JPWO2018155622A1 - 細胞又は組織包埋デバイス - Google Patents

細胞又は組織包埋デバイス Download PDF

Info

Publication number
JPWO2018155622A1
JPWO2018155622A1 JP2019501832A JP2019501832A JPWO2018155622A1 JP WO2018155622 A1 JPWO2018155622 A1 JP WO2018155622A1 JP 2019501832 A JP2019501832 A JP 2019501832A JP 2019501832 A JP2019501832 A JP 2019501832A JP WO2018155622 A1 JPWO2018155622 A1 JP WO2018155622A1
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
cell
embedding device
cells
tissue embedding
gel
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Granted
Application number
JP2019501832A
Other languages
English (en)
Other versions
JP7049617B2 (ja
Inventor
小原田　明信
明信 小原田
佳弘 木村
佳弘 木村
昌史 後藤
昌史 後藤
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Tohoku University NUC
Japan Vam and Poval Co Ltd
Original Assignee
Tohoku University NUC
Japan Vam and Poval Co Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Tohoku University NUC, Japan Vam and Poval Co Ltd filed Critical Tohoku University NUC
Publication of JPWO2018155622A1 publication Critical patent/JPWO2018155622A1/ja
Application granted granted Critical
Publication of JP7049617B2 publication Critical patent/JP7049617B2/ja
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Classifications

    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K35/00—Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
    • A61K35/12—Materials from mammals; Compositions comprising non-specified tissues or cells; Compositions comprising non-embryonic stem cells; Genetically modified cells
    • A61K35/37—Digestive system
    • A61K35/39—Pancreas; Islets of Langerhans
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61F—FILTERS IMPLANTABLE INTO BLOOD VESSELS; PROSTHESES; DEVICES PROVIDING PATENCY TO, OR PREVENTING COLLAPSING OF, TUBULAR STRUCTURES OF THE BODY, e.g. STENTS; ORTHOPAEDIC, NURSING OR CONTRACEPTIVE DEVICES; FOMENTATION; TREATMENT OR PROTECTION OF EYES OR EARS; BANDAGES, DRESSINGS OR ABSORBENT PADS; FIRST-AID KITS
    • A61F2/00—Filters implantable into blood vessels; Prostheses, i.e. artificial substitutes or replacements for parts of the body; Appliances for connecting them with the body; Devices providing patency to, or preventing collapsing of, tubular structures of the body, e.g. stents
    • A61F2/02—Prostheses implantable into the body
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K47/00—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient
    • A61K47/30—Macromolecular organic or inorganic compounds, e.g. inorganic polyphosphates
    • A61K47/32—Macromolecular compounds obtained by reactions only involving carbon-to-carbon unsaturated bonds, e.g. carbomers, poly(meth)acrylates, or polyvinyl pyrrolidone
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L31/00—Materials for other surgical articles, e.g. stents, stent-grafts, shunts, surgical drapes, guide wires, materials for adhesion prevention, occluding devices, surgical gloves, tissue fixation devices
    • A61L31/04—Macromolecular materials
    • A61L31/048—Macromolecular materials obtained by reactions only involving carbon-to-carbon unsaturated bonds
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L31/00—Materials for other surgical articles, e.g. stents, stent-grafts, shunts, surgical drapes, guide wires, materials for adhesion prevention, occluding devices, surgical gloves, tissue fixation devices
    • A61L31/14—Materials characterised by their function or physical properties, e.g. injectable or lubricating compositions, shape-memory materials, surface modified materials
    • A61L31/145—Hydrogels or hydrocolloids
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P3/00—Drugs for disorders of the metabolism
    • A61P3/08—Drugs for disorders of the metabolism for glucose homeostasis
    • A61P3/10—Drugs for disorders of the metabolism for glucose homeostasis for hyperglycaemia, e.g. antidiabetics
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N11/00—Carrier-bound or immobilised enzymes; Carrier-bound or immobilised microbial cells; Preparation thereof
    • C12N11/02—Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier
    • C12N11/04—Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier entrapped within the carrier, e.g. gel or hollow fibres
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N11/00—Carrier-bound or immobilised enzymes; Carrier-bound or immobilised microbial cells; Preparation thereof
    • C12N11/02—Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier
    • C12N11/08—Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier the carrier being a synthetic polymer
    • C12N11/082—Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier the carrier being a synthetic polymer obtained by reactions only involving carbon-to-carbon unsaturated bonds
    • C12N11/084—Polymers containing vinyl alcohol units
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/0068—General culture methods using substrates
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
    • C12N5/0602—Vertebrate cells
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
    • C12N5/0602—Vertebrate cells
    • C12N5/067—Hepatocytes
    • C12N5/0672—Stem cells; Progenitor cells; Precursor cells; Oval cells
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2500/00—Specific components of cell culture medium
    • C12N2500/05—Inorganic components
    • C12N2500/10—Metals; Metal chelators
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2500/00—Specific components of cell culture medium
    • C12N2500/30—Organic components
    • C12N2500/34—Sugars
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2500/00—Specific components of cell culture medium
    • C12N2500/60—Buffer, e.g. pH regulation, osmotic pressure
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2533/00—Supports or coatings for cell culture, characterised by material
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2533/00—Supports or coatings for cell culture, characterised by material
    • C12N2533/30—Synthetic polymers

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Developmental Biology & Embryology (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Dispersion Chemistry (AREA)
  • Diabetes (AREA)
  • Heart & Thoracic Surgery (AREA)
  • Vascular Medicine (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Physiology (AREA)
  • Nutrition Science (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Surgery (AREA)
  • Inorganic Chemistry (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Transplantation (AREA)
  • Oral & Maxillofacial Surgery (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Hematology (AREA)

Abstract

生細胞や生体組織を含有するＰＶＡゲルを作製するプロセスにおいて、生細胞や生体組織の減少を抑えることにより、生理活性物質の供給能力が高い細胞又は組織包埋デバイスを供給することを課題とする。細胞又は組織包埋デバイスの免疫隔離層を形成するための水性ゲルを、シンジオタクティシティがトライアッド表示で３２〜４０％であるポリビニルアルコール樹脂を成分として構成する。

Description

本発明は、生体にとって有用なホルモンやタンパク質等の生理活性物質を産生及び／又は分泌する生体組成物、あるいは有害な物質を解毒する作用を有する生体組成物を、患者に移植することによって、内分泌疾患、代謝疾患等のヒトを含む動物の疾患の予防及び／又は治療に効果を発揮する細胞又は組織包埋デバイスの免疫隔離層を形成するための水性ゲルに関する。
細胞又は組織包埋デバイスとは、生細胞や生体組織等を含有し、疾患を有するヒトや動物の臓器等に代わり、代謝機能に関連するホルモンやタンパク質等の生理活性物質を患者に供給したり、有害物質を解毒することによって、患者の疾病を予防及び／又は治療することを目的とする装置である。細胞又は組織包埋デバイスは、免疫隔離層によって生細胞や生体組織を生体の防御機構から保護できるため、生体臓器移植と比べ、免疫抑制剤の投与を不要とするため、免疫抑制剤による副作用の心配がないこと、施術が低侵襲である点、及び死体ドナーからの同種人工臓器移植のみならず種々の再生幹細胞や異種人工臓器移植も可能であるという点で、ドナー不足を解決し得る能力を有しており優れている。
近年、汎用高分子や金属、セラミックス等の材料と、生細胞や生体組織およびそれらを有する細胞製剤を組み合わせた細胞又は組織包埋デバイスが研究されており、その中に含有する細胞等の種類を変えることにより、様々な疾患の治療に対応できる。
例えば、バイオ人工膵島は、インスリン分泌細胞（例えば、膵島細胞）をその中に有し、膵島細胞から分泌されるインスリンホルモンを患者に供給して血糖値の是正を図るために用いられる。
その他にも、血液凝固因子生産型バイオ人工臓器、成長ホルモン生産型バイオ人工臓器、副甲状腺ホルモン産生型バイオ人工臓器、ドパミン産生型バイオ人工臓器等のバイオ人工臓器が、血友病、下垂体小人症、上皮小体機能低下症、パーキンソン病等の疾病の治療に検討されている。
細胞又は組織包埋デバイスには様々な形状があるが、その一例として、生細胞や生体組織を高分子重合体で包み込んだマイクロカプセル型又はマクロカプセル型の製剤（例えば、細胞製剤）を用いたものが挙げられる。これらは、高分子重合体が有する強固な架橋構造によって、その中に含有される細胞や組織を生体の防御機構から護り、更に高分子重合体が有する分子透過能を利用して、細胞や組織から分泌されるホルモン等を生体に供給することを特徴としている。
マクロカプセル型細胞製剤が用いられたバイオ人工臓器等に用いられる高分子重合体として、近年、ポリビニルアルコール（以下、ＰＶＡとも略す）が着目されている。
ＰＶＡは、安全性の高い材料であり、化学的又は物理的処理を施すことによりゲル化し、ＰＶＡゲルは比較的ゲル強度が高く、種々の形状に成形が可能である。化学的処理としては、例えば、ＰＶＡを含む水溶液にグルタルアルデヒド（架橋剤）及び塩酸（触媒）を添加する方法等が用いられている（例えば、非特許文献１参照）。また物理的処理としては、例えば、ＰＶＡを含む水溶液を約−２０℃という低温で急冷しゲル化する方法等が用いられている（特許文献１）。
特開平１０−４３２８６号公報 特開２００４−３３１６４３号公報
Krystyna Burczak et. Al, Long-term in vivo performance and biocompatibility of PVA hydrogelmacrocapsules for hybrid-type artificial pancreas、Biomaterials、1996年、第17巻、p2351-2356
前述の化学的処理によるゲル化方法では、ＰＶＡゲルに残存した架橋剤や触媒添加による低ｐＨ化等により細胞が損傷を受け、生存細胞数の減少又は生理活性物質の供給能力の低下によって、所望する治療効果が得られないという問題がある。
一方、物理的処理によるゲル化方法では、薬剤を使用することがなく、架橋剤や触媒による損傷はないが、低温で急冷するため、生存細胞数の減少や生理活性物質の供給能力低下が起こる。
これらの問題を解決する方法として、低温でＰＶＡゲルを作製する際、生細胞とともに細胞保存剤を共存させる方法が開示されている（特許文献２）。しかしながら、この方法では、依然としてＰＶＡゲルを製造するために、低温（−８０℃）で２４時間処理しているため、生存細胞数の減少とそれに伴う生理活性物質の供給能力の低下の問題は十分に解決できていない。
本発明は、上記現状に鑑み、生細胞や生体組織を含有するＰＶＡゲルを作製するプロセスにおいて、生細胞や生体組織の減少を抑えることにより、生理活性物質の供給能力が高い細胞又は組織包埋デバイスを供給することを課題とする。
本発明者らは、上記目的を達成すべく鋭意検討を重ねた結果、−５℃以上の温度でゲル形成が可能である生体内酵素により主鎖が切断されないゲル形成高分子材料を使用すると、架橋剤を用いることなく、且つ所望の（すなわち、包埋される生細胞や生体組織が損傷を受けにくい）ｐＨ、温度でゲル化させることができるため、生細胞や生体組織に最適な条件下でゲル化が可能となることを見出した。最も好ましい態様の一つである特定のシンジオタクティシティを有するＰＶＡ樹脂（好ましくは、シンジオタクティシティがトライアッド表示で、３２〜４０％のＰＶＡ樹脂）を用いた実証では、ＰＶＡゲル中の細胞や組織の生存率及び生理活性物質の供給能力が高いＰＶＡゲル細胞（又は、組織）製剤が得られることを確認し、さらに検討を重ねて本発明を完成するに至った。
即ち、本発明は、以下の（１）〜（２３）に関する。
（１） シンジオタクティシティがトライアッド表示で３２〜４０％であるポリビニルアルコール樹脂（Ａ）を成分として含む水性ゲルを免疫隔離層として有する、細胞又は組織包埋デバイス。
（２） 水性ゲルが、−５℃以上でのゲル化履歴を有することを特徴とする前記（１）に記載の細胞又は組織包埋デバイス。
（３） 水性ゲルが、応力０．３〜３０ｋＰａを有することを特徴とする前記（１）又は（２）に記載の細胞又は細胞包埋デバイス。
（４） ポリビニルアルコール樹脂（Ａ）の鹸化度が９０〜９９．９９モル％、重合度が１００〜１００００である前記（１）〜（３）のいずれかに記載の細胞又は組織包埋デバイス。
（５） ポリビニルアルコール樹脂（Ａ）が、ピバリン酸ビニルを重合成分とする重合体の鹸化物であって、ピバリン酸ビニル単位を含む前記（１）〜（４）のいずれかに記載の細胞又は組織包埋デバイス。
（６） 免疫隔離層に、生体組成物（Ｂ）及び細胞培養成分（Ｃ）が封入されている前記（１）〜（５）のいずれかに記載の細胞又は組織包埋デバイス。
（７） 生体組成物（Ｂ）が、膵島細胞、膵管細胞、肝臓細胞、神経細胞、甲状腺細胞、副甲状腺細胞、腎細胞、副腎細胞、下垂体細胞、脾細胞、脂肪細胞、骨髄細胞、間葉系幹細胞、ES細胞及びiPS細胞からなる群から選択される１以上である前記（６）に記載の細胞又は組織包埋デバイス。
（８） 生体組成物（Ｂ）が、膵島細胞又は肝臓細胞である前記（６）に記載の細胞又は組織包埋デバイス。
（９） 細胞培養成分（Ｃ）が、Na、K、Cl、Ca及びGlucoseからなる群から選択される１以上を含有する酢酸又はリン酸緩衝液である前記（６）〜（８）のいずれかに記載の細胞又は組織包埋デバイス。
（１０） 支持基材（Ｄ）を含有する前記（１）〜（９）のいずれかに記載の細胞又は組織包埋デバイス。
（１１） 支持基材（Ｄ）の素材が、ＰＥＴ、ＰＥ、ＰＰ、テフロン（登録商標）及び金属からなる群から選択される１以上である前記（１０）に記載の細胞又は組織包埋デバイス。
（１２） 応力０．３〜３０ｋＰａを有することを特徴とする前記（１）〜（１１）のいずれかに記載の細胞又は細胞包埋デバイス。
（１３） ポリビニルアルコール樹脂（Ａ）を含む水溶液と、細胞培養成分（Ｃ）を混合した後に、生体組成物（Ｂ）を混合して得られる混合物をゲル化せしめる工程を含む前記（６）〜（１２）のいずれかに記載の細胞又は組織包埋デバイスの製造方法。
（１４） 水性ゲルを作製する際の温度を−５℃以上にする前記（１３）に記載の細胞又は組織包埋デバイスの製造方法。
（１５） シンジオタクティシティがトライアッド表示で３２〜４０％であるポリビニルアルコール樹脂（Ａ）を含む水性ゲルを含有する細胞又は組織包埋デバイスの免疫隔離層形成剤。
（１６） ポリビニルアルコール樹脂（Ａ）の鹸化度が９０〜９９．９９モル％、重合度が１００〜１００００である前記（１５）に記載の剤。
（１７） ポリビニルアルコール樹脂（Ａ）が、ピバリン酸ビニルを重合成分とする重合体の鹸化物であって、ピバリン酸ビニル単位を含む前記（１６）に記載の剤。
（１８） ポリビニルアルコール樹脂（Ａ）を含み、封入されている生体組成物（Ｂ）の分泌成分を透過させ、且つ免疫関連細胞又は免疫関連物質の透過を抑制することを特徴とする水性ゲルを免疫隔離層として有する、細胞又は生体組織包埋デバイス。（ここで、生体組成物（Ｂ）の分泌成分は、生体にとって有用なホルモンやタンパク質等の生理活性物質であることが好ましい）。
（１９） 前記（１）〜（１２）のいずれかに記載のデバイス製造のための（１）〜（１２）及び（１５）〜（１７）のいずれかに記載の水性ゲルの使用。
（２０） 前記（１）〜（１２）のいずれかに記載のデバイスをヒト又は動物に投与することを特徴とするヒト又は動物の疾病の予防または治療方法。
（２１） ヒトまたは動物の疾病の予防または治療のために使用する（１）〜（１２）のいずれかに記載のデバイス。
（２２） −５℃以上でゲル化する性質を有することを特徴とする、シンジオタクティシティがトライアッド表示で３２〜４０％であるポリビニルアルコール樹脂（Ａ）、生体組成物（Ｂ）及び細胞培養成分（Ｃ）を含有する混合物。
（２３） 生理活性物質産生細胞または組織を直接、あるいは支持材料で支持したものに対して、生体内酵素により主鎖が切断されないゲル形成高分子材料を含む保護ゲル層形成材料の水溶液もしくはゾルを適用し、その後−５℃以上の温度でゲル形成を行う、生理活性物質産生細胞または組織に対する保護ゲル層の形成方法。
本発明の細胞又は組織包埋デバイスは、生体内酵素により主鎖が切断されないゲル形成高分子材料を用いているため、生体内に適用した場合に長期のデバイス寿命を得ることができると共に、架橋剤成分を必要とせず、また、包埋される生細胞又は生体組織が損傷を受けにくい、又は包埋される生細胞又は生体組織の死滅を抑制し得る、ｐＨ、温度（好ましくは−５℃以上）で水性ＰＶＡゲルを形成できるため、患者にとって有用なホルモン又はタンパク質等の生理活性物質の供給能力が高い。なお、生体内酵素により主鎖が切断されないゲル形成高分子材料が所望により架橋剤成分で架橋されていてもよい。
すなわち、本発明の細胞又は組織包埋デバイスは、長期の使用に耐え、包埋されている細胞又は組織の生存率が高い。
また、本発明の細胞又は組織包埋デバイスを患者に投与することにより、内分泌疾患、代謝疾患、糖尿病、神経変性疾患、血友病、骨疾患、癌等の疾患の予防及び／又は治療を行うことができ、細胞又は組織を安定な状態で長期間生体内にて保有することができるため、高い治癒率を実現できるとともに、細胞又は組織包埋デバイスの移植の頻度を低減することが可能である。
さらに、本発明の代表的な態様である水性ＰＶＡゲル等の水性ゲル（本明細書中において、本発明の水性ゲルともいう）は、白血球や抗体等の透過を阻害できることに加えて、補体の透過も阻害できるため、免疫に関与する細胞や抗体の隔離に加えて、免疫の作用を補佐する補体の隔離も行うことができる。すなわち、本発明の水性ＰＶＡゲルは、透過すべき酸素、無機有機の栄養分、種々のホルモンの中で最大と想定される直径５ｎｍ程度の分子（例えばインスリンなどのホルモンを含む生理活性物質）を透過させ、透過を阻止すべき免疫関連細胞や免疫関連物質の中で最小と想定される直径５０ｎｍ程度の分子（例えば抗体、補体など）を透過させない選択性を有しているため免疫隔離層として使用でき、優れた免疫抑制作用を有する。
実施例１のバイオ人工膵島デバイスが移植された糖尿病モデル動物の血糖値の経時変化を示す図である。 比較例１〜５の凍結融解式膵島デバイスが移植された糖尿病モデル動物の血糖値の経時変化を示す図である。 比較例６〜１１の凍結融解式膵島デバイスが移植された糖尿病モデル動物の血糖値の経時変化を示す図である。 図４は、膵臓から膵島細胞を取得する方法の一態様を図式的に記載したものである。 図５は、ポリビニルアルコール樹脂（Ａ）を成分として含む水性ゲルを免疫隔離層として有する、細胞又は組織包埋デバイスの一態様を示す。 図６は、本発明のデバイスが新生血管内に投与されて収納されている状態の一態様を模式的に示す。
以下、本発明を詳細に説明する。
本開示は、調製時には水溶液もしくはゾルとすることができ、−５℃以上の温度でゲル形成が可能な、生体内酵素により主鎖が切断されないゲル形成高分子材料、代表的には、シンジオタクティシティがトライアッド表示で３２〜４０％であるポリビニルアルコール樹脂（Ａ）を成分として含む水性ゲルを免疫隔離層として有する、細胞又は組織包埋デバイスを包含する。
本発明の水性ゲルの代表的態様は、調製時には水溶液もしくはゾルであり、−５℃以上の温度に下げることによってゲル化した、シンジオタクティシティをコントロールしたＰＶＡ樹脂（さらには、シンジオタクティシティがトライアッド表示で、３２〜４０％のＰＶＡ樹脂）を成分として含み、細胞又は組織包埋デバイスの免疫隔離層を形成するための水性ゲルである。
本開示において、ゾルは、好ましくはヒドロゾルである。
[生体内酵素により主鎖が切断されないゲル形成高分子材料]
本発明で使用される生体内酵素により主鎖が切断されないゲル形成高分子材料は、同目的に使用される水系ゲル形成材料であるゼラチンやアルギン酸等とは異なり、好ましくは、主鎖が生体内酵素によって切断されない高分子材料であり、例えば、主たる部分が切断されないものであれば、片末端あるいは両末端に切断される主鎖を追加的に含むことができる。このような材料の代表例としては、繰り返し単位の主鎖としてエチレン構造を持つ重合体、特にポリビニルアルコール系樹脂やポリアクリル酸系樹脂を挙げることができ、中でもその側鎖に水溶性およびゲル形成を行う機能性官能基を持つものであることが好ましい。このような材料を用いた場合には、生体内に長時間存在させても生体内酵素によって主鎖が切断されないことから、長時間デバイス形状を保持することが可能となる。
また、本発明で使用される生体内酵素により主鎖が切断されないゲル形成高分子材料は、好ましくは、一旦水溶液あるいはゾルとした状態とすれば、生細胞に適用する際の温度、すなわち０〜６０℃の間のいずれかの温度において水溶液もしくはゾルとして扱うことができ、その後−５℃以上の温度で放置することによりゲル状態とすることができる生体内酵素により主鎖が切断されないゲル形成高分子材料である。よく知られているように、温度変化による水性ゲルの形成は、高分子材料の側鎖の機能性官能基間の物理的相互作用による架橋形成により生じる。物理的相互作用としては、代表的には活性水素を持つ極性基間の水素結合、特に水酸基間の水素結合によるものであり、その他、親水性高分子内に含まれる疎水基による疎水性相互作用を用いるもの等もある。
ゲル形成温度の制御は、樹脂全体に対する機能性官能基の存在量や、樹脂間の構造的相互作用の促進等により行うことができるが、ＰＶＡ樹脂では、側鎖に相互作用をする特別な官能基を入れる方法以外に、樹脂の主鎖のタクティシティを制御することによって樹脂の水酸基間の相互作用を起こり易くし、比較的高い温度でのゲル形成が可能になる。
以下、本発明の代表的な態様であるシンジオタクティシティがトライアッド表示で３２〜４０％であるポリビニルアルコール樹脂を用いた場合を用いて具体的な説明を行う。
［ＰＶＡ樹脂（Ａ）］
本発明で使用される生体内酵素により主鎖が切断されないゲル形成高分子材料の代表的態様であるＰＶＡ樹脂（Ａ）は、シンジオタクティシティがトライアッド表示で、通常３２〜４０％であり、３３〜３９％であることが好ましく、３４〜３８％であることがさらに好ましい。シンジオタクティシティが３２％以上であれば水性ゲルになりやすく、４０％以下であれば水性ゲルの作製が容易となる。
なおトライアッド表示のシンジオタクティシティは、ＰＶＡ樹脂（Ａ）を重ＤＭＳＯに溶解し、プロトンＮＭＲ測定による水酸基のピークより求めることができる。
本発明で使用されるＰＶＡ樹脂（Ａ）の製法は、トライアッド表示によるシンジオタクティシティが３２〜４０％になれば特に限定されないが、従来公知の方法で得られたビニルエステル重合体を鹸化する方法により容易に得られる。すなわち、本発明で使用されるＰＶＡ樹脂は、ビニルエステル重合体の鹸化物である。
ビニルエステル重合体の製造方法としては、ビニルエステル系単量体を重合する方法であれば特に限定されず、従来公知の方法に従って良い。
重合の際には、重合容器の形状、重合攪拌機の種類、さらには重合温度や、重合容器内の圧力等いずれも公知の方法を使用してかまわない。重合方法としては、従来から公知のバルク重合、溶液重合、懸濁重合、乳化重合等の各種の重合方法が可能である。重合度の制御や重合後に行うケン化反応のこと等を考慮すると、アルコールを溶媒とした溶液重合、あるいは、水又は水及びアルコールを分散媒とする懸濁重合が好ましいが、これらに限定されるものではない。
ビニルエステル系単量体としては、例えば、脂肪酸ビニルエステル、非脂肪酸系ビニルエステル（例えば、蟻酸ビニル、芳香族カルボン酸ビニルエステル等）等のビニルエステル等が挙げられるが、シンジオタクティシティが高いＰＶＡが得られる等の観点から、Ｃ３―１５脂肪酸ビニルエステル［例えば、プロピオン酸ビニル、酪酸ビニル、ピバリン酸ビニル等の直鎖又は分岐鎖のＣ３―１５脂肪酸ビニルエステル、好ましくは、Ｃ３―１０脂肪酸ビニルエステル（例えば、直鎖又は分岐鎖のＣ３―１０脂肪酸ビニルエステル等）等］、置換基（例えば、ハロゲン基）を有するＣ３―１５脂肪酸ビニルエステル［例えば、トリフルオロ酢酸ビニル、トリクロロ酢酸ビニル等］、蟻酸ビニル等が挙げられる。これらのビニルエステルは、１種単独で又は２種以上を組み合わせて使用することができる。
ＰＶＡ樹脂（Ａ）の製法の一例としては、具体的には、嵩高い側鎖を有するプロピオン酸ビニル、酪酸ビニル、ピバリン酸ビニルなどのビニルエステルを単独あるいは共重合した後、アルカリ触媒により鹸化する方法や、蟻酸ビニル、トリフルオロ酢酸ビニル、トリクロロ酢酸ビニルなどの高極性のビニルエステルを単独あるいは共重合した後、アルカリ触媒により鹸化する方法が挙げられる。中でもピバリン酸ビニルを重合した後、アルカリ触媒により鹸化する方法が好適に用いられる。下記の実施例においてトライアッド表示によるシンジオタクティシティが３７．１％の製造例が記載されている。３７．１％よりトライアッド表示によるシンジオタクティシティを小さくすることは、例えばピバリン酸ビニルの重合に際し、酢酸ビニルを共存させてピバリン酸ビニルと酢酸ビニルとの共重合体を得ることや重合温度を上げることにより達成できる。また、３７．１％よりトライアッド表示によるシンジオタクティシティを大きくすることは、例えば上記製造例における重合温度を下げることにより達成できる。いずれの場合にも、得られたＰＶＡ樹脂（Ａ）のトライアッド表示によるシンジオタクティシティは、ＰＶＡ樹脂（Ａ）を重ＤＭＳＯに溶解し、プロトンＮＭＲ測定による水酸基のピークより求めることができるので、適宜３２〜４０％の範囲にあるものを選択して本発明に使用することができる。
また、ビニルエステル重合体には、上記したビニルエステルの他に、本発明の効果を阻害しない範囲で、ビニルエステルと共重合可能な他の不飽和単量体が含まれていてもよい。
他の不飽和単量体としては、例えば、カルボキシル基含有不飽和単量体［例えば、（メタ）アクリル酸、マレイン酸、無水マレイン酸、フマル酸、クロトン酸、イタコン酸、ウンデシレン酸等］、不飽和二塩基酸モノアルキルエステル類（例えば、マレイン酸モノメチル、イタコン酸モノメチル等）、アミド基含有不飽和単量体（例えば、アクリルアミド、ジメチルアクリルアミド、ジメチルアミノエチルアクリルアミド、ジエチルアクリルアミド、ジメチルアミノプロピルアクリルアミド、イソプロピルアクリルアミド、Ｎ−メチロールアクリルアミド、Ｎ−ビニルアセトアミド等）、ハロゲン化ビニル類（例えば、塩化ビニル、フッ化ビニル等）、グリシジル基を有する不飽和単量体（例えば、アリルグリシジルエーテル、グリシジルメタクリレート等）、ラクタム基含有不飽和単量体｛例えば、Ｎ−ビニルピロリドン類［例えば、Ｎ−ビニル−２−ピロリドン、Ｎ−ビニル−アルキルピロリドン（例えば、Ｎ−ビニル−３−プロピル−２−ピロリドン、Ｎ−ビニル−５−メチル−２−ピロリドン、Ｎ−ビニル−５−エチル−２−ピロリドン、Ｎ−ビニル−５，５−ジメチル−２−ピロリドン、Ｎ−ビニル−３，５−ジメチル−２−ピロリドンなどのＮ−ビニル−モノ又はジＣ１−４アルキルピロリドン）など］、Ｎ−アリルピロリドン類（例えば、Ｎ−アリル−２−ピロリドンなど）、Ｎ−ビニルピペリドン類［例えば、Ｎ−ビニル−２−ピペリドン、Ｎ−ビニル−アルキルピペリドン（例えば、Ｎ−ビニル−６−メチル−２−ピペリドン、Ｎ−ビニル−６−エチル−２−ピペリドンなどのＮ−ビニル−モノ又はジＣ１−４アルキルピペリドン）など］、Ｎ−ビニルカプロラクタム類［例えば、Ｎ−ビニル−ε−カプロラクタム、Ｎ−ビニル−アルキルカプロラクタム（例えば、Ｎ−ビニル−７−メチル−２−カプロラクタム、Ｎ−ビニル−７−エチル−２−カプロラクタムなどのＮ−ビニル−モノ又はジＣ１−４アルキルカプロラクタムなど）]｝、アルキルビニルエーテル類［例えば、Ｃ１―２０アルキルビニルエーテル（例えば、メチルビニルエーテル、ｎ−プロピルビニルエーテル、ｉ−プロピルビニルエーテル、ｎ−ブチルビニルエーテル、ｉ−ブチルビニルエーテル、ｔ−ブチルビニルエーテル、ラウリルビニルエーテル、ドデシルビニルエーテル、ステアリルビニルエーテル等）］、ニトリル類（例えば、アクリロニトリル、メタアクリロニトリル等）、水酸基含有不飽和単量体［例えば、Ｃ１―２０モノアルキルアリルアルコール（例えば、アリルアルコール、イソプロペニルアリルアルコール等）、Ｃ１―２０ジアルキルアリルアルコール（例えば、ジメチルアリルアルコール等）、ヒドロキシＣ１―２０アルキルビニルエーテル（例えば、ヒドロキシエチルビニルエーテル、ヒドロキシブチルビニルエーテル等）］、アセチル基含有不飽和単量体［例えば、Ｃ１―２０アルキルアリルアセテート（例えば、アリルアセテート、ジメチルアリルアセテート、イソプロペニルアリルアセテート等）等］、（メタ）アクリル酸エステル類｛例えば、（メタ）アクリル酸アルキルエステル［例えば、（メタ）アクリル酸メチル、（メタ）アクリル酸エチル、アクリル酸−２−エチルヘキシル、アクリル酸−ｎ−ブチル等の（メタ）アクリル酸Ｃ１−２０アルキル］等｝、ビニルシラン類（例えば、トリメトキシビニルシラン、トリブチルビニルシラン、ジフェニルメチルビニルシラン等）、ポリオキシアルキレン（メタ）アクリレート類[例えば、ポリオキシエチレン（メタ）アクリレート、ポリオキシプロピレン（メタ）アクリレート等]、ポリオキシアルキレン（メタ）アクリル酸アミド類[例えば、ポリオキシエチレン（メタ）アクリル酸アミド、ポリオキシプロピレン（メタ）アクリル酸アミド等]、ポリオキシアルキレンビニルエーテル類（例えば、ポリオキシエチレンビニルエーテル、ポリオキシプロピレンビニルエーテル等）、ポリオキシアルキレンアルキルビニルエーテル類（例えば、ポリオキシエチレンアリルエーテル、ポリオキシプロピレンアリルエーテル、ポリオキシエチレンブチルビニルエーテル、ポリオキシプロピレンブチルビニルエーテル等）、α−オレフィン類（例えば、エチレン、プロピレン、ｎ−ブテン、１−ヘキセン等）、ブテン類（例えば、３，４−ジヒドロキシ−１−ブテン、３，４−ジアシロキシ−１−ブテン、３−アシロキシ−４−ヒドロキシ−１−ブテン、４−アシロキシ−３−ヒドロキシ−１−ブテン、３，４−ジアシロキシ−２−メチル−１−ブテン等）、ペンテン類（例えば、４，５−ジヒドロキシ−１−ペンテン、４，５−ジアシロキシ−１−ペンテン、４，５−ジヒドロキシ−３−メチル−１−ペンテン、４，５−ジアシロキシ−３−メチル−１−ペンテン等）、ヘキセン類（例えば、５，６−ジヒドロキシ−１−ヘキセン、５，６−ジアシロキシ−１−ヘキセン等）、アミン系不飽和単量体[例えば、Ｎ，Ｎ−ジメチルアリルアミン、Ｎ−アリルプペラジン、３−ピペリジンアクリル酸エチルエステル、２−ビニルピリジン、４−ビニルピリジン、２−メチル−６−ビニルピリジン、５−エチル−２−ビニルピリジン、５−ブテニルピリジン、４−ペンテニルピリジン、２−（４−ピリジル）アリルアルコール等]、第四級アンモニウム化合物を有する不飽和単量体（例えば、ジメチルアミノエチルアクリレート塩化メチル４級塩、Ｎ，Ｎ−ジメチルアミノプロピルアクリルアミド塩化メチル４級塩、Ｎ，Ｎ−ジメチルアミノプロピルアクリルアミドメチルベンゼンスルホン酸４級塩等）、芳香族系不飽和単量体（例えば、スチレン等）、スルホン酸基を含有する不飽和単量体（例えば、２−アクリルアミド−２−メチルプロパンスルホン酸又はそのアルカリ金属塩、アンモニウム塩もしくは有機アミン塩；２−アクリルアミド−１−メチルプロパンスルホン酸又はそのアルカリ金属塩、アンモニウム塩もしくは有機アミン塩；２−メタクリルアミド−２−メチルプロパンスルホン酸又はそのアルカリ金属塩、アンモニウム塩もしくは有機アミン塩；ビニルスルホン酸又はそのアルカリ金属塩、アンモニウム塩もしくは有機アミン塩；アリルスルホン酸又はそのアルカリ金属塩、アンモニウム塩もしくは有機アミン塩；メタアリルスルホン酸又はそのアルカリ金属塩、アンモニウム塩もしくは有機アミン塩等）、グリセリンモノアリルエーテル、２，３−ジアセトキシ−１−アリルオキシプロパン、２−アセトキシ−１−アリルオキシ−３−ヒドロキシプロパン、３−アセトキシ−１−アリルオキシ−３−ヒドロキシプロパン、３−アセトキシ−１−アリルオキシ−２−ヒドロキシプロパン、グリセリンモノビニルエーテル、グリセリンモノイソプロペニルエーテル、アクリロイルモルホリン、ビニルエチレンカーボネート、ビニルイミダゾール、ビニルカルバゾール等から選ばれる１種以上等が挙げられる。他の不飽和単量体の含有量としては特に規定されないが、例えば、ビニルエステル系単量体１００モルに対して１０モル以下であればよい。
また、重合の際には、重合触媒を用いることができる。重合触媒としては、特に限定されないが、通常アゾ系化合物や過酸化物が用いられる。
また、重合の際、脂肪族ビニルエステルの加水分解を防止する目的で、酒石酸、クエン酸、酢酸等の有機酸を添加してもよい。
また重合の終了には、特に限定されないが、重合停止剤を使用することができる。重合停止剤は、特に限定されず、例えば、ｍ−ジニトロベンゼン等が挙げられる。
重合温度は、特に限定されず公知の重合温度で問題ないが、シンジオタクティシティが高いＰＶＡ樹脂が得られやすい等の観点から、例えば−５０〜２００℃、好ましくは−５０〜１５０℃、さらに好ましくは０〜１２０℃等である。
前記のようにしてビニルエステル重合体が得られる。得られた重合体の鹸化反応方法は、特に限定されず、従来公知の方法に従ってよいが、例えば、従来公知の水酸化ナトリウム、水酸化カリウム、ナトリウムメトキシド等の塩基性触媒、又は塩酸、硫酸、ｐ−トルエンスルホン酸等の酸性触媒を用いた、加アルコール分解ないし加水分解反応が適用できる。なお、鹸化反応の前後において、通常は、重合体のシンジオタクティシティはほとんど変動しないものである。
鹸化反応に用いられる溶媒としては、メタノール、エタノール等のアルコール類；酢酸メチル、酢酸エチル等のエステル類；アセトン、メチルエチルケトン等のケトン類；ベンゼン、トルエン等の芳香族炭化水素類；テトラヒドロフラン等が挙げられ、これらは単独で又は２種以上を組み合わせて用いることができる。また、鹸化温度、時間等に特に制限されない。
また、鹸化物の乾燥、粉砕、洗浄方法も特に制限はなく、公知の方法を使用してもかまわない。
かくしてビニルエステル重合体の鹸化物、即ち、本発明におけるＰＶＡ樹脂（Ａ）が得られる。得られたＰＶＡ樹脂（Ａ）を本発明の効果を阻害しない範囲で公知の方法を用いてアセタール化、ウレタン化、エーテル化、グラフト化、リン酸エステル化、アセトアセチル化、カチオン化等の反応によって後変性してもよい。
ＰＶＡ樹脂（Ａ）の鹸化度は、好ましくは９０〜９９．９９モル％であり、より好ましくは９８〜９９．９９モル％（例えば９８．０〜９９．９７モル％）であり、さらに好ましくは９９〜９９．９９モル％（例えば９９〜９９．９５モル％）である。なお、ＰＶＡ樹脂の鹸化度は、重ＤＭＳＯ溶液中で１Ｈ−ＮＭＲを測定し求めることができる。
ＰＶＡ樹脂（Ａ）の重合度は、好ましくは１００〜１００００であり、より好ましくは５００〜８０００であり、さらに好ましくは１０００〜５０００であり、ハンドリングが比較的容易でという点から、特に好ましくは１０００〜３０００である。例えば、ＰＶＡ樹脂の重合度としては、例えば１０００〜２０００、２０００〜３０００、３０００〜４０００、４０００〜５０００の範囲内に含まれるもの等が挙げられる。重合度が１００以上であれば、樹脂強度（応力）が高く、保形性のある水性ゲルが作製しやすい。重合度が１００００以下であれば、水溶液が取り扱い易い。なお、重合度は、鹸化前の樹脂における、ＪＩＳＫ６７２５記載のベンゼン溶液、３０℃におけるポリ酢酸ビニル換算の重合度である。
本発明の水性ＰＶＡゲルの架橋率、空隙率及び／又は平均孔径は、透過すべき酸素、無機有機の栄養分、種々のホルモンの中で最大と想定される直径５ｎｍ程度の分子（例えばインスリンなどのホルモンを含む生理活性物質）を透過させ、透過を阻止すべき免疫関連細胞や免疫関連物質の中で最小と想定される直径５０ｎｍ程度の分子（例えば抗体、補体など）を透過させない選択性を有する効果が阻害されない範囲で調整すればよい。調整に役立つ方法として、補体透過阻止試験などが挙げられる。
本発明の水性ＰＶＡゲルにおける平均孔径は、例えば、５ｎｍ以上５００ｎｍ未満であり、好ましくは５ｎｍ以上２００ｎｍ未満であり、さらに好ましくは５ｎｍ以上５０ｎｍ未満である。
前記平均孔径は、例えば、走査型電子顕微鏡（日立Ｓ−４０００型、日立製作所製）でゲル表面の写真（ＳＥＭ写真、倍率１，０００倍〜５，０００倍）をとり、得られた写真を画像処理装置（本体名：日本アビオニクス株式会社製、ＴＶイメージプロセッサＴＶＩＰ−４１００ＩＩ、制御ソフト名：ラトックシステムエンジニアリング株式会社製、ＴＶイメージプロセッサイメージコマンド４１９８）に取り込んで得られる像における孔径を所定数測定し、それを演算処理することにより、平均孔径を求めることができる。
または、大気圧走査電子顕微鏡（例えば、日立ハイテクノロジーズ社製 ＡｅｒｏＳｕｒｆ １５００、日本電子株式会社製ＪＡＳＭ−６２００）、動的光散乱法（例えば株式会社堀場製作所製ｎａｎｏ Ｐａｒｔｉｃａ ＳＺ−１００ Ｐｌｕｓ）又は走査型顕微光散乱法等により求めることができる。
［生体組成物（Ｂ）］
本発明の水性ゲルに、生体組成物（Ｂ）を封入することにより、細胞又は組織包埋デバイスを形成することができる。
生体組成物（Ｂ）としては、特に限定されず、作製する細胞又は組織包埋デバイスの使用目的に応じて適宜選択することができる。
生体組成物（Ｂ）としては、本発明において水性ゲルを好ましく製造する温度（すなわち、−５〜６０℃）において安定に保存できる細胞（好ましくは生細胞）又は生体組織であれば、細胞又は生体組織の種類によらず、生理活性物質の供給能力が高い細胞又は組織包埋デバイスを得ることができるため、好ましい。
このような細胞としては、例えば、外胚葉、中胚葉又は内胚葉に由来する分化細胞や幹細胞等を用いることができる。
分化細胞としては、例えば、表皮細胞、平滑筋細胞、骨細胞、骨髄細胞、軟骨細胞、骨格筋芽細胞、膵実質細胞、膵島細胞、膵内分泌細胞、膵外分泌細胞、膵管細胞、肝臓細胞（例えば、肝細胞）、甲状腺細胞、副甲状腺細胞、副腎細胞、下垂体細胞、脾細胞、松果体細胞、腎臓細胞（腎細胞）、脾臓細胞、前葉細胞、成長ホルモン分泌細胞、ドパミン産生細胞、血液細胞、心筋細胞、骨格筋細胞、骨芽細胞、神経細胞、色素細胞、脂肪細胞等を用いることができる。上記細胞は、生体から単離された細胞のみならず、後述する幹細胞から分化誘導されたものであってもよい。
幹細胞（ｉＰＳ細胞等）等の分化誘導されうる細胞については、分化誘導される細胞をデバイスに組み込んで、投与後に生体内で分化誘導させてもよいし、分化誘導した細胞をデバイスに組み込んで用いてもよい。
また、幹細胞としては、組織幹細胞（例えば、表皮幹細胞、毛嚢幹細胞、膵幹細胞・膵前駆細胞、肝幹細胞、神経幹細胞、網膜幹細胞、造血幹細胞、間葉系幹細胞等）、胚性幹細胞（ES細胞）、iPS細胞（induced pluripotent stem cell）等を用いることができるが、これらに限らない。
これらの細胞は、ヒト、ブタ、ラット又はマウス等の哺乳動物由来であって、患者等の生体にとって有用なホルモンやタンパク質等の生理活性物質を産生及び／又は分泌する細胞であることが好ましく、細胞の種類の選択は、移植する患者等の生体の疾患の種類によって決定することができる。また、これらの細胞がヒト細胞以外である場合、治療目的にヒト遺伝子を導入された細胞であってもよい。なお、生体にとって有用なホルモンとは、インスリン、甲状腺刺激ホルモン、甲状腺ホルモン、副甲状腺ホルモン、成長ホルモン、チロキシン、糖質コルチコイド、グルカゴン、エストラジオール、又はテストステロン等が例示される。生体にとって有用なタンパク質とは、具体的には、血液凝固因子、補体、アルブミン、グロブリン、各種酵素（代謝酵素又はアミラーゼ、プロテアーゼ、若しくはリパーゼ等の消化酵素）が例示される。その他の生理活性物質の例として、例えばドパミンなどの神経伝達物質等が挙げられる。
具体的に言えば、膵細胞（膵島細胞）、肝細胞、ドパミン産生細胞及びこれらの幹・前駆細胞が好ましく、膵細胞（膵島細胞）、肝細胞、及びこれらの幹・前駆細胞がより好ましく、膵細胞（膵島細胞）及び膵前駆（幹）細胞がより好ましい。
本発明に用いられる上記の生体組成物（Ｂ）は、実験室用に確立された細胞若しくは生体組織、又は生体組織から分離した細胞等のいずれであってもよいが、分化した非***細胞であることが好ましい。なお、該分離方法としては特に限定されず、従来公知の方法に従ってよい。また、生体組織から分離された細胞は、病原性ウイルス等の病原体が除去されていることが望ましい。
本発明の細胞又は組織包埋デバイスにおいて、生体組成物（Ｂ）の含有量は、生体組成物（Ｂ）の種類に応じて適宜変更することができ、特に限定されないが、ゲルデバイス包埋空間１ｍｍ３に対して、例えば、１０００〜１００００００細胞数、好ましくは１００００〜１０００００細胞数、より好ましくは２００００〜５００００細胞数である。
投与量は、医師が患者の年齢、性別、症状、副作用等を考慮して決定するので、一概には言えないが、通常成人１人当たり約１〜１０のデバイスを体内に移植することができる。例えば糖尿病患者に対する場合、患者の体重１ｋｇあたり通常１０００〜１０００００ＩＥＱ（膵島量の国際単位：直径１５０μｍの膵島の体積を１ＩＥＱと定義）、好ましくは５０００〜４００００ＩＥＱ、より好ましくは１００００〜２００００ＩＥＱの膵島を含有するデバイスを移植することができる。
デバイスの形状は特に限定されない。円盤状、球状、円柱状、楕円球状等を含むが、円盤状が好ましい。デバイスが円盤状の場合は、厚みと直径の積で表現すると、厚みは通常０．１ｍｍ〜１０ｃｍ、好ましくは０．１〜５ｍｍ、より好ましくは０．５〜２ｍｍであり、直径は通常１ｍｍ〜５０ｃｍ、好ましくは１ｍｍ〜１０ｃｍ、より好ましくは２〜４ｃｍ程度である。
材質は従来公知のものを用いてよい。
なお、本発明における生体組成物（Ｂ）としては、前記した細胞又は生体組織以外に、他の生体由来成分が含まれることを妨げるものではない。
また、本開示は、本発明の細胞又は組織包埋デバイスにおける細胞又は組織が、微生物生菌体由来である場合を除く場合を包含する。
［細胞培養成分（Ｃ）］
本発明の水性ゲルに、生体組成物（Ｂ）とともに細胞培養成分（Ｃ）を封入することにより、細胞又は組織包埋デバイスを形成してもよい。
細胞培養成分（Ｃ）としては、特に限定されないが、例えば、Na、K、Cl、Ca、Glucose等を含有する酢酸あるいはリン酸緩衝液等が挙げられる。
細胞培養成分（Ｃ）がNaを含有する場合、Na濃度は、好ましくは２０〜１５０ｍＥｑ／Ｌ、より好ましくは８０〜１４０ｍＥｑ／Ｌに調整する。
Kを含有する場合、K濃度は、好ましくは２．５〜１３０ｍＥｑ／Ｌ、より好ましくは３．５〜４０ｍＥｑ／Ｌに調整する。
Clを含有する場合、Cl濃度は、好ましくは１５〜１７０ｍＥｑ／Ｌ、より好ましくは１００〜１５０ｍＥｑ／Ｌに調整する。
Caを含有する場合、Ca濃度は、好ましくは０．５〜５ｍＥｑ／Ｌ、より好ましくは１〜３ｍＥｑ／Ｌに調整する。
Glucoseを含有する場合、Glucose濃度は、好ましくは１〜１１ｍＭ、より好ましくは３〜７ｍＭに調整する。
細胞培養成分（Ｃ）としては、特に限定されないが、例えば、公知の細胞培養培地（例えば、ＨＢＳＳ（ハンクス平衡塩溶液）等）、市販の保存液（例えば、Euro-Collins液、セルバンカー、ＵＷ液（University of Wisconsin solution）等）、細胞保護成分（例えば、ジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）、血清アルブミン等）、雑菌の混入を阻止する成分（例えば、抗生物質等）、細胞の活性を維持する成分（例えば、ニコチンアミド等のビタミン類等）等が挙げられ、好ましくは、公知の細胞培養培地等である。これらは、１種単独で又は２種以上を併用して使用することができる。
また、細胞培養成分（Ｃ）は、他の成分（例えば、徐放性付与剤、等張化剤、ｐＨ調整剤など）と組み合わせて使用してもよい。
本発明のデバイスにおいては、ＰＶＡ樹脂（Ａ）及び細胞培養成分（Ｃ）が接触した状態で存在しているので、その作製にあたり細胞培養成分（Ｃ）を添加する場合の細胞培養成分（Ｃ）は、「ポリビニルアルコール樹脂（Ａ）含有水溶液の体積及び細胞培養成分（Ｃ）の体積の和／細胞培養成分（Ｃ）の体積」倍に濃縮した状態で添加すれば都合よい。
このような状態の細胞培養成分（Ｃ）の含有量は、特に限定されないが、細胞又は生体組織の増殖、生存及び／又は生理活性物質の分泌等を阻害しない範囲であって、本発明の目的を損なわない範囲であることが好ましい。
上記状態の細胞培養成分（Ｃ）の添加量は、ＰＶＡ樹脂（Ａ）１００質量部に対して、例えば、１００〜２０００質量部、好ましくは１５０〜１０００質量部（例えば、２００〜３００質量部、１７５〜３００質量部など）程度であってもよい。
例えば、ＰＶＡ樹脂（Ａ）の水溶液９ｍＬに対して、１０倍濃度の細胞培養成分（Ｃ）１ｍＬであってもよい。
さらに、細胞又は組織包埋デバイスの作製において、ＰＶＡ樹脂（Ａ）、生体組成物（Ｂ）及び細胞培養成分（Ｃ）以外の他の成分を用いてもよい。
他の成分としては、例えば、生細胞の増殖を促進又は制御する物質である細胞増殖因子、細胞から産生される活性物質であるサイトカイン、その他の生理活性物質、細胞又は組織包埋デバイスへの血流を促進する血流促進物質、神経栄養因子等が挙げられる。これらは、１種単独で又は２種以上を併用して使用することができる。
細胞増殖因子としては、例えば、血小板由来増殖因子（PDGF）、上皮増殖因子（EGF）、線維芽細胞増殖因子（FGF）、肝細胞増殖因子（HGF）、血管内皮増殖因子（VEGF）、インスリン等が挙げられる。
サイトカインとしては、例えば、造血因子（例えば、インターロイキン類、ケモカイン類、コロニー刺激因子等）、腫瘍壊死因子、インターフェロン類等が挙げられる。
その他の生理活性物質として、例えば、アミノ酸（例えば、グリシン、フェニルアラニン、リジン、アスパラギン酸、グルタミン酸等）、ビタミン類（例えば、ビオチン、パントテン酸、ビタミンD等）、血清アルブミン、抗生物質等が挙げられる。
血流促進物質としては、例えば、シトルリン又はその塩、カプサイシン、カプサイシノイド類が挙げられる。
神経栄養因子としては、例えば、ＮＧＦ（nerve growth factor；神経成長因子）、ＢＤＮＦ（brain-derived neurotrophic factor；脳由来神経栄養因子）、ＮＴ−３（neurotrophin-3；ニューロトロフィン−３）、ＮＴ−４（neurotrophin-4；ニューロトロフィン−４）、ＧＤＮＦ（Glial-Cell Derived Neurotrophic Factor；グリア細胞株由来神経栄養因子）、ニュールツリン（neurturin）、アルテミン（artemin）、パーセフィン（persephin）等が挙げられる。
なお、前記他の成分の添加量は、特に限定されない。
［水性ゲル］
本発明の細胞又は組織包埋デバイスに使用される水性ゲルは、ＰＶＡ樹脂（Ａ）を水性溶媒中で溶液化（溶解）しゲル化した水性ゲルを用いるのであれば特に限定されずに作製することができる。ＰＶＡ樹脂（Ａ）の溶解方法は、特に限定されず、例えば、加熱や撹拌等を行うことによって溶解することができる。また、溶解は、密閉下で行ってもよいし、必要に応じて加圧を行ってもよい。なお、水性溶媒としては、通常、水が使用される。
本発明の水性ゲルは、例えば、ＰＶＡ樹脂（Ａ）を水性溶媒中で９０℃以上に加熱して溶液化し、その後冷却することにより得ることができる。
溶液化の条件は、ＰＶＡ樹脂（Ａ）が水に溶解する条件であれば特に限定されず、加熱温度は、例えば９０〜２５０℃であり、１０５〜２３０℃が好ましく、１１０〜２００℃がより好ましい。加熱温度が１００℃以上であれば、ＰＶＡ樹脂が溶解しやすい。また２５０℃以下であれば、ＰＶＡ樹脂の分解が起こりにくい。
また、溶液化の時間は、温度や圧力、溶液濃度によって適宜変更できるが、例えば、１分〜１２時間、３０分〜１０時間等である。
本発明の水性ゲルは、水に溶解させる際に任意の装置を用いることができる。具体的には加熱可能な撹拌型や回転型のオートクレーブ、水の含量が少ない場合にはエクストルーダーなどを用いてもよい。
生体組成物（Ｂ）は、水性ゲルを作製後に水性ゲルと混合してもよいし、ＰＶＡ樹脂（Ａ）の水溶液に、生体組成物（Ｂ）も添加して混合してもよい。
細胞培養成分（Ｃ）は、水性ゲルの作製後に、水性ゲルを、細胞培養成分（Ｃ）を含む液に浸漬させてもよいし、生存細胞数の減少を抑制するためには、ゲル化前にＰＶＡ樹脂（Ａ）の水溶液（さらに、必要に応じて生体組成物（Ｂ））と混合して作製してもよい。
水性ゲルの作製方法としては、ＰＶＡ樹脂（Ａ）の水溶液、及び細胞培養成分（Ｃ）を混合した後に、生体組成物（Ｂ）を混合して得られる混合物（ゾル状態であってもよい）をゲル化せしめる態様が例示される。
また、本発明において使用できる前記他の成分は、生体組成物（Ｂ）及び／又は細胞培養成分（Ｃ）と一緒に、又は、別々に、ＰＶＡ樹脂（Ａ）、ＰＶＡ樹脂（Ａ）含有水溶液、及び／又は水性ゲルに添加し、混合することができる。
また、ＰＶＡ樹脂（Ａ）の水溶液は、オートクレーブ処理、ＵＶやγ線の処理等、従来公知の方法で滅菌処理することが望ましく、生体組成物（Ｂ）との混合時またはその後の細胞又は組織包埋デバイスの製造では、雑菌が入らないような環境で作業や保管を行うことが望ましい。
ＰＶＡ樹脂（Ａ）（さらに、必要に応じて生体組成物（Ｂ）及び／又は細胞培養成分（Ｃ）を混合した）の混合液のｐＨは、ＨＥＰＥＳ（2-[4-(2-Hydroxyethyl)-1-piperazinyl]ethanesulfonic acid）などの緩衝液を用いて６．０〜８．０に調整することが好ましく、６．２〜７．７がより好ましく、６．５〜７．５がさらに好ましい。このような範囲であれば、細胞又は組織包埋デバイス内に包理された生細胞又は生体組織が損傷を受けにくく、生存細胞数の減少が少ないため、好ましい。
水性ゲルの作製において、ＰＶＡ樹脂（Ａ）の水溶液（必要により、生体組成物（Ｂ）及び／又は細胞培養成分（Ｃ）を混合した状態）を、放置してもよい。
放置温度としては、生細胞の保存に適した温度であれば特に制限はないが、例えば、−５℃以上であり、好ましくは−５〜６０℃（例えば、０〜６０℃）であり、より好ましくは−３〜５０℃（例えば、０〜５０℃）であり、さらに好ましくは０〜４０℃である。このような範囲であれば、生存細胞数の減少が少ないため好ましい。また、放置温度は、ＰＶＡ樹脂（Ａ）水溶液（ゾル状態であってもよい）、又は水性ゲルを凍結させることなく、該水溶液、又はゲルで生細胞や生体組織を包埋できる温度が好ましい。本発明では、特定のシンジオタクティシティを有するＰＶＡ樹脂（Ａ）を用いることにより、生細胞や生体組織の保存に適するよう比較的低い温度（例えば、上記範囲の温度）で、水性ゲルを作製することができる。
水性ゲルを作製する際の放置時間は、ＰＶＡ樹脂（Ａ）の濃度、放置温度等により適宜選択することができるが、通常は１時間〜３、４日程度、好ましくは１時間〜２日程度さらに好ましくは２〜１２時間程度である。１時間以上であれば、細胞又は組織包埋デバイスを体内に留置した際に容易に崩壊しない等の観点から、好ましい。
水性ゲルに封入される直前の生体組成物（Ｂ）の生細胞数全体に対する、水性ゲル、又は細胞若しくは組織包埋デバイスにおける生存細胞数の割合が、本発明で使用されるＰＶＡ樹脂（Ａ）を成分として含有しない、水性ゲル、又は細胞若しくは組織包埋デバイスにおけるそれと比較して大きい場合、本発明の細胞又は組織包埋デバイスは、包埋されている細胞又は組織の生存率が高いと判断することができる。
水性ゲルに封入される直前の生体組成物（Ｂ）の生細胞数全体に対する、水性ゲル、又は細胞若しくは組織包埋デバイスにおける生存細胞数の割合は、例えば６０〜１００％、好ましくは７０〜１００％、より好ましくは８０〜１００％である。生細胞数は、例えば、Fluorescein diacetate試薬による細胞質染色およびpropidium iodideによる細胞核染色により測定（ＦＤＡ／ＰＩ測定と略すこともある）することができる。
水性ゲルの固形分濃度は、例えば、０．３〜２０％、好ましくは０．５〜１０％、より好ましくは１〜８％（例えば、３〜８％）である。このような範囲であれば、細胞又は組織包埋デバイスを動物に移植後、体内で長期にデバイス形態を維持し、免疫隔離能を保持できる等の観点から好ましい。本明細書において固形分濃度の測定方法は、特に限定されず、例えば、後述の実施例に記載の方法のように加熱乾燥式水分計(エーアンド・デイ、ＭＳ−７０)などを用いる方法であってもよい。
得られる水性ゲルは、後述する免疫隔離層として機能し得るように、細胞を安定に保持するとともに、酸素やブドウ糖、インスリンなどの生体にとって有用なホルモン、その他の生理活性物質を透過させ、免疫系のタンパク質を透過させない構造を有する。
また、水性ゲルは、通常、移植時に容易に崩壊しない強度（応力）を有する。応力はＰＶＡ樹脂（Ａ）の重合度、タクティシティ、及び水性ゲルの固形分濃度により異なるため一概には言えないが、例えば応力が０．３〜３０ｋＰａであり、好ましくは０．４〜２５ｋＰａ、より好ましくは０．５〜２０ｋＰａ、さらに好ましくは０．５〜１５ｋＰａである。
水性ＰＶＡゲルの応力は、例えば島津製作所製小型卓上試験機ＥＺＴｅｓｔ ＥＺ−ＳＸを用いその使用説明書に従って測定することができる。
水性ゲルの形状は、特に制限されないが、例えば、シート状、板状、盤状、棒状、チューブ状、ビーズ状等が挙げられる。
また、該水性ゲルの成形方法としては、例えば、ＰＶＡ樹脂（Ａ）（さらに、所望により、好ましくは生体組成物（Ｂ）及び細胞培養成分（Ｃ））を含む水溶液（ゾル状態であってもよい）を、ゲル化する前に目的とする形状の型に流し込む方法、得られたゲルをナイフ等で目的の形状に加工する方法等が挙げられる。
なお、通常ＰＶＡ樹脂（Ａ）（さらに、所望により、好ましくは生体組成物（Ｂ）及び／又は細胞培養成分（Ｃ）等）を含む水溶液は、ゲル状態に至るまでにゾル状態を経由する。そのようなゾル状態も本発明の水性ゲル等価物として本発明の範囲内であると理解される。
ＰＶＡ樹脂（Ａ）を含む水溶液（ゾル状態であってもよい）の固形分濃度は、例えば、０．３〜２０％、好ましくは０．５〜１０％、より好ましくは１〜８％である。このような範囲であれば、細胞又は組織包埋デバイスを動物に移植後、体内で長期にデバイス形態を維持し、免疫隔離能を保持できる等の観点から好ましい。
［細胞又は組織包埋デバイス］
本発明の水性ゲルは、細胞又は組織包埋デバイスの免疫隔離層として使用することができる。
「免疫隔離層」とは、例えば、ブドウ糖；インスリン、甲状腺刺激ホルモン、甲状腺ホルモン、副甲状腺ホルモン、成長ホルモン、チロキシン、糖質コルチコイド、グルカゴン、エストラジオール、又はテストステロンなどのホルモン；血液凝固因子、アルブミン、グロブリン、各種酵素（代謝酵素又はアミラーゼ、プロテアーゼ、若しくはリパーゼ等の消化酵素）などのタンパク質；ドパミンなどの神経伝達物質等を透過しつつも、例えば抗体、補体、又は白血球などの免疫系のタンパク質を透過しない層を意味する。
細胞又は組織包埋デバイスは、生体組成物（Ｂ）を包埋又は含有していればよく、例えば、バイオ人工臓器などであってもよい。
細胞又は組織包埋デバイスの製造方法は、特に限定されないが、例えば、生体組成物（Ｂ）及び細胞培養成分（Ｃ）を包含した前記ＰＶＡ樹脂（Ａ）を含む水溶液又は水性ゲルを、目的とする形状の型の中で、０〜４０℃（例えば、４℃）下で保存（例えば、１時間〜３、４日程度、２〜４８時間又は３〜２４時間程度保存）することにより、細胞又は組織包埋デバイスを製造することができる。
細胞又は組織包埋デバイスは、通常、移植時に容易に崩壊しない強度（応力）を有する。応力はＰＶＡ樹脂（Ａ）の重合度、タクティシティ、細胞培養成分（Ｃ）の添加量、及び組織包埋デバイスの固形分濃度により異なるため一概には言えないが、例えば応力が０．３〜３０ｋＰａであり、好ましくは０．４〜２５ｋＰａ、より好ましくは０．５〜２０ｋＰａ、さらに好ましくは０．５〜１５ｋＰａである。
細胞又は組織包埋デバイスの応力は、例えば島津製作所製小型卓上試験機ＥＺＴｅｓｔ ＥＺ−ＳＸを用いその使用説明書に従って測定することができる。
本発明の細胞又は組織包埋デバイスは、支持基材（Ｄ）を含有していてもよい。
水性ゲルは、その補強及び／又は操作性の簡便化のために、補強材として有用な支持基材（Ｄ）を組み合わせて用いてもよい。
例えば、水性ゲルを薄膜シート状にする場合には、その補強及び操作性の簡便化のために、樹脂製メッシュシート等の基材（補強材）に固定してゲル化するのがよい。
支持基材（Ｄ）の素材は、限定されるものではないが、例えば、高分子［例えば、ＰＥＴ（ポリエチレンテレフタレート）、ＰＥ（ポリエチレン）、ＰＰ（ポリプロピレン）、テフロン（登録商標）等］、金属等が挙げられ、生体内で分解、変質しないことが好ましいが、一定期間経過後生体内で分解されるものであってもよい。
メッシュシートのメッシュ（網目）サイズは、透過すべき酸素、無機有機の栄養分、種々のホルモンの中で最大と想定される直径５ｎｍ程度の分子（例えばインスリンなどのホルモンを含む生理活性物質）を透過させ、透過を阻止すべき免疫関連細胞や免疫関連物質の中で最小と想定される直径５０ｎｍ程度の分子（例えば抗体、補体など）を透過させないように、通常５〜１００ｎｍ、好ましくは１０〜５０ｎｍ、より好ましくは２０〜３０ｎｍである。
本発明の細胞又は組織包埋デバイスの一つの態様としては、例えば、スライドガラスの上に、前記細胞培養成分（Ｃ）を含むＰＶＡ樹脂（Ａ）含有水溶液又は水性ゲルをのせ、その上にＰＥＴメッシュ（例えば、株式会社サンプラティック社製、商品名：ＰＥＴメッシュシート（呼称ＴＮ１２０）等）等の支持基材（Ｄ）をかぶせ、該ＰＥＴメッシュ上にＰＶＡ樹脂（Ａ）含有水溶液又は水性ゲルに生体組成物（Ｂ）を懸濁させて得られた懸濁液をのせ、ゲルローディングチップ等を用いて該懸濁液をＰＥＴメッシュ上に拡げ、該懸濁液を挟み込む様にさらにＰＥＴメッシュをその上にかぶせ、さらにＰＥＴメッシュの上に前記細胞培養成分（Ｃ）を含むＰＶＡ樹脂（Ａ）含有水溶液又は水性ゲルをのせ、その上からスライドガラスをかぶせて構築されたものから、スライドガラスが外された構成のものが、好ましい実施態様である。なお、細胞又は組織包埋デバイスは、前記スライドガラスを外す前に、０〜４０℃（例えば、４℃）下で２〜４８時間、より好ましくは３〜２４時間静置されたものが好ましい。
本発明の細胞又は組織包埋デバイスは、ヒトを含む動物の皮下、筋膜下、肝表面、脾表面、大網内あるいは腹腔内等の体内に留置することにより、移植することができる。該留置方法は、特に限定されず、従来公知の方法に従ってよい。例えば、移植用機器も公知のものでよい。
本発明の細胞又は組織包埋デバイスは、内分泌疾患（例えば、甲状腺疾患、副甲状腺疾患、副腎疾患、下垂体疾患、松果体疾患等）、代謝疾患（例えば、オルニチン・トランスカルバミラーゼ欠損症、高アンモニア血症、高コレステロール血症、ホモシスチン尿症、糖原病、クリグラーナジャー症候群等、ウィルソン病）、糖尿病（例えば、１型糖尿病、２型糖尿病、膵性糖尿病等）、神経変性疾患（例えば、パーキンソン病、アルツハイマー病、筋萎縮性側索硬化症、脊髄小脳変性症等）、血友病、骨疾患（例えば、骨粗鬆症）、癌（例えば、白血病等）等の疾患を有するヒトを含む動物に移植することにより、これらの疾患の予防及び／又は治療を行うことができる。本発明の細胞又は組織包埋デバイスは、細胞を安定な状態で長期間生体内にて保有することができるため、これらの疾患を高い治癒率で治療でき、また、細胞又は組織包埋デバイスの移植の頻度を低減することができる。
また、本発明の水性ゲルは、粒子径が５〜５０μｍの粒子［例えば、白血球（例えば、マクロファージ等）、リンパ球、（例えば、Ｔリンパ球）等］の透過を阻害できることに加えて、粒径が０．１〜１μｍの粒子（例えば、補体等）の透過も阻害できるため、本発明の細胞又は組織包埋デバイスは、免疫に関与する細胞及び補体の隔離を行うことができ、優れた免疫隔離層として使用することができる。
好ましい実施の態様として、例えば細胞が膵島細胞である場合を説明する。
図４に示されるように、膵臓から良質な膵島細胞が分離されて、移植用膵島が準備される（図４参照）。膵島細胞同士の凝集を防ぐために膵島細胞を上記したメッシュ（２枚）で固定する。このように準備された固定された膵島細胞とＰＶＡ樹脂（Ａ）から本発明のデバイスが製造され、最内層は膵島細胞であり、インスリンを発散している。第２層はメッシュ層で細胞を支持している。最外層は、ゲル表面であって、免疫隔離膜を形成している。この免疫隔離膜は生体適合性が高く、インスリンを通過させるが免疫関連物質は通過させない（図５参照）。
本発明のデバイスはそのまま生体内に適用できるが、例えば、公知技術に従って容易に設けられる新生血管を用いて構築された網に収納されて医療効果を発揮する。デバイスは容易に取り出し、又は交換できる（図６参照）。
このデバイスは下記の特徴の少なくとも１つを奏することができる。
（１）包埋する細胞の質を高く維持する。
（２）移植膵島がホスト患者の免疫システムから適切に隔離されている。
（３）酸素・グルコースが供給され、かつ適切なインスリン応答が可能である。
（４）低侵襲な移植が可能であり、必要に応じて体外への容易な取出しや取り換えが可能である。
本発明の細胞又は組織包埋デバイスは、半透膜を備えていないことが好ましい。
次に、実施例を挙げて本発明をさらに具体的に説明するが、本発明はこれらの実施例により何ら限定されるものではなく、多くの変形が本発明の技術的思想内で当分野において通常の知識を有する者により可能である。なお、例中の「部」および「％」は、特に指定しない限り「質量部」および「質量％」を示す。
［ＰＶＡ樹脂（Ａ）の物性］
（１）シンジオタクティシティ
ｄ６−ＤＭＳＯ溶液中で１Ｈ−ＮＭＲを測定しトライアッド表示のシンジオタクティシティ（％）を求めた。
なお、トライアッド表示のシンジオタクティシティ（％）とは、４〜５ｐｐｍの３本の水酸基プロトン（低磁場側からアイソタクティック［Ｉ］、ヘテロタクティック［Ｈ］、シンジオタクティック［Ｓ］）比率から求めたもので、下記計算式に基づく。
トライアッド表示のシンジオタクティシティ（％）＝
［Ｓ］／（［Ｉ］＋［Ｈ］＋［Ｓ］）×１００
（２）鹸化度
ｄ６−ＤＭＳＯ溶液中で１Ｈ−ＮＭＲを測定し鹸化度（モル％）を求めた。
（３）重合度
ＪＩＳＫ６７２５記載のベンゼン溶液、３０℃におけるポリ酢酸ビニル換算の重合度を測定した。
（ＰＶＡ樹脂（Ａ）の作製）
［合成例１］
攪拌機、温度計、滴下ロ−ト及び還流冷却器を取り付けたフラスコ中に、ピバリン酸ビニル８００部、メタノール１９０部を仕込み、系内の窒素置換を行った後ジャケットを８０℃に加熱し、還流が発生した時点で２，２’−アゾビス（２，４−ジメチルバレロニトリル）０．０７部をメタノール１０部に溶解した溶液を添加し重合を開始し、６時間後に重合停止剤としてｍ−ジニトロベンゼンを添加し、重合を停止した。重合収率は５８％であった。
得られた反応物からメタノール、ピバリン酸ビニルを除去後、アセトンを加えてポリピバリン酸ビニルを溶解し４０％アセトン溶液を得た。
この４０％アセトン溶液２５０部に水酸化カリウムの２５％メタノール溶液１１０部とを加えてよく混合し、５０℃で２時間鹸化反応を行った。得られたゲル状物を粉砕し、アセトン１５０部、水酸化カリウムの２５％メタノール溶液３４０部中でさらに５０℃で４時間鹸化反応を行った。反応後酢酸で中和し、固液分離を行い、メタノール、水で洗浄、乾燥後、３０ｇのＰＶＡ樹脂１を得た。
得られたＰＶＡ樹脂１の鹸化前の重合度は１４５０であり、鹸化度は９９．９１モル％であった。また、トライアッド表示によるシンジオタクティシティは３７．１％であった。
［合成例２］
ピバリン酸ビニル８００部を、ピバリン酸ビニル６８５部に変更し、酢酸ビニル１１５部を追加した以外は合成例１と同様にしてＰＶＡ樹脂２を作製した。なお、モル比（ピバリン酸ビニル／酢酸ビニル）は８０／２０であった。得られたＰＶＡ樹脂２の鹸化前の重合度は１５１０であり、鹸化度は９９．９０モル％であった。また、トライアッド表示によるシンジオタクティシティは３５．７％であった。
［合成例３］
ピバリン酸ビニル８００部を、ピバリン酸ビニル５５３部に変更し、酢酸ビニル２４７部を追加した以外は合成例１と同様にしてＰＶＡ樹脂３を作製した。なお、モル比（ピバリン酸ビニル／酢酸ビニル）は６０／４０であった。得られたＰＶＡ樹脂３の鹸化前の重合度は２０３０であり、鹸化度は９９．８９モル％であった。また、トライアッド表示によるシンジオタクティシティは３４．０％であった。
［合成例４］
攪拌機、温度計、滴下ロ−ト及び還流冷却器を取り付けたフラスコ中に、ピバリン酸ビニル２０００部、メタノール３８部を仕込み、系内の窒素置換を行った後ジャケットを８０℃に加熱し、還流が発生した時点で２，２’−アゾビス（２，４−ジメチルバレロニトリル）０．０３部をメタノール２部に溶解した溶液を添加し重合を開始し、３時間後に重合停止剤としてｍ−ジニトロベンゼンを添加し、重合を停止した。重合収率は１７％であった。
得られた反応物からメタノール、ピバリン酸ビニルを除去後、アセトンを加えてポリピバリン酸ビニルを溶解し２５％アセトン溶液を得た。
この２５％アセトン溶液２００部に水酸化カリウムの２５％メタノール溶液５４部とを加えてよく混合し、５０℃で２時間鹸化反応を行った。得られたゲル状物を粉砕し、アセトン１５０部、水酸化カリウムの２５％メタノール溶液１６８部中でさらに５０℃で４時間鹸化反応を行った。反応後酢酸で中和し、固液分離を行い、メタノール、水で洗浄、乾燥後、１７ｇのＰＶＡ樹脂４を得た。
得られたＰＶＡ樹脂４の鹸化前の重合度は４４４０であり、鹸化度は９９．８６モル％であった。また、トライアッド表示によるシンジオタクティシティは３６．７％であった。
［合成例５］
ピバリン酸ビニル２０００部を、ピバリン酸ビニル１６００部に変更し、酢酸ビニル２６８部を追加した以外は合成例４と同様にしてＰＶＡ樹脂５を作製した。なお、モル比（ピバリン酸ビニル／酢酸ビニル）は８０／２０であった。得られたＰＶＡ樹脂５の鹸化前の重合度は４５３０であり、鹸化度は９９．９３モル％であった。また、トライアッド表示によるシンジオタクティシティは３５．５％であった。
（ゾル状態のＰＶＡ樹脂（Ａ）水溶液Ａの作製）
ゾル状態のＰＶＡ樹脂（Ａ）水溶液Ａとして、細胞培養成分（Ｃ）を含むゾル状態のＰＶＡ樹脂（Ａ）水溶液を２種作製した。作製して得られたゾル状態のＰＶＡ樹脂（Ａ）水溶液を以下、ゾルＡ−１、及びゾルＡ−２とも表記する。
［ゾルＡ−１］
１．４２５ｇの上記ＰＶＡ樹脂１を蒸留水２３．５７５ｇと混合し、焦げなどが生じないように１６０℃、３５ｒｐｍで３時間回転撹拌して溶解し、９０℃まで冷却した後に得られたゾル状態のＰＶＡ樹脂（Ａ）水溶液を、予め９０℃に温めたガラス製バイアル瓶に回収し、９０℃で保温した。その後、作製したゾル状態のＰＶＡ樹脂（Ａ）水溶液を４２度のウォーターバスへ入れ、ゾル状態のＰＶＡ樹脂（Ａ）水溶液８．８ｍＬに１０倍濃度ＨＢＳＳ（ハンクス平衡塩溶液）を１.０ｍＬ、１Ｍ ＨＥＰＥＳを０．２ｍＬ加え、チューブを上下に震盪させ攪拌した。その後、遠心機（久保田商事株式会社製、商品名：ハイブリッド高速冷却遠心機６２００）でスピンダウンし、４２℃で静置することでゾルＡ−１（ＰＶＡ樹脂濃度：５ｗ/ｖ％）を得た。得られたゾルＡ−１を３.５ｃｍディッシュに移した。
［ゾルＡ−２］
１．１３５gの上記ＰＶＡ樹脂１を蒸留水２３．８６５gと混合し、焦げなどが生じないように１６０℃、３５ｒｐｍで３時間回転撹拌して溶解し、９０℃まで冷却した後に得られたゾル状態のＰＶＡ樹脂（Ａ）水溶液を、予め９０度に温めたガラス製バイアル瓶に回収し、９０℃で保温した。その後、作製したゾル状態のＰＶＡ樹脂（Ａ）水溶液を４２℃のウォーターバスへ入れ、ゾル状態のＰＶＡ樹脂（Ａ）水溶液８．８ｍＬに１０倍濃度ＨＢＳＳ（ハンクス平衡塩溶液）を１.０ｍＬ、１Ｍ ＨＥＰＥＳを０．２ｍＬ加え、チューブを上下に震盪させ攪拌した。その後、遠心機（久保田商事株式会社製、商品名：ハイブリッド高速冷却遠心機６２００）でスピンダウンし、４２℃で静置することでゾルＡ−２を得た。得られたゾルＡ−２を３．５ｃｍディッシュに移した。
（ゾルＡ−１及びＡ−２の固形分濃度測定）
上記で作製したゾルＡ−１及びＡ−２について、下記にしたがって固形分濃度を測定した。
ゾルの固形分濃度は、加熱乾燥式水分計(エーアンド・デイ、ＭＳ−７０)を用いて測定した。水分計の試料皿にガラス繊維シートを置き、各ゾル約１ｇをシートに均一に浸み込ませ、試料皿温度１２０℃、測定時間（加温時間）１５分の条件で各ゾルの固形分を測定した。測定時の水分計の表示は固形分（％）を選択した。固形分を算出する計算式は、乾燥後質量／乾燥前質量×１００（％）である。ゾルＡ−１の固形分濃度は６．５質量％、ゾルＡ−２の固形分濃度は５．５質量％と算出された。
（膵島細胞の調製）
１１〜１４週齢の雄性Lewisラット（日本エスエルシー）を膵島分離に使用した。０.８ｍｇ／ｍＬ collagenase type V(Sigma-Aldrich社製)を溶解した冷ハンクス緩衝液（ＨＢＳＳ）をラット総胆管から注入した膵臓を、３７℃で１２分間消化し膵組織から膵島を分離した。Histopaque-１１１９(Sigma-Aldrich社製)とLymphoprep(AXIS-SHIELD、Norway)を用いて濃度勾配遠心を行い、膵島を回収した。膵島は５.５ mmol/l グルコースと１０％胎児ウシ血清（Fetal Bovine Serum:ＦＢＳ）を含むＲＰＭＩ１６４０培地で３７℃、５％ＣＯ２下で一晩培養した後、実施例および比較例の検討に使用した。
（膵島包埋デバイスの作製）
スライドガラスの上に、上記ディッシュ上にのせられた上記作製済みのゾルＡ−１又はＡ−２について、６０μＬをのせ、４℃にて１０分間静置した。その上に直径１５ｍｍの円形型PETメッシュ（株式会社サンプラティック社製、商品名：ＰＥＴメッシュシート（呼称ＴＮ１２０））をかぶせ、ゾルＡ−１又はＡ−２ ６０μＬに、上記で調製した膵島細胞から培地成分を可及的に取り除いたものを懸濁させて得られた懸濁液を上記PETメッシュ上にのせた。ゲルローディングチップを用いて膵島細胞の懸濁液をＰＥＴメッシュ上に拡げ、膵島細胞の懸濁液を挟み込む様にＰＥＴメッシュをさらにその上にかぶせた。さらにPETメッシュの上にゾルＡ−１又はＡ−２を２５０μＬのせ、その上からスライドガラスをかぶせた。このようにして構築したゾルを湿箱の中に留置し、４℃下で３時間静置し、膵島包埋デバイス（水性ゲル）を得た。なお、上記膵島包埋デバイスはいずれも、膵島量は８００ＩＥＱｓであった。
（膵島包埋デバイスの保存工程）
［実施例１］
上記にて構築したゾルＡ−１を用いた膵島包埋デバイス（水性ゲル）をスライドガラスから外し、６wellプレートに５ｍＬ／wellの割合で保存培地（グルコース濃度を５．５ｍＭに調整し、１０％ＦＢＳを含有したＲＰＭＩ１６４０培地）に浸し、４℃下で２時間保存した。
試験例１（移植試験１）
ストレプトゾトシン誘発糖尿病Ｃ５７ＢＬ／６Ｊマウスの皮下に、上記４℃下で２時間保存後のゾルＡ−１を用いた膵島包埋デバイス（水性ゲル）を留置することで移植を行った。
（糖尿病治癒評価）
上記移植後、経時的に血糖値を測定して治癒効果を確認した（ｎ数＝４）。その平均値±標準偏差を図１及び表１に示す。なお、血糖値２００ｍｇ／ｄｌ以下で○（糖尿病治癒）、２００ｍｇ／ｄｌ超を×（糖尿病状態）と判定した。
図１が示す様に、本発明の膵島包埋デバイスが移植された糖尿病モデル動物は、移植直後より血糖値の低下を認め、移植後１８５日間が経過した時点でも、糖尿病モデル動物において血糖値の改善が確認された。
また、１８０日間皮下に留置した後に膵島包埋デバイスの摘出を試みたが、実施例１のｎ数４のうちのいずれのケースにおいてもデバイスは崩壊せず形態が良好に保たれており、本発明の細胞又は組織包埋デバイスは、体内でも分解され難い強固なものであることが判明した。
ＰＶＡ樹脂（Ａ）を６ｗ／ｖ％とした場合も移植直後より血糖値の低下を認め、移植後１８５日間が経過した時点でも、糖尿病モデル動物において血糖値の改善が確認された。
［比較例１］
（ＰＶＡ溶液組成）
重合度５０００、鹸化度９９．３モル％、トライアッド表示によるシンジオタクティシティが２９．５％のＰＶＡを用い、ＰＶＡが３％、ＦＢＳ（Fetal bovine serum: 牛胎児血清）が１０％、Dimethyl sulfoxide（ジメチルスルホキシド）が５％、Nicotinamide（ニコチンアミド）が１０ｍＭとなるように、ＥＴＫ（ET-Kyoto）溶液に溶解させて得られたＰＶＡ溶液を凍結融解式膵島デバイス作製に用いた。
（膵島細胞の包埋工程）
培地成分を可及的に取り除いたLewisラットの膵島細胞のみを１.５ｍＬチューブに入れ、４℃のセルバンカー（十慈フィールド株式会社製）１.０ｍＬを加えて膵島細胞を懸濁し、氷冷下に１分間置いた後、セルバンカーを取り除いた。１ｍｍスペーサー付スライドガラスの上に、上記ＰＶＡ溶液を塗布したＰＥＴメッシュ（株式会社サンプラティック社製、商品名：ＰＥＴメッシュシート（呼称ＴＮ１２０）、１０×１５ｍｍ）をのせ、該ＰＥＴメッシュ上に、１６０μＬのＰＶＡ溶液に膵島細胞のみを懸濁させて得られた懸濁液を拡げてから、さらにＰＶＡ溶液を塗布したPETメッシュを被せた。この上にスライドガラスをのせて、厚さ１ｍｍの凍結融解式膵島デバイスを作製した。
（凍結・融解・保存工程）
作製した凍結融解式膵島デバイスを−８０℃で２４時間静置した後、型から外して氷冷ＵＷ溶液（University of Wisconsin solution、臓器保存溶液）中で融解した。さらに、氷冷ＵＷ溶液に５分間ずつ３回浸漬し、ゲル内の溶液組成をＵＷ溶液に置換してから、ＵＷ溶液中に４℃下で２４時間保存した。
（培養工程）
氷冷した膵島培養用培地（ＲＰＭＩ１６４０培地:５.５ｍＭグルコース、１０％ＦＢＳ、抗生剤含）１０ｍＬでデバイス表面のＵＷ溶液を洗浄してから培地（氷冷）に５分間ずつ３回浸漬し、ゲル内の溶液組成を培地に置換した後、３ｍＬの培地で３７℃２４時間培養した。
（移植工程）
皮下よりもグラフト生着が容易であることが知られているストレプトゾトシン誘発糖尿病Ｃ５７ＢＬ／６Ｊマウスの腹腔内に、上記保存後の凍結融解式膵島デバイスを留置することで移植を行った。
（糖尿病治癒評価）
移植後、実施例１と同様に経時的に血糖値を測定し治癒効果を評価した。その結果を表１及び図２に示す。
［比較例２〜１８］
表２に示すように、移植膵島量および移植するデバイスの個数を変更した以外は比較例１と同様に凍結融解式膵島デバイスを作製、移植し糖尿病治癒評価を行った。その結果を表１、図２及び図３に示す。
なお、表１において、実施例１については移植１８５日後の血糖値を、比較例１〜１８においては移植２８日後の血糖値を示す。
比較例１〜１８の凍結融解式バイオ人工膵島デバイスにおいては、ＰＶＡゲルを凍結融解した時点で、既にその中に包埋されている膵島細胞の形態の崩壊が引き起こされており、実際に糖尿病モデル動物へ移植実験を実施してみても、図２及び図３が示す様に移植直後にグラフト崩壊に起因する一過性の血糖値低下が確認される例があるものの、移植後２週間までに全例において血糖値が再上昇し、凍結融解式膵島デバイスでは糖尿病を治癒させる事が不可能である事が判明した。
また、表１が明確に示す様に実施例１の本発明の細胞又は組織包埋デバイスは、膵島細胞を包埋することで糖尿病治療効果を示したのに対し、比較例１〜１８では糖尿病治療効果は全く認められなかった。比較例１〜１８では移植時に膵島グラフトが顕著に障害を受けていたため、移植効果が最も高い移植部位として知られている腹腔内へ移植を行ったにもかかわらず糖尿病治療効果は全く認められなかった。一方、実施例１の本発明の細胞又は組織包埋デバイスは移植効果が最も出難い移植部位として広く周知されている皮下へ移植を行ったが、糖尿病治療効果を示した事は特記に値する。
なお、実施例１の結果は、免疫隔離能が担保され、包埋細胞の活性が良好に保持されていることを示していることから、生体組成物（Ｂ）として他の細胞や生体組織を用いた場合も、免疫隔離能の担保と、包埋細胞活性の保持効果を得ることができる。
試験例２（移植試験２）
ゾルＡ−１の製造方法において、ＰＶＡ樹脂１に代えて、ＰＶＡ樹脂２又は３を用いた以外は同様にして、膵島包埋デバイス（水性ゲル）を得た。得られた水性ゲルを用いて試験例１と同様に移植試験を行ったところ、いずれの水性ゲルを用いた場合においても、ＰＶＡ樹脂１を用いた場合と実質的に同じ効果が得られた。
試験例３（移植試験３）
また、ゾルＡ−１の製造方法において、ＰＶＡ樹脂１に代えて、トライアッド表示によるシンジオタクティシティが３６．５％又は３９．１％となるように、重合温度を変更して調製したＰＶＡ樹脂を用いた以外は同様にして、膵島包埋デバイス（水性ゲル）を得た。得られた水性ゲルを用いて試験例１と同様に移植試験を行ったところ、いずれの水性ゲルを用いた場合においても、ＰＶＡ樹脂１を用いた場合と実質的に同じ効果が得られた。
［実施例２〜５］
（ＦＤＡ／ＰＩ測定）
表３に示すＰＶＡ樹脂（Ａ）、濃度に変更し、実施例１で使用した膵島デバイスと同様の方法で膵島デバイスを作製し、３ｍＬ／wellのＰＢＳ（室温）で３分間ずつ２回洗浄した。アセトン（和光純薬工業、東京、日本）で５ｍｇ／ｍＬに溶解したFluorescein diacetate（ＦＤＡ: Calbiochmem、San Diego、USA）１５μＬと、蒸留水で０．５ｍｇ／ｍＬに溶解したPropidium iodide (ＰＩ: Sigma-Aldrich, St.Louis、MO、USA) ２０μＬを６wellプレートに入れた３ｍＬのＰＢＳに添加してＦＤＡ／ＰＩ染色溶液とし、その中にPBSで洗浄後の膵島デバイスを移し、暗所で５分間染色後、３ｍＬのＰＢＳ溶液で３分間洗浄した。膵島デバイスをカバーガラス（松浪硝子工業株式会社、大阪、日本）の上にのせ、蛍光顕微鏡（BZ-900:キーエンス、東京、日本）を用いて、ＦＤＡ（励起波長４７０／４０ｎｍ、吸収波長５２５／５０）とＰＩ（励起波長５４０／２５ｎｍ、吸収波長６０５／６０）の膵島内における局在を観察した。
何れの実施例においても、ＦＤＡ測定（染色）では生細胞の存在を確認（ＦＤＡ（＋））し、死細胞はほぼ認められなかった。一方ＰＩ測定では細胞核が染色されず（ＰＩ（−））、ＦＤＡ染色の結果と同様に死細胞がほぼ存在しないことが明らかとなった。
［比較例１９］
比較例１で作製した膵島デバイスを実施例と同様の方法でＦＤＡ／ＰＩ測定を行った。ＦＤＡ測定では染色像の存在が確認できず、ＰＩ測定では明瞭な細胞核の染色が見られ、両測定結果から比較例におけるデバイス内の膵島は広範に渡り壊死を引き起こしている事が確認された。
［実施例６］
（水性ゲル、細胞又は組織包埋デバイスの固形分濃度、応力測定）
ＰＶＡ樹脂１と水を使用し１６０℃にて溶解、９０℃に冷却後、直径３４ｍｍの円柱容器内に充填後、４２℃３０分、４℃３時間放置することで、直径３４ｍｍ×高さ１７ｍｍの水性ゲルを作製した。
得られた水性ゲルの固形分濃度（ＰＶＡ樹脂１濃度）は５．０％で、２０℃における応力は０．７ｋＰａであった。
固形分濃度は、加熱乾燥式水分計(エーアンド・デイ、ＭＳ−７０)を用いて測定した。水分計の試料皿にガラス繊維シートを置き、水性ゲル約１ｇをシートに均一に浸み込ませ、試料皿温度１２０℃、測定時間（加温時間）１５分の条件で水性ゲルの固形分を測定した。測定時の水分計の表示は固形分（％）を選択した。固形分を算出する計算式は、乾燥後質量／乾燥前質量×１００（％）である。
応力測定は、島津製作所製小型卓上試験機ＥＺＴｅｓｔ ＥＺ−ＳＸを使用し、その使用説明書に従って測定した。具体的には、直径３４ｍｍ×高さ１７ｍｍの水性ゲルを直径２０ｍｍの円柱治具を用い、２０％押し込み時の応力を求めた。
［実施例７〜１１］
表４に示す通り、ＰＶＡ樹脂（Ａ）の種類、濃度を適宜変更し、４℃における放置時間を変更した以外は実施例６と同様に水性ゲルを作製し、固形分濃度、応力を求めた。
［実施例１２〜１４］
表５に示す通り、ＰＶＡ樹脂（Ａ）の種類、濃度を適宜変更し、ＨＢＳＳ（ハンクス平衡塩溶液）を使用し、４℃における放置時間を変更した以外は実施例６と同様に細胞又は組織包埋デバイスを作製し、固形分濃度、応力を求めた。
本発明によれば、包埋した生細胞や生体組織が損傷を受けにくいｐＨ、温度条件下で強固な構造を維持する水性ゲルを毒性の低い成分を用いて簡便に形成できるため、患者にとって有用なホルモンやタンパク質等の生理活性物質の供給能力が高く、且つ含有される細胞や生体組織が生体の防御機能から隔離された細胞又は組織包埋デバイスを提供することができる。

Claims (20)

  1. シンジオタクティシティがトライアッド表示で３２〜４０％であるポリビニルアルコール樹脂（Ａ）を成分として含む水性ゲルを免疫隔離層として有する、細胞又は組織包埋デバイス。
  2. 水性ゲルが、−５℃以上でのゲル化履歴を有することを特徴とする請求項１に記載の細胞又は組織包埋デバイス。
  3. 水性ゲルが、応力０．３〜３０ｋＰａを有することを特徴とする請求項１又は２記載の細胞又は細胞包埋デバイス。
  4. ポリビニルアルコール樹脂（Ａ）の鹸化度が９０〜９９．９９モル％、重合度が１００〜１００００である請求項１〜３のいずれか記載の細胞又は組織包埋デバイス。
  5. ポリビニルアルコール樹脂（Ａ）が、ピバリン酸ビニルを重合成分とする重合体の鹸化物であって、ピバリン酸ビニル単位を含む請求項１〜４のいずれかに記載の細胞又は組織包埋デバイス。
  6. 免疫隔離層に、生体組成物（Ｂ）及び細胞培養成分（Ｃ）が封入されている請求項１〜５のいずれか１項に記載の細胞又は組織包埋デバイス。
  7. 生体組成物（Ｂ）が、膵島細胞、膵管細胞、肝臓細胞、神経細胞、甲状腺細胞、副甲状腺細胞、腎細胞、副腎細胞、下垂体細胞、脾細胞、脂肪細胞、骨髄細胞、間葉系幹細胞、ES細胞及びiPS細胞からなる群から選択される１以上である請求項６に記載の細胞又は組織包埋デバイス。
  8. 生体組成物（Ｂ）が、膵島細胞又は肝臓細胞である請求項６に記載の細胞又は組織包埋デバイス。
  9. 細胞培養成分（Ｃ）が、Na、K、Cl、Ca及びGlucoseからなる群から選択される１以上を含有する酢酸又はリン酸緩衝液である請求項６〜８のいずれか１項に記載の細胞又は組織包埋デバイス。
  10. 支持基材（Ｄ）を含有する請求項１〜９のいずれか１項に記載の細胞又は組織包埋デバイス。
  11. 支持基材（Ｄ）の素材が、ＰＥＴ、ＰＥ、ＰＰ、テフロン（登録商標）及び金属からなる群から選択される１以上である請求項１０に記載の細胞又は組織包埋デバイス。
  12. 応力０．３〜３０ｋＰａを有することを特徴とする請求項１〜１１のいずれかに記載の細胞又は細胞包埋デバイス。
  13. ポリビニルアルコール樹脂（Ａ）を含む水溶液と、細胞培養成分（Ｃ）を混合した後に、生体組成物（Ｂ）を混合して得られる混合物をゲル化せしめる工程を含む請求項６〜１２のいずれか１項に記載の細胞又は組織包埋デバイスの製造方法。
  14. 水性ゲルを作製する際の温度を−５℃以上にする請求項１３に記載の細胞又は組織包埋デバイスの製造方法。
  15. シンジオタクティシティがトライアッド表示で３２〜４０％であるポリビニルアルコール樹脂（Ａ）を含む水性ゲルを含有する細胞又は組織包埋デバイスの免疫隔離層形成剤。
  16. ポリビニルアルコール樹脂（Ａ）の鹸化度が９０〜９９．９９モル％、重合度が１００〜１００００である請求項１５に記載の剤。
  17. ポリビニルアルコール樹脂（Ａ）が、ピバリン酸ビニルを重合成分とする重合体の鹸化物であって、ピバリン酸ビニル単位を含む請求項１６に記載の剤。
  18. （１）ポリビニルアルコール樹脂（Ａ）を含み、（２）封入されている生体組成物（Ｂ）の分泌成分を透過させ、且つ免疫関連細胞又は免疫関連物質の透過を抑制することを特徴とする水性ゲルを免疫隔離層として有する、細胞又は生体組織包埋デバイス。
  19. −５℃以上でゲル化する性質を有することを特徴とする、シンジオタクティシティがトライアッド表示で３２〜４０％であるポリビニルアルコール樹脂（Ａ）、生体組成物（Ｂ）及び細胞培養成分（Ｃ）を含有する混合物。
  20. 生理活性物質産生細胞または組織を直接、あるいは支持材料で支持したものに対して、生体内酵素により主鎖が切断されないゲル形成高分子材料を含む保護ゲル層形成材料の溶液もしくはゾルを適用し、その後−５℃以上の温度でゲル形成を行う、生理活性物質産生細胞または組織に対する保護ゲル層の形成方法。
JP2019501832A 2017-02-23 2018-02-23 細胞又は組織包埋デバイス Active JP7049617B2 (ja)

Applications Claiming Priority (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2017032742 2017-02-23
JP2017032742 2017-02-23
PCT/JP2018/006662 WO2018155622A1 (ja) 2017-02-23 2018-02-23 細胞又は組織包埋デバイス

Publications (2)

Publication Number Publication Date
JPWO2018155622A1 true JPWO2018155622A1 (ja) 2019-12-12
JP7049617B2 JP7049617B2 (ja) 2022-04-07

Family

ID=63253947

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2019501832A Active JP7049617B2 (ja) 2017-02-23 2018-02-23 細胞又は組織包埋デバイス

Country Status (11)

Country Link
US (1) US20200231960A1 (ja)
EP (1) EP3587555A4 (ja)
JP (1) JP7049617B2 (ja)
KR (1) KR20190121812A (ja)
CN (1) CN110418835B (ja)
AR (1) AR111512A1 (ja)
AU (1) AU2018224762A1 (ja)
CA (1) CA3054277A1 (ja)
RU (1) RU2019129604A (ja)
TW (1) TW201836621A (ja)
WO (1) WO2018155622A1 (ja)

Families Citing this family (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN110269868A (zh) * 2019-06-12 2019-09-24 江苏艾尔康生物医药科技有限公司 一种含有自体真皮成纤维细胞透明质酸凝胶剂的构建方法
CN110643056B (zh) * 2019-10-12 2022-05-24 爱美客技术发展股份有限公司 高强度聚乙烯醇凝胶及其制备方法与应用
US20230030773A1 (en) * 2019-12-16 2023-02-02 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University Use of polyvinyl alcohol for cell culture of immune cells
EP4101480A4 (en) 2020-02-06 2023-06-21 Shin-Etsu Chemical Co., Ltd. NEOVASCULARIZATION DEVICE
EP4101479A4 (en) * 2020-02-06 2023-06-21 Shin-Etsu Chemical Co., Ltd. ANGIOGENESIS DEVICE
AU2022219788A1 (en) 2021-02-09 2023-08-10 Japan Vam & Poval Co., Ltd. Transplantation device
WO2022172929A1 (ja) 2021-02-09 2022-08-18 信越化学工業株式会社 ゼラチン含有デバイス

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH1072509A (ja) * 1995-12-22 1998-03-17 Kuraray Co Ltd 新規なポリビニルアルコール系重合体
JPH1192524A (ja) * 1997-09-25 1999-04-06 Kuraray Co Ltd ポリビニルアルコール系重合体含水ゲルの製造方法
JP2003102748A (ja) * 2001-09-28 2003-04-08 Kansai Tlo Kk マウスガードとその製造方法

Family Cites Families (11)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0389833B1 (en) * 1989-03-07 1994-01-05 Kuraray Co., Ltd. Vinyl alcohol polymers and a process for their production
JPH08116963A (ja) * 1994-10-21 1996-05-14 Toyo Ink Mfg Co Ltd 細胞培養用基材
DE69508356T2 (de) * 1994-12-08 1999-08-26 Kuraray Co Wundverband
JPH1043286A (ja) 1996-07-31 1998-02-17 Kyocera Corp 関節用人工軟骨
WO1998004616A1 (en) * 1996-07-31 1998-02-05 Kanebo Limited Porous spherical polyvinyl acetal particles, process for producing the same, and microbial carriers
US5980883A (en) * 1996-10-02 1999-11-09 Kuraray Co., Ltd. Polymer gel for medical use
JP2000212288A (ja) * 1999-01-27 2000-08-02 Dainippon Ink & Chem Inc 複合体粒子及びその製造法
US6372494B1 (en) * 1999-05-14 2002-04-16 Advanced Tissue Sciences, Inc. Methods of making conditioned cell culture medium compositions
IL134009A (en) * 2000-01-12 2011-07-31 Bo2 Technologies Ltd Transplant device
KR100481662B1 (ko) * 2001-01-19 2005-04-08 주식회사 에이스 디지텍 피발산비닐의 저온 현탁중합에 의한 폴리피발산비닐의제조방법 및 그에 의해 제조되는 폴리피발산비닐 및폴리비닐알코올
JP2004331643A (ja) 2003-04-16 2004-11-25 Kazutomo Inoue 細胞製剤

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH1072509A (ja) * 1995-12-22 1998-03-17 Kuraray Co Ltd 新規なポリビニルアルコール系重合体
JPH1192524A (ja) * 1997-09-25 1999-04-06 Kuraray Co Ltd ポリビニルアルコール系重合体含水ゲルの製造方法
JP2003102748A (ja) * 2001-09-28 2003-04-08 Kansai Tlo Kk マウスガードとその製造方法

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
SUMI, S., ET AL.: "Review: Macro-Encapsulation of Islets in Polyvinyl Alcohol Hyhrogel.", JOURNAL OF MEDICAL AND BIOLOGICAL ENGINEERING, vol. 34, no. 3, JPN6018018569, 2014, pages 204 - 210, XP055536974, ISSN: 0004582711, DOI: 10.5405/jmbe.1579 *
稲垣明子, ET AL.: "ハイドロゲルから成る細胞移植用免疫隔離デバイスのin vitro免疫隔離機能評価", 再生医療, vol. 16, JPN6018018570, 1 February 2017 (2017-02-01), pages 317 - 36, ISSN: 0004582712 *

Also Published As

Publication number Publication date
CA3054277A1 (en) 2018-08-30
EP3587555A4 (en) 2021-01-13
RU2019129604A (ru) 2021-03-23
AU2018224762A1 (en) 2019-09-19
TW201836621A (zh) 2018-10-16
AR111512A1 (es) 2019-07-24
KR20190121812A (ko) 2019-10-28
CN110418835B (zh) 2022-10-18
US20200231960A1 (en) 2020-07-23
JP7049617B2 (ja) 2022-04-07
EP3587555A1 (en) 2020-01-01
WO2018155622A1 (ja) 2018-08-30
AU2018224762A2 (en) 2019-09-26
CN110418835A (zh) 2019-11-05

Similar Documents

Publication Publication Date Title
WO2018155622A1 (ja) 細胞又は組織包埋デバイス
WO2018155621A1 (ja) 細胞又は組織包埋デバイス
Rim et al. Characterization of gelatin/gellan gum/glycol chitosan ternary hydrogel for retinal pigment epithelial tissue reconstruction materials
WO2021157625A1 (ja) 血管新生デバイス
US20220151942A1 (en) Multi-layered cell capsules and uses thereof
WO2021157626A1 (ja) 血管新生デバイス
RU2772125C2 (ru) Устройство для заключения клетки или ткани
WO2022172930A1 (ja) 移植デバイス
WO2022172929A1 (ja) ゼラチン含有デバイス

Legal Events

Date Code Title Description
A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20190820

A621 Written request for application examination

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621

Effective date: 20200918

A131 Notification of reasons for refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131

Effective date: 20210831

A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20211026

TRDD Decision of grant or rejection written
A01 Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01

Effective date: 20220308

A61 First payment of annual fees (during grant procedure)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A61

Effective date: 20220316

R150 Certificate of patent or registration of utility model

Ref document number: 7049617

Country of ref document: JP

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150