一种<sup>18</sup>F标记的PRGD2化合物、其药盒、药盒制备方法及应用
技术领域
本发明涉及一种PET显像剂及制备方法和应用,属于放射性药物及核医学技术领域。
背景技术
正电子发射断层扫描(PET)作为21世纪生物医学研究和临床诊断的尖端技术,被称为“活体生化显像”技术,可以从体外无创、定量、动态地观察人体内的生理、生化变化,洞察标记药物在正常人或病人体内的活动。与SPECT相比, PET分辨率高,可定量分析,具有明显优势。
18F具有接近100%的正电子效率,低正电子能量(0.64兆电子伏)和相对较短的物理半衰期(t1 / 2= 109.7分)等特点,是理想的PET显像核素。多肽具有组织渗透迅速、血液中快速清除、免疫原性低等优点,是制备PET显像剂的合适载体。目前,对肽进行18F标记的过程包括:QMA柱纯化18F、辅基 (18F-SFB 或18F-NFP)的制备及纯化,肽与辅基的耦联,HPLC纯化产品等。未见国内外有固体制剂药盒报道。
新生血管对肿瘤的生长和转移至关重要,整合素αvβ3受体在促进,维持和调节血管生成中发挥着关键作用。精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸(RGD)肽二聚体PRGD2与整合素αvβ3受体高度亲和,其18F标记产物适于肿瘤显像,可用于肿瘤的早期诊断和疗效监测。Chen, X等制备的18F-FPPRGD2,具有良好的肿瘤新生血管PET显像特性,已被FDA批准用于临床测试。(Chen X ,et al, J Nucl Med ,2007,48, 1162-1171; Chen, X., et al Mol Imaging Biol 2010,12, 530-538;Mittra ES, et al, Radiology, 2011, 260(1):182-91.)但18F-FPPRGD2的制备繁琐,需先制备辅基18F-NFP,再与PRGD2耦联,两次梯度HPLC纯化,耗时约3h,难以在国内临床推广,其应用受到限制。
18F离子易与金属(如铝)结合, 生成的18F-铝配合物(18F-Al)可被螯合基团(如NOTA)螯合。Laverman等通过18F-Al和连接NOTA的半抗原肽进行直接反应,制得18F标记半抗原肽。该过程无须辅基的制备及其纯化(Laverman et al, J Nucl Med,2009,50:991-998)。在此基础上,本发明人提供一种一步法制备18F标记PRGD2的药盒。初步研究表明,该药盒标记简单,操作方便,标记率高,成本低,并且能使制备的配合物18F-FAl-NOTA-PRGD2,具有与18F-FPPRGD2相同的生物性能,有望在临床上得以推广应用。
发明内容
本发明要解决的技术问题是克服现有的制备工艺缺陷,提供了一种药盒,其标记简单、操作方便、耗时短、标记率高、成本低,并且能使制备的配合物18F-FAl-NOTA-PRGD2具有与18F-FPPRGD2相同的生物性能,有望在临床上得以推广应用。
为了解决上述技术问题,本发明提供了如下的技术方案:
一种18F标记的PRGD2化合物,结构式如式Ⅰ所示:
上述的18F标记的PRGD2化合物在PET显像剂制备中的应用。
一种用于18F标记PRGD2的药盒,包括NOTA-PRGD2和氯化铝,NOTA-PRGD2与氯化铝的摩尔比为(1~10):1,优选的摩尔比为(1~5):1。所述药盒内还可以包括醋酸-醋酸钠缓冲液。进一步地,用于18F标记PRGD2的药盒在PET显像剂制备中的应用。上述药盒制备方法用到的原料中,NOTA-PRGD2可以按照现有技术的方法合成,原料中的其他试剂均可以从市场购得。
优选地,药盒中NOTA-PRGD2和氯化铝以冻干粉形式存在。
上述药盒的制备方法,步骤如下: 将NOTA-PRGD2溶于醋酸-醋酸钠缓冲液或去离子水中;2)将氯化铝溶于醋酸-醋酸钠缓冲液或去离子水中;3)两者混合均匀;4)将步骤3)所得溶液无菌过滤后,分装于容器中,冷冻干燥即得所述药盒。所述容器优选管制抗生素瓶或塑料离心瓶。
一种利用上述药盒制备18F-FAl-NOTA-PRGD2的方法是:向所述药盒中加入适量乙酸溶液或醋酸-醋酸钠缓冲液溶解,加入乙腈或乙醇和新鲜制得的18F水溶液,密闭80-120℃下反应5~20分钟,冷却;加水稀释后注入Sep-Pak C18分离小柱,用PBS或水冲洗柱子;用盐酸乙醇溶液或乙醇洗脱标记产品,生理盐水稀释后无菌过滤即得18F-FAl-NOTA-PRGD2。
本发明所提供的制备18F-FAl-NOTA-PRGD2的药盒具有以下有益效果:
1.使用方法简便,更加适合临床应用
采用国产多功能氟标记模块制备18F-FPRGD2步骤繁琐,制备条件要求苛刻,需耗时3h,产率约10%-20%,需进行两次HPLC纯化,对制备人员专业技术水平的要求高,相应的设备成本也较高。采用本发明的药盒制备18F-FAl-PRGD2,操作简单,成本极低,仅需20min,产率约20-40%,无需HPLC纯化,更加适合临床应用。
2.标记率高,标记产物纯度高
本发明药盒在加入18F后反应10分钟,HPLC鉴定表明标记率即可达到20-40 %。粗产品经C18小柱分离纯化后,HPLC测定标记产品放化纯大于97%。
HPLC分析***如下:反相C18柱Φ4.6×250mm,梯度洗脱:梯度从2分钟的5%A(0.1%TFA乙腈溶液)和95%B(0.1%TFA水溶液)增加到32分钟的65%A,流速为1ml/min,保留时间为17min 。
3.本发明药盒制得的18F-FAl-NOTA-PRGD2生物性能优良
经实验验证,与现有技术的制备方法制得的18F-FPPRGD2相比,本发明药盒制备得到的18F-FAl-NOTA-PRGD2在模型鼠肿瘤中也同样有很高的摄取和很好的滞留,且具有较高的靶/非靶比值及更好的药代动力学特点,生物性能优良,完全可以满足肿瘤整合素αvβ3受体PET显像剂的要求。
附图说明
附图用来提供对本发明的进一步理解,并且构成说明书的一部分,与本发明的实施例一起用于解释本发明,并不构成对本发明的限制。在附图中:
图1是对比实验注射3.7 MBq (100 μCi) 18F-FPPRGD2后30,60,120分钟后BxPc-3肿瘤模型鼠全身衰变校正冠状microPET显像图,肿瘤位置如箭头所示;
图2是对比实验BxPc-3肿瘤、肝、肾和肌肉对18F-FPPRGD2的定量摄取值图;
图3是本发明注射3.7 MBq (100 μCi) 18F-FAl-NOTA-PRGD2后30,60,120分钟后BxPc-3肿瘤模型鼠全身衰变校正冠状microPET显像图,肿瘤位置如箭头所示;
图4是BxPc-3肿瘤、肝、肾和肌肉对本发明制备的18F-FAl-NOTA-PRGD2的定量摄取值图。
具体实施方式
以下结合附图对本发明的优选实施例进行说明,应当理解,此处所描述的优选实施例仅用于说明和解释本发明,并不用于限定本发明。
一、制备100支NOTA-RGD冻干药盒
方法1:
1)将1.6mgNOTA-RGD(R=OH)溶于10mL浓度为0.5M的醋酸钠-醋酸缓冲液中(pH4.0);再将0.08mg AlCl3溶于10mL浓度为0.5M的醋酸钠-醋酸缓冲液(pH4.0);将二者混合均匀;
2)将步骤1)制备的溶液无菌过滤后,分装于100支管制抗生素瓶中;将分装好的抗生素瓶通过传递窗传入冻干机冷室搁板上,关上门,按设定程序冷冻干燥24小时,压盖密封,即得本发明所用药盒。
方法2:
1)将8.0mgNOTA-RGD(R=OH)和0.08mg AlCl3分别溶于10mL去离子水中,再将二者混合均匀;
2)将步骤1)制备的溶液无菌过滤后,分装于100支管制抗生素瓶中;将分装好的抗生素瓶通过传递窗传入冻干机冷室搁板上,关上门,按设定程序冷冻干燥24小时,压盖密封,即得本发明所用药盒。
方法3:
1)将4.0mgNOTA-RGD((R=H))和0.08mg AlCl3分别溶于10mL去离子水中,再将二者混合均匀;
2)将步骤1)制备的溶液无菌过滤后,分装于100支管制抗生素瓶中;将分装好的抗生素瓶通过传递窗传入冻干机冷室搁板上,关上门,按设定程序冷冻干燥24小时,压盖密封,即得本发明所用药盒。
二、制备18F-FAl-NOTA-PRGD2
方法1:
往步骤一的方法1所得药盒中加入5%乙酸溶液20μL,再加入100μL新鲜制得的50mCi18F和200μL乙腈,密闭100℃下反应10分钟,冷却;加水稀释后注入Sep-Pak C18分离小柱,用水冲洗柱子;用1.0mL浓度为7mM的盐酸乙醇溶液洗脱标记产品,生理盐水稀释后无菌过滤即得式Ⅱ的18F-FAl-NOTA-PRGD2:
方法2:
往步骤一的方法2所得药盒中加入浓度为0.5M的醋酸-醋酸钠缓冲液20μL(pH4.0),再加入100μL新鲜制得的50mCi18F和200μL乙醇,密闭80℃下反应20分钟,冷却;加水稀释后注入Sep-Pak C18分离小柱,用PBS冲洗柱子;用1mL乙醇洗脱标记产品,生理盐水稀释后无菌过滤即得式Ⅱ的18F-FAl-NOTA-PRGD2。
方法3:
往步骤一的方法3所得药盒中加入浓度为0.5M的醋酸-醋酸钠缓冲液20μL(pH4.0),再加入100μL新鲜制得的50mCi18F和200μL乙腈,密闭120℃下反应5分钟,冷却;加水稀释后注入Sep-Pak C18分离小柱,用水冲洗柱子;用0.5mL浓度为15mM的盐酸乙醇溶液洗脱标记产品,生理盐水稀释后无菌过滤即得式Ⅲ的18F-FAl-NOTA-PRGD2:
三、步骤二的方法1所得18F-FAl-NOTA-PRGD2性能测定
1)HPLC法鉴定见前述方法;
2)体外稳定性测定:
分别将上述制得的18F-FAl-NOTA-PRGD2溶液在室温下放置不同时间(0.5,1,2,3,4小时),然后进行HPLC分析,计算放射化学纯度。实验结果表明: 18F-FAl-NOTA-PRGD2在室温下可稳定存放4小时以上,其外观和放射化学纯度无明显变化。
3)模型鼠MicroPET显像和分析:
在异氟烷麻醉下,荷人BxPc-3肿瘤裸鼠尾静脉注射约3.7MBq(100uCi) 18F-FAl-NOTA-PRGD2或18F-FPPRGD2。采用二维有序子集期望最大化(二维OSEM)算法进行图像重建,对MicroPET扫描所得全身衰变校正冠状图像勾画感兴趣区(ROI)。从多个ROI平均像素值中获得肿瘤、肌肉、肝和肾中的放射性活度并转化为MBq/mL。所得值除以注射剂量获得%ID/g(假定组织密度为1g/ml)。结果如图1-图4所示,其中,ROIs用平均 %ID/g ± SD表示。
注射后60分钟,肿瘤对18F-FPPRGD2的摄取值为2.56 ± 0.48 % ID/g (n=5),与文献报道一致。相同时间下,肿瘤对18F-FAl-NOTA-PRGD2的摄取值为3.92 ± 0.48 % ID/g (n=5),显著高于18F-FPPRGD2 (p < 0.05)。除了肿瘤外,早期(注射后30分钟)所有示踪剂在肾中高度浓聚,后快速排除。所有示踪剂在肝中的摄取较低。与18F-FPPRGD2相比,18F-FAl-NOTA-PRGD2在肿瘤中的清除较慢。
上述实验证明,本发明所得药盒制备得到的18F-FAl-NOTA-PRGD2具有较18F-FPPRGD2优良的生物性能,完全能够满足作为肿瘤αvβ3受体显像剂的条件,进而说明本发明所述药盒可以在临床上推广应用。
最后应说明的是:以上所述仅为本发明的优选实施例而已,并不用于限制本发明,尽管参照前述实施例对本发明进行了详细的说明,对于本领域的技术人员来说,其依然可以对前述各实施例所记载的技术方案进行修改,或者对其中部分技术特征进行等同替换。凡在本发明的精神和原则之内,所作的任何修改、等同替换、改进等,均应包含在本发明的保护范围之内。