JPS62130B2

JPS62130B2 -

Info

Publication number: JPS62130B2
Application number: JP52035944A
Authority: JP
Inventors: Nakao Ishida; Hiroshi Maeda; Fujio Suzuki; Toshikatsu Fujii; Itsuro Mizutani
Original assignee: Kirin Distillery Co Ltd
Current assignee: Kirin Distillery Co Ltd
Priority date: 1977-03-30
Filing date: 1977-03-30
Publication date: 1987-01-06
Also published as: JPS53121919A

Description

【発明の詳細な説明】

本発明は、Daedalea dickinsii KSDD6、
FERM−Ｐ No.3993又はLentinus edodes
KSLE7、FERM−Ｐ No.3994をデイステイラー
ズ・ソルブルスに接種して得られる菌糸体由来の
多糖体でKS物質と命名されるインターフエロン
誘起剤に関する。本発明者等はすでにLentinus edodesの芽胞お
よびその培養菌体より強力なインターフエロン誘
起剤である２本鎖RNAが抽出されることを見出
している（F.Suzuki、T.Koide、A.Tsunoda、＆
N.Ishida：Mushroom Science IX（Part ）、
Proceedings of the Ninth International
Scientific Congress on the Cultivation of
Edible Fungi、Tokyo、1974、p509）。更にLentinus edodesからレンチナンと称され
る抗腫瘍物質が調製されうることも知られている
（G.Chihara、Y.Maeda、J.Hamuro、T.Sasaki
＆ F.Fukuoka：Nature、p687、222、May17、
1969 G.Chihara、J.Hamuro、Y.Maeda、Y.Arai
＆ F.Fukuoka：Cancer Research 30、2776−
2781、1970）。本発明者らは、同様担子菌類についての培養
を、特殊な培地（後記）で更に研究を行なつてい
たところ、培養菌糸体よりレンチナンとは異なる
糖組成を有する多糖体の抽出に成功し、この多糖
体にインターフエロン誘起能を見出し、その結果
発現されるインフルエンザ感染に対する防御作用
を見出し、本発明を完成した。本発明によれば、インターフエロン誘起作用を
有する多糖体は、次のようにして培養した
Daedalea dickinsii KSDD6、FERM−Ｐ No.
3993又はLentinus edodes KSLE7、FERM−Ｐ
No.3994の菌糸体より抽出される。 (1) 菌体の培養本発明物質を調製するには、上記担子菌を約
３〜５゜Ｐに調節したデイステイラーズ・ソル
ブルズを主成分とする培地に無菌的に接種し、
通常の通気培養条件下、たとえば15〜35℃、好
ましくは20〜30℃、0.01〜2.5／／分、好
ましくは0.5〜1.5／／分の通気を行ないつ
つ、約１〜30日間、好ましくは約15〜25日間培
養を行なう。 (2) 本発明物質の抽出上記培養混合物を過または遠心分離により
菌糸体を分離し、次いで菌糸体を所望により適
宜細断し、熱水または塩類希水溶液、好適には
60〜130℃、特に80〜100℃の約５％NaCl含有
水を用いて抽出を行なう。抽出は撹拌下約５分
〜３時間、特に30〜60分間行なえば充分であ
る。抽出液について所望により固形物を分離後、
水と任意に混和する有機溶媒、たとえばメタノ
ール、エタノールを用いて沈澱処理を行ない、
得られた沈澱を過または遠心分離により集
め、凍結乾燥によりインターフエロン誘起作用
を有する多糖体が得られる。なお上記有機溶媒
沈澱操作の代りに硫安等を用いた塩析法によつ
ても、同様の目的を達することができる。な
お、抽出を行なわずに菌体そのものを必要に応
じて細断、精製等の処理をしてから飲用製品と
することもできる。前記に用いられるデイステイラーズ・ソルブル
ズは、サワーマツシユ法によるグレンウイスキー
の製造工程（カーク・オスマー、“エンサイクロ
ベデイア・オブ・ケミカル・テクノロジー”第２
版、第１巻、501〜531頁参照）において副生する
ものである。かくして得られる多糖体は、次のごとき物性な
らびに生理活性を有する。 (A) 物性： (1) 元素分析；（C.H.Nメーターにより）；
C18.6±2.3％、H2.8±0.4％、N1.3±0.2％、
灰分10.5±1.3％。 (2) 分子量；（バイオゲルＰ−シリーズカラム
およびアミコン・ウルトラフイルトレーシヨ
ンにより）；約70000。 (3) 分解点；（常法により）；300℃以上。 (4) 赤外吸収スペクトルにおける主要吸収帯
（cm^-1）；3350（谷）、2900（谷）、1640
（谷）、1480（小山）、1400（谷）、1320（シヤ
ープ谷）、1240（小谷）、1070（谷）、1030
（谷）、560（谷）。 (5) 溶剤に対する溶解性：水に可溶、エタノー
ル、ｎ−ブタノール、アセトン、ヘキサンに
不溶。 (6) 呈色反応；（KS物質の１％水溶液につい
て）アンスロン反応；陽性モルガン・エルソン反応；陰性カルバゾール・硫酸反応；陽性 (7) 塩基性、中性、酸性の区別；KS物質の水
溶液のPH；６〜７。 (8) 物質の性状；不定形粉末。 (9) アミノ酸組成（ｇ／100ｇ）；アルギニン0.4±0.05 アラニン0.6±0.08
リジン0.5±0.06 グリシン0.8±0.1 ヒスチ
ジン0.4±0.05 プロリン0.5±0.1 フエニル
アラニン0.2±0.05 グルタミン酸1.5±0.5
チロシン0.2±0.05 セリン１±0.1 ロイシ
ン0.4±0.06 スレオニン0.8±0.1 イソロイ
シン0.3±0.04 アスパラギン酸１±0.5 メ
チオニン0.1±0.05 トリプトフアン0.08±
0.02 バリン0.4±0.05 シスチン0.3±0.05 (10) 糖組成；（ガスクロマトグラフイーによ
り）；グルコース；57±６％、ガラクトー
ス；５±0.5％、マンノース；26±３％、キ
シロース；８±0.8％、アラビノース；５±
0.3％。 (B) 生物活性： (1) インターフエロン誘起活性マウス、ウサギ、ニワトリに対して１〜
500mg／Kg体重、好ましくは１〜200mg／Kg体
重の腹腔内投与で、または１〜2000mg／Kg体
重、好ましくは１〜500mg／Kg体重の経口投
与でインターフエロン誘起活性を示す。 (2) インフルエンザ感染防御作用前記(1)項と同様の投与量でインフルエンザ
感染防御作用を有する。 (C) 毒性：

【表】 (D) 投与方法散剤、顆粒剤、錠剤、カプセル剤、油剤、水
剤、乳剤、懸濁剤の形で投与する方法、または
これとは別にKS物質を含有する菌体もしくは
発酵培養物をそのまま飲用する方法等が採用さ
れうる。また投与に際しては希釈して投与して
もよく、希釈剤としては、小麦粉、澱粉等の通
常医薬に利用可能な増量剤が考えられる。なお投与量については、KS物質を各動物に
毒性の項で示したレベルより少ない量で投与す
ると前記した効果が得られる。本発明に用いられるDaedalea dickinsii
KSDD6およびLentinus edodes KSLE7の種々
の培地における生育状態を下記に示す（−……
生育なし、＋、〓、〓……それぞれ生育あり
（弱、中、強））。

【表】次に実施例および参考例をあげて説明する。例１ Daedalea dickinsii KSDD6、FERM−Ｐ No.
3993をデイステイラーズ・ソルブルズ単独培地で
24℃で14日間振とう培養して得られた培養菌を、
デイステイラーズ・ソルブルズ（３゜Ｐ）に接種
し、24℃で1.8／／分の通気を行ないつつ11
日間培養した。培養混合物を遠心分離することに
より菌糸体38ｇを得た。得られた菌糸体に熱５％食塩水10を加え、60
分間煮沸後上澄液と沈澱を分離した。同様の操作
を更に２回繰返した。このようにして得られた上
澄液を合せ、これに最終エチルアルコール濃度が
70％になるようにエチルアルコールを加え、冷暗
所に一夜放置した。生成した沈澱を集め、凍結乾
燥して目的とするKS物質４ｇを得た。得られた物質の物性を調べた結果を下記に示
す。 (1) 元素分析：（C.H.N.メーターにより）；
C18.03％、H2.98％、N1.30％、灰分10.9％。 (2) 分子量；（バイオゲルＰ−シリーズカラムお
よびアミコン・ウルトラフイルトレーシヨンに
より）；約70000 (3) 分解点；（常法により）：300℃以上。 (4) 赤外吸収スペクトル；第１図に示す。 (5) 溶剤に対する溶解性；水に可溶、エタノー
ル、ｎ−ブタノール、アセトン、ヘキサンに不
溶。 (6) 呈色反応；（KS物質の１％水溶液につい
て）アンスロン反応；陽性モルガン・エルソン反応；陰性カルバゾール・硫酸反応；陽性 (7) 塩基性、中性、酸性の区別 KS物質の水溶液のPH；6.5 (8) 物質の性状；不定形粉末 (9) アミノ酸組成；（ｇ／100ｇ）アルギニン0.41 アラニン0.60 リジン0.49
グリシン0.73 ヒスチジン0.38 プロリン0.48
フエニルアラニン0.22 グルタミン酸1.53
チロシン0.15 セリン1.03 ロイシン0.43 ス
レオニン0.73 イソロイシン0.32 アスパラギ
ン酸1.12 メチオニン0.15 トリプトフアン
0.08 バリン0.43 シスチン0.25 (10) 糖組成：（ガスクロマトグラフイーによ
り）；第２図に示す。例２ Lentinus edodes KSLE7、FERM−Ｐ No.
3994をデイステイラーズ・ソルブルズ単独培地で
25℃において14日間振とう培養して得られた培養
菌を、デイステイラーズ・ソルブルズ（３゜Ｐ）
に接種し、25℃で1.5／／分の通気を行ない
つつ10日間培養した。培養混合物を遠心分離する
ことにより菌糸体40ｇを得た。得られた菌糸体に熱水10を加え、60分間煮沸
後上澄液と沈澱を分離した。同様の操作を２度繰
返した。このようにして得られた上澄液を合せ、
これに最終エチルアルコール濃度が70％となるよ
うにエチルアルコールを加え、冷暗所に一夜放置
した。生成した沈澱を集め凍結乾燥して、目的と
するKS物質５ｇを得た。得られた物質の物性を調べた結果を下記に示
す。 (1) 元素分析；（C.H.Nメーターにより）； C18.59％、H2.79％、N1.26％、灰分10.5％。 (2) 分子量；（バイオゲルＰ−シリーズカラムお
よびアミコン・ウルトラフイルトレーシヨンに
より）；約70000 (3) 分解点；（常法により）；300℃以上。 (4) 赤外吸収スペクトル；第３図に示す。 (5) 溶剤に対する溶解性；水に可溶、エタノー
ル、ｎ−ブタノール、アセトン、ヘキサンに不
溶。 (6) 呈色反応；（KS物質の１％水溶液につい
て）アンスロン反応；陽性モルガン・エルソン反応；陰性 (7) 塩基性、中性、酸性の区別 KS物質の水溶液のPH；6.5 (8) 物質の性状；不定形粉末 (9) アミノ酸組成；（ｇ／100ｇ）；アルギニン0.39 アラニン0.60 リジン0.48
グリシン0.77 ヒスチジン0.36 プロリン0.59
フエニルアラニン0.24 グルタミン酸1.21
チロシン0.17 セリン0.96 ロイシン0.34 ス
レオニン0.70 イソロイシン0.34 アスパラギ
ン酸1.01 メチオニン0.12 トリプトフアン
0.06 バリン0.41 シスチン0.27 (10) 糖組成；（ガスクロマトグラフイーによ
り）；第４図に示す。例３インフルエンザ感染防御試験平均体重14〜16ｇのDDI系マウス40匹を対照群
としてマウスにインフルエンザウイルスを経鼻噴
霧感染させた。次に同様に感染されたマウスに例
２で得たKS物質を投与し、また陽性対照群には
ヴイラゾールを投与し、生存日数と生存率を調べ
た。KS物質とヴイラゾールは生理食塩水に溶解
したのち、ウイルス感染前１時間、同時、感染後
１、３、６時間目の各時間、以後４日間は１日２
回腹腔に計15回投与した。またKS物質を経口に
より、同様の手順で投与した群も試験群とした。
また同様マウス40匹に対し腹腔より0.5mlの生理
食塩水を投与した群を対照群とした。使用ウイルスはインフルエンザA₂／熊本株
で、マウスに充分馴化した株であり、感染経路は
噴霧感染による鼻腔接種で、ウイルス接種量は
7LD₅₀であつた。その結果は第１表に要約した。

【表】例４平均体重14〜16ｇのDDI系マウスに、例１で得
られたKS物質を１回腹腔より200mg／Kg体重およ
び経口により500mg／Kg体重投与し、24時間後に
インフルエンザA₂／熊本株の10LD₅₀を感染させ
た。生存日数と生存率を調べた結果を第２表に要
約する。なお陽性対照群としてのヴイラゾール投
与群は、例３と同様の手順で投与し、対照群も同
様であつた。

【表】これらの結果から、本発明のKS物質は、ウイ
ルス感染前の一回投与でも、例３に示した手順で
投与した場合と同様に有効であり、この結果は、
KS物質がインターフエロンを介してウイルス感
染防御効果を発現していることを示唆している。例５平均体重22ｇのDDI系マウス40匹に腹腔より例
２で得られたKS物質200mg／Kg体重を投与した群
（）、同40匹に経口によりKS物質500mg／Kg体重
を投与した群（）を処理群とし、動物体内に誘
起されるインターフエロン（interferon、ウイル
ス感染阻止物質）力価を検討した。この際同様マ
ウス40匹に対してキナクリン（quinacrin）200
mg／Kg体重を腹腔より投与した群（）を陽性対
照群とし、更に同様マウス40匹に対し腹腔より
0.5mlの生理食塩水を投与した群（）を対照群
とした。各群とも投与後４、８、12、16、20、24、28、
32時間後に40匹より任意に抽出した５匹のマウス
を屠殺し、採取した血液を3000r.p.m.で10分間遠
心し、血清を分離した。誘起されたインターフエロンは、マウスＬ細胞
由来の一変異株でチミジン・キナーゼ欠損のＬ−
1D細胞に対する水胞性口内炎ウイルス（VSV）
の感染を、段階的に希釈したマウス血清がどこま
で阻止するかにより定量し、最終的に米国立予防
衛生研究所（National Institute of Health
（NIH））より供与された国際マウスインターフエ
ロンを用いて国際単位に換算した。その結果を第５図に示す。例６ KS物質によつてマウス血清中に誘起されたイ
ンターフエロンについて、以下の検討を行なつ
た。例１により得られたKS物質200mg／Kg体重を、
平均体重21ｇのDDI系マウスの腹腔に投与し、20
時間後に屠殺し、採取した血液を3000r.p.m.にお
いて10分間遠心し、血清を分離し、この血清を56
℃で１時間加熱処理したもの、0.1N塩酸でPH2.0
に調整し、４℃に18時間放置したもの、更に最終
濃度1000mcg／mlとなる量のトリプシンで37℃に
おいて３時間処理したものについて例５と同様に
インターフエロン力価を検討した。その結果を第３表に要約した。

【表】これらの結果、KS物質によりマウス血清中に
誘起されたウイルス感染阻止物質は、トリプシン
処理により活性が失われ、56℃、１時間の加熱お
よびPH2.0の酸処理で不安定であつたことから、
Wheelock、Falcoff（Falcoff、Ｒ；Some
properties of virus and immune induced
human lymphocyte interferons、J.Glu.Virol、
16、251、1972、Wheelock、E.F.；Interferon
like virus inhibiter induced in human
leukocytes by Histohemagglutinin、Science、
149、310、1965）の報告した免疫インターフエロ
ンであることが解つた。例７ KS物質により誘起されたインターフエロンの
種特異性を検討するため以下の試験を行なつた。平均体重２Kgの家兎10羽、平均体重20ｇのマウ
ス30匹、平均体重800ｇのニワトリ10羽の腹腔に
例１で得られたKS物質200mg／Kg体重を各々投与
し、20時間後にそれぞれの群より採取した血液
を、3000r.p.mで10分間遠心分離し、これら３群
の動物の血清を分離した。次に、あらかじめ用意したウサギ由来の樹立
RK−13細胞、マウス由来のＬ−1D細胞および初
代培養のニワトリ繊維芽細胞を、これら３群の血
清の希釈液で20時間37℃で前処理し、例５で示し
た方法でウイルス感染阻止効果を調べた。その結果を第４表に要約した。

【表】これらの結果から解るように、KS物質によつ
て家兎で誘起されたインターフエロンは、ウサギ
由来のRK−13細胞でのみウイルス感染に対して
抵抗性を有したが、マウス由来細胞やニワトリ由
来細胞でのウイルス感染阻止作用は認められなか
つた。同様にして、KS物質によつてマウスで誘
起されたインターフエロンはマウス由来のＬ−
1D細胞でのみウイルス感染に対する抑制作用を
有し、ニワトリで誘起されたインターフエロンに
ついても全く同様であつた。従つてKS物質によつて誘起されるインターフ
エロンは種特異性を有するものである。

【図面の簡単な説明】

第１図は例１で得られたKS物質の赤外吸収ス
ペクトル図、第２図は例１で得られたKS物質の
糖分析ガスクロマトグラム、第３図は例２で得ら
れたKS物質の赤外吸収スペクトル図、第４図は
例２で得られたKS物質の糖分析ガスクロマトグ
ラム、第５図はKS物質のインターフエロン誘起
作用を示すグラフである。

Claims

【特許請求の範囲】１下記の物性を有するKS物質。 (1) 元素分析；（C.H.Nメーターにより）；
C18.6±2.3％、H2.8±0.4％、N1.3±0.2％、灰
分10.5±1.3％ (2) 分子量；（バイオゲルＰ−シリーズカラムお
よびアミコン・ウルトラフイルトレーシヨンに
より）；約70000 (3) 分解点；（常法により）；300℃以上 (4) 赤外吸収スペクトルにおける主要吸収帯（cm
^-1）；3350（谷）、2900（谷）、1640（谷）、1480
（小山）、1400（谷）、1320（シヤープ谷）、1240
（小谷）、1070（谷）、1030（谷）、560（谷） (5) 溶剤に対する溶解性；水に可溶、エタノー
ル、ｎ−ブタノール、アセトンおよびヘキサン
に不溶 (6) 呈色反応；（KS物質の１％水溶液につい
て）アンスロン反応；陽性モルガン・エルソン反応；陰性カルバゾール・硫酸反応；陽性 (7) 塩基性、中性、酸性の区別；KS物質の水溶
液のPH６〜７ (8) 物質の性状；不定形粉末 (9) アミノ酸組成（ｇ／100ｇ）アルギニン0.4±0.05、リジン0.5±0.06、ヒス
チジン0.4±0.05、フエニルアラニン0.2±
0.05、チロシン0.2±0.05、ロイシン0.4±
0.06、イソロイシン0.3±0.04、メチオニン0.1
±0.05、バリン0.4±0.05、アラニン0.6±
0.08、グリシン0.8±0.1、プロリン0.5±0.1、
グルタミン酸1.5±0.5、セリン１±0.1、スレオ
ニン0.8±0.1、アスパラギン酸１±0.5、トリプ
トフアン0.08±0.02、シスチン0.3±0.05 (10) 糖組成；（ガスクロマトグラフイーにより）
グルコース57±６％、ガラクトース５±0.5
％、マンノース26±３％、キシロース８±0.8
％、アラビノース５±0.3％。２下記の物性を有するKS物質を有効成分とす
るインターフエロン誘起剤。 (1) 元素分析；（C.H.Nメーターにより）；
C18.6±2.3％、H2.8±0.4％、N1.3±0.2％、灰
分10.5±1.3％ (2) 分子量；（バイオゲルＰ−シリーズカラムお
よびアミコン・ウルトラフイルトレーシヨンに
より）；約70000 (3) 分解点；（常法により）；300℃以上 (4) 赤外吸収スペクトルにおける主要吸収帯（cm
^-1）；3350（谷）、2900（谷）、1640（谷）、1480
（小山）、1400（谷）、1320（シヤープ谷）、1240
（小谷）、1070（谷）、1030（谷）、560（谷） (5) 溶剤に対する溶解性；水に可溶、エタノー
ル、ｎ−ブタノール、アセトンおよびヘキサン
に不溶 (6) 呈色反応；（KS物質の１％水溶液につい
て）アンスロン反応；陽性モルガン・エルソン反応；陰性カルバゾール・硫酸反応；陽性 (7) 塩基性、中性、酸性の区別；KS物質の水溶
液のPH６〜７ (8) 物質の性状；不定形粉末 (9) アミノ酸組成（ｇ／100ｇ）アルギニン0.4±0.05、リジン0.5±0.06、ヒス
チジン0.4±0.05、フエニルアラニン0.2±
0.05、チロシン0.2±0.05、ロイシン0.4±
0.06、イソロイシン0.3±0.04、メチオニン0.1
±0.05、バリン0.4±0.05、アラニン0.6±
0.08、グリシン0.8±0.1、プロリン0.5±0.1、
グルタミン酸1.5±0.5、セリン１±0.1、スレオ
ニン0.8±0.1、アスパラギン酸１±0.5、トリプ
トフアン0.08±0.02、シスチン0.3±0.05 (10) 糖組成；（ガスクロマトグラフイーにより）
グルコース57±６％、ガラクトース５±0.5
％、マンノース26±３％、キシロース８±0.8
％、アラビノース５±0.3％。３下記の物性を有するKS物質を有効成分とす
るウイルス感染防御剤。 (1) 元素分析；（C.H.Nメーターにより）；
C18.6±2.3％、H2.8±0.4％、N1.3±0.2％、灰
分10.5±1.3％ (2) 分子量；（バイオゲルＰ−シリーズカラムお
よびアミコン・ウルトラフイルトレーシヨンに
より）；約70000 (3) 分解点；（常法により）；300℃以上 (4) 赤外吸収スペクトルにおける主要吸収帯（cm
^-1）；3350（谷）、2900（谷）、1640（谷）、1480
（小山）、1400（谷）、1320（シヤープ谷）、1240
（小谷）、1070（谷）、1030（谷）、560（谷） (5) 溶剤に対する溶解性；水に可溶、エタノー
ル、ｎ−ブタノール、アセトンおよびヘキサン
に不溶 (6) 呈色反応；（KS物質の１％水溶液につい
て）アンスロン反応；陽性モルガン・エルソン反応；陰性カルバゾール・硫酸反応；陽性 (7) 塩基性、中性、酸性の区別；KS物質の水溶
液のPH６〜７ (8) 物質の性状；不定形粉末 (9) アミノ酸組成（ｇ／100ｇ）アルギニン0.4±0.05、リジン0.5±0.06、ヒス
チジン0.4±0.05、フエニルアラニン0.2±
0.05、チロシン0.2±0.05、ロイシン0.4±
0.06、イソロイシン0.3±0.04、メチオニン0.1
±0.05、バリン0.4±0.05、アラニン0.6±
0.08、グリシン0.8±0.1、プロリン0.5±0.1、
グルタミン酸1.5±0.5、セリン１±0.1、スレオ
ニン0.8±0.1、アスパラギン酸１±0.5、トリプ
トフアン0.08±0.02、シスチン0.3±0.05 (10) 糖組成；（ガスクロマトグラフイーにより）
グルコース57±６％、ガラクトース５±0.5
％、マンノース26±３％、キシロース８±0.8
％、アラビノース５±0.3％。４ダエダリヤ属又はレンチナス属に属するKS
物質生産菌を培養し、培養物からKS物質を採取
することを特徴とする下記の物性を有するKS物
質の製造法。 (1) 元素分析；（C.H.Nメーターにより）；
C18.6±2.3％、H2.8±0.4％、N1.3±0.2％、灰
分10.5±1.3％ (2) 分子量；（バイオゲルＰ−シリーズカラムお
よびアミコン・ウルトラフイルトレーシヨンに
より）；約70000 (3) 分解点；（常法により）；300℃以上 (4) 赤外吸収スペクトルにおける主要吸収帯（cm
^-1）；3350（谷）、2900（谷）、1640（谷）、1480
（小山）、1400（谷）、1320（シヤープ谷）、1240
（小谷）、1070（谷）、1030（谷）、560（谷） (5) 溶剤に対する溶解性；水に可溶、エタノー
ル、ｎ−ブタノール、アセトンおよびヘキサン
に不溶 (6) 呈色反応；（KS物質の１％水溶液につい
て）アンスロン反応；陽性モルガン・エルソン反応；陰性カルバゾール・硫酸反応；陽性 (7) 塩基性、中性、酸性の区別；KS物質の水溶
液のPH６〜７ (8) 物質の性状；不定形粉末 (9) アミノ酸組成（ｇ／100ｇ）アルギニン0.4±0.05、リジン0.5±0.06、ヒス
チジン0.4±0.05、フエニルアラニン0.2±
0.05、チロシン0.2±0.05、ロイシン0.4±
0.06、イソロイシン0.3±0.04、メチオニン0.1
±0.05、バリン0.4±0.05、アラニン0.6±
0.08、グリシン0.8±0.1、プロリン0.5±0.1、
グルタミン酸1.5±0.5、セリン１±0.1、スレオ
ニン0.8±0.1、アスパラギン酸１±0.5、トリプ
トフアン0.08±0.02、シスチン0.3±0.05 (10) 糖組成；（ガスクロマトグラフイーにより）
グルコース57±６％、ガラクトース５±0.5
％、マンノース26±３％、キシロース８±0.8
％、アラビノース５±0.3％。５培養における培地がデイステイラーズ・ソル
ブルズのみからなる特許請求の範囲第４項記載の
KS物質の製造法。