JP7451520B2 - ヒト化抗ＳＩＲＰα抗体 - Google Patents

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Description

本発明は、ＳＩＲＰαに対するヒト化抗体、及び、場合によって抗がん治療と組み合わせた、がんの治療におけるこれらの抗体の使用に関する。
1990年代後半以降、腫瘍細胞上の抗原を認識する治療用抗体が、がんの治療に利用されている。これらの治療用抗体は、異なる経路で悪性細胞に作用することができる。抗体と悪性細胞上の標的との結合によって引き起こされるシグナル伝達は、細胞増殖の阻害又はアポトーシスをもたらす。治療用抗体のＦｃ領域は、補体依存性細胞傷害（ＣＤＣ）、抗体依存性細胞傷害（ＡＤＣＣ）、及び／又は抗体依存性細胞貪食（ＡＤＣＰ）を誘発することができる。別のメカニズムは、抗体に依存した（ＣＤ８＋及び／又はＣＤ４＋）Ｔ細胞による抗腫瘍応答の誘導である可能性がある（抗体依存性の抗原提示（ＡＤＡＰ）；DiLillo and Ravetch Cell 2015, 161(5), 1035-1045；Bournazos and Ravetch Immunity 2017, 47(2), 224-233）。これは、例えば樹状細胞などの抗原提示細胞上に発現するＦｃ受容体を介して生じる。しかし、多くの場合、治療用抗体の単剤療法は十分に有効ではない。治療用抗体の有効性を改善する１つの方法は、ＡＤＣＣ及び／又はＡＤＣＰを改善することである。これは、例えば、Ｆｃ領域のアミノ酸置換による（Richards et al. Mol. Cancer Ther. 2008, 7(8), 2517-2527）又はＦｃ領域のグリコシル化に影響を与えることによる（Hayes et al. J. Inflamm. Res. 2016, 9, 209-219）Ｆｃγ受容体に対する親和性の改善によって行われた。
治療用抗体のＡＤＣＣ及び／又はＡＤＣＰを改善する別の方法は、治療用抗体をシグナル調節タンパク質α（ＳＩＲＰα）に対するアンタゴニスト抗体又は抗ＣＤ４７抗体と組み合わせることである（国際公開第2009/131453号）。ＣＤ４７－これは、最低でも複数のヒト腫瘍の内部及び／又は表面において上方制御されていることが判明している－が、単球、マクロファージ、樹状細胞及び好中球上に発現する抑制性免疫受容体ＳＩＲＰαに結合すると、ＳＩＲＰαは、食作用又は免疫エフェクター細胞のＦｃ受容体に依存する他の細胞破壊機構によるがん細胞の破壊を防ぐ阻害シグナルを伝達する。抗ＣＤ４７又は抗ＳＩＲＰα抗体が作用すると仮定した場合のメカニズムの１つは、ＣＤ４７－ＳＩＲＰα結合により生じる抑制性シグナル伝達の遮断で、ＡＤＣＣ、ＡＤＣＰ及び／又はＡＤＡＰの増加をもたらす（Tjeng et al. Proc Natl Acad Sci USA 2013, 110(27), 11103-11108；Liu et al. Nature Med. 2015, 21(10), 1209-1215）。
ＣＤ４７－ＳＩＲＰα相互作用に関するほとんどの臨床研究は、抗ＣＤ４７抗体の単剤療法及び治療用抗体との組合せに注目してきた（Weiskopf. Eur. J. Cancer 2017, 76, 100-109；Advani et al. N. Engl. J. Med. 2018, 379(18), 1711-1721）。ＣＤ４７は、ほとんどの正常組織の細胞の表面で広く発現しているにもかかわらず、抗ＣＤ４７抗体を抗がん治療に用いる研究が進んでいる。
がんに対する抗ＳＩＲＰα抗体単剤又は併用治療についての臨床研究は行われていない。抗ＳＩＲＰα抗体に関する研究の多くは、ＣＤ４７－ＳＩＲＰα相互作用のメカニズムに関するもので、マウス抗体を使用するものである；マウス１２Ｃ４及び１．２３Ａは、トラスツズマブでオプソニン化されたＳＫＢＲ３細胞の好中球媒介ＡＤＣＣを増加させることが報告された（Zhao et al. PNAS 2011, 108(45), 18342-18347）。国際公開第2015/138600号は、マウス抗ヒトＳＩＲＰα抗体ＫＷＡＲ２３及びそのキメラＦａｂ断片を開示し、in vitroでセツキシマブを介した食作用を増加させることを開示する。国際公開第2018/026600号は、Ｎ２９７Ａ変異を有するヒトＩｇＧ１のＦｃを含むヒト化ＫＷＡＲ２３を開示する。国際公開第2013/056352号は、ＩｇＧ４ ２９ＡＭ４-５及び他のＩｇＧ４のヒト抗ＳＩＲＰα抗体を開示する。ＩｇＧ４ ２９ＡＭ４-５は、８ｍｇ／ｋｇで週３回、４週間の投与で、ＮＳＧ（NOD scid γ）マウスの右大腿骨に注入した原発性のヒト急性骨髄性白血病（ＡＭＬ）細胞の生着を減少させた。国際公開第2017/178653号は、ＳＩＲＰα１及びＳＩＲＰαＢＩＴに結合するが、ＳＩＲＰγには結合しないキメラ抗ＳＩＲＰα抗体ＨＥＦＬＢを開示する。ただ、抗体をヒト化するとＳＩＲＰαＢＩＴとの結合は維持されるが、ＳＩＲＰα１には結合しなくなる。例えば、白人の５１．３％は少なくとも１つのＳＩＲＰα１の対立遺伝子を有するので、それらの免疫細胞は（ヘテロ接合の場合少なくとも部分的に）ＳＩＲＰαＢＩＴにのみ結合する抗体に反応しない（Treffers et al. Eur J Immunol. 2018, 48(2), 344-354）。国際公開第2018/057669号は、ヒトＳＩＲＰα１及び／又はヒトＳＩＲＰαＢＩＴのドメイン１に対するヒト化抗ニワトリＳＩＲＰα抗体を開示する。国際公開第2018/107058号は、マウス抗ＳＩＲＰα抗体３Ｆ９及び９Ｃ２がＳＩＲＰβ１ｖ１に結合しないことを開示し、これらの抗体はＳＩＲＰα特異的で、平衡結合定数はそれぞれ１．０×１０－８及び８．０×１０－８であることを示した。国際公開第2018/190719号は、ヒトＳＩＲＰγと結合するが、ヒトＳＩＲＰβ１とは結合しないヒト化抗ＳＩＲＰα抗体を開示する。
ヒトＳＩＲＰαは、アミノ末端のリガンド結合ドメインが高度に多型である（Takenaka et al. Nature Immun. 2007, 8(12), 1313-1323）：ＳＩＲＰαＢＩＴ（ｖ１）及びＳＩＲＰα１（ｖ２）は、最も一般的で最も相違する（１３残基異なる）多形で、ＣＤ４７に対するそれらの親和性は非常に類似する（Hatherley et al. J. Biol. Chem. 2014, 289(14), 10024-10028；Treffers et al. Eur J Immunol. 2018, 48(2), 344-354）。他の生化学的に特徴を有するヒトＳＩＲＰファミリーメンバーは、ＣＤ４７には結合しない、少なくとも２つの多型（ＳＩＲＰβ１ｖ１及びＳＩＲＰβ１ｖ２）を有するＳＩＲＰβ１、及び、Ｔ細胞及び活性化ＮＫ細胞で発現し、ＳＩＲＰαと比較して約１０分の１の親和性でＣＤ４７に結合するＳＩＲＰγである（van Beek et al. J Immunol. 2005, 175(12), 7781-7）。ＣＤ４７－ＳＩＲＰγ相互作用は抗原提示細胞とＴ細胞間の接触に関与し、Ｔ細胞活性化を共刺激し、Ｔ細胞増殖を促進する（Piccio et al. Blood 2005, 105, 2421-2427）。さらに、ＣＤ４７－ＳＩＲＰγ相互作用はＴ細胞の経内皮移動に影響を与える（Stefanidakis et al. Blood 2008, 112, 1280-1289）。
公知の抗ＳＩＲＰα抗体の欠点は、(i) ヒトＳＩＲＰγなどの他のヒトＳＩＲＰファミリーに結合して望ましくない副作用を引き起こす可能性があり、ヒトＳＩＲＰαに特異的ではないこと、又は、(ii) 一部の人々は抗ＳＩＲＰα抗体が結合しないＳＩＲＰαの対立遺伝子変異体を有しているので、ＳＩＲＰαの対立遺伝子変異体の１つ－例えば、ＳＩＲＰαＢＩＴ又はＳＩＲＰα１－のみと結合するためその特異性が限られていて、単剤又は併用治療に適さないことである。例えば、先行技術の抗体ＫＷＡＲ２３、ＳＥ５Ａ５、２９ＡＭ４-５及び１２Ｃ４は特異的でなく、Ｔ細胞の増殖及び動員に悪影響を与える可能性があるヒトＳＩＲＰγにも結合する。逆に、例えば１．２３Ａ ｍＡｂは特異性が高すぎて、ヒトＳＩＲＰα多型変異体ＳＩＲＰα１のみを認識し、少なくとも白人において優勢な変異体ＳＩＲＰαＢＩＴを認識しない（Zhao et al. PNAS 2011, 108(45), 18342-18347；Treffers et al. Eur J Immunol. 2018, 48(2), 344-354）。また、国際公開第2017/178653号に開示されているヒト化抗体ＨＥＦＬＢは、たとえＳＩＲＰαＢＩＴの対立遺伝子が１つ存在する場合でも、ＳＩＲＰα１に結合せず（ＳＰＲ測定；実施例参照）、ＳＩＲＰα１キャリアの免疫エフェクター細胞の抗腫瘍活性を促進しない程、特異性が高すぎる（図３）。
後に公開された国際公開第2018/210793号のみが、２つの主要なＳＩＲＰα多型変異体であるＳＩＲＰαＢＩＴ及びＳＩＲＰα１への特異的結合を示し、ＳＩＲＰγに結合せず、治療用抗体（抗体２～９）のＡＤＣＣを増加させる、キメラ抗ＳＩＲＰαアンタゴニスト抗体を開示する。国際公開第2018/210793号の表１には、２つのキメラ抗体のヒト化変異体が開示されている（抗体１０～１６）。
まとめると、当該技術分野では、単独で又は他のがんに対する治療用抗体と組み合わせて、がんの治療に有用な、改善された抗ＳＩＲＰα抗体が依然として必要とされている。より具体的には、ヒトＳＩＲＰγと結合しない又はヒトＳＩＲＰγとの結合性が低く若しくは減少され、それによって望ましくない副作用の危険性が低下し、かつ、抗ＳＩＲＰα抗体がヒトＳＩＲＰα１及びヒトＳＩＲＰαＢＩＴ多型の両者に結合して、ＳＩＲＰα１／ＳＩＲＰαＢＩＴヘテロ接合、ＳＩＲＰαＢＩＴホモ接合及びＳＩＲＰα１ホモ接合のヒトの大部分に適した、抗ＳＩＲＰαアンタゴニスト抗体の必要性がある。これらの特性を有し、抑制性、すなわちＳＨＰ-１及び／又はＳＨＰ-２を介したＳＩＲＰαシグナル伝達を低下させる抗ＳＩＲＰα抗体が必要である。そのような抗体は、単独で、又は好ましくはがんに対する治療用抗体と組み合わせて、がんの治療での使用に適している。
本発明は、単独で、又は好ましくは抗がん治療用抗体のようながん治療と組み合わせる、がんの治療での使用に適したＳＩＲＰαに対するヒト化抗体に関する。
第一の側面では、本発明は、重鎖相補性決定領域（ＨＣＤＲ）及び軽鎖相補性決定領域（ＬＣＤＲ）、ＨＣＤＲ１、ＨＣＤＲ２、ＨＣＤＲ３、ＬＣＤＲ１、ＬＣＤＲ２及びＬＣＤＲ３を含むヒト化抗ＳＩＲＰα抗体又はその抗原結合断片に関し、前記抗体又はその抗原結合断片は、
a. 配列番号３６で示されるアミノ酸配列を含むＨＣＤＲ１；
b. 配列番号４４で示されるアミノ酸配列を含むＨＣＤＲ２；
c. 配列番号４５で示されるアミノ酸配列を含むＨＣＤＲ３；
d. 配列番号３９で示されるアミノ酸配列を含むＬＣＤＲ１；
e. 配列番号４０で示されるアミノ酸配列を含むＬＣＤＲ２；及び
f. 配列番号４１で示されるアミノ酸配列を含むＬＣＤＲ３；
を含む。
好ましい態様では、抗ＳＩＲＰα抗体又はその抗原結合断片は、(a) 前記抗ＳＩＲＰα抗体又はその抗原結合断片が、配列番号５１に示されるアミノ酸配列を有するヒトＳＩＲＰα１の細胞外ドメインを用いた２５℃での表面プラズモン共鳴（ＳＰＲ）（好ましくはBiaCore（登録商標））による分析において、少なくとも１０－１０Ｍ、好ましくは少なくとも１０－１１Ｍの結合親和性でヒトＳＩＲＰα１に結合する；(b) 前記抗ＳＩＲＰα抗体又はその抗原結合断片が、配列番号５２に示されるアミノ酸配列を有するヒトＳＩＲＰαＢＩＴの細胞外ドメインを用いた２５℃でのＳＰＲ（好ましくはBiaCore（登録商標））による分析において、少なくとも１０－１０Ｍ、好ましくは少なくとも１０－１１Ｍの結合親和性でヒトＳＩＲＰαＢＩＴに結合する；(c) 前記抗ＳＩＲＰα抗体又はその抗原結合断片が、配列番号５６に示されるアミノ酸配列を有するカニクイザルＳＩＲＰαの細胞外ドメインを用いた２５℃でのＳＰＲ（好ましくはBiaCore（登録商標））による分析において、少なくとも１０－８Ｍ、好ましくは少なくとも１０－９Ｍの結合親和性でカニクイザルＳＩＲＰαに結合する；(d) 前記抗ＳＩＲＰα抗体又はその抗原結合断片が、フローサイトメトリー、好ましくは蛍光活性化細胞選別（ＦＡＣＳ）染色によるＴ細胞結合の測定において、ヒトＳＩＲＰγに結合しない；(e) 前記抗ＳＩＲＰα抗体又はその抗原結合断片が、配列番号５５に示されるアミノ酸配列を有するヒトＳＩＲＰγの細胞外ドメインを用いた２５℃でのＳＰＲ（好ましくはBiaCore（登録商標））による分析において、ヒトＳＩＲＰγに結合しない；並びに (f) 前記抗ＳＩＲＰα抗体又はその抗原結合断片が、ＩＬ-２酵素結合免疫吸着スポット（ＥＬＩＳｐｏｔ）及び／又はＴ細胞増殖分析において、免疫原性ではない、からなる群の１つ以上の特性を有する。
好ましい態様では、ヒト化抗ＳＩＲＰα抗体又はその抗原結合断片は、(a) 配列番号５１に示されるアミノ酸配列を有するヒトＳＩＲＰα１の細胞外ドメインを用いた２５℃でのＳＰＲ（好ましくはBiaCore（登録商標））による分析において、少なくとも１０－１０Ｍ、好ましくは少なくとも１０－１１Ｍの結合親和性でヒトＳＩＲＰα１に結合する；(b) 配列番号５２に示されるアミノ酸配列を有するヒトＳＩＲＰαＢＩＴの細胞外ドメインを用いた２５℃でのＳＰＲ（好ましくはBiaCore（登録商標））による分析において、少なくとも１０－１０Ｍ、好ましくは少なくとも１０－１１Ｍの結合親和性でヒトＳＩＲＰαＢＩＴに結合する；(c) 好ましくは、捕獲されたＣＤ４７からの解離に関するＳＰＲ（好ましくはBiaCore（登録商標））による分析において、より好ましくは、実施例６に記載のとおり、ＣＤ４７とＳＩＲＰα１及びＳＩＲＰαＢＩＴとの結合を阻止する、並びに (d) Ｔ細胞フローサイトメトリー、好ましくは蛍光活性化細胞選別（ＦＡＣＳ）染色において、ヒトＳＩＲＰγに結合しない。
好ましい態様では、本発明は、a. 抗体の重鎖可変ドメインが、４つの重鎖フレームワーク領域ＨＦＲ１～ＨＦＲ４、及び３つの相補性決定領域ＨＣＤＲ１～ＨＣＤＲ３を含み、それらは、ＨＦＲ１－ＨＣＤＲ１－ＨＦＲ２－ＨＣＤＲ２－ＨＦＲ３－ＨＣＤＲ３－ＨＦＲ４の順で動作可能に連結しており、前記各重鎖フレームワーク領域は、配列番号８で示されるアミノ酸配列のフレームワークアミノ酸配列と少なくとも９０％の配列同一性を有するか、又は、ＨＦＲ１～ＨＦＲ４は、表８～１１に示した１つ以上のアミノ酸置換において、配列番号８で示されるアミノ酸配列と異なり、かつ、b. 抗体の軽鎖可変ドメインが、４つの軽鎖フレームワーク領域ＬＦＲ１～ＬＦＲ４、及び３つの相補性決定領域ＬＣＤＲ１～ＬＣＤＲ３を含み、それらは、ＬＦＲ１－ＬＣＤＲ１－ＬＦＲ２－ＬＣＤＲ２－ＬＦＲ３－ＬＣＤＲ３－ＬＦＲ４の順で動作可能に連結しており、前記各軽鎖フレームワーク領域は、配列番号９で示されるアミノ酸配列のフレームワークアミノ酸配列と少なくとも９０％の配列同一性を有するか、又は、ＬＦＲ１、ＬＨＲ２及び／若しくはＬＦＲ４は、表１２～１４に示した１つ以上のアミノ酸置換において、配列番号９で示されるアミノ酸配列と異なる、ヒト化抗ＳＩＲＰα抗体又はその抗原結合断片に関する。
好ましい態様では、本発明のヒト化抗ＳＩＲＰα抗体又はその抗原結合断片は、重鎖可変領域（ＨＣＶＲ）及び軽鎖可変領域（ＬＣＶＲ）を含み、抗ＳＩＲＰα抗体又はその抗原結合断片は、配列番号８のアミノ酸配列のＨＣＶＲ及び配列番号９のアミノ酸配列のＬＣＶＲを含む。
好ましい態様では、本発明のヒト化抗ＳＩＲＰα抗体は、野生型のＦｃ領域を有する同じ抗ＳＩＲＰα抗体と比較して、ヒトＦｃα又はＦｃγ受容体との結合が低減した修飾Ｆｃ領域を含み、好ましくは、少なくとも１０、２０、３０、４０、５０、６０、７０、８０、９０％低減又は１００％低減している。好ましい態様では、修飾されたヒトＩｇＧ１のＦｃ領域は、ＥｕナンバリングでＬ２３４、Ｌ２３５、Ｇ２３７、Ｄ２６５、Ｄ２７０、Ｎ２９７、Ａ３２７、Ｐ３２８及びＰ３２９からなる群から選択される１つ以上の位置にアミノ酸置換を含む。より好ましくは、修飾されたヒトＩｇＧ１のＦｃ領域は、アミノ酸置換Ｌ２３４Ａ及びＬ２３５Ａ；Ｌ２３４Ｅ及びＬ２３５Ａ；Ｌ２３４Ａ、Ｌ２３５Ａ及びＰ３２９Ａ；又はＬ２３４Ａ、Ｌ２３５Ａ及びＰ３２９Ｇを含む。より好ましくは、抗体は、アミノ酸置換Ｌ２３４Ａ及びＬ２３５Ａ、又はＬ２３４Ｅ及びＬ２３５Ａを含む。最も好ましくは、抗体はアミノ酸置換Ｌ２３４Ａ及びＬ２３５Ａを含む。好ましい態様では、ヒトのＦｃ領域は他のアミノ酸置換を有してない。
第二の側面では、本発明は、本発明のヒト化抗ＳＩＲＰα抗体又はその抗原結合断片、及び薬学的に許容される添加剤を含む医薬組成物に関する。
第三の側面では、本発明は、医薬として使用するための、本発明のヒト化抗ＳＩＲＰα抗体又はその抗原結合断片、又は本発明の医薬組成物に関する。
第四の側面では、本発明は、がんの治療に使用するための、本発明のヒト化抗ＳＩＲＰα抗体若しくはその抗原結合断片、又は本発明の医薬組成物に関し、前記治療はさらに治療用抗体の投与を含み、前記がんは、好ましくは、ヒトの固形腫瘍又は血液悪性腫瘍である。好ましくは、治療用抗体は、腫瘍細胞表面の膜に結合した標的に対するもので、ヒトの免疫エフェクター細胞上の活性化Ｆｃ受容体に結合するヒトのＦｃ領域を含む。
好ましい態様では、ヒトの固形腫瘍は、（ＨＥＲ２陽性）乳癌、（ＥＧＦＲ陽性）結腸癌、（ＧＤ２陽性）神経芽腫、黒色腫、骨肉腫、（ＣＤ２０陽性）Ｂ細胞リンパ腫、（ＣＤ３８陽性）多発性骨髄腫、（ＣＤ５２陽性）リンパ腫、（ＣＤ３３陽性）急性骨髄性白血病（ＡＭＬ）、慢性骨髄性白血病（ＣＭＬ）、慢性リンパ性白血病（ＣＬＬ）、急性リンパ芽球性白血病（ＡＬＬ）、ろ胞性リンパ腫（ＦＬ）及びびまん性大細胞性Ｂ細胞リンパ腫（ＤＬＢＣＬ）を含む非ホジキンリンパ腫（ＮＨＬ）、肝細胞癌、多発性骨髄腫（ＭＭ）、膀胱癌、胃癌、卵巣癌、頭頸部癌、膵臓癌、腎癌、前立腺癌、肝細胞癌並びに肺癌かならる群から選択される。好ましい態様では、治療は、例えば、標的治療薬、好ましくは免疫療法剤などの抗がん治療化合物をさらに投与することを含む。
第五の側面では、本発明は、本発明のヒト化抗ＳＩＲＰα抗体又は抗原結合断片をコードするヌクレオチド配列を含有する核酸分子に関し、前記核酸分子は、好ましくは、抗体のＨＣＶＲ及びＬＣＶＲのうちの少なくとも１つをコードするヌクレオチド配列を含み、前記コードされたヌクレオチド配列は、好ましくは、宿主細胞中で、前記コードされたヌクレオチド配列の発現のための調節配列と動作可能に連結している。
第六の側面では、本発明は、本発明の核酸分子を含む宿主細胞に関する。
フローサイトメトリーによる抗体とＣＤ３＋Ｔ細胞で発現するＳＩＲＰγとの結合。平均蛍光強度（ＭＦＩ）のデータを示す。２人の健康なヒトの測定値を記号で示す。 フローサイトメトリーによる抗体とＣＤ３＋Ｔ細胞で発現するＳＩＲＰγとの結合。陽性細胞の割合（％）（図１ｂ）のデータを示す。２人の健康なヒトの測定値を記号で示す。 標的細胞としてＳＫＢＲ３ ＨＥＲ２陽性乳癌細胞を、エフェクター細胞としてヒト好中球を使用した場合の、トラスツズマブ（Tmab）単独、マウス１２Ｃ４抗ＳＩＲＰα抗体（mu12C4）とトラスツズマブの組合せ、マウス１２Ｃ４の可変領域をヒトＩｇＧ１の定常領域に移植した抗体（12C4huIgG1）とトラスツズマブの組合せ、並びに、マウス１２Ｃ４の可変領域をアミノ酸置換Ｌ２３４Ａ及びＬ２３５Ａを有するヒトＩｇＧ１の定常領域に移植した抗体（12C4huIgG1LALA、12C4-LALAともいう）とトラスツズマブの組合せの細胞毒性（％）として測定したＡＤＣＣの比較。好中球は、２つのＳＩＲＰαＢＩＴ対立遺伝子を有するヒトドナーから得た。トラスツズマブの濃度を、０、０．０５、０．５及び５μｇ／ｍｌと増加させ、また、抗ＳＩＲＰα抗体の濃度も、０．２、２及び２０μｇ／ｍｌと増加させた。 先行技術の抗ＳＩＲＰα抗体のさまざまな濃度（μｇ／ｍｌ；用量反応曲線）と組み合わせた、トラスツズマブ（Ｔｍａｂ；１０μｇ／ｍｌ）でオプソニン化されたＳＫＢＲ３細胞の好中球が媒介するＡＤＣＣ。好中球は１つのＳＩＲＰα１及び１つのＳＩＲＰαＢＩＴの対立遺伝子を有するヘテロ接合のヒトドナーから得た。個々の好中球ドナーを記号で示す。棒は全てのドナーの平均である。対照として、未処理の細胞及び１０μｇ／ｍｌのトラスツズマブで処理した細胞を使用した。トラスツズマブに対する反応を１００％としてデータを正規化している。Ｇ-ＣＳＦ及びＩＦＮγで一晩刺激した好中球を用いて実験を行った。ＡＤＣＣをDELFIA細胞傷害アッセイで測定した。 アミノ酸置換Ｌ２３４Ａ及びＬ２３５Ａを含むヒトＩｇＧ１の定常領域を有する本発明の抗体１～６のさまざまな濃度（μｇ／ｍｌ；用量反応曲線）と組み合わせた、トラスツズマブ（Ｔｍａｂ；１０μｇ／ｍｌ）でオプソニン化されたＳＫＢＲ３細胞の好中球が媒介するＡＤＣＣ。好中球は１つのＳＩＲＰα１及び１つのＳＩＲＰαＢＩＴの対立遺伝子を有するヒトドナーから得た。個々の好中球ドナーを記号で示す。棒は全てのドナーの平均である。対照として、未処理の細胞及び１０μｇ／ｍｌのトラスツズマブで処理した細胞を使用した。トラスツズマブに対する反応を１００％としてデータを正規化している。Ｇ-ＣＳＦ及びＩＦＮγで一晩刺激した好中球を用いて実験を行った。ＡＤＣＣをDELFIA細胞傷害アッセイで測定した。 アミノ酸置換Ｌ２３４Ａ及びＬ２３５Ａを含むヒトＩｇＧ１の定常領域を有する本発明の抗体７～１３のさまざまな濃度（μｇ／ｍｌ；用量反応曲線）と組み合わせた、トラスツズマブ（Ｔｍａｂ；１０μｇ／ｍｌ）でオプソニン化されたＳＫＢＲ３細胞の好中球が媒介するＡＤＣＣ。好中球は１つのＳＩＲＰα１及び１つのＳＩＲＰαＢＩＴの対立遺伝子を有するヒトドナーから得た。個々の好中球ドナーを記号で示す。棒は全てのドナーの平均である。トラスツズマブに対する反応を１００％としてデータを正規化している。Ｇ-ＣＳＦ及びＩＦＮγで一晩刺激した好中球を用いて実験を行った。ＡＤＣＣをDELFIA細胞傷害アッセイで測定した。 先行技術の抗ＳＩＲＰα抗体のさまざまな濃度（μｇ／ｍｌ；用量反応曲線）と組み合わせた、トラスツズマブ（Ｔｍａｂ；１０μｇ／ｍｌ）でオプソニン化されたＳＫＢＲ３細胞の好中球が媒介するＡＤＣＣ。好中球は２つのＳＩＲＰα１対立遺伝子を有するヒトドナーから得た。個々の好中球ドナーを記号で示す。棒は全てのドナーの平均である。対照として、未処理の細胞及び１０μｇ／ｍｌのトラスツズマブで処理した細胞を使用した。トラスツズマブに対する反応を１００％としてデータを正規化している。ＧＭ-ＣＳＦで１００分間刺激した好中球を用いて実験を行い、ＡＤＣＣを５１Ｃｒ放出アッセイで測定した。 アミノ酸置換Ｌ２３４Ａ及びＬ２３５Ａを含むヒトＩｇＧ１の定常領域を有する本発明の抗体７～１３のさまざまな濃度（μｇ／ｍｌ；用量反応曲線）と組み合わせた、トラスツズマブ（Ｔｍａｂ；１０μｇ／ｍｌ）でオプソニン化されたＳＫＢＲ３細胞の好中球が媒介するＡＤＣＣ。好中球は２つのＳＩＲＰα１対立遺伝子を有するヒトドナーから得た。個々の好中球ドナーを記号で示す。棒は全てのドナーの平均である。対照として、未処理の細胞及び１０μｇ／ｍｌのトラスツズマブで処理した細胞を使用した。トラスツズマブに対する反応を１００％としてデータを正規化している。ＧＭ-ＣＳＦで１００分間刺激した好中球を用いて実験を行い、ＡＤＣＣを５１Ｃｒ放出アッセイで測定した。 先行技術の抗ＳＩＲＰα抗体のさまざまな濃度（μｇ／ｍｌ；用量反応曲線）と組み合わせた、トラスツズマブ（Ｔｍａｂ；１０μｇ／ｍｌ）でオプソニン化されたＳＫＢＲ３細胞の好中球が媒介するＡＤＣＣ。好中球は２つのＳＩＲＰαＢＩＴ対立遺伝子を有するヒトドナーから得た。個々の好中球ドナーを記号で示す。棒は全てのドナーの平均である。対照として、未処理の細胞及び１０μｇ／ｍｌのトラスツズマブで処理した細胞を使用した。トラスツズマブに対する反応を１００％としてデータを正規化している。ＧＭ-ＣＳＦで１００分間刺激した好中球を用いて実験を行い、ＡＤＣＣを５１Ｃｒ放出アッセイで測定した。 アミノ酸置換Ｌ２３４Ａ及びＬ２３５Ａを含むヒトＩｇＧ１の定常領域を有する本発明の抗体１～６のさまざまな濃度（μｇ／ｍｌ；用量反応曲線）と組み合わせた、トラスツズマブ（Ｔｍａｂ；１０μｇ／ｍｌ）でオプソニン化されたＳＫＢＲ３細胞の好中球が媒介するＡＤＣＣ。好中球は２つのＳＩＲＰαＢＩＴ対立遺伝子を有するヒトドナーから得た。個々の好中球ドナーを記号で示す。棒は全てのドナーの平均である。対照として、未処理の細胞及び１０μｇ／ｍｌのトラスツズマブで処理した細胞を使用した。トラスツズマブに対する反応を１００％としてデータを正規化している。ＧＭ-ＣＳＦで１００分間刺激した好中球を用いて実験を行い、ＡＤＣＣを５１Ｃｒ放出アッセイで測定した。 ＳＩＲＰα１／ＳＩＲＰαＢＩＴヘテロ接合の健康なドナーの全血のフローサイトメトリーによる、抗ＳＩＲＰα抗体と顆粒球（左のパネル）、ＣＤ１４＋単球（中央のパネル）及びＣＤ３＋Ｔ細胞（右のパネル）との結合。それぞれの抗ＳＩＲＰα抗体に関連するアイソタイプ対照もグラフ中に示す。データは、蛍光強度の中央値（ＭＦＩ）として表す。 同上。 同上。 同上。 フローサイトメトリーによる、抗ＳＩＲＰα抗体と健康なドナーのバフィーコートから単離したＳＩＲＰγを発現するヒトＣＤ３＋Ｔ細胞との結合。それぞれの抗ＳＩＲＰα抗体に関連するアイソタイプ対照もグラフ中に示す。データは、蛍光強度の平均値（ＭＦＩ）として表す。 さまざまな濃度の抗体６若しくはアイソタイプ対照の存在下、又は不存在下における、ＣＤ４７リガンド細胞としてJurkat E6.1細胞を用いたJurkat ＳＩＲＰαＢＩＴシグナル伝達細胞の相対発光強度（ＲＬＵ）で測定したＳＩＲＰαへのＳＨＰ-１の動員。最大信号の％は以下の式で求めた：［ＲＬＵ／最大刺激のＲＬＵ（抗体なし）］×１００結果を、２回の実験の平均±ＳＥＭとして示す。 Jurkat ＳＩＲＰαＢＩＴシグナル伝達細胞及びＣＤ４７リガンド細胞としてのJurkat E6.1細胞で測定した、３．３μｇ／ｍｌの抗ＳＩＲＰα抗体のＳＩＲＰαＢＩＴシグナル伝達阻害効果。阻害効果は次のように計算した：１００％－（３．３μｇ／ｍｌにおける化合物の「最大信号の％」）。結果を、２回の実験の平均±ＳＥＭとして示す。 本発明の抗ＳＩＲＰα抗体６及び参照抗体と組み合わせた、トラスツズマブ（１０μｇ／ｍｌ）でオプソニン化されたＳＫＢＲ３細胞の好中球が媒介するＡＤＣＣ。好中球は、２つのＳＩＲＰαＢＩＴ対立遺伝子、２つのＳＩＲＰα１対立遺伝子又は１つのＳＩＲＰαＢＩＴ及び１つのＳＩＲＰα１の対立遺伝子を有するヒトドナーから得た。棒は全てのドナーの平均±ＳＥＭである。対照として、未処理の細胞及び１０μｇ／ｍｌのトラスツズマブで処理した細胞を使用した。各抗体について、用量反応曲線は（左から右へ）１０、１、０．１及び０．０１μｇ／ｍｌで作成した。ａは抗体６及び参照抗体を示し、ｂはアイソタイプ対照を示す。トラスツズマブに対する反応を１００％としてデータを正規化している。実験は、実施例１０に記載したように行った。 同上。 本発明の抗ＳＩＲＰα抗体６及び参照抗体と組み合わせた、セツキシマブ（５μｇ／ｍｌ）でオプソニン化されたＡ４３１細胞の好中球が媒介するＡＤＣＣ。好中球は、２つのＳＩＲＰαＢＩＴ対立遺伝子、２つのＳＩＲＰα１対立遺伝子又は１つのＳＩＲＰαＢＩＴ及び１つのＳＩＲＰα１の対立遺伝子を有するヒトドナーから得た。棒は全てのドナーの平均である。対照として、未処理の細胞及び５μｇ／ｍｌのセツキシマブで処理した細胞を使用した。各抗体について、用量反応曲線は（左から右へ）１０、１、０．１及び０．０１μｇ／ｍｌで作成した。ａは抗体６及び参照抗体を示し、ｂはアイソタイプ対照を示す。セツキシマブに対する反応を１００％としてデータを正規化している。実験は、実施例１０に記載したように行った。 同上。
定義
本明細書において使用する用語「抗体」は、２本の重鎖と２本の軽鎖を含有するモノクローナル抗体（ｍＡｂ）を指す。抗体のアイソタイプは、ＩｇＡ、ＩｇＥ、ＩｇＧ又はＩｇＭ抗体など任意のものであってもよい。抗体は、ＩｇＧＡクロスアイソタイプであってもよい（Kelton et al. Chemistry and Biology, 2014, 21, 1603-1609）。好ましくは、抗体はＩｇＧ抗体、例えばＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３又はＩｇＧ４抗体であり、より好ましくはＩｇＧ１又はＩｇＧ２抗体である。本明細書では、用語「免疫グロブリン」（Ｉｇ）は、抗体と交換可能に使用される。本発明による抗体は、好ましくは、ヒト化抗体又はヒト抗体である。
基本的な４本鎖抗体の単位は、２本の同じ軽鎖（Ｌ鎖）及び２本の同じの重鎖（Ｈ鎖）からなるヘテロ四量体の糖タンパク質である（ＩｇＭ抗体は、５つの基本的なヘテロ四量体単位とＪ鎖と呼ばれるポリペプチドからなり、１０か所の抗原結合部位を含み、また、分泌されたＩｇＡ抗体は重合して、Ｊ鎖とともに２～５個の基本的な４本鎖単位を含む多価の集合体を形成することができる）。ＩｇＧでは、４本鎖単位は一般に約150,000ダルトンである。各Ｌ鎖は１つのジスルフィド共有結合でＨ鎖と結合し、２本のＨ鎖は、Ｈ鎖のアイソタイプに応じて１つ以上のジスルフィド結合で互いに結合する。しかし、ＩｇＧは、その機能を維持しながら、１つ以上のジスルフィド結合を欠いていてもよい。各Ｈ鎖及びＬ鎖には、規則的に間隔を置いた鎖内ジスルフィド架橋も存在する。各Ｈ鎖は、Ｎ末端に可変ドメイン（ＶＨ）と、それに続き、α鎖及びγ鎖のそれぞれで３つの定常ドメイン（ＣＨ）、μ及びεアイソタイプで４つのＣＨドメインを有する。一般に、Ｈ鎖は第１の定常領域と第２の定常領域との間にヒンジ領域を含む。各Ｌ鎖は、Ｎ末端に可変ドメイン（ＶＬ）があり、もう一方の末端には定常ドメイン（ＣＬ）がある。ＶＬはＶＨと対をなし、ＣＬは重鎖の最初の定常ドメイン（ＣＨ１）と対をなす。特定のアミノ酸残基は、Ｌ鎖とＨ鎖の可変ドメイン間のインターフェースを形成すると考えられている。ＶＨとＶＬの対形成により単一の抗原結合部位が形成される。各クラスの抗体の構造と特性については、例えば、Basic and Clinical Immunology, 8th edition, Daniel P. Stites, Abba I. Terr and Tristram G. Parslow (eds.), Appleton & Lange, Norwalk, CT, page 71 and Chapter 6 (1994)を参照。
脊椎動物のＬ鎖は、定常ドメインのアミノ酸配列に基づき、カッパ（κ）及びラムダ（λ）と呼ばれる２つの明確に異なる型のいずれかに分類することができる。免疫グロブリンは、重鎖（ＣＨ）の定常ドメインのアミノ酸配列に応じて、さまざまなクラス又はアイソタイプに分類することができる。免疫グロブリンには、ＩｇＡ、ＩｇＤ、ＩｇＥ、ＩｇＧ及びＩｇＭの５つのクラスがあり、それぞれ、α、δ、ε、γ及びμと呼ぶ重鎖を有する。α及びγは、ＣＨの配列のわずかな違いと機能に基づいてさらに分類され、例えば、ヒトでは以下のサブクラスがある：ＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３、ＩｇＧ４、ＩｇＡｌ及びＩｇＡ２。
好ましくは、本発明の抗体は、ヒト化抗体又はヒト抗体である。さらにより好ましくは、抗体は、ヒト化又はヒトＩｇＧ抗体、最も好ましくは、ヒト化又はヒトＩｇＧ１ ｍＡｂである。抗体は、κ又はλ軽鎖、好ましくは（例えば、配列番号２６で示すアミノ酸配列を有する）κ軽鎖を有していてもよく、すなわち、ヒト化又はヒトＩｇＧ１-κ抗体である。本発明の抗体は、一例を挙げると、１つ以上の突然変異を加え、例えば半減期を延長させるように、及び／又はエフェクター機能を低下させるように改変した定常領域を含んでいてもよい。
本明細書における用語「モノクローナル抗体」及び「ｍＡｂ」は、実質的に均質な抗体集団から得られる抗体を指し、すなわち、集団を構成する個々の抗体は、少量で存在し得る自然に発生する可能性のある突然変異体を除いて同一である。修飾語「モノクローナル」は、抗体の製造方法が特定の方法に限定されると解釈すべきではない。当該技術分野において、モノクローナル抗体を製造するいくつかの方法が公知である。例えば、本発明で有用なモノクローナル抗体は、所望の抗原を提示するペプチドの混合物で動物を免疫化することによって製造してもよい。続いて、Ｂリンパ球を単離してミエローマ細胞と融合させるか、又は馴化培地及びフィーダー細胞の存在下で単一のＢリンパ球を数日間培養する。抗体を含むミエローマ又はＢリンパ球の上清を試験して、適切なハイブリドーマ又はＢリンパ球を選択する。モノクローナル抗体は、Koehler et al. Nature 1975, 256, 495-497によって最初に発表されたハイブリドーマ法で、適切なハイブリドーマから製造することができる。あるいは、適切なＢ細胞又はリンパ腫を溶解し、ＲＮＡを単離し、逆転写し、その配列を決定することができる。抗体は、細菌、真核生物又は植物細胞における組換えＤＮＡ法で製造することができる（例えば、米国特許第4,816,567号を参照）。
抗体の「可変領域」又は「可変ドメイン」は、抗体の重鎖又は軽鎖のアミノ末端ドメインを指す。用語「可変」は、可変ドメインの特定のセグメントの配列が抗体間で大きく異なるという現実を指す。可変ドメインは抗原結合に関与し、特定の抗原に対する抗体の特異性を定める。しかし、抗体間の配列の相違は、可変ドメインの約１１０のアミノ酸全体に均等に分布していない。むしろ、可変領域は、それぞれアミノ酸長が約９～１２であるが、例えば５アミノ酸残基である本発明のｍＡｂ中のＨＣＤＲ１のように、これより短くても、長くてもよい、「超可変領域（ＨＶＲ）」又は「相補性決定領域（ＣＤＲ）」と呼ばれる極端に変化した短い領域によって分離された、アミノ酸長が１５～３０のフレームワーク領域（ＦＲ）と呼ばれる比較的不変の領域で構成される。天然の抗体の重鎖及び軽鎖の可変ドメインは主にβシート構造の４つのＦＲを含み、ループを形成し、場合によってはβシート構造の一部を形成する、３つのＣＤＲによって接続される。各鎖中のＣＤＲはＦＲによって近接して位置し、他の鎖のＣＤＲとともに抗体の抗原結合部位の形成に関与する（Kabat et al. Sequences of Proteins of Immunological Interest, 5th Ed. Public Health Service, National Institutes of Health, Bethesda, MD. 1991参照）。定常ドメインは、抗体と抗原の結合には直接関与していないが、ＡＤＣＣ及び／又はＡＤＣＰにおける抗体の関与など、さまざまなエフェクター機能を示す。重鎖の可変ドメインは「ＶＨ」と呼ばれることがある。重鎖の可変ドメインは「ＶＬ」と呼ばれることがある。
本明細書において使用する用語「抗原結合断片」には、望ましい生物学的及び／又は免疫学的活性を示す限り、Ｆａｂ、Ｆａｂ’、Ｆ（ａｂ’）２、Ｆｖ、ｓｃＦｖ、及びｒＩｇＧ断片が含まれる。用語「抗原結合断片」は、さらに、単鎖（ｓｃ）抗体、単一ドメイン（ｓｄ）抗体、ダイアボディ又はミニボディを含む。例えば、抗体のパパインによる分解により、「Ｆａｂ」断片と呼ぶ２本の同一の抗原結合断片、及び容易に結晶化する「Ｆｃ」断片を得ることができる。Ｆａｂ断片は、Ｌ鎖全体と、Ｈ鎖の可変領域ドメイン（ＶＨ）及び１本の重鎖の第１の定常ドメイン（ＣＨ１）からなる。各Ｆａｂ断片は抗原結合に関して１価、つまり、単一の抗原結合部位を有する。抗体のペプシン処理により、単一の大きなＦ（ａｂ’）２断片を得ることができ、この断片は、２価の抗原結合活性を有する２つのジスルフィド結合で架橋したＦａｂ断片に対応し、依然として抗原と結合することができる。Ｆａｂ’断片は、ＣＨ１ドメインのＣ末端に、抗体ヒンジ領域における１つ以上のシステインを含むいくつかの残基が存在する点でＦａｂ断片とは異なる。Ｆａｂ’－ＳＨは、定常ドメインのシステイン残基が遊離チオール基であるＦａｂ’のことである。Ｆ（ａｂ’）２抗体断片は、もともと一対のＦａｂ’断片として得られ、鎖の間にヒンジシステインを有していた。抗体断片の他の化学的カップリングも知られている。Ｆｃ断片は、ジスルフィドで結合した２本のＨ鎖のＣ末端部分を含む。抗体のエフェクター機能は、Ｆｃ領域の配列によって決定され、この領域は、特定の細胞上のＦｃ受容体（ＦｃＲ）が認識する部分でもある。「Ｆｖ」は、完全な抗原認識部位及び抗原結合部位を含む最小の抗体断片である。この断片は、１つの重鎖可変領域ドメインと１つの軽鎖可変領域ドメインの密な非共有結合性会合による二量体からなる。単鎖Ｆｖ（ｓｃＦｖ）では、１つの重鎖可変ドメインと１つの軽鎖可変ドメインがフレキシブルなペプチドリンカーを介して共有結合しており、その結果、重鎖と軽鎖は、２本鎖のＦｖと同様の「二量体」構造で会合することができる。これらの２つのドメインの折りたたみから、抗原結合に関与するアミノ酸残基であって、抗体に抗原結合特異性を付与する、６つの超可変ループ（Ｈ鎖及びＬ鎖からそれぞれ３つのループ）が生じる。しかし、単一の可変ドメイン（又は抗原に特異的な３つのＣＤＲのみを有するＦｖの半分）も、結合部位全体と比較して親和性は低いものの、抗原を認識して結合する能力を有する。「ｓＦｖ」又は「ｓｃＦｖ」とも略される「単鎖Ｆｖ」は、単一のポリペプチド鎖で接続したＶＨ及びＶＬ抗体ドメインを含む抗体断片である。好ましくは、ｓＦｖポリペプチドは、ＶＨ及びＶＬドメインの間に、ｓＦｖが抗原に結合するための所望の構造を形成することを可能にするポリペプチドリンカーをさらに含む。ｓＦｖの総説については、Pluckthun in The Pharmacology of Monoclonal Antibodies, vol. 113, Rosenburg and Moore eds., Springer-Verlag, New York, pp. 269-315 (1994)を参照。“ｒＩｇＧ”は、約７５，０００ダルトンの還元されたＩｇＧを指し、ヒンジ領域のジスルフィド結合のみ、例えば2-メルカプトエチルアミン（2-ＭＥＡ）などの穏やかな還元剤で選択的に還元することによって得ることができる。
用語「抗ＳＩＲＰα抗体」又は「ＳＩＲＰαに結合する抗体」は、ＳＩＲＰαを標的とする診断薬及び／又は治療薬として使用することができる程度に十分な親和性でＳＩＲＰαに結合する抗体を指す。好ましくは、例えば、ラジオイムノアッセイ（ＲＩＡ）、表面プラズモン共鳴（ＳＰＲ）又は酵素免疫吸着法（ＥＬＩＳＡ）で測定した場合、抗ＳＩＲＰα抗体と関係のない非ＳＩＲＰタンパク質との結合は、抗体とＳＩＲＰαの結合の約１０％未満である。関係のない標的との結合は、例えばRetrogenix（登録商標）などの細胞マイクロアレイ技術を使用して概要を明らかにすることもできる。
「単離された抗体」は、特定され、自然環境から分離及び／又は回収された抗体である。自然環境における汚染成分は、抗体を治療に使用することを妨げる物質であり、酵素、ホルモン、及び他のタンパク質性又は非タンパク質性溶質を含む。好ましい態様では、抗体は、(1) 純度がローリー法で９５重量％を超えるまで、最も好ましくは９９重量％以上に、(2) 回転カップ式自動配列決定装置を用いて、少なくともＮ末端の若しくは内部のアミノ酸配列の残基を決定するのに十分な程度まで、又は (3) 還元若しくは非還元条件のＳＤＳ-ＰＡＧＥにおいてクーマシーブルー若しくは好ましくは銀染色を行った場合に均質になるまで、精製される。単離された抗体は、抗体の自然環境の少なくとも１つの成分は存在しないものの、組換え細胞内のin situでの抗体を含む。しかし、単離された抗体の製造では、通常、少なくとも１つの精製処理が行われる。
「結合親和性」は、一般に、分子（例．抗体）の単一の結合部位と、その結合パートナー（例．抗原）との間の非共有相互作用の強さ合計を指す。他に明示されない限り、本明細書における「結合親和性」は、結合ペア（例．抗体及び抗原）間の１：１相互作用を反映する固有の結合親和性を指す。本明細書において使用するパートナーＹに対する分子Ｘの結合親和性は、特定の抗原抗体相互作用の平衡解離定数（「結合定数」；ＫＤともいう）を指す。ＫＤは、会合定数（ｋｏｎ）に対する解離定数（ｋｏｆｆ）の比率である。したがって、ＫＤはｋｏｆｆ/ｋｏｎに等しく、モル濃度（Ｍ）で表される。その結果、ＫＤの値が小さいほど結合の親和性が強くなる。親和性は、本明細書に記載の方法を含む当該技術分野において公知の一般的な方法によって測定することができる。一般に、低親和性の抗体は抗原にゆっくりと結合し、容易に解離する傾向にあり、高親和性の抗体は抗原に速く結合し、長く結合したままの傾向がある。結合親和性を測定するさまざまな方法が当該技術分野において知られており、そのいずれも本発明の目的に使用することができる。特定の例示的な態様を以下に説明する。通常、ＫＤ値は、表面プラズモン共鳴（ＳＰＲ）を使用することによって、代表的には、当該技術分野において公知の方法（例．E.S. Day et al. Anal. Biochem. 2013, 440, 96-107）によるバイオセンサーシステム（例．BIAcore（登録商標））を使用して、例えば実施例に記載したような方法で求めることができる。あるいは、用語「結合親和性」は、例えば、ＥＬＩＳＡ又はフローサイトメトリーで求めた最大の結合の半分となる抗体の濃度（ＥＣ５０）を指す場合もある。
目的の抗原、例えばＳＩＲＰαに「結合する」抗体、は、当該抗原を発現する細胞又は組織を標的とする治療薬として有用で、他のタンパク質と強力に交差反応せず、当該抗原に十分な親和性で結合する抗体である。例えば、本発明の抗ＳＩＲＰα抗体は、ヒトＳＩＲＰα、すなわち、少なくともヒトＳＩＲＰα１及びヒトＳＩＲＰαＢＩＴ、可能であればカニクイザルＳＩＲＰα、あるいはＳＩＲＰβ１ｖ１及び／又はＳＩＲＰβ１ｖ２に結合するが、ＳＩＲＰγ又は無関係のタンパク質には結合しない。その様な態様では、抗体の「非標的」タンパク質への結合の程度は、蛍光活性化細胞選別（ＦＡＣＳ）分析又は放射性免疫沈降アッセイ（ＲＩＰＡ）において、抗体と標的タンパク質の結合の、好ましくは約１０％未満、より好ましくは約５％未満、より好ましくは約２％未満、より好ましくは約１％未満である。抗体と標的タンパク質の結合に関して、用語「特異的結合」、又は特定のポリペプチド若しくは特定のポリペプチド上のエピトープに「特異的に結合する」若しくは「特異的」であるとは、非特異的なものとは測定可能な程度に異なる結合を意味する。特異的結合は、例えば、一般に結合活性を持たない類似の構造の対照と比較した分子の結合の測定により求めることができる。例えば、特異的結合は、標識されていない過剰な標的といった標的に類似した対照との競合によって測定することができる。この場合、標識されていない過剰な標的により、プローブと標識された標的との結合が競合的に阻害されれば、特異的結合が示される。本明細書における用語「特異的結合」、又は特定のポリペプチド若しくは特定のポリペプチド上のエピトープに「特異的に結合する」若しくは「特異的」であるとは、例えば、２５℃におけるＳＰＲで、標的に対する少なくとも約１０－７Ｍ以上、好ましくは少なくとも約１０－８Ｍ、より好ましくは少なくとも約１０－９Ｍ、さらにより好ましくは少なくとも約１０－１０Ｍ、さらにより好ましくは少なくとも約１０－１１Ｍ、さらにより好ましくは少なくとも約１０－１２Ｍ以上のＫＤ（上述したように測定される）を有する分子によって示される。
本明細書において使用する用語「低親和性」は、用語「結合しない」と交換可能であって、ＥＬＩＳＡで求めたＥＣ５０が１５００ｎｇ／ｍｌを超える、及び／又は、好ましくは２５℃におけるＳＰＲで、例えば抗体と抗原の間のＫＤが、例えば１０－７Ｍよりも大きく、１０－６Ｍよりも大きく、又はさらに大きいというような、固定化された抗原と抗体との間で、特異的な結合が限られているか観察されない抗体と抗原の結合親和性を指す。
本明細書における用語「高親和性」は、実施例に記載のように２５℃におけるＳＰＲで測定した場合に、ＫＤが、通常、１０－８Ｍ、１０－９Ｍ、１０－１０Ｍ、１０－１１Ｍ未満、又はさらに低い抗体と抗原の結合親和性を指す。
非ヒト（例．げっ歯類）抗体の「ヒト化」形態は、非ヒト抗体に由来する配列が最小限とされた抗体（例．非ヒト－ヒトキメラ抗体）である。非ヒト抗体をヒト化するさまざまな方法が当該技術分野において知られている。例えば、Ｈ鎖（ＶＨ）及びＬ鎖（ＶＬ）の可変領域（ＶＲ）における抗原が結合するＣＤＲは、非ヒト、通常はマウス、ラット又はウサギの抗体に由来する。これらの非ヒトＣＤＲは、結合親和性や特異性などの抗体の特性が少なくとも部分的に保持されるように、ＶＨ及びＶＬ領域のヒトフレームワーク領域（ＦＲ１、ＦＲ２、ＦＲ３及びＦＲ４）と組み合わせられる。ヒトＦＲにおけるアミノ酸を、対応する元の非ヒトのアミノ酸と交換して、低い免疫原性を維持しながら、結合親和性の改善といった抗体の性能をさらに洗練することができる。あるいは、非ヒト抗体は、そのアミノ酸配列を改変してヒトが産生する抗体との類似性を高めることによりヒト化することができる。例えば、元の非ヒトのＦＲのアミノ酸は、対応するヒト抗体のアミノ酸と交換し、抗体の結合親和性を維持しながら、免疫原性を低下させる。非ヒト抗体のヒト化の代表的な方法は、ＣＤＲをヒト抗体の対応する配列に置き換えることによるWinterらの方法（Jones et al. Nature 1986, 321, 522-525；Riechmann et al. Nature 1988, 332, 323-327；Verhoeyen et al. Science 1988, 239, 1534-1536）である。
このようにヒト化された可変領域は、通常、ヒトの定常領域と組み合わせられる。一般に、ヒト化抗体は、通常、全て又は実質的に全てのＣＤＲが非ヒト免疫グロブリンのＣＤＲに対応し、全て又は実質的に全てのＦＲがヒト免疫グロブリン配列のＦＲである、２つの可変ドメインを含む。ヒト化抗体は、任意に、免疫グロブリン定常領域（Ｆｃ）、典型的にはヒト免疫グロブリンの定常領域の少なくとも一部分も含む。詳細については、Jones et al. Nature 1986, 321, 522-525; Riechmann et al. Nature 1988, 332, 323-327及びPresta. Curr. Op. Struct. Biol. 1992, 2, 593-596を参照。以下の総説及びそこで引用されている文献も参照：Vaswani and Hamilton. Ann. Allergy, Asthma and Immunol. 1998, 1, 105-115；Harris. Biochem. Soc. Transactions 1995, 23, 1035-1038；and Hurle and Gross. Curr. Op. Biotech. (1994), 5, 428-433。
本明細書において、用語「超可変領域」、「ＨＶＲ」は、配列が超可変である、及び／又は抗原との結合に関与するループを形成する、抗体可変ドメインの領域を指す。一般に、抗体は６つの超可変領域を有する：ＶＨに３つ（Ｈ１、Ｈ２、Ｈ３）、ＶＬに３つ（Ｌ１、Ｌ２、Ｌ３）。いくつかの超可変領域を記述する方法があり、これらは本明細書に含まれる。超可変領域は、一般に、「相補性決定領域」又は「ＣＤＲ」のアミノ酸残基（例．Kabatによるナンバリング；Kabat et al. Sequences of Proteins of Immunological Interest, 5th Ed. Public Health Service, National Institutes of Health, Bethesda, MD, 1991で番号を付与した場合、ＶＬでは、残基２４～３４（Ｌ１）、５０～５６（Ｌ２）及び８９～９７（Ｌ３）、ＶＨでは、約３１～３５（Ｈ１）、５０～６５（Ｈ２）及び９５～１０２（Ｈ３））；「超可変ループ」のアミノ酸残基（例．Chothiaによるナンバリング；Chothia and Lesk. J. Mol. Biol. 1987, 196, 901-917で番号を付与した場合、ＶＬでは、残基２４～３４（Ｌ１），５０～５６（Ｌ２）及び８９～９７（Ｌ３）、ＶＨでは、２６～３２（Ｈ１），５２～５６（Ｈ２）及び９５～１０１（Ｈ３））；並びに／又は、「超可変ループ」／ＣＤＲのアミノ酸残基（例．ＩＭＧＴによるナンバリング；Lefranc et al. Nucl. Acids Res. 1999, 27, 209-212；Ruiz et al. Nucl. Acids Res. 2000, 28, 219-221で番号を付与した場合、ＶＬでは、残基２７～３８（Ｌ１），５６～６５（Ｌ２）及び１０５～１２０（Ｌ３）、ＶＨでは、２７～３８（Ｈ１），５６～６５（Ｈ２）及び１０５～１２０（Ｈ３））を含む。場合によっては、抗体は、Honneger及びPlunkthunによるナンバリング（Mol. Biol. 2001, 309, 657-670）で番号を付与した場合、ＶＬでは残基２８、３６（Ｌ１）、６３、７４～７５（Ｌ２）及び１２３（Ｌ３）、ＶＨでは残基２８、３６（Ｈ１）、６３、７４～７５（Ｈ２）及び１２３（Ｈ３）の１つ以上に対称的な挿入を有する。Dondelingerらは、いくつかのナンバリングシステムとその使用法を再検討した（Dondelinger et al. Frontiers in Immunology, 2018, 9, Art 2278）。本発明の抗体及び抗原結合断片のＨＶＲ／ＣＤＲは、Kabatによるナンバリングに従って特定され、番号を付与されることが好ましい。
「フレームワーク」又は「ＦＲ」の残基は、本明細書において定義される超可変領域の残基以外の可変ドメインの残基である。
本明細書における「ブロッキング」抗体又は「アンタゴニスト」抗体は、天然のリガンドが結合することを部分的に又は完全に妨ぐ抗体を意味する。例えば、抗ＳＩＲＰαブロッキング抗体は、ＳＩＲＰαとＣＤ４７の結合を防ぐ。好ましいブロッキング抗体又はアンタゴニスト抗体は、抗原の生物活性を実質的に又は完全に阻害する。
用語「エピトープ」は、例えば抗体のような抗原結合タンパク質が結合する分子の一部である。この用語には、抗体又はＴ細胞受容体などの抗原結合タンパク質に特異的に結合することができる決定基が含まれる。エピトープは、連続的又は非連続的（例．ポリペプチド鎖中では、一次構造では互いに隣接していないが、三次構造を形成した分子内では隣接するアミノ酸残基が抗原結合タンパク質と結合する）である可能性がある。ある態様では、抗原結合タンパク質を製造するために用いるエピトープに含まれるアミノ酸残基をまったく含まないか、一部しか含まないにもかかわらず、当該エピトープと類似の三次元構造を含むという点で、エピトープは模倣的であるかもしれない。ほとんどの場合、エピトープはタンパク質の表面に存在するが、核酸などの他の分子上に存在する場合もある。エピトープ決定基には、アミノ酸、糖側鎖、ホスホリル、スルホニル又は硫酸基などの分子の表面の化学的に活性な基が含まれ、特定の三次元構造及び／又は特定の電荷を有していてもよい。一般に、特定の抗原に特異的な抗体は、タンパク質及び／又は高分子の混合物中の当該抗原上のエピトープを優先的に認識する。ＳＩＲＰαの細胞外ドメインは、ドメインｄ１、ｄ２又はｄ３が、例えばエピトープとなる可能性がある。
本明細書において、用語「Ｆｃ領域」は、野生型及び変異体のＦｃ領域を含む、免疫グロブリン重鎖のＣ末端領域を定義するために使用される。免疫グロブリン重鎖のＦｃ領域の境界は変化してもよく、ヒトＩｇＧのＦｃ領域は、通常、Ｃｙｓ２２６から、又はＰｒｏ２３０からそのＣ末端までと定義される。Ｆｃ領域のＣ末端リジン（ＥＵナンバリングでは残基４４７）は、例えば、抗体の産生若しくは精製中に、又は抗体の重鎖をコードする核酸の組換えにより、除去してもよい。したがって、インタクトな抗体の組成物は、全てのＫ４４７残基が除去された抗体の集団、Ｋ４４７残基が全く除去されていない抗体の集団、及びＫ４４７残基を有する抗体とＫ４４７残基を有さない抗体の混合物の抗体の集団を含んでいてもよい。
「機能性Ｆｃ領域」は、野生型のＦｃ領域の「エフェクター機能」を有する。抗体のエフェクター機能は、抗体のアイソタイプによって異なる。代表的な「エフェクター機能」には、補体成分１ｑ（Ｃ１ｑ）結合；ＣＤＣ；Ｆｃ受容体結合；ＡＤＣＣ；ＡＤＣＰ；ＡＤＡＰ；細胞表面受容体（例．Ｂ細胞受容体；ＢＣＲ）の下方調節及びＢ細胞活性化が含まれる。そのようなエフェクター機能は、一般に、Ｆｃ領域と結合ドメイン（例．抗体可変ドメイン）が結合していることを必要とし、例えば、本明細書で説明したさまざまなアッセイ法により評価することができる。
「野生型のＦｃ領域」は、自然界に見られるＦｃ領域のアミノ酸配列と同一のアミノ酸配列を含む。野生型のヒトＦｃ領域には、野生型のヒトＩｇＧ１ Ｆｃ領域（非Ａ型及びＡ型アロタイプ）、野生型のヒトＩｇＧ２ Ｆｃ領域、野生型のヒトＩｇＧ３ Ｆｃ領域及び野生型のヒトＩｇＧ４ Ｆｃ領域並びに自然に生じたその変異体が含まれる。
「変異型Ｆｃ領域」は、少なくとも１つのアミノ酸の修飾、好ましくは１つ以上のアミノ酸置換による、野生型のＦｃ領域のアミノ酸配列とは異なる配列を含む。好ましくは、変異体Ｆｃ領域は、野生型のＦｃ領域又は親ポリペプチドのＦｃ領域と比較して、少なくとも１つのアミノ酸置換、例えば、約１～約１０のアミノ酸置換、そして、好ましくは、野生型のＦｃ領域又は親ポリペプチドのＦｃ領域に約１～約５個のアミノ酸置換を有する。本明細書に記載の変異型Ｆｃ領域は、好ましくは、野生型のＦｃ領域及び／又は親ポリペプチドのＦｃ領域と少なくとも約８０％の相同性、そして、最も好ましくは少なくとも約９０％の相同性、より好ましくは少なくとも約９５％の相同性を有する。
「抗体依存性細胞媒介性細胞傷害」（「抗体依存性細胞傷害」ともいう）又は「ＡＤＣＣ」は、特定の細胞傷害性細胞（例．ナチュラルキラー（ＮＫ）細胞、好中球、及び単球／マクロファージ）のＦｃ受容体（ＦｃＲ）に結合した分泌されたＩｇが、これらの細胞傷害性のエフェクター細胞が抗原を有する標的細胞に特異的に結合することを可能にする細胞傷害性の形態を指す。ＮＫ細胞はＦｃγＲＩＩＩＡのみを発現するが、単球はＦｃγＲＩ、ＦｃγＲＩＩＡ／Ｂ及びＦｃγＲＩＩＩＡを発現する。ヒトの血液中で最も豊富な白血球である好中球もＡＤＣＣを媒介し、これは一般にＦｃγＲＩＩＡを発現する（Zhao et al. Natl Acad Sci U S A. 2011, 108(45), 18342-7；Treffers et al. Eur J Immunol. 2018, 48(2), 344-354；Matlung et al. Cell Rep. 2018, 23(13), 3946-3959）。造血細胞におけるＦｃＲの発現は、Bruhns and Joensson Immunol Rev. 2015, 268(1), 25-51の３３ページ、表２に要約されている。対象とする分子のＡＤＣＣ活性を評価するために、米国特許第5,500,362号又は第5,821,337号に記載されているような、又は実施例に記載されているようなin vitroでのＡＤＣＣアッセイを行うことができる。このようなアッセイに有用なエフェクター細胞には、単球及びＮＫ細胞の混合物を含む末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）、又は単離した単球、好中球若しくはＮＫ細胞が含まれる。あるいは、又は加えて、対象とする分子のＡＤＣＣ活性は、例えば、Clynes et al. Proc. Natl. Acad. Sci. (USA) 1998, 95, 652-656に記載の動物モデル、又はZhao et al, PNAS 2011に記載のＢ１６Ｆ１０モデルのような周知の腫瘍モデルにおいて、in vivoで評価することができる。「Ｆｃ受容体」又は「ＦｃＲ」は、抗体のＦｃ領域に結合する受容体を表す。好ましいＦｃＲは野生型のヒトＦｃＲである。さらに、好ましいＦｃＲは、ＩｇＧ抗体（γ受容体）に結合するもので、ＦｃγＲＩ、ＦｃγＲＩＩ及びＦｃγＲＩＩＩサブクラスの受容体を含み、これらの受容体のアレル変異体及び選択的スプライシングによる形態を含む。ＦｃγＲＩＩ受容体には、ＦｃγＲＩＩＡ（「活性化受容体」）及びＦｃγＲＩＩＢ（「阻害受容体」）が含まれ、これらは主にその細胞質ドメインにおいて異なる類似のアミノ酸配列を有する。活性化受容体ＦｃγＲＩＩＡは、細胞質ドメインにＩＴＡＭ（immunoreceptor tyrosine-based activation motif）を含む。阻害受容体ＦｃγＲＩＩＢは、細胞質ドメインにＩＴＩＭ（immunoreceptor tyrosine-based inhibition motif）を含む（総説M. in Daeeron. Annu. Rev. Immunol. 1997, 15, 203-234を参照）。ＦｃＲの総説は、Ravetch and Kinet. Annu. Rev. Immunol. 1991, 9, 457-492；Capel et al. Immunomethods 1994, 4, 25-34及びde Haas et al. J. Lab. Clin. Med. 1995, 126, 330-341を参照。将来特定されるものも含む他のＦｃＲが、本明細書における用語「ＦｃＲ」に包含される。
「ヒトエフェクター細胞」は、１つ以上のＦｃＲを発現し、エフェクター機能を発揮する白血球である。好ましくは、細胞はＦｃεＲＩＩＡ（好中球又は単球）又はＦｃγＲＩＩＩＡ（ＮＫ細胞又は単球）を発現し、ＡＤＣＣによるエフェクター機能を発揮する。ＡＤＣＣを媒介するヒト白血球には、ＰＢＭＣ、ＮＫ細胞、単球、マクロファージ及び好中球が含まれ、好中球が好ましい。エフェクター細胞は、天然の供給源、例えば血液、好ましくはヒトの血液から単離することができる。
本明細書における用語「治療用抗体」は、ヒトの治療に適した、上記で定義された抗体又はその抗原結合断片を指す。ヒトの治療に適した抗体は、十分な品質を有し、安全で、ヒトの特定の疾患の治療に有効である。品質は、確立したＧＭＰガイドラインで評価され、安全性及び有効性は、通常、欧州医薬品庁（ＥＭＡ）又は米国食品医薬品局（ＦＤＡ）といった医薬品規制当局の確立したガイドラインで評価される。これらのガイドラインは、当該技術分野において周知である。本明細書では、用語「治療用抗体」には抗ＳＩＲＰα抗体は含まれない。本明細書における用語「治療用抗体」は、例えば抗ＣＤ２０、抗ＨＥＲ２、抗ＧＤ２、抗ＥＧＦＲ又は抗ＣＤ７０抗体などの抗がん抗体を意味する。
「配列同一性」及び「配列類似性」は、２つの配列の長さに応じて、グローバル又はローカルアラインメントアルゴリズムを使用する、２つのアミノ酸配列又はヌクレオチド配列のアラインメントによって決定することができる。長さが類似する配列は、それらの全体にわたって配列を最適に整列させるグローバルアラインメントアルゴリズム（例．ニードルマン-ブンシュ）を使用して整列させることが好ましく、長さが実質的に異なる配列は、ローカルアラインメントアルゴリズム（例．スミス-ウォーターマン）を使用して整列させることが好ましい。配列は、（例えば、プログラムGAP又はBESTFITでデフォルトのパラメーターを使用して最適に整列された場合に）少なくとも特定の最小パーセンテージの配列同一性（以下に定義）を共有する場合、「実質的に同一」又は「本質的に類似」という可能性がある。GAPは、ニードルマン-ブンシュのグローバルアラインメントアルゴリズムを使用して、２つの配列をその全体（全長）にわたって整列させ、一致の数を最大にし、ギャップの数を最小にする。グローバルアラインメントは、２つの配列の長さが類似する場合に、配列の同一性を決定するために適切に用いられる。一般に、ギャップ開始ペナルティは、ヌクレオチドで５０、タンパク質で８、ギャップ伸長ペナルティは、ヌクレオチドで３、タンパク質で２、というギャップのデフォルトパラメーターが使用される。使用されるデフォルトのスコア行列は、ヌクレオチドではnwsgapdnaであり、タンパク質ではBlosum62である（Henikoff & Henikoff. PNAS 1992, 89, 915-919）。配列同一性の割合算出における配列のアラインメント及びスコアは、Accelrys Inc.（9685 Scranton Road, San Diego, CA 92121-3752 USA）が提供するGCG Wisconsin Package, Version 10.3のようなコンピュータープログラムを使用するか、又は、プログラム「needle」（グローバルなニードルマン-ブンシュ アルゴリズムを使用）若しくは「water」のEmbossWIN version 2.10.0（ローカルなスミス-ウォーターマンを使用）のようなオープンソースソフトウェアで、上述したGAPと同じパラメーターを使用するか、若しくはデフォルトの設定（「needle」と「water」の両者とも、タンパク質、ＤＮＡともに、ギャップ開始ペナルティを１０．０、ギャップ伸長ペナルティを０．５とし、スコア行列は、タンパク質の場合Blossum62、DNAの場合DNAFull）により決定することができる。配列の全長が実質的に異なる場合、スミス-ウォーターマンアルゴリズムのようなローカルアラインメントの使用が好ましい。あるいは、FASTA、BLASTなどのアルゴリズムを使用するパブリックデータベースの検索により、類似性の割合又は同一性を決定することもできる。
上記アラインメントプログラムを使用して２つのアミノ酸配列が整列されると、アミノ酸配列Ａとアミノ酸配列Ｂの配列同一性の％（あるいは、アミノ酸配列Ｂと特定の％の配列同一性を有する又は含むアミノ酸配列Ａと表現することもできる）は、以下のように計算される：（Ｘ／Ｙ）×１００（式中、Ｘは、当該配列アラインメントプログラムによるＡとＢのアラインメントにおいて、当該プログラムによって一致と認定されたアミノ酸残基の数であり、ＹはＢにおけるアミノ酸残基の総数である）。アミノ酸配列ＡとＢで長さが等しくない場合、Ｂに対するＡのアミノ酸配列同一性の％は、Ａに対するＢの配列同一性の％と等しくないことが理解される。
場合によっては、アミノ酸の類似性を決定する際に、いわゆる「保存的アミノ酸置換」を考慮に入れることができる。「保存的アミノ酸置換」とは、類似の側鎖を有する残基の互換性を指す。例えば、脂肪族の側鎖を有するアミノ酸残基のグループは、グリシン、アラニン、バリン、ロイシン及びイソロイシンで；脂肪族ヒドロキシル基の側鎖を有するアミノ酸のグループはセリン及びスレオニンで；アミド含有基の側鎖を有するアミノ酸のグループはアスパラギン及びグルタミンで；芳香族の側鎖を有するアミノ酸のグループは、フェニルアラニン、チロシン及びトリプトファンで；塩基性の側鎖を有するアミノ酸のグループは、リジン、アルギニン及びヒスチジンで；硫黄含有基の側鎖を持つアミノ酸のグループはシステイン及びメチオニンである。好ましい保存的アミノ酸置換のグループは、バリン－ロイシン－イソロイシン、フェニルアラニン－チロシン、リジン－アルギニン、アラニン－バリン及びアスパラギン－グルタミンである。天然アミノ酸それぞれの代表的な保存的置換は以下のとおり：ＡｌａとＳｅｒ；ＡｒｇとＬｙｓ；ＡｓｎとＧｌｎ又はＨｉｓ；ＡｓｐとＧｌｕ；ＣｙｓとＳｅｒ又はＡｌａ；ＧｌｎとＡｓｎ；ＧｌｕとＡｓｐ；ＧｌｙとＰｒｏ；ＨｉｓとＡｓｎ又はＧｌｎ；ＩｌｅとＬｅｕ又はＶａｌ；ＬｅｕとＩｌｅ又はＶａｌ；ＬｙｓとＡｒｇ、Ｇｌｎ又はＧｌｕ；ＭｅｔとＬｅｕ又はＩｌｅ；ＰｈｅとＭｅｔ、Ｌｅｕ又はＴｙｒ；ＳｅｒとＴｈｒ；ＴｈｒとＳｅｒ；ＴｒｐとＴｙｒ；ＴｙｒとＴｒｐ又はＰｈｅ；ＶａｌとＩｌｅ又はＬｅｕ。
「核酸構築物」又は「核酸ベクター」は、本明細書では、組換えＤＮＡ技術の使用による人工の核酸分子を意味すると理解される。したがって、用語「核酸構築物」は、天然の核酸分子（の一部）を含んでいてもよいが、天然の核酸分子それ自体は含まない。用語「発現ベクター」又は「発現構築物」は、これらを含む宿主細胞又は宿主生物において遺伝子を発現することができるヌクレオチド配列を指す。これらの発現ベクターは、通常、少なくとも適切な転写調節配列を含み、場合によっては３’転写終結シグナルも含む。発現エンハンサー要素など、発現に影響を与えるのに必要又は役立つ因子が存在してもよい。発現ベクターは、適切な宿主細胞に導入され、in vitroでの宿主細胞の培養によりコードされた配列を発現することができる。発現ベクターは、本発明の宿主細胞又は生物での複製に適している。
本明細書において、用語「プロモーター」又は「転写調節配列」は、１つ以上のコードされた配列の転写を制御するように機能する核酸断片を指し、転写の方向に対して、コードされた配列の転写開始部位の上流に位置し、ＤＮＡ依存性ＲＮＡポリメラーゼの結合部位、転写開始部位及び他のＤＮＡ配列の存在によって構造的に識別され、これには、転写因子結合部位、リプレッサー及びアクチベータータンパク質結合部位、及び直接的又は間接的に作用してプロモーターからの転写量を調節することが当業者に知られている他のヌクレオチド配列が含まれるが、これらに限定されるものではない。「構成的」プロモーターは、ほとんどの生理学的及び発生的条件において、大部分の組織で活性なプロモーターである。「誘導性」プロモーターは、例えば、化学的誘導物質の適用によって生理学的又は発生的に調節されるプロモーターである。
本明細書において用語「動作可能に連結」されたとは、機能的関係にあるポリヌクレオチド要素の連結を指す。核酸は、別の核酸配列と機能的な関係に位置する場合、「動作可能に連結」されている。例えば、転写調節配列がコードされた配列の転写に影響を与える場合、それはコードされた配列に動作可能に連結している。動作可能に連結されているとは、連結しているＤＮＡ配列は、通常連続しており、２つのタンパク質コード領域を結合する必要がある場合は、連続して読み枠内にあることを意味する。
本明細書における用語「ＡＤＣ」は、これまでに説明した治療用抗体又はその抗原結合断片とリンカーを介して結合した細胞毒性薬を指す。ＡＤＣ中の抗体又はその抗原結合断片は、抗ＳＩＲＰα抗体ではない。通常、細胞毒性薬は非常に強力で、例えば、デュオカルマイシン、カリケアマイシン、ピロロベンゾジアゼピン（ＰＢＤ）二量体、メイタンシノイド又はアウリスタチン誘導体である。リンカーは切断可能であり、例えば、切断可能なジペプチドであるバリン－シトルリン（ｖｃ）又はバリン－アラニン（ｖａ）が含まれ、例えば、スクシンイミジル-4-(N-マレイミドメチル)シクロヘキサン-1-カルボキシレート（ＳＭＣＣ）のように切断可能ではないものも含まれる。
本発明の抗体又はその断片
腫瘍の免疫回避機構ではＳＩＲＰαが重要な役割を果たすことが示されているが、ＳＩＲＰαを標的とする治療法は承認されていない。
ＳＩＲＰα（ＣＤ１７２抗原様ファミリーＡ、ＣＤ１７２ａ、ＳＨＰＳ-１、ＭｙＤ-１としても知られている）は、免疫エフェクター細胞上に存在する細胞外Ｉｇ様ドメインを有する膜貫通型糖タンパク質であるシグナル調節タンパク質（ＳＩＲＰ）の一種である。ＣＤ４７（インテグリン関連タンパク質、ＩＡＰとしても知られている）はＳＩＲＰαのリガンドである。ＳＩＲＰαのＮＨ２末端のリガンド結合ドメインは高度に多型である（Takenaka et al. Nature Immun. 2007, 8(12), 1313-1323）。しかし、この多型はＣＤ４７との結合に大きく影響しない。ＳＩＲＰαＢＩＴ（ｖ１）及びＳＩＲＰα１（ｖ２）は、最も一般的で、最も変化した（１３残基相違する）多形である（Hatherley et al. J. Biol. Chem. 2014, 289(14), 10024-10028）。ＳＩＲＰαは、ＣＤ４７の他にサーファクタントタンパク質（ＳＰ-Ａ及びＳＰ-Ｄ）にも結合することができる（Gardai et al 2003, Janssen et al. 2008, Fournier et al. 2012）。実際、ＣＤ４７はＳＩＲＰαのドメインＤ１に結合することができ、（同時に）ＳＰ-ＤはＳＩＲＰαのドメインＤ３に結合することができる。ＳＩＲＰαと同様、サーファクタントタンパク質は、マクロファージ及び／又は好中球が関与する、例えばアポトーシス細胞及び微生物に対する自然免疫／炎症反応に影響を与える。他の生化学的な特徴を有するヒトＳＩＲＰのファミリーはＳＩＲＰβ１及びＳＩＲＰγである。ＳＩＲＰファミリーの命名法は、van den Berg et al. J Immunology 2005, 175(12), 7788-9に記載されている。
ＳＩＲＰβ１（ＣＤ１７２Ｂとしても知られている）はＣＤ４７に結合せず（van Beek et al. J. Immunol. 2005, 175(12), 7781-7787, 7788-7789）、少なくとも２つのＳＩＲＰβ１多型変異体（ＳＩＲＰβ１ｖ１（ENSP00000371018）及びＳＩＲＰβ１ｖ２（ENSP00000279477））が知られている。ＳＩＲＰβ１の天然のリガンドはまだ不明であるが、抗ＳＩＲＰβ１特異的抗体を使用したin vitroの研究は、ＳＩＲＰβ１が、ＤＡＰ１２、Ｓｙｋ及びＳＬＰ-７６のチロシンリン酸化と、それに続くＭＥＫ-ＭＡＰＫ-ミオシン軽鎖キナーゼカスケードの活性化の誘導によるマクロファージの食作用促進に関与していることを示している（Matozaki et al. J. Biol. Chem. 2004, 279(28), 29450-29460）。ヒトＳＩＲＰβ１は単球や顆粒球などの骨髄細胞で発現するが、リンパ球では発現しない（Hayashi et al. J. of Biol Chem. 2004, 279(28)；Dietrich et al. The Journal of Immunology 2000, 164, 9-12）。
ＳＩＲＰγ（ＣＤ１７２Ｇとしても知られている）はＴ細胞及び活性化ＮＫ細胞で発現し、ＣＤ４７との結合親和性はＳＩＲＰαの１０分の１である。ＳＩＲＰγとＣＤ４７の相互作用は、抗原提示細胞とＴ細胞の接触に関与し、Ｔ細胞の活性化を共刺激し、Ｔ細胞の増殖を促進する（Piccio et al. Blood 2005, 105, 2421-2427）。ＳＩＲＰγとＣＤ４７の相互作用は、さらに、Ｔ細胞の経内皮移動に関与する（Stefanidakis et al. Blood 2008, 112, 1280-1289）。国際公開第2017/178653号は、ＳＩＲＰαとＳＩＲＰγの特にＣＤ４７と相互作用する領域における配列の高い類似性のために、先行技術の抗ＳＩＲＰα抗体もＳＩＲＰγに結合し、Ｔ細胞の増殖の阻害や免疫応答の低下などのヒトに望ましくない影響を及ぼすことを開示する。したがって、Ｔ細胞のＳＩＲＰγと結合しない本発明の抗ＳＩＲＰα抗体は、Ｔ細胞のＳＩＲＰγと結合する抗ＳＩＲＰα抗体とは対照的に、Ｔ細胞の血管外遊走をほとんど又は全く阻害しない、及び／又はＴ細胞の経内皮移動をほとんど又は全く阻害しないと仮定される。
本発明は、少なくとも２つの優勢なヒトＳＩＲＰα多型変異体であるＳＩＲＰαＢＩＴ及びＳＩＲＰα１に対する特異的結合を示す抗ＳＩＲＰαアンタゴニスト抗体に関する。好ましくは、本発明の抗ＳＩＲＰα抗体は、ヒトＳＩＲＰγに対する親和性（好ましくは、実施例に記載の、ＣＤ３＋Ｔ細胞ＦＡＣＳ染色又は表面プラズモン共鳴（好ましくはBiaCore（登録商標））によって測定）が、低下しているか、低いか、最も好ましくは親和性がない。好ましくは、本発明の抗ＳＩＲＰα抗体は、ヒトＳＩＲＰβ１ｖ１及び／又はヒトＳＩＲＰβ１ｖ２に対する親和性が低下しているか、低い。好ましくは、それらは治療用抗体のＡＤＣＣ及び／又はＡＤＣＰを増加させる。好ましい態様では、本発明の抗ＳＩＲＰα抗体は、カニクイザルＳＩＲＰαにも結合する。
アンタゴニスト抗体は特定の抗原に対して親和性を有し、抗体が抗原と結合すると、受容体におけるアゴニスト又はインバースアゴニストの機能を阻害する。この場合、抗ＳＩＲＰαアンタゴニスト抗体とＳＩＲＰαの結合は、ＳＩＲＰαとＣＤ４７の結合を妨げると仮定される。抗ＳＩＲＰαアンタゴニスト抗体は、ＣＤ４７が結合するのと同じ部位、つまりオルソステリック部位に結合し、ＳＩＲＰαとＣＤ４７のライゲーションを防ぎ、その結果、免疫エフェクター細胞のＦｃ受容体に依存する作用を負に調節するシグナル伝達を阻害する可能性がある。又は、抗ＳＩＲＰαアンタゴニスト抗体は、ＣＤ４７が結合する部位のすぐそばに結合し、立体障害によりＳＩＲＰαとＣＤ４７の間の相互作用を妨げる可能性がある。あるいは、ＣＤ４７と相互作用する部位の遠位にある抗体は、例えば受け入れることができないコンフォメーションを誘導することにより、ＳＩＲＰαとＣＤ４７の結合を阻止する可能性がある。理論に拘束されることを望むものではないが、ＳＩＲＰαとＣＤ４７の結合の阻止は、濃度３．３μｇ／ｍｌの抗ＳＩＲＰα抗体で実施例に記載のように測定した場合、ＳＩＲＰαシグナル伝達カスケードを、好ましくは６０％、より好ましくは少なくとも６５％、少なくとも７０％、少なくとも７５％、最も好ましくは少なくとも８０％、減少又は防止すると仮定される。
抗体が、例えば、ＳＩＲＰβ１ｖ１、ＳＩＲＰβ１ｖ２及びＳＩＲＰγなどの標的以外の抗原にも結合する場合、特に抗体がこれらの抗原に高い親和性で結合する場合、このような抗原は、抗体シンク（antibody sink）として機能する可能性がある。したがって、抗体のオフターゲット結合を最小限に抑えることにより抗体シンク効果が減少し、同じ特性を有する抗体と比較して、低用量でも有効であるか、又は、同じ用量で高い効果をもたらす可能性があると仮定される。
現在、ＳＩＲＰβ１の役割はよくわかっていない。したがって、本発明の抗体は、多型変異体（ＳＩＲＰβ１ｖ１及びＳＩＲＰβ１ｖ２）に対して比較的低い結合親和性を有することが好ましい。一方、ＳＩＲＰα（免疫受容体チロシン阻害モチーフ、ＩＴＩＭによるシグナル伝達）及びＳＩＲＰβ１（免疫受容体チロシン活性化モチーフ、ＩＴＡＭによるシグナル伝達）の活性化は、マクロファージやＰＭＮ／好中球などの免疫学的エフェクター細胞の機能に反対の影響を与えることが報告されている（van Beek et al. J. Immunol. 2005, 175(12), 7781-7787, 7788-7789）。さらに、マウスＳＩＲＰβ１受容体の誘発がマクロファージの食作用を促進することが報告されている（Hayashi et al. J. Biol. Chem. 2004, 279(28), 29450-29460）。Liuらは、抗体を介したＳＩＲＰβ１のライゲーションがｆＭＬＰ駆動のＰＭＮ経上皮遊走を増強したと報告している（J. Biol. Chem. 2005, 280 (43), 36132-36140）。いかなる理論にも拘束されることを望むものではないが、ＳＩＲＰβ１にも結合する抗ＳＩＲＰαブロッキング抗体がＳＩＲＰα及びＳＩＲＰβ１に対して反対の影響を与える可能性があると考えられる。最大の抗腫瘍細胞応答を得るために、ＳＩＲＰβ１への影響を制限又は回避し、同時に、ＳＩＲＰγとの結合を介した適応免疫細胞（Ｔ細胞）の遮断を回避しながら、ＳＩＲＰαを遮断することによって自然免疫細胞（例．ＰＭＮ／好中球及び／又はマクロファージ）の活動を刺激する抗体が必要である。
本発明の抗体は、好ましくは、以下の特徴：(i) ＣＤ４７とＳＩＲＰαＢＩＴ及びＳＩＲＰα１との結合を阻止することができる、(ii) ヒトＣＤ３＋Ｔ細胞に結合しない、(iii) ＳＩＲＰαシグナル伝達を低減することができる、の全てを有する。好ましくは、ＳＰＲで測定した場合、本発明の抗体はＳＩＲＰβ１ｖ１及び／又はＳＩＲＰβ１ｖ２との結合が減少しているか、又は低い。対照的に、公知の抗ＳＩＲＰα抗体は、単一の抗体中に全ての望ましい特異性を併せ持っていない（ＣＤ４７とＳＩＲＰαＢＩＴ及びＳＩＲＰα１との結合を阻止することができる全ての抗体は、ＳＩＲＰγとも結合する。ＨＥＦＬＢはＳＩＲＰγに結合しないでＳＩＲＰαＢＩＴを阻止することができるが、ＳＩＲＰα１を阻止するどころか、結合する能力もない）。ＳＩＲＰγと結合することなくＳＩＲＰα１及びＳＩＲＰαＢＩＴに結合することができる他の先行技術の抗体は、ＳＩＲＰαとＣＤ４７の結合を阻止することができず、したがって、ＳＨＰ-１動員の阻止で測定した場合に、ＳＩＲＰαシグナル伝達を阻止しないか、又は高いＩＣ５０でのみ阻止する。ＳＩＲＰα１及びＳＩＲＰαＢＩＴの両者に結合し阻止することができるにもかかわらず、ＳＨＰ-１動員の阻止で測定した場合に、ＳＥ５Ａ５は、ＳＩＲＰαシグナル伝達を阻止することができない。これらの特性は、実施例に記載されているか、実施例で参照されているように特定される。
第一の側面では、本発明は、ＳＩＲＰαに結合する抗体又はその抗原結合断片を提供する。本発明の抗ＳＩＲＰα抗体は、好ましくは、単離された抗体である。好ましくは、本発明の抗ＳＩＲＰα抗体又はその抗原結合断片は、霊長類のＳＩＲＰα、より好ましくはヒトＳＩＲＰα、最も好ましくは少なくとも対立遺伝子変異体ＳＩＲＰα１及びＳＩＲＰαＢＩＴに結合する。好ましい態様では、抗体又はその抗原結合断片は、好ましくは、実施例に記載のヒトＣＤ３＋Ｔ細胞ＦＡＣＳ染色、又はBiacore実験で測定した場合、従来技術の抗体と比較して、ＳＩＲＰγに対する結合が低下し、より好ましくはＳＩＲＰγに対する結合が弱く、最も好ましくはＳＩＲＰγに結合しない。好ましくは、抗体又はその抗原結合断片は、治療用抗体のＡＤＣＣ及び／又はＡＤＣＰを増加させる。好ましくは、本発明の抗ＳＩＲＰα抗体は、実施例に記載のDELFIA又は５１Ｃｒ放出アッセイで測定した場合、トラスツズマブ単独の場合と比較して、０．１μｇ／ｍｌの抗ＳＩＲＰα抗体で１０μｇ／ｍｌのトラスツズマブのＡＤＣＣを少なくとも１．２倍、より好ましくは１．３倍、より好ましくは１．４倍、より好ましくは１．５倍、より好ましくは１．６倍、より好ましくは１．７倍、より好ましくは１．８倍、より好ましくは１．９倍、より好ましくは２．０倍、より好ましくは２．１倍、より好ましくは２．２倍、最も好ましくは１．３倍、増加させる。
場合によっては本明細書に記載した他の態様と組み合わせて、好ましい態様では、本発明の抗ＳＩＲＰα抗体は、ヒト化又はヒト抗ＳＩＲＰα抗体であり、本発明の抗原結合断片は、ヒト化又はヒト抗ＳＩＲＰα抗体からのこれまでに説明した抗原結合断片である。より好ましくは、本発明の抗ＳＩＲＰα抗体は、ヒト化抗ＳＩＲＰα抗体であり、本発明の抗原結合断片は、ヒト化抗ＳＩＲＰα抗体に由来する。
本発明のヒト化抗体又はその抗原結合断片は、好ましくは、抗体又は断片が投与される対象において、抗体に対する免疫原性応答をほとんど誘発しないか、全く誘発しない。非ヒト抗体、例えばマウス若しくはラット抗体などのげっ歯類抗体若しくはウサギ抗体、又は非ヒト－ヒトキメラ抗体は、潜在的にヒトの抗非ヒト抗体応答を誘発する可能性があり、その場合、本発明のヒト化抗体又はその抗原結合断片は、当該非ヒト抗体又は宿主対象における非ヒト－ヒトキメラ抗体と比較して、実質的に低下した免疫原性応答を誘発する、及び／又は、誘発すると予想される。好ましくは、ヒト化抗体は、ヒトの抗非ヒト抗体応答を最小限とするか誘発しない、及び／又は、最小限とすることが予想されるか誘発しないと予想される。免疫原性試験は、Baker et al. Immunogenicity of protein therapeutics 2010, 1(4), 314-322；Hrding et al. MAbs 2010, 2(3), 256-265又はJoubert et al. PLoS.One 2016, 11(8), e0159328に記載されているような当該技術分野において公知の方法で行うことができる。最も好ましくは、本発明の抗体は、臨床的に許容可能なレベル以下の、ヒトの抗非ヒト抗体応答、特にヒト抗ウサギ抗体（ＨＡＲＡ）応答を誘発する。抗体が抗原に対する高い親和性及び他の好ましい生物学的特性を保持しながらヒト化されることがさらに重要である。
ＣＤＲは、Kabat（Kabat et al. Sequences of Proteins of Immunological Interest, 5th Ed. Public Health Service, National Institutes of Health, Bethesda, MD 1991, NIH publication no. 91-3242, pp. 662, 680, 689）、Chothia（Chothia and Lesk. J. Mol. Biol. 1987, 196, 901-917; Antibody Engineering Vol. 2, Chapter 3 by Martin, 2010, Kontermann and Duebel Eds. Springer-Verlag Berlin Heidelberg）又はＩＭＧＴ（Lefranc. The Immunologist 1999, 7, 132-136）の方法で決定することができる。本明細書で使用する重鎖及び軽鎖のＣＤＲを、Kabatの方法で決定した。それらは、配列表中の表１ａに示した配列番号のものである。本発明では、抗体の重鎖及び軽鎖定常領域における位置を示すためにＥｕナンバリングを使用する。「Ｅｕナンバリング」は、Kabat et al. Sequences of Proteins of Immunological Interest, 5th Ed. Public Health Service, National Institutes of Health, Bethesda, MD 1991, NIH publication no. 91-3242, pp. 662, 680, 689のＥｕインデックスを指す。
好ましい態様では、本発明は抗ＳＩＲＰα抗体、好ましくは、(a) ＳＨＧＩＳ（配列番号３６）を含むＨＣＤＲ１；ＴＩＧＴＧＶＩＴＹＦＡＳＷＡＫＧ（配列番号４４）を含むＨＣＤＲ２；ＧＳＡＷＮＤＰＦＤＰ（配列番号４５）を含むＨＣＤＲ３；ＱＡＳＱＳＶＹＧＮＮＤＬＡ（配列番号３９）を含むＬＣＤＲ１；ＬＡＳＴＬＡＴ（配列番号４０）を含むＬＣＤＲ２；ＬＧＧＧＤＤＥＡＤＮＴ（配列番号４１）を含むＬＣＤＲ３；(b) ＳＹＶＭＧ（配列番号３０）を含むＨＣＤＲ１；ＩＩＳＳＳＧＳＰＹＹＡＳＷＶＮＧ（配列番号３１）を含むＨＣＤＲ２；ＶＧＰＬＧＶＤＹＦＮＩ（配列番号３２）を含むＨＣＤＲ３；ＲＡＳＱＳＩＮＳＹＬＡ（配列番号３３）を含むＬＣＤＲ１；ＳＡＳＦＬＹＳ（配列番号３４）を含むＬＣＤＲ２；ＱＳＷＨＹＩＳＲＳＹＴ（配列番号３５）を含むＬＣＤＲ３；(c) ＳＨＧＩＳ（配列番号３６）を含むＨＣＤＲ１；ＴＩＧＴＧＶＩＴＹＹＡＳＷＡＫＧ（配列番号３７）を含むＨＣＤＲ２；ＧＳＡＷＮＤＰＦＤＹ（配列番号３８）を含むＨＣＤＲ３；ＱＡＳＱＳＶＹＧＮＮＤＬＡ（配列番号３９）を含むＬＣＤＲ１；ＬＡＳＴＬＡＴ（配列番号４０）を含むＬＣＤＲ２；ＬＧＧＧＤＤＥＡＤＮＶ（配列番号４６）を含むＬＣＤＲ３；(d) ＳＨＧＩＳ（配列番号３６）を含むＨＣＤＲ１；ＴＩＧＴＧＶＩＴＹＹＡＳＷＡＫＧ（配列番号３７）を含むＨＣＤＲ２；ＧＳＡＷＮＤＰＦＤＹ（配列番号３８）を含むＨＣＤＲ３；ＱＡＳＱＳＶＹＧＮＮＤＬＡ（配列番号３９）を含むＬＣＤＲ１；ＬＡＳＴＬＡＴ（配列番号４０）を含むＬＣＤＲ２；ＬＧＧＧＤＤＥＡＤＮＴ（配列番号４１）を含むＬＣＤＲ３；及び (e) ＳＨＧＩＳ（配列番号３６）を含むＨＣＤＲ１；ＴＩＧＴＧＧＩＴＹＹＡＳＷＡＫＧ（配列番号４２）を含むＨＣＤＲ２；ＧＳＡＷＮＤＰＦＤＩ（配列番号４３）を含むＨＣＤＲ３；ＱＡＳＱＳＶＹＧＮＮＤＬＡ（配列番号３９）を含むＬＣＤＲ１；ＬＡＳＴＬＡＴ（配列番号４０）を含むＬＣＤＲ２；ＬＧＧＧＤＤＥＡＤＮＴ（配列番号４１）を含むＬＣＤＲ３、からなる群から選択される、重鎖相補性決定領域（ＨＣＤＲ）及び軽鎖相補性決定領域（ＬＣＤＲ）、ＨＣＤＲ１、ＨＣＤＲ２、ＨＣＤＲ３、ＬＣＤＲ１、ＬＣＤＲ２及びＬＣＤＲ３を含むヒト化抗ＳＩＲＰα抗体又はその抗原結合断片に関する。より好ましくは、本発明の抗ＳＩＲＰα抗体又はその抗原結合断片は、(a) ＳＨＧＩＳ（配列番号３６）を含むＨＣＤＲ１；ＴＩＧＴＧＶＩＴＹＦＡＳＷＡＫＧ（配列番号４４）を含むＨＣＤＲ２；ＧＳＡＷＮＤＰＦＤＰ（配列番号４５）を含むＨＣＤＲ３；ＱＡＳＱＳＶＹＧＮＮＤＬＡ（配列番号３９）を含むＬＣＤＲ１；ＬＡＳＴＬＡＴ（配列番号４０）を含むＬＣＤＲ２；ＬＧＧＧＤＤＥＡＤＮＴ（配列番号４１）を含むＬＣＤＲ３；及び (b) ＳＹＶＭＧ（配列番号３０）を含むＨＣＤＲ１；ＩＩＳＳＳＧＳＰＹＹＡＳＷＶＮＧ（配列番号３１）を含むＨＣＤＲ２；ＶＧＰＬＧＶＤＹＦＮＩ（配列番号３２）を含むＨＣＤＲ３；ＲＡＳＱＳＩＮＳＹＬＡ（配列番号３３）を含むＬＣＤＲ１；ＳＡＳＦＬＹＳ（配列番号３４）を含むＬＣＤＲ２；ＱＳＷＨＹＩＳＲＳＹＴ（配列番号３５）を含むＬＣＤＲ３、からなる群から選択されるＨＣＤＲ及びＬＣＤＲを含む。
場合によっては上述した態様と組み合わせて、好ましい態様では、本発明の抗ＳＩＲＰα抗体又はその抗原結合断片は、以下の機能の１つ以上を有する。
好ましくは、抗ＳＩＲＰα抗体又はその抗原結合断片は、配列番号５１で示されるアミノ酸配列のヒトＳＩＲＰα１細胞外ドメインを用い表面プラズモン共鳴（好ましくはBiaCore（登録商標））によって２５℃で測定した場合に、１０－９Ｍ未満のＫＤで、より好ましくは１０－１０Ｍ未満のＫＤで、さらにより好ましくは１０－１１Ｍ未満のＫＤでヒトＳＩＲＰα１と結合する。好ましくは、抗ＳＩＲＰα抗体又はその抗原結合断片は、配列番号５２で示されるアミノ酸配列のヒトＳＩＲＰαＢＩＴ細胞外ドメインを用い表面プラズモン共鳴（好ましくはBiaCore（登録商標））によって２５℃で測定した場合に、１０－９Ｍ未満のＫＤで、より好ましくは１０－１０Ｍ未満のＫＤで、さらにより好ましくは１０－１１Ｍ未満のＫＤでヒトＳＩＲＰαＢＩＴと結合する。好ましくは、抗ＳＩＲＰα抗体又はその抗原結合断片は、配列番号５６で示されるアミノ酸配列のカニクイザルＳＩＲＰα細胞外ドメインを用い表面プラズモン共鳴（好ましくはBiaCore（登録商標））によって２５℃で測定した場合に、１０－７Ｍ未満のＫＤで、より好ましくは１０－８Ｍ未満のＫＤで、さらにより好ましくは１０－９Ｍ未満のＫＤでカニクイザルＳＩＲＰαと結合する。好ましくは、抗ＳＩＲＰα抗体又はその抗原結合断片は、実施例に記載のヒトＣＤ３＋Ｔ細胞ＦＡＣＳ染色で測定した場合に、ヒトＳＩＲＰγとの結合を検出することができない。好ましくは、抗ＳＩＲＰα抗体又はその抗原結合断片は、配列番号５５で示されるアミノ酸配列のヒトＳＩＲＰγ細胞外ドメインを用い表面プラズモン共鳴（好ましくはBiaCore（登録商標））によって２５℃で測定した場合に、ヒトＳＩＲＰγとの結合を示さない。好ましくは、抗ＳＩＲＰα抗体又はその抗原結合断片は、ＩＬ-２ ＥＬＩｓｐｏｔ及び／又はＴ細胞増殖アッセイで測定した場合に免疫原性が認められない。好ましくは、抗ＳＩＲＰα抗体又はその抗原結合断片は、配列番号５４で示されるアミノ酸配列のヒトＳＩＲＰβ１ｖ２細胞外ドメインを用い表面プラズモン共鳴（好ましくはBiaCore（登録商標））によって２５℃で測定した場合に、中程度から低い親和性でヒトＳＩＲＰβ１ｖ２と結合する。好ましくは、ＫＤは１０－１０Ｍを超え、より好ましくは１０－９Ｍを超える。好ましくは、ＳＩＲＰβ１ｖ２との中程度から低親和性の結合と組み合わせて、抗ＳＩＲＰα抗体又はその抗原結合断片は、配列番号５３で示されるアミノ酸配列のヒトＳＩＲＰβ１ｖ１細胞外ドメインを用い表面プラズモン共鳴（好ましくはBiaCore（登録商標））によって２５℃で測定した場合に、１０－１１Ｍを超える、より好ましくは３×１０－１１Ｍを超える、さらにより好ましくは１０－１０Ｍを超える、さらにより好ましくは１０－９Ｍを超えるＫＤでヒトＳＩＲＰβ１ｖ１と結合する。これらのアッセイは、実施例に記載されているか、実施例で参照されている。
場合によっては上述した態様と組み合わせて、好ましい態様では、本発明は、これまでに説明した抗ＳＩＲＰα抗体又はその抗原結合断片に関し、前記抗体は、ヒトＳＩＲＰαＢＩＴ及びヒトＳＩＲＰα１と特異的に結合し、実施例に記載のＣＤ３＋Ｔ細胞染色及び／又はＳＰＲで測定した場合にヒトＳＩＲＰγとの結合を検出することができない。ある態様では、上記抗ＳＩＲＰα抗体又はその抗原結合断片は、ＫＤをＳＰＲにより２５℃で測定した場合（実施例参照）、ヒトＳＩＲＰαＢＩＴと１０－９Ｍ未満のＫＤで、より好ましくは１０－１０Ｍ未満のＫＤで、さらにより好ましくは１０－１１Ｍ未満のＫＤで結合し、そして、ヒトＳＩＲＰα１と１０－８Ｍ未満のＫＤで、より好ましくは１０－９Ｍ未満のＫＤで、より好ましくは１０－１０Ｍ未満のＫＤで、さらにより好ましくは１０－１１Ｍ未満のＫＤで結合する。好ましくは、上記本発明の抗ＳＩＲＰα抗体又はその抗原結合断片は、ＫＤをＳＰＲにより２５℃で測定した場合（実施例参照）、１０－８Ｍを超えるＫＤで、より好ましくは１０－７Ｍを超えるＫＤで、より好ましくは１０－６Ｍを超えるＫＤで、さらにより好ましくは１０－５Ｍを超えるＫＤでヒトＳＩＲＰγと結合するか、最も好ましくはヒトＳＩＲＰγとの結合を検出することができない。
場合によっては上述した態様と組み合わせて、好ましい態様では、本発明の抗ＳＩＲＰα抗体又はその抗原結合断片は、(a) 配列番号５１で示されるアミノ酸配列のヒトＳＩＲＰα１細胞外ドメインを用い表面プラズモン共鳴（ＳＰＲ；好ましくはBiaCore（登録商標））によって２５℃で測定した場合（実施例参照）、１０－８Ｍ未満のＫＤで、より好ましくは１０－９Ｍ未満のＫＤで、より好ましくは１０－１０Ｍ未満のＫＤで、さらにより好ましくは１０－１１Ｍ未満のＫＤでヒトＳＩＲＰα１と結合する；(b) 配列番号５２で示されるアミノ酸配列のヒトＳＩＲＰαＢＩＴ細胞外ドメインを用いＳＰＲ（好ましくはBiaCore（登録商標））によって２５℃で測定した場合（実施例参照）、１０－９Ｍ未満のＫＤで、より好ましくは１０－１０Ｍ未満のＫＤで、さらにより好ましくは１０－１１Ｍ未満のＫＤでヒトＳＩＲＰαＢＩＴと結合する；(c) 好ましくはＳＰＲ（好ましくはBiaCore（登録商標））で捕捉したＣＤ４７からの解離の測定において、より好ましくは実施例６に記載のように、ＣＤ４７とＳＩＲＰα１及びＳＩＲＰαＢＩＴとの結合を阻止する；及び (d) ＣＤ３＋Ｔ細胞フローサイトメトリー、好ましくは、実施例に記載の蛍光活性化細胞選別（ＦＡＣＳ）染色及び／又はＳＰＲで測定した場合に、ヒトＳＩＲＰγとの結合を検出することができない。好ましくは、上述した態様と組み合わせて、抗ＳＩＲＰα抗体又はその抗原結合断片は、配列番号５４で示されるアミノ酸配列のヒトＳＩＲＰβ１ｖ２細胞外ドメインを用いＳＰＲ（好ましくはBiaCore（登録商標））によって２５℃で測定した場合に、中程度から低い親和性でヒトＳＩＲＰβ１ｖ２と結合する。好ましくは、ＫＤは１０－１０Ｍを超え、より好ましくは１０－９Ｍを超える。好ましくは、ＳＩＲＰβ１ｖ２との中程度から低親和性の結合と組み合わせて、抗ＳＩＲＰα抗体又はその抗原結合断片は、配列番号５３で示されるアミノ酸配列のヒトＳＩＲＰβ１ｖ１細胞外ドメインを用いＳＰＲ（好ましくはBiaCore（登録商標））によって２５℃で測定した場合に、１０－１１Ｍを超える、より好ましくは３×１０－１１Ｍを超える、さらにより好ましくは１０－１０Ｍを超える、さらにより好ましくは１０－９Ｍを超えるＫＤでヒトＳＩＲＰβ１ｖ１と結合する。これらのアッセイは、実施例に記載されているか、参照されている。
場合によっては上述した態様と組み合わせて、好ましい態様では、本発明は、抗ＳＩＲＰα抗体又はその抗原結合断片に関し、(a) 抗体の重鎖可変ドメインは、４つの重鎖フレームワーク領域ＨＦＲ１～ＨＦＲ４、及び３つの相補性決定領域ＨＣＤＲ１～ＨＣＤＲ３を含み、それらは、ＨＦＲ１－ＨＣＤＲ１－ＨＦＲ２－ＨＣＤＲ２－ＨＦＲ３－ＨＣＤＲ３－ＨＦＲ４の順で動作可能に連結しており、前記各重鎖フレームワーク領域は、配列番号１、３～６、８、１０～１５のいずれかで示されるアミノ酸配列のフレームワークアミノ酸配列と、少なくとも９０％、少なくとも９１％、少なくとも９２％、少なくとも９５％、少なくとも９７％、少なくとも９８％、少なくとも９９％、若しくは好ましくは１００％の配列同一性を有するか、又は、ＨＦＲ１～ＨＦＲ４は、表８～１１に示した１つ以上のアミノ酸置換において、配列番号１、３～６、８、１０～１５で示されるアミノ酸配列のいずれかと異なる；かつ、(b) 抗体の軽鎖可変ドメインは、４つの軽鎖フレームワーク領域ＬＦＲ１～ＬＦＲ４、及び３つの相補性決定領域ＬＣＤＲ１～ＬＣＤＲ３を含み、それらは、ＬＦＲ１－ＬＣＤＲ１－ＬＦＲ２－ＬＣＤＲ２－ＬＦＲ３－ＬＣＤＲ３－ＬＦＲ４の順で動作可能に連結しており、前記各軽鎖フレームワーク領域は、配列番号２、７若しくは９のいずれかで示されるアミノ酸配列のフレームワークアミノ酸配列と、少なくとも９０％、少なくとも９１％、少なくとも９２％、少なくとも９５％、少なくとも９７％、少なくとも９８％、少なくとも９９％、若しくは好ましくは１００％の配列同一性を有するか、又は、ＬＦＲ１、ＬＨＲ２及び／若しくはＬＦＲ４は、表１２～１４に示した１つ以上のアミノ酸置換において、配列番号２、７若しくは９で示されるアミノ酸配列のいずれかと異なる。好ましい態様では、本発明は、抗ＳＩＲＰα抗体又はその抗原結合断片に関し、(a) 抗体の重鎖可変ドメインは、４つの重鎖フレームワーク領域ＨＦＲ１～ＨＦＲ４、及び３つの相補性決定領域ＨＣＤＲ１～ＨＣＤＲ３を含み、それらは、ＨＦＲ１－ＨＣＤＲ１－ＨＦＲ２－ＨＣＤＲ２－ＨＦＲ３－ＨＣＤＲ３－ＨＦＲ４の順で動作可能に連結しており、前記各重鎖フレームワーク領域は、配列番号８で示されるアミノ酸配列のフレームワークアミノ酸配列と、少なくとも９０％、少なくとも９１％、少なくとも９２％、少なくとも９５％、少なくとも９７％、少なくとも９８％、少なくとも９９％、若しくは好ましくは１００％の配列同一性を有するか、又は、ＨＦＲ１～ＨＦＲ４は、表８～１１に示した１つ以上のアミノ酸置換において、配列番号８で示されるアミノ酸配列と異なる；かつ、(b) 抗体の軽鎖可変ドメインは、４つの軽鎖フレームワーク領域ＬＦＲ１～ＬＦＲ４、及び３つの相補性決定領域ＬＣＤＲ１～ＬＣＤＲ３を含み、それらは、ＬＦＲ１－ＬＣＤＲ１－ＬＦＲ２－ＬＣＤＲ２－ＬＦＲ３－ＬＣＤＲ３－ＬＦＲ４の順で動作可能に連結しており、前記各軽鎖フレームワーク領域は、配列番号９で示されるアミノ酸配列のフレームワークアミノ酸配列と、少なくとも９０％、少なくとも９１％、少なくとも９２％、少なくとも９５％、少なくとも９７％、少なくとも９８％、少なくとも９９％、若しくは好ましくは１００％の配列同一性を有するか、又は、ＬＦＲ１、ＬＨＲ２及び／若しくはＬＦＲ４は、表１２～１４に示した１つ以上のアミノ酸置換において、配列番号９で示されるアミノ酸配列と異なる。
好ましくは、重鎖の可変ドメインのＦＲ１、ＦＲ２、ＦＲ３及びＦＲ４の各位置（Kabatのナンバリングによる）のアミノ酸残基は、ＦＲ１、ＦＲ２、ＦＲ３及びＦＲ４について、それぞれ表８～１１に示されているとおりであるか、その保存的アミノ酸置換であり、かつ、軽鎖の可変ドメインのＦＲ１、ＦＲ２及びＦＲ４の各位置（Kabatのナンバリングによる）のアミノ酸残基は、ＦＲ１、ＦＲ２及びＦＲ４について、それぞれ表１２～１４に示されているとおりであるか、その保存的アミノ酸置換である。より好ましくは、フレームワーク領域内のアミノ酸残基は、表８～１４の対応する位置に示されるアミノ酸残基から選択される。
本発明の抗ＳＩＲＰα抗体又はその抗原結合断片は、好ましくは、(a) 配列番号３６で示されるアミノ酸配列を含むＨＣＤＲ１；配列番号４４で示されるアミノ酸配列を含むＨＣＤＲ２；配列番号４５で示されるアミノ酸配列を含むＨＣＤＲ３；配列番号３９で示されるアミノ酸配列を含むＬＣＤＲ１；配列番号４０で示されるアミノ酸配列を含むＬＣＤＲ２；配列番号４１で示されるアミノ酸配列を含むＬＣＤＲ３；配列番号８で示されるアミノ酸配列のフレームワークアミノ酸配列と少なくとも９０％、より好ましくは少なくとも９１％、より好ましくは少なくとも９２％、より好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９７％、より好ましくは少なくとも９８％、より好ましくは少なくとも９９％若しくは最も好ましくは１００％の配列同一性を有するか、又は、表８～１１に示した１つ以上のアミノ酸置換において、配列番号８で示されるアミノ酸配列と異なるＨＦＲ１～ＨＦＲ４；配列番号９で示されるアミノ酸配列のフレームワークアミノ酸配列と少なくとも９０％、より好ましくは少なくとも９１％、より好ましくは少なくとも９２％、より好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９７％、より好ましくは少なくとも９８％、より好ましくは少なくとも９９％若しくは最も好ましくは１００％の配列同一性を有するＬＦＲ１～ＬＦＲ４、又は、表１２～１４に示した１つ以上のアミノ酸置換において、配列番号９で示されるアミノ酸配列と異なるＬＦＲ１、ＬＦＲ２及び／若しくはＬＦＲ４；(b) 配列番号３０で示されるアミノ酸配列を含むＨＣＤＲ１；配列番号３１で示されるアミノ酸配列を含むＨＣＤＲ２；配列番号３２で示されるアミノ酸配列を含むＨＣＤＲ３；配列番号３３で示されるアミノ酸配列を含むＬＣＤＲ１；配列番号３４で示されるアミノ酸配列を含むＬＣＤＲ２；配列番号３５で示されるアミノ酸配列を含むＬＣＤＲ３；配列番号１、３、４、５、１４若しくは１５のいずれかで示されるアミノ酸配列のフレームワークアミノ酸配列と少なくとも９０％、より好ましくは少なくとも９１％、より好ましくは少なくとも９２％、より好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９７％、より好ましくは少なくとも９８％、より好ましくは少なくとも９９％若しくは最も好ましくは１００％の配列同一性を有するか、又は、表８～１１に示した１つ以上のアミノ酸置換において、配列番号１、３、４、５、１４若しくは１５のいずれかで示されるアミノ酸配列と異なるＨＦＲ１～ＨＦＲ４；配列番号２で示されるアミノ酸配列のフレームワークアミノ酸配列と少なくとも９０％、より好ましくは少なくとも９１％、より好ましくは少なくとも９２％、より好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９７％、より好ましくは少なくとも９８％、より好ましくは少なくとも９９％若しくは最も好ましくは１００％の配列同一性を有するＬＦＲ１～ＬＦＲ４、又は、表１２～１４に示した１つ以上のアミノ酸置換において、配列番号２で示されるアミノ酸配列と異なるＬＦＲ１、ＬＦＲ２及び／若しくはＬＦＲ４；(c) 配列番号３６で示されるアミノ酸配列を含むＨＣＤＲ１；配列番号３７で示されるアミノ酸配列を含むＨＣＤＲ２；配列番号３８で示されるアミノ酸配列を含むＨＣＤＲ３；配列番号３９で示されるアミノ酸配列を含むＬＣＤＲ１；配列番号４０で示されるアミノ酸配列を含むＬＣＤＲ２；配列番号４６で示されるアミノ酸配列を含むＬＣＤＲ３；配列番号６若しくは１３で示されるアミノ酸配列のフレームワークアミノ酸配列と少なくとも９０％、より好ましくは少なくとも９１％、より好ましくは少なくとも９２％、より好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９７％、より好ましくは少なくとも９８％、より好ましくは少なくとも９９％若しくは最も好ましくは１００％の配列同一性を有するか、又は、表８～１１に示した１つ以上のアミノ酸置換において、配列番号６若しくは１３で示されるアミノ酸配列と異なるＨＦＲ１～ＨＦＲ４；配列番号７で示されるアミノ酸配列のフレームワークアミノ酸配列と少なくとも９０％、より好ましくは少なくとも９１％、より好ましくは少なくとも９２％、より好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９７％、より好ましくは少なくとも９８％、より好ましくは少なくとも９９％若しくは最も好ましくは１００％の配列同一性を有するＬＦＲ１～ＬＦＲ４、又は、表１２～１４に示した１つ以上のアミノ酸置換において、配列番号７で示されるアミノ酸配列と異なるＬＦＲ１、ＬＦＲ２及び／若しくはＬＦＲ４；(d) 配列番号３６で示されるアミノ酸配列を含むＨＣＤＲ１；配列番号３７で示されるアミノ酸配列を含むＨＣＤＲ２；配列番号３８で示されるアミノ酸配列を含むＨＣＤＲ３；配列番号３９で示されるアミノ酸配列を含むＬＣＤＲ１；配列番号４０で示されるアミノ酸配列を含むＬＣＤＲ２；配列番号４１で示されるアミノ酸配列を含むＬＣＤＲ３；配列番号６、１０若しくは１１で示されるアミノ酸配列のフレームワークアミノ酸配列と少なくとも９０％、より好ましくは少なくとも９１％、より好ましくは少なくとも９２％、より好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９７％、より好ましくは少なくとも９８％、より好ましくは少なくとも９９％若しくは最も好ましくは１００％の配列同一性を有するか、又は、表８～１１に示した１つ以上のアミノ酸置換において、配列番号６、１０若しくは１１で示されるアミノ酸配列と異なるＨＦＲ１～ＨＦＲ４；配列番号９で示されるアミノ酸配列のフレームワークアミノ酸配列と少なくとも９０％、より好ましくは少なくとも９１％、より好ましくは少なくとも９２％、より好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９７％、より好ましくは少なくとも９８％、より好ましくは少なくとも９９％若しくは最も好ましくは１００％の配列同一性を有するＬＦＲ１～ＬＦＲ４、又は、表１２～１４に示した１つ以上のアミノ酸置換において、配列番号９で示されるアミノ酸配列と異なるＬＦＲ１、ＬＦＲ２及び／若しくはＬＦＲ４；並びに (e) 配列番号３６で示されるアミノ酸配列を含むＨＣＤＲ１；配列番号４２で示されるアミノ酸配列を含むＨＣＤＲ２；配列番号４３で示されるアミノ酸配列を含むＨＣＤＲ３；配列番号３９で示されるアミノ酸配列を含むＬＣＤＲ１；配列番号４０で示されるアミノ酸配列を含むＬＣＤＲ２；配列番号４１で示されるアミノ酸配列を含むＬＣＤＲ３；配列番号１２で示されるアミノ酸配列のフレームワークアミノ酸配列と少なくとも９０％、より好ましくは少なくとも９１％、より好ましくは少なくとも９２％、より好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９７％、より好ましくは少なくとも９８％、より好ましくは少なくとも９９％若しくは最も好ましくは１００％の配列同一性を有するか、又は、表８～１１に示した１つ以上のアミノ酸置換において、配列番号１２で示されるアミノ酸配列と異なるＨＦＲ１～ＨＦＲ４；配列番号９で示されるアミノ酸配列のフレームワークアミノ酸配列と少なくとも９０％、より好ましくは少なくとも９１％、より好ましくは少なくとも９２％、より好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９７％、より好ましくは少なくとも９８％、より好ましくは少なくとも９９％若しくは最も好ましくは１００％の配列同一性を有するＬＦＲ１～ＬＦＲ４、又は、表１２～１４に示した１つ以上のアミノ酸置換において、配列番号９で示されるアミノ酸配列と異なるＬＦＲ１、ＬＦＲ２及び／若しくはＬＦＲ４、
からなる群から選択されるＨＣＤＲ、ＬＣＤＲ並びに重鎖及び軽鎖フレームワーク領域を含む。より好ましくは、本発明の抗ＳＩＲＰα抗体又はその抗原結合断片は、(a) 配列番号３６で示されるアミノ酸配列を含むＨＣＤＲ１；配列番号４４で示されるアミノ酸配列を含むＨＣＤＲ２；配列番号４５で示されるアミノ酸配列を含むＨＣＤＲ３；配列番号３９で示されるアミノ酸配列を含むＬＣＤＲ１；配列番号４０で示されるアミノ酸配列を含むＬＣＤＲ２；及び、配列番号４１で示されるアミノ酸配列を含むＬＣＤＲ３；で、(i) 配列番号８で示されるアミノ酸配列のフレームワークアミノ酸配列と少なくとも９０％、より好ましくは少なくとも９１％、より好ましくは少なくとも９２％、より好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９７％、より好ましくは少なくとも９８％、より好ましくは少なくとも９９％若しくは最も好ましくは１００％の配列同一性を有するか、又は、表８～１１に示した１つ以上のアミノ酸置換において、配列番号８で示されるアミノ酸配列と異なるＨＦＲ１～ＨＦＲ４；並びに (ii) 配列番号９で示されるアミノ酸配列のフレームワークアミノ酸配列と少なくとも９０％、より好ましくは少なくとも９１％、より好ましくは少なくとも９２％、より好ましくは少なくとも９５％、より好ましくは少なくとも９７％、より好ましくは少なくとも９８％、より好ましくは少なくとも９９％若しくは最も好ましくは１００％の配列同一性を有するＬＦＲ１～ＬＦＲ４、又は、表１２～１４に示した１つ以上のアミノ酸置換において、配列番号９で示されるアミノ酸配列と異なるＬＦＲ１、ＬＦＲ２及び／若しくはＬＦＲ４、を含む。
場合によっては上述した態様と組み合わせて、好ましい態様では、フレームワークの置換は、表８～１４に示す残基に限定される。したがって、フレームワーク領域内の他の位置は置換されていないことが好ましく、置換は表８～１４に示す残基又はその保存的アミノ酸に限定されることも好ましい。
場合によっては上述した態様と組み合わせて、好ましい態様では、本発明の抗ＳＩＲＰα抗体又はその抗原結合断片は、(a) 配列番号８のアミノ酸配列のＨＣＶＲ；配列番号９のアミノ酸配列のＬＣＶＲ；(b) 配列番号１のアミノ酸配列のＨＣＶＲ；配列番号２のアミノ酸配列のＬＣＶＲ；(c) 配列番号３のアミノ酸配列のＨＣＶＲ；配列番号２のアミノ酸配列のＬＣＶＲ；(d) 配列番号４のアミノ酸配列のＨＣＶＲ；配列番号２のアミノ酸配列のＬＣＶＲ；(e) 配列番号５のアミノ酸配列のＨＣＶＲ；配列番号２のアミノ酸配列のＬＣＶＲ；(f) 配列番号６のアミノ酸配列のＨＣＶＲ；配列番号７のアミノ酸配列のＬＣＶＲ；(g) 配列番号１０のアミノ酸配列のＨＣＶＲ；配列番号９のアミノ酸配列のＬＣＶＲ；(h) 配列番号６のアミノ酸配列のＨＣＶＲ；配列番号９のアミノ酸配列のＬＣＶＲ；(i) 配列番号１１のアミノ酸配列のＨＣＶＲ；配列番号９のアミノ酸配列のＬＣＶＲ；(j) 配列番号１２のアミノ酸配列のＨＣＶＲ；配列番号９のアミノ酸配列のＬＣＶＲ；(k) 配列番号１３のアミノ酸配列のＨＣＶＲ；配列番号７のアミノ酸配列のＬＣＶＲ；(l) 配列番号１４のアミノ酸配列のＨＣＶＲ；配列番号２のアミノ酸配列のＬＣＶＲ；及び (m) 配列番号１５のアミノ酸配列のＨＣＶＲ；配列番号２のアミノ酸配列のＬＣＶＲ、からなる群から選択されるＨＣＶＲ及びＬＣＶＲを含む。より好ましくは、本発明の抗ＳＩＲＰα抗体又はその抗原結合断片は、(a) 配列番号８のアミノ酸配列のＨＣＶＲ及び配列番号９のアミノ酸配列のＬＣＶＲ；(b) 配列番号１のアミノ酸配列のＨＣＶＲ及び配列番号２のアミノ酸配列のＬＣＶＲ；(c) 配列番号３のアミノ酸配列のＨＣＶＲ及び配列番号２のアミノ酸配列のＬＣＶＲ；(d) 配列番号４のアミノ酸配列のＨＣＶＲ及び配列番号２のアミノ酸配列のＬＣＶＲ；(e) 配列番号５のアミノ酸配列のＨＣＶＲ及び配列番号２のアミノ酸配列のＬＣＶＲ；(f) 配列番号１４のアミノ酸配列のＨＣＶＲ及び配列番号２のアミノ酸配列のＬＣＶＲ；並びに (g) 配列番号１５のアミノ酸配列のＨＣＶＲ及び配列番号２のアミノ酸配列のＬＣＶＲ、からなる群から選択されるＨＣＶＲ及びＬＣＶＲを含む。最も好ましくは、本発明の抗ＳＩＲＰα抗体又はその抗原結合断片は、配列番号８のアミノ酸配列のＨＣＶＲ及び配列番号９のアミノ酸配列のＬＣＶＲを含む。
本発明の抗体は、ヒト（ｈｕ）ＳＩＲＰαＢＩＴ及び（ｈｕ）ＳＩＲＰα１の両者に結合することに加え、カニクイザル（ｃｙ）ＳＩＲＰαにも結合する可能性があり、動物モデルにおけるin vivo研究が可能となる。他の種のＳＩＲＰαに対する本発明の抗体の親和性は除外されない。
いかなる理論にも拘束されることを望むものではないが、本発明の抗体又はその抗原結合断片は、以下のいずれかによって作用する可能性があると考えられる。本発明の抗体は、ＣＤ４７が結合するのと同じ部位に結合する可能性があり、ＳＩＲＰαとＣＤ４７の結合を防ぎ、その結果、免疫エフェクター細胞のＦｃ受容体に依存する作用を負に調節するシグナル伝達を阻害する。
本発明による抗ＳＩＲＰα抗体又はその抗原結合断片は、好ましくは、公知の抗ＳＩＲＰα抗体よりも特異的で、実施例に記載のヒトＣＤ３＋Ｔ細胞染色で測定した場合に、ヒトＳＩＲＰαＢＩＴ及びヒトＳＩＲＰα１の両者に対して優れた親和性を示し、ヒトＳＩＲＰγに対する親和性が低減しているか、より好ましくは、ヒトＳＩＲＰγに対する親和性が低いか、さらにより好ましくは、ヒトＳＩＲＰγに対して検出可能な親和性を有さない。
ある態様では、本発明の抗ＳＩＲＰα抗体は、軽鎖及び／又は重鎖の抗体定常領域を含む。当該技術分野において公知の抗体定常領域を使用することができる。軽鎖定常領域は、例えば、κ型又はλ型軽鎖定常領域、例えば、ヒトκ型又はλ型軽鎖定常領域であるかもしれない。重鎖定常領域は、例えば、α、δ、ε、γ又はμ型の重鎖定常領域、例えば、ヒトのα、δ、ε、γ又はμ型の重鎖定常領域であるかもしれない。ある態様では、軽鎖又は重鎖の定常領域は、天然の定常領域の断片、誘導体、改変体又は変異体である。
ある特別な態様では、本発明の抗ＳＩＲＰα抗体は、ヒト免疫エフェクター細胞上の活性化Ｆｃ受容体に結合するＦｃ領域を含む。このような抗ＳＩＲＰα抗体は、ＡＤＣＣ及び／又はＡＤＣＰを誘発することができるので、ＳＩＲＰα陽性腫瘍、好ましくは腎細胞癌又は黒色腫の単剤療法に好適であるかもしれない（Yanagita et al. JCI Insight 2017, 2(1), e89140）。いかなる理論にも拘束されることを望むものではないが、そのような抗体によるがん細胞の破壊は、少なくとも部分的には、ＡＤＣＣにより生じると考えられている。ヒト免疫エフェクター細胞は、さまざまな活性化Ｆｃ受容体を有しており、ライゲーションにより、食作用、トロゴサイトーシス、パーフォリン及びグランザイムの放出、サイトカインの放出、ＡＤＣＣ、ＡＤＣＰ、ＡＤＡＰ及び／又はその他のメカニズムを引き起こす。これらの受容体の例は、Ｆｃγ受容体、例えば、ＦｃγＲＩ（ＣＤ６４）、ＦｃγＲＩＩＡ（ＣＤ３２ａ）、ＦｃγＲＩＩＩＡ（ＣＤ１６ａ）、ＦｃγＲＩＩＩＢ（ＣＤ１６ｂ）、ＦｃγＲＩＩＣ（ＣＤ３２ｃ）、及びＦｃα受容体ＦｃαＲＩ（ＣＤ８９）である。さまざまな天然抗体のアイソタイプがこれらのさまざまな受容体に結合する。例えば、ＩｇＧ１はＦｃγＲＩ、ＦｃγＲＩＩＡ、ＦｃγＲＩＩＣ、ＦｃγＲＩＩＩＡ、ＦｃγＲＩＩＩＢに結合し、ＩｇＧ２はＦｃγＲＩＩＡ、ＦｃγＲＩＩＣ、ＦｃγＲＩＩＩＡに結合し、ＩｇＧ３はＦｃγＲＩ、ＦｃγＲＩＩＡ、ＦｃγＲＩＩＣ、ＦｃγＲＩＩＩＡ、ＦｃγＲＩＩＩＢに結合し、ＩｇＧ４はＦｃγＲＩ、ＦｃγＲＩＩＡ、ＦｃγＲＩＩＣ、ＦｃγＲＩＩＩＡに結合し、そして、ＩｇＡはＦｃαＲＩに結合する。
好ましい態様では、本発明の抗ＳＩＲＰα抗体は、ＩｇＡ又はＩｇＧアイソタイプのＦｃ領域を含む。より好ましくは、ＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３又はＩｇＧ４アイソタイプのＦｃ領域を含む抗ＳＩＲＰα抗体であり；ＩｇＧ１、ＩｇＧ２又はＩｇＧ４アイソタイプがさらに好ましい。最も好ましくは、ＩｇＧ１アイソタイプのＦｃ領域を含む抗ＳＩＲＰα抗体であり；好ましくは、配列番号２４で示されるアミノ酸配列である。
ヒト免疫エフェクター細胞上の活性化Ｆｃ受容体に結合するＦｃ領域を含む抗ＳＩＲＰα抗体は、治療用抗体と併用して、ＣＤ４７を発現するがんを治療するのに好適であるが、ヒト免疫エフェクター細胞上の活性化Ｆｃ受容体に結合するヒトＦｃ領域を含む治療用抗体（トラスツズマブ）と組み合わせたキメラ抗ＳＩＲＰαＩｇＧ１抗体（すなわち、ＡＤＣＣ及び／又はＡＤＣＰを誘導することができる抗体）のin vitroでのＡＤＣＣ実験は、マウス抗体を使用した以前の結果に基づいて予想されたように、ＡＤＣＣの増加を示さなかった（図２）。いかなる理論にも拘束されることを望むこのではないが、免疫エフェクター細胞（この場合は好中性顆粒球）上の活性化Ｆｃ受容体との結合に関して治療用抗体（この場合はトラスツズマブ）と競合する可能性がある抗ＳＩＲＰα抗体は、カーランダー効果が発生する可能性があると考えられている（Kurlander J Immunol 1983, 131(1), 140-147）。したがって、抗ＳＩＲＰαのＦｃテールは、食作用性免疫エフェクター細胞（例．顆粒球、マクロファージ又は樹状細胞）上のＦｃ受容体にシスで結合し、それによってＡＤＣＣ、ＡＤＣＰ及び／又はＡＤＡＰを減少又は防止する可能性がある。その結果、例えばＦｃテールを修飾することによる抗ＳＩＲＰα抗体のＦｃ領域とヒト免疫エフェクター細胞上の活性化Ｆｃ受容体との結合の減少は、治療用抗体（トラスツズマブ）によるＡＤＣＣを改善することが示された（図２）。したがって、好ましい態様では、（「本発明の抗体又はその断片の使用」の項でさらに説明するように）本発明は、ヒト免疫エフェクター細胞上のＦｃ受容体との結合の低下及び／又は当該受容体に対する低い親和性を示し、治療用抗体との併用治療において有利に使用することができる抗ＳＩＲＰα抗体に関する。そのような抗ＳＩＲＰα抗体は、例えばＩｇＧ４若しくはＩｇＧ２のＦｃなど、Ｆｃ受容体に対する親和性が低い天然のＦｃ領域を含んでいてもよく、又はそのような抗ＳＩＲＰα抗体は、１つ以上のアミノ酸が別のアミノ酸で置換された修飾Ｆｃ領域を有していてもよい。あるいは、酵素的脱グリコシル化は、アミノ酸を変異させなくても、ＦｃとＦｃγ受容体の結合を減少させる。ここで、結合の減少は、修飾されたＦｃ領域を有する抗ＳＩＲＰα抗体の活性化Ｆｃ受容体に対する親和性が、修飾されていないＦｃ領域と同じ可変領域を有する抗ＳＩＲＰα抗体の親和性よりも低いことを意味する。好ましくは、親和性は少なくとも２分の１に、少なくとも３分の１に、少なくとも４分の１に、少なくとも５分の１に、少なくとも１０分の１に、少なくとも５０分の１に、少なくとも１００分の１に、少なくとも１０００分の１に、減少する。活性化Ｆｃ受容体に対する抗体の結合親和性は、通常当該技術分野で公知の方法、例えば、Harrisonらが、J. Pharm. Biomed. Anal. 2012, 63, 23-28に記載した方法を使用し、ＳＰＲ又はフローサイトメトリーで測定される。治療用抗体と組み合わせて、ヒトＦｃα若しくはＦｃγ受容体との結合が低減した、又はこれらの受容体との親和性が低い抗ＳＩＲＰα抗体は、免疫エフェクター細胞のＡＤＣＣ、ＡＤＣＰ及び／又はＡＤＡＰを増加させることにより、がん細胞の細胞破壊に特に効果的である。通常、本発明の抗ＳＩＲＰα抗体のＦｃ領域は、ヒト免疫エフェクター細胞上の活性化Ｆｃ受容体との結合を減少させるように修飾される。
好ましい態様では、本発明の抗ＳＩＲＰα抗体は、ヒトＦｃα若しくはＦｃγ受容体との結合が低減した、又はこれらの受容体との親和性が低い、好ましくはこれらの受容体と結合しない修飾されたＦｃ領域を含む。例えば、Ｆｃγ受容体とＩｇＧ１との結合は、Ｌ２３４、Ｌ２３５、Ｇ２３７、Ｄ２６５、Ｄ２７０、Ｎ２９７、Ａ３２７、Ｐ３２８及びＰ３２９（Ｅｕナンバリング）からなる群から選択される１つ以上のＩｇＧ１のアミノ酸を置換することによって低減することができ；ＩｇＧ２との結合は、例えば、以下のアミノ酸置換：Ｖ２３４Ａ、Ｇ２３７Ａ、Ｐ２３８Ｓ、Ｈ２６８Ａ、Ｖ３０９Ｌ、Ａ３３０Ｓ及び／若しくはＰ３３１Ｓ；又はＨ２６８Ｑ、Ｖ３０９Ｌ、Ａ３３０Ｓ及び／若しくはＰ３３１Ｓ（ＩｇＧ１のＥｕナンバリングに類似のナンバリング）の１つ以上を行うことによって低減することができ（Vafa et al. Methods 2014, 65, 114-126）；ＩｇＧ３との結合は、例えば、アミノ酸置換Ｌ２３４Ａ及びＬ２３５Ａ、又はアミノ酸置換Ｌ２３４Ａ、Ｌ２３５Ａ及びＰ３３１Ｓを行うことによって低減することができ（Leoh et al. Mol. Immunol. 2015, 67, 407-415）；ＩｇＧ４との結合は、例えば、アミノ酸置換Ｓ２２８Ｐ、Ｆ２３４Ａ及び／又はＬ２３５Ａ（ＩｇＧ１のＥｕナンバリングに類似のナンバリング）を行うことによって低減することができる（Parekh et al. mAbs 2012, 4(3), 310-318）。ＩｇＡとＦｃα受容体の結合は、例えば、アミノ酸置換Ｌ２５７Ｒ、Ｐ４４０Ａ、Ａ４４２Ｒ、Ｆ４４３Ｒ及び／又はＰ４４０Ｒ（一連のナンバリング）の１つ以上を行うことによって低減することができる（Pleass et al. J. Biol. Chem. 1999, 271(33), 23508-23514）。
好ましくは、本発明の抗ＳＩＲＰα抗体は、野生型のＦｃ領域を有する同じ抗ＳＩＲＰα抗体と比較して、ヒトＦｃα若しくはＦｃγ受容体との結合が低減した、又はこれらの受容体との親和性が低い、好ましくはこれらの受容体と結合しない修飾されたＦｃ領域を含む。より好ましくは、修飾されたＦｃ領域はＩｇＧアイソタイプのＦｃ領域である。さらにより好ましくは、修飾されたＦｃ領域はＩｇＧ１、ＩｇＧ２又はＩｇＧ４アイソタイプのＦｃ領域である。好ましい態様では、本発明の抗ＳＩＲＰα抗体は、Ｌ２３４、Ｌ２３５、Ｇ２３７、Ｄ２６５、Ｄ２７０、Ｎ２９７、Ａ３２７、Ｐ３２８及びＰ３２９（Ｅｕナンバリング）からなる群から選択される１つ以上の位置に１つ以上のアミノ酸置換を含む修飾されたヒトＩｇＧ１のＦｃ領域を有する。
好ましい態様では、本発明の抗ＳＩＲＰα抗体は、Ｌ２３４Ａ、Ｌ２３４Ｅ、Ｌ２３５Ａ、Ｇ２３７Ａ、Ｄ２６５Ａ、Ｄ２６５Ｅ、Ｄ２６５Ｎ、Ｄ２７０Ａ、Ｄ２７０Ｅ、Ｄ２７０Ｎ、Ｎ２９７Ａ、Ｎ２９７Ｇ、Ａ３２７Ｑ、Ｐ３２８Ａ、Ｐ３２９Ａ及びＰ３２９Ｇからなる群から選択される１つ以上のアミノ酸置換を含む修飾されたヒトＩｇＧ１のＦｃ領域を有する。より好ましくは、１つ以上のアミノ酸置換は、Ｌ２３４Ａ、Ｌ２３４Ｅ、Ｌ２３５Ａ、Ｇ２３７Ａ、Ｄ２６５Ａ、Ｄ２６５Ｅ、Ｄ２６５Ｎ、Ｎ２９７Ａ、Ｐ３２８Ａ、Ｐ３２９Ａ及びＰ３２９Ｇからなる群から選択される。あるいは、好ましくは、１つ以上のアミノ酸置換は、Ｌ２３４Ａ、Ｌ２３４Ｅ、Ｌ２３５Ａ、Ｇ２３７Ａ、Ｄ２６５Ａ、Ｄ２６５Ｅ、Ｄ２６５Ｎ、Ｄ２７０Ａ、Ｄ２７０Ｅ、Ｄ２７０Ｎ、Ａ３２７Ｑ、Ｐ３２８Ａ、Ｐ３２９Ａ及びＰ３２９Ｇからなる群から選択される。さらにより好ましくは、本発明の抗ＳＩＲＰα抗体は、Ｌ２３４Ａ、Ｌ２３４Ｅ、Ｌ２３５Ａ、Ｇ２３７Ａ、Ｄ２６５Ａ、Ｄ２６５Ｅ、Ｄ２６５Ｎ、Ｐ３２８Ａ、Ｐ３２９Ａ及びＰ３２９Ｇからなる群から選択される１つ以上のアミノ酸置換を含む修飾されたヒトＩｇＧ１のＦｃ領域を有する。好ましい態様では、修飾されたヒトＩｇＧ１のＦｃ領域は、アミノ酸置換 (i) Ｌ２３４Ａ及びＬ２３５Ａ、(ii) Ｌ２３４Ｅ及びＬ２３５Ａ、(iii) Ｌ２３４Ａ、Ｌ２３５Ａ及びＰ３２９Ａ、又は(iv) Ｌ２３４Ａ、Ｌ２３５Ａ及びＰ３２９Ｇを含む。最も好ましくは、修飾されたヒトＩｇＧ１のＦｃ領域は、アミノ酸置換 (i) Ｌ２３４Ａ及びＬ２３５Ａ、又は (ii) Ｌ２３４Ｅ及びＬ２３５Ａを含む。最も好ましくは、修飾されたヒトＩｇＧ１のＦｃ領域は、アミノ酸置換Ｌ２３４Ａ及びＬ２３５Ａを含む。上述した態様と組み合わせて、好ましい態様では、修飾されたＩｇＧ１のＦｃ領域は、アミノ酸置換Ｎ２９７Ａ又はＮ２９７Ｇを含まない。最も好ましくは、修飾されたＩｇＧ１のＦｃ領域はＮ２９７位におけるアミノ酸置換を含まない。したがって、Ｅｕナンバリングで２９７位のアミノ酸残基はアスパラギンであることが好ましい。この態様における抗ＳＩＲＰα抗体は、好ましくは、配列番号２５で示されるアミノ酸配列（配列の１１７及び１１８の位置にＬ２３４Ａ及びＬ２３５Ａ突然変異を有するアミノ酸配列）のＩｇＧ１遺伝子型の修飾されたＦｃ領域を有する。
本発明の抗体又はその断片の製造及び精製
本発明の抗ＳＩＲＰα抗体又はその抗原結合断片は、いくつかの従来の技術によって製造することができる。それらは、通常、当該技術分野において公知の技術により、組換え発現系で製造される。例えば、Shukla and Thoemmes (Trends in Biotechnol. 2010, 28(5), 253-261)、Harlow and Lane. Antibodies: A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, NY, 1988及びSambrook and Russell. Molecular Cloning: A Laboratory Manual, 3rd edition, Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor Laboratory Press, NY, 2001を参照。本発明の組換えポリペプチドの製造に、当該技術分野において公知の発現系を使用することができる。一般に、宿主細胞は、所望のポリペプチドをコードするＤＮＡを含む組換え発現ベクターによって形質転換される。
したがって、ある側面では、本発明は、本発明の抗ＳＩＲＰα抗体又はその抗原結合断片をコードするヌクレオチド配列を含む核酸分子に関する。あるヌクレオチド配列は、本発明の抗ＳＩＲＰα抗体の軽鎖可変ドメインを少なくとも含むポリペプチドをコードし、別のヌクレオチド配列は、本発明の抗ＳＩＲＰα抗体の重鎖可変ドメインを少なくとも含むポリペプチドをコードする。したがって、好ましい態様では、核酸分子は、抗体のＨＣＶＲ及びＬＣＶＲの少なくとも１つをコードするヌクレオチド配列を含む。好ましい核酸分子は、本発明の抗体がコードされたヌクレオチド配列を宿主細胞で発現させるために、当該配列と、例えば、プロモーター及びリーダー配列（シグナルペプチド、シグナル配列、標的化シグナル、局在化シグナル、局在化配列、輸送ペプチド又はリーダーペプチドともいう）といった発現調節配列が動作可能に連結している発現ベクターである。重鎖の好ましいリーダー配列を配列番号２８に示す。軽鎖の好ましいリーダー配列を配列番号２９に示す。本発明において使用する別の適切なリーダー配列を配列番号２７に示す。
別の側面では、本発明は、この項で上述した核酸分子を含む宿主細胞に関する。前記細胞は、好ましくは、単離された細胞又は培養された細胞である。使用することができる宿主細胞には、原核生物、酵母又は高等な真核細胞がある。原核生物には、例えば大腸菌若しくはバシラス綱（Bacilli）などのグラム陰性菌又はグラム陽性菌が含まれる。高等な真核細胞には、昆虫細胞及び哺乳類起源の樹立された細胞株が含まれる。適切な哺乳動物宿主細胞株の例には、チャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞、サル腎臓細胞由来のＣＯＳ-７系統（Gluzman et al. Cell 1981, 23, 175）、ヒト胎児腎臓（ＨＥＫ）２９３細胞、Ｌ細胞、Ｃ１２７細胞、３Ｔ３細胞、ＨｅＬａ細胞、ベビーハムスター腎臓（ＢＨＫ）細胞株、及びMcMahan et al. EMBO J. 1991, 10, 2821に記載のアフリカミドリザル腎臓細胞株ＣＶＩに由来するＣＶＩ／ＥＢＮＡ細胞株が含まれる。細菌、真菌、酵母及び哺乳動物の細胞宿主において使用する適切なクローニング及び発現ベクターは、例えば、Pouwelsら（Cloning Vectors: A Laboratory Manual, Elsevier, New York, 1985）に記載されている。
形質転換された細胞は、ポリペプチドの発現を促進する条件で培養することができる。したがって、ある側面では、本発明は、本発明の抗ＳＩＲＰα抗体又はその抗原結合断片を製造する方法に関し、前記方法は、ポリペプチドの発現を助長する条件下で、本明細書に記載の少なくとも１つの発現ベクターを含む細胞を培養する工程、及び、場合によってはポリペプチドを回収する工程を含む。
本発明の抗ＳＩＲＰα抗体又はその抗原結合断片は、例えば、ハイドロキシアパタイトによるクロマトグラフィー、ゲル電気泳動、透析、アフィニティークロマトグラフィー（例．プロテインＡ－セファロース、プロテインＧ－セファロース）、イオン交換クロマトグラフィー（例．陰イオン交換クロマトグラフィー、陽イオン交換クロマトグラフィー、混合モード）又は疎水性相互作用クロマトグラフィーなどの従来のタンパク質精製手段により回収することができる（例えば、Low et al. J. Chromatography B 2007, 848, 48-63；Shukla et al. J. Chromatography B 2007, 848, 28-39を参照）。アフィニティークロマトグラフィーには、ラクダ由来の単一ドメイン（ＶＨＨ）抗体断片による独自の親和性精製手段に基づくCaptureSelect（登録商標）リガンドを用いるアフィニティークロマトグラフィーが含まれる（例えば、Eifler et al. Biotechnology Progress 2014, 30(6), 1311-1318を参照）。本発明での使用が予定されている抗体には、内因性の汚染物質を実質的に含まない、実質的に均質な組換え抗ＳＩＲＰα抗体が含まれる。
本発明の抗ＳＩＲＰα抗体又はその抗原結合断片のアミノ酸配列の修飾が考えられている。例えば、抗体の結合親和性及び／又は他の生物学的特性の改善が望ましい場合がある。抗体のアミノ酸配列の変異体は、抗体をコードする核酸を適切に変更することにより、又はペプチド合成により製造される。そのような修飾には、例えば、抗体又はその抗原結合断片のアミノ酸配列の残基の欠失、付加及び／又は置換が含まれる。最終コンストラクトの所望の特性を得るために、欠失、付加及び置換の任意の組合せが行われる。アミノ酸の変更は、グリコシル化部位の数又は位置の変更など、抗体又はその抗原結合断片の翻訳後修飾も変化させる可能性がある。
アミノ酸配列の付加には、アミノ末端及び／又はカルボキシル末端に１～１００以上のアミノ酸残基を含むポリペプチドを融合すること、並びに単一又は複数のアミノ酸残基を配列内に挿入することが含まれる。末端付加の例には、Ｎ末端メチオニン残基を有する抗体又は細胞毒性ポリペプチドと融合した抗体が含まれる。抗体又はその抗原結合断片の他の付加変異体には、抗体又はその抗原結合断片の血清半減期を増加させる酵素又はポリペプチドとの融合が含まれる。
別の変異体は、アミノ酸の置換による変異体である。これらの変異体は、抗体又はその抗原結合断片の少なくとも１つのアミノ酸残基が別のアミノ酸残基に置き換えられている。抗体又はその抗原結合断片のそのような置換変異の誘発には、上述したＦＲの変化、及び上述したように、受容体の活性化を防ぐためのＦｃ領域とＦｃ受容体の結合を低減させるための変化が含まれる。
抗体の別のアミノ酸変異体は、抗体又はその抗原結合断片のグリコシル化のパターンが変更されている。変更とは、抗体又はその抗原結合断片の１つ以上の炭水化物の削除、及び／又は抗体又はその抗原結合断片に存在しない１つ以上のグリコシル化部位の追加を意味する。ポリペプチドのグリコシル化は、通常、Ｎ結合型又はＯ結合型のいずれかである。Ｎ結合型とは、アスパラギン残基の側鎖への炭水化物の結合を指す。トリペプチド配列、アスパラギン－Ｘ－セリン及びアスパラギン－Ｘ－スレオニン（Ｘはプロリン以外のアミノ酸）は、炭水化物がアスパラギン側鎖に酵素的に結合する認識配列である。したがって、ポリペプチド中のこれらのトリペプチド配列は、潜在的なグリコシル化部位である。Ｏ結合型グリコシル化とは、単糖又は単糖誘導体（例．N-アセチルガラクトサミン、ガラクトース又はキシロース）の１つが、ヒドロキシアミノ酸（最も一般的にはセリン又はスレオニンであるが、5-ヒドロキシプロリン又は5-ヒドロキシリジンも使用できる）に結合することを指す。抗体へのグリコシル化部位の追加は、（Ｎ結合型グリコシル化部位の場合）上記トリペプチド配列の１つ以上を含むようにアミノ酸配列を変更することによって不都合なく達成される。変更は、（Ｏ結合型グリコシル化部位の場合）抗体の配列に１つ以上のセリン又はスレオニン残基を付加し、又はこれらの残基で置換することによっても行うことができる。抗体のアミノ酸配列の変異体をコードする核酸は、当該技術分野で公知のさまざまな方法によって製造される。これらの方法には、（天然のアミノ酸配列変異体の場合）天然からの単離、又はオリゴヌクレオチド媒介（又は部位特異的）変異誘発、ＰＣＲ変異誘発、及び抗体若しくはその抗原結合断片の以前に製造された変異体か非変異体のカセット変異誘発による製造が含まれるが、これらに限定されるものではない。
本発明の抗体又はその断片を含む組成物
別の側面では、本発明は、本発明の抗ＳＩＲＰα抗体若しくはその抗原結合断片、又はその医薬誘導体若しくはプロドラッグを、１つ以上の薬学的に許容される添加剤、例えば、薬学的に許容される担体、アジュバント又は媒体と共に含む医薬組成物に関する。好ましくは、本発明は、本発明の抗ＳＩＲＰα抗体又はその抗原結合断片及び薬学的に許容される添加剤を含有する医薬組成物に関する。
そのような医薬組成物は対象に投与するためのものである。本発明の医薬組成物は、それを必要とする対象に前記組成物の有効量を投与することにより、以下に示す治療方法において使用することができる。本明細書において使用する用語「対象」は、哺乳類として分類される全ての動物を指し、霊長類及びヒトを含むが、これらに限定されるものではない。対象は好ましくはヒトである。
本明細書において使用する用語「薬学的に許容される添加剤」は、医薬投与と互換性のある全ての溶媒、分散媒体、コーティング剤、抗菌剤、抗真菌剤、等張化剤及び吸着遅延剤などを含むことを意図している（例えば、Handbook of Pharmaceutical Excipients, Rowe et al. Eds. 7th edition, 2012, www.pharmpress.comを参照）。薬学的に活性な物質のためのそのような媒体及び薬剤の使用は、当該技術分野において周知である。通常の媒体又は薬剤が活性化合物と適合しない場合を除き、組成物におけるそれらの使用を想定している。担体又は安定化剤を含む許容可能な添加剤は、使用する用量及び濃度でレシピエントに対して無毒であり、リン酸塩、クエン酸塩、酢酸塩、ヒスチジン、その他の有機酸などの緩衝剤；アスコルビン酸及びメチオニンを含む抗酸化剤；保存剤（ベンジルジメチルオクタデシルアンモニウムクロリド；ヘキサメトニウムクロリド；ベンザルコニウムクロリド、ベンゼトニウムクロリド；フェノール、ブチル、又はベンジルアルコール；メチル又はプロピルパラベンなどのアルキルパラベン；カテコール；レゾルシノール；シクロヘキサノール；3-ペンタノール及びm-クレゾール）；低分子量（約１０残基未満）のポリペプチド；血清アルブミン、ゼラチン、免疫グロブリンなどのタンパク質；ポリビニルピロリドンなどの親水性ポリマー；グリシン、グルタミン、アスパラギン、ヒスチジン、アルギニン又はリジンなどのアミノ酸；グルコース、マンノース又はデキストリンを含む単糖、二糖及び他の炭水化物；ＥＤＴＡなどのキレート剤；ショ糖、マンニトール、トレハロース又はソルビトールなどの糖類；ナトリウムなどの塩形成カウンターイオン；金属錯体（例．Ｚｎ－タンパク質複合体）及び／又はポリソルベート（例．TWEEN（登録商標））、ポロキサマー（例．PLURONIC（登録商標））、ヒドロキシプロピル-β-シクロデキストリン又はポリエチレングリコール（ＰＥＧ）などの非イオン性界面活性剤を含む。
補足的な活性化合物も本発明の医薬組成物に組み込むことができる。したがって、特定の態様では、本発明の医薬組成物は、特定の症状の治療に必要な複数の活性化合物、好ましくは互いに反対の影響を及ぼさず、補完的な活性を有する化合物を含んでいてもよい。そのような他の活性剤の有効な量は、とりわけ、医薬組成物中に存在する本発明の抗ＳＩＲＰα抗体又はその抗原結合断片の量、疾患、障害又は治療の種類などに依存する。
ある態様では、本発明の抗ＳＩＲＰα抗体又はその抗原結合断片は、インプラント及びリポソームなどのマイクロカプセル化された送達系を含む放出制御製剤のような、身体からの前記化合物の急速な排出を保護する担体と共に製剤化される。エチレン酢酸ビニル共重合体、ポリ無水物、ポリグリコール酸、コラーゲン、ポリオルトエステル及びポリ乳酸などの生分解性、生体適合性ポリマーを使用することができる。そのような製剤の製法は当業者に明らかである。標的化リポソームを含むリポソーム懸濁液も、薬学的に許容される担体として使用することができる。これらは、例えば米国特許第4,522,811号又は国際公開第2010/095940号に記載されているように、当業者に公知の方法で製造することができる。
本発明の抗ＳＩＲＰα抗体又はその抗原結合断片の投与経路は、経口、非経口、吸入又は局所である可能性がある。本明細書における用語「非経口」は、静脈内、動脈内、リンパ内、腹腔内、筋肉内、皮下、直腸又は膣への投与を含む。非経口の静脈内投与が好ましい。「全身投与」とは、経口、静脈内、腹腔内及び筋肉内投与を意味する。もちろん、治療又は予防に必要な抗体の量は、選択する抗体、治療すべき特性及び重症度、並びに対象によって異なる。さらに、抗体は、例えば抗体の用量を減少させてゆくパルス注入によって適切に投与してもよい。好ましくは、投薬は、投与が短時間であるか長時間であるかに部分的に依存して、注射、最も好ましくは静脈内又は皮下注射により行われる。
したがって、特定の態様では、本発明の医薬組成物は、適切な一回投与剤形の滅菌溶液、懸濁液又は凍結乾燥製品などの非経口投与に適した形態であってもよい。注入に適した医薬組成物には、滅菌された水溶液（水溶性の場合）又は分散液、及び滅菌された注射可能な溶液又は分散液を即時調製するのための滅菌された粉末が含まれる。静脈内投与の場合、適切な担体には、生理食塩水、注射用水、CremophorEM（BASF, Parsippany, NJ）又はリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）が含まれる。全ての場合において、組成物は滅菌されていなければならず、注入が容易な程度に流動性を有していなければならない。製造及び保管の際に安定でなければならず、細菌や真菌などの微生物の汚染の影響から守られている必要がある。担体は、例えば、水、エタノール、グリセリン、プロピレングリコール、液体のポリエチレングリコールなどの薬学的に許容されるポリオール、及びそれらの適切な混合物を含む溶媒又は分散媒体である可能性がある。適切な流動性は、例えばレシチンなどのコーティングの使用、分散の場合は必要な粒子サイズの維持、及び界面活性剤の使用により維持することができる。微生物による影響の防止は、例えば、パラベン、クロロブタノール、フェノール、アスコルビン酸、チメロサールなどのさまざまな抗菌剤及び抗真菌剤によって達成することができる。多くの場合、組成物に、例えば、糖、マンニトール若しくはソルビトールなどの多価アルコール、又は塩化ナトリウムなどの等張化剤を配合することが好ましい。
注入可能な組成物の長期吸収は、例えば、モノステアリン酸アルミニウム又はゼラチンなどの吸収を遅らせる薬剤を組成物に配合することで達成できる。
滅菌注射液は、必要な量の活性化合物（例．ポリペプチド又は抗体）と必要に応じて上述した成分の１つ以上を適切な溶媒に加え、続いて滅菌ろ過することによって製造することができる。通常、分散液は、活性化合物を基本的な分散媒及び必要な上述した成分を含む滅菌媒体に加えることによって製造される。滅菌された注射可能な溶液を調製するのための滅菌された粉末の好ましい調製方法は、前もって滅菌ろ過した溶液から所望の成分及び有効成分の粉末を得る真空乾燥及び凍結乾燥である。
特定の態様では、前記医薬組成物は静脈内（ＩＶ）又は皮下（ＳＣ）経路で投与する。増量剤、緩衝剤又は界面活性剤などの適切な添加剤を使用することができる。当該技術分野において周知であり、例えば、Remington: The Science and Practice of Pharmacy. Allen Ed. 22nd edition, 2012, www.pharmpress.comを含むさまざまな資料に詳細に記載されている、非経口投与可能な組成物を製造するための標準的な方法で上記製剤を製造する。
非経口の医薬組成物を一回投与剤形に製剤化し、投与を容易にして投与量を均一にすることは特に好都合である。本明細書において一回投与剤形は、治療する対象に対する１回の投薬に適した物理的に分かれた剤形を指し、各剤形は、所望の治療効果を生み出すように計算された必要な量の医薬担体込みの活性化合物（本発明の抗ＳＩＲＰα抗体又はその抗原結合断片）を含む。本発明の一回投与剤形の処方は、活性化合物に固有の特性及び達成すべき治療効果、並びに治療のために活性化合物を配合する技術に固有の制約によって決まり、また、それらに直接依存する。
一般に、本発明の抗ＳＩＲＰα抗体の有効な投与量は、選択した化合物の有効性、治療する障害の重症度及び対象の体重に依存する。しかし、活性化合物の代表的な１日の総投与量は、０．００１～１，０００ｍｇ／ｋｇ体重、好ましくは約０．０１～約１００ｍｇ／ｋｇ体重、最も好ましくは約０．０５～１０ｍｇ／ｋｇ体重で、通常、１日１回以上、例えば１日、１、２、３又は４回投与する。抗体の適切な用量を選択するためのガイダンスを利用することができる（例えば、Wawrzynczak (1996) Antibody Therapy, Bios Scientific Pub. Ltd, Oxfordshire, UK；Kresina (ed.) (1991) Monoclonal Antibodies, Cytokines and Arthritis, Marcel Dekker, New York, N.Y.；Bach (ed.) (1993) Monoclonal Antibodies and Peptide Therapy in Autoimmune Diseases, Marcel Dekker, New York, N.Y.；Baert et al. (2003) New Engl. J. Med. 1999, 348, 601-608；Milgrom et al. New Engl. J. Med. 1999, 341, 1966-1973；Slamon et al. New Engl. J. Med. 2001, 344, 783-792；Beniaminovitz et al. New Engl. J. Med. 2000, 342, 613-619；Ghosh et al. New Engl. J. Med. 2003, 348, 24-32；Lipsky et al. New Engl. J. Med. 2000, 343, 1594-1602を参照）。
適切な用量は、例えば、治療に影響を与えることが当該技術分野において知られている若しくは疑われる、又は治療に影響を与えると予測されるパラメーター又は因子を使用して、臨床医が決定する。通常、用量は、最適用量よりも幾分少ない量で開始し、その後、副作用と比較して所望の又は最適な効果が達成されるまで、少しずつ増加する。重要な診断手段には、例えば、炎症又は炎症性サイトカインの量を診断する手段が含まれる。抗体又は抗体の断片は、持続注入で、又は、例えば、１日間隔、１週間間隔で、又は１週間に１～７回、投与することができる。あるいは、抗体又は抗体の断片は、１日１回、１日おき、週に２～３回、２週間に１回、３週間に１回、６週間に１回投与することができる。好ましい投与計画は、重大な副作用を回避する最大用量又は投与頻度を含む。一週あたりの総投与量又は平均投与量は、一般的に少なくとも０．０５μｇ／ｋｇ体重、より一般的には少なくとも０．２μｇ／ｋｇ、最も一般的には少なくとも０．５μｇ／ｋｇ、典型的には少なくとも１μｇ／ｋｇ、より典型的には少なくとも１０μｇ／ｋｇ、最も典型的には少なくとも１００μｇ／ｋｇ、好ましくは少なくとも０．２ｍｇ／ｋｇ、より好ましくは少なくとも１．０ｍｇ／ｋｇ、最も好ましくは少なくとも２．０ｍｇ／ｋｇ、最適には少なくとも１０ｍｇ／ｋｇ、より最適には少なくとも２５ｍｇ／ｋｇ及び最も最適には少なくとも５０ｍｇ／ｋｇである（例えば、Yang et al. New Engl. J. Med. 2003 349, 427-434；Herold et al. New Engl. J. Med. 2002, 346, 1692-1698；Liu et al. J. Neurol. Neurosurg. Psych. 1999, 67, 451-456；Portielje et al. Cancer Immunol. Immunother. 2003, 52, 133-144を参照）。好ましくは一週あたりの総投与量又は平均投与量は、０．００１～１００ｍｇ／ｋｇ体重、好ましくは約０．０１～約５０ｍｇ／ｋｇ体重、好ましくは約０．０５～約３０ｍｇ／ｋｇ体重、最も好ましくは約０．１～１０ｍｇ／ｋｇ体重である。
医薬組成物は、容器、パック又はディスペンサーに、添付文書と共に含めることができる。
本発明の抗ＳＩＲＰα抗体又はその抗原結合断片は、以下の項でより詳細に説明するように治療用抗体と組み合わせて使用することが好ましく、他の薬物と組み合わせて使用する可能性がある。治療用抗体は、同じ組成物の一部を形成するか、同時に又は異なる時間に投与するための別個の組成物として提供される可能性がある。場合によっては上述した態様と組み合わせて、他の薬物は、同じ組成物の一部を形成するか、同時に又は異なる時間に投与するための別個の組成物として提供される可能性がある。
好ましくは、本発明の医薬組成物は、静脈内投与の前に（水への）溶解（すなわち、再構成）を必要とする凍結乾燥したケーキ状（凍結乾燥粉末）、又は投与前に解凍が必要な凍結（水）溶液の形態である。最も好ましくは、医薬組成物は凍結乾燥したケーキの形態である。本発明の（凍結乾燥前の）医薬組成物に配合する適切な薬学的に許容される添加剤には、緩衝液（例．クエン酸塩、酢酸塩、ヒスチジン又はコハク酸塩の水溶液）、凍結乾燥保護剤（例．ショ糖、トレハロース）、等張化剤（例．塩化ナトリウム）、界面活性剤（例．ポリソルベート又はヒドロキシプロピル-β-シクロデキストリン）及び増量剤（例．マンニトール、グリシン）が含まれる。凍結乾燥タンパク質製剤に使用する添加剤は、凍結乾燥の過程及び保管中のタンパク質の変性を防止する能力で選択される。
本発明の抗体又はその断片の用途
本発明の抗ＳＩＲＰα抗体、その抗原結合断片及び医薬組成物は、ＳＩＲＰαを発現する、又はＳＩＲＰα及びＣＤ４７を発現する、好ましくは過剰発現する、疾患、状態及び症状の治療に、特にＣＤ４７を発現するがんの治療に有用である。
したがって、さらなる側面では、本発明は、医薬として使用するための本発明の抗ＳＩＲＰα抗体若しくはその抗原結合断片又は本発明の医薬組成物に関する。
別の側面では、本発明はがんの治療、好ましくはＣＤ４７を発現するがんの治療に使用するための本発明の抗ＳＩＲＰα抗体若しくはその抗原結合断片又は本発明の医薬組成物に関する。
ＣＤ４７は、急性骨髄性白血病（ＡＭＬ）、乳癌、慢性骨髄性白血病（ＣＭＬ）、慢性リンパ性白血病（ＣＬＬ）、急性リンパ芽球性白血病（ＡＬＬ）、ろ胞性リンパ腫（ＦＬ）及びびまん性大細胞性Ｂ細胞リンパ腫（ＤＬＢＣＬ）を含む非ホジキンリンパ腫（ＮＨＬ）、肝細胞癌、多発性骨髄腫（ＭＭ）、膀胱癌、結腸癌、胃癌、卵巣癌、頭頸部癌、神経芽腫、黒色腫、骨肉腫、膵癌、腎癌、前立腺癌、肝細胞癌、肺癌及び他の固形腫瘍を含むいくつかのヒトの腫瘍で発現することがわかっている（Chao et al. Curr Opin Immunol. 2012, 24(2), 225-232；Chao et al. Cell 2010, 142(5), 699-713；Roesner et al. Mol Cancer Ther. 2018）。正常な細胞と比較して、これらの腫瘍のいくつかで発現の増加が観察された（Russ et al. Blood Rev. 2018, doi: 10.1016/j.blre.2018.04.005）。腫瘍は、腫瘍細胞でのＣＤ４７のアップレギュレーションにより食作用を回避して、自然免疫系の監視から逃れることを可能にするという仮説が、他のＣＤ４７メカニズムに関する仮説と共に、立てられている（Chao et al. Curr Opin Immunol. 2012, 24(2), 225-232）。
興味深いことに、Yanagitaらは、ヒトの腎細胞癌及び黒色腫がＳＩＲＰαを高度に発現していることを報告した（Yanagita et al. JCI Insight 2017, 2(1), e89140）。さらに、ＳＩＲＰαの発現は一部の神経芽腫及び急性骨髄性白血病（ＡＭＬ）で認められる。Sosaleらは、肺癌及び膠芽腫におけるＳＩＲＰαの発現を報告した（Sosale et al. Mol.Ther.Methods Clin.Dev. 2016, 3, 16080）。Chenらは、星状細胞腫及び膠芽腫におけるＳＩＲＰαの発現を報告した（Chen et al. Cancer Res 2004, 64(1), 117-127）。中皮腫及びＢ細胞リンパ腫もＳＩＲＰα陽性である可能性がある。したがって、別の側面では、本発明は、ＳＩＲＰαを発現する疾患、状態又は症状の治療に使用するため、特に、例えばヒトの腎細胞癌及び黒色腫などのＳＩＲＰαを発現するがんのみならず、例えば関節リウマチ、多発性硬化症及びおそらく多発血管炎（ＧＰＡ）、顕微鏡的多発血管炎（ＭＰＡ）並びに尋常性天疱瘡（ＰＶ）を伴う肉芽腫症などの自己免疫疾患の治療に使用するための、本発明の抗ＳＩＲＰα抗体若しくはその抗原結合断片又は本発明の医薬組成物に関する。抗ＳＩＲＰα抗体は、別の抗体が病原性の細胞又は感染した細胞を激減するために使用されるかどうかにかかわらず、疾患における当該別の抗体の有効性を高める可能性もある。ＳＩＲＰαを発現する腫瘍の場合、野生型のヒトＦｃを含む本発明の抗ＳＩＲＰα抗体が単剤療法に適している可能性がある。ある態様では、本発明は、ＳＩＲＰα陽性のヒトの固形腫瘍及び血液悪性腫瘍、好ましくは腎細胞癌又は悪性黒色腫の治療に使用するための、ヒトの免疫エフェクター細胞上の活性化Ｆｃ受容体に結合するＦｃ領域を含む抗ＳＩＲＰα抗体に関する。好ましくは、ヒトの免疫エフェクター細胞上の活性化Ｆｃ受容体に結合するＦｃ領域は、ＩｇＡ又はＩｇＧアイソタイプである。ＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３又はＩｇＧ４アイソタイプのＦｃ領域を有する抗ＳＩＲＰα抗体がより好ましく、ＩｇＧ１、ＩｇＧ２又はＩｇＧ４アイソタイプがさらに好ましい。ＩｇＧ１アイソタイプのＦｃ領域を有する抗ＳＩＲＰα抗体が最も好ましい。
上述したように、好ましくはＦｃエフェクター機能が部分的又は完全に破壊されている本発明の抗ＳＩＲＰα抗体又はその抗原結合断片を使用して、治療用抗体のエフェクター機能を改善－例えばＡＤＣＣの増加など－することができる。好ましくは、本発明のそのような抗体又はその抗原結合断片及び治療用抗体で治療されるがんは、ＳＩＲＰαを発現しない。そのような治療方法は、好ましくは、１つ以上のさらなる抗がん治療と組み合わせる。上述した野生型のＦｃ領域を有する同じ抗ＳＩＲＰα抗体と比較して、ヒトＦｃα又はＦｃγ受容体との結合が低減した修飾Ｆｃ領域を含む抗ＳＩＲＰα抗体は、エフェクター細胞として好中球を使用した際に、治療用抗体のin vitroでのＡＤＣＣを増強することが見いだされた。実施例の抗体１～１３は、ＳＩＲＰα１／ＳＩＲＰαＢＩＴヘテロ接合ドナーの好中球によるin vitroでのＡＤＣＣが用量依存的に増加する。好ましい抗体は好中球のin vitroでのＡＤＣＣを最大限に高めるが、好ましくは、Ｔ細胞増殖アッセイ及び／又はＩＬ-２ ＥＬＩｓｐｏｔにおいてin vitroで免疫原性の兆候を示さないものである。最も好ましい抗体は、抗体１～６、１２及び１３であり、好ましくは抗体６である。
好ましくは、治療用抗体は、欧州医薬品庁（ＥＭＡ）又は食品医薬品局（ＦＤＡ）などの医薬品規制当局が承認した抗体である。ほとんどの規制当局のオンラインデータベースで、抗体の承認を確認することができる。
通常、本発明の抗ＳＩＲＰα抗体（好ましくはそのＦｃ領域の結合が減少したもの）又はその抗原結合断片と組み合わせて使用する治療用抗体は、アネキシンＡｌ、ＡＭＨＲ２、ＡＸＬ、ＢＣＭＡ、Ｂ７Ｈ３、Ｂ７Ｈ４、ＣＡ６、ＣＡ９、ＣＡ１５-３、ＣＡ１９-９、ＣＡ２７-２９、ＣＡ１２５、ＣＡ２４２、ＣＣＲ２、ＣＣＲ４、ＣＣＲ５、ＣＤ２、ＣＤ４、ＣＤ１６、ＣＤ１９、ＣＤ２０、ＣＤ２２、ＣＤ２７、ＣＤ３０、ＣＤ３３、ＣＤ３７、ＣＤ３８、ＣＤ４０、ＣＤ４４、ＣＤ４７、ＣＤ５２、ＣＤ５６、ＣＤ７０、ＣＤ７４、ＣＤ７９、ＣＤ９８、ＣＤ１１５、ＣＤ１２３、ＣＤ１３８、ＣＤ２０３ｃ、ＣＤ３０３、ＣＤ３３３、ＣＥＡ、ＣＥＡＣＡＭ、ＣＬＣＡ-１、ＣＬＬ-１、ｃ-ＭＥＴ、Ｃｒｉｐｔｏ、ＣＴＬＡ-４、ＤＬＬ３、ＥＧＦＬ、ＥＧＦＲ、ＥＰＣＡＭ、ＥＰｈ（例．ＥｐｈＡ２又はＥＰｈＢ３）、エンドセリンＢ型受容体（ＥＴＢＲ）、ＦＡＰ、ＦｃＲＬ５（ＣＤ３０７）、ＦＧＦ、ＦＧＦＲ（例．ＦＧＦＲ３）、ＦＯＬＲ１、フコシル-ＧＭ１、ＧＣＣ、ＧＤ２、ＧＰＮＭＢ、ｇｐ１００、ＨＥＲ２、ＨＥＲ３、ＨＭＷ-ＭＡＡ、インテグリンα（例．αｖβ３及びαｖβ５）、ＩＧＦ１Ｒ、ＩＬ１ＲＡＰ、κミエローマ抗原、ＴＭ４ＳＦ１（又はＬ６抗原）、ルイスＡ様糖鎖、ルイスＸ、ルイスＹ、ＬＩＶ１、メソテリン、ＭＵＣ１、ＭＵＣ１６、ＮａＰｉ２ｂ、ネクチン-４、ＰＤ-１、ＰＤ-Ｌ１、プロラクチン受容体、ＰＳＭＡ、ＰＴＫ７、ＳＬＣ４４Ａ４、ＳＴＥＡＰ-１、５Ｔ４抗原（又はＴＰＢＧ、栄養芽細胞糖タンパク質）、ＴＦ（組織因子）、トムゼン-フリーデンライヒ抗原（ＴＦ-Ａｇ）、Ｔａｇ７２、ＴＮＦ、ＴＮＦＲ、ＴＲＯＰ２、ＶＥＧＦ、ＶＥＧＦＲ及びＶＬＡからなる群から選択される標的に結合するＨＣＶＲ及びＬＣＶＲの少なくとも１つを含む単一特異性若しくは二重特異性抗体又は抗体断片である。
そのような標的を発現するがんの非限定的な例は、（ＨＥＲ２陽性）乳癌、（ＥＧＦＲ陽性）結腸癌、（ＧＤ２陽性）神経芽腫、黒色腫、骨肉腫、（ＣＤ２０陽性）Ｂ細胞リンパ腫、（ＣＤ３８陽性）多発性骨髄腫、（ＣＤ５２陽性）リンパ腫、（ＣＤ３３陽性）急性骨髄性白血病（ＡＭＬ）である。
好ましい抗体は単一特異性の治療用抗体である。より好ましい抗体は、腫瘍細胞表面の膜に結合した標的に対する治療用抗体である。
好ましい態様では、腫瘍細胞表面の膜に結合した標的に対する治療用抗体は、ヒトの免疫エフェクター細胞上の活性化Ｆｃ受容体に結合するヒトのＦｃ領域を含む。ヒトの免疫エフェクター細胞上の活性化Ｆｃ受容体に結合するヒトのＦｃ領域を含む治療用抗体は、活性化Ｆｃ受容体との結合を介してＡＤＣＣ及び／又はＡＤＣＰを誘導することができる。ヒトＩｇＧ、ＩｇＥ、又はＩｇＡアイソタイプの治療用抗体は、ヒトの免疫エフェクター細胞上の活性化Ｆｃ受容体に結合するヒトのＦｃ領域を含む。
本発明で使用する好ましい治療用抗体は、ＩｇＧ又はＩｇＡアイソタイプの治療用抗体である。より好ましい抗体は、ＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３及びＩｇＧ４抗体などのＩｇＧアイソタイプの治療用抗体である。さらにより好ましい抗体は、ＩｇＧ１又はＩｇＧ２アイソタイプの治療用抗体である。最も好ましい抗体は、ＩｇＧ１アイソタイプの治療用抗体である。
本発明の抗ＳＩＲＰα抗体又はその抗原結合断片と組み合わせて使用するのに適した治療用抗体には、アレムツズマブ（例．多発性硬化症の治療）、オビヌツズマブ（例．ＣＬＬ、ＦＬの治療）、オファツズマブ（例．ＭＭの治療）、ダラツムマブ（例．ＭＭの治療）、トラスツズマブ（例．ＨＥＲ２過剰発現乳癌、胃癌、胃食道接合部腺癌の治療）、ジヌツキシマブ（例．小児神経芽腫の治療）、パニツムマブ、セツキシマブ（例．頭頸部癌、大腸癌の治療）、リツキシマブ、オファツムマブ（例．ＮＨＬ、ＣＬＬ、ＦＬ、ＤＬＢＣＬの治療）、ウブリツキシマブ、マルジェツキシマブ、ペルツズマブ、ベルツズマブ、ブレンツキシマブ、エロツズマブ、イブリツモマブ、イファボツズマブ（ifabotuzumab）、ファルレツズマブ、オティアツズマブ（otiertuzumab）、カロツキシマブ、エプラツズマブ、イネビリズマブ、ルムレツズマブ、モガムリズマブ、ロイコツキシマブ（leukotuximab）、イサツキシマブ、オポルツズマブ、エンシツキシマブ、セミプリマブ、ニボルマブ、ペムブロリズマブ、デュルバルマブ、アベルマブ、アテゾリズマブ、スパルタリズマブ、ティスレリズマブ、カムレリズマブ、シンチリマブ、セミプリマブが含まれる。このような治療用抗体は、抗体薬物複合体（ＡＤＣ）の一部としても提供することができる。本発明による抗ＳＩＲＰα抗体又はその抗原結合断片と組み合わせて使用するのに適したＡＤＣには、トラスツズマブ デュオカルマジン、トラスツズマブ デルクステカン、トラスツズマブ エムタンシン、ゲムツズマブオ ゾガマイシン、イノツズマブ オゾガマイシン、ポラツズマブ ベドチン、ナラツキシマブ エムタンシン、イブリツモマブ チウキセタン及びブレンツキシマブ ベドチンが含まれるが、これらに限定されるものではない。
本発明の抗体又はその抗原結合断片と治療用抗体は、同じ製剤に含まれていてもよいし、異なる製剤として投与してもよい。投与は同時に行うことも、逐次に行うこともでき、いかなる順でも効果を有する。
したがって、好ましい態様では、本発明は、腫瘍細胞表面の膜に結合した標的に対する治療用抗体と組み合わせて、ヒトの固形腫瘍及び血液悪性腫瘍の治療に使用するためのヒトの免疫エフェクター細胞上の活性化Ｆｃ受容体に結合するヒトのＦｃ領域を含む、本発明の抗ＳＩＲＰα抗体又はその抗原結合断片に関し、ここで、前記抗ＳＩＲＰα抗体は、野生型のＦｃ領域を有する同じ抗ＳＩＲＰα抗体と比較して、ヒトＦｃα又はＦｃγ受容体との結合が低減した修飾Ｆｃ領域、好ましくは、Ｌ２３４、Ｌ２３５、Ｇ２３７、Ｄ２６５、Ｄ２７０、Ｎ２９７、Ａ３２７、Ｐ３２８及びＰ３２９（Ｅｕナンバリング）からなる群から選択される位置に１つ以上のアミノ酸置換を含む修飾されたヒトＩｇＧ１のＦｃ領域を有する。
場合によっては他の態様と組み合わせて、ある態様では、本発明は、特にがんの治療において、ＣＤ４７が発現している、好ましくは過剰発現している疾患、状態又は症状を治療するための薬剤の製造における、本発明の抗ＳＩＲＰα抗体若しくはその抗原結合断片又は本発明の医薬組成物の使用に関する。本発明により治療するがんの非限定的な例は、これまでの記述を参照されたい。好ましい態様では、本発明の抗ＳＩＲＰα抗体若しくはその抗原結合断片又は本発明の医薬組成物は、上述した治療用抗体と同時又は逐次に投与する。
場合によっては他の態様と組み合わせて、ある態様では、本発明は、ヒトの腎細胞癌又は黒色腫などのＳＩＲＰαを発現するがんを治療するための薬剤の製造における、本発明の抗ＳＩＲＰα抗体若しくはその抗原結合断片又は本発明の医薬組成物の使用に関する。好ましい態様では、本発明の抗ＳＩＲＰα抗体若しくはその抗原結合断片又は本発明の医薬組成物は、上述した治療用抗体と同時又は逐次に投与する。
場合によっては他の態様と組み合わせて、ある態様では、本発明は、がん、特に腫瘍細胞がＣＤ４７又はＳＩＲＰαを発現するがんを治療するための方法に関し、この方法は、前記治療を必要とする対象に、本発明の抗ＳＩＲＰα抗体若しくはその抗原結合断片又は本発明の医薬組成物の治療有効量を投与することを含む。特定の態様では、がんは、ＣＤ４７を発現し、過剰発現する可能性のある腫瘍細胞であることを特徴とする。本発明により治療するＣＤ４７を発現するがんの非限定的な例は、これまでの記述を参照されたい。別の態様では、ＳＩＲＰαを発現するがんは、ヒトの腎細胞癌、黒色腫、神経芽腫又は急性骨髄性白血病（ＡＭＬ）である。
本発明の抗ＳＩＲＰα抗体若しくはその抗原結合断片又は本発明の組成物は、治療用抗体と組み合わせて使用する場合に、ＣＤ４７を発現する腫瘍細胞の増殖を阻害することが好ましい。「ＣＤ４７を発現する腫瘍細胞の増殖の阻害」又は「増殖阻害」は、（ＣＤ４７が発現又は過剰発現している）がん細胞の測定可能な増殖阻害の達成である。好ましい増殖阻害性の抗ＳＩＲＰα抗体は、ＣＤ４７発現腫瘍細胞の増殖を、適切な対照であって、通常、試験する抗体で処理していない腫瘍細胞と比較して、２０％を超えて、好ましくは約２０％～約５０％、さらにより好ましくは５０％を超えて（例．約５０％～約１００％）阻害する。ある態様では、増殖の阻害は、細胞培養において約０．１～３０ｍｇ／ｍｌ又は約０．５ｎＭ～２００ｎＭの抗体濃度で測定することができ、腫瘍細胞を抗体に曝露してから１～１０日後に求められる。in vivoでの腫瘍細胞の増殖阻害は、例えば、欧州特許第2474557号（Ｂ１）に記載されているようなさまざまな方法で測定することができる。約１ｍｇ／ｋｇ体重～約１００ｍｇ／ｋｇ体重の抗ＳＩＲＰα抗体を投与することにより、抗体の最初の投与から約５日～３ヶ月以内、好ましくは約５～３０日以内に腫瘍のサイズ又は細胞増殖が減少した場合、当該抗体はin vivoで増殖阻害性である。
「細胞死を誘導する」抗体は、生存細胞を生存不能にする抗体である。前記細胞はＣＤ４７を発現する細胞である。in vitroでの細胞死は、ＡＤＣＣによって誘導される細胞死と区別するために、補体及び免疫エフェクター細胞の不存在下で測定してもよい。したがって、細胞死のアッセイは、免疫エフェクター細胞の不存在下で加熱により不活化した血清を使用して（すなわち、補体の不存在下で）行うことができる。抗体が細胞死を誘導できるかどうかを判断するために、ヨウ化プロピジウム（ＰＩ）、トリパンブルー、又は7-ＡＡＤの取り込みによって評価される膜の完全性の喪失を、未処理の細胞と比較して評価するか（Moore et al. Cytotechnology 1995; 17, 1-11参照）、細胞生存率の喪失を評価する（テトラゾリウム還元、レザズリン還元、プロテアーゼマーカー及びＡＴＰ検出）ことができる。
「治療有効量」という表現は、以前に説明したように、がんの治療に有効な量を意味し、この量は、所望の応答をもたらすのに、又は、例えば、転移若しくは原発腫瘍の進行、サイズ若しくは成長の症状若しくは徴候を改善するのに十分な量である可能性がある。特定の対象に対する治療有効量は、症状、対象の全身状態、投与の方法、経路及び用量、並びに副作用の程度などの要因に応じて変化する場合がある。応答評価基準が説明されている（ＲＥＣＩＳＴ；Eisenhauer et al. European Journal of Cancer 2009; 45, 228-247；Schwartz et al. European Journal of Cancer 2016; 62, 138-145；Cheson et al. Journal of Clinical Oncology 2003; 21(24), 4642-4649；Moghbel et al. Journal of Nuclear Medicine 2016, 57(6), 928-935、これらの文献全体が本明細書に組み込まれる）。好ましくは、効果は、腫瘍の停滞（すなわち、減少ではなく現状維持）、病変の数の減少、又はベースラインの腫瘍サイズと比較した腫瘍サイズの少なくとも約１０％、好ましくは少なくとも２０％、３０％、５０％、７０％、さらには９０％以上の減少、好ましくは、ベースラインの直径の合計を参照として使用し、標的病変の直径の合計の少なくとも３０％、少なくとも４０％、少なくとも５０％、少なくとも６０％、少なくとも７０％、少なくとも８０％、少なくとも９０％の減少をもたらす。組み合わせた場合、治療有効量は成分の組合せに比例し、効果は個々の成分のみには限定されない。治療上有効な量は、好ましくは少なくとも約１０％、好ましくは少なくとも約２０％、好ましくは少なくとも約３０％、又はより好ましくは少なくとも約５０％、症状を調節する。あるいは、移動の調節は、さまざまな型の細胞の移動又は輸送が影響を受けることを意味する。そのような結果、例えば、影響を受ける細胞の数の統計的に有意で定量化可能な変化が生じる。これは、一定期間内に、又は標的領域内に引き寄せられる標的細胞数の減少である可能性がある。原発腫瘍の進行、サイズ、播種又は成長の速度も監視することができる。
好ましい態様では、本発明は、治療用抗体と組み合わせて、そして、さらに１つ以上の他の抗がん療法と組み合わせて、ＣＤ４７を発現する疾患、状態又は症状、特にがん、より具体的にはヒトの固形腫瘍又は血液悪性腫瘍の治療に使用するための、上述した抗ＳＩＲＰα抗体若しくはその抗原結合断片又は医薬組成物に関する。適切な他の抗がん療法には、外科手術、化学療法、放射線療法、ホルモン療法及び例えば血管新生阻害剤などの小分子標的療法が含まれるが、これらに限定されるものではない。上述した抗ＳＩＲＰα抗体若しくはその抗原結合断片又は医薬組成物は、１つ以上の他の抗がん療法の使用と組み合わせた、ヒトの固形腫瘍及び血液悪性腫瘍の治療における、同時の又は逐次の使用のためのものである可能性がある。特に、上述した抗ＳＩＲＰα抗体若しくはその抗原結合断片又は医薬組成物は、１つ以上の他の抗がん療法を行った後に、ヒトの固形腫瘍及び血液悪性腫瘍の治療に使用するためのものである可能性がある。
好ましくは、本発明は、１つ以上のさらなる抗がん治療化合物と組み合わせて、ＣＤ４７を発現する疾患、状態又は症状の治療に使用するための上述した抗ＳＩＲＰα抗体若しくはその抗原結合断片又は医薬組成物に関する。本明細書における「抗がん治療化合物」は、治療用抗体を含まないことを意図している。治療用抗体は、これまでに定義したとおりである。したがって、好ましくは上記治療用抗体と組み合わせた上述の抗ＳＩＲＰα抗体若しくはその抗原結合断片又は医薬組成物は、１つ以上の他の抗がん治療化合物の使用の前、後又は同時に、ヒトの固形腫瘍及び血液悪性腫瘍の治療に使用するためのものである可能性がある。
適切な抗がん治療化合物には、細胞毒性剤、すなわち、細胞の機能を阻害又は防止する、及び／又は細胞の破壊を引き起こす物質が含まれる。この用語は、化学療法剤、すなわち、がんの治療に有用な化学物質、放射性同位元素などの放射線治療薬、ホルモン療法薬、標的治療薬及び免疫療法剤を含むことを意図している。適切な化学療法剤には、ナイトロジェンマスタード、ニトロソ尿素類、テトラジン類及びアジリジン類などのアルキル化剤；葉酸拮抗薬、フルオロピリミジン類、デオキシヌクレオシド類似体及びチオプリン類などの代謝拮抗剤；ビンカアルカロイド及びタキサンなどの微小管阻害剤；トポイソメラーゼＩ及びＩＩ阻害剤、並びに、アントラサイクリン及びブレオマイシンなどの細胞傷害性抗生物質が含まれる。例えば、化学療法レジメンは、ＣＨＯＰ（シクロホスファミド、ドキソルビシン（ヒドロキシダウノルビシン）、ビンクリスチン（オンコビン）及びプレドニゾン）、ＩＣＥ（イダルビシン、シタラビン及びエトポシド）、ミトキサントロン、シタラビン、ＤＶＰ（ダウノルビシン、ビンクリスチン及びプレドニゾン）、ＡＴＲＡ（オールトランス型レチノイン酸）、イダルビシン、Hoelzer化学療法レジメン、ＡＢＶＤ（ブレオマイシン、ダカルバジン、ドキソルビシン及びビンクリスチン）、ＣＥＯＰ（シクロホスファミド、エピルビシン、ビンクリスチン及びプレドニゾロン）、2-ＣｄＡ（2-クロロデオキシアデノシン）、ＦＬＡＧ＆ＩＤＡ（フルダラビン、シタラビン、フィルグラスチム（filgastrim）及びイダルビシン）（その後のＧ-ＣＳＦ（顆粒球コロニー刺激因子）又はＧＭ-ＣＳＦ治療は行っても行わなくてもよい）、ＶＡＤ（ビンクリスチン、ドキソルビシン及びデキサメタゾン）、Ｍ＆Ｐ（メルファラン及びプレドニゾン）、Ｃ（シクロホスファミド）－毎週、ＡＢＣＭ（アドリアマイシン、ブレオマイシン、シクロホスファミド及びマイトマイシンＣ）、ＭＯＰＰ（メクロレタミン、ビンクリスチン、プレドニゾン及びプロカルバジン）及びＤＨＡＰ（デキサメタゾン、シタラビン及びシスプラチン）からなる群から選択することができる。好ましい化学療法レジメンはＣＨＯＰである。適切な放射線治療薬には、１３１Ｉ-メタヨードベンジルグアニジン（ＭＩＢＧ）、リン酸ナトリウムとしての３２Ｐ、２２３Ｒａ塩化物、８９Ｓｒ塩化物及び１５３Ｓｍジアミンテトラメチレンホスホネート（ＥＤＴＭＰ）などの放射性同位元素が含まれる。ホルモン療法薬として使用する適切な薬剤には、アロマターゼ阻害剤などのホルモン合成の阻害剤及びＧｎＲＨアナログ、並びに、選択的エストロゲン受容体モジュレーター及び抗アンドロゲンなどのホルモン受容体拮抗薬が含まれる。本明細書で使用する標的治療薬は、腫瘍の形成及び増殖に関与する特定のタンパク質を妨害する治療薬であり、小分子薬、ペプチド又はペプチド誘導体である可能性がある。標的小分子薬の例には、エベロリムス、テムシロリムス及びラパマイシンなどのｍＴＯＲ阻害剤、イマチニブ、ダサチニブ及びニロチニブなどのキナーゼ阻害剤、ソラフェニブ及びレゴラフェニブなどのＶＥＧＦ阻害剤、並びに、ゲフィチニブ、ラパチニブ及びエルロチニブなどのＥＧＦＲ／ＨＥＲ２阻害剤が含まれる。ペプチド又はペプチド誘導体の標的治療薬の例には、ボルテゾミブ及びカルフィルゾミブなどのプロテアソーム阻害剤が含まれる。免疫療法剤には、サイトカイン（ＩＬ-２及びＩＦＮ-α）のような免疫応答を誘導、増強若しくは抑制する薬剤、サリドマイド、レナリドミド及びポマリドミドなどの免疫調節薬、タリモジン ラヘルパレプベクのような治療用がんワクチン、樹状細胞ワクチン、養子Ｔ細胞及びキメラ抗原受容体修飾Ｔ細胞などの細胞ベースの免疫療法剤、又はモキセツモマブ パスードトクスのような免疫毒素が含まれる。
上述した治療方法のいずれも、例えば、哺乳動物、好ましくは霊長類、例えば非ヒト霊長類、そして最も好ましくはヒトを含む、そのような治療を必要とする対象に適用することができる。
この明細書及び特許請求の範囲において、動詞「含む、含有する（comprise）」及びその活用は、その単語に続く項目は含まれるが、特に言及されていない項目は除外されないことを意味する非限定的な意味で使用される。さらに、不定冠詞「ａ」又は「ａｎ」は、要素が１つだけであることを文脈が明確に要求しない限り、要素が複数存在する可能性を排除するものではない。したがって、不定冠詞「ａ」又は「ａｎ」は、通常「少なくとも１つ」を意味する。
本明細書で引用されている全ての特許及び参考文献は、その全体が本明細書に組み込まれる。
以下の実施例は、例示することのみを目的として記載され、決してこの発明の範囲を限定することを意図するものではない。
実施例１ 抗体の一過性発現
a) ｃＤＮＡ構築物及び発現ベクターの製造
抗体の重鎖可変領域（ＨＣＶＲ）のアミノ酸配列を、それぞれ、Ｎ末端でリーダー配列（抗体１～１３では配列番号２８）と、Ｃ末端でヒトＩｇＧ１ ＨＣ定常ドメインのＬＡＬＡ変異体（配列番号２５）と結合させた（in silico）。抗体１２Ｃ４、１２Ｃ４-ＬＡＬＡ、２９ＡＭ４-５-ＬＡＬＡ又はＫＷＡＲ２３-ＬＡＬＡのＨＣＶＲのアミノ酸配列を、それぞれ、Ｎ末端でリーダー配列ＨＡＶＴ２０（配列番号２７）と、Ｃ末端でヒトＩｇＧ１ ＨＣ定常ドメインのＬＡＬＡ変異体（配列番号２５）又は野生型のヒトＩｇＧ１ ＨＣ定常ドメイン（配列番号２４）と結合させた。ＫＷＡＲ２３は、標準的なアダリムマブの重鎖定常ドメインを有するが、ＬＡＬＡ変異を欠く。ＨＥＦＬＢ重鎖はＩｇＧ４であり、国際公開第2017/178653号の配列番号４２のように使用した。得られたアミノ酸配列を、ヒト（Homo sapiens）細胞での発現のためにコドン最適化したｃＤＮＡ配列に逆翻訳した。同様に、抗体１～１３、１２Ｃ４、１２Ｃ４-ＬＡＬＡ、２９ＡＭ４-５-ＬＡＬＡ、ＫＷＡＲ２３、ＫＷＡＲ２３-ＬＡＬＡ及び（ヒト化）ＨＥＦＬＢの軽鎖可変領域（ＬＣＶＲ）のＮ末端に、リーダー配列（抗体１～１３では配列番号２９、１２Ｃ４、１２Ｃ４-ＬＡＬＡ、２９ＡＭ４-５-ＬＡＬＡ、ＫＷＡＲ２３、ＫＷＡＲ２３-ＬＡＬＡ及び（ヒト化）ＨＥＦＬＢでは配列番号２７）を、Ｃ末端にヒト抗体κ軽鎖定常領域（配列番号２６）を結合することで、構築物のＬＣＶＲのｃＤＮＡ配列を得た。表１ａ～ｃに示したＨＣＶＲ及びＬＣＶＲの配列を使用した。抗ＳＩＲＰα抗体ＳＥ５Ａ５（マウスＩｇＧ１κ）は、Biolegend（San Diego、USA；精製抗ヒトＣＤ１７２ａ／ｂ（ＳＩＲＰα／β）抗体）から入手した。表１ｃに示す抗ＳＩＲＰα比較抗体及び表１ｄに示すアイソタイプ対照のｃＤＮＡ構築物及び発現ベクターを、同様に調製した。
b) ベクター構築及びクローニング戦略
抗体鎖の発現には、ＣＭＶ：ＴＫｐＡ発現カセットを含有する哺乳動物発現ベクター（pcDNA3.4；ThermoFisher）を使用した。ＨＣ又はＬＣ発現カセットのいずれかを含む最終ベクター（それぞれ、ＣＭＶ：ＨＣ：ＴＫｐＡ、ＣＭＶ：ＬＣ-ＴＫｐＡ）を大腸菌ＮＥＢ５-α細胞に移し、増殖させた。トランスフェクション用の最終発現ベクターの大規模調製は、Maxi-又はMega-prepキット（Qiagen）を使用した。
c) 哺乳動物細胞での一過性発現
市販のＥｘｐｉ２９３Ｆ細胞（Thermo Fisher）に、ExpiFectamineトランスフェクション剤を使用して、以下に示す製造元の指示に従って発現ベクターをトランスフェクトした：３００ｍｌのＦｏｒｔｉＣＨＯ培地に７５×１０７個の細胞を播種し、３００μｇの発現ベクターと８００μｌのトランスフェクション剤を組み合わせて細胞に添加した。トランスフェクションの１日後、培養物に１．５ｍｌのエンハンサー１及び１５ｍｌのエンハンサー２を添加した。トランスフェクションの６日後、４，０００ｇで１５分間遠心分離し、ＰＥＳボトルフィルター／ＭＦ７５フィルター（Nalgene）でろ過して、細胞培養上清を回収した。抗体をアフィニティークロマトグラフィーで精製した。
実施例２ 抗体の結合と特異性
実験
表面プラズモン共鳴（ＳＰＲ）による分析
表面プラズモン共鳴装置（BiaCore（登録商標）T200システム、GE Life Sciences）を使用して、２５℃で親和性のシングルサイクルカイネティクス解析を行った。（ランニングバッファー（１５０ｍＭのＮａＣｌ、３ｍＭのＥＤＴＡ及び０．００５％（v/v）のポリオキシエチレン（２０）ソルビタンモノラウレート（界面活性剤Ｐ２０）を含むｐＨ７．４の１０ｍＭ ＨＥＰＥＳ緩衝液）で）２０倍希釈したビオチンCAPture試薬（GE Life Sciences）を、１０μｌ／分で６０秒間、注入した後、ランニングバッファーに、５μｇ／ｍｌのＳＩＲＰ抗原を１０μｌ／分で６０秒間、注入することにより、ビオチン化分子に適したチップ（センサーチップＣＡＰ、GE Life Sciences）の表面に、ビオチン化ＳＩＲＰ抗原（配列番号５１～５６）を捕捉した。ベースラインの安定化を１分に設定した後に、ランニングバッファーに４段階で増加する濃度の抗ＳＩＲＰ抗体を注入した。結合時間を各ステップ１５０秒とし、続いて、最高濃度の後に解離時間を６００秒として、全て３０μｌ／分の流速で行った。再生は、６Ｍのグアニジン－ＨＣｌ、０．２５ＭのＮａＯＨ溶液で行った（流量３０μｌ／分で１２０秒）。非ＳＩＲＰ（ブランク）固定リファレンスフローチャネルのランニングバッファー注入により、測定したセンサーグラムに対してダブルブランクサブトラクションを行った。測定を行った全ての抗ＳＩＲＰ抗体について、センサーグラムに１：１ラングミュアモデルをフィッティングさせた。速度論的（kinetic）パラメーター（会合速度定数［ｋａ］、解離速度定数［ｋｄ］、及び平衡解離定数又は結合親和性とも呼ばれる結合定数［ＫＤ］）は、BiaCore（登録商標）T200評価ソフトウェア（v3.1）を用いて計算した。
フローサイトメトリーによる分析
ヒトＳＩＲＰαＢＩＴ抗原を内因的に発現するＵ９３７細胞（ヒト単球細胞株）、及び、ヒトＳＩＲＰα１若しくはＳＩＲＰαＢＩＴ又はｃｙＳＩＲＰα抗原のいずれかを発現するＣＨＯ-Ｓチャイニーズハムスター卵巣細胞（ＥｘｐｉＣＨＯ-Ｓ）からスクリーニングされ、単離された非操作サブクローンに由来する細胞（９６ウェルプレートで、１ウェルにつき100,000細胞）を、氷冷ＦＡＣＳバッファー（０．１％（v/w）のＢＳＡ（Sigma-Aldrich, St. Louis, MO）及び０．０２％（v/w）のＮａＮ３（Sigma-Aldrich）を含む１×ＰＢＳ（LONZA））で３回洗浄し、氷冷ＦＡＣＳバッファーで希釈したさまざまな濃度の一次ｍＡｂ（１ウェルにつき５０μｌ）を添加した。４℃で３０分間のインキュベーション後、細胞を氷冷ＦＡＣＳバッファーで３回洗浄し、１ウェルにつき５０μｌの二次ｍＡｂ（ヒト抗体の場合、AffiniPure F(ab')2断片ヤギ抗ヒトＩｇＧ-ＡＰＣ、1：6,000希釈（Jackson Immuno Research）、マウス抗体の場合、AffiniPure Fab断片ヤギ抗マウスＩｇＧ (H+L)-Alexa Fluor 488、1：1,000希釈（Jackson Immuno Research））を添加した。４℃で３０分間経過後、細胞を２回洗浄し、１５０μｌのＦＡＣＳバッファーに再懸濁した。フローサイトメトリー（BD FACSVerse, Franklin Lakes, NJ）で蛍光強度を測定し、Ｕ９３７細胞では蛍光強度の中央値（MFI-Median）として、ＥｘｐｉＣＨＯ-Ｓ細胞では平均蛍光強度（MFI-Mean）として示した。GraphPad Prism（version 7.02 for Windows（登録商標）, GraphPad, San Diego, CA）で可変勾配（４つのパラメーター）のシグモイド用量反応方程式を使用し、非線形回帰によって曲線をフィッティングした。４パラメーターのロジスティックフィットを使用し、曲線の下部と上部の中間のμｇ／ｍｌ単位の濃度として、ＥＣ５０値を計算した。
結果
ＳＰＲ
抗体１～１３及び参照抗体と、ヒトＳＩＲＰα１（ｈｕＳＩＲＰα１）、ヒトＳＩＲＰαＢＩＴ（ｈｕＳＩＲＰαＢＩＴ）、カニクイザルＳＩＲＰα（ｃｙＳＩＲＰα）、ヒトＳＩＲＰγ（ｈｕＳＩＲＰγ）、ヒトＳＩＲＰβ１ｖ１（ｈｕＳＩＲＰβ１ｖ１）及びヒトＳＩＲＰβ１ｖ２（ｈｕＳＩＲＰβ１ｖ２）との結合のＫＤ値（「平衡解離定数」又は「結合親和性」ともいう結合定数）を表２にまとめて示す。抗体１～１３はｈｕＳＩＲＰαＢＩＴ及びｈｕＳＩＲＰα１の両者に結合し、ｈｕＳＩＲＰγには結合しない。抗体１～１３の一部、例えば抗体６は、ＳＩＲＰγとの関係が弱いか、応答単位（ＲＵ）が非常に低く、以下の実施例の細胞結合実験に示されているように、無関係のように思われる。ヒト化ＨＥＦＬＢはｈｕＳＩＲＰαＢＩＴ変異体のみを認識し、ｈｕＳＩＲＰα１、ｈｕＳＩＲＰγ及びｃｙＳＩＲＰαは認識しない。ＫＷＡＲ２３、２９ＡＭ４-５、ＳＥ５Ａ５及び１２Ｃ４抗体は、ｈｕＳＩＲＰγを含む全てのＳＩＲＰ変異体と結合する。
フローサイトメトリー
さまざまな抗体と、細胞上に発現したｈｕＳＩＲＰα１、ｈｕＳＩＲＰαＢＩＴ及び／又はｃｙＳＩＲＰαとの結合を、フローサイトメトリーで測定した。表３に示すように、結合を曲線の下部と上部の中間の抗体濃度（μｇ／ｍｌ）であるＥＣ５０値として示す。抗体１～１３は、ｈｕＳＩＲＰαＢＩＴ（ＥｘｐｉＣＨＯ-Ｓ細胞で一過性に発現するか、Ｕ９３７細胞で内因的に発現する）及びｈｕＳＩＲＰα１に結合する。抗体１～４、６、１２、１３は、低μｇ／ｍｌでｃｙＳＩＲＰαに結合する。これらの抗体は、同じＥＣ５０値の範囲（低μｇ／ｍｌ）で、ｈｕＳＩＲＰαＢＩＴを内因的に発現するＵ９３７細胞にも結合する。参照抗体ＫＷＡＲ２３、ＫＷＡＲ２３ｈｕＩｇＧ１ＬＡＬＡ、１２Ｃ４ｈｕＩｇＧ１ＬＡＬＡ、１２ＣｈｕＩｇＧ１、２９ＡＭ４-５ｈｕＩｇＧ１ＬＡＬＡ及びＨＥＦＬＢは、Ｕ９３７細胞に発現したｈｕＳＩＲＰαＢＩＴに対して同様の結合を示す。ＨＥＦＬＢは、ｈｕＳＩＲＰα１及びｃｙＳＩＲＰαと結合しない。
実施例３ ヒトＳＩＲＰγへの結合－Ｔ細胞ＦＡＣＳ染色
実験
フローサイトメトリーによる分析
末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）を、健康なヒトの新鮮な血液からパーコールによる勾配を使用して分離した。ＨＥＰＥＳ＋バッファー（１３２ｍＭのＮａＣｌ、６ｍＭのＫＣｌ、１ｍＭのＣａＣｌ２、１ｍＭのＭｇＳＯ４、１．２ｍＭのリン酸カリウム、２０ｍＭのＨＥＰＥＳ、５．５ｍＭのグルコース及び０．５％（w/v）ヒト血清アルブミン、ｐＨ７．４）で細胞を洗浄し、ＦＡＣＳバッファー（ＰＢＳ＋ヒトアルブミン１％（w/v）バッファー、ヒトアルブミン２００ｇ／ｍｌ、Sanquin Plasma Products B.V., Amsterdam, Netherlands）に１×１０６／ｍｌの濃度で再懸濁し、遠心分離後、ＰＢＳ＋２０％正常ヤギ血清（ＮＧＳ）に再懸濁した。続いて、細胞（９６ウェルプレートで、１ウェルにつき200,000細胞）を試験抗体の存在下、又は、対照条件として二次抗体のみ（二次ヤギ抗ヒトＩｇＧ Alexa 633 F(ab')2断片、希釈率1：1000、Jackson Immuno Research、及び二次ヤギ抗マウスＩｇＧ Alexa 633 F(ab’)2断片、希釈率1：250、Invitrogen）で、氷上で３０分間インキュベートした。次いで、細胞をＦＡＣＳバッファーで洗浄し、抗ヒトＣＤ３ ＦＩＴＣ抗体（希釈率1：100、Invitrogen）とそれぞれの二次抗体（抗ヒト又は抗マウス）の混合物に再懸濁し、暗所、氷上で３０分間インキュベートした。その後、細胞をＦＡＣＳバッファーで洗浄し、１５０μｌのＦＡＣＳバッファーに再懸濁し、フローサイトメトリー（LSRII HTS又はLSRFortessa, BD Biosciences, CA, USA）で蛍光強度を測定し、蛍光強度の中央値（MFI-Median）及び陽性細胞の割合として示した。
結果
図１に、抗体とＣＤ３＋Ｔ細胞で発現するＳＩＲＰγとの結合を示す（平均蛍光強度（図１ａ）；陽性細胞の割合（図１ｂ））。ヒト化ＨＥＦＬＢ以外の全ての参照抗体は、ＳＩＲＰγとの結合を示した。抗体１～１３は、ヒトＣＤ３＋Ｔ細胞との結合を示さず、細胞ベースの環境ではＳＩＲＰγに結合しないことを確認した。
実施例４ 競合的抗ＳＩＲＰα抗体の評価
実験
フローサイトメトリーによる分析
ヒトＳＩＲＰαＢＩＴ抗原を内因的に発現するＵ９３７細胞（ヒト単球細胞株）、及びヒトＳＩＲＰα１又はＳＩＲＰαＢＩＴ抗原のいずれかを一時的に発現するＣＨＯ-Ｓチャイニーズハムスター卵巣細胞（ＥｘｐｉＣＨＯ-Ｓ）からスクリーニングされ、単離された非操作サブクローンに由来する細胞（９６ウェルプレートで、１ウェルにつき100,000細胞）を、０．１％（v/w）のＢＳＡ（Sigma-Aldrich, St. Louis, MO）及び０．０２％（v/w）のＮａＮ３（Sigma-Aldrich）を含む氷冷ＦＡＣＳバッファー（１×ＰＢＳ（LONZA））で２回洗浄した後、氷冷ＦＡＣＳバッファーで希釈したさまざまな濃度の一次抗体（１ウェルにつき５０μｌ）を添加した。４℃で３０分間のインキュベーション後、細胞を氷冷ＦＡＣＳバッファーで２回洗浄した。次いで、１ウェルにつき５０μｌの二次ｍＡｂを添加した（AffiniPure（登録商標）F(ab’)2断片ヤギ抗ヒトＩｇＧ-ＡＰＣ、1：6,000希釈、Jackson Immuno Research）。４℃で３０分間経過後、細胞を２回洗浄し、１５０μｌのＦＡＣＳバッファーに再懸濁した。FACSVerse（BD Biosciences）を使用したフローサイトメトリーで蛍光強度を測定し、Ｕ９３７細胞では蛍光強度の中央値（MFI-Median）として、ＥｘｐｉＣＨＯ-Ｓ細胞では平均蛍光強度（MFI-Mean）として示した。GraphPad Prism（version 7.02 for Windows（登録商標）, GraphPad, San Diego, CA）で可変勾配（４つのパラメーター）を使用し、非線形回帰によって曲線をフィッティングした。４パラメーターのロジスティックフィットを使用し、曲線の下部と上部の中間のμｇ／ｍｌ単位の濃度として、ＥＣ５０値を計算した。
表面プラズモン共鳴（ＳＰＲ）による分析
BiaCore（登録商標）T200 instrument（GE life Sciences）により、２５℃で親和性のシングルサイクルカイネティクス解析を行った。ビオチンCAPtureキット（GE life Sciences）を使用して、ＡＶＩタグ付きビオチン化ＳＩＲＰ抗原を捕捉した。ビオチン捕捉試薬の注入によりストレプトアビジン表面を調製した。続いて、ビオチン化ＳＩＲＰ変異体を、約４０～５０応答単位（ＲＵ）の捕捉レベルまでランニングバッファー（１５０ｍＭのＮａＣｌ、３ｍＭのＥＤＴＡ及び０．００５％（v/v）の界面活性剤Ｐ２０を含有する１０ｍＭのＨＥＰＥＳバッファー、ｐＨ７．４）に注入した。１分間のベースライン安定化の後、１５０秒の結合時間で４段階で増加する濃度の抗ＳＩＲＰα抗体を注入した。両者とも流速３０μｌ／分で、解離を６００秒間観察した。予想されるＫＤ付近の濃度範囲を選択した。６Ｍのグアニジン－ＨＣｌ、０．２５ＭのＮａＯＨ溶液を用い、製造元の指示に従って再生を行った。（ビオチン捕捉試薬が結合した）リファレンスフローチャネルとランニングバッファー注入により、得られたセンサーグラムに対してダブルリファレンスサブトラクションを行った。試験を行った全ての抗ＳＩＲＰ抗体について、センサーグラムに１：１ラングミュアモデルをフィッティングさせた。BiaCore（登録商標）T200評価ソフトウェア（v3.1）を使用して、速度論的パラメーター（ｋａ、ｋｄ及びＫＤ）を計算した。ｈｕＳＩＲＰβ１ｖ１及びｈｕＳＩＲＰβ１ｖ２を単量体の形で試験した。推定ＫＤは、試験した濃度の範囲内である。報告されたＫＤ値が１．０×１０－１１未満の場合、速度論的パラメーターが機器の仕様の範囲外であるため、親和性を正確に求めることができなかった。
結果
フローサイトメトリー
ＳＩＲＰα抗体の細胞上のｈｕＳＩＲＰα１及びｈｕＳＩＲＰαＢＩＴとの結合をフローサイトメトリーで比較した。結合をＥＣ５０値として表４に示す。試験を行った全ての抗体は、ｈｕＳＩＲＰαＢＩＴ（ＥｘｐｉＣＨＯ-Ｓ細胞で一過性に発現又はＵ９３７細胞で内因的に発現）及びｈｕＳＩＲＰα１に対する結合を示す。ほとんどの抗体は低μｇ／ｍｌの範囲にＥＣ５０値を示すが、ＡＢ１１５-ＬＡＬＡ、３Ｆ９-ＬＡＬＡ及び７Ｈ９－ＬＡＬＡは、Ｕ９３７細胞との結合において１μｇ／ｍｌを超えるＥＣ５０値を示す。さらに、３Ｆ９-ＬＡＬＡは、ＥｘｐｉＣＨＯ-Ｓ細胞に発現したｈｕＳＩＲＰα１及びｈｕＳＩＲＰαＢＩＴに対して１μｇ／ｍｌを超えるＥＣ５０値で結合する。注目すべきことに、対応するアイソタイプ対照はこれらの細胞のいずれにも結合しない。
ＳＰＲ
ＳＰＲを使用して、ＳＩＲＰα抗体のヒトＳＩＲＰβ変異体β１ｖ１及びβ１ｖ２に対する選択性を比較し、その結果を表５に要約する。３Ｆ９-ＬＡＬＡ以外の全ての抗体はｈｕＳＩＲＰβ１ｖ１を認識した。試験した全ての抗体はｈｕＳＩＲＰβ１ｖ２に結合し、抗体６のＫＤが最も高く、したがって親和性が最も低い。注目すべきことに、対応するアイソタイプ対照はｈｕＳＩＲＰβ１ｖ１及びｈｕＳＩＲＰβ１ｖ２とは結合しない。
実施例５ 一次細胞（顆粒球、単球及びＴ細胞）に対する抗ＳＩＲＰα抗体の結合
実験
フローサイトメトリーによる分析：全血
ヘパリン処理した全血試料を健康なドナー（Sanquin blood bank Nijmegen, the Netherlands）から得、室温で一晩保存した。全血試料を１×BD FACS（登録商標）Lysing Solution（349202, BD Biosciences）に室温で１５分間溶解し、ＦＡＣＳバッファー（０．１％のＢＳＡ及び２ｍＭのＥＤＴＡを含むＰＢＳ）で洗浄した。９６ウェルマイクロタイタープレート（353910, Falcon）を使用し、１ウェルにつき１．５×１０５個の細胞を、５０μｌの抗ＳＩＲＰα抗体（濃度範囲は１０μｇ／ｍｌ又は９０μｇ／ｍｌから開始し、３．１６倍希釈）により、４℃で３０分間染色した。ＦＡＣＳバッファーで洗浄した後、細胞をＦＡＣＳバッファー中の、１：８００希釈 抗ヒトＣＤ３－ＰＢクローンＵＣＨＴ１（558117, BD Biosciences）、１：８００希釈 抗ヒトＣＤ１４－ＦＩＴＣクローンＭφＰ９（345784, BD Biosciences）及び１：６０００希釈 ＡＰＣ標識ヤギ抗ヒトＩｇＧ F(ab')2二次抗体（109-136-098, Jackson ImmunoResearch）のカクテルにより、４℃で３０分間インキュベートした。ＦＡＣＳバッファーによる洗浄後、凝集を避けるために細胞をボルテックスで混合し、１ウェルにつき５０μｌのBD Cytofix（登録商標）Fixation Buffer（４．２％ＰＦＡ、554655, BD Biosciences）により、室温で１５分間インキュベートし、分析前に洗浄した。試料をFACSVerse（BD Biosciences）で回収し、FlowJoソフトウェア（BD Biosciences）で分析した。顆粒球をFSC-A／SSC-Aでゲートし、続いてＣＤ１４でゲートした。Ｔ細胞及び単球は最初にFSC-A／SSC-Aでゲートした。次いで、Ｔ細胞はＣＤ３＋ＣＤ１４－細胞として、単球はＣＤ１４＋ＣＤ３－細胞として特定した。
フローサイトメトリーによる分析：単離したＴ細胞
Ｔ細胞は、健康なヒトの末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ、Sanquin blood bank Nijmegen, the Netherlands）から、ネガティブセレクション（11344D Dynabeads Untouched Human T Cell Kit, ThermoFisher Scientific）で分離した。ＨＥＰＥＳ＋バッファー（１３２ｍＭのＮａＣｌ、６ｍＭのＫＣｌ、１ｍＭのＣａＣｌ２、１ｍＭのＭｇＳＯ４、１．２ｍＭのリン酸カリウム、２０ｍＭのＨＥＰＥＳ、５．５ｍＭのグルコース及び０．５％（w/v）ヒト血清アルブミン、ｐＨ７．４）で細胞を洗浄し、単離バッファー（ＰＢＳ＋ヒトアルブミン１％（w/v）バッファー、ヒトアルブミン２００ｇ／ｍｌ、Sanquin Plasma Products B.V., Amsterdam, Netherlands）に１×１０６／ｍｌの濃度で再懸濁し、遠心分離後、ＦＡＣＳバッファー（０．１％（v/w）のＢＳＡ（Sigma-Aldrich, St. Louis, MO）及び０．０２％（v/w）のＮａＮ３（Sigma-Aldrich）を含む１倍ＰＢＳ（LONZA））に再懸濁した。細胞（９６ウェルプレートで100,000細胞／ウェル）を、氷冷ＦＡＣＳバッファーで洗浄し、氷冷ＦＡＣＳバッファーで希釈したさまざまな濃度の一次抗体（１ウェルにつき５０μｌ）を添加した。４℃で３０分間のインキュベーション後、細胞を氷冷ＦＡＣＳバッファーで２回洗浄し、次いで、１ウェルにつき５０μｌの二次抗体を添加した（ヒト抗体の場合、AffiniPure（登録商標）F(ab')2断片ヤギ抗ヒトＩｇＧ-ＡＰＣ、1：6,000希釈（Jackson Immuno Research）、マウス抗体の場合、AffiniPure（登録商標）Fab断片ヤギ抗マウスＩｇＧ (H+L)-Alexa Fluor 488、1：1,000希釈（Jackson Immuno Research））。４℃で３０分間経過後、細胞を２回洗浄し、１５０μｌのＦＡＣＳバッファーに再懸濁した。ACSVerse（BD Biosciences）を使用したフローサイトメトリーで蛍光強度を測定し、平均蛍光強度（MFI-Mean）として示した。GraphPad Prism（version 7.02 for Windows（登録商標）, GraphPad, San Diego, CA）で可変勾配（４つのパラメーター）を使用し、非線形回帰によって曲線をフィッティングした。４パラメーターのロジスティックフィットを使用し、曲線の下部と上部の中間のμｇ／ｍｌ単位の濃度として、ＥＣ５０値を計算した。
結果
フローサイトメトリー：全血
さまざまなＳＩＲＰα抗体と一次細胞の結合をフローサイトメトリーで測定した。代表的な健康なＳＩＲＰα１／ＳＩＲＰαＢＩＴヘテロ接合ドナーの用量反応曲線を図１０ａ～ｄに示す。応答の正確な高さは二次抗体にも依存する可能性があり、必ずしもＳＩＲＰα抗体の特徴ではないことに注意する必要がある。代わりに、ＥＣ５０値は検出抗体とは無関係であることから、比較する必要がある。ＥＣ５０値の概要を表６に示す。正確なＥＣ５０値はさまざまであるが、全ての抗体はＳＩＲＰα１／ＳＩＲＰαＢＩＴヘテロ接合ドナーの顆粒球及び単球と結合する。ＨＥＦＬＢ以外の全ての抗体は、ＳＩＲＰα１ホモ接合ドナーの顆粒球及びＣＤ１４＋単球と、変化するＥＣ５０値で結合する。これらのデータは、ＨＥＦＬＢがＳＩＲＰα１にも結合しない表２及び３のＳＰＲ及び細胞データと一致する。ヒト血液中のＣＤ３＋Ｔ細胞はＳＩＲＰα又はＳＩＲＰβを発現せず、ＳＩＲＰγのみを発現することから、ＣＤ３＋Ｔ細胞との結合はＳＩＲＰγとの結合と解釈することができる。ほとんどの抗体はＣＤ３＋Ｔ細胞と結合するが、抗体６、ＡＢ３-ＬＡＬＡ、３Ｆ９-ＬＡＬＡ、７Ｈ９-ＬＡＬＡ及びＨＥＦＬＢはＣＤ３＋Ｔ細胞と結合しない。この全血染色アッセイでは、ＡＢ１３６-ＬＡＬＡはより高い抗体濃度でＴ細胞と結合する。これは、Ａｂ１３６がＳＩＲＰγに結合するという国際公開第2018/057669号の開示と一致しているようであるが、ＫＤは低くなっている。
フローサイトメトリーによる分析：単離したＴ細胞
異なるアプローチによりさまざまな抗体のＳＩＲＰγ依存性Ｔ細胞結合を確認するために、（ＳＩＲＰα又はＳＩＲＰβ陽性骨髄細胞の不存在下で）単離された初代Ｔ細胞を抗体のパネルで染色した。結果を図１１に示す。ほとんどの抗体はＴ細胞と結合するが、抗体６、ＡＢ３-ＬＡＬＡ、３Ｆ９-ＬＡＬＡ、７Ｈ９-ＬＡＬＡ、ＳＥ５Ａ５及びＨＥＦＬＢはＴ細胞と結合しない。さらに、ＡＢ１３６-ＬＡＬＡは高抗体濃度で結合する。
したがって、抗体６とｈｕＳＩＲＰβ１ｖ２の親和性は、上述した広範なパネルで試験した比較抗ＳＩＲＰα抗体のいずれのものよりも低いことをこの実施例は示す。また、非Ｔ細胞結合抗体６とＳＩＲＰβ１ｖ１の親和性は、ＳＩＲＰγに対する親和性が低いか、親和性がないＡＢ１３６-ＬＡＬＡ、７Ｈ９-ＬＡＬＡ及びＨＥＦＬＢの親和性と同等であり、ＳＩＲＰγに対する親和性が低いか、親和性がないＡＢ３及びＳＥ５Ａ５の親和性よりも低かった。
概して、抗体６は、ＳＩＲＰα対立遺伝子の両者に結合する高い効力を有し、同時に、他の非抑制性ＳＩＲＰファミリーメンバーであるＳＩＲＰβ１ｖ１、ＳＩＲＰβ１ｖ２及びＳＩＲＰγとの結合が比較的低いか存在しない。
実施例６ ＣＤ４７阻止能
実験
ＣＤ４７阻止能
ＣＤ４７とＳＩＲＰα１又はＳＩＲＰαＢＩＴとの結合を阻止する抗ＳＩＲＰα抗体の能力を評価するために、ＳＩＲＰα１又はＳＩＲＰαＢＩＴを抗ＳＩＲＰα抗体とプレインキュベートし、次いで、捕捉されたＣＤ４７からの解離を試験した。簡単に説明すると、ビオチンCAPtureキット（GE life Sciences）を使用して、ＡＶＩタグ付きビオチン化ＣＤ４７-Ｆｃを捕捉した。ビオチン捕捉試薬の注入によりストレプトアビジン表面を調製した。続いて、ビオチン化ＣＤ４７-Ｆｃを、約１００ＲＵの捕捉レベルまでランニングバッファー（１５０ｍＭのＮａＣｌ、３ｍＭのＥＤＴＡ及び０．００５％（v/v）の界面活性剤Ｐ２０を含有する１０ｍＭのＨＥＰＥＳバッファー、ｐＨ７．４）に注入した。１０μｇ／ｍｌのＳＩＲＰα１又は１０μｇ／ｍｌのＳＩＲＰαＢＩＴと５倍モル過剰の抗体を含む混合物を、周囲温度で３０分間プレインキュベートし、ＣＤ４７-Ｆｃ表面に５μｌ／分で１２０秒間注入した。製造元の指示に従って、６Ｍのグアニジン－ＨＣｌ、０．２５ＭのＮａＯＨ（３：１）で再生する前に、解離を３００秒間観察した。ダブルリファレンスサブトラクション後の視覚的評価によって、ブロッキング／非ブロッキング抗体の特性を評価した。
結果
ＣＤ４７阻止能
ＳＰＲを使用して、ＣＤ４７の結合を阻止するＳＩＲＰα標的抗体の能力を調査した（表７）。抗体６を含むほとんどの抗体は、ＣＤ４７－ＳＩＲＰαＢＩＴとＣＤ４７－ＳＩＲＰα１の相互作用を阻止するが、ＡＢ３-ＬＡＬＡ、ＡＢ１３６-ＬＡＬＡ、３Ｆ９-ＬＡＬＡ及び７Ｈ９-ＬＡＬＡは、ＣＤ４７－ＳＩＲＰαＢＩＴとＣＤ４７－ＳＩＲＰα１の相互作用を阻止せず、したがって、それらは非ブロッキングである。さらに、ＨＥＦＬＢはＣＤ４７－ＳＩＲＰαＢＩＴ相互作用のみを阻止し、ＣＤ４７－ＳＩＲＰα１相互作用は阻止せず、このことは、ＨＥＦＬＢによるＳＩＲＰα１認識の欠如と一致する。
実施例７ ＳＨＰ-１動員阻止能
実験
DiscoverX（登録商標）におけるPathHunterEnzyme Fragment Complementationテクノロジーを使用して、ＳＩＲＰαＢＩＴシグナル伝達を分析した。このアッセイでは、ＣＤ４７欠損Jurkat細胞は、ＳＩＲＰαＢＩＴ ＋でタグ付けされ、Prolink（ＰＫ）及びEnzyme Acceptor（ＥＡ）と融合したシグナル伝達タンパク質ＳＨＰ-１のＳＨ２ドメインを過剰発現するように遺伝子操作されている。これらのJurkat ＳＩＲＰαＢＩＴシグナル伝達細胞とＣＤ４７を発現する細胞（ＣＤ４７リガンド細胞）をインキュベートすると、ＳＨＰ-１とＳＩＲＰαＢＩＴが相互作用し、ＰＫ及びＥＡを補完する。これにより、基質を切断して化学発光シグナルを生成することが可能な活性なβ-ガラクトシダーゼ酵素が生成する。この系は、ＳＩＲＰαへのＳＨＰ-１の動員に拮抗するＳＩＲＰα標的抗体の能力の研究に使用することができる。Jurkat ＳＩＲＰαＢＩＴシグナル伝達細胞とさまざまな濃度の抗ＳＩＲＰα抗体を、ＣＤ４７リガンド細胞と共にインキュベートした。Jurkat E6.1細胞をＣＤ４７リガンド細胞として使用し、３８４ウェルプレートを使用してアッセイした。最初に、１２．５μｌのJurkat ＳＩＲＰαＢＩＴシグナル伝達細胞懸濁液（８０万細胞／ｍｌ）を各ウェルに添加し、続いて、さまざまな濃度の抗ＳＩＲＰα抗体溶液（１１倍濃縮）２．５μｌを添加した。アッセイは、ＥＣ８０（１６０万Jurkat E6.1細胞／ｍｌ）で１２．５μｌのＣＤ４７リガンド細胞懸濁液を添加することにより開始した。プレートを３７℃、５％ＣＯ２で４時間インキュベートした。インキュベーション後、（０．１％のＢＳＡを含むＰＢＳで）２倍希釈した試薬Ａ（DiscoverX検出キット）を２μｌ添加した。プレートをシェーカーを用い、暗所、室温で３０分間インキュベート（３００ｒｐｍ）した。次いで、（０．１％のＢＳＡを含むＰＢＳで）２倍希釈した試薬Ｂ（DiscoverX検出キット）を１０μｌ添加した。プレートをシェーカーを用い、暗所、室温で１時間インキュベート（３００ｒｐｍ）した。Envision（登録商標）システム（Perkin Elmer）を使用して、０．１秒／ウェルの積分時間で発光を測定した。全ての細胞懸濁液は、細胞プレーティング培地（DiscoverX）で調製し、抗体は０．１％ＢＳＡ（Sigma）を含むＰＢＳで希釈した。GraphPad Prism 8ソフトウェアでグラフを分析した。最大信号の％は以下の式で求めた；
［相対発光強度（ＲＬＵ）／最大刺激のＲＬＵ（抗体なし）］×１００。
阻害効果は次のように計算した：
１００％－（３．３μｇ／ｍｌにおける化合物の「最大信号の％」）。
結果
ＳＩＰＲαの活性化は抑制性シグナルカスケードにつながる。ＣＤ４７の結合により、ＳＩＲＰαの細胞質ドメインのＩＴＩＭ（immunoreceptor tyrosine-based inhibition motif）がリン酸化され、Ｓｒｃ相同性領域２ドメイン含有ホスファターゼ-１（ＳＨＰ-１）の動員と活性化を引き起こす。ＳＨＰ-１は、活性化ＦｃγＲを含む特定の基質のタンパク質脱リン酸化を介して抑制性シグナル伝達を媒介する。これは免疫応答の抑制につながる。ＣＤ４７欠損Jurkat ＳＩＲＰαＢＩＴシグナル伝達細胞を使用して、ＳＩＲＰαが媒介するシグナル伝達を阻害するＳＩＲＰα標的抗体の能力を調査した。これらの細胞をJurkat E6.1細胞を含むＣＤ４７とインキュベートすると、ＳＩＲＰαＢＩＴがＳＨＰ-１を動員し、化学発光シグナルが生じる。抗体６は、用量依存的にこのシグナルに拮抗することができる（図１２ａ）。他のＳＩＲＰα標的抗体のＳＩＲＰαＢＩＴシグナル伝達に拮抗する能力を、固定用量（３．３μｇ／ｍｌ）で試験した（図１２ｂ）。ＳＩＲＰαＢＩＴシグナル伝達を阻害する効果は、ＳＥ５Ａ５を除く全てのＣＤ４７－ＳＩＲＰαブロッキング抗体で同様である（白いバーで示す）。非ブロッキング抗体ＡＢ３-ＬＡＬＡ、ＡＢ１３６-ＬＡＬＡ、３Ｆ９-ＬＡＬＡ及び７Ｈ９-ＬＡＬＡ（黒いバーで示す）は、ブロッキング抗体と比較してシグナル伝達阻害効果が低いか、阻害効果を有さず、したがって、ＳＩＲＰαを介したシグナル伝達にあまり拮抗しないか、拮抗することができないようである。
概して、非ブロッキング抗体とは対照的に、抗体６はＣＤ４７と一対のＳＩＲＰα対立遺伝子の両者との結合を阻止し、このことはシグナル伝達の高い阻害につながる。
実施例８ 抗体依存性細胞傷害（ＡＤＣＣ）
実験
DELFIA（登録商標）細胞毒性分析（非放射性分析）
ＳＩＲＰα１及びＳＩＲＰαＢＩＴがヘテロ接合であるドナーの好中球を、Zhao et al. PNAS 2011, 108(45), 18342-18347に記載の方法で分離し、培養した。新たに単離した好中球を、ヒトＧ-ＣＳＦ（１０ｎｇ／ｍｌ）及びＩＦＮγ（５０ｎｇ／ｍｌ）とともに一晩培養した。非放射性ユーロピウムＴＤＡ（ＥｕＴＤＡ）細胞傷害アッセイ（DELFIA（登録商標）、PerkinElmer）により、抗体依存性細胞傷害（ＡＤＣＣ）を確認した。ＳＫＢＲ３（ヒトＨＥＲ２陽性乳癌細胞株）細胞を標的細胞として用い、ビス(アセトキシメチル)2,2':6',2''-ターピリジン-6,6''-ジカルボキシレート）（ＢＡＴＤＡ試薬、DELFIA）により、３７℃で５分間標識した。ＰＢＳで２回洗浄後、ウルトラローＩｇＧのウシ胎児血清（FBS, Gibco）が１０％（v/v）添加されたＩＭＤＭ培地が入った９６穴Ｕ底プレートに、１ウェルにつき５×１０３の標的細胞を入れ、エフェクターと標的細胞の比が５０：１となるように、適切な抗体の存在下、３７℃、５％ＣＯ２で４時間インキュベートした。インキュベーション後、上澄みを回収し、ユーロピウム溶液（DELFIA, PerkinElmer）に加え、分光蛍光光度計（Envision, PerkinElmer）でユーロピウム2,2':6',2"-ターピリジン-6,6"-ジカルボン酸（EuTDA）の蛍光を測定した。細胞毒性の割合（％）は、
［（実験的放出－自発的放出）／（全放出－自発的放出）］×１００％
として計算した。全ての状態を２回及び／又は３回測定した。
５１ Ｃｒ放出分析（放射性分析）
ＳＩＲＰα１又はＳＩＲＰαＢＩＴがホモ接合であるドナーの好中球を、Zhao et al. PNAS 2011, 108(45), 18342-18347に記載の方法で分離した。全ての５１Ｃｒ放出アッセイ実験では、図２に示した点以外、新たに単離した好中球をヒトＧＭ-ＣＳＦ１０ｎｇ／ｍｌとともに１００分間培養した。５１Ｃｒ放出アッセイにより、抗体依存性細胞傷害（ＡＤＣＣ）を確認した。ＳＫＢＲ３（ヒト乳癌細胞株）細胞を標的細胞として用い、１００μＣｉの５１Ｃｒ（Perkin-Elmer）により、３７℃で９０分間標識した。ＰＢＳで２回洗浄後、ウシ胎児血清が１０％（v/v）添加されたＩＭＤＭ培地が入った９６穴Ｕ底プレートに、１ウェルにつき５×１０３の標的細胞を入れ、エフェクターと標的細胞の比が５０：１となるように、適切な抗体の存在下、３７℃、５％ＣＯ２で４時間インキュベートした。インキュベーション後、上澄みを回収し、ガンマカウンター（Wallac）で放射線を分析した。細胞毒性の割合（％）は、
［（実験的放出－自発的放出）／（全放出－自発的放出）］×１００％
として計算した。全ての状態を２回及び／又は３回測定した。
結果
１２Ｃ４をヒト化することでＡＤＣＣが喪失し、これは、ＩｇＧ １ 定常領域のエフェクター機能を低下させることにより回復した
５１Ｃｒ放出アッセイで測定した細胞毒性（％）としてのＡＤＣＣアッセイの結果を図２に示す。ＳＩＲＰαＢＩＴホモ接合ドナーの好中球をエフェクター細胞として使用した場合、トラスツズマブ単独では、ＳＫＢＲ３細胞で測定された細胞毒性（％）は、マウス１２Ｃ４抗体（ｍｕ１２Ｃ４）とトラスツズマブの組合せの細胞毒性％よりも低い。１２Ｃ４の可変領域とヒトＩｇＧ１の定常領域に移植した抗体（１２Ｃ４ｈｕＩｇＧ１）とトラスツズマブの組合せでは、低濃度の１２Ｃ４ｈｕＩｇＧ１の場合、トラスツズマブ単独と同様の細胞毒性（％）を示す。１２Ｃ４ｈｕＩｇＧ１の濃度が高くなると、細胞毒性（％）が低下する。１２Ｃ４の可変領域をアミノ酸置換Ｌ２３４Ａ及びＬ２３５Ａを有するヒトＩｇＧ１の定常領域に移植した抗体（１２Ｃ４ｈｕＩｇＧ１）とトラスツズマブの組合せは、トラスツズマブ単独と比較して、細胞毒性（％）が増加し、０．２μｇ／ｍｌの１２Ｃ４ｈｕＩｇＧ１とトラスツズマブの組合せと比較して、細胞毒性（％）が増加している。
トラスツズマブによるＡＤＣＣの濃度依存性増加
アミノ酸置換Ｌ２３４Ａ及びＬ２３５Ａ（ＬＡＬＡ）を含むヒトＩｇＧ１の定常領域を有する抗体１～１３又は参照抗体がさまざまな濃度（μｇ／ｍｌ；用量反応曲線）で存在する場合の、トラスツズマブ（１０μｇ／ｍｌ）のＳＲＢＲ３ ＨＥＲ２陽性乳癌細胞に対するＡＤＣＣ／細胞毒性の割合を、図３～９に示す。ＳＩＲＰα１／ＳＩＲＰαＢＩＴヘテロ接合ドナーに対するＡＤＣＣは、１２Ｃ４ｈｕＩｇＧ１では用量依存的に減少し、ヒト化ＨＥＦＬＢでは明確な効果は認められず、ＫＷＡＲ２３ｈｕＩｇＧ１及びＳＥ５Ａ５では効果は最小限で、ＫＷＡＲ２３-ＬＡＬＡリファレンス抗体では用量依存的に増加する（図３）のに対して、抗体１～１３の場合、用量依存的に増加した（図４及び５）。ＳＩＲＰα１又はＳＩＲＰαＢＩＴホモ接合のバックグラウンドについて、抗体７～１３及び参照抗体も試験した（図６～９）。全ての抗体は、より多様な結果を示すようである。
実施例９ 免疫原性
ＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープは、in vivoにおける免疫原性（抗薬物抗体）の重要な推進力である。ex vivo Ｔ細胞アッセイを使用して、抗ＳＩＲＰα抗体６のＴ細胞エピトープに対するＴ細胞応答を検出した。Abzena（Cambridge, UK）においてＣＤ４＋Ｔ細胞応答を誘導する能力について、EpiScreen（登録商標）タイムコースＴ細胞アッセイによる免疫原性評価のために抗体６を用いた。（ＨＬＡアロタイプに基づく）ヨーロッパ及び北米の５０人の健康なドナーのＰＢＭＣを試験用試料とインキュベートした。増殖アッセイ（［３Ｈ］-チミジン取り込み）及びサイトカイン分泌アッセイ（ＩＬ-２ ＥＬＩＳｐｏｔ）により、Ｔ細胞応答を測定した。Ｔ細胞増殖アッセイ及びＩＬ-２ ＥＬＩＳｐｏｔの組合せにおいて、抗体６は免疫原性ではないことが判明した。
実施例１０ 抗体依存性細胞傷害（ＡＤＣＣ）；比較実験
実験
ＳＩＲＰα１又はＳＩＲＰαＢＩＴがホモ接合又はヘテロ接合であるドナーのヒト好中球を、Zhao et al. PNAS 2011, 108(45), 18342-18347に記載の方法で分離した。次いで、好中球を１０ｎｇ／ｍｌの顆粒球単球コロニー刺激因子（GM-CSF、Peprotech）で３０分間刺激した。抗体依存性細胞傷害（ＡＤＣＣ）を、５１Ｃｒ放出アッセイ（PerkinElmer）により、Zhao et al. PNAS 2011, 108(45), 18342-18347に記載の方法で確認した。簡潔に説明すると、ＳＫＢＲ３（ヒト乳癌細胞株）細胞を標的細胞として用い、１００μＣｉの５１Ｃｒ（Perkin-Elmer）により、３７℃で９０分間標識した。ＰＢＳで２回洗浄後、１ウェルにつき５×１０３の標的細胞を、トラスツズマブ（ＳＫＢＲ３の最終濃度１０μｇ／ｍｌ）又はセツキシマブ（Ａ４３１の最終濃度５μｇ／ｍｌ）でオプソニン化し、ローＩｇＧのウシ胎児血清（ＦＢＳ）が１０％（v/v）添加されたＩＭＤＭ培地が入った９６穴Ｕ底プレートに入れ、エフェクターと標的細胞の比が５０：１となるように、図１３～１４に示す抗体の用量反応の範囲の存在下、３７℃、５％ＣＯ２で４時間インキュベートした。インキュベーション後、上澄みを回収し、LumaPlates（Perkin Elmer）に移し、MicroBetaカウンター（Perkin Elmer）で放射線を分析した。細胞毒性の割合（％）は、
［（実験的放出－自発的放出）／（全放出－自発的放出）］×１００％
として計算した。全ての状態を２回又は３回測定した。
結果
抗体依存性細胞傷害（ＡＤＣＣ）
抗ＳＩＲＰα抗体の効果は、エフェクター細胞としてＧＭ-ＣＳＦで活性化した初代ヒト好中球を使用し、がんを標的とする治療用抗体及び腫瘍標的細胞のさまざまな組合せを使用したＡＤＣＣ実験で試験した（図１３ａ～ｂ、１４ａ～ｂ）。後者には、ＨＥＲ２発現ＳＫＢＲ３乳癌細胞とトラスツズマブの組合せ（図１３）及びＥＧＦＲ発現Ａ４３１がん細胞とセツキシマブの組合せ（図１４）を含んだ。抗体６は、両方のがん標的抗体－標的がん細胞の組合せの両者の好中球ＡＤＣＣを増強することができた。他のいくつかの抗ＳＩＲＰα抗体についても同様の所見が得られたが、例えば、４０Ａ-１、４０Ａ-２、３Ｆ９-ＬＡＬＡ、７Ｈ９-ＬＡＬＡ、１２Ｃ４、２９ＡＭ４-５-ＬＡＬＡ、ＳＥ５Ａ５については得られなかった。
概して、抗体６は、非抑制性ＳＩＲＰファミリーメンバーであるＳＩＲＰβ１ｖ１、ＳＩＲＰβ１ｖ２及びＳＩＲＰγに対する親和性が比較的低いか存在しない唯一の抗体であり、機能アッセイでは、ＳＩＲＰαＢＩＴ及びＳＩＲＰα１遺伝子型の両者に対して強力なＡＤＣＣを示すと同時に、下流のシグナル伝達を効果的に阻害する。
配列表。抗体１～１３は、重鎖（ＨＣ）及び軽鎖（ＬＣ）可変領域（ＶＲ）のアミノ酸配列（Kabatの方法に従って求めたＶＲ残基；配列のナンバリングは、Kabatによるナンバリングではなく、アミノ酸の順番である。）中の、ＣＤＲ１、ＣＤＲ２及びＣＤＲ３のアミノ酸配列に下線を付与。

Claims (20)

  1. 重鎖相補性決定領域（ＨＣＤＲ）１、ＨＣＤＲ２、ＨＣＤＲ３、軽鎖相補性決定領域（ＬＣＤＲ）１、ＬＣＤＲ２及びＬＣＤＲ３を含むヒト化抗ＳＩＲＰα抗体又はその抗原結合断片であって、前記抗体又はその抗原結合断片は、
    a. 配列番号３６で示されるアミノ酸配列を含むＨＣＤＲ１；
    b. 配列番号４４で示されるアミノ酸配列を含むＨＣＤＲ２；
    c. 配列番号４５で示されるアミノ酸配列を含むＨＣＤＲ３；
    d. 配列番号３９で示されるアミノ酸配列を含むＬＣＤＲ１；
    e. 配列番号４０で示されるアミノ酸配列を含むＬＣＤＲ２；及び
    f. 配列番号４１で示されるアミノ酸配列を含むＬＣＤＲ３；
    を含むヒト化抗ＳＩＲＰα抗体又はその抗原結合断片。
  2. 前記抗体又はその抗原結合断片は、配列番号８のアミノ酸配列の重鎖可変領域（ＨＣＶＲ）及び配列番号９のアミノ酸配列の軽鎖可変領域（ＬＣＶＲ）を含む、請求項１に記載のヒト化抗ＳＩＲＰα抗体又はその抗原結合断片。
  3. 野生型のＦｃ領域を有する同じ抗ＳＩＲＰα抗体と比較して、ヒトＦｃα又はＦｃγ受容体との結合が低減した修飾Ｆｃ領域を含む、請求項１又は２に記載のヒト化抗ＳＩＲＰα抗体。
  4. アミノ酸置換Ｌ２３４Ａ及びＬ２３５Ａ；Ｌ２３４Ｅ及びＬ２３５Ａ；Ｌ２３４Ａ、Ｌ２３５Ａ及びＰ３２９Ａ；又はＬ２３４Ａ、Ｌ２３５Ａ及びＰ３２９Ｇを含む、請求項１～３のいずれか一項に記載のヒト化抗ＳＩＲＰα抗体。
  5. 請求項１～４のいずれか一項に記載のヒト化抗ＳＩＲＰα抗体又は請求項１若しくは２に記載の抗原結合断片、及び薬学的に許容される添加剤を含む、医薬組成物。
  6. 医薬として使用するための請求項５に記載の医薬組成物。
  7. がんの治療に使用するための請求項５に記載の医薬組成物であって、前記治療は治療用抗体の投与をさらに含み、前記がんは、好ましくは、ヒトの固形腫瘍又は血液悪性腫瘍である、医薬組成物。
  8. 請求項７に記載の医薬組成物であって、前記治療用抗体は、腫瘍細胞表面の膜に結合した標的に対するもので、ヒトの免疫エフェクター細胞上の活性化Ｆｃ受容体に結合するヒトのＦｃ領域を含む、医薬組成物。
  9. 請求項７又は８に記載の医薬組成物であって、前記ヒトの固形腫瘍は、（ＨＥＲ２陽性）乳癌、（ＥＧＦＲ陽性）結腸癌、（ＧＤ２陽性）神経芽腫、黒色腫、骨肉腫、（ＣＤ２０陽性）Ｂ細胞リンパ腫、（ＣＤ３８陽性）多発性骨髄腫、（ＣＤ５２陽性）リンパ腫、（ＣＤ３３陽性）急性骨髄性白血病（ＡＭＬ）、慢性骨髄性白血病（ＣＭＬ）、慢性リンパ性白血病（ＣＬＬ）、急性リンパ芽球性白血病（ＡＬＬ）、ろ胞性リンパ腫（ＦＬ）及びびまん性大細胞性Ｂ細胞リンパ腫（ＤＬＢＣＬ）を含む非ホジキンリンパ腫（ＮＨＬ）、肝細胞癌、多発性骨髄腫（ＭＭ）、膀胱癌、胃癌、卵巣癌、頭頸部癌、膵癌、腎癌、前立腺癌、肝細胞癌並びに肺癌からなる群から選択される、医薬組成物。
  10. 請求項７～９のいずれか一項に記載の医薬組成物であって、前記治療は抗がん治療化合物の投与をさらに含む、医薬組成物。
  11. 請求項１０に記載の医薬組成物であって、前記さらなる抗がん治療化合物は、標的治療薬、好ましくは免疫療法剤である、医薬組成物。
  12. 請求項１～４のいずれか一項に記載のヒト化抗ＳＩＲＰα抗体又は請求項１若しくは２に記載の抗原結合断片をコードするヌクレオチド配列を含有する核酸分子であって、前記核酸分子は、好ましくは、前記抗体のＨＣＶＲ及びＬＣＶＲのうちの少なくとも１つをコードするヌクレオチド配列を含み、前記コードされたヌクレオチド配列は、好ましくは、宿主細胞中で、前記コードされたヌクレオチド配列の発現のための調節配列と動作可能に連結している、核酸分子。
  13. 請求項１２に記載の核酸分子を含む宿主細胞。
  14. がんを治療するための医薬の製造における、請求項１～４のいずれか一項に記載のヒト化抗ＳＩＲＰα抗体、請求項１若しくは２に記載の抗原結合断片、又は請求項５に記載の医薬組成物の使用であって、前記治療は治療用抗体の投与をさらに含む、使用。
  15. 前記がんはヒトの固形腫瘍又は血液悪性腫瘍である、請求項１４に記載の使用。
  16. 前記治療用抗体は、腫瘍細胞表面の膜に結合した標的に対するもので、ヒトの免疫エフェクター細胞上の活性化Ｆｃ受容体に結合するヒトのＦｃ領域を含む、請求項１４又は１５に記載の使用。
  17. 前記膜に結合した標的は、アネキシンＡｌ、ＡＭＨＲ２、ＡＸＬ、ＢＣＭＡ、Ｂ７Ｈ３、Ｂ７Ｈ４、ＣＡ６、ＣＡ９、ＣＡ１５-３、ＣＡ１９-９、ＣＡ２７-２９、ＣＡ１２５、ＣＡ２４２、ＣＣＲ２、ＣＣＲ４、ＣＣＲ５、ＣＤ２、ＣＤ４、ＣＤ１６、ＣＤ１９、ＣＤ２０、ＣＤ２２、ＣＤ２７、ＣＤ３０、ＣＤ３３、ＣＤ３７、ＣＤ３８、ＣＤ４０、ＣＤ４４、ＣＤ４７、ＣＤ５２、ＣＤ５６、ＣＤ７０、ＣＤ７４、ＣＤ７９、ＣＤ９８、ＣＤ１１５、ＣＤ１２３、ＣＤ１３８、ＣＤ２０３ｃ、ＣＤ３０３、ＣＤ３３３、ＣＥＡ、ＣＥＡＣＡＭ、ＣＬＣＡ-１、ＣＬＬ-１、ｃ-ＭＥＴ、Ｃｒｉｐｔｏ、ＣＴＬＡ-４、ＤＬＬ３、ＥＧＦＬ、ＥＧＦＲ、ＥＰＣＡＭ、ＥＰｈ（例．ＥｐｈＡ２又はＥＰｈＢ３）、エンドセリンＢ型受容体（ＥＴＢＲ）、ＦＡＰ、ＦｃＲＬ５（ＣＤ３０７）、ＦＧＦ、ＦＧＦＲ（例．ＦＧＦＲ３）、ＦＯＬＲ１、フコシル-ＧＭ１、ＧＣＣ、ＧＤ２、ＧＰＮＭＢ、ｇｐ１００、ＨＥＲ２、ＨＥＲ３、ＨＭＷ-ＭＡＡ、インテグリンα（例．αｖβ３及びαｖβ５）、ＩＧＦ１Ｒ、ＩＬ１ＲＡＰ、κミエローマ抗原、ＴＭ４ＳＦ１（又はＬ６抗原）、ルイスＡ様糖鎖、ルイスＸ、ルイスＹ、ＬＩＶ１、メソテリン、ＭＵＣ１、ＭＵＣ１６、ＮａＰｉ２ｂ、ネクチン-４、ＰＤ-１、ＰＤ-Ｌ１、プロラクチン受容体、ＰＳＭＡ、ＰＴＫ７、ＳＬＣ４４Ａ４、ＳＴＥＡＰ-１、５Ｔ４抗原（又はＴＰＢＧ、栄養芽細胞糖タンパク質）、ＴＦ（組織因子）、トムゼン-フリーデンライヒ抗原（ＴＦ-Ａｇ）、Ｔａｇ７２、ＴＮＦ、ＴＮＦＲ、ＴＲＯＰ２、ＶＥＧＦ、ＶＥＧＦＲ及びＶＬＡからなる群から選択される、請求項１６に記載の使用。
  18. 前記ヒトの固形腫瘍は、（ＨＥＲ２陽性）乳癌、（ＥＧＦＲ陽性）結腸癌、（ＧＤ２陽性）神経芽腫、黒色腫、骨肉腫、（ＣＤ２０陽性）Ｂ細胞リンパ腫、（ＣＤ３８陽性）多発性骨髄腫、（ＣＤ５２陽性）リンパ腫、（ＣＤ３３陽性）急性骨髄性白血病（ＡＭＬ）、慢性骨髄性白血病（ＣＭＬ）、慢性リンパ性白血病（ＣＬＬ）、急性リンパ芽球性白血病（ＡＬＬ）、ろ胞性リンパ腫（ＦＬ）及びびまん性大細胞性Ｂ細胞リンパ腫（ＤＬＢＣＬ）を含む非ホジキンリンパ腫（ＮＨＬ）、肝細胞癌、多発性骨髄腫（ＭＭ）、膀胱癌、胃癌、卵巣癌、頭頸部癌、膵癌、腎癌、前立腺癌、肝細胞癌並びに肺癌からなる群から選択される、請求項１５に記載の使用。
  19. 前記治療は抗がん治療化合物の投与をさらに含む、請求項１４～１８のいずれか一項に記載の使用。
  20. 前記さらなる抗がん治療化合物は、標的治療薬、好ましくは免疫療法剤である、請求項１９に記載の使用。
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