JPS63196298A - 新規微生物 - Google Patents
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Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
産業上の利
本発明は新規微生物及びそれを用いる発酵による−1−
!IX!J )−ルの製造方法に関し、更に詳細には、
オーレオバシディウム属に属する新規な人工変異株であ
るオーレオバシディウムsp.SN−042菌株及び当
該変異株を用いて発酵性糖類をエリスリトールに変換す
ることを特徴とする、新規微生物及びそれを用いる発酵
によるエリスリトールの製造方法に関する。
!IX!J )−ルの製造方法に関し、更に詳細には、
オーレオバシディウム属に属する新規な人工変異株であ
るオーレオバシディウムsp.SN−042菌株及び当
該変異株を用いて発酵性糖類をエリスリトールに変換す
ることを特徴とする、新規微生物及びそれを用いる発酵
によるエリスリトールの製造方法に関する。
良釆二皮夏
従来から、キャンシダ属、デバリオミセス属。
トリゴノプシス属、トルロプシス属、ハンゼヌラ属、モ
ニリエラ属、オーレオバシディウム属などに属する微生
物を利用して、発酵法によりグルコース、グリセリンな
どの糖類からエリスリトールを製造する方法は既に公知
となっている。
ニリエラ属、オーレオバシディウム属などに属する微生
物を利用して、発酵法によりグルコース、グリセリンな
どの糖類からエリスリトールを製造する方法は既に公知
となっている。
例えば、特公昭47−41549号公報には、キャンシ
ダ属、トリゴノプシス属に属する微生物を用いてグリセ
リンなどの発酵性糖類をエリスリトールに変換する方法
が記載されている。しかし、この方法では微生物の耐糖
性が低いために、主炭素源として使用される糖質濃度(
基質濃度)に限界があり、比較的低濃度で発酵を行う必
要があった。
ダ属、トリゴノプシス属に属する微生物を用いてグリセ
リンなどの発酵性糖類をエリスリトールに変換する方法
が記載されている。しかし、この方法では微生物の耐糖
性が低いために、主炭素源として使用される糖質濃度(
基質濃度)に限界があり、比較的低濃度で発酵を行う必
要があった。
また、特開昭60−110295号公報などには、モニ
リエラ属に属する微生物を用いるエリスリトールの改良
製法が開示されている。この方法はエリスリトールへの
変換率が高く、微生物の耐糖性も高いという点で優れて
いるが、この微生物は泡の発生が著しく、通常使用され
る消泡剤では役に立たないため、高価なキサンタンガム
などを多量に添加する必要があり、そのために製造コス
トが高くなるという欠点がある。
リエラ属に属する微生物を用いるエリスリトールの改良
製法が開示されている。この方法はエリスリトールへの
変換率が高く、微生物の耐糖性も高いという点で優れて
いるが、この微生物は泡の発生が著しく、通常使用され
る消泡剤では役に立たないため、高価なキサンタンガム
などを多量に添加する必要があり、そのために製造コス
トが高くなるという欠点がある。
更に、特開昭61−31091号公報には、本発明者ら
によりオーレオバンプイウム属に属スるオーレオバシデ
ィウムsp、 5N−42菌株(微工研菌寄第759
4号)を用いてグルツースなどの発酵性糖類からエリス
リトールを製造する方法が開示されている。この方法は
、比較的高濃度の糖質を用いてエリスリトールを製造す
ることを可能にするものであるが、培養液中の菌体生成
量に比べてエリスリトール収率が充分ではなく、また製
造条件であるpHや温度などの至適範囲が狭いなど、必
ずしも満足のいく方法とは言い難い。
によりオーレオバンプイウム属に属スるオーレオバシデ
ィウムsp、 5N−42菌株(微工研菌寄第759
4号)を用いてグルツースなどの発酵性糖類からエリス
リトールを製造する方法が開示されている。この方法は
、比較的高濃度の糖質を用いてエリスリトールを製造す
ることを可能にするものであるが、培養液中の菌体生成
量に比べてエリスリトール収率が充分ではなく、また製
造条件であるpHや温度などの至適範囲が狭いなど、必
ずしも満足のいく方法とは言い難い。
□ 点を 決するための手段
本発明者らは、上記したような従来方法の欠点を改良す
るために、オーレオバンプイウム属に属する微生物の耐
糖性を高めるべく、微生物の改良について種々検討した
結果、沖縄県の澱粉工場内の土壌から分離された不完全
菌類のオーレオバンプイウム属に属するオーレオバシデ
ィウムsp、 5N−124A菌株(微工研菌寄第87
45号)を親株とし、これより得られた変異株であるオ
ーレオバシデイウムsp、 SN −G42菌株が高い
エリスリトール生産能を有すると共に、高い耐糖性を獲
得していること並びに培養の際に泡を生成しないことを
見出し、本発明に到達したものである。
るために、オーレオバンプイウム属に属する微生物の耐
糖性を高めるべく、微生物の改良について種々検討した
結果、沖縄県の澱粉工場内の土壌から分離された不完全
菌類のオーレオバンプイウム属に属するオーレオバシデ
ィウムsp、 5N−124A菌株(微工研菌寄第87
45号)を親株とし、これより得られた変異株であるオ
ーレオバシデイウムsp、 SN −G42菌株が高い
エリスリトール生産能を有すると共に、高い耐糖性を獲
得していること並びに培養の際に泡を生成しないことを
見出し、本発明に到達したものである。
即ち、本発明はエリスリトール生産能を有し、菌体(細
胞)が親水性、非凝集性であり、且つ液体培地中で好気
的に培養するとき実質的に泡を生成しないことを特徴と
するオーレオバシディウムsp、 SN −042菌株
及び当該微生物を用いて発酵性糖類を主炭素源として含
む培地に接種し、好気的に培養して培養液中にエリスリ
トールを生成蓄積せしめ、これを採取することを特徴と
する発酵によるエリスリトールの製造方法に関する。
胞)が親水性、非凝集性であり、且つ液体培地中で好気
的に培養するとき実質的に泡を生成しないことを特徴と
するオーレオバシディウムsp、 SN −042菌株
及び当該微生物を用いて発酵性糖類を主炭素源として含
む培地に接種し、好気的に培養して培養液中にエリスリ
トールを生成蓄積せしめ、これを採取することを特徴と
する発酵によるエリスリトールの製造方法に関する。
本発明に係わるオーレオバシデイウムsp、 5N−G
42W株は、親株であるオーレオバシディウムsp、
SN −124A菌株に、紫外線を照射した後、引キ
続#N−メチルーN’−ニトロ−N/Lニトロソグアニ
ジンなどの突然変異誘起剤を使用して処理することによ
り誘発された新規変異株である。
42W株は、親株であるオーレオバシディウムsp、
SN −124A菌株に、紫外線を照射した後、引キ
続#N−メチルーN’−ニトロ−N/Lニトロソグアニ
ジンなどの突然変異誘起剤を使用して処理することによ
り誘発された新規変異株である。
以下に、本変異株の菌学的性質を示す。
1、培地上の生育状況
1)顕微鏡的所見
栄養細胞の大きさく*l) 4〜7X4〜15μ栄養
細胞の形状(*1) 菌糸および酵母様の単胞、卵
形 等の形状を示 す。
細胞の形状(*1) 菌糸および酵母様の単胞、卵
形 等の形状を示 す。
栄養細胞の増殖法(*l) 菌糸及び酵母様細胞の多
極出芽 菌糸体(*2) 真性菌糸を形成し、先端
及び側 面に全分芽型分 朱子を多数少ず る。
極出芽 菌糸体(*2) 真性菌糸を形成し、先端
及び側 面に全分芽型分 朱子を多数少ず る。
(註)*IYM寒天培寒天培地27°ロ、5養*2ポテ
トグルフース寒天によるス ライド培養 2)寒天斜面(*3) 生 育 良 好形 態
表面は平滑状 光 沢 無 し色 調
口数の経過に伴い白色からうすい黄黒色のフ pニーに変化する。
トグルフース寒天によるス ライド培養 2)寒天斜面(*3) 生 育 良 好形 態
表面は平滑状 光 沢 無 し色 調
口数の経過に伴い白色からうすい黄黒色のフ pニーに変化する。
(註)*3YM寒天培地
3)液体培養(栗4)
表面生育 厚い皮膜形成
濁 度 透 明沈 査
大 (註)*4YM液体培地 2、子のう胞子の形成 ポテトグルコース寒天培地 形成 せずコーンミール寒
天培地 形 成せずYM寒天培地 形
成 せずニンジンエキス寒天培地 形 成せずV8寒
天培地 形 成 せず3、生理学的性質 酸素要求性 好 気 的生育温度
約40°Cまで最適生育温度
35〜37°C生育pH2,5〜10.0 最適生育pH4,0〜7.0 KNO3資化性(*5) 有 リ(NH
4) 2SO4資化性(*5) 有 り尿素の
分解 無 しゼラチンの液化
無 しカロチノイドの生成
無 しファーストブルーB発色試験 無 し有機
酸の生成 無 しデンプン様物質の
生成 無 しビタミンの要求性(*5)
有 リグルコース濃度(*6) 50%
生育 ■60%生育 料 食塩濃度(秦7)2%生育 + 10%生育 − (註) 115 Wickerham f)合成培地を
用イタJ、Lodderらの方法により判定 *6寒天培地 栗7液体培地 4、糖の発酵性(*5) グルコース + ラクトース − ガラクトース − ノリビオース − シュクロース + ラフィノース − マルトース 十 〇−7ラピノース − キシロース − トレハロース − イヌリン − 5、糖、有機酸等の資化性 グルコース + D−キシp−ス − ガラクトース − エリスリトーlし+ D−7ラビノース − し一7ラビノース − D−リボース + シュクロース + L−ラムノース −マルトース
士 エタノール − メタノール 士 セロビオース + サリシン − L−ソルボース + リビトールシー ガラクチトール − グリセロール + トレハロース − ラクトース − ノリビオース − D−マンニトール − ラフイノース + メレヂトース + α−メチルーD−グルコシド − イヌリン + イノシトール − 可溶性デンプン − DL−乳酸 −コハク酸
− クエン酸 −〇−グルシトー
ル + グルクロン酸 − アルブチン + D−グルコサミン (MCI) −2−ケト
グルコン酸 + 5−ケトグルコン酸 十 上記の如き菌学的性質を有する本菌株は、オ−レオバン
プイウムsp、 5N−124A菌株を親株として変異
したものであり、且つ親株に近似した性質を有している
ことから、オーレオバシディウム属に属する新規な変異
株であると判断し、オーレオバンプィウムsp、 5N
−042菌株とし命名した。
大 (註)*4YM液体培地 2、子のう胞子の形成 ポテトグルコース寒天培地 形成 せずコーンミール寒
天培地 形 成せずYM寒天培地 形
成 せずニンジンエキス寒天培地 形 成せずV8寒
天培地 形 成 せず3、生理学的性質 酸素要求性 好 気 的生育温度
約40°Cまで最適生育温度
35〜37°C生育pH2,5〜10.0 最適生育pH4,0〜7.0 KNO3資化性(*5) 有 リ(NH
4) 2SO4資化性(*5) 有 り尿素の
分解 無 しゼラチンの液化
無 しカロチノイドの生成
無 しファーストブルーB発色試験 無 し有機
酸の生成 無 しデンプン様物質の
生成 無 しビタミンの要求性(*5)
有 リグルコース濃度(*6) 50%
生育 ■60%生育 料 食塩濃度(秦7)2%生育 + 10%生育 − (註) 115 Wickerham f)合成培地を
用イタJ、Lodderらの方法により判定 *6寒天培地 栗7液体培地 4、糖の発酵性(*5) グルコース + ラクトース − ガラクトース − ノリビオース − シュクロース + ラフィノース − マルトース 十 〇−7ラピノース − キシロース − トレハロース − イヌリン − 5、糖、有機酸等の資化性 グルコース + D−キシp−ス − ガラクトース − エリスリトーlし+ D−7ラビノース − し一7ラビノース − D−リボース + シュクロース + L−ラムノース −マルトース
士 エタノール − メタノール 士 セロビオース + サリシン − L−ソルボース + リビトールシー ガラクチトール − グリセロール + トレハロース − ラクトース − ノリビオース − D−マンニトール − ラフイノース + メレヂトース + α−メチルーD−グルコシド − イヌリン + イノシトール − 可溶性デンプン − DL−乳酸 −コハク酸
− クエン酸 −〇−グルシトー
ル + グルクロン酸 − アルブチン + D−グルコサミン (MCI) −2−ケト
グルコン酸 + 5−ケトグルコン酸 十 上記の如き菌学的性質を有する本菌株は、オ−レオバン
プイウムsp、 5N−124A菌株を親株として変異
したものであり、且つ親株に近似した性質を有している
ことから、オーレオバシディウム属に属する新規な変異
株であると判断し、オーレオバンプィウムsp、 5N
−042菌株とし命名した。
本菌株は、工業技術院微生物工業技術研究所に「微生物
受託番号 微工研菌寄第8940号」として寄託されて
いる。
受託番号 微工研菌寄第8940号」として寄託されて
いる。
このように、本発明に係わるオーレオパシデイウA s
p、 SN−042M株は、親株であるオーレオバンプ
ィウムsp、 5N−124A菌株の菌学的性質(特願
昭61−210669号参照)に近似しているが、硝酸
塩の資化性が弱く、尿素非分解性及び炭素源の資化性な
どで若干具なる性質を有しており、また親株に比較して
耐糖性が高い点(後、記試験例1参照)、液体培地で好
気的に□培養したとぎ実質的に泡を生成しない点並びに
菌体(細胞)が親水性であり、且つ非凝集性である点(
後記試験例2参照)及び平板寒天培地で静置培養したと
きのコロニーの形態(後記試験例3参照)においても相
違を有している。
p、 SN−042M株は、親株であるオーレオバンプ
ィウムsp、 5N−124A菌株の菌学的性質(特願
昭61−210669号参照)に近似しているが、硝酸
塩の資化性が弱く、尿素非分解性及び炭素源の資化性な
どで若干具なる性質を有しており、また親株に比較して
耐糖性が高い点(後、記試験例1参照)、液体培地で好
気的に□培養したとぎ実質的に泡を生成しない点並びに
菌体(細胞)が親水性であり、且つ非凝集性である点(
後記試験例2参照)及び平板寒天培地で静置培養したと
きのコロニーの形態(後記試験例3参照)においても相
違を有している。
以下に、本発明に係わるエリスリトールの製造方法につ
いて述べるが、本発明の中で用いる%は特にことわりの
ない限り容量%で示した。
いて述べるが、本発明の中で用いる%は特にことわりの
ない限り容量%で示した。
本発明における培養は、通常液体培地を用いて好気的条
件下に撹拌培養により実施されることが望ましい。
件下に撹拌培養により実施されることが望ましい。
当該液体培地の主炭素源としてはグルコース。
フルクトース、シェフロースなどの糖質カ使用されるが
、これらの糖質の培地中における量的割合としては10
〜55%、好ましくは20〜50%の範囲で添加使用さ
れる。窒素源としては微生物により利用可能な窒素化合
物、例えば酵母エキス、ペプトン、麦芽エキス、カザミ
ノ酸、コーンスチープリカーなどが使用される。また、
培地に加える無機塩類としては、例えば硫酸第一鉄、塩
化カリウム、塩化ナトリウム、リン酸二水素カリウム、
水酸化カルシウムなどの塩類が使用される。更に、必要
に応じて酵母の生育に必要な各種の有機物。
、これらの糖質の培地中における量的割合としては10
〜55%、好ましくは20〜50%の範囲で添加使用さ
れる。窒素源としては微生物により利用可能な窒素化合
物、例えば酵母エキス、ペプトン、麦芽エキス、カザミ
ノ酸、コーンスチープリカーなどが使用される。また、
培地に加える無機塩類としては、例えば硫酸第一鉄、塩
化カリウム、塩化ナトリウム、リン酸二水素カリウム、
水酸化カルシウムなどの塩類が使用される。更に、必要
に応じて酵母の生育に必要な各種の有機物。
無機物あるいは通常用いられる消泡剤などを添加するこ
とができる。
とができる。
培養は、前記組成からなる液体培地に微生物菌体を直接
接種するか、又は別に前培養によって得られる種培養液
を接種して行われる。この種培養液の調製は、例えば常
法により斜面培養した菌をグルコース33.5%、コー
ンスチーブリ力−4,5%を含むpH4〜6の液体培地
に1白金耳接種して34〜36°Cの温度で2〜4日間
培養することにより行われる。
接種するか、又は別に前培養によって得られる種培養液
を接種して行われる。この種培養液の調製は、例えば常
法により斜面培養した菌をグルコース33.5%、コー
ンスチーブリ力−4,5%を含むpH4〜6の液体培地
に1白金耳接種して34〜36°Cの温度で2〜4日間
培養することにより行われる。
培養温度は微生物が生育しうる範囲内、即ち30〜38
°Cで行われるが、好ましくは35〜37℃の範囲であ
る。
°Cで行われるが、好ましくは35〜37℃の範囲であ
る。
また、培地のpHは4〜9、好ましくは4〜7の範囲で
調節される。
調節される。
培養期間は使用する培地の種類及び主炭素源である糖質
の濃度により異なるが、通常4〜8日間程度である。
の濃度により異なるが、通常4〜8日間程度である。
本発明における培養は、培地の栄養源が最大限に利用さ
れ、且つ培養液中のエリスリトールの生成量が最高に達
した時点で培養を終了させることが望ましい。
れ、且つ培養液中のエリスリトールの生成量が最高に達
した時点で培養を終了させることが望ましい。
なお、培養液中のエリスリトール生成量はガスクロマト
グラフィー、高速液体クロマトグラフィーなどの周知の
方法を用いて速やかに測定することができる。
グラフィー、高速液体クロマトグラフィーなどの周知の
方法を用いて速やかに測定することができる。
かくして、培養液中に蓄積されたエリスリトールは、常
法に従って培養液中から分離される。即ち、斯かる場合
に当該分野において通常使用されている周知の手段、例
えばろ過、遠心分離、イオン交換又は吸着クロマトグラ
フィー、溶媒抽出。
法に従って培養液中から分離される。即ち、斯かる場合
に当該分野において通常使用されている周知の手段、例
えばろ過、遠心分離、イオン交換又は吸着クロマトグラ
フィー、溶媒抽出。
蒸留、結晶化などの操作が必要に応じて適宜組み合わせ
て用いられる。−例を挙げれば、培養液からろ過、遠心
分離などによって菌体を除去し、次いでこの液を活性炭
で処理して着色物質などを除き、更にイオン交換樹脂に
より脱イオンした後、液を濃縮してシロップとする。次
に、このシロップからエリスリトール結晶化して分離す
る。エリスリトールを分離した後の母液中にグリセリン
が含まれている場合には、これを更に減圧蒸留により精
製してグリセリンを得ることができる。
て用いられる。−例を挙げれば、培養液からろ過、遠心
分離などによって菌体を除去し、次いでこの液を活性炭
で処理して着色物質などを除き、更にイオン交換樹脂に
より脱イオンした後、液を濃縮してシロップとする。次
に、このシロップからエリスリトール結晶化して分離す
る。エリスリトールを分離した後の母液中にグリセリン
が含まれている場合には、これを更に減圧蒸留により精
製してグリセリンを得ることができる。
叉−」L−飢
次に、本発明を試験例及び実施例により詳しく説明する
。
。
以下に、本発明に係わるオーレオバシディウムsp.S
N−042菌株の特性を、親株であるオーレオハシティ
ラムsp、 5N−124A菌株と比較した。
N−042菌株の特性を、親株であるオーレオハシティ
ラムsp、 5N−124A菌株と比較した。
試験例1(耐糖性試験)
・方 法
酵母エキス(Difco社製)1.0%、グルコース2
2.0〜45.0%を含む培地を500 N1を容の三
角フラスコにそれぞれ入れ、120°Cで15分間蒸気
滅菌を行った。冷浸、培地pHを5.5に調整し、これ
に種培養液6%を接種した後、30’C。
2.0〜45.0%を含む培地を500 N1を容の三
角フラスコにそれぞれ入れ、120°Cで15分間蒸気
滅菌を行った。冷浸、培地pHを5.5に調整し、これ
に種培養液6%を接種した後、30’C。
180rpmで7日間回転培養を行った。
・結 果
次頁に対消費グルコース当たりのエリスリトール収率な
示した。
示した。
表から明らかなように、親株であるオーレオハシティラ
ムsp、 5N−124A菌株は、培地のグルコース濃
度が33.5%以下ではエリスリトールへの変換率が3
6.5〜38.3%で良°好な変換率を示すが、グルコ
ース濃度が39.5%以上になると、グルコース濃度の
上昇に伴って急激な変換率の低下が認められた。
ムsp、 5N−124A菌株は、培地のグルコース濃
度が33.5%以下ではエリスリトールへの変換率が3
6.5〜38.3%で良°好な変換率を示すが、グルコ
ース濃度が39.5%以上になると、グルコース濃度の
上昇に伴って急激な変換率の低下が認められた。
これに対し、本発明の変異株であるオーレオバシディウ
ムsp.SN−042菌株は、培地のグルコース濃度が
39.5%を越えてもエリスリトールへの変換率の低下
が認められず、グルコース濃度が45.0%になっても
親株に比べ約2.3倍のエリスリトール収率が認められ
た。
ムsp.SN−042菌株は、培地のグルコース濃度が
39.5%を越えてもエリスリトールへの変換率の低下
が認められず、グルコース濃度が45.0%になっても
親株に比べ約2.3倍のエリスリトール収率が認められ
た。
試験例2(発泡性、凝集性及び親水性試験)・方 法
酵母エキス1.0%、グルコース33.5%を含む培地
を試験管に入れ、120°Cで15分間蒸気滅菌を行っ
た0冷後、培地pHを5.5に調整し、これに種培養液
6%を接種した後、30°C15日間振盪培養を行った
。培養終了後、10〜15分間静置して泡の生成状態及
び菌体(細胞)の凝集状態を観察した(発泡性、凝集性
)。
を試験管に入れ、120°Cで15分間蒸気滅菌を行っ
た0冷後、培地pHを5.5に調整し、これに種培養液
6%を接種した後、30°C15日間振盪培養を行った
。培養終了後、10〜15分間静置して泡の生成状態及
び菌体(細胞)の凝集状態を観察した(発泡性、凝集性
)。
引き続き、培養液と同量のベンゼンを加えて強く撹拌し
た後、約30分間静置して菌体(細胞)のベンゼン層へ
の移行状態を観察した(親水性)。
た後、約30分間静置して菌体(細胞)のベンゼン層へ
の移行状態を観察した(親水性)。
・結 果
親株であるオーレオハシティラムsp、 SN −12
4A菌株は、液体培地で好気的に培養したとき著しい発
泡を示し、撹拌(振盪)を停止した後も泡は長時間消失
しなかった。また、培養液中の菌体(細胞)は、撹拌を
停止すると速やかに凝集して沈殿を生じた。
4A菌株は、液体培地で好気的に培養したとき著しい発
泡を示し、撹拌(振盪)を停止した後も泡は長時間消失
しなかった。また、培養液中の菌体(細胞)は、撹拌を
停止すると速やかに凝集して沈殿を生じた。
これに対し、本発明の変異株であるオーレオハシティラ
ムsp、 SN −042菌株は上記と同一の条件で培
養しても発泡が全く認められず、撹拌(振盪)を停止し
ても菌体の凝集は生じなかった。
ムsp、 SN −042菌株は上記と同一の条件で培
養しても発泡が全く認められず、撹拌(振盪)を停止し
ても菌体の凝集は生じなかった。
また、上記と同一条件で培養した親株と本発明の変異株
の各培養液に、適量のベンゼンを加えてベンゼン−水2
層系としたとき、親株の菌体はベンゼン層に移行し、水
層には何も残らないが、本発明の変異株の菌体は全て水
層にとどまり、ベンゼン層には全く移行しなかった。
の各培養液に、適量のベンゼンを加えてベンゼン−水2
層系としたとき、親株の菌体はベンゼン層に移行し、水
層には何も残らないが、本発明の変異株の菌体は全て水
層にとどまり、ベンゼン層には全く移行しなかった。
試験例3(形態観察)
・方 法
酵母エキス1.0%、グルコース、33.5%、寒天1
.5%から成る平板寒天培地に、白金線を用いて菌株を
接種した後、30″C15日間静置培養し、コロニーの
形態を観察した。
.5%から成る平板寒天培地に、白金線を用いて菌株を
接種した後、30″C15日間静置培養し、コロニーの
形態を観察した。
・結 果
親株であ盃オーレオバシディウムsp、 SN −12
4A菌株は、平板寒天培地上で表面がシワ状のコロニー
を生ずるが、本発明の変異株であるオーレオバシディウ
ムsp、 SN −042菌株は表面が平滑状のコシニ
ーを生じ、外観上著しく相違している。
4A菌株は、平板寒天培地上で表面がシワ状のコロニー
を生ずるが、本発明の変異株であるオーレオバシディウ
ムsp、 SN −042菌株は表面が平滑状のコシニ
ーを生じ、外観上著しく相違している。
実施例1(変異株の造成)
オーレオバシディウムsp、 5N−124Am 株を
酵母エキス0.5%、グルコース22%の培地で2日間
前培養したものを100倍稀釈し、30cmの距離から
15Wの紫外線ランプ(東芝殺菌灯[GL15J )を
40分間照射する。これを稀釈後、寒天培地(酵母エキ
ス1.0%、グルコース33.5%寒天1.5%)に塗
布し、生育してくるものを選抜した。
酵母エキス0.5%、グルコース22%の培地で2日間
前培養したものを100倍稀釈し、30cmの距離から
15Wの紫外線ランプ(東芝殺菌灯[GL15J )を
40分間照射する。これを稀釈後、寒天培地(酵母エキ
ス1.0%、グルコース33.5%寒天1.5%)に塗
布し、生育してくるものを選抜した。
次に、上記処理で選抜した菌株を再び20分間紫外線照
射し、同様にして生育してくるものを選抜した。
射し、同様にして生育してくるものを選抜した。
更に、上記処理で選抜した菌株を1 mg/ me濃度
のN−メチル−N′−二) a −Nn−ニトロソグア
ニジンで30分間処理し、同様にして生育してくるもの
を選抜して、変異株であるオーレオバシディウムsp、
SN −G42菌株(FERMP−8940)を得
た。
のN−メチル−N′−二) a −Nn−ニトロソグア
ニジンで30分間処理し、同様にして生育してくるもの
を選抜して、変異株であるオーレオバシディウムsp、
SN −G42菌株(FERMP−8940)を得
た。
実施例2
腫11区μ」1に
グルコース33.5%、酵母エキス1.0%、寒天1.
5%から成る斜面培地にオーレオバシディウムsp、
SN −G42菌株(FERM P−8940)の菌
体を塗布し、35°Cで2〜3日間静置培養する。
5%から成る斜面培地にオーレオバシディウムsp、
SN −G42菌株(FERM P−8940)の菌
体を塗布し、35°Cで2〜3日間静置培養する。
次に、グルコース20%、コーンスチーフリカ−(玉子
コーンスターチ■製)1.6%を含む液体培地 (pH
4,0) 150m/を入れた500IIIt容の三角
フラスコに上記培養菌体を1白金耳植菌し、35°Cで
3日間培養を行い、更に、この培養液9ytlを同様の
液体培地150m/を入れた500a+/容の三角フラ
スコに接種し35°Cで3日間振盪培養することにより
調製した。
コーンスターチ■製)1.6%を含む液体培地 (pH
4,0) 150m/を入れた500IIIt容の三角
フラスコに上記培養菌体を1白金耳植菌し、35°Cで
3日間培養を行い、更に、この培養液9ytlを同様の
液体培地150m/を入れた500a+/容の三角フラ
スコに接種し35°Cで3日間振盪培養することにより
調製した。
本−」し−1
グルコース20.0%およびコーンスチープリ力−1,
6%を含む培地15Jを301容の発酵槽に入れ、消泡
剤(「シリコーンKS−66J信越化学■製)300p
pmを加えたのち、120°Cで20分間蒸気滅菌する
。冷却後、カセイソーダを用いて培地のpHな4.0に
調整したのち、これにオーレオバシディウムSp、 S
N−G42菌株(FERM P−8940)の種培養液
6%を加え、温度35°C1通気量0.25 VVms
回転数23Orpmの条件で7日間培養を行った。
6%を含む培地15Jを301容の発酵槽に入れ、消泡
剤(「シリコーンKS−66J信越化学■製)300p
pmを加えたのち、120°Cで20分間蒸気滅菌する
。冷却後、カセイソーダを用いて培地のpHな4.0に
調整したのち、これにオーレオバシディウムSp、 S
N−G42菌株(FERM P−8940)の種培養液
6%を加え、温度35°C1通気量0.25 VVms
回転数23Orpmの条件で7日間培養を行った。
培養終了後、培養液の分析を行った結果、グルコースは
完全に消費されており、培養液中のエリスリトール収率
は49.3%、グリセリン収率は2.2%であった。
完全に消費されており、培養液中のエリスリトール収率
は49.3%、グリセリン収率は2.2%であった。
次に、この培養液の一部をとり、遠心分離により菌体を
除去し、更に活性炭による脱色およびイオン交換樹脂(
IRA−410: IR−120B = 2:1)によ
る脱塩を行った。溶出液を糖濃度50%以上に濃縮し、
徐冷することによって結晶を得、更に、この結晶を水に
溶解した後、同様の方法によって再結晶を行った。
除去し、更に活性炭による脱色およびイオン交換樹脂(
IRA−410: IR−120B = 2:1)によ
る脱塩を行った。溶出液を糖濃度50%以上に濃縮し、
徐冷することによって結晶を得、更に、この結晶を水に
溶解した後、同様の方法によって再結晶を行った。
得られた多面体様の白色結晶はされやかな甘味を有し、
その融点は121°Cであった。更に、液体クロマトグ
ラフィー、ガスクーマドグラフィー、旋光度及び核磁気
共鳴スペクトル等の測定を行った結果、上記結晶はエリ
スリトールと同定された。
その融点は121°Cであった。更に、液体クロマトグ
ラフィー、ガスクーマドグラフィー、旋光度及び核磁気
共鳴スペクトル等の測定を行った結果、上記結晶はエリ
スリトールと同定された。
実施例3
グルコース20.0%およびコーンスチープリカ−1,
6%を含む培地15Jを301容の発酵槽に入れ、消泡
剤300ppmを加えたのち、120°Cで20分間蒸
気滅菌する。冷却後、カセイソーダを用いて培地のpH
を4.0に調整したのち、上記培地と同一組成の培地を
用いて実施例2の方法に従い調製したオーレオパシデイ
ウムsp、 5N−G42菌株 (FERM P−8
940)の種培養液6%を加え、温度35℃、通気量0
.50vvms回転数23Orpmの条件で7日間培養
を行った。
6%を含む培地15Jを301容の発酵槽に入れ、消泡
剤300ppmを加えたのち、120°Cで20分間蒸
気滅菌する。冷却後、カセイソーダを用いて培地のpH
を4.0に調整したのち、上記培地と同一組成の培地を
用いて実施例2の方法に従い調製したオーレオパシデイ
ウムsp、 5N−G42菌株 (FERM P−8
940)の種培養液6%を加え、温度35℃、通気量0
.50vvms回転数23Orpmの条件で7日間培養
を行った。
培養終了後、培養液の分析を行った結果、グルコースは
完全に消費されており、培養液中のエリスリトール収率
は49.2%、グリセリン収率は1.2%であった。
完全に消費されており、培養液中のエリスリトール収率
は49.2%、グリセリン収率は1.2%であった。
実施例4
グルコース20.0%およびコーンスチープリ力−1,
6%を含む培地151を307!容の発酵槽に入れ、消
泡剤300ppmを加えたのち、120°Cで20分間
蒸気滅菌する。冷却後、カセイソーダを用いて培地のp
Hな4.0に調整したのち、上記培地と同一組成の培地
を用いて実施例2の方法に従い調製したオーレオバシデ
ィウムsp、 5N−G42菌株 (FERM P−
8940)の種培養液6%を加え、温度35°C1通気
量0.75wmq回転数23Orpmの条件で7日間培
養を行った。
6%を含む培地151を307!容の発酵槽に入れ、消
泡剤300ppmを加えたのち、120°Cで20分間
蒸気滅菌する。冷却後、カセイソーダを用いて培地のp
Hな4.0に調整したのち、上記培地と同一組成の培地
を用いて実施例2の方法に従い調製したオーレオバシデ
ィウムsp、 5N−G42菌株 (FERM P−
8940)の種培養液6%を加え、温度35°C1通気
量0.75wmq回転数23Orpmの条件で7日間培
養を行った。
培養終了後、培養液の分析を行った結果、グルコースは
完全に消費されており、培養液中のエリスリトール収率
は46.5%、グリセリン収率は2.7%であった。
完全に消費されており、培養液中のエリスリトール収率
は46.5%、グリセリン収率は2.7%であった。
実施例5
グルコース20.0%およびコーンスチープリカ−1,
6%を含む培地15Jを301容の発酵槽に入れ、消泡
剤300ppmを加えたのち、120°Cで20分間蒸
気滅菌する。冷却後、カセイソーダを用いて培地のpH
を4.0に調整したのち、上記培地と同一組成の培地を
用いて実施例2の方法に従い調製したオーレオバシディ
ウムsp、 5N−042菌株 (FERM P−8
940)の種培養液6%を加え、温度35”C,通気f
!kl 、00 VVms回転数23Orpmの条件で
7日間培養を行った。
6%を含む培地15Jを301容の発酵槽に入れ、消泡
剤300ppmを加えたのち、120°Cで20分間蒸
気滅菌する。冷却後、カセイソーダを用いて培地のpH
を4.0に調整したのち、上記培地と同一組成の培地を
用いて実施例2の方法に従い調製したオーレオバシディ
ウムsp、 5N−042菌株 (FERM P−8
940)の種培養液6%を加え、温度35”C,通気f
!kl 、00 VVms回転数23Orpmの条件で
7日間培養を行った。
培養終了後、培養液の分析を行った結果、グルコースは
完全に消費されており、培養液中のエリスリトール収率
は41.8%、グリセリン収率は1.4%であった。
完全に消費されており、培養液中のエリスリトール収率
は41.8%、グリセリン収率は1.4%であった。
実施例6
グルコース33.5%、およびコーンスチープリカ−4
,47%を含む培地67iを74容の発酵槽に入れ、消
泡剤3ooppmを加えたのち、120°Cで20分間
蒸気滅菌する。冷却後、カセイソーダを用いて培地のp
Hな4.2に調整したのち、上記培地と同一組成の培地
を用いて実施例2の方法に従い調製したオーレオバシデ
ィウムsp、 5N−042菌株 (FERM P−
8940)の種培養液6%を加え、温度35°C1通気
量0.25wm1回転数50Orpmの条件で5日間培
養を行った。
,47%を含む培地67iを74容の発酵槽に入れ、消
泡剤3ooppmを加えたのち、120°Cで20分間
蒸気滅菌する。冷却後、カセイソーダを用いて培地のp
Hな4.2に調整したのち、上記培地と同一組成の培地
を用いて実施例2の方法に従い調製したオーレオバシデ
ィウムsp、 5N−042菌株 (FERM P−
8940)の種培養液6%を加え、温度35°C1通気
量0.25wm1回転数50Orpmの条件で5日間培
養を行った。
培養終了後、培養液の分析を行った結果、グルコースは
完全に消費されており、培養液中のエリスリトール収率
は39.7%、グリセリン収率は7.9%であった。
完全に消費されており、培養液中のエリスリトール収率
は39.7%、グリセリン収率は7.9%であった。
実施例7
グルコース39.5%およびコーンスチープリ力−4,
0%を含む培地51を7E容の発酵槽に入れ、消泡剤3
00ppmを加えたのち、120’Cで20分間蒸気滅
菌する。冷却後、カセイソーダを用いて培地のpHを4
.2に調整したのち、上記培地と同一組成の培地を用い
て実施例2の方法に従い調製したオーレオバシディウム
sp、 5N−042菌株 (FERM P−8940
)の種培養液6%を加え、温度35°C1通気量0.2
5vvms回転数50Orpmの条件で6日間培養を行
った。
0%を含む培地51を7E容の発酵槽に入れ、消泡剤3
00ppmを加えたのち、120’Cで20分間蒸気滅
菌する。冷却後、カセイソーダを用いて培地のpHを4
.2に調整したのち、上記培地と同一組成の培地を用い
て実施例2の方法に従い調製したオーレオバシディウム
sp、 5N−042菌株 (FERM P−8940
)の種培養液6%を加え、温度35°C1通気量0.2
5vvms回転数50Orpmの条件で6日間培養を行
った。
培養終了後、培養液の分析を行った結果、グルコースは
完全に消費されており、培養液中のエリスリトール収率
は38.6%、グリセリン収率は9.5%であった。
完全に消費されており、培養液中のエリスリトール収率
は38.6%、グリセリン収率は9.5%であった。
実施例8
グルコース39.5%およびコーンスチーブリ力−5,
3%を含む培地5/!を77!容の発酵槽に入れ、消泡
剤300ppmを加えたのち、120″Cで20分間蒸
気滅菌する。冷却後、カセイソーダを用いて培地のpH
を4.2に調整したのち、上記培地と同一組成の培地を
用いて実施例2の方法に従い調製したオーレオバシディ
ウムsp、 5N−042菌株 (FERM P−8
940) (1)種培養液6%を加え、温度35°C1
通気量Q、25vvms回転数50Orpmの条件で5
日間培養を行った。
3%を含む培地5/!を77!容の発酵槽に入れ、消泡
剤300ppmを加えたのち、120″Cで20分間蒸
気滅菌する。冷却後、カセイソーダを用いて培地のpH
を4.2に調整したのち、上記培地と同一組成の培地を
用いて実施例2の方法に従い調製したオーレオバシディ
ウムsp、 5N−042菌株 (FERM P−8
940) (1)種培養液6%を加え、温度35°C1
通気量Q、25vvms回転数50Orpmの条件で5
日間培養を行った。
培養終了後、培養液の分析を行った結果、グルコースは
完全に消費されており、培養液中のエリスリトール収率
は37.5%、グリセリン収率は7.2%であった。
完全に消費されており、培養液中のエリスリトール収率
は37.5%、グリセリン収率は7.2%であった。
実施例9
グルコース39.5%およびコーンスチープリ力−6,
6%を含む培地51を71容の発酵槽に入れ、消泡剤3
00ppmを加えたのち、120°Cで20分間蒸気滅
菌する。冷却後、カセイソーダを用いて培地のpHを4
.2に調整したのち、上記培地と同一組成の培地を用い
て実施例2の方法に従い調製したオーレオバシディウム
sp、 5N−042菌株 (FERM P−894
0)の種培養液6%を加え、温度35°C1通気量0.
25vvms回転数50Orpmの条件で4日間培養を
行った。
6%を含む培地51を71容の発酵槽に入れ、消泡剤3
00ppmを加えたのち、120°Cで20分間蒸気滅
菌する。冷却後、カセイソーダを用いて培地のpHを4
.2に調整したのち、上記培地と同一組成の培地を用い
て実施例2の方法に従い調製したオーレオバシディウム
sp、 5N−042菌株 (FERM P−894
0)の種培養液6%を加え、温度35°C1通気量0.
25vvms回転数50Orpmの条件で4日間培養を
行った。
培養終了後、培養液の分析を行った結果、グルコースは
完全に消費されており、培養液中のエリスリトール収率
は37.1%、グリセリン収率は4.8%であった。
完全に消費されており、培養液中のエリスリトール収率
は37.1%、グリセリン収率は4.8%であった。
実施例10
グルコース45.0%およびコーンスチープリ力−6,
0%を含む培地15Jを301容の発酵槽に入れ、消泡
剤300ppmを加えたのち、120°Cで20分間蒸
気滅菌する。冷却後、カセイソーダを用いて培地のpH
を4.0に調整したのち、上記培地と同一組成の培地を
用いて実施例2の方法に従い調製したオーレオバシディ
ウムsp、 5N−042菌株 (FERM P−89
40)の種培養液6%を加え、温度35°C1通気量0
.25vvms回転数23Orpmの条件で8日間培養
を行った。
0%を含む培地15Jを301容の発酵槽に入れ、消泡
剤300ppmを加えたのち、120°Cで20分間蒸
気滅菌する。冷却後、カセイソーダを用いて培地のpH
を4.0に調整したのち、上記培地と同一組成の培地を
用いて実施例2の方法に従い調製したオーレオバシディ
ウムsp、 5N−042菌株 (FERM P−89
40)の種培養液6%を加え、温度35°C1通気量0
.25vvms回転数23Orpmの条件で8日間培養
を行った。
培養終了後、培養液の分析を行った結果、グルコースは
完全に消費されており、培養液中のエリスリトール収率
は37.3%、グリセリン収率は4.5%であった。
完全に消費されており、培養液中のエリスリトール収率
は37.3%、グリセリン収率は4.5%であった。
実施例11
シェフロース33.5%およびコーンスチープリ力−4
,5%を含む培地51を771容の発酵槽に入れ、消泡
剤300ppmを加えたのち、120°Cで20分間蒸
気滅菌する。冷却後、カセイソーダを用いて培地のpH
な4.1に調整したのち、上記培地と同一組成の培地を
用いて実施例2の方法に従い調製したオーレオバシディ
ウムsp、 5N−042菌株の種培養液6%を加え、
温度35’C。
,5%を含む培地51を771容の発酵槽に入れ、消泡
剤300ppmを加えたのち、120°Cで20分間蒸
気滅菌する。冷却後、カセイソーダを用いて培地のpH
な4.1に調整したのち、上記培地と同一組成の培地を
用いて実施例2の方法に従い調製したオーレオバシディ
ウムsp、 5N−042菌株の種培養液6%を加え、
温度35’C。
通気量0.25vvms回転数50Orpmの条件で6
日間培養を行った。
日間培養を行った。
培養終了後、培養液の分析を行った結果、シェフロース
は完全に消費されており、培養液中のエリスリトール収
率は41.9%、グリセリン収率は7.4%であった。
は完全に消費されており、培養液中のエリスリトール収
率は41.9%、グリセリン収率は7.4%であった。
実施例12
シェフロース39.5%およびコーンスチープリカ−5
,3%を含む培地51を74容の発酵槽に入れ、消泡剤
300ppmを加えたのち、120°Cで20分間蒸気
滅菌する。冷却後、カセイソーダを用いて培地のpHを
4.1に調整したのち、上記培地と同一組成の培地を用
いて実施例2の方法に従い調製したオーレオバシディウ
ムsp、 5N−Gd2菌株 (FERM P−89
40)の種培養液6%を加え、温度35°C1通気量0
.25vvms回転数50Orpmの条件で6日間培養
を行った。
,3%を含む培地51を74容の発酵槽に入れ、消泡剤
300ppmを加えたのち、120°Cで20分間蒸気
滅菌する。冷却後、カセイソーダを用いて培地のpHを
4.1に調整したのち、上記培地と同一組成の培地を用
いて実施例2の方法に従い調製したオーレオバシディウ
ムsp、 5N−Gd2菌株 (FERM P−89
40)の種培養液6%を加え、温度35°C1通気量0
.25vvms回転数50Orpmの条件で6日間培養
を行った。
培養終了後、培養液の分析を行った結果、’ixlロー
スは完全に消費されており、培養液中のエリスリトール
収率は42.4%、グリセリン収率は5.8%であった
。
スは完全に消費されており、培養液中のエリスリトール
収率は42.4%、グリセリン収率は5.8%であった
。
実施例13
シェフロース45.0%およびコーンスチーブリ力−6
,0%を含む培地51を71容の発酵槽に入れ、消泡剤
300ppmを加えたのち、12′O°Cで20分間蒸
気滅菌する。冷却後、カセイソーダを用いて培地のpH
を4.1に調整したのち、上記培地と同一組成の培地を
用いて実施例2の方法に従い調製したオーレオバシディ
ウムsp。
,0%を含む培地51を71容の発酵槽に入れ、消泡剤
300ppmを加えたのち、12′O°Cで20分間蒸
気滅菌する。冷却後、カセイソーダを用いて培地のpH
を4.1に調整したのち、上記培地と同一組成の培地を
用いて実施例2の方法に従い調製したオーレオバシディ
ウムsp。
5N−Gd2菌株 (FERM P−8940)の種培
養液6%を加え、温度35°C1通気量0.25wm5
回転数50Orpmの条件で6日間培養を行った。
養液6%を加え、温度35°C1通気量0.25wm5
回転数50Orpmの条件で6日間培養を行った。
培養終了後、培養液の分析を行った結果、シェフロース
は完全に消費されており、培養液中のエリスリトール収
率は41.7%、グリセリン収率は3.8%であった。
は完全に消費されており、培養液中のエリスリトール収
率は41.7%、グリセリン収率は3.8%であった。
l乳旦夏釆
本発明の新規微生物であるオーレオバシディウムsp、
SN −Gd2菌株は、耐糖性、耐熱性に優れ、エリ
スリトール生産能が高く、しかも発酵培養時に泡の発生
が極めて少ないので、工業的に利用する上で大変都合の
良いものである。
SN −Gd2菌株は、耐糖性、耐熱性に優れ、エリ
スリトール生産能が高く、しかも発酵培養時に泡の発生
が極めて少ないので、工業的に利用する上で大変都合の
良いものである。
Claims (2)
- (1)エリスリトール生産能を有し、菌体(細胞)が親
水性、非凝集性であり、且つ液体培地中で好気的に培養
するとき実質的に泡を生成しないことを特徴とするオー
レオバシディウムsp.SN−G42菌株。 - (2)オーレオバシディウムsp.SN−G42菌株を
、発酵性糖類を主炭素源として含む培地に接種し、好気
的に培養して培養液中にエリスリトールを生成蓄積せし
め、これを採取することを特徴とする発酵によるエリス
リトールの製造方法。
Priority Applications (9)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP62024716A JPS63196298A (ja) | 1987-02-06 | 1987-02-06 | 新規微生物 |
US07/088,858 US4939091A (en) | 1986-09-09 | 1987-08-24 | Novel auerobasidium sp. microorganisms, method for obtaining the same and method for preparing erythritol with the same |
AU77768/87A AU600749B2 (en) | 1986-09-09 | 1987-09-02 | Novel aurebasidium sp. microorganisms, method for obtaining the same, and method for preparing erythritol with the same |
CA000546076A CA1301684C (en) | 1986-09-09 | 1987-09-03 | Aureobasidium sp. microorganisms, method for obtaining the same,and method for preparing erythritol with the same |
EP87113002A EP0262463B1 (en) | 1986-09-09 | 1987-09-05 | Novel aureobasidium sp. microorganisms, method for preparing erythritol with the same |
DE87113002T DE3784611T2 (de) | 1986-09-09 | 1987-09-05 | Aureobasidium sp. Mikroorganismen und deren Verwendung beim Verfahren zur Herstellung von erythritol. |
DK467987A DK168490B1 (da) | 1986-09-09 | 1987-09-08 | Aureobasidium sp.-mikroorganismer, fremgangsmåde til opnåelse af disse og fremgangsmåde til fremstilling af erythritol ved anvendelse af disse |
KR1019870009963A KR900007936B1 (ko) | 1986-09-09 | 1987-09-09 | 오레오베이시디움속의 신규 미생물 및 그 취득방법과 이 균주를 사용한 에리쓰리톨의 제조방법 |
US07/504,938 US5036011A (en) | 1986-09-09 | 1990-04-05 | Novel Aureobasidium sp. microorganisms and method for obtaining the same, and method for preparing erythritol with the same |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP62024716A JPS63196298A (ja) | 1987-02-06 | 1987-02-06 | 新規微生物 |
Related Child Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP1605190A Division JPH0343091A (ja) | 1990-01-29 | 1990-01-29 | 新規微生物を用いる発酵によるエリスリトールの製造方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS63196298A true JPS63196298A (ja) | 1988-08-15 |
JPH0411189B2 JPH0411189B2 (ja) | 1992-02-27 |
Family
ID=12145889
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP62024716A Granted JPS63196298A (ja) | 1986-09-09 | 1987-02-06 | 新規微生物 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS63196298A (ja) |
Cited By (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO1998044089A1 (fr) * | 1997-04-02 | 1998-10-08 | Mitsubishi Chemical Corporation | Micro-organisme generateur d'erythritol et son procede d'obtention |
WO1999033953A1 (fr) * | 1997-12-25 | 1999-07-08 | Nikken Chemicals Co., Ltd. | Nouveau micro-organisme et procede de production de polyols au moyen de celui-ci |
US6030820A (en) * | 1997-10-07 | 2000-02-29 | Mitsubishi Chemical Corporation | Process for producing high-purity erythritol crystal |
KR100434518B1 (ko) * | 2002-03-20 | 2004-06-05 | 주식회사 바이오앤진 | 신균주 슈도지마 츄쿠밴시스에 의한 에리스리톨의 발효제조방법 |
KR100541578B1 (ko) * | 1997-12-04 | 2006-04-06 | 미쓰비시 가가꾸 가부시키가이샤 | 에리트리톨 생산방법 |
Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS6131091A (ja) * | 1984-07-25 | 1986-02-13 | Norin Suisansyo Shokuhin Sogo Kenkyusho | 発酵によるポリオ−ル類の製造方法 |
-
1987
- 1987-02-06 JP JP62024716A patent/JPS63196298A/ja active Granted
Patent Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS6131091A (ja) * | 1984-07-25 | 1986-02-13 | Norin Suisansyo Shokuhin Sogo Kenkyusho | 発酵によるポリオ−ル類の製造方法 |
Cited By (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
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WO1998044089A1 (fr) * | 1997-04-02 | 1998-10-08 | Mitsubishi Chemical Corporation | Micro-organisme generateur d'erythritol et son procede d'obtention |
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KR100541578B1 (ko) * | 1997-12-04 | 2006-04-06 | 미쓰비시 가가꾸 가부시키가이샤 | 에리트리톨 생산방법 |
WO1999033953A1 (fr) * | 1997-12-25 | 1999-07-08 | Nikken Chemicals Co., Ltd. | Nouveau micro-organisme et procede de production de polyols au moyen de celui-ci |
US6214605B1 (en) | 1997-12-25 | 2001-04-10 | Nikken Chemicals Co., Ltd. | Microorganism and a process for producing polyols by using the same |
KR100434518B1 (ko) * | 2002-03-20 | 2004-06-05 | 주식회사 바이오앤진 | 신균주 슈도지마 츄쿠밴시스에 의한 에리스리톨의 발효제조방법 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPH0411189B2 (ja) | 1992-02-27 |
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