JPS62258326A - ボルデテラ属細菌の蛋白質抗原の精製方法 - Google Patents
ボルデテラ属細菌の蛋白質抗原の精製方法Info
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- C07K14/235—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from bacteria from Bordetella (G)
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
本発明は無細胞ワクチンを得ることを目的とするボルデ
テラ属細菌の蛋白質抗原の精製方法の改良に関する。
テラ属細菌の蛋白質抗原の精製方法の改良に関する。
ボルデテラ属細菌たとえば百日咳菌(ボルデテラ・パー
タッシス Bordetella partusis)
、パラ百日咳菌(ボルデテラ・バラパータッシスBor
datella parapertusis)及び気管
支敗血症菌(ボルデテラ・ブロンキセブチカ Bord
tellabronchiseptica)の培養によ
り、F−HA (線状血液凝集素 Filamento
us Hemagglutinin)を産生じ得ること
は公知である二また百日咳菌の培養により蛋白質外毒素
:パータッシス毒素(LPF又はLPF−HA(白血球
増多症促進因千−血液凝集素:Leukocytosi
s Promoting Factor Hamag
glutinin)とも呼ばれる〕も生ずる。
タッシス Bordetella partusis)
、パラ百日咳菌(ボルデテラ・バラパータッシスBor
datella parapertusis)及び気管
支敗血症菌(ボルデテラ・ブロンキセブチカ Bord
tellabronchiseptica)の培養によ
り、F−HA (線状血液凝集素 Filamento
us Hemagglutinin)を産生じ得ること
は公知である二また百日咳菌の培養により蛋白質外毒素
:パータッシス毒素(LPF又はLPF−HA(白血球
増多症促進因千−血液凝集素:Leukocytosi
s Promoting Factor Hamag
glutinin)とも呼ばれる〕も生ずる。
ボルデテラ属細菌は公知の病原菌である。とくに百日咳
菌は百日咳の病原菌であることまたその工業的培養が百
日咳ワクチンの産生に利用されていることは公知である
。
菌は百日咳の病原菌であることまたその工業的培養が百
日咳ワクチンの産生に利用されていることは公知である
。
また、パータッシス毒素抗原及びF−HAが無細胞の百
日咳ワクチンの組成物中で有利に使用得ることも公知で
ある。
日咳ワクチンの組成物中で有利に使用得ることも公知で
ある。
パータッシス毒素の精製は一般にアフィニティー・クロ
マ・トゲラフイーによる精製工程を包含している。
マ・トゲラフイーによる精製工程を包含している。
アフィニティー・クロマトグラフィーの担体からのパー
タッシス毒素の溶出は、一般に、高濃度の塩及び/又は
カオトロピック薬剤又は変性剤たとえば塩化マグネシウ
ム、尿素、チオシアン酸ナトリウム又はカリウム、グア
ニジン塩酸塩などを含んでいるFi衝液によって行なわ
れる。しかしながら、これらの物質の存在下において得
られた有効成分はそのままではワクチンの調製に利用で
きない。従って毒素含有溶出液について、更にカオトロ
ピック薬剤の完全な除去及び/又は塩濃度の低減を目的
とする補足的工程を行わなければならない。この補足的
工程はたとえば徹底的な透析又はゲルによる濾過を行う
ことからなる(たとえば米国特許第4500639号明
細書及び欧州特許出願第0140386号明細書参照)
。
タッシス毒素の溶出は、一般に、高濃度の塩及び/又は
カオトロピック薬剤又は変性剤たとえば塩化マグネシウ
ム、尿素、チオシアン酸ナトリウム又はカリウム、グア
ニジン塩酸塩などを含んでいるFi衝液によって行なわ
れる。しかしながら、これらの物質の存在下において得
られた有効成分はそのままではワクチンの調製に利用で
きない。従って毒素含有溶出液について、更にカオトロ
ピック薬剤の完全な除去及び/又は塩濃度の低減を目的
とする補足的工程を行わなければならない。この補足的
工程はたとえば徹底的な透析又はゲルによる濾過を行う
ことからなる(たとえば米国特許第4500639号明
細書及び欧州特許出願第0140386号明細書参照)
。
そのほかにこれらの溶出方法の利用には一般に有効成分
の部分的かつ非可逆的な不溶化が伴なう。
の部分的かつ非可逆的な不溶化が伴なう。
本発明は特殊な緩衝溶液を利用するパータッシス毒素の
精製に関する。この特殊な緩衝液の利用により、アフィ
ニティー・クロマトグラフィー担体からパータッシス毒
素を溶出させ得る。該緩衝液を利用することにより単一
の工程でかつ高い収率でパータッシス毒素を溶出させ、
従ってまた精製し得る。更に、上記111衝液に界面活
性剤を添加したものを利用することにより、パータッシ
ス毒素及びF−)IAの損失を伴うことなしに、これら
を可溶化ができる。この緩衝液はまたパータッシス毒素
の無毒化(detoxification)法において
溶媒の役割を果し、アナトキシンを溶液中に維持するこ
ともできる。
精製に関する。この特殊な緩衝液の利用により、アフィ
ニティー・クロマトグラフィー担体からパータッシス毒
素を溶出させ得る。該緩衝液を利用することにより単一
の工程でかつ高い収率でパータッシス毒素を溶出させ、
従ってまた精製し得る。更に、上記111衝液に界面活
性剤を添加したものを利用することにより、パータッシ
ス毒素及びF−)IAの損失を伴うことなしに、これら
を可溶化ができる。この緩衝液はまたパータッシス毒素
の無毒化(detoxification)法において
溶媒の役割を果し、アナトキシンを溶液中に維持するこ
ともできる。
そのほか、通常用いられ゛る緩衝液とは異なって、本発
明の特殊な緩衝液はワクチン製剤と両立できる。換言す
ればこの緩衝液中に溶解している抗原は直接にワクチン
調製に利用できる。
明の特殊な緩衝液はワクチン製剤と両立できる。換言す
ればこの緩衝液中に溶解している抗原は直接にワクチン
調製に利用できる。
従って本発明はボルデテラ属細菌のパータッシス毒素及
びF−HAの精製、可溶化及び/又は無毒化するにあた
り、pH8,3乃至11.6の炭酸塩緩衝液を使用する
方法を提供することを目的とする。この種の緩衝液は従
来の方法、たとえばアルカリ金属(アルカリ金属はナト
リウム又はカリウムである)の重炭酸塩(炭酸水素塩)
と炭酸塩との混合物の水溶液を調製するか又はアルカリ
金属(ナトリウム又はカリウム)水酸化物の水溶液とア
ルカリ金属炭酸水素塩の水溶液との混合により調製し得
る。
びF−HAの精製、可溶化及び/又は無毒化するにあた
り、pH8,3乃至11.6の炭酸塩緩衝液を使用する
方法を提供することを目的とする。この種の緩衝液は従
来の方法、たとえばアルカリ金属(アルカリ金属はナト
リウム又はカリウムである)の重炭酸塩(炭酸水素塩)
と炭酸塩との混合物の水溶液を調製するか又はアルカリ
金属(ナトリウム又はカリウム)水酸化物の水溶液とア
ルカリ金属炭酸水素塩の水溶液との混合により調製し得
る。
炭酸塩緩衝液のモル濃度は0.025〜0.5Mである
こと、またpHは8.3乃至11.6であることが望ま
しい。
こと、またpHは8.3乃至11.6であることが望ま
しい。
本発明により用いられる炭酸塩緩衝液はそのほか界面活
性剤たとえばトウィーン80 (Tween801ポリ
オキシエチレン(20)モノオレイン酸ソルビタンの商
品名)のごとき非イオン系界面活性剤を含むことができ
る。
性剤たとえばトウィーン80 (Tween801ポリ
オキシエチレン(20)モノオレイン酸ソルビタンの商
品名)のごとき非イオン系界面活性剤を含むことができ
る。
一般的には、沈澱又は凍結乾燥品の形をしている生成物
(パータッシス毒素又はF−HA)を可溶化するために
は、必要ならば、界面活性剤を含んでいる緩衝液を用い
ることが望ましい。その場合、緩衝液中の界面活性剤の
濃度は通常、1重量%未満、多くの場合、0.5重量%
未満である。パータッシス毒素の溶出に関しては界面活
性剤を含有していない炭酸塩緩衝液を用いることが望ま
しい。
(パータッシス毒素又はF−HA)を可溶化するために
は、必要ならば、界面活性剤を含んでいる緩衝液を用い
ることが望ましい。その場合、緩衝液中の界面活性剤の
濃度は通常、1重量%未満、多くの場合、0.5重量%
未満である。パータッシス毒素の溶出に関しては界面活
性剤を含有していない炭酸塩緩衝液を用いることが望ま
しい。
本発明に従って炭酸塩緩衝液を使用することにより以下
に述べるとおりの利点が得られる。
に述べるとおりの利点が得られる。
炭酸塩Ni街液はアフィニティー・クロマトグラフィー
担体からパータッシス毒素を溶出させることができる。
担体からパータッシス毒素を溶出させることができる。
クロマトグラフィーにかける液体はボルデテラ属細菌培
地の上澄液でもパータッシス毒素が冨化されているフラ
クションでもよい。
地の上澄液でもパータッシス毒素が冨化されているフラ
クションでもよい。
無細胞ワクチンにおいてパータッシス毒素を使用する場
合には、予め無毒化処理たとえばホルモール又はグルタ
ルアルデヒドを用いる処理を行う必要があることは公知
である。無毒化はとくにマウスのリンパ球増多症導入の
効果、ヒスタミンに対する鋭敏化、へDP−リボシルト
ランスフェラーゼ活性、CIO(チャイニースハムスタ
卵巣)細胞に及ぼす細胞病原効果などを排除することを
目的とする。
合には、予め無毒化処理たとえばホルモール又はグルタ
ルアルデヒドを用いる処理を行う必要があることは公知
である。無毒化はとくにマウスのリンパ球増多症導入の
効果、ヒスタミンに対する鋭敏化、へDP−リボシルト
ランスフェラーゼ活性、CIO(チャイニースハムスタ
卵巣)細胞に及ぼす細胞病原効果などを排除することを
目的とする。
この種の無毒化たとえばホルモールによる無毒化は毒素
を不溶化し、これが均質な精製された調剤の取得を困難
にする(たとえば米国特許第4455297号明細書参
照)。
を不溶化し、これが均質な精製された調剤の取得を困難
にする(たとえば米国特許第4455297号明細書参
照)。
炭酸塩緩衝液、場合により界面活性剤を添加したものを
使用することにより、溶液中での無毒化処理の実施及び
得られたアナトキシンを溶液中に維持することが可能に
なる。
使用することにより、溶液中での無毒化処理の実施及び
得られたアナトキシンを溶液中に維持することが可能に
なる。
最後に前述のとおりアナト・キシン・パータッシスの炭
酸塩緩衝液中の溶液は、直接、無細胞ワクチンの調製に
使用できる。
酸塩緩衝液中の溶液は、直接、無細胞ワクチンの調製に
使用できる。
更に、炭酸塩11衝液(場合によってはたとえばトウィ
ーン80のごとき非イオン系界面活性剤を添加したもの
)はF−HAを溶液とするのに有利に作用する。
ーン80のごとき非イオン系界面活性剤を添加したもの
)はF−HAを溶液とするのに有利に作用する。
本発明はまたボルデテラ属細菌の培地中で生成した蛋白
質抗原の精製方法も目的とする;この方法は培地上澄液
又はパータッシス毒素が冨化されているフラクションを
、パータッシス毒素を固定し得るクロマトグラフィー固
体担体と接触させ次に毒素を該固体担体からpH 8.
3乃至11.6の炭酸塩緩衝液によって溶出し、所望な
らば溶出液に無毒化処理を施こすことを特徴とする特 殊に実施形式においては、pHを6乃至8望ましくは7
に調節した後に、培地上澄液を又はパータッシス毒素が
冨化されているフラクションを、パータッシス毒素に対
して親和力のあるグリコプロティンとくに、アシアロ−
グリコプロティン(たとえばアシアロフェチュイン)を
固体クロマトグラフィー担体に結合したものと接触させ
る。
質抗原の精製方法も目的とする;この方法は培地上澄液
又はパータッシス毒素が冨化されているフラクションを
、パータッシス毒素を固定し得るクロマトグラフィー固
体担体と接触させ次に毒素を該固体担体からpH 8.
3乃至11.6の炭酸塩緩衝液によって溶出し、所望な
らば溶出液に無毒化処理を施こすことを特徴とする特 殊に実施形式においては、pHを6乃至8望ましくは7
に調節した後に、培地上澄液を又はパータッシス毒素が
冨化されているフラクションを、パータッシス毒素に対
して親和力のあるグリコプロティンとくに、アシアロ−
グリコプロティン(たとえばアシアロフェチュイン)を
固体クロマトグラフィー担体に結合したものと接触させ
る。
使用するクロマトグラフィー担体の量は出発溶液の容積
及び/又は精製すべきフラクション中のパータッシス毒
素の濃度によって変動する。接触は2乃至30℃のカラ
ム内温度において行なわれる。
及び/又は精製すべきフラクション中のパータッシス毒
素の濃度によって変動する。接触は2乃至30℃のカラ
ム内温度において行なわれる。
パータッシス毒素に対して親和力のあるグリコプロティ
ンは公知である:たとえばハブトグロヒ:ン、フェチュ
インなどがあげられる。しかしながら、アフィニティー
・クロマトグラフィーを予め脱シアル酸(desial
ylation)処理を施こしたこれらの蛋白質に行な
うことが好ましい;この脱シアル酸処理は公知の方法に
従って穏和な酸性加水゛分解によって行なわれる(たと
えば5piroほか、J、Biol chem、197
4,2旦、5704−5717参照)。
ンは公知である:たとえばハブトグロヒ:ン、フェチュ
インなどがあげられる。しかしながら、アフィニティー
・クロマトグラフィーを予め脱シアル酸(desial
ylation)処理を施こしたこれらの蛋白質に行な
うことが好ましい;この脱シアル酸処理は公知の方法に
従って穏和な酸性加水゛分解によって行なわれる(たと
えば5piroほか、J、Biol chem、197
4,2旦、5704−5717参照)。
グリコプロティン又は脱シアル酸処理したグリコプロテ
ィン(アシアログリコプロティン)の結合(coup
1 ing)は公知の方法に従って行なうことかできる
。担体はアフィニティー・クロマトグラフィーにおいて
通常用いられる、従来の任意の固体担体であることがで
きる。
ィン(アシアログリコプロティン)の結合(coup
1 ing)は公知の方法に従って行なうことかできる
。担体はアフィニティー・クロマトグラフィーにおいて
通常用いられる、従来の任意の固体担体であることがで
きる。
担体はとくにセルロース説導体、架橋デキストラン、ア
ガロース・ゲル又はセファロース4B(Sepharo
se −48)などの多糖類(polyosidiqu
e)訪導体又はIBF社(Industrie Bio
logique Fran −caise)から市販の
トリスアクリル(Trisacryl)などのアクリル
誘導体基質の担体である。
ガロース・ゲル又はセファロース4B(Sepharo
se −48)などの多糖類(polyosidiqu
e)訪導体又はIBF社(Industrie Bio
logique Fran −caise)から市販の
トリスアクリル(Trisacryl)などのアクリル
誘導体基質の担体である。
グリコプロティンはたとえばCNBrで活性化された担
体を用いて担体上に固定できる。
体を用いて担体上に固定できる。
担体はまた架橋DEAEデキストランで被覆した多孔質
シリカ担体であり得る。たとえばDEAEデキストラン
で被覆したスフェロシル(Spherosil)が使用
できる。
シリカ担体であり得る。たとえばDEAEデキストラン
で被覆したスフェロシル(Spherosil)が使用
できる。
本発明の方法において用いられる炭酸塩M液液はモル濃
度0.025乃至0.5 M、 pH8,3乃至11.
6の緩衝液であることが望ましい。
度0.025乃至0.5 M、 pH8,3乃至11.
6の緩衝液であることが望ましい。
溶出後、パータッシス毒素はたとえば飽和の50−13
0%の硫酸アンモニウムにより沈澱させるか又は直接に
無毒化工程で処理することができる。
0%の硫酸アンモニウムにより沈澱させるか又は直接に
無毒化工程で処理することができる。
かくして精製した毒素は硫酸アンモモニウムを用いて生
成させた沈澱又は凍結乾燥品の形で保存できる。沈澱又
は凍結乾燥品はトウィーン80のととぎ界面活性剤を約
0.05−0.5%の最終濃度で含有し得る、pH8,
3乃至11.6のかつモル濃度が25mMを超える炭酸
塩緩衝液、望ましくはトウィーン80を0.05%含有
する、pH9,8,100mMの炭酸塩m衝液(以下緩
衝液CTWという)に溶解させることができる。
成させた沈澱又は凍結乾燥品の形で保存できる。沈澱又
は凍結乾燥品はトウィーン80のととぎ界面活性剤を約
0.05−0.5%の最終濃度で含有し得る、pH8,
3乃至11.6のかつモル濃度が25mMを超える炭酸
塩緩衝液、望ましくはトウィーン80を0.05%含有
する、pH9,8,100mMの炭酸塩m衝液(以下緩
衝液CTWという)に溶解させることができる。
残存硫酸アンモニウム又は凍結乾燥担体を除去する目的
で、温度2乃至30℃の数倍の容積の同じl!街衝液対
して、溶液の透析を4乃至72時間の持続時間の間行な
う。緩衝液の組成により完全な可溶化ができる。溶液は
孔径0.22戸の膜で濾過できる。これにより、無菌環
境中での無毒化工程又は有効成分の完全な可溶化が必要
であるか又はこれを容易にする化学的又は生物学的実験
の実施を行うことを可能にするという利点が得られる。
で、温度2乃至30℃の数倍の容積の同じl!街衝液対
して、溶液の透析を4乃至72時間の持続時間の間行な
う。緩衝液の組成により完全な可溶化ができる。溶液は
孔径0.22戸の膜で濾過できる。これにより、無菌環
境中での無毒化工程又は有効成分の完全な可溶化が必要
であるか又はこれを容易にする化学的又は生物学的実験
の実施を行うことを可能にするという利点が得られる。
パータッシス毒素の無毒化が行なわれる場合には、一般
に毒素について用いられる方法と同様にして行なわれる
。本発明の別の態様によれば、無毒化の方法は上述した
とおりの炭酸塩緩衝液であって、望ましくは、毒素の可
溶化と無毒化工程の実施中、該毒素を溶液中に維持する
こととに有利に作用する界面活性剤を含有する炭酸塩緩
衝液中において行なわれる。かくして無毒化工程の収率
は100%に近いものとなる。用いられる無毒化剤はた
とえばホルモール又はグルタルアルデヒドである。
に毒素について用いられる方法と同様にして行なわれる
。本発明の別の態様によれば、無毒化の方法は上述した
とおりの炭酸塩緩衝液であって、望ましくは、毒素の可
溶化と無毒化工程の実施中、該毒素を溶液中に維持する
こととに有利に作用する界面活性剤を含有する炭酸塩緩
衝液中において行なわれる。かくして無毒化工程の収率
は100%に近いものとなる。用いられる無毒化剤はた
とえばホルモール又はグルタルアルデヒドである。
たとえば温度4乃至40℃において行なわれ得る無毒化
の後に、痕跡の無毒化剤の全てを除去する目的で、アナ
トキシン含有溶液を緩衝液CTWに対して透析にかける
ことができる、かくして得られたアナトキシンは溶液中
に残留し、孔径0,22賜の滅菌膜で濾過でき、かくし
てワクチン製剤に包含させることができるものとなる。
の後に、痕跡の無毒化剤の全てを除去する目的で、アナ
トキシン含有溶液を緩衝液CTWに対して透析にかける
ことができる、かくして得られたアナトキシンは溶液中
に残留し、孔径0,22賜の滅菌膜で濾過でき、かくし
てワクチン製剤に包含させることができるものとなる。
上記のとおり、本発明において使用するための炭酸塩緩
衝液はボルデテラ属細菌の培地上澄液から単離される別
の蛋白質: F−HAの完全な可溶化を可能にする。F
−HAの可溶化工程における該緩衝液の使用により、パ
ータッシス毒素の場合について述べた種々の利点、すな
わちとくに有効成分を損失することなしに0.02戸膜
での滅菌濾過工程に着手し得るという利点が得られる。
衝液はボルデテラ属細菌の培地上澄液から単離される別
の蛋白質: F−HAの完全な可溶化を可能にする。F
−HAの可溶化工程における該緩衝液の使用により、パ
ータッシス毒素の場合について述べた種々の利点、すな
わちとくに有効成分を損失することなしに0.02戸膜
での滅菌濾過工程に着手し得るという利点が得られる。
この形でのF−HAは直接にワクチン剤中に包含させる
ことができる。
ことができる。
たとえば硫酸アンモニムによる沈澱の形で保存されたF
−HAはパータッシス毒素について前述した方法に従っ
て再溶解される。沈澱を遠心分離し、緩衝?1!icr
wに溶解し、室温又は4−8℃で4乃至72時間透析す
る。緩衝液CTWは完全にF−HAを可溶化できる。
−HAはパータッシス毒素について前述した方法に従っ
て再溶解される。沈澱を遠心分離し、緩衝?1!icr
wに溶解し、室温又は4−8℃で4乃至72時間透析す
る。緩衝液CTWは完全にF−HAを可溶化できる。
本発明はまたアナトキシン パータッシス及びF−)I
Aから選ばれた有効成分の少なくとも1種を含みかつ該
有効成分が上記のとおりの炭酸塩緩衝液とくに緩衝液C
TWのごとき、赤面活性剤を含有する炭酸塩緩衝液中に
溶解されている無細胞百日咳ワクチンにも関する。
Aから選ばれた有効成分の少なくとも1種を含みかつ該
有効成分が上記のとおりの炭酸塩緩衝液とくに緩衝液C
TWのごとき、赤面活性剤を含有する炭酸塩緩衝液中に
溶解されている無細胞百日咳ワクチンにも関する。
アナトキシン パータッシス及びF−HAは炭酸塩緩衝
液中の溶液として直接ワクチン製剤中に包含させること
ができる。ワクチンはアナトキシンを単独で又はアナト
キシンとF−HAとの所望の比率の混合物として含有で
きる。ワクチンの最終pH値を7乃至8に修正する目的
で緩衝生理学的食塩水(緩衝液PBS)若干量を濃酸溶
液で酸性としたものを添加する。添加量は製剤中に存在
している炭酸塩緩衝液の量及びモル濃度により変動する
。
液中の溶液として直接ワクチン製剤中に包含させること
ができる。ワクチンはアナトキシンを単独で又はアナト
キシンとF−HAとの所望の比率の混合物として含有で
きる。ワクチンの最終pH値を7乃至8に修正する目的
で緩衝生理学的食塩水(緩衝液PBS)若干量を濃酸溶
液で酸性としたものを添加する。添加量は製剤中に存在
している炭酸塩緩衝液の量及びモル濃度により変動する
。
その場合、有効成分の濃度は必要量の緩衝液TBSを添
加して所望値に修正する。この段階において混合物に他
の抗原(ジフテリア抗原、破傷風抗原、小児麻痺抗原、
血有病抗原など)、メチルチオラート又はフェノキシエ
タノールのごとき防腐剤及びアルミナゲル又は燐酸カル
シウムのごとき添加物を加えることができる。
加して所望値に修正する。この段階において混合物に他
の抗原(ジフテリア抗原、破傷風抗原、小児麻痺抗原、
血有病抗原など)、メチルチオラート又はフェノキシエ
タノールのごとき防腐剤及びアルミナゲル又は燐酸カル
シウムのごとき添加物を加えることができる。
以下に本発明の実施例を示す。
実施例1
アフィニティー・クロマトグラフィーによるパータッシ
ス毒素の精製 a) パータッシス毒素のアフィニティー担体への吸着 30j2醗酵槽中で培養した百日咳菌フェーズIの細菌
稈屑液の遠心分離及び?Q縮後に得られたパータッシス
毒素富化フラクションを、流量6 m12/ cnf
/時間で、アシアロフェチュインと結合させた5phe
pharore 4 Bクロマトグラフィー担体120
m1l収容している直径4cmのカラム上へ通送した。
ス毒素の精製 a) パータッシス毒素のアフィニティー担体への吸着 30j2醗酵槽中で培養した百日咳菌フェーズIの細菌
稈屑液の遠心分離及び?Q縮後に得られたパータッシス
毒素富化フラクションを、流量6 m12/ cnf
/時間で、アシアロフェチュインと結合させた5phe
pharore 4 Bクロマトグラフィー担体120
m1l収容している直径4cmのカラム上へ通送した。
5epharose 4 Bは下記のようにしてアジア
はフェチュインと結合した: CNBrで活性化した5epharose 4 B (
Pharmacia社)30gを1mM H(、f!
、6f!、中で約15分間膨潤させた。ゲルは続いて1
mM HCfL 6JZで3回洗浄した。アシアロ
フェチュイン1mg/mu、NaHCO30,I M及
びNaC10,5Mを含んでいる溶液400 +n51
をゲルに添加した。
はフェチュインと結合した: CNBrで活性化した5epharose 4 B (
Pharmacia社)30gを1mM H(、f!
、6f!、中で約15分間膨潤させた。ゲルは続いて1
mM HCfL 6JZで3回洗浄した。アシアロ
フェチュイン1mg/mu、NaHCO30,I M及
びNaC10,5Mを含んでいる溶液400 +n51
をゲルに添加した。
この混合物を+4℃において穏和に攪拌しながら1夜間
反応させた。エタノールアミン5M溶液(pH8,0)
125mMを混合物に加えた。室温に4時間保った
後、ゲルを順次、NaCIL IMを含有する0、1M
酢酸ナトリウム緩衝液(pH4,0)s o o +n
R1次にNaCu IMを含有するsomuトリス−
HCJ2緩衝?fL(pH7,5) 500 muで
洗浄した。この洗浄サイクルを3回反復した。
反応させた。エタノールアミン5M溶液(pH8,0)
125mMを混合物に加えた。室温に4時間保った
後、ゲルを順次、NaCIL IMを含有する0、1M
酢酸ナトリウム緩衝液(pH4,0)s o o +n
R1次にNaCu IMを含有するsomuトリス−
HCJ2緩衝?fL(pH7,5) 500 muで
洗浄した。この洗浄サイクルを3回反復した。
引続いてゲルを 1/10000 (w/v)の7震度
のマージオレート(Merthiolate)のごとき
防腐剤の存在下で50mMトリス−HCf1緩衝ン夜(
pH7,5) 500叔で3回洗浄した。
のマージオレート(Merthiolate)のごとき
防腐剤の存在下で50mMトリス−HCf1緩衝ン夜(
pH7,5) 500叔で3回洗浄した。
アフィニティー・クロマトグラフィーにおいて結合剤と
して用いるアシアルフェチュインは下記のようにして調
製した: フェチュイン(Sigma社フェチュインIII型)の
水溶液をO,[]5N H2504により80℃にお
いて1時間加水分解した。加水分解後、遊離シアル酸を
除去する目的で溶液を複数の蒸溜水浴に対して+4℃に
おいて24時間透析した。アシアロフェチュイン溶液は
排除限界が(Seuil de coupure)が1
0000に等しい膜を備えた限外濾過により濃縮するこ
とができた。
して用いるアシアルフェチュインは下記のようにして調
製した: フェチュイン(Sigma社フェチュインIII型)の
水溶液をO,[]5N H2504により80℃にお
いて1時間加水分解した。加水分解後、遊離シアル酸を
除去する目的で溶液を複数の蒸溜水浴に対して+4℃に
おいて24時間透析した。アシアロフェチュイン溶液は
排除限界が(Seuil de coupure)が1
0000に等しい膜を備えた限外濾過により濃縮するこ
とができた。
シアル酸の除去は加水分解の前又は後の蛋白質上のシア
ル酸の特殊比色定量により検査した。
ル酸の特殊比色定量により検査した。
b) パータッシス毒素の溶出
ゲルをカラムの2倍の容積の50mMトリス−111緩
衝液(p)l 7.5)を用いて、すなわち278nm
の紫外線吸収が全く消失するまで洗浄し、次にカラムと
同容積のIM NaCρ含有の50mM1−リスーH
Cl緩;j液(pH7,5)で洗浄した。パータッシス
毒素は100mM炭酸塩M街液(pH9,6)4oom
Rで溶出した。
衝液(p)l 7.5)を用いて、すなわち278nm
の紫外線吸収が全く消失するまで洗浄し、次にカラムと
同容積のIM NaCρ含有の50mM1−リスーH
Cl緩;j液(pH7,5)で洗浄した。パータッシス
毒素は100mM炭酸塩M街液(pH9,6)4oom
Rで溶出した。
炭酸塩緩衝液は下記のようにして調製した:0.1
M NaHCO3溶(夜5 oamft に(1,I
M Na2 CQ3溶ン夜を最終pH9,6と
なるまで添カロした: Na2 CO3O3溶液約25
0奢Aえることになる。
M NaHCO3溶(夜5 oamft に(1,I
M Na2 CQ3溶ン夜を最終pH9,6と
なるまで添カロした: Na2 CO3O3溶液約25
0奢Aえることになる。
かくして得られた炭酸塩緩衝液を孔径0.22g゛mの
膜で濾過し、+4℃で保存する。
膜で濾過し、+4℃で保存する。
カラム出口で集めたフラクションの光学的濃度及び赤血
球凝集活性を測定した。
球凝集活性を測定した。
有効成分含有フラクションすなわちコレステロールによ
り抑止されない強い赤血球凝集活性を有するものを集め
た。
り抑止されない強い赤血球凝集活性を有するものを集め
た。
パータッシス毒素は引き続いて最終濃度が飽和の70%
に相当する硫酸アンモニウムにより沈澱させた。
に相当する硫酸アンモニウムにより沈澱させた。
かくして精製したパータッシス毒素は強いリンパ球増多
症を誘発し、マウス1匹あたり0.04μgの用薬量で
マウスCFWをヒスタミンに対して鋭敏化させた。C)
IQ細胞上にクラスター生成を誘発する毒素の性能は6
5000乃至2e000ocPu、/μg程度の比活性
により特徴づけられる。
症を誘発し、マウス1匹あたり0.04μgの用薬量で
マウスCFWをヒスタミンに対して鋭敏化させた。C)
IQ細胞上にクラスター生成を誘発する毒素の性能は6
5000乃至2e000ocPu、/μg程度の比活性
により特徴づけられる。
物理−化学的検査及び生物学活性(偶発的汚染物質、D
NA 、 RNA 、糖類の比色法定量;内毒素比率の
定量:SDS媒体中又は酸性媒体中の電気泳動なと)の
結果は、高度に精製された有効成分を含んでいる均質な
最終製剤に有利であることを示した。
NA 、 RNA 、糖類の比色法定量;内毒素比率の
定量:SDS媒体中又は酸性媒体中の電気泳動なと)の
結果は、高度に精製された有効成分を含んでいる均質な
最終製剤に有利であることを示した。
初めの培地上澄液中及び最終沈澱中のパータッシス毒素
含有量の分析結果は90%を超える精製収率を示した。
含有量の分析結果は90%を超える精製収率を示した。
哀AJユ
種々の緩衝液中のパータッシス毒素の溶解及びその後の
滅菌濾過の比較試験。
滅菌濾過の比較試験。
硫酸アンモニウムによる沈澱の形のパータッシス毒素を
2.6mg/mu含有する懸濁液1.2+nRを採取し
、10000 x gで10分間遠心分離した。上澄液
を除き、残漬を&1衝液CTW4III51に溶解し、
同じ緩衝液に対して透析した。毒素溶液を孔径0.22
戸の膜で濾過した。濾過の前及び後の溶液の蛋白質濃厚
をロウリー(Lowry)法の従った定量法により測定
した。測定結果は濾過収率(濾過後の毒素の濃度/濾過
前の毒素の濃度)X100;又は緩衝液CTW中の濾過
収率を任意に100%としこれに対して算出した相対的
百分率で表わした。
2.6mg/mu含有する懸濁液1.2+nRを採取し
、10000 x gで10分間遠心分離した。上澄液
を除き、残漬を&1衝液CTW4III51に溶解し、
同じ緩衝液に対して透析した。毒素溶液を孔径0.22
戸の膜で濾過した。濾過の前及び後の溶液の蛋白質濃厚
をロウリー(Lowry)法の従った定量法により測定
した。測定結果は濾過収率(濾過後の毒素の濃度/濾過
前の毒素の濃度)X100;又は緩衝液CTW中の濾過
収率を任意に100%としこれに対して算出した相対的
百分率で表わした。
結果を下表に示す:
表 !
各種iJt衝液中のパータッシス毒素の濾過収率の比較
試験 部品名 医1己1ユ パータッシス毒素の無毒化の例 a) ホルモールによる無毒ヒ 硫酸アンモニウムによる沈澱の形のパータッシス毒素5
mg/m51の懸濁液2m51(すなわちパータッシス
毒素10mg)を10000 x gで15分間遠心分
離した。上澄液を除き、残漬をi液液cTwtomRに
溶解した。
試験 部品名 医1己1ユ パータッシス毒素の無毒化の例 a) ホルモールによる無毒ヒ 硫酸アンモニウムによる沈澱の形のパータッシス毒素5
mg/m51の懸濁液2m51(すなわちパータッシス
毒素10mg)を10000 x gで15分間遠心分
離した。上澄液を除き、残漬をi液液cTwtomRに
溶解した。
溶液を緩衝液(:TW2Ilに対して+4℃において一
夜透析した。透析の終りに溶液を孔径0.22−の膜で
濾過した。濾液についてLowryの方法に従って蛋白
質定量を行ない緩衝液CTWを加えて蛋白質濃度を0
、4 mg/m1llとした。o、4mg/r+dJの
毒素溶液23IIIQに、緩衝液CTW中のりシンの1
M溶液1.22−及びホルモールの37%溶液0.26
5 muを加えた。たとえば21時間4℃に保持した。
夜透析した。透析の終りに溶液を孔径0.22−の膜で
濾過した。濾液についてLowryの方法に従って蛋白
質定量を行ない緩衝液CTWを加えて蛋白質濃度を0
、4 mg/m1llとした。o、4mg/r+dJの
毒素溶液23IIIQに、緩衝液CTW中のりシンの1
M溶液1.22−及びホルモールの37%溶液0.26
5 muを加えた。たとえば21時間4℃に保持した。
引続いて痕跡のホルモールの全てを除去する目的で反応
混合物を緩衝液CTWに対して、+4℃において48時
間透析した。引続いてアナトキシンを孔径0.22戸の
膜で滅菌濾過した。この形でアナトキシン・パータッシ
スをワクチン製剤中に包含させることができる。
混合物を緩衝液CTWに対して、+4℃において48時
間透析した。引続いてアナトキシンを孔径0.22戸の
膜で滅菌濾過した。この形でアナトキシン・パータッシ
スをワクチン製剤中に包含させることができる。
b) グルタルアルデヒドによる無毒化緩衝(W、CT
W中のパータッシス毒素500 B/ muの溶液15
m1lを前述のとおり調製した。グルタルアルデヒド0
.10%を含む緩衝液CTWSm文を毒素溶液に加えた
。
W中のパータッシス毒素500 B/ muの溶液15
m1lを前述のとおり調製した。グルタルアルデヒド0
.10%を含む緩衝液CTWSm文を毒素溶液に加えた
。
無毒化は+4℃乃至40℃の種々の温度で実施できる;
グルタルアルデヒドの存在下における毒素の保温時間は
温度によって変動する。たとえば混合物を+4℃に48
時間保持することができる。
グルタルアルデヒドの存在下における毒素の保温時間は
温度によって変動する。たとえば混合物を+4℃に48
時間保持することができる。
保温後に緩衝液CTW中のりシンのIM溶液180μm
を混合物に加え溶液を緩衝液CTWに対して4℃におい
て48時間透析した。透析後にアナトキシンパータッシ
スを孔径0.22μmの膜で濾過した。この形でアナト
キシンをワクチン製剤中に配合することができる。
を混合物に加え溶液を緩衝液CTWに対して4℃におい
て48時間透析した。透析後にアナトキシンパータッシ
スを孔径0.22μmの膜で濾過した。この形でアナト
キシンをワクチン製剤中に配合することができる。
夫五■ユ
炭酸塩緩衝液によるF−HAの可溶化の例この実施例で
使用するF−HAは、5ATOY−、C0WELJ、J
、、5ATO)I、BUR5TYN D、G、及びMA
NCLARK C,R,。
使用するF−HAは、5ATOY−、C0WELJ、J
、、5ATO)I、BUR5TYN D、G、及びMA
NCLARK C,R,。
“5eparation and Purificat
ion of the Hemagg−1utinin
s from Bordella pertussis
” 、Infect。
ion of the Hemagg−1utinin
s from Bordella pertussis
” 、Infect。
and Immun、、 1983. 4 f、
1. 313−320に記載の方法に従って調製した。
1. 313−320に記載の方法に従って調製した。
F−HAは飽和の70%の硫酸アンモニウムによる沈澱
の形で保存した。
の形で保存した。
a)硫酸アンモニウムによる沈澱の形のF−HAl、2
mg/mJlの懸濁液25m9を30000 x gで
20分間遠心分離した。上澄液を除き、残渣を緩衝液C
TW30m文に溶解した。
mg/mJlの懸濁液25m9を30000 x gで
20分間遠心分離した。上澄液を除き、残渣を緩衝液C
TW30m文に溶解した。
溶液を緩衝液CTWに対して+4℃において1夜間透析
した。溶液を孔径0.22−の膜で濾過した。
した。溶液を孔径0.22−の膜で濾過した。
F−)IAはこの形でワクチン製剤に配合することがで
きる。
きる。
b) 孔径0.22戸の膜での滅菌濾過収率の比較試験
硫酸アンモニウムにより沈澱させたF−HAの5゜88
mg/m12懸濁液450μuを採取し10000 X
gで10分間遠心分離した。上澄液を除去した。
mg/m12懸濁液450μuを採取し10000 X
gで10分間遠心分離した。上澄液を除去した。
残漬を緩衝液3 m51に溶解し、同じ緩衝液に対して
透析した。F−HA溶液を孔径0.22−の膜で濾過し
た。濾過の前及び後の溶液の蛋白質濃度をLowryに
よる定量法により測定し、結果を濾過収率(濾過後の濃
度/濾過前の濃度)X100;又はM衝液CTW中の濾
過収率を任意に100%としてこれに対し算出した相対
的収率で表わした。
透析した。F−HA溶液を孔径0.22−の膜で濾過し
た。濾過の前及び後の溶液の蛋白質濃度をLowryに
よる定量法により測定し、結果を濾過収率(濾過後の濃
度/濾過前の濃度)X100;又はM衝液CTW中の濾
過収率を任意に100%としてこれに対し算出した相対
的収率で表わした。
結果を下記表IIに示す。
表 ■I
各種緩衝液中のに溶液としたF−HAの濾過収率の比較
試験 実施例5 無細胞の百日咳ワクチンの調製 精製した抗原−アナトキシン パータッシス及びF−H
Aを含んでいる無細胞百日咳ワクチンは下記のようにし
て調製した: 緩衝液CTW中に溶解した両抗原を別個に孔径0.22
JAI+1の膜で濾過して滅菌し、たとえばLowry
の方法に従って比色定量によりそれらの濃度を測定した
。
試験 実施例5 無細胞の百日咳ワクチンの調製 精製した抗原−アナトキシン パータッシス及びF−H
Aを含んでいる無細胞百日咳ワクチンは下記のようにし
て調製した: 緩衝液CTW中に溶解した両抗原を別個に孔径0.22
JAI+1の膜で濾過して滅菌し、たとえばLowry
の方法に従って比色定量によりそれらの濃度を測定した
。
有効成分をそれぞれ50μg/ndJ含んでいる無細胞
百日咳ワクチン1f1.を調製する目的で、無菌状態で
下記の溶液を混合した。
百日咳ワクチン1f1.を調製する目的で、無菌状態で
下記の溶液を混合した。
一11!街液CTW中のアナトキシン
パータッシス0.38 mg/織の溶液 132威
−緩衝液CTW中のF−HA 1 、1 mg/叔の溶液 46緘
−50mM HCfL含有、緩衝生理学的食塩水(P
BS) 202 mQ−水酸化アル
ミニウム溶液 (^x tomg/mA)
20 mN−マージオレート1%(W/V) 含有PBS 10 rr
r又−PBSを加えて 1℃こ
のワクチン調剤は下記の諸特性を示したニー アナトキ
シンパータッシス 50μg/rnQ−F−HA
50 μ g/mu−アル
ミニウム 200μs/叔−pH7,
8
−緩衝液CTW中のF−HA 1 、1 mg/叔の溶液 46緘
−50mM HCfL含有、緩衝生理学的食塩水(P
BS) 202 mQ−水酸化アル
ミニウム溶液 (^x tomg/mA)
20 mN−マージオレート1%(W/V) 含有PBS 10 rr
r又−PBSを加えて 1℃こ
のワクチン調剤は下記の諸特性を示したニー アナトキ
シンパータッシス 50μg/rnQ−F−HA
50 μ g/mu−アル
ミニウム 200μs/叔−pH7,
8
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、ボルデテラ属細菌の蛋白質抗原の精製、可溶化及び
/又は無毒化を行うにあたり、pH8.3乃至11.6
の炭酸塩緩衝液を使用することを特徴とする、ボルデテ
ラ属細菌の蛋白質抗原の精製方法。 2、該炭酸緩衝液はアルカリ金属炭酸水素塩及び炭酸塩
の混合物である、特許請求の範囲第1項記載の方法。 3、炭酸塩緩衝液は0.025−0.5Mのモル濃度で
ある、特許請求の範囲第1項又は第2項記載の方法。 4、該緩衝液は更に、濃度1重量%未満の界面活性剤を
含んでいる、特許請求の範囲第1項乃至第3項の何れか
に記載の方法。 5、ボルデテラ属細菌培地中で生成する蛋白質抗原を精
製するにあたり、培地の上澄液又はパータッシス毒素に
富むフラクションを、パータッシス毒素を固定し得るク
ロマトグラフィー固体担体と接触させ、次に毒素を該固
体担体から、pH8.3乃至11.6の炭酸塩緩衝液に
より溶出し、ついで所望ならば溶出液に無毒化処理を施
こすことを特徴とする、ボルデテラ属細菌の蛋白質抗原
の精製方法。 6、炭酸塩緩衝液は0.025M〜0.5Mのモル濃度
である、特許請求の範囲第5項記載の方法。 7、ボルデテラ属細菌の培地で生成する蛋白質抗原を可
溶化するにあたり、上記蛋白質抗原を沈澱又は凍結乾燥
品の形で、1重量%未満の表面活性剤を添加した、pH
8.3乃至11.6の炭酸塩緩衝液中で可溶化すること
を特徴とする、ボルデテラ属細菌の蛋白質抗原の可溶化
方法。 8、パータッシス毒素を通常の無毒化剤により無毒化す
るにあたり、上記無毒化をpH8.3乃至11.6の炭
酸塩緩衝液中において行なうことを特徴とするパータッ
シス毒素の無毒化法。 9、アナトキシン・パータッシス及びF−HAから選ば
れた有効成分の少なくとも1種を含んでおりかつ該有効
成分はpH8.3乃至11.6の炭酸塩緩衝液中に溶解
して存在していることを特徴とする無細胞百日咳ワクチ
ン。
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
FR8605456 | 1986-04-16 | ||
FR8605456A FR2597344B1 (fr) | 1986-04-16 | 1986-04-16 | Perfectionnement au procede de purification d'antigenes proteiques de bacteries appartenant au genre bordetella, en vue de l'obtention d'un vaccin acellulaire. |
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Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP7333413A Division JP2599259B2 (ja) | 1986-04-16 | 1995-12-21 | ボルデテラ属細菌の蛋白質抗原の可溶化方法 |
JP7333415A Division JP2599260B2 (ja) | 1986-04-16 | 1995-12-21 | パータッシス毒素の無毒化方法 |
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Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS62258326A true JPS62258326A (ja) | 1987-11-10 |
JP2563797B2 JP2563797B2 (ja) | 1996-12-18 |
Family
ID=9334300
Family Applications (3)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP62092149A Expired - Lifetime JP2563797B2 (ja) | 1986-04-16 | 1987-04-16 | ボルデテラ属細菌の蛋白質抗原の精製方法 |
JP7333415A Expired - Lifetime JP2599260B2 (ja) | 1986-04-16 | 1995-12-21 | パータッシス毒素の無毒化方法 |
JP7333413A Expired - Lifetime JP2599259B2 (ja) | 1986-04-16 | 1995-12-21 | ボルデテラ属細菌の蛋白質抗原の可溶化方法 |
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Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP7333415A Expired - Lifetime JP2599260B2 (ja) | 1986-04-16 | 1995-12-21 | パータッシス毒素の無毒化方法 |
JP7333413A Expired - Lifetime JP2599259B2 (ja) | 1986-04-16 | 1995-12-21 | ボルデテラ属細菌の蛋白質抗原の可溶化方法 |
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ES (1) | ES2000435T3 (ja) |
FR (1) | FR2597344B1 (ja) |
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AT391080B (de) * | 1986-06-24 | 1990-08-10 | Immuno Ag | Verfahren zur herstellung von gegen pseudomonas aeruginosa infektionen wirksamen praeparationen |
US5237053A (en) * | 1986-06-24 | 1993-08-17 | Immuno Aktiengesellschaft | Preparation active against Pseudomonas aeruginosa infections and methods of producing them |
US5165927A (en) * | 1986-08-01 | 1992-11-24 | University Of Southern California | Composition with modified pertussis toxin |
US5032398A (en) * | 1986-08-01 | 1991-07-16 | Kaslow Harvey R | Selective modification of the catalytic subunit of pertussis toxin |
US4845036A (en) * | 1987-02-03 | 1989-07-04 | The United States Of America As Represented By The Department Of Health And Human Services | Process for isolation of the B oligomer of pertussis toxin |
JP2706792B2 (ja) * | 1988-11-29 | 1998-01-28 | 財団法人化学及血清療法研究所 | 百日咳毒素のトキソイド化法 |
EP0484621A3 (en) * | 1990-07-11 | 1992-08-26 | American Cyanamid Company | Efficacious vaccines against bordetella pertussis comprising a combination of individually purified pertussis antigens |
FR2672895B1 (fr) * | 1991-02-15 | 1995-05-12 | Transgene Sa | Procede de purification d'une proteine fortement glycosylee. |
US5445817A (en) * | 1992-08-21 | 1995-08-29 | The United States Of America As Represented By The Department Of Health And Human Services | Pertussis toxin used as a carrier protein with non-charged saccharides in conjugate vaccines |
KR102426041B1 (ko) * | 2017-08-01 | 2022-07-29 | 주식회사 녹십자 | 냉동 및 해동 과정을 포함하는 백일해균 유래 단백질 수득 방법 |
Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS6098988A (ja) * | 1983-11-01 | 1985-06-01 | Chemo Sero Therapeut Res Inst | Lpf−haの精製法 |
JPS60237027A (ja) * | 1984-05-07 | 1985-11-25 | Chemo Sero Therapeut Res Inst | 線維状赤血球凝集素の精製方法 |
Family Cites Families (9)
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---|---|---|---|---|
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US4247452A (en) * | 1978-03-01 | 1981-01-27 | The Secretary Of State For Defence In Her Britannic Majesty's Government Of The United Kingdom Of Great Britain And Northern Ireland | Purification of pertussis haemagglutinins |
JPS5750925A (en) * | 1980-09-12 | 1982-03-25 | Takeda Chem Ind Ltd | Preparation of pertussis toxoid |
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