JP7003283B2 - 末梢血から間葉系幹細胞集団を製造する方法及びその使用 - Google Patents
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Description
ヒト被験体から末梢血を得るステップ(a)と、
ステップ(a)の末梢血にグリセリンを添加するステップ(b)と、
ステップ(b)の末梢血中の他の体性幹細胞からhMSCを分離するステップ(c)と、
ステップ(c)の分離されたhMSCをグリセリン含有培地中で培養することにより、未分化hMSC集団を製造するステップ(d)と、を含み、
上記培地は、顆粒球コロニー刺激因子(G-CSF)、顆粒球マクロファージコロニー刺激因子(GM-CSF)及びこれらの組み合わせからなる群より選択されるいずれかの動員剤を含まない。
培養したhMSCを、ステップ(d)の培養プレートよりも少なくとも16倍大きい表面積を有する別の培養プレートに移し、引き続きグリセリン含有培地中で少なくとも4日間培養することにより、未分化hMSC集団を製造するステップ(e)をさらに含む。
便宜上、本明細書、実施例及び添付する特許請求の範囲で使用される特定の用語がここに集められる。別途規定されない限り、本明細書で使用される全ての技術用語及び科学用語は、本発明が属する技術分野の当業者によって一般的に理解されるのと同じ意味を有する。
間葉系幹細胞(MSC)は、通常、骨髄から得られる非造血幹細胞である。MSCは、非常に低レベルで末梢血に存在し、末梢血からの採取では、インビトロで増殖しても治療用途のために十分な量の細胞が得られない場合が多い。本発明者らは、予期せぬことに、末梢血に由来するMSCを単離及び増殖する方法を発見することにより、単独で又は他の細胞と組み合わせて再生療法における自家療法(例えば、創傷治癒、骨修復、及び他の整形外科の適応症)に適用可能な実質的に純粋なhMSC集団の製造を可能にする。
ヒト被験体から末梢血を得るステップ(a)と、
グリセリンをステップ(a)の末梢血に添加するステップ(b)と、
ステップ(b)の末梢血における他の体性幹細胞からhMSCを分離するステップ(c)と、
ステップ(c)の分離されたhMSCをグリセリン含有培地中で培養し、hMSC集団を製造するステップ(d)と、を含み、
上記培養は、顆粒球コロニー刺激因子(G-CSF)、顆粒球マクロファージコロニー刺激因子(GM-CSF)、及びこれらの組み合わせからなる群より選択されるいずれかの薬剤を含まない。
本開示の他の態様は、上記のいずれかの方法により製造された実質的に純粋な未分化hMSC集団を含むクローン細胞株に関する。
本開示のhMSCは、単独で、培地と共に、又は医薬的に許容されるキャリア及び他の添加剤と組み合わせて提供され得る。添加剤(例えば、免疫抑制剤、抗生物質、成長因子など)は、細胞生着及び/又は臓器機能を促進することができる。したがって、本開示のhMSCは、医薬組成物で被験体に投与され得る。医薬組成物において、本開示のhMSCは、医薬的キャリア又は希釈剤(例えば、滅菌生理食塩水及び水性緩衝溶液)と混合される。
上述した本発明方法により製造された未分化hMSC集団又はその分化した子孫は、自家移植によって有益な効果が達成される無数の疾患及び/又は障害を治療及び/又は予防するために自家移植に使用することができる。
本発明方法で製造されたhMSC集団又はその分化した子孫は、組織再生の促進にも適用できる。hMSCの移植は、自己免疫疾患、炎症性疾患、急性及び慢性の虚血性状態の治療、組織工学、新しい組織の再生、並びに罹患臓器又は損傷臓器の自然治癒に有用である。
表面抗原分析
0.25%トリプシン-EDTAを用いて細胞を培養プレートから分離した。細胞を1%BSAを含むPBS溶液で洗浄し、フルオレセインイソチオシアニド(FITC)又はフィコエリトリン(PE)結合抗体で4℃で30分間染色した。MSCマーカーは、抗CD29(インテグリンβ1鎖)、抗CD105(SH2、エンドグリンCD73(+))であり、造血幹細胞マーカーは、抗CD34(陰性対照)であり、白血球マーカーは、抗CD45(白血球共通抗原)である。次に細胞をPBSで洗浄し、FACS Caliburフローサイトメーター(FACSCanto,BD Biosciences,Becton,Dickinson and Company,San Jose,CA)により分析した。励起用光源として488nmのアルゴンレーザービームを使用して、細胞を最大1,000細胞/秒の速度で通過させた。FITC及びPE結合アイソタイプコントロール抗体で染色した細胞を使用してバックグラウンド蛍光を計算した。
本研究には、書面でインフォームドコンセントに同意した15人のヒト被験体が含まれる。これらの被験体は、年齢に応じて各群5人で50-60歳群、70-80歳群、及び20-30群に分けられた。各被験者から血液(10mL)を採取し、ヘパリンを含むチューブに収集し、次に、グリセリン0.5mg(100mg/mL)を添加し、グリセリンを含む血液を37℃のインキュベーターに6時間保存した。次に、血液を含むグリセリンを3,500rpmの速度で18分間遠心分離した。遠心分離後、チューブの中間層の細胞を抽出し、PBS溶液(8mL)に再懸濁した。細胞懸濁液を18×gの速度で再度13分間遠心分離し、上清を捨て、チューブの中間層の細胞を抽出し、10mLのthermo-life培地(ケラチノサイト-SFM 500mL、ウシ下垂体抽出物2.5mL、13%の新鮮なヒト冷凍血漿(FFP)、30%のウシ胎児血清、15mLのグリセリン(100mg/mL)、及び上皮成長因子(EGF,2.5μg)を含む)を含む培養プレート(表面積:約10cm2)に接種した。次に、細胞接種培養プレートをインキュベーターに置き、37℃、70%RH(相対湿度)、5%CO2の条件で16~18時間インキュベートした。その後、細胞を収集し、上記thermo-life培地10mLを含む別の培養プレート(表面積:175cm2)に再接種した。培地を3日ごとに交換し、培地の交換を少なくとも1回繰り返した。間葉系幹細胞は5日目に現れ始め、最終的に7日目頃にコンフルエントに達した。得られたhMSCを単離し、使用するまで凍結温度で保存した。
2.1 細胞表面抗原分析
トリプシン/EDTAを用いて実施例1の接着細胞を単離し、「材料及び方法」に記載の順に従ってフローサイトメータにより表面抗原分析を行なった、結果を図1に示す。
この実施例において、実施例1のhMSCが依然として分化能力を有することを証明するために、hMSCのその後の分化を誘発する薬剤をそれぞれ含む培地でhMSCを培養した。実施例1のhMSCから分化した軟骨細胞、軟骨及び脂肪細胞は、標準的な手順に従って、それぞれアルカリホスファターゼ(図2A)、アルシアンブルー(図2B)、及びオイルレッドO(図2C)で染色することにより確認された。
Claims (7)
- 末梢血から未分化ヒト間葉系幹細胞(hMSC)集団を提供する方法であって、
前記末梢血にグリセリンを添加するステップ(a)と、
ステップ(a)の末梢血中の他の体性幹細胞からhMSCを分離するステップ(b)と、
ステップ(b)の分離されたhMSCをグリセリン含有培地中で培養することにより、hMSC集団を製造するステップ(c)と、を含み、
上記培地は、顆粒球コロニー刺激因子(G-CSF)、顆粒球マクロファージコロニー刺激因子(GM-CSF)及びこれらの組み合わせからなる群より選択されるいずれかの動員剤を含まない、方法。 - ステップ(b)において、前記末梢血は、溶血剤を含まないチューブに収集される、請求項1に記載の方法。
- ステップ(a)において、前記グリセリンは、約1-10mg/mLの濃度で前記末梢血に存在する、請求項1に記載の方法。
- ステップ(c)において、前記培地は、少なくとも20%(v/v)の血清を含み、前記グリセリンは、約0.1-1.0mg/mLの濃度で前記培地に存在し、前記hMSCは、37℃でグリセリン含有培地を含む培養プレート中で少なくとも12時間培養される、請求項1に記載の方法。
- 培養したhMSCを、ステップ(c)の培養プレートよりも少なくとも20倍大きい表面積を有する別の培養プレートに移し、引き続きグリセリン含有培地中で培養し、未分化hMSC集団を製造するステップ(d)をさらに含む、請求項4に記載の方法。
- ステップ(d)において、hMSCを少なくとも4日培養することにより未分化hMSC集団を製造する、請求項5に記載の方法。
- 前記のように製造された未分化hMSC集団は、細胞表面マーカーCD34-、CD45-、及びHLA-DRに対して陰性であり、細胞表面マーカーCD73+、CD90+、及びCD105+に対して陽性である、請求項4から6の何れか1項に記載の方法。
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