JP7031002B2 - ピリジノイミダゾール系化合物の結晶型、塩型及びその製造方法 - Google Patents
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Description
本発明のいくつかの態様において、前記式(I)化合物のB結晶型において、式(I)化合物の構造は化合物2の通りである。
n3が1から選ばれ、
m3が0、0.5、1、1.5、2、2.5、3、3.5及び4から選ばれる。
n4が1から選ばれ、
m4が0、0.5、1、1.5、2、2.5、3、3.5及び4から選ばれる。
n5が0.5及び1から選ばれ、
m5が0、0.5、1、1.5、2、2.5、3、3.5及び4から選ばれる。
定義及び説明
計器の型番:ブルカーD8 advance X線回折計
測定方法:約10~20mgの試料をXRPDの検出に用いる。
詳細なXRPDパラメータは下記の通りである。
管電圧:40kV、管電流:40mA
発散スリット:0.60mm
センサスリット:10.50mm
散乱防止スリット:7.10mm
走査範囲:4~40deg
ステップ角:0.02deg
ステップ幅:0.12秒
試料パン回転数:15rpm
計器の型番:TA Q2000示差走査熱量計
測定方法:試料(約1mg)をDSCアルミニウム製坩堝に量り取り測定を行い、50mL/min N2条件で、10℃/minの昇温速度で、試料を30℃から280℃まで加熱する。
計器の型番:TA Q5000IR熱重量分析計
測定方法:試料(2~5mg)をTGA白金坩堝に量り取り測定を行い、25mL/min N2条件で、10℃/minの昇温速度で、試料を室温から300℃まで加熱する。
解析方法は下記の通りである。
ステップ1:化合物BB-1-2の合成:
化合物BB-1-1(300mg、1.97mmol)のブロモホルム(5mL)溶液に亜硝酸tert-ブチル(406mg、3.94mmol)を入れた。混合物を60℃で1時間撹拌した後、90℃で1時間撹拌した。反応液を室温まで冷却した後、濃縮し粗生成物を得、シリカゲルフラッシュカラムクロマトグラフィー(5~20%酢酸エチル/石油エーテル)で精製し、化合物BB-1-2(300.00mg、収率70.50%)を得た。1H NMR(400MHz,CDCl3)δ:11.25(br s,1H),8.54(dd,J=1.88、2.64Hz,1H),7.69(dd,J=2.51,7.28Hz,1H).MS(ESI)m/z:215.9(M+H+).
ステップ2:化合物BB-1-3の合成:
化合物BB-1-2(300mg、1.39mmol)のN,N-ジメチルホルムアミド(5mL)溶液にトリフェニルクロロメタン(426mg、1.53mmol)と炭酸カリウム(576mg、4.17mmol)を加え、混合物を25℃で12時間撹拌した。反応液を酢酸エチル(50mL)で希釈してから、飽和食塩水(15mL×3)で洗浄し、有機相を無水硫酸ナトリウムで乾燥し、濃縮し粗生成物を得た。シリカゲルフラッシュカラムクロマトグラフィー(0~10%酢酸エチル/石油エーテル)で精製し、化合物BB-1-3(350mg、収率54.94%)を得た。1H NMR(400MHz,CDCl3)δ:8.16(dd,J=1.25,2.76Hz,1H),7.53(dd,J=3.01,7.53Hz,1H),7.25(s,15H).MS(ESI)m/z:458.2(M+H+).
ステップ3:化合物BB-1の合成:
化合物BB-1-3(350mg、763.66μmol)とビス(ピナコラト)ジボロン(291mg、1.15mmol)のN,N-ジメチルホルムアミド(7mL)溶液に、醋酸カリウム(225mg、2.29mmol)とジクロロ[1,1’-ビス(ジフェニルホスフィノ)フェロセン]パラジウム(II)(28mg、38.18μmol)を入れた。混合物を100℃で窒素雰囲気で2時間撹拌した。反応液を室温まで冷却した後、ろ過し、ろ液を酢酸エチル(50mL)で希釈し、飽和食塩水(20mL×3)で洗浄した。有機相を無水硫酸ナトリウムで乾燥し、濃縮し粗生成物を得、シリカゲルフラッシュカラムクロマトグラフィー(0~10%酢酸エチル/石油エーテル)で精製し、BB-1(300mg、収率77.73%)を得た。MS(ESI)m/z:733.2(M+Na+).
ステップ1:化合物1-2の合成
0℃で、化合物1-1(25.00g、149.73mmol)をエチレングリコールジメチルエーテル(80mL)に溶解させ、シクロプロピルマグネシウムブロミド(0.5M、500.10mL)を滴下し、反応液を室温で一晩撹拌した。その後反応液を0℃まで冷却し、それぞれトリエチルアミン(15.15g、149.73mmol、20.75mL)のテトラヒドロフラン(30mL)溶液と、ヨウ素(38.00g、149.73mmol)のテトラヒドロフラン(30mL)溶液とを加え、反応液を室温で3時間撹拌した。反応液に酢酸エチル(1L)を加え、それぞれ、水(300mL×3)と飽和食塩水(300mL)で洗浄し、無水硫酸ナトリウムで乾燥し、ろ過し、減圧濃縮したものをシリカゲルカラム(石油エーテル)で精製し、化合物1-2(8g、収率25.8%)を得た。
ステップ2:化合物1-3の合成
化合物(2S,3S)-エチル3-アミノビシクロ[2.2.2]オクタン-2-カルボン酸(450mg、2.28mmol)と化合物1-2(450mg、2.17mmol)をテトラヒドロフラン(5.00mL)に溶解させ、ジイソプロピルエチルアミン(841.35mg、6.51mmol)を加え、反応液を55℃で3時間撹拌した。反応液を減圧濃縮し、得られた粗生成物をシリカゲルフラッシュカラムクロマトグラフィー(石油エーテル:酢酸エチル=10:1~5:1)で精製し、化合物1-3(460.00mg、収率57.6%)を得た。
ステップ3:化合物1-4の合成
室温にて、化合物1-3(460.00mg、1.25mmol)とBB-1(1.05g、1.25mmol)を2-メチルテトラヒドロフラン(8.00mL)と水(2.00mL)に溶解させ、それぞれリン酸カリウム(796.34mg、3.75mmol)、トリス(ジベンジリデンアセトン)ジパラジウム(114.51mg、125.05μmol)及び2-ビシクロヘキシルホスフィノ-2’,4’,6’-トリイソプロピルビフェニル(119mg、250μmol)を加え、反応液を80℃で一晩反応させた。反応液を室温まで冷却し、水(30mL)を入れた後、ろ過した。ろ液を酢酸エチル(10mL×3)で抽出し、有機相を合わせ、無水硫酸ナトリウムで乾燥し、ろ過し、減圧濃縮し、得られた粗生成物をシリカゲルフラッシュカラムクロマトグラフィー(石油エーテル:酢酸エチル=20:1~3:1)で精製し、化合物1-4(600mg、収率61%)を得た。MS(ESI)m/z:773.4(M+H+).
ステップ4:化合物1-5の合成
室温にて、化合物1-4(600.00mg、844.11μmol)をジクロロメタン(6.00mL)に溶解させ、トリフルオロ酢酸(962.45mg、8.44mmol)とトリエチルシラン(981.53mg、8.44mmol)を加え、反応液を室温で4時間反応させた。反応液を減圧濃縮し、得られた粗生成物をシリカゲルフラッシュカラムクロマトグラフィー(石油エーテル:酢酸エチル=10:1~2:1)で精製し、化合物1-5(350.00mg、収率87.6%)を得た。MS(ESI)m/z:469.2(M+H+).
ステップ5:化合物1の合成
室温にて、化合物1-5(160.00mg、341.52μmol)をジオキサン(3.00mL)と水(500.00μL)に溶解させ、水酸化ナトリウム(136.61mg、3.42mmol)を入れた。反応液を80℃で1時間反応させた。反応液を減圧濃縮した後、1M HClを入れてpH=5まで調整し、固体を析出しろ過し、ケーキを水(10mL)で洗浄し、乾燥し、化合物1(55.4mg、収率36.5%)を得た。1H NMR(400MHz,d4-MeOH)δ8.49-8.58(m,2H),4.92(br s,1H),2.78(br d,J=6.78Hz,1H),2.22-2.31(m,1H),2.11(br s,1H),1.80-2.02(m,4H),1.61-1.77(m,3H),1.44-1.59(m,2H),1.25-1.34(m,3H),1.03-1.11(m,2H)。MSm/z:441.1[M+1]+.
100mgの化合物1をバイアル瓶に入れ、0.8mLのエタノールを入れ、懸濁液にした。上記懸濁液試料をサーモミキサー(40℃)に置き試験(遮光)を行った。懸濁液試料を40℃で60時間振とうした後遠心をかけ、その後、残存試料を真空乾燥箱(40℃)に置き一晩乾燥し、A結晶型を得た。得られたA結晶型のXRPDスペクトルは図1に、DSCスペクトルは図2に、TGAスペクトルは図3に示す通りである。
100mgの化合物1をバイアル瓶に入れ、1.2mLの酢酸エチルを入れ、懸濁液にした。上記懸濁液試料をサーモミキサー(40℃)に置き試験(遮光)を行った。懸濁液試料を40℃で60時間振とうした後遠心をかけ、その後、残存試料を真空乾燥箱(40℃)に置き一晩乾燥し、実施例2とほぼ同様なA結晶型を得た。
66gの化合物1を600mLのエタノールと水の混合溶液(エタノール:水=1:1)に入れ、懸濁液にした。撹拌器に置き、40℃で48時間撹拌した後ろ過し、ケーキを乾燥し、B結晶型を得た。得られたB結晶型のXRPDスペクトルは図4に、DSCスペクトルは図5に、TGAスペクトルは図6に示す通りである。
66gの化合物1を600mLのエタノールと水の混合溶液(エタノール:水=3:1)に入れ、懸濁液にした。撹拌器に置き、40℃で48時間撹拌した後ろ過し、ケーキを乾燥し、実施例4とほぼ同様なB結晶型を得た。
5gの化合物1を250mLのナスフラスコに入れ、THF(100mL)を加え、塩酸(0.98mL、9mLのTHFに溶解させた)を加え、30℃で12時間撹拌し、固体をろ過し、ケーキを40℃で真空乾燥し、C結晶型(4.29g)を得た。得られたC結晶型のXRPDスペクトルは図7に、DSCスペクトルは図8に、TGAスペクトルは図9に示す通りである。
C結晶型(0.201g)をアセトニトリル(3mL)に溶解させパルピングし、30℃で12時間撹拌し、固体をろ過し、ケーキを40℃で真空乾燥し、D結晶型を得た。得られたD結晶型のXRPDスペクトルは図10に、DSCスペクトルは図11に、TGAスペクトルは図12に示す通りである。
5gの化合物1を250mLのナスフラスコに入れ、THF(100mL)を加え、p-トルエンスルホン酸一水和物(2.26g、10mLのTHFに溶解させた)を加え、30℃で12時間撹拌し、固体をろ過し、ケーキを40℃で真空乾燥し、固体(0.425g)を得た。この固体(0.101g)をアセトン(2mL)に入れ12hパルピングし、E結晶型を得た。得られたE結晶型のXRPDスペクトルは図13に、DSCスペクトルは図14に、TGAスペクトルは図15に示す通りである。
5gの化合物1を250mLのナスフラスコに入れ、THF(100mL)を加え、NaOH水溶液(0.477g、1mLの水に溶解させた)を加え、30℃で12時間撹拌し、固体をろ過し、ケーキを40℃で真空乾燥し、F結晶型を得た。得られたF結晶型のXRPDスペクトルは図16に、DSCスペクトルは図17に、TGAスペクトルは図18に示す通りである。
実施例9で得られたF結晶型202mgを取り、EtOH:H2O=3:1(4mL)で加え、30℃で12時間撹拌し、固体をろ過し、ケーキを40℃で真空乾燥し、F結晶型を得た。得られたF結晶型は実施例9とほぼ同様なものであった。
F結晶型(0.206g)をアセトニトリル(3mL)に溶解させパルピングし、30℃で12時間撹拌し、固体をろ過し、ケーキを40℃で真空乾燥し、G結晶型を得た。得られたG結晶型のXRPDスペクトルは図19に、DSCスペクトルは図20に、TGAスペクトルは図21に示す通りである。
約2gの化合物1を秤量し100mLのナスフラスコに入れ、THF(35mL)を加え、KOH水溶液(0.255g、0.5mLと5mLのTHFに溶解させた)を加え、30℃で12時間撹拌し、固体をろ過し、ケーキを40℃で真空乾燥し、H結晶型を得た。得られたH結晶型のXRPDスペクトルは図22に、DSCスペクトルは図23に、TGAスペクトルは図24に示す通りである。
H結晶型(0.201g)をアセトニトリル(3mL)に溶解させパルピングし、25℃で12時間撹拌し、固体をろ過し、ケーキを40℃で真空乾燥し、I結晶型を得た。得られたI結晶型のXRPDスペクトルは図25に、DSCスペクトルは図26に、TGAスペクトルは図27に示す通りである。
H結晶型(0.202g)をアセトン(3mL)に溶解させパルピングし、25℃で12時間撹拌し、固体をろ過し、ケーキを40℃で真空乾燥し、J結晶型を得た。得られたJ結晶型のXRPDスペクトルは図28に、DSCスペクトルは図29に、TGAスペクトルは図30に示す通りである。
H結晶型(0.201g)をエタノールと水の混合溶剤(エタノール:水=3:1)(4mL)に溶解させパルピングし、25℃で12時間撹拌し、固体をろ過し、ケーキを40℃で真空乾燥し、K結晶型を得た。得られたK結晶型のXRPDスペクトルは図31に、DSCスペクトルは図32に、TGAスペクトルは図33に示す通りである。
2gの化合物1を100mLのナスフラスコに入れ、THF(35mL)を加え、水酸化カルシウム水溶液(0.168g、0.5mLと5mLのTHFに溶解させた)を加え、25℃で12時間撹拌し、固体をろ過し、ケーキを40℃で真空乾燥し、固体(1.440g)を得た。この固体(0.204g)をエタノールと水の混合溶剤(エタノール:水=3:1)(4mL)に溶解させパルピングし、25℃で12時間撹拌し、固体をろ過し、ケーキを40℃で真空乾燥し、L結晶型を得た。得られたL結晶型のXRPDスペクトルは図34に、DSCスペクトルは図35に、TGAスペクトルは図36に示す通りである。
A結晶型の試料をガラス試料瓶の底部に置き、薄く伸ばした。高温、高湿及び加速条件で置かれる試料をアルミホイルで瓶口を密封し、アルミホイルに刺して小さな穴を開けて、試料が雰囲気と十分に接触できることを確保した。光条件で置かれる試料は室温で開口して立てられ、試料が光源に曝し、十分なエネルギーを照射した後、サンプリングして検出した。各時点でサンプリングして解析し、検出結果と0日目の初期検出結果とを比べ、調査項目は、外観、含有量及び不純物を含む。試験の結果を以下の表に示す。
以上の試験の結果から分かるように、前記実施例で製造されたA結晶型が高温、高湿及び加速実験において、総不純物の含有量の変化が相対的に小さいことを示し、XRPD検出法によりA結晶型に変化がなく、相対的に高い安定性を有することが発見された。
B結晶型の試料をガラス試料瓶の底部に置き、薄く伸ばした。高温、高湿及び加速条件で置かれる試料をアルミホイルで瓶口を密封し、アルミホイルに刺して小さな穴を開けて、試料が雰囲気と十分に接触できることを確保した。光条件で置かれる試料は室温で開口して立てられ、試料が光源に曝し、十分なエネルギーを照射した後、サンプリングして検出した。各時点でサンプリングして解析し、検出結果と0日目の初期検出結果とを比べ、調査項目は、外観、含有量及び不純物を含む。試験の結果を以下の表に示す。
以上の試験の結果から分かるように、前記実施例で製造されたB結晶型が高温、高湿において総不純物の含有量に殆ど変化がなく、加速実験において総不純物の含有量の変化が小さいことを示し、XRPD検出法によりB結晶型に変化がなく、高い安定性を有することが発見された。
実験例1と同じ方法でD結晶型の安定性を調べた。各時点でサンプリングして解析し、検出結果と0日目の初期検出結果とを比べ、調査項目は、外観、不純物及び結晶型を含む。試験の結果を以下の表に示す。
以上の試験の結果から分かるように、前記実施例で製造されたD結晶型が高温、高湿、光照及び加速実験において総不純物の含有量に殆ど変化がないことを示し、XRPD検出法によりD結晶型に変化がなく、相対的に高い安定性を有することが発見された。
実験例1と同じ方法でF結晶型の安定性を調べた。各時点でサンプリングして解析し、検出結果と0日目の初期検出結果とを比べ、調査項目は、外観、不純物及び結晶型を含む。試験の結果を以下の表に示す。
以上の試験の結果から分かるように、前記実施例で製造されたF結晶型が高温、高湿及び加速実験において総不純物の含有量に殆ど変化がないことを示し、XRPD検出法によりF結晶型に変化がなく、相対的に高い安定性を有することが発見された。
実験例1と同じ方法でG結晶型の安定性を調べた。各時点でサンプリングして解析し、検出結果と0日目の初期検出結果とを比べ、調査項目は、外観、不純物及び結晶型を含む。試験の結果を以下の表に示す。
以上の試験の結果から分かるように、前記実施例で製造されたG結晶型が高湿及び加速実験において総不純物の含有量に殆ど変化がなく、高温条件実験において総不純物の含有量の変化が相対的に小さいことを示し、XRPD検出法によりG結晶型に変化がないことが発見され、結晶型が相対的に高い安定性を有することが分かった。
実験例1と同じ方法でH結晶型の安定性を調べた。各時点でサンプリングして解析し、検出結果と0日目の初期検出結果とを比べ、調査項目は、外観、不純物及び結晶型を含む。試験の結果を以下の表に示す。
以上の試験の結果から分かるように、前記実施例で製造されたH結晶型が高温、高湿、光照及び加速実験において総不純物の含有量に殆ど変化がないことを示し、XRPD検出法によりH結晶型に変化がないことが発見され、結晶型が相対的に高い安定性を有することが分かった。
生物部分
化合物の半有効濃度(EC50)値を測定することにより、化合物のインフルエンザウイルス(Influenza virus、IFV)に対する抗ウイルス活性を評価した。細胞変性効果実験は、化合物のウイルス感染細胞への防御効果を測定し化合物の抗ウイルス活性を反映することに広く用いられる。
MDCK細胞(ATCC、製品番号CCL-34)を2,000から3,000cells/wellの密度で384ウェル細胞培養用プレート(黒)に接種し、その後、37℃、5%CO2インキュベータに置き一晩培養した。化合物をEcho555非接触ナノリッター分注システムで希釈し細胞孔に入れた(3倍希釈、8つの濃度で測定)。インフルエンザウイルスA/Weiss/43(H1N1)株(ATCC、製品番号VR-96)をその後1ウェルあたり1/2で90%組織培養感染量(TCID90)で細胞培養孔に入れ、培養基におけるDMSOの終濃度は0.5%であった。ウイルス対照孔(DMSOとウイルスを加え、化合物を加えない)と、細胞対照孔(DMSOを加え、化合物とウイルスを加えない)を設けた。細胞培養用プレートを37℃、5%CO2インキュベータに置き5日間培養した。5日間培養後、セルカウンティングキットCCK8で細胞活性を検出した。生データが化合物抗ウイルス活性の計算に用いられる。
化合物の抗ウイルス活性は、化合物のウイルスによる細胞ウイルス効果への阻害率(%)で示される。計算式は下記の通りである。
GraphPad Prismソフトウェアで化合物の阻害率を非線形フィット解析し、化合物のEC50値を得た。実験の結果を表15に示す。
インフルエンザA型ウイルスH1N1マウス感染モデルにおける化合物の薬効の評価
マウスに点鼻によりインフルエンザA型ウイルスH1N1(Virapur社、製品番号:F1003A)を感染させ、感染36時間後化合物で処置し始め、1日に2回、7日間連続経口投与した。マウスの体重変化及び生存率を観察することにより、化合物の前記モデルにおける抗インフルエンザA型ウイルスH1N1効果を評価した。
実験ではSPFレベルのBALB/cマウス(6~7週齢、雌)(LINGCHANG BIOTECH)を選択した。マウスがBSL-2動物室に着いた後、少なくとも3日間馴化させた後、実験を始めた。感染当日を実験0日目とした。マウスにペントバルビタールナトリウムを腹腔内投与し麻酔を行った(75mg/kg、10ml/kg)。動物が深麻酔状態となった後、点鼻によりH1N1 A/WSN/33ウイルスを感染させ、感染体積が50μlであった。1日目から7日目まで、1日に2回、毎日被検化合物10mg/kg(投与体積10ml/kg)を経口投与した。初めての投与時間は感染後36時間であった。毎日マウスの状態を観察し、マウスの体重及び生存率を記録した。14日目に、全ての生きている動物を安楽死させた。
被検動物の生存率及び体重減少率は表16の通りである。
Claims (47)
- 前記A結晶型の示差走査熱量(DSC)曲線が185.46℃±3℃において吸熱ピークの開始点を有する、請求項1又は2に記載の結晶。
- 前記A結晶型の熱重量分析(TGA)曲線が120.00℃±3℃の際に重量が2.479%減少する、請求項1~3のいずれか一項に記載の結晶。
- 前記B結晶型の示差走査熱量(DSC)曲線が101.04℃±3℃において吸熱ピークを有し、188.30℃±3℃において吸熱ピークの開始点を有する、請求項5又は6に記載の結晶。
- 前記B結晶型の熱重量分析(TGA)曲線が154.18℃±3℃の際に重量が4.087%の減少し、196.80℃±3℃の際に重量が4.610%減少する、請求項5~7のいずれか一項に記載の結晶。
- 前記C結晶型の示差走査熱量(DSC)曲線が193.754℃±3℃において吸熱ピークを有し、235.53℃±3℃において吸熱ピークを有する、請求項9又は10に記載の結晶。
- 前記C結晶型の熱重量分析(TGA)曲線が117.79℃±3℃の際に重量が5.000%の減少し、222.15℃±3℃の際に重量が12.377%減少する、請求項9~11のいずれか一項に記載の結晶。
- 前記D結晶型の示差走査熱量(DSC)曲線が193.68℃±3℃において吸熱ピークを有する、請求項13又は14に記載の結晶。
- 前記D結晶型の熱重量分析(TGA)曲線が78.99℃±3℃の際に重量が0.231%減少し、198.74℃±3℃の際に重量が5.826%減少する、請求項13~15のいずれか一項に記載の結晶。
- 前記E結晶型の示差走査熱量(DSC)曲線が258.27℃±3℃において吸熱ピークの開始点を有する、請求項17又は18に記載の結晶。
- 前記E結晶型の熱重量分析(TGA)曲線が121.35℃±3℃の際に重量が0.905%減少する、請求項17~19のいずれか一項に記載の結晶。
- 前記F結晶型の示差走査熱量(DSC)曲線が78.73℃±3℃において吸熱ピークを有し、222.37℃±3℃において吸熱ピークの開始点を有し、245.01℃±3℃において発熱ピークを有する、請求項21又は22に記載の結晶。
- 前記F結晶型の熱重量分析(TGA)曲線が39.57℃±3℃の際に重量が1.192%減少し、81.27℃±3℃の際に重量が3.683%減少し、199.63℃±3℃の際に重量が6.023%減少する、請求項21~23のいずれか一項に記載の結晶。
- 前記G結晶型の示差走査熱量(DSC)曲線が70.13℃±3℃において吸熱ピークを有する、請求項25又は26に記載の結晶。
- 前記H結晶型の示差走査熱量(DSC)曲線が141.17℃±3℃において吸熱ピークを有し、243.06℃±3℃において吸熱ピークを有し、257.74℃±3℃において発熱ピークを有する、請求項28又は29に記載の結晶。
- 前記H結晶型の熱重量分析(TGA)曲線が73.74±3℃において1.328%の重量減少を有し、207.43℃±3℃において4.986%の重量減少を有し、249.40℃±3℃において5.627%の重量減少を有する、請求項28~30のいずれか一項に記載の結晶。
- 前記K結晶型の熱重量分析(TGA)曲線が83.69℃±3℃において3.442%の重量減少を有し、183.76℃±3℃において4.947%の重量減少を有する、請求項32又は33に記載の結晶。
- 前記I結晶型の示差走査熱量(DSC)曲線が86.86℃±3℃において吸熱ピークを有する、請求項35又は36に記載の結晶。
- 前記I結晶型の熱重量分析(TGA)曲線が46.81℃±3℃において1.298%の重量減少を有し、89.20℃±3℃において3.607%の重量減少を有し、169.65℃±3℃において4.641%の重量減少を有する、請求項35~37のいずれか一項に記載の結晶。
- 前記J結晶型の示差走査熱量(DSC)曲線が61.29℃±3℃において吸熱ピークを有し、86.40℃±3℃において吸熱ピークを有し、151.50℃±3℃において吸熱ピークを有する、請求項39又は40に記載の結晶。
- 前記J結晶型の熱重量分析(TGA)曲線が220.12℃±3℃において3.412%の重量減少を有する、請求項39~41のいずれか一項に記載の結晶。
- 前記L結晶型の示差走査熱量(DSC)曲線が168.08℃±3℃において吸熱ピークを有し、204.17℃±3℃において吸熱ピークを有する、請求項43又は44に記載の結晶。
- 前記L結晶型の熱重量分析(TGA)曲線が80.19℃±3℃において0.830%の重量減少を有し、149.87℃±3℃において3.058%の重量減少を有し、201.25℃±3℃において4.648%の重量減少を有する、請求項43~45のいずれか一項に記載の結晶。
- 請求項1~46のいずれか一項に記載の結晶を含む抗インフルエンザウイルス薬。
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