SE455600B - Forfarande for detektering av vextvirus och dess tillempning for detektering av rodsotvirus och potatisvirus - Google Patents
Forfarande for detektering av vextvirus och dess tillempning for detektering av rodsotvirus och potatisvirusInfo
- Publication number
- SE455600B SE455600B SE8605095A SE8605095A SE455600B SE 455600 B SE455600 B SE 455600B SE 8605095 A SE8605095 A SE 8605095A SE 8605095 A SE8605095 A SE 8605095A SE 455600 B SE455600 B SE 455600B
- Authority
- SE
- Sweden
- Prior art keywords
- virus
- detecting
- biotin
- rna
- viral rna
- Prior art date
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/70—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving virus or bacteriophage
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/58—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving labelled substances
- G01N33/581—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving labelled substances with enzyme label (including co-enzymes, co-factors, enzyme inhibitors or substrates)
Landscapes
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Immunology (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Hematology (AREA)
- Urology & Nephrology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Zoology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Virology (AREA)
- Cell Biology (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Food Science & Technology (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- General Physics & Mathematics (AREA)
- Pathology (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Description
455 600
5
10
15
20
25
30
35
NUVARANDE METODIK
Screening för virusresistens i ett förädlings-
program innebär vanligtvis en mätning av virusproduk-
tionen efter en testinfektion. Detta betyder att tusen-
tals plantor skall testas för virusförekomst pà rela-
tivt kort tid. Den vanligaste metoden tills för nâgra
år sedan har helt enkelt varit att visuellt bedöma
plantorna för karakteristiska symptom från en virus-
infektion. Nackdelarna med denna form av urval är
att ett ringa virusinnehàll inte ger synliga symptom
samtidigt som det krävs ett tränat öga för att göra
en någorlunda tillförlitlig bedömning.
Eftersom angrepp av t ex rödsotvirus i vallgräs
inte ger några som helst synliga symptom är det svårt
att uppskatta förekomsten och skadan av detta virus.
Resistensförädling mot rödsotvirus i vallgräsen måste
därför baseras på en laboratoriemetod. En sådan metod,
som fått allt större användning inom växtvirusdiag-
nostiken, är den s k ELISA-tekniken. Denna serologiska
metod baserar sig på antigeniciteten i virusprotein-
höljet så att viruspartiklarna detekteras genom att
'antikroppar reagerar med virusprotein. ELISA-tekniken
är den gängse metoden för detektion av växtvirus och
används rutinmässigt pà Svalöf AB inom potatisprogrammet
för såväl kontrollen av utsäde som resistensförädling.
Metoden har många fördelar, då den är enkel att utföra,
är snabb och relativt känslig, kan användas i stor
skala samt kräver ingen dyrbar utrustning. Dessvärre
har ELISA-testet även sina begränsningar, då metoden
är osäker vid låg frekvens av virus. Svårigheten med
detta test för t ex rödsotvirus är att få en ren virus-
.preparation för produktion av antikroppar, eftersom
viruset förekommer endast i låg frekvens.
NY METODIK
Majoriteten av växtvirus, ca 75%, innehåller
nukleinsyran RNA, som genetiskt material, omsluten
av ett proteinhölje. Det är antigeniciteten i detta
lv
10
15
20
25
30
35
455 600
3
protein, som utnyttjas i ELISA-testet, men det rep-
resenterar enbart lO% av virusgenomets information.
Genom att istället analysera virusnukleinsyran direkt
kan betydligt tillförlitligare resultat erhållas vid
detektion av virus. Detta nya sätt att diagnosticera
virus baserar sig pá att komplementära nukleínsyra-
strängar hybridiserar med varandra, en grundfunktion
inom rekombinant-DNA-tekniken. En sådan metod, nuklein-
syrahybridisering medelst “dot-blot", har just de
egenskaper, som gör den önskvärd i resistensförädlingen
mot virus. Den är mycket känslig och snabb, har stor
kapacitet samt är framför allt tillförlitlig. På den
engelska växtförädlingsinstitutionen PBI, Cambridge,
har en sådan molekylär screeningmetod helt och hållet
ersatt ELISA-tekniken för detektion av potatisvirus
X (Baulcombe et al 1984).
Med potatis som modellgröda har på Svalöf AB
utvecklats en icke-radioaktiv molekylär hybridiserings-
teknik för detektion av potatisvirus Y (PVY), som
med vissa modifikationer kan användas för detektion
av diverse andra växtvirus t ex rödsotvirus.
- Bruket av nukleinsyrahybridisering för detektion
av PVY förutsätter_tillgàng till DNA komplementärt
till virus-RNA-genomet. Metodiken med nukleinsyra-
hybridisering omfattar därför följande moment:
- isolering av virus
- isolering av virus-RNA
- cDNA-syntes samt molekylär kloning
- spot-test
Isolering av virus
PVY renframställs från infekterade tobaksblad
enligt Oxelfelt (pers. commun.). Cellväggarna i bladen
bryts ner genom homogenisering i en buffert, som medför
att viruspartiklarna inte aggregerar. Såväl reducerande
som chelaterande ämnen tillsättes för att förhindra/-
reducera polyfenolinverkan resp enzymaktivitet. Orga-
neller, ribosomer etc fránskiljes genom centrifugering,
10
15
20
25
30
35
455 600
4
varefter virus koncentreras genom fällning med poly-
etylenglykol följt av rening genom ultracentrifugering.
Renheten hos PVY kontrolleras genom mätning av absorp-
tionsspektrum, medan infektiviteten kontrolleras på
tobak med åtföljande ELISA-test.
Isolering av RNA
RNA isoleras från renframställt PVY med gängse
fenolextraktion för nukleinsyror enligt modifiering
av Clemens (1985). Renheten hos RNA-preparationen
kontrolleras dels genom mätning av absorptionen, dels
genom agaroselektrofores.
Molekylär kloning
Framställning av komplementärt DNA (CDNA) till
PVY-RNA utföres med RNase H-metoden enligt modifiering
av Gubler and Hoffman (1983). Fördelen med denna metodik
är att längre sammanhängande DNA-sekvenser erhålles
samtidigt som hela proceduren äger rum i ett enda
provrör; Koncentration och mängd syntetiserat cDNA
beräknas genom inmärkning med radioaktivt fosfor (32P).
cDNA fogas in i en plasmid, som är lineariserad genom
behandling med ett restriktionsenzym. Plasmiden överförs
och förökas i E. coli-celler, varefter kolonier med
plasmid + CDNA identifieras på selektivt medium. Bakte-
rier och därmed också plasmider från dessa kolonier
förökas i stor skala, varefter plasmid-DNA isoleras
genom ultracentrifugering. Storleken på plasmiden
samt det infogade cDNA:t bestäms genom agaroselektro-
fores. På detta sätt har vi på Svalöf AB framställt
flera PVY-kloner med DNA komplementärt till virus-RNA,
vilka kan användas för detektion av PVY medelst nuklein-
syrahybridisering.
Sgot-test
Den egentliga detektionen av virusförekomst utförs
med ett s k spot-test, varvid virus-RNA från bladsaft
binds till ett nitrocellulosamembran, känns igen och
hybridiserar med tillsatt komplementärt DNA, som gjorts
detekterbart genom inmärkning med antingen radioaktiva
In
10
15
20
25
30
35
455 600
5
isotoper eller biotin. Undersökningarna pá Svalöf AB
har koncentrerats på att utarbeta en optimal spot-
test,-vilken baseras på den icke-radioaktiva detektionen
med biotin. Det vanligaste sättet att märka in sitt
prov är med 32P, men detta tillvägagångssätt har vissa
nackdelar. Eftersom halveringstiden för 32P endast
är 14 dagar, mäste man ständigt göra nya inmärkningar.
För laboratoriepersonalens säkerhet är det dessutom
bättre om icke-radioaktivt material kan användas i
synnerhet som hybridiseringsmetoden är ämnad för scree-
ning-bruk. Den metodik Vi utarbetat grundas därför
på inmärkning medelst nick-translation med biotinderi-
vat av deoxiribonukleotider istället för 32P.
En liten mängd potatissaft appliceras på nitro-
cellulosafilter efter det att bladsaften behandlats
med ett proteinnedbrytande enzym. Detta är ett nöd-
vändigt moment, då i potatisblad endogent förekommande
biotin är bundet till protein (Nikolau et al 1985),
som i likhet med nukleinsyror också binder till nitro-
cellulosa. Om inte proteinet bryts ner före applicering
kommer det endogena biotinet att detekteras, som om
det fanns virus.
Nitrocellulosafiltret ”bakas” vid hög temperatur
i vakuum för bindning av nukleinsyrorna, bl a virus-RNA,
varefter man gör en prehybridisering för att minimera
bakgrundsstörningar.
Beträffande prehybridiseringen är detta ett nöd-
vändigt steg i förfarandet för att minimera bakgrunds-
störningar i filtret p g a ospecifik bindning av makro-
molekyler. Detta undviks genom att filtret behandlas
med en lösning, vars ingredienser har funktionen att
reducera eller förhindra en ospecifik bakgrund.
Härefter vidtar den egentliga nukleinsyrahybri-
diseringen (Gatti et al 1984), dä filtret inkuberas
med biotinmärkt DNA homologt till PVY-RNA. Ifall ett
prov är infekterat med PVY kommer virus-RNA bundet
i nitrocellulosafiltret att hybridiseras med en homolog
10
15
20
25
30
35
455 600
6
cDNA-sträng och detekteras genom en enzymatisk reaktion
med biotin, vilket resulterar i en färgad produkt
klart synlig för ögat. Blåfärgade fläckar på filtret
anger sålunda att en hybridisering ägt rum mellan
virus-RNA och komplementärt framställt DNA och indikerar
därmed en virusinfektion. Där det inte syns någonting
har ingen hybridisering skett, och detta betyder ett
virusfritt prov.
Med denna icke-radioaktiva hybridiseringsteknik
detekteras så små mängder som 2 pg virus-RNA, vilket
är den undre detekteringsgränsen med 32P. Genom att
ändra inmärkningssättet med biotin är det dock möjligt
att sänka detektionsgränsen ytterligare (Forster et
al 1985). För att kunna detektera 2 pg virus-RNA med
32P krävs en exponeringstid av flera dagar jämfört
med biotininmärkning där svaret erhålles efter endast
1-4 timmar.
Metoden är således mycket känslig och klart över-
lägsen ELISA-tekniken för detektion av små koncentra-
tioner av virus. Fördelen med detta test i jämförelse
med ELISA-metoden är också att man behöver göra virus-
isoleringen endast en gång. Med det molekylära testet
förökas bakterierna med CDNA vid behov, men med ELISA-
-testet måste man göra kontinuerliga virusreningar
för framställning av antikroppar. Kapaciteten för
hybridiseringstekniken är mycket hög och jämförbar
med ELISA-testet, d V s screening av tusentals plantor
tar endast ett par dagar. Ytterligare fördelar med
det molekyära hybridiseringstestet är den potential
detta utgör för en användning på andra grödor än po-
tatis. Detta innebär t ex att vi kan undersöka tolerans
mot rödsotvirus i vallgräs, vilket tidigare varit
omöjligt i avsaknad av laboratoriemetod.
SLUTSATSER
Eftersom virusangrepp av skilda slag orsakar
stora skördeförluster på grödorna i landet, är det
7 ekonomiskt betydelsefullt att tillförlitliga laboratorie-
metoder för detektion av virus utvecklas. Jag anser
0,,
10
15
20
25
455 600
7
att den teknik, som utarbetats på Svalöf AB för stor-
skalig detektion av virus medelst icke-radioaktiv
nukleinsyrahybridisering har just de egenskaper, som
är önskvärda för en sådan laboratoriemetod. Denna
hybridiseringsmetodik är sålunda ett av de första
exemplen där rekombinant-DNA-teknik med fördel kan
användas inom praktisk växtförädling.
Litteraturförteckning:
Baulcombe, D., Flavell, R.B., Boulton, R.E. and Jellis,
G.J. 1984. Plant Pathol. 33: 361-370.
Clemens, M.J. 1985. In Viroloqy, A practical approach.
(Ed. B.W.J. Mahy). IRL Press: 211-230.
Forster, A.C. Mcïnnes, J.L., Skingle, D.C, and Symons,
R.H. 1985. Nucl. Acids Res. l3(3): 745-761.
1984. Bio-
Gatti, R.A., Concannon, P. and Salser, W-
techniques 3: 148-155.
Gubler, U. and Hoffman, B.J. 1983. Gene 25: 263-269.
Lindsten, K. 1974. Nordisk Jordbruksforskning. 55(3):.
354-356.
Nikolau, B.J., Wurtele, E.S. and Stumpf, P.K. 1985.
Anal. Biochem. 149: 448-453.
Claims (2)
1. Förfarande för detektering av växtvirus, A k ä n n e t e c k n a t av att bladsaft behandlas med ett proteinnedbrytande enzym för avlägsnande av endogent bundet biotin, virus-RNA från bladsaften binds till ett filtermembran, en prehybridisering genomföres, virus-RNA hybridiseras genom att membranet inkuberas med biotinmärkt DNA som är homologt till RNA i det virus som skall detekteras, varvid ett bio- tinspecifikt enzym tillsättes, varvid närvaron av det specifika virus-RNA blir visuellt pàvisbar genom uppkomst av en färg.
2. Användning av förfarandet enligt krav l, för detektering av potatisvirus Y, Xu S, A eller M av rödsotvirus. H1
Priority Applications (4)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SE8605095A SE455600B (sv) | 1986-11-27 | 1986-11-27 | Forfarande for detektering av vextvirus och dess tillempning for detektering av rodsotvirus och potatisvirus |
AU83382/87A AU8338287A (en) | 1986-11-27 | 1987-11-25 | Process for detecting plant virus |
PCT/SE1987/000558 WO1988003956A1 (en) | 1986-11-27 | 1987-11-25 | Process for detecting plant virus |
DK382488A DK382488D0 (da) | 1986-11-27 | 1988-07-08 | Fremgangsmaade til paavisning af plantevirus |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SE8605095A SE455600B (sv) | 1986-11-27 | 1986-11-27 | Forfarande for detektering av vextvirus och dess tillempning for detektering av rodsotvirus och potatisvirus |
Publications (3)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SE8605095D0 SE8605095D0 (sv) | 1986-11-27 |
SE8605095L SE8605095L (sv) | 1988-05-28 |
SE455600B true SE455600B (sv) | 1988-07-25 |
Family
ID=20366432
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SE8605095A SE455600B (sv) | 1986-11-27 | 1986-11-27 | Forfarande for detektering av vextvirus och dess tillempning for detektering av rodsotvirus och potatisvirus |
Country Status (3)
Country | Link |
---|---|
AU (1) | AU8338287A (sv) |
SE (1) | SE455600B (sv) |
WO (1) | WO1988003956A1 (sv) |
Families Citing this family (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
GB8827094D0 (en) * | 1988-11-19 | 1988-12-21 | Scottish Crop Research Inst | Dna sequence encoding coat protein gene of potato leafroll virus |
IL97295A0 (en) * | 1990-02-27 | 1992-05-25 | Agrilab Biotechnology Ltd | Procedure for the detection of plant pathogens performed under field conditions and a diagnostic kit for its application |
CN1303423C (zh) * | 2004-04-15 | 2007-03-07 | 云南省农业科学院 | Pvy云南分离物tas-elisa检测试剂盒及其制备方法 |
CN1303422C (zh) * | 2004-04-15 | 2007-03-07 | 云南省农业科学院 | Pvx云南分离物tas-elisa检测试剂盒及其制备方法 |
Family Cites Families (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CA1338856C (en) * | 1983-07-05 | 1997-01-21 | Jannis Stavrianopoulos | In vivo labelling of polynucleotide sequences |
GB8331071D0 (en) * | 1983-11-22 | 1983-12-29 | Karayiannis P | Assay for dna/rna |
JPH06100605B2 (ja) * | 1984-04-05 | 1994-12-12 | ハワ−ド フロ−リ インステイチユ−ト オブ イクスペリメンタル フイジオロジ アンド メデイスン | ハイブリダイゼ−ション組織化学 |
EP0189280A3 (en) * | 1985-01-23 | 1987-01-07 | Dekalb-Pfizer Genetics | Qualitative testing for nucleic acid |
-
1986
- 1986-11-27 SE SE8605095A patent/SE455600B/sv not_active IP Right Cessation
-
1987
- 1987-11-25 WO PCT/SE1987/000558 patent/WO1988003956A1/en not_active Application Discontinuation
- 1987-11-25 AU AU83382/87A patent/AU8338287A/en not_active Abandoned
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
WO1988003956A1 (en) | 1988-06-02 |
SE8605095D0 (sv) | 1986-11-27 |
SE8605095L (sv) | 1988-05-28 |
AU8338287A (en) | 1988-06-16 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Payne et al. | Detection and characterization of a distinct bornavirus lineage from healthy Canada geese (Branta canadensis) | |
Schramm et al. | The latent period after infection with tobacco mosaic virus and virus nucleic acid | |
CN104846013B (zh) | 一种复制缺陷型人55型腺病毒载体及其制备方法和应用 | |
Waterhouse et al. | Serotype-specific and general luteovirus probes from cloned cDNA sequences of barley yellow dwarf virus | |
Zhang et al. | Isolation and identification of a viral haemorrhagic septicaemia virus (VHSV) isolate from wild largemouth bass Micropterus salmoides in China | |
Luigi et al. | Development of quantitative real-time RT-PCR for the detection and quantification of Peach latent mosaic viroid | |
Chen et al. | LAMP detection of the genetic element ‘Mona’associated with DMI resistance in Monilinia fructicola | |
CN107400674B (zh) | 一种利用番茄斑萎病毒NSm基因鉴定烟草抗性的方法 | |
Nomura et al. | Biological and serological properties of strains of barley mild mosaic virus | |
Sakuragi et al. | Minimal region sufficient for genome dimerization in the human immunodeficiency virus type 1 virion and its potential roles in the early stages of viral replication | |
CN111363856A (zh) | 多重rt-pcr同时检测四种番茄病毒的方法 | |
Lee et al. | Multiplex RT-PCR detection of two orchid viruses with an internal control of plant nad5 mRNA | |
CN107488732A (zh) | 检测辣椒转基因成分的三重荧光pcr引物组、探针组、试剂盒及方法 | |
CN110643580B (zh) | 槟榔坏死梭斑病毒及其检测方法 | |
CN107974515B (zh) | 一种罗非鱼罗湖病毒的恒温快速检测试剂盒 | |
SE455600B (sv) | Forfarande for detektering av vextvirus och dess tillempning for detektering av rodsotvirus och potatisvirus | |
CN102212620A (zh) | 一种检测三种鱼类弹状病毒的测量审核用试剂盒 | |
Zana et al. | Metagenomic analysis of bat guano samples revealed the presence of viruses potentially carried by insects, among others by Apis mellifera in Hungary | |
Kado et al. | The coat protein gene of tobacco mosaic virus: I. Location of the gene by mixed infection | |
CN109988858B (zh) | 一种转基因烟草多重荧光pcr基因位点、引物及其检测方法 | |
CN103451185A (zh) | 龟纹瓢虫特异性coi引物、含有该引物的试剂盒及其检测方法 | |
CN111363832A (zh) | 一种用于稻田土壤中拟禾本科根结线虫qPCR定量检测的引物组合物、试剂盒及其应用 | |
CN108796128A (zh) | 一种gii.8型诺如病毒基因组扩增引物和扩增方法 | |
CN106868216A (zh) | 一种禽白血病病毒pcr检测引物组及包括该检测引物组的试剂盒 | |
Peng et al. | Interspecific Recombination Between Zucchini Tigre Mosaic Virus and Papaya Ringspot Virus Infecting Cucurbits in China |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
NUG | Patent has lapsed |
Ref document number: 8605095-2 Effective date: 19940610 Format of ref document f/p: F |