JPS58116691A - L−スレオニンの取得方法 - Google Patents
L−スレオニンの取得方法Info
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- JPS58116691A JPS58116691A JP20998481A JP20998481A JPS58116691A JP S58116691 A JPS58116691 A JP S58116691A JP 20998481 A JP20998481 A JP 20998481A JP 20998481 A JP20998481 A JP 20998481A JP S58116691 A JPS58116691 A JP S58116691A
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- JP
- Japan
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- threonine
- enzyme
- reaction
- aldolase
- solution
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- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
本発明はDL−スI/オニンに新規な酵素でろるD−ス
レオニンアルドラーゼ全作用させることによってD−ス
レオニンを選択的に分解させ、L−スレオニンを単離す
る方法に関する。
レオニンアルドラーゼ全作用させることによってD−ス
レオニンを選択的に分解させ、L−スレオニンを単離す
る方法に関する。
L−スレオニンは人間および動物の必須アミノ酸のひと
つであり、各種動、植物蛋白質中の含有量が比較的少な
いことから食品および飼料添加物として潜在需要の大き
なものである。このL−スレオニンは、従来は天然物よ
りの抽出法とか発酵法で製造されて@たが、比較的高価
であったために安価な製造法が待望されていた。
つであり、各種動、植物蛋白質中の含有量が比較的少な
いことから食品および飼料添加物として潜在需要の大き
なものである。このL−スレオニンは、従来は天然物よ
りの抽出法とか発酵法で製造されて@たが、比較的高価
であったために安価な製造法が待望されていた。
一方、DL−スレオニンは合成法に工って安価かつ大量
生産されている。DL−スレオニンを光学分割する方法
はah知られているが、いずれも分割操作が非常に煩雑
なうえ収率が低いものであった。捷だ、この光学分割に
よって同量のD−スレオニンが得られるが、このD−ス
レオニンの需要はほとんどなぐ、また、ラセミ化すると
一般[アロ体を副生することから、ラセミ化も有効な方
法ではない。
生産されている。DL−スレオニンを光学分割する方法
はah知られているが、いずれも分割操作が非常に煩雑
なうえ収率が低いものであった。捷だ、この光学分割に
よって同量のD−スレオニンが得られるが、このD−ス
レオニンの需要はほとんどなぐ、また、ラセミ化すると
一般[アロ体を副生することから、ラセミ化も有効な方
法ではない。
本発明者らはL−スレオニンの安価な供給源としてDL
−スレオニ714着目し、DL−スレオニンの簡便かつ
効率的な光学分割とそfl−にょって副生するD−スレ
オニンの有効利用を図って安価なL−スレオニン全市場
に供給するべく種々何発の結果、た−!た1D−ヌレオ
ーンを慝択的に分解してグリシンとアセトアルデヒドを
生成させる新規な酵素、D−スレオニンアルドラーゼを
発見し、この酵素をD L−スレオニンに作用させれば
L−スレオニンを容易に単離し副生物もグリシンとアセ
トアルデヒドであるから容易に有効利用しうろこと全見
出し、これに基いて本発明を完成するに至つ友。
−スレオニ714着目し、DL−スレオニンの簡便かつ
効率的な光学分割とそfl−にょって副生するD−スレ
オニンの有効利用を図って安価なL−スレオニン全市場
に供給するべく種々何発の結果、た−!た1D−ヌレオ
ーンを慝択的に分解してグリシンとアセトアルデヒドを
生成させる新規な酵素、D−スレオニンアルドラーゼを
発見し、この酵素をD L−スレオニンに作用させれば
L−スレオニンを容易に単離し副生物もグリシンとアセ
トアルデヒドであるから容易に有効利用しうろこと全見
出し、これに基いて本発明を完成するに至つ友。
すなわち本発明は、DL−スレオニン[D−スレオニン
アルドラーゼ全作用させることを特像とす、6DL−ス
レオニンからL−スレオニン會取得する方法に関するも
のである。
アルドラーゼ全作用させることを特像とす、6DL−ス
レオニンからL−スレオニン會取得する方法に関するも
のである。
D−スレオニンアルドラーゼ′はD−スレオニン及びD
−アロスレオニンに作用してグリシンとアルデヒドに分
解する酵素で、例えばアルカリゲネスハエ力リス(Al
caligenes faecalia )工FO12
669、シュードモナス(Pseudomonas )
DK−2微工研菌寄第6200号、およびアリスロバク
タ−(Arthrobacter ) D K −19
微工研菌寄第6201号などがこのD−スレオニンアル
ドラーゼを産生する能力を有する。
−アロスレオニンに作用してグリシンとアルデヒドに分
解する酵素で、例えばアルカリゲネスハエ力リス(Al
caligenes faecalia )工FO12
669、シュードモナス(Pseudomonas )
DK−2微工研菌寄第6200号、およびアリスロバク
タ−(Arthrobacter ) D K −19
微工研菌寄第6201号などがこのD−スレオニンアル
ドラーゼを産生する能力を有する。
シュードモナスDK−2微工研菌寄第6200号および
アリスロバクターDK−19微工研菌寄第6201号の
菌学的性質を次に示す。
アリスロバクターDK−19微工研菌寄第6201号の
菌学的性質を次に示す。
(a)形態
(b) 各培地における生育状態
(C) 生理学的性質
辺上の菌学的性質をもとに1パージニーズ・マニュアル
・オブ・デターミ不イテイプ・バタテリオロジー 第8
版(1974)J葡参照1〜て分類すると、DK−2菌
はグラム1観性の桿菌で極鞭毛會有し、オキシダーゼ陽
性、脱窒反応14性であるところから、シュードモナス
属に属するものと同定した。一方、DK−19菌はグラ
ム染色性が弱い桿菌で、多形性及び周毛全有し、糖類を
資化できないことからアリスロバクター属に属するもの
と同定した。
・オブ・デターミ不イテイプ・バタテリオロジー 第8
版(1974)J葡参照1〜て分類すると、DK−2菌
はグラム1観性の桿菌で極鞭毛會有し、オキシダーゼ陽
性、脱窒反応14性であるところから、シュードモナス
属に属するものと同定した。一方、DK−19菌はグラ
ム染色性が弱い桿菌で、多形性及び周毛全有し、糖類を
資化できないことからアリスロバクター属に属するもの
と同定した。
D−スレオニンアルドラーゼは例えばこれらの微生物を
栄養培地に培養すれば生成させることができる。栄養培
地は細菌を培養する通常のものでよく、戻素源としては
グルコース、キシロース、グリセロール、糖蜜等の糖類
、あるいは酢酸、リンゴ酸等の有機酸など、窒素源とし
てハ硫酸アンモニウム、塩化アンモニウム、尿累なと、
有機栄養源として酵母エキス、ペプトン、肉エキス、コ
ーンステイープリカー々と、そして無機イオンとしてマ
グネシウム、鉄、マンガン、カリウム、リン酸塩などを
含むものを用いる。
栄養培地に培養すれば生成させることができる。栄養培
地は細菌を培養する通常のものでよく、戻素源としては
グルコース、キシロース、グリセロール、糖蜜等の糖類
、あるいは酢酸、リンゴ酸等の有機酸など、窒素源とし
てハ硫酸アンモニウム、塩化アンモニウム、尿累なと、
有機栄養源として酵母エキス、ペプトン、肉エキス、コ
ーンステイープリカー々と、そして無機イオンとしてマ
グネシウム、鉄、マンガン、カリウム、リン酸塩などを
含むものを用いる。
培養方法も細菌を培養する常法に従って行なえはよく、
培地のpHを4−10として菌全接種後20〜60°C
で1〜3日間好気的に培養すればよい。
培地のpHを4−10として菌全接種後20〜60°C
で1〜3日間好気的に培養すればよい。
このようにして得られるD−スレオニンアルドラーゼは
主に菌体内に生成蓄積される。そこで、培養液からD−
スレオニンアルドラーゼを単離する場合にはまず菌体を
機械的方法、酵素処理する方法、自己溶解法などの公知
の方法の方法によって破壊して粗抽出液金得る。それか
ら、この粗抽出液を硫安沈澱、溶媒沈澱、種々のイオン
交換体や吸着剤を用いたクロマトグラフィーなどを適宜
組合せて精製することKよって高純度の酵素標品を得る
ことができる。本酵素の活性発現には、補酵素としてピ
リドキサール−5′−リン酸を必要とするため、反応時
には通常10−3〜10−5Mで存在させる。
主に菌体内に生成蓄積される。そこで、培養液からD−
スレオニンアルドラーゼを単離する場合にはまず菌体を
機械的方法、酵素処理する方法、自己溶解法などの公知
の方法の方法によって破壊して粗抽出液金得る。それか
ら、この粗抽出液を硫安沈澱、溶媒沈澱、種々のイオン
交換体や吸着剤を用いたクロマトグラフィーなどを適宜
組合せて精製することKよって高純度の酵素標品を得る
ことができる。本酵素の活性発現には、補酵素としてピ
リドキサール−5′−リン酸を必要とするため、反応時
には通常10−3〜10−5Mで存在させる。
次に、酵素製造例1で得られた酵素標品にっいて理化学
的性質を測定した結果を記す。
的性質を測定した結果を記す。
■作用および基質特異性
本酵素はD−スレオニンおよびD−アロスレオニンを分
解してグリシンとアセトアルテヒドを生成する。一方、
L−スレオニンおよびL−アロスレオニンにはまったく
作用しない。
解してグリシンとアセトアルテヒドを生成する。一方、
L−スレオニンおよびL−アロスレオニンにはまったく
作用しない。
■至 適pH
D−スレオニンを基質として各pHにおいて30°Cで
10分間反応させ、生成したアルデヒドを定量したとこ
ろ、本酵素の至適pHは7〜9にめった。尚、用いた緩
衝液はpH4〜7.5までは0.1 Mリン酸緩衝液、
pH7〜9までは0.1 M )リスー’mat緩衝液
及びpH9〜11までは0.1M炭酸ソーダ緩衝液であ
る。
10分間反応させ、生成したアルデヒドを定量したとこ
ろ、本酵素の至適pHは7〜9にめった。尚、用いた緩
衝液はpH4〜7.5までは0.1 Mリン酸緩衝液、
pH7〜9までは0.1 M )リスー’mat緩衝液
及びpH9〜11までは0.1M炭酸ソーダ緩衝液であ
る。
■安定pH範囲
酵累溶液全各pHにおいて30℃で1時間加温後、溶液
中の残存活性を測定したところ、本酵素の安定pH範囲
は6〜9にあった。尚、用いた緩衝液はpH4〜7.5
までは0.1MIJン酸緩衝液、pH7〜9まではQ、
I M トリス−HC7緩衝液及びpH9〜11までは
0.1M炭酸ソーダ緩衝液である。
中の残存活性を測定したところ、本酵素の安定pH範囲
は6〜9にあった。尚、用いた緩衝液はpH4〜7.5
までは0.1MIJン酸緩衝液、pH7〜9まではQ、
I M トリス−HC7緩衝液及びpH9〜11までは
0.1M炭酸ソーダ緩衝液である。
■力価の測定法
酵素含有液0.1−を100μmoleのD−スレオニ
ン結晶有するpH8,0の0.1 M )リス−塩酸緩
衝液0.4−に加え、30°Cで10分間加温して生成
したアセトアルデヒドをFaz法(Arch、 Bio
chem、 Biophys、 、 Vol、 109
、 p548(1965)) によって定量して求
め友。尚、1分間に1μmoleのD−スレオニンを分
解する酵素活性を1Uとした。
ン結晶有するpH8,0の0.1 M )リス−塩酸緩
衝液0.4−に加え、30°Cで10分間加温して生成
したアセトアルデヒドをFaz法(Arch、 Bio
chem、 Biophys、 、 Vol、 109
、 p548(1965)) によって定量して求
め友。尚、1分間に1μmoleのD−スレオニンを分
解する酵素活性を1Uとした。
■作用適温の範囲
D−スレオニンを基質としてpH8,0の0.1M )
IJスス−酸緩衝液を用い、各温度で10分間反応さ
せ、生成したアセトアルデヒドを測定したところ、本酵
素の至適温度は40〜50°CVCめった。
IJスス−酸緩衝液を用い、各温度で10分間反応さ
せ、生成したアセトアルデヒドを測定したところ、本酵
素の至適温度は40〜50°CVCめった。
■熱安定性
pH8,0の0.1 M トリス−塩酸緩衝液に溶解し
た酵素溶液を各温度で1時間加熱後、溶液中の残存活性
を測定したところ、本酵素の安定温度は40”C以下で
めった。
た酵素溶液を各温度で1時間加熱後、溶液中の残存活性
を測定したところ、本酵素の安定温度は40”C以下で
めった。
■pH1温度などによる失活の条件
本酵素はpH5以下、pH11J−1上、および温度7
0°C以上では1時間に失活する。
0°C以上では1時間に失活する。
■阻害、活性化および安定化
本酵素はメルカプトエタノール、亜硫酸ナトリウム、亜
硫酸水素ナトリウム、ジチオスレイトール、Mn2+、
□ o 2 +、F182+、Mgz+によって活性化
され安定化される。−万、Agl +、Ou”士、Hg
Zモ、znZ+、pd2+、ヒドロキシ/シアミン、p
−クロルマーキュリ−安息香酸によって阻害される。
硫酸水素ナトリウム、ジチオスレイトール、Mn2+、
□ o 2 +、F182+、Mgz+によって活性化
され安定化される。−万、Agl +、Ou”士、Hg
Zモ、znZ+、pd2+、ヒドロキシ/シアミン、p
−クロルマーキュリ−安息香酸によって阻害される。
■補酵素
本酵素の補酵素はピリドキサール−5′−リン酸である
。
。
酵素製造例1で得られた酵素は以上のような理化学的性
質を有しているが、従来知られているスレオニンアルド
ラーゼは丁べてL−スレオニンを分解するものでろって
、D−スレオニンを分解するものは全く知られていない
ところから、この酵素は全く新しい作用全有する11規
酵素でるる。
質を有しているが、従来知られているスレオニンアルド
ラーゼは丁べてL−スレオニンを分解するものでろって
、D−スレオニンを分解するものは全く知られていない
ところから、この酵素は全く新しい作用全有する11規
酵素でるる。
DL−スレオニンに作用せしめる酵素は、要はD−スレ
オニンを分解してグリシンとアセトアルデヒドを生成し
うるものであればよい。1だ、このr#累は酵素活性全
発揮しうる形態であればたり、単離された形に限定され
るものではない。
オニンを分解してグリシンとアセトアルデヒドを生成し
うるものであればよい。1だ、このr#累は酵素活性全
発揮しうる形態であればたり、単離された形に限定され
るものではない。
従って、半精製品でもよく、粗抽出液、さらには培養物
、生菌体、凍結乾燥菌体、アセトン乾燥菌体ろるいはこ
れらの菌体の磨砕物等でろってもよい。さらに、酵素自
体あるいは菌体のま\公知の手段で固定化して用いても
よい。固定化方法は担体結合法、架橋法、包括法、凝集
法などを広く利用できる。
、生菌体、凍結乾燥菌体、アセトン乾燥菌体ろるいはこ
れらの菌体の磨砕物等でろってもよい。さらに、酵素自
体あるいは菌体のま\公知の手段で固定化して用いても
よい。固定化方法は担体結合法、架橋法、包括法、凝集
法などを広く利用できる。
DL−スレオニンは公知のいかなる方法で得られたもの
であってもよいが、不発明の方法はDT。
であってもよいが、不発明の方法はDT。
−スレオニンを不斉分解してL−スレオニンを得るもの
であり、一方、副産物がグリシンとアセトアルデヒドで
あるから、合成反応はアロ体の副生が少なく、マたグリ
シンとアセトアルデヒド全原料とするものが好都合であ
る。この点で、グリシンに金属塩を作用させてグリシン
金属錯体を形成させ、これにアセトアルデヒド會縮合さ
せてDL−スレオニンを製造する方法(特公昭48−2
1094、特公昭40−27752など)は本発明にお
いてDL−スレオニン全製造する方法として好適である
。DL−スレオニンは結晶を水に溶解して用いてもよい
が、合成反応液ろるいはそこからDL−スレオニン結晶
を取得する各種の中間精製工程液であってもIい。
であり、一方、副産物がグリシンとアセトアルデヒドで
あるから、合成反応はアロ体の副生が少なく、マたグリ
シンとアセトアルデヒド全原料とするものが好都合であ
る。この点で、グリシンに金属塩を作用させてグリシン
金属錯体を形成させ、これにアセトアルデヒド會縮合さ
せてDL−スレオニンを製造する方法(特公昭48−2
1094、特公昭40−27752など)は本発明にお
いてDL−スレオニン全製造する方法として好適である
。DL−スレオニンは結晶を水に溶解して用いてもよい
が、合成反応液ろるいはそこからDL−スレオニン結晶
を取得する各種の中間精製工程液であってもIい。
合成反応液等を使用する場合には、酵素反応1#1害物
質があれば事前に除去する必要かめることはいう1でも
ない。例えば、合成反応に用いる金属イオンが有害でめ
ればカチオン交換樹脂などで事前に除去しておく。
質があれば事前に除去する必要かめることはいう1でも
ない。例えば、合成反応に用いる金属イオンが有害でめ
ればカチオン交換樹脂などで事前に除去しておく。
I)L−スレオニンにD−スレオニンアルドラーゼを作
用させるには、要は両者を水性媒体中で混合子れば工い
。DL−スレオニンは酵累活性t著しく阻害しない程度
であればよいが、0.1〜2モル/l程度が好ましい。
用させるには、要は両者を水性媒体中で混合子れば工い
。DL−スレオニンは酵累活性t著しく阻害しない程度
であればよいが、0.1〜2モル/l程度が好ましい。
反応系の溶媒は原則として水であるが、酵素反応を阻害
しない有機溶媒等が含1れていてもよい。反応時のpH
は使用する酵素によって異なるが、例示した微生物が産
生ずる酵素の場合にはpH7〜10付近が好ましい。反
応温度も使用する酵素[よるが、例示した微生物が産生
ずる酵素の場合には30〜45℃の範囲が好適でおる。
しない有機溶媒等が含1れていてもよい。反応時のpH
は使用する酵素によって異なるが、例示した微生物が産
生ずる酵素の場合にはpH7〜10付近が好ましい。反
応温度も使用する酵素[よるが、例示した微生物が産生
ずる酵素の場合には30〜45℃の範囲が好適でおる。
1だ、この微生物の酵素の場合には、補酵素として、1
0−3〜106M程度のピリドキサール 5−リン酸を
共存させると酵素反応を促進させることができる。
0−3〜106M程度のピリドキサール 5−リン酸を
共存させると酵素反応を促進させることができる。
その他種々の目的で界面活性剤などを添加してもよい。
反応はバッチ方式で行なっても工く、連続方式で行なっ
てもよい。かぐして、反応は5〜100時間程度で終了
する。
てもよい。かぐして、反応は5〜100時間程度で終了
する。
反応終了後は、必要にエリ遠心分離、−過等で懸濁物を
除去してから、イオン交換樹脂処理、晶析等で精製し、
活性炭等で脱色してこの脱色液全濃縮することに1って
L−スレオ=7結晶を純粋な形で取得することができる
。酵素反応によってグリシンとアセトアルデヒドが副生
するが、グリシンは例えばイオン交換樹脂を用いタクロ
マトグラフイーによって容易に分離して回ワすることが
できる。アセトアルデヒドは酵素反応中に同時に副生す
るグリシンと縮合反応し7(す、D−スレオニンアルド
ラーゼによる逆反応を起こしてグリシンと再結合してD
−スレオ= ンやD−アロスレオニンを生じたりするの
で、アセトアルデヒドはむしろ反応中に蒸溜等で回収し
てしまうのがよい。
除去してから、イオン交換樹脂処理、晶析等で精製し、
活性炭等で脱色してこの脱色液全濃縮することに1って
L−スレオ=7結晶を純粋な形で取得することができる
。酵素反応によってグリシンとアセトアルデヒドが副生
するが、グリシンは例えばイオン交換樹脂を用いタクロ
マトグラフイーによって容易に分離して回ワすることが
できる。アセトアルデヒドは酵素反応中に同時に副生す
るグリシンと縮合反応し7(す、D−スレオニンアルド
ラーゼによる逆反応を起こしてグリシンと再結合してD
−スレオ= ンやD−アロスレオニンを生じたりするの
で、アセトアルデヒドはむしろ反応中に蒸溜等で回収し
てしまうのがよい。
本発明の方法を用いれば、工業的に安IIl]lt/C
大量生産されているDL−スレオニンを簡便な手段で容
易に取得することができ、安価なL−スレオニンを市場
に供給できる。また、副生するグリシンとアセトアルデ
ヒドも市場価値の高いものであり、特にグリシン、また
はグリシンとアセトアルデヒドを出発物質とするDL−
スレオニンの合成法と組合わせれば、これらの副産物全
合成原料として再利用できるのでさらに好ましい。
大量生産されているDL−スレオニンを簡便な手段で容
易に取得することができ、安価なL−スレオニンを市場
に供給できる。また、副生するグリシンとアセトアルデ
ヒドも市場価値の高いものであり、特にグリシン、また
はグリシンとアセトアルデヒドを出発物質とするDL−
スレオニンの合成法と組合わせれば、これらの副産物全
合成原料として再利用できるのでさらに好ましい。
次に、酵素製造例を示す。なお、チは丁べて重量チであ
る。
る。
酵素製造例 1
ポリベグトン0.5%、酵母エキス0.2チ、KH2P
O40,1% 、 MgSO40,05係、L−グルタ
ミン酸0.1%、およびD−スレオニン0.2%カラす
るpa 7.5の培地を調製し、51容の培養槽にその
31を投入して120°Cで15分間加熱殺菌した。こ
の培地にアリスロバクタ−DK−19微工研菌寄第62
01号を接種し、pH8VC保ちながら30°Cで20
時間通気および攪拌をしつつ培養した。
O40,1% 、 MgSO40,05係、L−グルタ
ミン酸0.1%、およびD−スレオニン0.2%カラす
るpa 7.5の培地を調製し、51容の培養槽にその
31を投入して120°Cで15分間加熱殺菌した。こ
の培地にアリスロバクタ−DK−19微工研菌寄第62
01号を接種し、pH8VC保ちながら30°Cで20
時間通気および攪拌をしつつ培養した。
培養終了後、培養液から菌体を遠心分離し、0.9チ食
塩水で洗浄後この湿菌体を10mMメルカプトエタノー
ルおよび0.lfiMピリドキサール5−リン酸を含む
pH7,5の0.1Mリン酸緩衝液10〇−中に分散し
た。この菌体分散液を20 KH2の超音波にて5分間
5回処理してから遠心し、上清成金分取した。次いで、
上清液tこプロタミン硫酸を加えて核酸全除去し、さら
にmf分画してD−スレオニンアルドラーゼ活性宮M画
分を集め′fC8 この自分金10771Mメルカプトエタノールおよび0
.117LMピリドキサール5−リンfit ’(1m
含むpH7,5の0.01 Mリン酸緩衝液で透析後D
gAl!;−セファデックスA−50100mj勿充填
したカラムに通液し、KOj塩濃度勾配法にて溶出し、
D−スレオニンアルドラーゼ活性区分を集めた。この区
分を限外p適法にて濃縮し、スレオニン脱アミン酵素を
含まない精製D−スレオニンアルドラーゼ溶液1[]m
t’i得た。この溶液のD−スレオニンアルドラーゼ活
性は5U/WLtでめった。
塩水で洗浄後この湿菌体を10mMメルカプトエタノー
ルおよび0.lfiMピリドキサール5−リン酸を含む
pH7,5の0.1Mリン酸緩衝液10〇−中に分散し
た。この菌体分散液を20 KH2の超音波にて5分間
5回処理してから遠心し、上清成金分取した。次いで、
上清液tこプロタミン硫酸を加えて核酸全除去し、さら
にmf分画してD−スレオニンアルドラーゼ活性宮M画
分を集め′fC8 この自分金10771Mメルカプトエタノールおよび0
.117LMピリドキサール5−リンfit ’(1m
含むpH7,5の0.01 Mリン酸緩衝液で透析後D
gAl!;−セファデックスA−50100mj勿充填
したカラムに通液し、KOj塩濃度勾配法にて溶出し、
D−スレオニンアルドラーゼ活性区分を集めた。この区
分を限外p適法にて濃縮し、スレオニン脱アミン酵素を
含まない精製D−スレオニンアルドラーゼ溶液1[]m
t’i得た。この溶液のD−スレオニンアルドラーゼ活
性は5U/WLtでめった。
酵素製造例 2
シュードモナスDK−2微工研菌寄第6200号および
アルカリゲネスハエカリスエFO12669を用い、い
ずれも酵素製造例1と同じ培地に同様に培養し、培養液
から同様に分離操作を行なって精製D−スレオニンアル
ドラーゼ溶液1゜−を取得した。得られた酵素溶液のD
−スレオニンアルドラーゼ活性は、シュードモナスDK
−2菌の場合には4.5U/−2そしてアルカリゲネス
ハエカリス菌の場合には4.2U/+++tでめった、
以下、実施例を示す。なお、スレオニン、アロスレオニ
ン、およびグリシンは、tθrt−ブチルアルコールニ
メチルエチルケトン: 水: 碗アンモニアの比が4:
3:2:+の混合液を展開溶媒としてペーパークロマト
グラフィーを行ない、ニンヒドリンで発色させてグリシ
ン、スレオニンおよびアロスレオニンのスポラトラ切抜
き、硝酸銅@ o、o o s%含むメタノールで抽出
して比色定量した。また、アセトアルデヒドはPEtG
6000X6mのカラムを用いたガスクロマトグラフィ
ーで定量した。
アルカリゲネスハエカリスエFO12669を用い、い
ずれも酵素製造例1と同じ培地に同様に培養し、培養液
から同様に分離操作を行なって精製D−スレオニンアル
ドラーゼ溶液1゜−を取得した。得られた酵素溶液のD
−スレオニンアルドラーゼ活性は、シュードモナスDK
−2菌の場合には4.5U/−2そしてアルカリゲネス
ハエカリス菌の場合には4.2U/+++tでめった、
以下、実施例を示す。なお、スレオニン、アロスレオニ
ン、およびグリシンは、tθrt−ブチルアルコールニ
メチルエチルケトン: 水: 碗アンモニアの比が4:
3:2:+の混合液を展開溶媒としてペーパークロマト
グラフィーを行ない、ニンヒドリンで発色させてグリシ
ン、スレオニンおよびアロスレオニンのスポラトラ切抜
き、硝酸銅@ o、o o s%含むメタノールで抽出
して比色定量した。また、アセトアルデヒドはPEtG
6000X6mのカラムを用いたガスクロマトグラフィ
ーで定量した。
次に本発明を実施例について説明するが、本発明はこれ
によりなんら限定されるものではなく、又以下の実施例
におけるD L−スレオニン結晶は次の合成法によった
。
によりなんら限定されるものではなく、又以下の実施例
におけるD L−スレオニン結晶は次の合成法によった
。
DT、−スレオニンの合成例
グリシン755’を水51に加熱溶解し塩基性炭酸%J
100tk徐々に加え加熱反応させる。
100tk徐々に加え加熱反応させる。
反応終了後過剰の塩基性炭酸銅を熱溶液から戸別し、こ
の1液を減圧濃縮後冷却すると結晶グリシン銅1101
會得る。
の1液を減圧濃縮後冷却すると結晶グリシン銅1101
會得る。
次にこのグリシン銅58v1アニオン交換樹脂S A
21 A (HCO2型)40fお工びアセトアルデヒ
ド45−を水11に加え40°Cで2時間かく拌反応さ
せる。反応完了後、反応液を5°Cで24時間放置すれ
ばビスアセトアルデヒドスレオニン銅の結晶が析出して
くる。これをろ過し、触媒とともに戸別された結晶を3
%アンモニア水0.61VC懸濁し、再び濾過する。こ
のp成金キレート樹脂ダウエックスA−1(NH4型)
1,2ノを充填したカラムに通過せしめ脱銅し、ニンヒ
ドリン反応陽性の部分を集め、この溶液を減圧にて濃縮
し、メタノールを加えて析出する結晶を含水メタノール
エリ再結晶すればアロスレオニンをまったく含まないD
L−スレオニン412が見られた。
21 A (HCO2型)40fお工びアセトアルデヒ
ド45−を水11に加え40°Cで2時間かく拌反応さ
せる。反応完了後、反応液を5°Cで24時間放置すれ
ばビスアセトアルデヒドスレオニン銅の結晶が析出して
くる。これをろ過し、触媒とともに戸別された結晶を3
%アンモニア水0.61VC懸濁し、再び濾過する。こ
のp成金キレート樹脂ダウエックスA−1(NH4型)
1,2ノを充填したカラムに通過せしめ脱銅し、ニンヒ
ドリン反応陽性の部分を集め、この溶液を減圧にて濃縮
し、メタノールを加えて析出する結晶を含水メタノール
エリ再結晶すればアロスレオニンをまったく含まないD
L−スレオニン412が見られた。
実施例 1
DL−スレオニン結晶2.s8?、ピリドキサール5−
リン酸10−6モル、メルカプトエタノール10−4モ
ル、および塩化マンガン10−3モルを含む30ゴの水
溶液に酵素製造例1で得られた精製D−スレオニンアル
ドラーゼ溶液10ゴを加え、減圧蒸溜して生成したアセ
トアルデヒドを反応液から除去、回収しながら30゛C
で24時間反応させた。反応中は0.I NNaOHで
反応液のpH全7.5〜8.5に保持した。
リン酸10−6モル、メルカプトエタノール10−4モ
ル、および塩化マンガン10−3モルを含む30ゴの水
溶液に酵素製造例1で得られた精製D−スレオニンアル
ドラーゼ溶液10ゴを加え、減圧蒸溜して生成したアセ
トアルデヒドを反応液から除去、回収しながら30゛C
で24時間反応させた。反応中は0.I NNaOHで
反応液のpH全7.5〜8.5に保持した。
反応終了後、反応液を希塩酸で中和してからH+型のD
owex 50WX8100−を充填したカラムに通液
し、水洗後、0.2Nアンモニアで吸着したスレオニン
、グリシン等を溶出し友。溶出液を減圧濃縮して乾固し
、水20−で再溶解して、希塩酸を加えて酸性水溶液に
して(pH3)再びH十型のDowex 50WX8
100 ml f充填したカラムに通液した。水洗後、
こんどは0.05 Nアンモニアを通液してスレオニン
含有区分を溶出させ、溶出液を減圧下で乾固した。この
乾固物に水10tntを加えて溶解し、エタノール10
m1’i徐々に添加して析出した結晶全分離した。
owex 50WX8100−を充填したカラムに通液
し、水洗後、0.2Nアンモニアで吸着したスレオニン
、グリシン等を溶出し友。溶出液を減圧濃縮して乾固し
、水20−で再溶解して、希塩酸を加えて酸性水溶液に
して(pH3)再びH十型のDowex 50WX8
100 ml f充填したカラムに通液した。水洗後、
こんどは0.05 Nアンモニアを通液してスレオニン
含有区分を溶出させ、溶出液を減圧下で乾固した。この
乾固物に水10tntを加えて溶解し、エタノール10
m1’i徐々に添加して析出した結晶全分離した。
得られた結晶は乾燥重量で0.95 fであり、ペーパ
ークロマトグラフィーによってスレオニンの純品である
ことを確認した。また、比旋光度も(ff、1者7=−
2a7(H2O)でめり、L−スL/オ=ンの純品のそ
れと一致した。
ークロマトグラフィーによってスレオニンの純品である
ことを確認した。また、比旋光度も(ff、1者7=−
2a7(H2O)でめり、L−スL/オ=ンの純品のそ
れと一致した。
0.05 Nアンモニアを更に通撤し、グリシン含有区
分を溶出し、溶出液を減圧下で乾固した。
分を溶出し、溶出液を減圧下で乾固した。
乾固物に水4−を加えて溶解し、エタノール4−を徐々
に添加して析出した結晶を分離した。
に添加して析出した結晶を分離した。
得られた結晶は乾燥重量で0.61であり、ペーパーク
ロマトグラフィーで分析したところグリシンのみでaつ
721.。
ロマトグラフィーで分析したところグリシンのみでaつ
721.。
一方、反応中に減圧蒸溜で回収されたアセトアルデヒド
は0.5fでめった。
は0.5fでめった。
実施例 2
酵素製造例2でシユードモナスDK−2微工研菌寄第6
200号エリ得られた精製D−スレオニンアルドラーゼ
溶液10fIXtを用い、実施例1と同様に反応させ、
分離操作を行なったところ、やはりアロスレオニンを全
く含まないスレオニンの結晶0゜96f1グリシン結晶
0.62r、およびアセトアルデヒド0.51 S’が
得られ′f′coなお、スレオニン結晶の比旋光度は〔
α];7=−2a7(H2O)で、L−スレオニンのみ
であった。
200号エリ得られた精製D−スレオニンアルドラーゼ
溶液10fIXtを用い、実施例1と同様に反応させ、
分離操作を行なったところ、やはりアロスレオニンを全
く含まないスレオニンの結晶0゜96f1グリシン結晶
0.62r、およびアセトアルデヒド0.51 S’が
得られ′f′coなお、スレオニン結晶の比旋光度は〔
α];7=−2a7(H2O)で、L−スレオニンのみ
であった。
実施例 3
酵素製造例2でアルカリゲネス・ハエ力リスIFO12
6/)9より得られた精製D−スレオニンアルドラーゼ
溶液10づを用い、実施例1と同様に反応させ、分離操
作を行なったところ、アロスレオニン”を全<含tない
スレオニン(7) M 晶Q、92S’、グリシン結晶
0.59f、お裏びアセトアルデヒド0.5Ofが得ら
れた。なお、スレオニン結晶の比旋光度け(a〕”A
=−2a7(H,、o)−CTJ−スレオニンのみでめ
った。
6/)9より得られた精製D−スレオニンアルドラーゼ
溶液10づを用い、実施例1と同様に反応させ、分離操
作を行なったところ、アロスレオニン”を全<含tない
スレオニン(7) M 晶Q、92S’、グリシン結晶
0.59f、お裏びアセトアルデヒド0.5Ofが得ら
れた。なお、スレオニン結晶の比旋光度け(a〕”A
=−2a7(H,、o)−CTJ−スレオニンのみでめ
った。
実施例 4
反応中に減圧蒸製操作を行なわなかった点を除いて、実
施例1と同様に反応、分離操作を行なったところ、アロ
スレオニン10係を含むスレオニン結晶0.8r、グリ
シン結晶0.5f、お工びアセトアルデヒド0.051
が得られた。
施例1と同様に反応、分離操作を行なったところ、アロ
スレオニン10係を含むスレオニン結晶0.8r、グリ
シン結晶0.5f、お工びアセトアルデヒド0.051
が得られた。
特許出願人 電気化学工業株式会社
代理人 中 不 宏
〃 井 −ト 昭
第1頁の続き
0発 明 者 小泉典秋
茨城県新治郡桜村千現2−11−
8径内ハイッ102号
0発 明 者 山田秀明
京都市左京区松ケ崎本の不可19
番地の1
手 続 補 正 薔 (自発補正〕昭和57
年4月19日 特許庁長官 島 1)春 樹 殿 1事件の表示 昭和56年特許卯混209984号 2発明の名称 L−スレオニンの取得方法 3、補正をする者 事件との関係 特許出願人 住 所 東京都千代田区有楽町1丁目4番1号名
称 C329)’!気化学工業株式会社代表者 篠
原 晃 住 所 東京都港区西新橋3丁目15番8号西新橋中
央ビル302号邂話(437)−5467氏 名
弁理士(7850) 中 木 安住 所
同 上 5補正命令の日付 自発補正 6.補正の対象 明細書の発明の詳細な説明の欄 7補正の内容 明細書の発明の詳細な説明の4−の記載を下記のとおり
補正する。
年4月19日 特許庁長官 島 1)春 樹 殿 1事件の表示 昭和56年特許卯混209984号 2発明の名称 L−スレオニンの取得方法 3、補正をする者 事件との関係 特許出願人 住 所 東京都千代田区有楽町1丁目4番1号名
称 C329)’!気化学工業株式会社代表者 篠
原 晃 住 所 東京都港区西新橋3丁目15番8号西新橋中
央ビル302号邂話(437)−5467氏 名
弁理士(7850) 中 木 安住 所
同 上 5補正命令の日付 自発補正 6.補正の対象 明細書の発明の詳細な説明の欄 7補正の内容 明細書の発明の詳細な説明の4−の記載を下記のとおり
補正する。
(イ)明細書第12頁17行の次に下記の1.載を加入
する。
する。
[[相] 分子量
セフ7デツクスG−200によるゲル濾過の結果分子量
100,000〜150,000と測定された。
100,000〜150,000と測定された。
■ 元素分析値
元素分析値は次の通りである
C : 5 1. 7 %
H: 78 %
N:15.7% 」
(ロ) 同第15頁15〜16行「かくして、・・・終
了する。」を下記の記載に訂正する。
了する。」を下記の記載に訂正する。
[反応時間は得られるL−スレオニンの使用目的に応じ
適宜選択される。たとえば未分解異性体の混在が許され
るよりなL−スレオニンを得たい場合には酵素分解反応
が完結する前に反応を停止すればよい。いずれにしても
反応時間は各酵素とも5〜100時間程度時間分である
。−1
適宜選択される。たとえば未分解異性体の混在が許され
るよりなL−スレオニンを得たい場合には酵素分解反応
が完結する前に反応を停止すればよい。いずれにしても
反応時間は各酵素とも5〜100時間程度時間分である
。−1
Claims (1)
- DL−スレオニンにD−スレオニンアルドラーゼ全作用
させることを特徴とするDL−スレオニンからL−スレ
オニンを取得する方法。
Priority Applications (5)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP20998481A JPS58116691A (ja) | 1981-12-28 | 1981-12-28 | L−スレオニンの取得方法 |
US06/449,216 US4492757A (en) | 1981-12-28 | 1982-12-13 | Process for preparing L-threonine |
GB08236625A GB2113691B (en) | 1981-12-28 | 1982-12-23 | Production of l-threonine |
DE3247703A DE3247703C2 (de) | 1981-12-28 | 1982-12-23 | Verfahren zur Gewinnung von L-Threonin |
FR8221816A FR2518988A1 (fr) | 1981-12-28 | 1982-12-27 | Procede pour preparer la l-threonine |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP20998481A JPS58116691A (ja) | 1981-12-28 | 1981-12-28 | L−スレオニンの取得方法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS58116691A true JPS58116691A (ja) | 1983-07-11 |
Family
ID=16581928
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP20998481A Pending JPS58116691A (ja) | 1981-12-28 | 1981-12-28 | L−スレオニンの取得方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS58116691A (ja) |
-
1981
- 1981-12-28 JP JP20998481A patent/JPS58116691A/ja active Pending
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