JP6798697B2 - Hla遺伝子のpcrプライマーセット及びそれを用いたシークエンス法 - Google Patents
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Description
A.出来るだけ多種類のHLAアレルを包括できるようなプライマーの配列を選択する。
B.均一な増幅のため各増幅対象領域に対し、単一のプライマーを用意する。領域が重なる場合もオーバーラップ部は極力短くする。また目的外の遺伝子を増幅してはならない。
従って、上記2課題を解決する(即ち、上記A,Bの条件を充足する)プライマーセットの開発が望まれていた。Aの条件を上げるにはプライマーの数を増やすか、相同性の高い配列を選択する必要があるが、この場合にはBの条件達成が困難となる。本発明者らは、以下の1〜4のステップを行うことで、条件Aと条件Bの2条件を充足するプライマーセットを開発できるのではないかとの着想を得た。
1.768人の日本人検体における6遺伝子の次世代シークエンスによる配列解析データを、他の遺伝子由来のリードを排除しつつ、アセンブリする。
2.アセンブリした結果を遺伝子毎の全検体においてアライメントする。
3.2の結果において全検体で共通した配列を持つ領域を検出し、プライマー候補とする。
4.3の候補のなかで配列が他のHLA遺伝子と共通せずかつプライマーに適した配列を選定する。
本発明者らは、上記着想に基づいてさらに研究を重ねた結果、本発明を完成するに至った。
[1]配列番号1に示される塩基配列からなるプライマー、及び配列番号2に示される塩基配列からなるプライマーを含む、HLA-A遺伝子増幅用プライマーセット。
[2]配列番号3に示される塩基配列からなるプライマー、及び配列番号4に示される塩基配列からなるプライマーを含む、HLA-B遺伝子増幅用プライマーセット。
[3]配列番号5に示される塩基配列からなるプライマー、及び配列番号6に示される塩基配列からなるプライマーを含む、HLA-C遺伝子増幅用プライマーセット。
[4]配列番号7に示される塩基配列からなるプライマー、配列番号8に示される塩基配列からなるプライマー、配列番号9に示される塩基配列からなるプライマー、及び配列番号10に示される塩基配列からなるプライマーを含む、HLA-DRB1遺伝子増幅用プライマーセット。
[5]配列番号11に示される塩基配列からなるプライマー、及び配列番号12に示される塩基配列からなるプライマーを含む、HLA-DQB1遺伝子増幅用プライマーセット。
[6]配列番号13に示される塩基配列からなるプライマー、配列番号14に示される塩基配列からなるプライマー、配列番号15に示される塩基配列からなるプライマー、及び配列番号16に示される塩基配列からなるプライマーを含む、HLA-DPB1遺伝子増幅用プライマーセット。
[7][1]に記載のプライマーセット、[2]に記載のプライマーセット、[3]に記載のプライマーセット、[4]に記載のプライマーセット、[5]に記載のプライマーセット及び[6]に記載のプライマーセットからなる群から2つ以上選択される、HLA遺伝子増幅用プライマーセット。
[8][1]〜[6]に記載の全てのプライマーセットを含む、HLA遺伝子増幅用プライマーセット。
[9][1]〜[8]のいずれかに記載のプライマーセットを用いて行う、HLA遺伝子のシークエンス方法。
[10][9]に記載の方法により得られた塩基配列情報を用いて行う、HLA遺伝子のタイピング方法。
[11][1]〜[8]のいずれかに記載のプライマーセットを含む、HLA遺伝子の増幅用キット。
かかる変異体は、プライマーとしての機能が維持される範囲で、もととなるオリゴヌクレオチドから1個又は複数個のヌクレオチドが置換、欠失、挿入又は付加されている。
ハイブリダイゼーション時のストリンジェンシーは、温度、塩濃度、プライマーの鎖長、プライマーのヌクレオチド配列のGC含量及びハイブリダイゼーション緩衝液中のカオトロピック剤の濃度の関数であることが知られている。ストリンジェントな条件としては、例えば、Sambrook, J. et al. (1998) Molecular Cloning: A Laboratory Manual (2nd ed.), Cold Spring Harbor Laboratory Press, New Yorkに記載された条件などを用いることができる。ストリンジェントな温度条件は、約30℃以上、より好ましくは約37℃以上、最も好ましくは約42℃以上である。その他の条件としては、ハイブリダイゼーション時間、洗浄剤(例えば、SDS)の濃度、及びキャリアDNAの存否等であり、これらの条件を組み合わせることによって、様々なストリンジェンシーを設定することができる。
熱変性ステップ(例:92〜98℃)
アニーリングステップ(例:55〜72℃)
伸長ステップ(例:65〜80℃)
2.得られた断片配列に対し、キット(例:Nextera XT v2 Index Kit Set A、B、C、D(Illumina社))を用いて、サンプルそれぞれに異なるIndex配列を両側に付加し、PCRを行う。
3.増幅産物を精製する。
4.各サンプルからの増幅産物を用いて、ライブラリサイズを確認する。
5.サンプル間の濃度調整を行う。
6.サンプルの増幅産物をプールし、プールした増幅産物に対し、定量PCRを行う。
7.MiSeqを用いて、プールした増幅産物のシークエンスを行う。
6種のClassical HLA遺伝子(HLA-A, -B, -C, -DRB1, -DQB1, -DPB1)に対し、マルチプレックスPCRを行うためのプライマー設計手順について記述する。なお、次世代シークエンサーから得られたリードのマッピングには、全てbowtie2 (ver. 4.1.2)を用いた。
1.従来法によるHLA遺伝子のシークエンス
既存のプライマーセット[Hosomichi, K. et al. (2013) Phase-defined complete sequencing of the HLA genes by next-generation sequencing. BMC Genomics, 14:355.]を用いて各3遺伝子の2セットでのマルチプレックスPCRを768検体(未公開検体)に対して行った(表2参照)。ただしDRB1に関しては、配列を修正したプライマーを追加した。実験条件に関しては表3を参照のこと。得られた増幅産物をMiSeqによりシークエンスした。
IPD-IMGT/HLAデータベースから得られる全てのHLAアレルのエクソン・イントロンの配列情報に対し、MiSeqのシークエンス結果をbowtie2でマッピングした。マップ結果を基に、リードの各遺伝子における重みを計算した。重みの計算方法について以下簡潔に説明する。
マッピング結果を読み込み、各エクソンに一致したリードの対応関係を調べる。リードの50%以上がHLA辞書に含まれるいずれかのエクソンの塩基配列と重複しかつ該重複範囲において両塩基配列が完全に一致するもしくはHLA辞書に含まれるいずれかのイントロンの塩基配列と重複しかつ該重複範囲において両塩基配列が2塩基ミスマッチ以内で一致するかを調べる。マッチしたリードに対して各エクソン・イントロンでマッチした配列に対応するアレル数に応じて遺伝子毎に重み付けをする。各遺伝子に対する該リードの重みは以下の式
遺伝子Gにおいて正(>0)の重みが得られたリード群を、IPD-IMGT/HLAにおいてイントロンを含めた完全長配列が登録されている遺伝子Gの全てのアレル(以下完全アレル)にマップした。各完全アレルに対し、5塩基のミスマッチ以内でマップされたリードを集め、マップされた各位置で各塩基のカバレッジを計算した。計算したカバレッジが各位置で最大となる塩基を選ぶことで得られる配列(以下「コンセンサス配列」と略記する。)を作成した。次に、ある位置でコンセンサス配列とは異なる塩基のカバレッジがコンセンサス配列に対応する塩基のカバレッジの10%以上ある場合、その位置を相異位置とし、その塩基配列を相異配列とした。ただし、10%以上のカバレッジをもつ塩基が複数存在する場合は、その中で最大のカバレッジを持つものを選択した。コンセンサスおよび相異をIDとする二つのクラスを用意し、相異位置を含む箇所にマップされたリードがコンセンサス配列・相異配列のどちらを多く含むか比較し、多い側のクラスにリードを所属させた。ただし同数若しくは相異位置を一つも含んでいないリードは両クラスに属するとした。
コンセンサスのクラスに属するリードの集合だけでカバレッジを再計算し、相異位置のコンセンサス配列のカバレッジが相異配列のカバレッジを下回る場合は相異位置でのコンセンサス配列・相異配列に対応する塩基を入れ替えた。この後、相異側のクラスに属するリードの集合だけでカバレッジを計算し、相異位置のコンセンサス配列のカバレッジが相異配列のカバレッジを上回る場合は、この相異位置を除去した。反転および除去された情報をもとに、再び全リードに対してステップ3のリードのクラス分けを行い、相異位置でのコンセンサス配列・相異配列の反転および相異位置の除去を行った。この作業を反転および相異位置の除去が発生しなくなるまで繰り返した。
全ての完全アレルにおいてステップ3、4を行い、クラス分けされたリードの集合を得た。任意の二つの完全アレルをそれぞれA、BとしC(A)、C(B)をそれぞれA、Bのコンセンサスのクラスに属するリードの集合、D(A)、D(B)をそれぞれA、Bの相異のクラスに属するリードの集合とした。C(A)∪C(B)、C(A)∪D(B)、D(A)∪C(B)、D(A)∪D(B)のそれぞれの和集合において、式2(数2)の重みをかけた上でのリード数合計をそれぞれ計算した。完全アレルペアの全ての組み合わせにおける全ての和集合でリード数を比較して、最もリード数が多くなるアレルペアとその和集合の種類を選択した。ペアの探査にはAとBが同じ完全アレルとする組み合わせを含めた。
ステップ5で選ばれたペアが異なる完全アレルであった場合、二つの完全アレルが持つ相異位置の互いの対応関係が不明なため、マップされたリードの関係を用いて相異位置を対応させた。まず完全アレルの各相異位置において、この位置を含んでマップされたリードの集合を検出した。このリードの集合には、コンセンサス・相異の両クラスに属するものを含む。二つの完全アレル間の相異位置のリードの集合同士における全ての組み合わせで共通リード数を計算し、共通リード数が多い集合の組みの順番に、集合に対応する相異位置同士を完全アレル間における同じ相異位置として対応させた。片方の完全アレル側に対応する相異位置が存在しなかった場合は、その相異位置を除去した。
ステップ5で決定したアレルペアと対応するクラスおよびそれらの間で対応させた相異位置関係に対して、各リードをステップ3の方法によってどちらの完全アレル側に属するか判定した。判定結果で得られた各完全アレルのリードの集合からコンセンサス配列をそれぞれ作成した。
1)ステップ7で得られた二つのコンセンサス配列に対し、全リードを再マップした。2)各リードを二つのマップ結果のミスマッチ数を比較して少ない方に所属させた。同ミスマッチ数の場合は両方に属するとした。それぞれの所属したリードの集合を用いて再びコンセンサス配列を作成した。このときコンセンサスのカバレッジが5リード数に達しない位置は“N”とした。3)得られた二つの配列に対し、再びステップ1)、2)を行った。これを両配列にどちらにおいても更新がなくなるまで繰り返した。
ステップ8で最終的に得られた二つのコンセンサス配列におけるリードの集合を比較した。この時、片側のアレルにのみ属するリードの数が相手側にのみ属するリードの数に対し10倍以上あった場合、少ない側のアレルを消去し、残った側のコンセンサス配列によるホモアレルとして出力した。そうでない場合は、両アレルのコンセンサス配列を出力した。出力した配列をアセンブリ配列とする。
事前に京都大学医学研究科付属ゲノム医学センター(以下「ゲノム医学センター」と略記する。)で保管する768検体のDNAサンプルそれぞれにおいて、Iの方法を用いて6種類のHLA遺伝子のアセンブリ配列を作成した。
得られたアセンブリ配列から塩基配列数が以下の長さに達しないものを除去した。この際、“N”の部分は配列数から引いた。
HLA-A: 2,800bp
HLA-B: 2,800bp
HLA-C: 2,800bp
HLA-DRB1: 10,000bp
HLA-DQB1: 6,500bp
HLA-DPB1: 9,500bp
ただし、“N”が配列全体の5%以上含まれる場合は長さの如何を問わずそのアセンブリ配列を除去した。
ステップ1で残った各遺伝子のアセンブリ配列の集合に対しMUSCLE (ver 3.8.31) [Edgar, R.C. (2004) MUSCLE: multiple sequence alignment with high accuracy and high throughput. Nucleic Acids Res., 32:1792-1797.]を用いてマルチプルアラインメントを行った。
アラインメント結果から得られたコンセンサス配列のある区間が1つのアセンブリ配列によって20塩基以上の挿入が生じていた場合(=カバレッジが1である区間が20塩基以上続く)、その区間を除去しアライメント位置を詰めた。
ステップ3で得られたコンセンサス配列のカバレッジがアセンブリ配列数の95%以下になっている位置をマスクした。またコンセンサス配列上でエクソンに該当する位置を、類似する配列を検索するソフトウェアであるBLASTにより既知のHLA遺伝子の配列データから検索し、一致したエクソン区間をマスクした。
Primer3 [Untergasser, A. et al. (2012) Primer3--new capabilities and interfaces. Nucleic Acids Res., 40:e115.] を用いてプライマーペアの候補を決定した。プライマーは以下の基準を満たすものとした。
・ステップ4でマスクした領域を含まない。
・A,B,C,DQB1は一つのペアで全ての翻訳領域を包括する。
・DRB1, DPB1に対しては2ペア用意し、両ペアともエクソン2を含みかつ前後2ペアによって翻訳領域を包括する。
・各遺伝子のプライマーペアは、他のどのHLA遺伝子に対しても特異的である。また特異な位置はできる限り内側 (5’側のプライマーなら3’側の位置、3’側のプライマーなら5’側)に存在している。
PRIMER_OPT_SIZE=30
PRIMER_MIN_SIZE=20
PRIMER_MAX_SIZE=35
PRIMER_MIN_TM=40
PRIMER_MAX_TM=90
PRIMER_MIN_GC=10
PRIMER_MAX_GC=90
PRIMER_MAX_NS_ACCEPTED=1
P3_FILE_FLAG=1
PRIMER_MAX_SELF_END=3
PRIMER_PAIR_MAX_COMPL_END=3
PRIMER_MAX_HAIRPIN_TH=60
I.ロングPCR
1.計384検体の各DNAサンプルに対し、HLA-A, -B, -C, -DRB1, -DQB1, -DPB1 の6遺伝子を標的としたマルチプレックスロングPCRを行った。増幅は以下の2セットをそれぞれまとめて行った。
セット1: HLA-A,-C,-DPB1(FF,FR),-DRB1(FF,FR)
セット2: HLA-B,-DQB1,-DPB1(RF,RR),-DRB1(RF,RR)
プライマー配列と最終濃度は表3の通りである。またPCRに向けて以下のものを準備した。
・DNA 25 ng
・0.25 μL of Tks GflexTM DNA Polymerase
・6.25 μL 2 × GflexTM PCR Buffer
最終容量が12.5 μLになるように調製した後Cool StartTM法(TaKaRa社)を適用し、表5における温度条件、サイクル数でPCR反応を行った。PCR装置にはGeneAmpR PCR System 9700 (Thermo Fisher Scientific inc., Waltham, MA, USA) を用いた。
2.増幅産物をAgencourtR AMPureR XP Beads(Beckman Coulter, Brea, CA, USA)で精製した。
3.各サンプル1μLをアガロースゲルで泳動し、目的バンドの有無を確認した。想定されるバンドサイズは表3に記載した通りである。
4.二つのセットを等モル混合し、サンプル毎の増幅産物の最終濃度が0.2ng/μL(2.5μL)になるように調製した。
これより以下で特に記載のないプロトコルは、Illumina社のマニュアルに準拠した(Nextera XT DNA Library Prep Reference Guide (15031942 Rev. D))。
1.各サンプルの増幅産物の 0.5 ng を Nextera XT DNA Sample Preparation Kit (Illumina)適用してTagmentationを行った(300bp×2のペアエンドリード)。
2.得られた断片配列に対し、Nextera XT v2 Index Kit Set A、B、C、Dを用いて(各行、列で2.5 μL)384検体それぞれに異なるIndex配列を両側に付加し、PCRを行った。
3.AgencourtR AMPureR XP Beadsで増幅産物を精製した。
4.各サンプルから増幅産物を1 μL用いて、Agilent 2100 Bioanalyzer及びHigh Sensitivity DNA chip (Agilent Technology)によりライブラリサイズを確認した。
5.Kit中のLibrary Normalization Beadsによるサンプル間の濃度調整を行った。
6.384検体の増幅産物を等量プールした。
7.プールした増幅産物に対し、 KAPA Library Quantification Kit を用いて定量PCRを行った(詳細はKAPA Library Quantification Kit. IlluminaR platformsのTechnical Data Sheetを参照)。
8.MiSeq (Illumina) を用いて384検体、HLA6遺伝子のシークエンスを行った。
9.15GB前後のデータサイズ(25Mのペアエンドリード)の出力が得られているか確認した。
ゲノム医学センターで保管されている384検体を用いて、デザインしたHLA遺伝子用のプライマーセット及び上記の実験方法を用いて予備実験を行った。比較のため、既報のプライマーセット及び実験方法を用いた96検体によるシークエンスも同時に行った[Hosomichi, K. et al. (2013) Phase-defined complete sequencing of the HLA genes by next-generation sequencing. BMC Genomics, 14:355.]。なお、比較用の検体は、予備実験とは重複していない。これらの検体のMiSeqによるシークエンス結果に対し、IMGT/HLAデータベースの完全長配列が既知のHLAアレル全てにマップした。いずれかのアレルと一致したリードを集め各遺伝子での平均カバレッジを計算した。平均カバレッジの分母となる遺伝子長はHLAアレルによって異なるため、各遺伝子のアレルセットでの平均長を用いた。
Claims (11)
- 配列番号1に示される塩基配列からなるプライマー、及び配列番号2に示される塩基配列からなるプライマーを含む、HLA-A遺伝子増幅用プライマーセット。
- 配列番号3に示される塩基配列からなるプライマー、及び配列番号4に示される塩基配列からなるプライマーを含む、HLA-B遺伝子増幅用プライマーセット。
- 配列番号5に示される塩基配列からなるプライマー、及び配列番号6に示される塩基配列からなるプライマーを含む、HLA-C遺伝子増幅用プライマーセット。
- 配列番号7に示される塩基配列からなるプライマー、配列番号8に示される塩基配列からなるプライマー、配列番号9に示される塩基配列からなるプライマー、及び配列番号10に示される塩基配列からなるプライマーを含む、HLA-DRB1遺伝子増幅用プライマーセット。
- 配列番号11に示される塩基配列からなるプライマー、及び配列番号12に示される塩基配列からなるプライマーを含む、HLA-DQB1遺伝子増幅用プライマーセット。
- 配列番号13に示される塩基配列からなるプライマー、配列番号14に示される塩基配列からなるプライマー、配列番号15に示される塩基配列からなるプライマー、及び配列番号16に示される塩基配列からなるプライマーを含む、HLA-DPB1遺伝子増幅用プライマーセット。
- 請求項1に記載のプライマーセット、請求項2に記載のプライマーセット、請求項3に記載のプライマーセット、請求項4に記載のプライマーセット、請求項5に記載のプライマーセット及び請求項6に記載のプライマーセットからなる群から2つ以上選択される、HLA遺伝子増幅用プライマーセット。
- 請求項1〜6に記載の全てのプライマーセットを含む、HLA遺伝子増幅用プライマーセット。
- 請求項1〜8のいずれか1項に記載のプライマーセットを用いて行う、HLA遺伝子のシークエンス方法。
- 請求項9に記載の方法により得られた塩基配列情報を用いて行う、HLA遺伝子のタイピング方法。
- 請求項1〜8のいずれか1項に記載のプライマーセットを含む、HLA遺伝子の増幅用キット。
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