WO2004028540A1 - 抗神経変性薬 - Google Patents

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Yoshinori Okada
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Joh-E Ikeda
Yoshinori Okada
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    • A61P25/28—Drugs for disorders of the nervous system for treating neurodegenerative disorders of the central nervous system, e.g. nootropic agents, cognition enhancers, drugs for treating Alzheimer's disease or other forms of dementia

Definitions

  • the present invention relates to amyotrophic lateral sclerosis (ALS), spinal muscular atrophy syndrome (SMA), Huntington's disease, Parkinson's disease, Alheimer's disease, dementia after cerebrovascular disorder, and other neurological deficit. And a neurodegenerative drug useful for the treatment and prevention of neurodegenerative diseases such as dementia accompanied by dementia.
  • ALS Amyotrophic lateral sclerosis
  • SMA spinal muscular atrophy syndrome
  • Huntington's disease Parkinson's disease
  • Alzheimer's disease dementia after cerebrovascular disease
  • other dementia with neurological deprivation etc.
  • a group of diseases involving degeneration of nerve cell groups is collectively referred to as neurodegenerative diseases.
  • Most of the neurodegenerative diseases have not yet established a fundamental treatment method, and the search for a treatment method is required.
  • administration of a factor that suppresses neuronal degeneration may be considered. It is expected that administration of a factor that suppresses neurodegeneration will have an advantageous effect on the treatment and prevention of such diseases.
  • NAIP Neuronal Apoptosis Inhibitory Protein
  • the present invention provides an anti-neurodegenerative drug comprising one or more compounds selected from the group of ⁇ . Further, according to the present invention, there is provided .3- [4- (4-chloropheninole) pirazin-1-yl] methyl] -1H-pyrrolo [2,3-b] pyridine or a salt thereof, 5- (4-chlorophenyl) -4-methyl-3-(1- (2-phenylethynole) piperidine-4-inole) isoxazole or a salt thereof, 3- (4-chlorophenyl) - Four- Methyl-5-(2-phenylethyl) piperidine-4-inole) isoxazole or a salt thereof, and N-methyl-4- (2-cyanopheninole) piperazinyl-3-methylbenzamine or a salt thereof Provided is a method for producing an anti-neurodegenerative drug using one or more compounds selected from the group.
  • a method for treating a neurodegenerative disease comprising a step of administering one or more compounds selected from the group consisting of salts thereof to a patient with a neurodegenerative disease.
  • the term “neurodegenerative disease” refers to amyotrophic lateral sclerosis (ALS), spinal muscular atrophy syndrome (SMA), Huntington's disease, Parkinson's disease, Alzheimer's disease, It refers to diseases involving degeneration of central nervous system cells, such as dementia and other dementia with neurological loss.
  • the term “patient” refers to human and non-human mammals (especially useful mammals such as livestock and pets) suffering from a neurodegenerative disease.
  • Other terms and concepts in the present invention are defined in detail in the description and examples of the embodiments of the present invention. Various techniques used for carrying out the present invention can be easily and reliably implemented by those skilled in the art based on known documents and the like, except for the technique whose source is clearly indicated.
  • the preparation of the drug of the present invention is described in Remington's Pharmaceutical Sciences, 18th Edition, ed. A. Gennaro, Mack Publishing Co., Easton, PA, 1990, etc., and genetic engineering and molecular biological techniques are described in Sambrook and Maniatis. , in Molecular Cloning-A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory Press, New York, 1989; Ausubel, F.M. et al., Current Protocols in Molecular Biology, John Wiley & Sons, New York, ⁇ ⁇ ⁇ , 1995, etc.
  • FIG. 1 is an electrophoretogram showing the change in the amount of ⁇ ⁇ ⁇ production by compound 1 in Example 2.
  • lanes 1 to 5 show the electrophoresis results of the following samples, respectively.
  • Lane 1 low concentration retinoic acid treatment, no candidate compound added
  • Resin 2 Low concentration retinoic acid treatment and addition of candidate compounds
  • Lane 3 Treated with high concentration retinoic acid, no scavenger compound added
  • FIG. 2 is a graph showing the cell death inhibitory effect of Compound 1 in Example 3 when menadione was used as a cell death induction reagent.
  • FIG. 3 is a graph showing the cell death inhibitory effect of Compound 1 in Example 3 when ⁇ -naphthoquinone was used as a cell death induction reagent.
  • FIG. 4 is a graph showing the cell death inhibitory effect of Compound 1 in Example 3, when 2,3-dimethoxy-1,4-naphthoquinone was used as a cell death inducing reagent.
  • FIG. 5 is a graph showing the cell death inhibitory effect of Compound 1 in Example 4 when menadione was used as a cell death induction reagent.
  • FIG. 6 is a graph showing the cell death inhibitory effect of Compound 1 in Example 5 when menadione was used as a cell death induction reagent.
  • FIG. 7 shows control gerbils without compound administration and occlusion in Example 6. It is a microscope photograph of the tissue section of the brain hippocampus CA1 area
  • FIG. 8 is a micrograph of a tissue section of the CA1 region of the brain hippocampus of a control gerbil, which was operated in the same manner as in Examples 6-1 to 6-3 except that the compound was not administered in Example 6.
  • FIG. 9 is a micrograph of a tissue section of the gerbil hippocampus CA1 region of Example 6-1.
  • FIG. 10 is a photomicrograph of a tissue section of the CA1 region of the gerbil hippocampus of Example 6-2.
  • FIG. 11 is a micrograph of a tissue section of the CA1 region of the gerbil hippocampus of Example 6-3.
  • FIG. 12 is a micrograph, enlarged from FIG. 8, of a tissue section of the CA1 region of the brain hippocampus of a control gerbil, which was prepared in the same manner as in Example 6-4 except that the compound was not administered.
  • FIG. 13 is a photomicrograph of a tissue section in the CA1 region of the gerbil hippocampus of Example 6-4, at the same magnification as in FIG. Table 1 shows the results of the tests of Example 2 for various candidate compounds in Example 2.
  • Table 2 shows the results of a test conducted in Example 7 on the therapeutic effect of Compound 1 administered to an ALS model mouse.
  • BEST MODE FOR CARRYING OUT THE INVENTION The anti-neurodegenerative drug of the present invention is selected from the group consisting of compound 1 or a salt thereof, compound 2 or a salt thereof, compound 3 or a salt thereof, and compound 4 or a salt thereof. Contains one or more compounds as active ingredients.
  • Compounds 1 to 4 have structural formulas represented by the following formulas (1) to (4), respectively.
  • Compounds 1 to 3 are substances known as dopamine D4 antagonists and compound 4 is a substance known as dopamine D4 agonist, and commercially available products are available from, for example, Tocris Cookson Ltd. (UK) and the like.
  • the salts of the compounds 1 to 4 include pharmaceutically acceptable acid (inorganic or organic acid) addition salts, for example, hydrochloride, hydrobromide, sulfate, nitrate, acetate, benzoate, Maleate, fumarate, succinate, tartrate, citrate, oxalate, methanesulfonate, tolenesulfonate, aspartate, glutamate and the like.
  • the compound 1 may be a trihydrochloride
  • the compounds 2 and 3 may be a monohydrochloride
  • the compound 4 may be a maleate.
  • the anti-neurodegenerative drug of the present invention may practically be the above-mentioned active ingredient alone, but may be prepared by mixing with a pharmaceutically acceptable carrier depending on the degree of the disease and the administration form of the drug. Is preferred. That is, the agent of the present invention can be mixed with a carrier so that the dosage form becomes suitable for parenteral or oral administration.
  • Parenteral administration includes local injection, intraperitoneal injection, selective intravenous injection, intravenous injection, subcutaneous injection, infusion of organ perfusion, rectal administration, etc.
  • a carrier for formulation as an injection Sterile water, saline, glucose solution, or a mixture of saline and glucose solution can be used.
  • buffering agents such as pH adjusters (sodium hydrogen phosphate, citric acid, etc.), tonicity agents (sodium chloride, glucose, etc.), preservatives methyl reoxybenzoate, propyl P-hydroxybenzoate, etc.)
  • Pharmaceutical adjuvants can also be included.
  • the thus formulated drug can be sterilized by filtration through a bacteria-retaining filter, mixing of a bactericide into the composition, irradiation of the composition, or heating.
  • the composition may be prepared in powder form and mixed with the liquid carrier at the time of use to prepare an injection solution.
  • Oral dosage forms include dosage forms suitable for absorption by the gastrointestinal tract (eg, tablets, capsules, granules, granules, powders, or oral liquid preparations such as suspensions or syrups). Etc.).
  • Carriers include conventional pharmaceutical auxiliaries such as binders (syrup, gum arabic, gelatin, sonorebit, tragacanth, polybierpyrrolidone, hydroxypropylcellulose, etc.), excipients (lactose, sugar, corn starch, calcium phosphate). Sorbitol, glycine, etc.), lubricants (magnesium stearate, tanolek, polyethylene glycol, silica, etc.), disintegrants (potato starch, carboxymethyl cellulose, etc.), and wetting agents (sodium lauryl sulfate, etc.) can be used. . Flavors such as bevel, flavor and peppermint can also be added.
  • Oral solutions can be aqueous solutions or dry products. Such oral solutions may contain conventional additives such as preservatives (methyl or propyl p-hydroxybenzoate, sorbic acid, and the like).
  • the content of the active ingredient in the drug can be appropriately determined depending on the degree of the disease and the form of administration, but is usually 5 to; L 00% (w / w), preferably 10 to 60% (w / w).
  • the treatment method of the present invention is a method including a step of administering a compound which is an active ingredient of the above-mentioned anti-neurodegenerative drug to a patient having a neurodegenerative disease.
  • the above-mentioned anti-neurodegenerative drug is administered to a patient Is the way.
  • Administration of the anti-neurodegenerative drug can be parenteral (local injection, intraperitoneal injection, selective intravenous injection, intravenous injection, subcutaneous injection, organ perfusion, rectal administration, etc.) or oral.
  • the dose of the drug varies depending on the patient's age, body weight, symptoms, administration route, etc., but the amount of the active ingredient can be about 1 to 500 mg / kg.
  • Example 1 Example 1
  • aqueous solution of a candidate compound (10 mM) was added to RPMI 1640 medium containing THP-1 cells (obtained as ATCC TIB202 strain from the American Type Culture Collection; 1 ⁇ 106 cdls / ml) and 10% fetal bovine serum (FBS). (Final concentration: 300 ⁇ ) at a rate of 30 ⁇ / ml, dispensed 100 ⁇ / ⁇ to each well of a 24-well plate, and incubate at 37 ° C for 3 days.
  • the cells were collected and the cells were dissolved in a sample lysis solution (composition: 50 Tris-HC1 (pH 7.5), 150 mM NaCl and 1% NP-40) in a protease inhibitor mixture (brand name: Complete, manufactured by Roche Diagnostics Corporation).
  • the sample solution was dissolved in 150 ⁇ l, and centrifuged at 14000 g for 15 minutes at 4 ° C to remove insoluble materials to obtain a sample solution.
  • the NAIP concentration in the sample solution was measured by ELISA according to the method described in Examples 3 and 4 of JP-A-2000-125861.
  • the sample solution was dispensed 50 to each well of the anti-NAIP monoclonal antibody-immobilized plate, and the immobilized antibody was FERM BP-6921, a hybridoma producing anti-NAIP monoclonal antibody (Independent Administrative Corporation)
  • the anti-NAIP antibody hnmc 841 obtained from the National Institute of Advanced Industrial Science and Technology, Patent Product Deposit Center (Deposit No. 1-1-1-1, Higashi, Tsukuba, Ibaraki, Japan, deposited on October 9, 1999).
  • H-SY5Y cells ATCC CRL2266 strain from American Type Culture Collection
  • IX 10 5 cells / ml DMEiM-HG medium containing 10% FBS
  • 100 units / ml penicillin and 100 ⁇ g / ml streptomycin at 3 ml / well in each well of a 6-well plate.
  • Aliquots were incubated at 37 ° C for 2 days.
  • an aqueous solution of all-trans retinoic acid (2 mM) was added in an amount of 3 ⁇ 1 / ⁇ (lane 2) or 15 ⁇ 1 / ⁇ (lane 4) and incubated at 37 ° C. for 3 days.
  • aqueous solution (10 mM) of the candidate compound was added to each well at a ratio of 30 ⁇ l / ⁇ 1, and the mixture was incubated at 37 ° C for 1 day. After the incubation was completed, the wells were washed with 0.25 M NaCl ′, and then filled on ice with 10% trichloroacetic acid (TCA) and left for 10 minutes. Then, the cells were collected with a scraper and centrifuged (14000 rpm, 10 minutes, 4 ° C).
  • urea TX solution 9 M aqueous urea solution containing 2% Triton X-100 and 5% 2-mercaptoethanol
  • LDS lithium dodecyl sulfate
  • Primary antibody ME1-3 (prepared according to the method described in JP-A-11-116599 and JP-A-2000-125861, the same as the biotinylated secondary antibody of JP-A-2000-125861
  • Example 3 (2) was diluted 3000-fold with TBST, and the membrane was immersed in this for 2 hours at room temperature, washed with TBST, and ant rabbit Ig, horseradish peroxidase (trade name; manufactured by Amersham Pharmacia) was diluted with TBST. The plate was immersed in a 3000-fold dilution at room temperature for 1 hour, and emitted light with a chemiluminescent reagent (ECL-Plus, manufactured by Amersham Pharmacia). Exposure was for 30 minutes.
  • ECL-Plus chemiluminescent reagent
  • DMEM containing HeLa cells obtained as ATCC CCL2 strain from American Type Culture Collection; 1 ⁇ 10 6 cells / ml), 10% FBS, penicillin 100 units / ml and streptomycin 100 ⁇ g / ml in a T75 flask HG medium in the presence of 5% CO 2 37. Incubated at C for 10 hours. In 25 ml of this culture, an aqueous solution of the scavenging compound (10 mM) was added at a loading D of 250 / i, and the mixture was further incubated at 37 ° C in the presence of 5% CO 2 for 1.5 days. Cells were harvested, washed with the medium, and measuring the cell number was so adjusted to be IX 10 5 cells / ml were suspended in a new said medium.
  • the values shown on the horizontal axis represent the concentrations of each cell death inducing reagent, and the vertical axis represents the addition of 15 ⁇ l of a 10% ice solution of Triton X-100 instead of the cell death inducing reagent.
  • the relative values of the fluorescence are represented by setting the value obtained by performing the same operation as above to 0.
  • “Control” represents the result for the control
  • “Compound 1” represents the result when Compound 1 was used.
  • Table 1 shows some of the results of the tests of this example for various candidate compounds. The tests shown in Table III were performed with the final concentration of the compound at the time of incubation being 10 ⁇ M.
  • SH- SY5Y cells IX 10 '5 cells / ml ), 10% FBS, penicillin 100 units / ml and streptomycin containing 100 ⁇ g / ml DMEM- HG medium 6 Ueru. Plate 3 to each Ueru of The mixture was dispensed in ml / well and incubated at 37 ° C for 2 days. Thereafter, an aqueous solution (2 mM) of all-trans retinoic acid was added to the solution with 15 ⁇ l / wenole and incubated at 37 ° C. for 3 days.
  • aqueous solution (10 mM) of the candidate compound was added to each well at a rate of 30 ⁇ l / ml, and incubated at 37 ° C. for 1 day.
  • the cells were collected, washed with the above medium, the number of cells was counted, adjusted to 1 ⁇ 10 5 cells / ml, and suspended in the new medium.
  • This suspension was operated in the same manner as in Example 3 (2) to examine how the correlation between the cell death-inducing reagent concentration and the number of viable cells changes depending on the presence or absence of the candidate compound.
  • Figure 5 shows the results when compound 1 was used as a trapping compound and menadione was used as a cell death inducing reagent.
  • Example 3 The same procedure as in Example 3 was followed, except that human fibroblasts (catalog number # 106-05) purchased from Cell Applications, Inc. as a normal human fibroblast culture kit were used instead of HeLa cells. Then, it was examined how the correlation between the cell death inducing reagent concentration and the number of living cells changes depending on the presence or absence of the candidate compound.
  • FIG. 6 shows the results when compound 1 was used as a trapping compound and menadione was used as a cell death inducing reagent.
  • Examples 6- to 6-4 Candidate compounds were dissolved in physiological saline, the pH was adjusted using 1 N NaOH, etc., as needed, and a solution having a pH of 3 to 4 and a concentration of 100 mM was prepared and stored. . This was diluted with physiological saline at the time of use, and 8 mg (Example 6-1), 40 mg (Example 6-2), 80 mg (Example 6-3) or 240 mg of the scavenger compound was added in 0.5 ml. mg (Example 6-4). This was administered to gerbils (Mongolian Gerbil). In Examples 6_1 to 6-3, the solution was orally administered in 0.5 ml portions at 24 hour intervals, and in Example 6-4, the solution was administered once.
  • gerbils Mongolian Gerbil
  • FIGS. 7 to 13 show the results when compound 1 was used as a candidate compound and the control results. As shown in FIGS. 7 to 13, when Compound 1 was used as a candidate compound, it was found that the deformation and loss of cells in the CA1 region were suppressed in a dose-dependent manner.
  • Example 7 The in vivo therapeutic effect of Compound 1 was examined using amyotrophic lateral sclerosis (ALS) model animal.
  • ALS amyotrophic lateral sclerosis
  • the ALS model animal is a Cu / Zn-SOD transgenic mouse (Latest Medicine, Vol. 57, No. 7, "A New Model Animal with Amyotrophic Lateral Sclerosis (ALS)", July 2002, pp. 1622-1627: (Acquired by Masashi Aoki, Department of Neurology, Tohoku University School of Medicine).
  • the ALS model mice were divided into three groups (physiological saline injection group, compound 1 (8 mg / kg) administration group, compound 1 (40 mg / kg) administration group; one dose each), and the expected days of onset of ALS mice Approximately 40 days before birth (about 140-150 days after birth), saline, Compound 1 (8 mg / kg) and Compound 1 (40 mg / kg) were administered once a week until the mice died. The group was orally administered.
  • the anti-neurodegenerative drug provided by the present invention when administered to a subject to be administered, increases the amount of NAIP production and further suppresses nerve degeneration. It works. Therefore, amyotrophic lateral sclerosis (ALS), spinal muscular atrophy syndrome (SMA), Huntington's disease, Parkinson's disease, Alzheimer's disease, trauma 'cerebrospinal palsy with cerebrovascular disorder, dementia after cerebrovascular disorder It is useful for the treatment and prevention of other neurodegenerative diseases such as dementia accompanied by neurological loss.
  • ALS amyotrophic lateral sclerosis
  • SMA spinal muscular atrophy syndrome
  • Huntington's disease Parkinson's disease
  • Alzheimer's disease Alzheimer's disease
  • trauma 'cerebrospinal palsy with cerebrovascular disorder dementia after cerebrovascular disorder
  • dementia after cerebrovascular disorder dementia after cerebrovascular disorder

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Abstract

筋萎縮性側索硬化症(ALS)、脊髄性筋萎縮症候群(SMA)、ハンチントン病、パーキンソン病、アルツハイマー病、脳血管障害後の痴呆、その他の神経脱落を伴う痴呆症等の神経変性疾患の治療及び予防に有用な薬剤であって、3-[4-(4-クロロフェニル)ピペラジン-1-イル]メチル]-1H-ピロロ[2,3-b]ピリジン又はその塩、5-(4-クロロフェニル)-4-メチル-3-(1-(2-フェニルエチル)ピペリジン-4-イル)イソキサゾール又はその塩、3-(4-クロロフェニル)-4-メチル-5-(1-(2-フェニルエチル)ピペリジン-4-イル)イソキサゾール又はその塩、及びN-メチル-4-(2-シアノフェニル)ピペラジニル-3-メチルベンズアミン又はその塩、からなる群より選択される1種または2種以上の化合物を含む抗神経変性薬。

Description

明細書 抗神経変性薬
技術分野 本発明は、筋萎縮性側索硬化症（ALS)、脊髄性筋萎縮症候群（SMA)、ハン チントン病、パ一キンソン病、アルッハイマ一病、脳血管障害後の痴呆、その他の 神経脱落を伴う痴呆症等の神経変性疾患の治療及び予防に有用な抗神経変 性薬に関するもの'である。
背景技術 筋萎縮性側索硬化症（ALS)、脊髄性筋萎縮症候群（SMA)、ハンチントン病、 パーキンソン病、アルツハイマー病、脳血管障害後の痴呆、その他の神経脱落を 伴なう痴呆症等、神経の細胞群の変性が関与する一群の疾患は、神経変性疾 患と総称されている。神経変性疾患は、根本的治療法の確立していないものが ほとんどであり、治療法の探索が求められている。 神経変性疾患の治療のためのアプローチとして、神経細胞の変性を抑制する 因子を投与することが考えられる。神経変性を抑制する因子を投与することによ り、このような疾患の治療及ぴ予防に対して有利な作用をもたらすことが期待され る。しかしながら、そのような因子で実際に有効に治療薬として用いることができる ものはほとんど見つかっていないのが現状である。 神経細胞の変性を抑制する因子としては、例えば、ある種のドパミン受容体ァゴ 二ストがそのような作用を有する可能性があることが知られている。しかしながら、ド パミン拮抗と神経細胞の変性の抑制との因果関係は不明であり、また全てのドパ ミン受容体ァゴニストにおいてそのような作用があるというわけではない。また、有 効に治療薬として用いることができる物質を得るため、抗神経変性薬として用いう る、さらに他のクラスの物質を見出すことが求められている。
発明の開示 本発明者らは、家族性の遺伝病である SMAの原因遺伝子として、ヒト染色体 5ql3.1領域より神経細胞アポト一シス抑制蛋白質（ Neuronal Apoptosis Inhibitory Protein： NAIP)遺伝子を単離し（Roy et al.， Cell 80 : 167-178, 1995)、 NAIPの全アミノ酸配列と NAIPをコードする cDNAを単離している（特開平 1 116599号公報）。そして、この NAIP産生量を増加させる物質を探索する過程 において、意外にも、ある種のドパミン受容体ァゴニストに加えて、ある種のドパミン 受容体アンタゴニストが、 NAIP産生量を増加させることを見出し、さらにこれらが実 際に神経の変性を抑制しうることを見出し、本発明を完成した。 即ち、本発明によれば、 3-[4 - (4-クロ口フエニル）ピぺラジン- 1 -ィノレ]メチル] -1H - ピロ口 [2,3- b]ピリジン（以下「化合物 1」と称する。）又はその塩、 5- (4-クロ口フエ二 ル）- 4 -メチル -3- (1 -（2-フエ二ルェチノレ）ピぺリジン- 4-ィノレ）イソキサゾール（以下 「化合物 2」と称する。）又はその塩、 3-(4-クロロフヱ二ル)- 4-メチル- 5-(1- (2-フエ ニルェチル）ピぺリジン- 4 -ィル)イソキサゾ一ル（以下「化合物 3」と称する。 )又はそ の塩、及ぴ N-メチル- 4 -（2-シァノフエニル）ピペラジニル -3 -メチルベンズァミン（以 下「ィヒ合物 4」と称する。）又はその塩、力^なる群より選択される 1種または 2種以 上の化合物を含む抗神経変性薬が提供される。 また本発明によれば、 .3 - [4- (4-クロ口フエ二ノレ)ピぺラジン- 1-ィル]メチル] - 1H -ピ ロロ [2，3- b]ピリジン又はその塩、 5- (4-クロ口フエ二ル）- 4-メチル -3 -（1 -（2-フエ二 ルェチノレ）ピぺリジン- 4 -ィノレ）イソキサゾール又はその塩、 3- (4-クロ口フエニル） - 4- メチル- 5 - -（2-フエニルェチル）ピぺリジン- 4 -ィノレ）イソキサゾール又はその塩、 及び N-メチル- 4-（2 -シァノフエ二ノレ）ピペラジニル -3 -メチルベンズァミン又はその 塩からなる群より選択される 1種または 2種以上の化合物を使用して抗神経変性 薬を製造する方法が提供される。 さらに本発明によれば、 3-[4- (4-クロ口フエ二ノレ）ピぺラジン- 1-ィル]メチル ]- 1Η- ピロ口 [2 , 3- b]ピリジン又はその塩、 5- (4-クロ口フエ二ル)- 4-メチル -3- (1- (2-フエ二 ルェチノレ）ピぺリジン- 4-ィノレ)イソキサゾール又はその塩、 3- (4-クロ口フエニル) - 4- メチル -5- (1- (2-フエ二ルェチノレ）ピぺリジン- 4-ィル）イソキサゾール又はその塩、 及び N-メチル -4- (2-シァノフエニル）ピペラジニル- 3-メチルベンズァミン又はその 塩からなる群より選択される 1種または 2種以上の化合物を神経変性疾患の患者 に投与する工程を含む、神経変性疾患の治療方法が提供される。 なお、本発明において、「神経変性疾患」とは、筋萎縮性側索硬化症（ALS)、 脊髄性筋萎縮症侯群（SMA)、ハンチントン病、パーキンソン病、アルツハイマー 病、脳血管障害後の痴呆、その他の神経脱落を伴う痴呆症等の、中枢神経の 細胞群の変性が関与する疾患を意味する。また「患者」とは、神経変性疾患に羅 患したヒトおよび非ヒト哺乳動物（特に家畜、ペット等の有用哺乳動物）を意味す る。 本発明におけるその他の用語や概念は、発明の実施形態の説明や実施例に おいて詳しく規定する。またこの発明を実施するために使用する様々な技術は、 特にその出典を明示した技術を除いては、公知の文献等に基づいて当業者であ れば容無かつ確実に実施可能である。例えば、この発明の薬剤の調製は Remington s Pharmaceutical Sciences , 18th Edition, ed. A. Gennaro, Mack Publishing C o . , Easton, PA, 1990等に、遺伝子工学および分子生物学的技 術は Sambrook and Maniatis , in Molecular Cloning - A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory Press, New York, 1989 ; Ausubel, F. M . et al. , Current Protocols in Molecular Biology, John Wiley & Sons, New York, Ν·Υ, 1995等に記載されている。
図面の簡単な説明 図 1は実施例 2における、化合物 1による ΝΑΙΡ産生量の変化を示す泳動図であ る。図中レーン 1〜5は、それぞれ以下の試料の泳動結果を示す。
レーン 1 :低濃度レチノイン酸処理し、候補化合物不添加
レ一ン 2 :低濃度レチノイン酸処理し、候補化合物添加
レーン 3 :高濃度レチノイン酸処理し、候捕化合物不添加
レーン 4;高濃度レチノイン酸処理し、候補化合物添加
レ一ン 5 : ΤΗΡ- 1細胞 図 2は、実施例 3において、細胞死誘導試薬としてメナジオンを用いた場合の、 化合物 1の細胞死抑制効果を示すグラフである。 図 3は、実施例 3において、細胞死誘導試薬として α -ナフトキノンを用いた場合 の、化合物 1の細胞死抑制効果を示すグラフである。 図 4は、実施例 3において、細胞死誘導試薬として 2 , 3-ジメトキシ- 1 ,4-ナフトキ ノンを用いた場合の、化合物 1の細胞死抑制効果を示すグラフである。 図 5は、実施例 4において、細胞死誘導試薬としてメナジオンを用いた場合の、 化合物 1の細胞死抑制効果を示すグラフである。 図 6は、実施例 5において、細胞死誘導試薬としてメナジオンを用いた場合の、 化合物 1の細胞死抑制効果を示すグラフである。 図 7は、実施例 6における、化合物投与及び閉塞を行なわなかった対照スナネ ズミの脳海馬 CA1領域の組織切片の顕微鏡写真である。 図 8は、実施例 6における、化合物投与を行なわなかった他は実施例 6- 1〜6-3 と同様に操作した対照スナネズミの脳海馬 CA1領域の組織切片の顕微鏡写真 である。 図 9は、実施例 6-1のスナネズミの脳海馬 CA1領域の組織切片の顕微鏡写真で ある。 ' ' 図 10は、実施例 6- 2のスナネズミの脳海馬 CA1領域の組織切片の顕微鏡写真 である。 ' 図 1 1は、実施例 6- 3のスナネズミの脳海馬 CA1領域の組織切片の顕微鏡写真 である。 図 12は、実施例 6における、化合物投与を行なわなかった他は実施例 6- 4と同 様に操作した対照スナネズミの脳海馬 CA1領域の組織切片の、図 8より拡大した 顕微鏡写真である。 図 13は、実施例 6- 4のスナネズミの脳海馬 CA1領域の組織切片の、図 12と同倍 率の顕微鏡写真である。 表 1は、実施例 2において、種々の候補化合物について本実施例の試験を行な つた結果である。 表 2は、実施例 7において、 ALSモデルマウスに化合物 1を投与した場合の治療 効果を試験した結果である。 発明を実施するための最良の形態 本発明の抗神経変性薬は、化合物 1又はその塩、化合物 2又はその塩、化合 物 3又はその塩、及び化合物 4またはその塩からなる群より選択される 1種または 2 種以上の化合物を有効成分として含む。 化合物 1〜4は、それぞれ下記式（1)〜(4)で表わされる構造式を有する。
Figure imgf000008_0001
Figure imgf000008_0002
Figure imgf000008_0003
( 4 ) W
化合物 1〜3は、ドパミン D4アンタゴニストとして、化合物 4はドパミン D4ァゴニスト として既知の物質であり、例えば Tocris Cookson Ltd. (英国）等から、市販品を 入手することが可能である。 化合物 1〜4の塩としては、例えば、製薬上許容される酸（無機酸または有機 酸）付加塩、例えば塩酸塩、臭化水素酸塩、硫酸塩、硝酸塩、酢酸塩、安息硝 酸塩、マレイン酸塩、フマル酸塩、コハク酸塩、酒石酸塩、クェン酸塩、シユウ酸 塩、メタンスルホン酸塩、トレエンスルホン酸塩、ァスパラギン酸塩、グルタミン酸塩 等である。より具体的には例えば、化合物 1の場合、三塩酸塩、化合物 2及ぴ 3 の場合一塩酸塩、化合物 4の場合マレイン酸塩とすることができる。 本発明の抗神経変性薬は、実施的に前記の有効成分単独であってもよいが、 疾患の程度や薬剤の投与形態に応じて、製薬上許容される担体と混合して調 製することが好ましい。すなわち、本発明の薬剤は、非経口的または経口的な投 与に適した剤型となるような担体と混合することができる。 非経口投与は、局所注入、腹腔内投与、選択的静脈内注入、静脈注射、皮 下注射、臓器灌流液注、直腸投与等であり、例えば注射剤としての製剤化する 場合の担体としては、滅菌水、塩溶液、グルコース溶液、または塩水とグルコース 溶液の混合物等を使用することができる。また緩衝剤 pH調節剤（リン酸水素ナト リウム、クェン酸等）、等張化剤（塩化ナトリウム、グルコース等）、保存剤レ ラオキ シ安息香酸メチル、 P-ヒドロキシ安息香酸プロピル等））等の製薬補助剤を含有 することもできる。このように製剤化した薬剤は、細菌保持フィルターを通す濾過、 組成物への殺菌剤の混入、組成物の照射や加熱によって滅菌することができる。 また粉末状態で製剤化し、使用時に前記液体担体と混合して注射液を調製す るようにしてもよレ、。 経口投与剤は胃腸器官による吸収に適した剤形（例えば、錠剤、カプセル剤、 顆粒剤、細粒剤、粉末剤、または懸濁剤やシロップ剤のような経口液体調製物 等）に製剤化する。担体としては、常用の製薬補助剤、例えば結合剤（シロップ、 アラビアゴム、ゼラチン、ソノレビット、トラガカント、ポリビエルピロリドン、ヒドロキシプロ ピルセルロース等）、賦形剤（ラクトース、シュガー、コーンスターチ、リン酸カルシゥ ム、ソルビット、グリシン等）、滑沢剤（ステアリン酸マグネシウム、タノレク、ポリエチレ ングリコール、シリカ等）、崩壊剤（ポテトスターチ、カルボキシメチルセルロース等）、 湿潤剤（ラウリル硫酸ナトリウム等）を使用することができる。スト口ベリ一.フレ一バ 一、ペパーミント等のフレーバー類等を添加することもできる。また錠剤は常法によ りコーティングすることができる。経口液剤は水溶液またはドライプロダクトにするこ とができる。そのような経口液剤は常用の添加剤、例えば保存剤（p—ヒドロキシ安 息香酸メチルもしくはプロピル、ソルビン酸等）を包含していてもよい。 薬剤中の有効成分の含有量は疾患の程度やその投与形態に応じて適宜とす ることができるが、通常は 5〜； L 00%(w/w)、好ましくは 10〜60%(w/w)の範囲とする ことができる。 本発明の治療方法は、前記の抗神経変性薬の有効成分である化合物を神経 変性疾患の患者に投与する工程を含む方法であり、具体的には前記の抗神経 変性薬を患者に投与する方法である。抗神経変性薬の投与は、非経口的（局 所注入、腹腔内投与、選択的静脈内注入、静脈注射、皮下注射、臓器灌流液 注、直腸投与等）または経口的に行うことができる。また、薬剤の投与量は、患者 の年齢や体重、症状、投与経路等によって異なるが、有効成分量として 1〜500 mg/kg程度とすることができる。
実施例 以下、本発明の実施例の詳細について記载する。なお、本発明の実施形態は ：れらに限定されない。 実施例 1
(1) THP - 1細胞（American Type Culture Collectionより ATCC TIB202株として 入手； 1 X 106 cdls/ml)及び 10 %ゥシ胎児血清（FBS)を含む RPMI 1640培地 に、候補化合物の水溶液（10 mM、最終濃度 300 μ Μ)を 30 μ ΐ/mlの割合で添加 し、これを 24ゥヱルプレートの各ゥエルに、 100 μ ΐ/ゥエルずつ分注し、 37°Cで 3日間 インキュベートした後菌体を回収し、菌体を試料溶解液（組成： 50 トリス- HC1 (pH 7.5)、 150 mM NaCl及ぴ 1 % NP- 40に、プロテアーゼ阻害剤混合物（¾品 名 Complete, Roche Diagnositics Corporation社製）を添付プロトコノレ ίこ従レヽ添 加したもの） 150 μ 1に溶解し、さらに 4°Cにて 14000 gで 15分間遠心して不溶物を 除いたものを試料溶液とした。
(2) 試料溶液として（1)で得たものを用い、特開 2000- 125861号公報の実施例 3 及ぴ 4の記載の方法に従って、試料溶液中の NAIP濃度を ELISAにより測定した。 但し前記試料溶液は抗 NAIPモノクローナル抗体固相化プレートの各穴に 50 ずつ分注し、固相化抗体としては、抗 NAIPモノクローナル抗体を産生するハイブ リドーマである FERM BP-6921株（独立行政法人産業技術縿合研究所 特許生 物寄託センター（日本国茨城県つくば市東 1— 1— 1中央第 6)寄託番号、 1999 年 10月 9日に寄託）より得た抗 NAIP抗体 hnmc 841を用いた。測定は各候補化 合物について 3回行ない、平均を求めた。また、対照として、候捕化合物の水溶 液の代わりに、同量の蒸留水を添加した他は（1)と同様に操作した試料溶液（未 処理標準）について、同様に ELISAによる測定を行なった。その結果、候捕化合 物として化合物 1を用いた場合の試料溶液は、未処理標準の 1〜3倍の NAIPを 含んでいることが分かった。
実施例 2
(1) H-SY5Y細胞（American Type Culture Collectionより ATCC CRL2266株と して入手； I X 105 cells/ml)、 10% FBS、ペニシリン 100 units/ml及びストレプトマ イシン 100 μ g/mlを含む DMEiM- HG培地を 6ゥヱルプレートの各ゥエルに 3 ml/ゥェ ルずつ分注し、 37°Cで 2日間インキュベートした。その後、全トランス型レチノイン酸 の水溶液（2 mM)を、 3 μ 1/ゥエル（レーン 2)又は 15 μ 1/ゥエル（レーン 4)添加し、 37°Cで 3日間インキュベートした。
(2) その後、候補化合物の水溶液（10 mM)を 30 μ 1/ιη1の割合で各ゥエルに添 加し、 37°Cで 1日間インキュベートした。インキュベート終了後、 0.25 M NaCl'でゥ エルを洗浄した後、氷上でゥエルを 10 %トリクロ口酢酸（ T C A )で満たして 10分間放 置した。その後、スクレーパーで菌体を回収し、遠心した（14000 rpm、 10分間、 4°C)。得られたペレットに、尿素 TX溶液（2 % Triton X- 100及び 5% 2-メルカプ トエタノールを含む 9 M尿素水溶液） 100 1、 10%ドデシル硫酸リチウム（LDS)水 溶液 25 1および 2 Μトリス水溶液 2 μ 1を添加し、泳動用試料を調製し、一80°Cで 保存した。
(3) (2)で調製した泳動用試料を、ホモジナイズした後に 10 1とり、 READYGELSJ (Bio Lad Laboratories社製）に乗せ、 120 Vで 75分間泳動し、 SDS- PAGEを行 なった。泳動終了後、 Squi-Blot PVDF Membrane (Bio Lad Laboratories社製） に、 100 Vで 75分間転写を行ない、 10 %スキムミノレクを含む TBTS (Tween- 20 (シ ダマ社製）を 0.05 %含むトリス緩衝生理食塩水、 pH 7.4)で 1日間ブロッキングし、 • TBTSで洗浄した。 1次抗体 ME1- 3 (特開平 11- 116599号公報及び特開 2000 - 125861号公報記載の方法に従って調製した、特開平 2000- 125861号公報実施 例 3(2)のピオチン化二次抗体と同一のもの）を TBSTで 3000倍に希釈し、これに前 記メンブランを室温で 2時間浸漬し、 TBSTで洗浄した後、 ant卜 rabbit Ig, horseradish peroxidase (商品名； Amersham Pharmacia社製）を TBSTで 3000倍 に希釈したものに室温で 1時間浸漬し、化学発光試薬（ECL- Plus、 Amersham Pharmacia社製）により発光させ、 X線フィルム（商品名「バイオマックス」、コダック 社製）に、露光時間 30分で露光した。また、対照として、候補化合物を添加しな かつた他は上記（ 1)〜 (2)と同様に調製した泳動用試薬についても、同様に分析し た（レーン 1及び 3)。また、比較のために、 THP- 1細胞菌体内容物について、同様 に泳動した（レーン 5)。結果を図 1に示す。候捕化合物として化合物 1を試料とし た場合、低濃度及び高濃度レチノイン酸で処理した場合のいずれにおいても（レ ーン 2及び 4)、 NAIPに由来すると見られる 160 kDaのバンドが、対照（レーン 1及び 3)に比べて顕著に強く発現した。
実施例 3
(1) T75フラスコ中、 HeLa細胞（American Type Culture Collectionより ATCC CCL2株として入手； 1 X 106 cells/ml)、 10 % FBS、ペニシリン 100 units/ml及び ストレプトマイシン 100 β g/mlを含む DMEM- HG培地を、 5 % C 02存在下 37。Cで 10 時間インキュベートした。この培養液 25 ml中に、候捕化合物の水溶液（10 mM) を、 250 /i 1添力 Dし、 5 % C 02存在下 37°Cでさらに 1.5日間インキュベートした。細胞 を回収し、前記培地にて洗浄し、細胞数を計測し、 I X 105 cells/mlになるよう調 整して新しい前記培地に懸濁した。
(2) ( 1 )で得た懸濁液を 150 μ 1ずつ 96穴プレートに添加し、 37°Cで 4時間培養 後、細胞死誘導試薬（メナジオン（重亜硫酸ナトリウム塩、 10 mM水溶液）、 α -ナ フトキノン（10mM DMSO溶液）又は 2 , 3-ジメトキシ- 1 , 4-ナフトキノン（10 mM DMSO溶液）のいずれ力 を添加し、 34°Cで 4時間インキュベートした。細胞を前記 培地で洗浄した後、各ゥヱルに 150 μ 1の新しい前記培地を入れ、さらに 37 °Cで 6 時間インキュベートした後、 Alamar Blue (商標名、 BioSource International, Inc (米国）製）を各ゥエルに 15 β 1添加し、 10時間経過後、励起波長 530 nm、検出 波長 560 nmにおける蛍光を蛍光検出器にて測定し、生細胞数を判定した。ま た、対照として、候補化合物の水溶液を添加しなかった他は同様に操作したもの についても、同様に生細胞数を判定した。細胞死誘導試薬の濃度を種々に変化 させて試験を行ない、細胞死誘導試薬濃度と生細胞数との相関が、候補化合 物の有無によりどのように変化するかを調べた。候捕化合物として化合物 1を用い た場合の結果を図 2〜4に示す。なお、図 2〜6において、横軸に示される数値は 各細胞死誘導試薬の濃度を表わし、縦軸は、細胞死誘導試薬の代わりに Triton X- 100の 10 %氷溶液 15 μ 1を添加した他は上記と同様に操作したものを 0 とした蛍光の相対値を表わす。 「control」は対照について、「化合物 1」は化合物 1を用いた場合についての結果をそれぞれ表わす。 種々の候補化合物について本実施例の試験を行なった結果の一部を表 1に示 す。なお、表 Γに示す試験は、インキュベート時の化合物の最終濃度はいずれも 10 μ Mとして行なったものである。
Figure imgf000014_0001
1) Tocris Cookson Ltd.の製品番号
実施例 4
SH- SY5Y細胞（I X 10'5 cells/ml)、 10% FBS、ペニシリン 100 units/ml及びスト レプトマイシン 100 μ g/mlを含む DMEM- HG培地を 6ゥエル.プレートの各ゥエルに 3 ml/ゥエルずつ分注し、 37°Cで 2日間インキュベートした。その後、全トランス型レチ ノイン酸の水溶液（2 mM)を、 15 μ 1/ウエノレ添カ Πし、 37°Cで 3日間インキュベートし た。その後、候補化合物の水溶液（10 mM )を 30 μ 1/mlの割合で各ゥエルに添加 し、 37°Cで 1日間インキュベートした。細胞を回収し、前記培地にて洗浄し、細胞 数を計測し、 1 X 105 cells/mlになるよう調整して新しい前記培地に懸濁した。こ の懸濁液を、実施例 3 (2)と同様に操作し、細胞死誘導試薬濃度と生細胞数との 相関が、候補化合物の有無によりどのように変化するかを調べた。候捕化合物と して化合物 1を用い、細胞死誘導試薬としてメナジオンを用いた際の結果 図 5 に示す。
実施例 5
HeLa細胞に代えて Cell Applications, Inc.より正常ヒト繊維芽細胞培養キットと して購入したヒト繊維芽細胞（カタログ番号 # 106- 05)を用いた他は、実施例 3と同 様に操作し、細胞死誘導試薬濃度と生細胞数との相関が、候補化合物の有無 によりどのように変化するかを調べた。候捕化合物として化合物 1を用い、細胞死 誘導試薬としてメナジオンを用いた際の結果を図 6に示す。
実施例 6 - 〜 6 - 4 候補化合物を生理食塩水に溶解し、必要に応じて 1 N NaOH等を用いて pHを 調整し、 pH 3〜4、濃度 100 mMの溶液を調整し、保存した。これを用時生理食 塩水で希釈し、 0.5 ml中に候捕化合物を 8 mg (実施例 6- 1 )、 40 mg (実施例 6- 2)、 80 mg (実施例 6- 3)又は 240 mg (実施例 6- 4)含む溶液とした。これを、スナ ネズミ（Mongolian Gerbil)に投与した。実施例 6_1〜6- 3においては、溶液を 24 時間間隔で 0.5 mlずつ経口投与し、実施例 6- 4においては溶液を 1回投与した。 なお、用量 240 mg X 2回投与した場合においてカタレプシ一様症状を認めた他 は、投与による異常は認められず、血圧、体温及び心電図をモニターした結果も 全て正常であった。 実施例 6- 1〜6- 3のスナネズミは 2回目の投与の 2時間後両総頸動脈を 10分間 閉塞させ、その 5日後屠殺した。実施例 6- 4のスナネズミは投与 2時間後に両総 頸動脈を 10分間閉塞させ、その 3日後屠殺した。脳の海馬 CA1領域の組織をへ マトキシリン'ェォシンで染色した切片を作成し、染色像を観察した。また、化合物 投与及ぴ閉塞を行なわなかった他は同様に操作したスナネズミ、及ぴ化合物投 与のみを行なわなかった他は同様に操作したスナネズミについても、同様に屠殺 し、切片を作成し、.対照とした。化合物 1を候補化合物として用いた場合の結果 及び対照の結果を図 7〜 13に示す。図 7〜13に示す通り、化合物 1を候補化合 物として用いた場合、用量依存的に CA1領域の細胞の変形'脱落が抑制されて いることが認められた。
実施例 7 筋萎縮性側索硬化症（ALS)モデル動物を用いて、化合物 1の in vivo治療効 果を調べた。
ALSモデル動物は Cu/Zn- SOD遺伝子導入マウス（最新医学、第 57卷、第 7 号、「新しい筋萎縮側索硬化症（ALS)モデル動物」、 2002年 7月、第 1622- 1627 ページ：東北大学医学部神経内科 青木正志氏より入手）を使用した。 ALSモデ ルマウス 3匹を 3群（生理食塩水投群、化合物 1 (8 mg/kg)投与群、化合物 1 (40 mg/kg)投与群；各 1服）に分け、 ALSマウスの予想発症日数（生後約 140〜150 日）の約 40日前から、マウスが死亡するまで 1週間に 1回、生理食塩水、化合物 1 (8 mg/kg)及ぴ化合物 1 (40 mg/kg)をそれぞれの群に経口投与した。
結果は表 2に示したとおりであり、化合物 1 (40 mg/kg)の投与は ALSモデルマウ スにおける発症から死亡までの期間を延長させる効果を有することが確認された。 表 2
Figure imgf000017_0001
産業上の利用可能性 以上に詳細に説明したとおり、本発明によって提供される抗神経変性薬は、投 与対象に投与した場合、 NAIP産生量を増加させ、さらには神経の変性を抑制す る効果を奏する。したがって、筋萎縮性側索硬化症（ALS)、脊髄性筋萎縮症候 群（SMA)、ハンチントン病、パーキンソン病、アルツハイマー病、外傷'脳血管障 害を伴う脳脊髄麻痺、脳血管障害後の痴呆、その他の神経脱落を伴う痴呆症 等の神経変性疾患の治療及ぴ予防に有用である。

Claims

請求の範囲
1 . 3- [4 -（4-クロ口フエ二ノレ）ピぺラジン- 1 -ィノレ]メチル] -1 H-ピロ口 [2 , 3- b]ピリジン 又はその塩、 5- (4-クロ口フエニル） - 4-メチル -3- (1- (2-フエニルェチル）ピぺリジン- 4 -ィル）イソキサゾール又はその塩、 3- (4-クロ口フエ二ル）- 4-メチル -5- (1- (2-フエ ニルェチル）ピぺリジン- 4-ィル）イソキサゾール又はその塩、及び N—メチノレー 4一（2— シァノフエニル）ピペラジニル -3 -メチルベンズァミン又はその塩、からなる群より選 択される 1種または 2種以上の化合物を含む抗神経変性薬。 '
2. 3- [4- (4-クロ口フエ二ノレ）ピぺラジン- 1—ィル]メチル]— 1 H-ピロ口 [2 , 3- b]ピリジン 又はその塩、 5- (4-クロ口フエ二ル）- 4-メチル -3 -（1- (2-フエ二ルェチノレ）ピぺリジン - 4 -ィル）イソキサゾール又はその塩、 3- (4-クロ口フエニル )-4 -メチル -5-(1- (2-フエ ニルェチル）ピぺリジン- 4-ィル）イソキサゾール又はその塩、及び N-メチル -4- (2- シァノフエニル)ピぺラジュル- 3-メチルベンズァミン又はその塩からなる群より選択 される 1種または 2種以上の化合物を使用して抗神経変性薬を製造する方法。
3. 3-[4- (4-クロ口フエニル）ピぺラジン-トイル]メチル]- 1H-ピロ口 [2 , 3- b]ピリジン 又はその塩、 5- (4-クロ口フエ二ル)- 4-メチル -3- (1- (2-フエニルェチル）ピぺリジン - 4-ィノレ）イソキサゾール又はその塩、 3- (4-クロ口フエニル） - 4 -メチル -5- (1- (2-フエ 二ルェチノレ）ピぺリジン- 4-ィル）イソキサゾール又はその塩、及び N—メチル - 4-(2- シァノフエニル）ピペラジニル -3 -メチルベンズァミン又は^の塩からなる群より選択 される 1種または 2種以上の化合物を神経変性疾患の患者に投与する工程を含 む、神経変性疾患の治療方法。
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