用二氯甲烷萃取,饱和NaCl溶液洗涤,无水硫酸钠干燥,过滤,减压浓缩得黄色油状物。柱层析分离得4-(2-氯乙基)-1,2-苯二酚;
5-(2-氯乙基)-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯的合成
将4-(2-氯乙基)-1,2-苯二酚溶解于甲苯中,加入二氯二苯甲烷,氮气保护,回流搅拌24h,待反应完全后,冷却至室温,反应体系用H2O(50mL)洗涤,水相用甲苯(20mL×3)萃取,合并有机相,无水硫酸钠干燥,过滤,减压浓缩得黄色油状物。柱层析分离得5-(2-氯乙基)-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯;
5-(2-硝酰氧基乙基)-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯的合成
将5-(2-氯乙基)-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯溶解于25mL无水乙腈中,加入硝酸银(2.50g),氮气保护下,避光,57℃下搅拌至反应完全,加入NaCl溶液室温搅拌1h,过滤出去固体,减压除去乙腈溶剂,加入H2O(20mL),用乙酸乙酯(20mL×3)萃取,合并有机相,无水硫酸钠干燥,过滤,减压浓缩得黄色油状物。柱层析分离得5-(2-硝酰氧基乙基)-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯;
4-(2-硝酰氧基乙基)-1,2-苯二酚的合成:
将5-(2-硝酰氧基乙基)-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯加入到AcOH/H2O(20mL/5mL)的混合溶液中,氮气保护下,回流搅拌4-5h,但反应完全后,冷却至室温,加入乙酸乙酯(50mL)和H2O(50mL),有机相用碳酸氢钠饱和溶液(20mL×3)洗涤,无水硫酸钠干燥,过滤,减压浓缩得黄色油状物。柱层析分离得4-(2-硝酰氧基乙基)-1,2-苯二酚。
实施例3
4-(3-氯丙基)-1,2-苯二酚的合成
将3,4-二羟基苯丙醇溶解于25mL无水乙腈中,依次加入三苯基磷、四氯化碳,氮气保护,室温搅拌10h,待反应完全后,减压除去乙腈溶剂,加入H2O(20mL),用二氯甲烷萃取,饱和NaCl溶液洗涤,无水硫酸钠干燥,过滤,减压浓缩得黄色油状物。柱层析分离得4-(3-氯丙基)-1,2-苯二酚;
5-(3-氯丙基)-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯的合成
将4-(3-氯丙基)-1,2-苯二酚溶解于甲苯中,加入二氯二苯甲烷,氮气保护,回流搅拌24h,待反应完全后,冷却至室温,反应体系用H2O(50mL)洗涤,水相用甲苯(20mL×3)萃取,合并有机相,无水硫酸钠干燥,过滤,减压浓缩得黄色油状物。柱层析分离得5-(3-氯丙基)-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯;
5-(3-硝酰氧基丙基)-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯的合成
将5-(3-氯丙基)-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯溶解于25mL无水乙腈中,加入硝酸银(2.50g),氮气保护下,避光,57℃下搅拌至反应完全,加入NaCl溶液室温搅拌1h,过滤出去固体,减压除去乙腈溶剂,加入H2O(20mL),用乙酸乙酯(20mL×3)萃取,合并有机相,无水硫酸钠干燥,过滤,减压浓缩得黄色油状物。柱层析分离得5-(3-硝酰氧基丙基)-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯;
4-(3-硝酰氧基丙基)-1,2-苯二酚的合成:
将5-(3-硝酰氧基丙基)-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯加入到AcOH/H2O(20mL/5mL)的混合溶液中,氮气保护下,回流搅拌4-5h,但反应完全后,冷却至室温,加入乙酸乙酯(50mL)和H2O(50mL),有机相用碳酸氢钠饱和溶液(20mL×3)洗涤,无水硫酸钠干燥,过滤,减压浓缩得黄色油状物。柱层析分离得4-(3-硝酰氧基丙基)-1,2-苯二酚。
实施例4
4-(4-氯丁基)-1,2-苯二酚的合成
将3,4-二羟基苯丁醇溶解于25mL无水乙腈中,依次加入三苯基磷、四氯化碳,氮气保护,室温搅拌10h,待反应完全后,减压除去乙腈溶剂,加入H2O(20mL),用二氯甲烷萃取,饱和NaCl溶液洗涤,无水硫酸钠干燥,过滤,减压浓缩得黄色油状物。柱层析分离得4-(4-氯丁基)-1,2-苯二酚;
5-(4-氯丁基)-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯的合成
将4-(4-氯丁基)-1,2-苯二酚溶解于甲苯中,加入二氯二苯甲烷,氮气保护,回流搅拌24h,待反应完全后,冷却至室温,反应体系用H2O(50mL)洗涤,水相用甲苯(20mL×3)萃取,合并有机相,无水硫酸钠干燥,过滤,减压浓缩得黄色油状物。柱层析分离得5-(4-氯丁基)-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯;
5-(4-硝酰氧基丁基)-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯的合成
将5-(4-氯丁基)-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯溶解于25mL无水乙腈中,加入硝酸银(2.50g),氮气保护下,避光,57℃下搅拌至反应完全,加入NaCl溶液室温搅拌1h,过滤出去固体,减压除去乙腈溶剂,加入H2O(20mL),用乙酸乙酯(20mL×3)萃取,合并有机相,无水硫酸钠干燥,过滤,减压浓缩得黄色油状物。柱层析分离得5-(4-硝酰氧基丁基)-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯;
4-(4-硝酰氧基丁基)-1,2-苯二酚的合成:
将5-(4-硝酰氧基丁基)-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯加入到AcOH/H2O(20mL/5mL)的混合溶液中,氮气保护下,回流搅拌4-5h,但反应完全后,冷却至室温,加入乙酸乙酯(50mL)和H2O(50mL),有机相用碳酸氢钠饱和溶液(20mL×3)洗涤,无水硫酸钠干燥,过滤,减压浓缩得黄色油状物。柱层析分离得4-(4-硝酰氧基丁基)-1,2-苯二酚。
实施例5
4-(5-氯戊基)-1,2-苯二酚的合成
将3,4-二羟基苯戊醇溶解于25mL无水乙腈中,依次加入三苯基磷、四氯化碳,氮气保护,室温搅拌10h,待反应完全后,减压除去乙腈溶剂,加入H2O(20mL),用二氯甲烷萃取,饱和NaCl溶液洗涤,无水硫酸钠干燥,过滤,减压浓缩得黄色油状物。柱层析分离得4-(5-氯戊基)-1,2-苯二酚;
5-(5-氯戊基)-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯的合成
将4-(5-氯戊基)-1,2-苯二酚溶解于甲苯中,加入二氯二苯甲烷,氮气保护,回流搅拌24h,待反应完全后,冷却至室温,反应体系用H2O(50mL)洗涤,水相用甲苯(20mL×3)萃取,合并有机相,无水硫酸钠干燥,过滤,减压浓缩得黄色油状物。柱层析分离得5-(5-氯戊基)-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯;
5-(5-硝酰氧基戊基)-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯的合成
将5-(5-氯戊基)-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯溶解于25mL无水乙腈中,加入硝酸银(2.50g),氮气保护下,避光,57℃下搅拌至反应完全,加入NaCl溶液室温搅拌1h,过滤出去固体,减压除去乙腈溶剂,加入H2O(20mL),用乙酸乙酯(20mL×3)萃取,合并有机相,无水硫酸钠干燥,过滤,减压浓缩得黄色油状物。柱层析分离得5-(5-硝酰氧基戊基)-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯;
4-(5-硝酰氧基戊基)-1,2-苯二酚的合成:
将5-(5-硝酰氧基戊基)-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯加入到AcOH/H2O(20mL/5mL)的混合溶液中,氮气保护下,回流搅拌4-5h,但反应完全后,冷却至室温,加入乙酸乙酯(50mL)和H2O(50mL),有机相用碳酸氢钠饱和溶液(20mL×3)洗涤,无水硫酸钠干燥,过滤,减压浓缩得黄色油状物。柱层析分离得4-(5-硝酰氧基戊基)-1,2-苯二酚。
实施例6
4-(6-氯己基)-1,2-苯二酚的合成
将3,4-二羟基苯己醇溶解于25mL无水乙腈中,依次加入三苯基磷、四氯化碳,氮气保护,室温搅拌10h,待反应完全后,减压除去乙腈溶剂,加入H2O(20mL),用二氯甲烷萃取,饱和NaCl溶液洗涤,无水硫酸钠干燥,过滤,减压浓缩得黄色油状物。柱层析分离得4-(6-氯己基)-1,2-苯二酚;
5-(6-氯己基)-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯的合成
将4-(6-氯己基)-1,2-苯二酚溶解于甲苯中,加入二氯二苯甲烷,氮气保护,回流搅拌24h,待反应完全后,冷却至室温,反应体系用H2O(50mL)洗涤,水相用甲苯(20mL×3)萃取,合并有机相,无水硫酸钠干燥,过滤,减压浓缩得黄色油状物。柱层析分离得5-(6-氯己基)-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯;
5-(6-硝酰氧基己基)-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯的合成
将5-(6-氯己基)-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯溶解于25mL无水乙腈中,加入硝酸银(2.50g),氮气保护下,避光,57℃下搅拌至反应完全,加入NaCl溶液室温搅拌1h,过滤出去固体,减压除去乙腈溶剂,加入H2O(20mL),用乙酸乙酯(20mL×3)萃取,合并有机相,无水硫酸钠干燥,过滤,减压浓缩得黄色油状物。柱层析分离得5-(6-硝酰氧基己基)-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯;
4-(6-硝酰氧基己基)-1,2-苯二酚的合成:
将5-(6-硝酰氧基己基)-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯加入到AcOH/H2O(20mL/5mL)的混合溶液中,氮气保护下,回流搅拌4-5h,但反应完全后,冷却至室温,加入乙酸乙酯(50mL)和H2O(50mL),有机相用碳酸氢钠饱和溶液(20mL×3)洗涤,无水硫酸钠干燥,过滤,减压浓缩得黄色油状物。柱层析分离得4-(6-硝酰氧基己基)-1,2-苯二酚。
实施例7
HT-NO抗氧化活性实验
采用清除自由基法([DPPH·]法),对4-(2-硝酰氧基乙基)-1,2-苯二酚(以下简写为HT-NO)的抗氧化活性经行测试。
1材料与方法
1.1实验药物
实施例2制备所得化合物
实验材料:
试剂:
1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(1,1-Diphenyl-2-picrylhydrazyl[DPPH·](上海宝曼生物科技有限公司);无水乙醇(天津天力化学试剂有限公司);
主要仪器:752型紫外可见分光光度计(上海光谱仪器有限公司);WH-2微型涡旋混合仪(上海沪西分析仪器厂有限公司);
1.2实验方法
待检测样品的制备:
1)[DPPH·]与样品组(Ai):在10mL的具缘试管中加入2mL浓度为0.08mg/mL[DPPH·]乙醇溶液,分别加入2mL不同浓度的待测样品(HT-NO)和阳性对照(0.1mg/mL抗坏血酸);
2)[DPPH·]与溶剂组(Ao):在10mL的具缘试管中加入2mL浓度为0.08mg/mL[DPPH·]乙醇溶液和2mL无水乙醇;
3)样品与溶剂组(Aj):在10mL的具缘试管中加入2mL无水乙醇,分别加入2mL不同浓度的待测样品(HT-NO)和阳性对照(0.1mg/mL抗坏血酸);
待检测样品加样完毕后,摇匀,室温静置30min,在517nm波长时检测吸光值。按照下式计算自由基清除率。
[DPPH·]自由基清除率S%=[1-(Ai-Aj)/Ao]×100%。
1.3实验结果
使用SPSS拟合曲线并计算IC50,得HT-NO对[DPPH·]半数清除率IC50为3.28×10- 5mol·L-1,抗坏血酸对[DPPH·]半数清除率IC50为6.95×10-5mol·L-1。结果显示,HT-NO具有良好的自由基清除能力。结果如表1,表2
表1[DPPH·]法测定HT-NO的抗氧化活性结果(%)
表2[DPPH·]法测定抗坏血酸的抗氧化活性结果(%)
实施例8
HT-NO体外NO释放活性实验
采用Griess法对HT-NO的体外NO释放活性经行测试。
1材料与方法
1.1实验药物
实施例2制备所得化合物
实验材料:
试剂:无水对氨基苯磺酸纳(天津市福晨化学试剂厂);N-1-萘乙二胺盐酸盐(天津傲然精细化工研究所);亚硝酸钠(天津市福晨化学试剂厂);L-半胱氨酸(天津市福晨化学试剂厂);磷酸二氢钾(广东光华科技股份有限公司);氢氧化钠(天津市河东区红岩试剂厂);磷酸(西安化学试剂厂)。
主要仪器:752型紫外可见分光光度计(上海光谱仪器有限公司制造);WH-2微型涡旋混合仪(上海沪西分析仪器厂有限公司制造);
1.2实验方法
(1)NO释放标准曲线的绘制:磷酸盐缓冲溶液2.5mL,甲醇2.5mL,等体积混合,再加入不同浓度的NaNO2 -和50μL的0.1mol/L的L-半胱氨酸溶液,混匀后加入Griess试剂,混匀静置10min,于540nm下测定其吸光度。使用SPSS拟合标准曲线,并通过曲线拟合获得标准曲线方程。
(2)HT-NO的体外NO释放测定:磷酸盐缓冲溶液2.5mL,甲醇2.5mL,等体积混合,在加入不同浓度的HT-NO和50μL的0.1mol/L的L-半胱氨酸溶液,混匀后加入Griess试剂,混匀静置10min,于540nm下测定其吸光度。使用SPSS拟合曲线,并由标准曲线方程求出相应的NO2 -的浓度,硝普钠及羟基酪醇衍生物释放NO效率=NO释放浓度与初始反应液中0.1mM衍生物含有NO的摩尔数的比值。
1.3实验结果
结果显示HT-NO能在体外释放出一定浓度的NO。结果如图7
实施例9
HT-NO对血管内皮舒张功能的影响实验
1材料与方法
1.1试验药物
实施例2制备所得化合物
实验材料
硝普钠,SD大鼠,计算机生物信号记录分析***,张力换能器,离体组织器官恒温灌流***。
1.2实验方法
颈椎脱臼处死大鼠,迅速取出主动脉,置于通有混合气体的4℃台氏液中,剔除血管外壁的脂肪和***。将血管条截成小段,每段2~3mm左右;取一段血管条,穿过固定的小棒,再用小钩将血管挂起,小钩用细棉线连至传感器。最后将血管浸泡于装有台氏液、通有混合气体并保持37℃恒温的反应池中。通过软件,监控血管条的拉力状态,将平衡状态的拉力调整至0.8g左右;平衡1h,每15min换台氏液1次。用60mmol的KCl刺激3次,待血管收缩到最强并稳定时,加入不同浓度的HT-NO,以生理盐水作为对照,以加入药物15min后的血管张力幅度与KCl诱发的血管环的最大收缩幅度之间的比率反映血管张力的变化。
1.3实验结果
结果显示HT-NO可以抑制KCl对血管环引起的收缩作用。结果如图8
实施例10
HT-NO对高糖诱导的人脐静脉内皮细胞活性的影响实验
材料与方法
1.1试验药物
实施例2制备所得化合物
实验材料
DMEM培养基干粉(Gibco,USA),胎牛血清(FBS)(Gibco,USA),胰酶(Trypsin)(Beyotime),MTT(Sigma),葡萄糖(Sigma),人脐静脉内皮细胞株(HUVECs),酶标仪(ThermoScientific)
1.2实验方法
1.2.1细胞培养:以含10%FBS的DMEM(Dulbecco’s Modified Eagle’s Medium)培养液培养HUVECs细胞,每1-2天传代1次。
1.2.2将HUVECs细胞以5000-6000个/孔为单位接种于96孔板,分为空白对照组,高糖组和给药组。模型组给予55mM的葡萄糖溶液,给药组给予不同浓度的HT-NO(12.5、25、50、100、200μM)和55mM的高糖共同孵育48h。孵育结束后,每孔加入20μL MTT,孵育4h,用DMSO溶解后在酶标仪492nm波长下测定吸光度(A)。按下列方法计算细胞活性(%):细胞活性(%)=(A实验组-A空白组)/(A对照组-A空白组)×100%,计算相应的细胞活性。
1.3实验结果
结果显示单独给予HT-NO作用内皮细胞,可以在一定浓度范围内促进细胞增殖,如图9;而给予内皮细胞高糖刺激后,细胞活性明显降低,给予HT-NO可以对高糖诱导的细胞损伤起到一定的保护作用,如图10。
实施例11
HT-NO对高糖诱导的人脐静脉内皮细胞NO水平的影响实验
材料与方法
1.1试验药物
实施例2制备所得化合物
实验材料
DMEM培养基干粉(Gibco,USA),胎牛血清(FBS)(Gibco,USA),胰酶(Trypsin)(Beyotime),MTT(Sigma),葡萄糖(Sigma),人脐静脉内皮细胞株(HUVECs),酶标仪(ThermoScientific)
1.2实验方法
1.2.1细胞培养:以含10%FBS的DMEM(Dulbecco’s Modified Eagle’s Medium)培养液培养HUVECs细胞,每1-2天传代1次。
1.2.2将HUVECs细胞以5000-6000个/孔为单位接种于96孔板,分为空白对照组,高糖组和给药组。模型组给予55mM的葡萄糖溶液,给药组给予不同浓度的HT-NO(12.5、25、50、100、200μM)和55mM的高糖共同孵育48h。孵育结束后,收集细胞上清液,用NO检测试剂盒在酶标仪550nm波长下测定吸光度(A)。按检测试剂盒说明书计算相应的NO浓度。
1.3实验结果
结果显示单独给予HT-NO作用内皮细胞,可以在一定浓度范围内促进细胞上清液中NO的释放,如图11;而给予内皮细胞高糖刺激后,细胞上清液中NO含量降低,给予HT-NO可以升高高糖诱导的细胞上清液中NO的水平,如图12。
实施例12
HT-NO的体外糖苷酶抑制活性实验
1材料与方法
1.1试验药物
实施例2制备所得化合物
实验材料
阿卡波糖(德国拜耳公司,50mg/片,市售),葡萄糖检测试剂盒(南京建成生物工程研究所),α-葡萄糖苷酶(Sigma),4-硝基苯-α-D-吡喃葡萄糖苷(α-PNPG)(Sigma),752型紫外可见分光光度计(上海光谱仪器有限公司制造)
1.2实验方法
1.2.1对酵母α-葡萄糖苷酶抑制
(1)配制α-PNPG溶液配制;α-葡萄糖苷酶溶液10U/mL;NaCO3溶液1mol/L;不同浓度的目标化合物待测液(用体积比为1:9的DMSO-磷酸盐缓冲液溶解)。
(2)取α-葡萄糖苷酶溶液10μL,在37℃水浴中孵育10min,分别加入不同浓度的待测溶液50μL,混匀后继续保温10min,再加入α-PNPG溶液20μL,混匀后保温15min,加入NaCO3溶液50μL终止反应。设立空白对照(不含酶和样品)和阴性对照组(不含样品),阿卡波糖为阳性对照。在405nm处检测溶液吸光度,按下列方法计算抑制率(%):抑制率(%)=(A阴性对照-A样品)/(A阴性对照-A空白对照)×100%,计算相应的半数抑制浓度(IC50)。
1.2.2对大鼠小肠粘膜α-糖苷酶抑制
(1)大鼠小肠粘膜酶液的制备:大鼠禁食不禁水12h后脱颈椎处死,取出小肠,用冷生理盐水冲洗肠腔,将洗净的小肠置于冰台上,刮取小肠粘膜,称重。加入5倍量的4℃的磷酸盐缓冲液,于冰浴中匀浆,然后5000r/min离心20min,取上清。
(2)取酶液10μL,于37℃水浴中孵育15min后,加入不同浓度的抑制剂50μL,继续保温30min,再加入50mmol/L的麦芽糖20μL,在37℃水浴中反应60min后,取出置于沸水浴中终止反应;同时做空白对照(不加抑制剂),阿卡波糖为阳性对照。取反应液10μ于EP管中,再加入葡萄糖试剂盒中A试液500μL、B试液500μL混匀,37℃保温15min后,于505nm下测定其吸光度。按下列方法计算抑制率(%):抑制率(%)=(A空白对照-A样品)/A空白对照×100%,计算相应的半数抑制浓度(IC50)。
1.3实验结果
结果显示制备的化合物可抑制酵母α-葡萄糖苷酶以及大鼠小肠粘膜α-糖苷酶。结果如表3
表3 HT-NO对α-糖苷酶的抑制作用IC50(μM)
实施例13
HT-NO对STZ诱导的糖尿病小鼠血糖的影响实验
材料与方法
1.1试验药物
实施例2制备所得化合物
实验材料
试剂:STZ(Sigma),二甲双胍原料药(东京化成工业株式会社),羟基酪醇(陕西应化生物技术有限公司),三诺安稳血糖仪及血糖试纸条(三诺生物传感股份有限公司)
实验动物:昆明小鼠,体质量25-30g,由西安交通大学动物实验中心提供。
1.2实验方法
1.2.1糖尿病小鼠模型建立
将购买的50只小鼠适应性喂养3天之后,从中随机抽取8只做为正常对照组,给予正常饲料喂养,其余42禁食过夜,然后给实验小鼠腹腔部位注射一定量的STZ柠檬酸-柠檬酸钠(160mg·kg-1)。相同剂量体积的柠檬酸-柠檬酸钠缓冲溶液亦给予正常对照组的小鼠注射。注射后的第5天所有小鼠均禁食,造模的小鼠尾静脉取血测量其空腹血糖,以小鼠空腹血糖值≥16.7mmol·L-1为糖尿病实验小鼠模型成功的标准。
1.2.2实验动物分组以及给药
将造模成功的小鼠随机分为:模型组、二甲双胍组(250mg·kg-1)、羟基酪醇组(77mg·kg-1)和HT-NO组(100mg·kg-1),每组小鼠8只。连续灌胃4周,正常组及模型组给予同等体积的生理盐水灌胃。每日观察小鼠的外观情况,同时记录各组饮水量和饮食量。
1.3实验结果
灌胃给药4周后,与模型组相比,二甲双胍组,羟基酪醇组以及HT-NO组的糖尿病小鼠的空腹血糖均有显著性降低(P<0.05),与羟基酪醇组相比,HT-NO组降血糖效果更好,结果如表4。
表4 HT-NO对糖尿病小鼠血糖的影响
注:与模型对照组比较:*P<0.05
实施例14
羟基酪醇及HT-NO在大鼠体内的药动学研究
材料与方法
1.1试验药物
实施例2制备所得化合物
实验材料
药品与试剂:HT(HPLC级纯度≥98%),西安应化生物科技有限公司;HT-NO(HPLC级纯度≥95%),本课题小组合成;槲皮素(HPLC级纯度≥99.3%),上海永野生物科技公司;甲醇(色谱级),天津科密欧化学试剂公司;乙酸乙酯(分析级),天津天力化学试剂公司;甲酸,广东光华化学试剂公司;超纯水,TTL-30超纯水***获得。
主要仪器:Agilent 1200系列高效液相色谱仪,上海WoWorkers ScientificInstrumen;API3200质谱仪,美国AB SCIEX,Foster City,CA公司;N-EVAP112型恒温水浴氮气吹干仪,美国Organomation公司;WH-2微型涡旋混匀器,上海沪西分析仪器公司;TTL-30超纯水***,北京同泰科技仪器有限公司;GENIUS 16K-R低温高速离心机,长沙鑫奥仪器仪表有限公司。
实验动物:雄性SD大鼠,体质量250-300g,由西安交通大学动物实验中心提供。
1.2实验方法:
(1)建立大鼠血浆中羟基酪醇及HT-NO的LC-MS/MS测定法,并进行方法学验证;
(2)将此方法应用于灌胃羟基酪醇及HT-NO在大鼠体内的药动学研究。
1.3实验结果:
(1)方法学验证
①线性和灵敏度:羟基酪醇血浆浓度线性范围0.00799-1.642μg·mL-1,线性关系良好(r=0.9984),最低检测限(LLOQ)为0.002μg·mL-1;HT-NO血浆浓度线性范围0.00768-1.536μg·mL-1,线性关系良好(r=0.9990),最低检测限(LLOQ)为0.002μg·mL-1;
②准确性和精密度:羟基酪醇日内和日间精密度RSD分别为2.30-3.88%、2.34-5.32%,日内和日间准确性分别为93.85-98.28%、87.35-98.41%;羟基酪醇NO衍生物日内和日间精密度RSD分别为2.84-4.69%、3.14-6.15%,日内和日间准确性分别为90.12-98.44%、85.77-98.86%;
③提取回收率:羟基酪醇提取回收率87.17-97.94%,羟基酪醇NO衍生物提取回收率为86.40-101.14%。
④稳定性:研究表明,羟基酪醇及HT-NO稳定性较差,但是加入10μL1%抗坏血酸能够显著提高羟基酪醇及其NO衍生物的稳定性。0.799μg·mL-1羟基酪醇血浆标准品和0.752μg·mL-1HT-NO血浆标准品在-20℃冻存一周的稳定性如图13-1、13-2所示。
(2)药动学参数
①灌胃给药羟基酪醇
采用3P97药动软件对血药浓度结果采用一室模型计算药动学参数。灌胃羟基酪醇的药动学参数结果见表5。羟基酪醇平均血药浓度-时间曲线见图14。
表5灌胃给药HT后血浆中的药动学参数(n=5)
②灌胃给药羟基酪醇NO衍生物
采用3P97药动软件对HT-NO血药浓度结果采用二室模型计算药动学参数,对给药HT-NO后的羟基酪醇血药浓度结果采用一室模型计算药动学参数。灌胃HT-NO后其药动学参数结果见表6,平均血药浓度-时间曲线见图15;灌胃HT-NO后羟基酪醇药动学参数结果见表7,平均血药浓度-时间曲线见图16;
表6灌胃给药HT-NO后HT-NO在血浆中的药动学参数(n=5)
表7灌胃给药HT-NO后HT在血浆中的药动学参数(n=5)
1.4实验结论
(1)该法简便,灵敏,重复性好,可应用于测定血浆中羟基酪醇和HT-NO的含量并应用于灌胃羟基酪醇及HT-NO在大鼠体内的药物动力学研究。
(2)HT-NO能够在体内快速代谢释放出羟基酪醇发挥其药理和生理作用。
实施例15
羟基酪醇及HT-NO在大鼠体内的NO释放评价
材料与方法
1.1试验药物
实施例2制备所得化合物
实验材料
试剂:NO试剂盒,南京建成生物工程研究所,货号:A012。
主要仪器:酶标仪;WH-2微型涡旋混匀器,上海沪西分析仪器公司;GENIUS 16K-R低温高速离心机,长沙鑫奥仪器仪表有限公司;DK98-1恒温水浴锅,天津泰斯特仪器有限公司。
实验动物:雄性SD大鼠,体质量250-300g,由西安交通大学动物实验中心提供。
1.2实验方法
大鼠分别灌胃羟基酪醇及HT-NO后,按照药动学研究的时间点取大鼠动脉血离心得血浆,评价大鼠血浆中24h内活性NO的动态水平。采用硝酸酶还原法测定大鼠血浆中的NO2-、NO3-,按试剂盒说明书进行操作(试剂盒由南京建成生物工程研究所提供),利用酶标仪进行测定,测定波长为550nm。
1.3实验结果
分别灌胃给药50mg·kg-1的羟基酪醇和65mg·kg-1的HT-NO后,大鼠血中24h内NO的动态水平见图17。
1.4实验结论
(1)HT-NO在大鼠体内能够迅速释放NO,使其达到较高的水平。
(2)给药羟基酪醇后大鼠体内NO水平较给药生理盐水高,这是由于羟基酪醇可以增加NO的合成。
Claims (6)
1.一种羟基酪醇NO供体衍生物,其特征在于,其化学结构式为:
R为其中n=2。
2.权利要求1所述的一种羟基酪醇NO供体衍生物的制备方法,其特征在于:
合成步骤如下:
1)3,4-二羟基苯乙醇经取代反应制得4-(2-氯乙基)-1,2-苯二酚;
2)4-(2-氯乙基)-1,2-苯二酚与二氯二苯甲烷反应制得5-(2-氯乙基)-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯;
3)5-(2-氯乙基)-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯与硝酸银发生亲核取代反应制得5-(2-硝酰氧基乙基)-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯;
4)5-(2-硝酰氧基乙基)-2,2-二苯基苯并[1,3]二氧杂环戊烯经过酸性水解制得4-(2-硝酰氧基乙基)-1,2-苯二酚。
3.权利要求1所述的一种羟基酪醇NO供体衍生物的应用,其特征在于:在制备预防和治疗糖尿病血管并发症的药物中的应用。
4.根据权利要求3所述的一种羟基酪醇NO供体衍生物的应用,其特征在于:在制备血管扩张药物中的应用。
5.根据权利要求3所述的一种羟基酪醇NO供体衍生物的应用,其特征在于:在制备用于血管内皮保护药物中的应用。
6.根据权利要求3所述的一种羟基酪醇NO供体衍生物的应用,其特征在于:在制备降血糖药物中的应用。
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