JP6572404B2 - クロマトグラフィー媒体用基材、クロマトグラフィー媒体及びイムノクロマトグラフ用ストリップ - Google Patents
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Description
[2] 前記親水性のポリオレフィン微多孔膜の膜厚が20μm〜450μmである、上記[1]に記載のクロマトグラフィー媒体用基材。
[3] 前記親水性のポリオレフィン微多孔膜の空孔率が70%〜95%である、上記[1]又は[2]に記載のクロマトグラフィー媒体用基材。
[4] 前記親水性のポリオレフィン微多孔膜のBET比表面積が1m2/g〜30m2/gである、上記[1]〜[3]のいずれかに記載のクロマトグラフィー媒体用基材。
[5] 前記親水性のポリオレフィン微多孔膜の平均流量孔径が0.02μm〜5μmである、上記[1]〜[4]のいずれかに記載のクロマトグラフィー媒体用基材。
[6] 前記親水性のポリオレフィン微多孔膜は、ポリオレフィン微多孔膜の表面及び空孔内表面の少なくとも一方に界面活性剤が付着した微多孔膜である、上記[1]〜[5]のいずれかに記載のクロマトグラフィー媒体用基材。
[7] 前記親水性のポリオレフィン微多孔膜は、ポリオレフィン微多孔膜の表面及び空孔内表面の少なくとも一方にプラズマ処理が施された微多孔膜である、上記[1]〜[6]のいずれかに記載のクロマトグラフィー媒体用基材。
[8] 上記[1]〜[7]のいずれかに記載のクロマトグラフィー媒体用基材と、前記クロマトグラフィー媒体用基材に設けられた検出部であって、被検出物質と特異的に結合する検出試薬が固定化された検出部と、を備えたクロマトグラフィー媒体。
[9] 上記[8]に記載のクロマトグラフィー媒体を含む、イムノクロマトグラフ用ストリップ。
本開示は、イムノクロマトグラフ用ストリップ(immunochromatographic strip)が備えるクロマトグラフィー媒体(chromatography media)に用いるための基材(本開示において「クロマトグラフィー媒体用基材」という。)を提供する。
本開示のクロマトグラフィー媒体用基材は、親水性のポリオレフィン微多孔膜からなる。親水性のポリオレフィン微多孔膜は、ポリオレフィンを含んで構成された親水性の微多孔膜である。本開示においてポリオレフィン微多孔膜とは、フィブリル状のポリオレフィンが三次元ネットワーク構造を形成し、内部に多数の微細孔を有し、これら微細孔が連結された構造となっており、一方の面から他方の面へと気体あるいは液体が通過可能となった膜を意味する。
本開示のクロマトグラフィー媒体用基材(すなわち、親水性のポリオレフィン微多孔膜)は、少なくとも一方の面において、滴下1秒後の水の接触角が0度〜60度である。本開示のクロマトグラフィー媒体用基材がイムノクロマトグラフ用ストリップを構成する際、本開示のクロマトグラフィー媒体用基材における滴下1秒後の水の接触角が0度〜60度である面が、被検出物質を含有する可能性のある液体状のサンプルを受容する側の面になる。本開示のクロマトグラフィー媒体用基材は、両面において、滴下1秒後の水の接触角が0度〜60度であることが好ましい。
本開示のクロマトグラフィー媒体用基材(すなわち、親水性のポリオレフィン微多孔膜)は、キャピラリーフロータイムが5秒/4cm〜300秒/4cmである。本開示のクロマトグラフィー媒体用基材について、キャピラリーフロータイムは、下記の吸水試験によって測定される値である。
ポリオレフィン微多孔膜は、平均流量孔径が0.02μm〜5μmであることが好ましい。ポリオレフィン微多孔膜の平均流量孔径が0.02μm以上であると、キャピラリーフロータイムがより好ましい範囲になり、検査速度がより向上し得る。この観点からは、ポリオレフィン微多孔膜の平均流量孔径は0.05μm以上がより好ましく、0.1μm以上が更に好ましい。一方、ポリオレフィン微多孔膜の平均流量孔径が5μm以下であると、十分な検査精度を得やすい。この観点からは、ポリオレフィン微多孔膜の平均流量孔径は4μm以下がより好ましく、3μm以下が更に好ましい。
ポリオレフィン微多孔膜の膜厚は20μm〜450μmであることが好ましい。ポリオレフィン微多孔膜の膜厚が450μm以下であると、使用するサンプル量の低減又は検査精度の向上の観点から好ましい。この観点からは、ポリオレフィン微多孔膜の膜厚は300μm以下がより好ましく、200μm以下が更に好ましい。一方、ポリオレフィン微多孔膜の膜厚が20μm以上であると、キャピラリーフロータイムがより好ましい範囲になり、検査速度が向上し得るため好ましい。この観点からは、ポリオレフィン微多孔膜の膜厚は25μm以上がより好ましく、30μm以上が更に好ましい。
ポリオレフィン微多孔膜の空孔率は70%〜95%であることが好ましい。ポリオレフィン微多孔膜の空孔率が70%以上であると、キャピラリーフロータイムがより好ましい範囲になり、検査速度が向上し得る点で好ましい。この観点からは、ポリオレフィン微多孔膜の空孔率は75%以上がより好ましく、80%以上が更に好ましい。一方、ポリオレフィン微多孔膜の空孔率が95%以下であると、膜の力学強度が良好となりハンドリング性が向上する点で好ましい。この観点からは、ポリオレフィン微多孔膜の空孔率は93%以下がより好ましい。
空孔率(%)={1−(Wa/xa+Wb/xb+Wc/xc+…+Wn/xn)/t}×100
ここに、ポリオレフィン微多孔膜の構成材料がa、b、c、…、nであり、前記構成材料の質量がそれぞれWa、Wb、Wc、…、Wn(g/cm2)であり、前記構成材料の真密度がそれぞれxa、xb、xc、…、xn(g/cm3)であり、ポリオレフィン微多孔膜の膜厚がt(cm)である。
ポリオレフィン微多孔膜のBET比表面積は1m2/g〜30m2/gであることが好ましい。ポリオレフィン微多孔膜のBET比表面積が30m2/g以下であると、キャピラリーフロータイムがより好ましい範囲になり、検査速度が向上し得る点で好ましい。この観点からは、ポリオレフィン微多孔膜のBET比表面積は25m2/g以下がより好ましく、20m2/g以下が更に好ましい。一方、ポリオレフィン微多孔膜のBET比表面積が1m2/g以上であると、膜の力学強度が良好となりハンドリング性が向上する点で好ましい。この観点からは、ポリオレフィン微多孔膜のBET比表面積は2m2/g以上がより好ましい。
ポリオレフィン微多孔膜に含まれるポリオレフィンとしては、特に限定されないが、例えば、ポリエチレン、ポリプロピレン、ポリブチレン、ポリメチルペンテン、ポリプロピレンとポリエチレンとの共重合体等が挙げられる。これらの中でも、ポリエチレンが好ましく、高密度ポリエチレン、高密度ポリエチレンと超高分子量ポリエチレンの混合物等が好適である。ポリオレフィン微多孔膜としては、含まれるポリオレフィンがポリエチレンのみであるポリエチレン微多孔膜が好適である。
ポリオレフィン微多孔膜は、例えば、下記の工程(I)〜(IV)を含む製造方法で製造することができる。
工程(II):前記溶液を溶融混練し、得られた溶融混練物をダイより押し出し、冷却固化して第一のゲル状成形物を得る工程。
工程(III):前記第一のゲル状成形物を少なくとも一方向に延伸(一次延伸)し且つ溶剤の乾燥を行い第二のゲル状成形物を得る工程。
工程(IV):前記第二のゲル状成形物を少なくとも一方向に延伸(二次延伸)する工程。
ポリオレフィン微多孔膜の親水化処理方法としては、例えば、コロナ放電処理、プラズマ処理、UVオゾン処理、界面活性剤又は親水性材料のコーティング、親水性モノマーのグラフト重合が挙げられる。
本開示のイムノクロマトグラフ用ストリップは、被検出物質を含有する可能性のある液体状のサンプルを検査するためのイムノクロマトグラフ用ストリップである。
前記サンプルを受け入れるサンプルパッドと、
前記被検出物質と特異的に結合する標識物質を含有するコンジュゲートパッドと、
前記被検出物質と特異的に結合する検出試薬が固定化されたクロマトグラフィー媒体と、を備えたイムノクロマトグラフ用ストリップである。
本開示のイムノクロマトグラフ用ストリップで分析できるサンプルは、被検出物質を含む可能性のあるサンプルである限り限定されない。サンプルとしては、例えば、動物(特にヒト)の体液(例えば、血液、血清、血漿、髄液、涙液、汗、尿、膿、鼻水、喀痰);動物(特にヒト)の***物(例えば、糞便);動物(特にヒト)の臓器、組織、粘膜、皮膚、それらを含むと考えられる搾過検体、スワブ又はうがい液;動物又は植物それ自体;動物又は植物の乾燥体;植物の抽出液;食品の抽出液;などの生物学的試料が挙げられる。
(ii)生物学的試料から抽出用溶媒を用いて抽出した抽出液。
(iii)生物学的試料又は抽出液を希釈剤で希釈した希釈液。
(iv)生物学的試料又は抽出液を濃縮した濃縮液。
(v)(i)〜(iv)のいずれかに標識物質を混合し標識物質と被検出物質とを結合させてなる複合体を含む液体。
サンプルパッドとしては、例えば、セルロース、ガラス、ポリウレタン、ポリアセテート、酢酸セルロース、ナイロン、ポリオレフィン、綿等の各種繊維の1種又は2種以上からなる、不織布、織布、紙状体、微多孔膜が挙げられる。サンプルパッドは、サンプルを受け入れるだけでなく、サンプル中の不溶物粒子等を濾過する機能をも兼ねる。検査の際、サンプル中の被検出物質がサンプルパッドに非特異的に吸着し検査精度が低下することを抑制するため、サンプルパッドに対して予め非特異的吸着防止処理を施してもよい。サンプルパッドは、上記の不織布など単独のシートのみならず、上記の不織布などと血球分離膜などとを積層した積層体でもよい。
コンジュゲートパッドは、サンプル中の被検出物質と特異的に結合する標識物質を含む多孔質膜であることが好ましい。コンジュゲートパッドは、標識物質を含む懸濁液を多孔質膜に含浸させ、乾燥させて作製できる。コンジュゲートパッドを構成する多孔質膜としては、例えば、セルロース、ガラス、ポリウレタン、ポリアセテート、酢酸セルロース、ナイロン、ポリオレフィン、綿等の各種繊維の1種又は2種以上からなる、不織布、織布、紙状体、微多孔膜が挙げられる。
標識物質は、被検出物質と特異的に結合する結合部と、目視又は機器により検出される標識部とを有する。
クロマトグラフィー媒体は、クロマトグラフィー媒体用基材と、クロマトグラフィー媒体用基材に設けられた検出部であって、被検出物質と特異的に結合する検出試薬が固定化された検出部と、を備えている。検出部は、被検出物質と特異的に結合する検出試薬が固定化された領域である。被検出物質が複数種ある場合は、それぞれに対応した検出試薬を固定化して、クロマトグラフィー媒体用基材に複数の検出部を形成してもよい。
吸収パッドは、展開方向の下流に流れ着いたサンプルを吸収する部材である。吸収パッドとしては、例えば、濾紙、不織布、布、セルロースアセテート膜等の吸水性材料が用いられる。クロマトグラフィー媒体を移動しているサンプルの最先端部が吸収パッドに届いてからの展開速度は、吸収パッドの材質及び大きさにより異なるので、吸収パッドの材質及び大きさの選定により被検出物質の検出に適した展開速度を設定することができる。
クロマトグラフィー媒体用基材(以下「基材」ともいう。)に適用した測定方法は、以下のとおりである。
基材の膜厚は、接触式の膜厚計(ミツトヨ社製)にて20点測定し、これを平均することで求めた。接触端子は底面が直径0.5cmの円柱状の端子を用いた。測定圧は0.1Nとした。
基材の目付(1m2当たりの質量、g/m2)は、基材を10cm×10cmの正方形に切り出し、質量を測定し、質量を面積で除算して求めた。
基材の空孔率ε(%)は下記の式により求めた。
ε={1−(Wa/xa+Wb/xb+Wc/xc+…+Wn/xn)/t}×100
ここに、構成材料がa、b、c、…、nであり、構成材料の質量がそれぞれWa、Wb、Wc、…、Wn(g/cm2)であり、構成材料の真密度がそれぞれxa、xb、xc、…、xn(g/cm3)であり、膜厚がt(cm)である。
JIS P8117:2009に従って、面積642mm2の基材の空気透過時間T(秒/100mL)を測定し、下記の式により、厚さ1μmあたりの空気透過時間τ(秒/100mL/μm)を求めた。
τ=T/t
T:JIS P8117:2009に従い測定した空気透過時間(秒/100mL)、t:基材の膜厚(μm)。
基材に対する前処理として、測定前にマイクロトラック・ベル株式会社の吸着測定用前処理装置(Belprep vac−II)にて室温での真空脱気を行った。測定装置としてマイクロトラック・ベル株式会社の比表面積測定装置(型式:BELSORP−mini)を用い、液体窒素温度下における窒素ガス吸着法にて設定相対圧:1.0×10−3〜0.35の吸着等温線を測定し、BET法で解析することで、基材のBET比表面積(m2/g)を求めた。
基材の平均流量孔径(μm)は、PMI社のパームポロメーター(型式:CFP−1200−AEXL)を用い、浸液にPMI社製のガルウィック(表面張力15.9dyn/cm)を用いて、ASTM E1294−89に規定するハーフドライ法により求めた。測定温度は25℃であり、測定圧力は0〜150psiの範囲で変化させた。
基材の表面における滴下1秒後の水の接触角を、協和界面科学株式会社製の全自動接触角計DMs−401と解析ソフトウェアFAMAS(interFAce Measurement and Analysis System)とを用いて測定した。大気中常圧下、温度24℃、相対湿度60%の雰囲気において、1μLの水(イオン交換水)を基材に滴下し、滴下1秒後の静的接触角を測定した。水滴の形成には、SUS(ステンレス鋼)製の22G針を備えたシリンジを用いた。実施例8及び実施例9の基材については、プラズマ処理を行った側の面において水の接触角を測定した。
以下の吸水試験により、基材のキャピラリーフロータイムを測定した。図4が、吸水試験の模式図である。
5個の切断片6の各キャピラリーフロータイムから、下記の式によりキャピラリーフロータイムのばらつきを求めた。
s:キャピラリーフロータイムのばらつき、n:キャピラリーフロータイムの測定点数、xi:キャピラリーフロータイムの各測定値、バーを上に付したx:キャピラリーフロータイムの平均値。
[実施例1]
重量平均分子量460万の超高分子量ポリエチレン(以下「UHMWPE」という。)1.25質量部と、重量平均分子量56万且つ密度950kg/m3の高密度ポリエチレン(以下「HDPE」という。)23.75質量部とを混合したポリエチレン組成物を用意した。ポリマー濃度が25質量%となるようにポリエチレン組成物とデカリンとを混合しポリエチレン溶液を調製した。ポリエチレン溶液を温度148℃でダイよりシート状に押出し、次いで押出物を水温20℃の水浴中で冷却し、第一のゲル状シートを得た。
プラズマ処理後のポリエチレン微多孔膜にSDBSをコーティングしなかった以外は実施例1と同様にして、クロマトグラフィー媒体用基材及び積層体を作製した。
一次延伸におけるMD方向の延伸倍率を1.8倍、二次延伸におけるMD方向の延伸倍率を2.0倍、TD方向の延伸温度を120℃、TD方向の延伸倍率を4.4倍とした以外は実施例1と同様にして、クロマトグラフィー媒体用基材及び積層体を作製した。
一次延伸におけるMD方向の延伸倍率を1.2倍、二次延伸におけるMD方向の延伸温度を90℃、熱処理(熱固定)の温度を145℃とした以外は実施例1と同様にして、クロマトグラフィー媒体用基材及び積層体を作製した。
プラズマ処理後のポリエチレン微多孔膜にSDBSをコーティングしなかった以外は実施例4と同様にして、クロマトグラフィー媒体用基材及び積層体を作製した。
UHMWPE3.75質量部と、HDPE21.25質量部とを混合したポリエチレン組成物を用い、ダイの温度を152℃、一次延伸におけるMD方向の延伸倍率を1.2倍、二次延伸におけるMD方向の延伸温度を90℃、MD方向の延伸倍率を4.0倍、熱処理(熱固定)の温度を144℃とした以外は実施例1と同様にして、クロマトグラフィー媒体用基材及び積層体を作製した。
UHMWPE4.05質量部とHDPE22.95質量部とを混合したポリエチレン組成物を用意した。ポリマー濃度が27質量%となるようにポリエチレン組成物とデカリンとを混合しポリエチレン溶液を調製した。このポリエチレン溶液を用い、二次延伸におけるMD方向の延伸温度を90℃、熱固定の温度を144℃とした以外は実施例1と同様にして、クロマトグラフィー媒体用基材及び積層体を作製した。
ダイの温度を152℃、二次延伸におけるMD方向の延伸温度を90℃、熱固定の温度を145℃とし、プラズマ処理をポリエチレン微多孔膜の片面のみに施した以外は実施例1と同様にして、クロマトグラフィー媒体用基材を作製した。
プラズマ処理後のポリエチレン微多孔膜にSDBSをコーティングしなかった以外は実施例8と同様にして、クロマトグラフィー媒体用基材及び積層体を作製した。
UHMWPE7.5質量部と、HDPE17.5質量部とを混合したポリエチレン組成物を用い、一次延伸におけるMD方向の延伸倍率を1.1倍、二次延伸におけるMD方向の延伸温度を90℃、MD方向の延伸倍率を6.5倍、TD方向の延伸温度を130℃、TD方向の延伸倍率を13.5倍、熱固定の温度を142℃とした以外は実施例1と同様にして、クロマトグラフィー媒体用基材及び積層体を作製した。
UHMWPE10.2質量部とHDPE6.8質量部とを混合したポリエチレン組成物を用意した。デカリン8質量部と流動パラフィン75質量部とを混合した混合溶剤を用意した。ポリマー濃度が17質量%となるようにポリエチレン組成物と混合溶剤とを混合しポリエチレン溶液を調製した。このポリエチレン溶液を温度153℃でダイよりシート状に押出し、ついで押出物を水温20℃の水浴中で冷却し、ゲル状シートを作製した。
UHMWPE3.4質量部とHDPE13.6質量部とを混合したポリエチレン組成物を用意した。デカリン45質量部と流動パラフィン38質量部とを混合した混合溶剤を用意した。ポリマー濃度が17質量%となるようにポリエチレン組成物と混合溶剤とを混合しポリエチレン溶液を調製した。このポリエチレン溶液を温度157℃でダイよりシート状に押出し、ついで押出物を水温20℃の水浴中で冷却し、ゲル状シートを作製した。
実施例1において製造した親水化処理前のポリエチレン微多孔膜を、クロマトグラフィー媒体用基材とした。
市販されているイムノクロマトグラフ用ニトロセルロース膜(MILLIPORE社製、SHF1200425)を、クロマトグラフィー媒体用基材とした。当該市販品は、PETフィルムの片面にニトロセルロース膜が積層された積層体である。
実施例1〜9又は比較例1〜5のクロマトグラフィー媒体用基材を用いて、hCG(ヒト絨毛性ゴナドトロピン)を被検出物質とするイムノクロマトグラフ用ストリップを以下の手順にしたがって作製した。
クロマトグラフィー媒体用基材(以下「基材」という。)とPETフィルムとの積層体を、基材のMD方向及びTD方向にしたがって、MD方向150mm且つTD方向25mmの長方形に切り出した。0.5mg/mLの抗hCG−αサブユニット抗体(マウスモノクローナル抗体)を含むリン酸緩衝液(pH7.2)を、切り出した積層体の基材側の面に、一方の長辺から8mmの位置に長辺に対して平行に直線状に塗布し(塗布量は1μL/cm)、温度50℃の雰囲気下で30分間乾燥させて検出部を形成した。
粒子径40nmの金コロイド(標識部)を、50mMのKH2PO4緩衝液(pH7.0)で60μg/mLの濃度に希釈した分散液10mLに、抗hCG抗体(マウスモノクローナル抗体)(結合部)を1mL加え、室温で10分間静置した。次いで、1質量%のポリエチレングリコール(PEG、重量平均分子量20,000)の水溶液0.5mLを金コロイド及び抗hCG抗体を含む分散液に加えて攪拌した後、10質量%のBSA(ウシ血清アルブミン)の水溶液1mLを加えてさらに攪拌した。次いで、遠心加速度7,000Gで15分間遠心分離を行い、上清を除去した。次いで、沈殿物に、PEG(重量平均分子量20,000)を0.05質量%、NaClを0.009質量%、BSAを1質量%及びNaN3を0.095質量%含む20mMのトリス塩酸緩衝液(Tris−HCl、pH8.2)を加え、標識物質(金コロイドによって標識された抗hCG抗体)を分散させた。以上の手順により、標識物質分散液を作製した。
上記で作製した標識物質分散液0.7mLに、PEG(重量平均分子量20,000)を0.05質量%及びスクロースを3.5質量%含むトリス塩酸緩衝液(Tris−HCl、pH8.2)を2.1mL加えて攪拌し、塗布液を得た。次いで、塗布液を150mm×8mm×400μmのグラスファイバー製のパッド(Ahlstrom製)に均等に塗布した後、真空乾燥機にて乾燥させ、コンジュゲートパッドを作製した。
150mm×18mm×340μmのセルロース製のパッド(Ahlstrom製)に、トリス塩酸緩衝液(Tris−HCl、pH8.2)0.6mLを均等に塗布した後、温度50℃で1時間乾燥させ、サンプルパッドを作製した。
吸収パッドとして、150mm×20mmのろ紙(Lohmann製)を用意した。
片面に粘着剤が塗布されたバッキングシート(Lohmann製、150mm×60mm)に、上記で作製したクロマトグラフィー媒体、コンジュゲートパッド、サンプルパッド及び吸収パッドを、図1に示す重なり方で貼り合せ、複合シートを得た。その際、サンプルパッドとコンジュゲートパッドの重なり幅は4mm、コンジュゲートパッドとクロマトグラフィー媒体の重なり幅は2mm、クロマトグラフィー媒体と吸収パッドの重なり幅は5mmとし、クロマトグラフィー媒体の検出部がコンジュゲートパッドよりも吸収パッドに近くなるようにした。複合シート全体を長さ方向に5mm幅ごとに切断して、図1に示す形態のストリップ(展開方向の全長60mm、幅5mm。基材のTD方向がサンプルの展開方向である。)を得た。
以下の性能評価試験は、温度24℃且つ相対湿度60%の雰囲気において行った。
hCG抗原(被検出物質)を16.7nkatになるように、BSAを1質量%及びNaN3を0.095質量%含むリン酸緩衝液に希釈し、サンプルを作製した。サンプル100μLをイムノクロマトグラフ用ストリップのサンプルパッドに滴下して展開させ、検出部の発色を目視で確認した。サンプルをサンプルパッドに滴下した時点を起点として、検出部の発色(赤)を目視で確認した時点までの時間(検出時間という。)を測定し、下記の3段階に分類した。
B:検出時間が60秒以上80秒未満。
C:検出時間が80秒以上。
検出時間の測定と同時に、検出部の発色(赤)の明瞭さを目視により判定し、下記の3段階に分類した。
B:検出部に赤い線を確認できる。
C:検出部に赤い線を確認できるが不明瞭。
X:展開方向
1:クロマトグラフィー媒体
2:サンプルパッド
3:コンジュゲートパッド
4:吸収パッド
5:支持体板
11:検出部
101:被検出物質
102:標識物質
103:複合体
104:検出試薬
6:クロマトグラフィー媒体用基材の切断片
7:ポリプロピレン製の板
8:粘着テープ
9:ビーカー
10:水
Claims (11)
- イムノクロマトグラフ用ストリップが備えるクロマトグラフィー媒体に用いるための基材であって、
親水性のポリオレフィン微多孔膜からなり、
前記親水性のポリオレフィン微多孔膜が、フィブリル状ポリオレフィンの三次元ネットワーク構造を備えた多孔質構造を有し、
少なくとも一方の面において滴下1秒後の水の接触角が0度〜60度であり、
キャピラリーフロータイムが5秒/4cm〜300秒/4cmである、クロマトグラフィー媒体用基材。 - 前記親水性のポリオレフィン微多孔膜は、ポリオレフィン微多孔膜がコロナ放電処理、プラズマ処理、UVオゾン処理及び界面活性剤処理からなる群から選ばれる少なくとも一つの親水化処理によって親水化されたポリオレフィン微多孔膜である、請求項1に記載のクロマトグラフィー媒体用基材。
- 前記親水性のポリオレフィン微多孔膜の膜厚が20μm〜450μmである、請求項1又は請求項2に記載のクロマトグラフィー媒体用基材。
- 前記親水性のポリオレフィン微多孔膜の空孔率が70%〜95%である、請求項1〜請求項3のいずれか1項に記載のクロマトグラフィー媒体用基材。
- 前記親水性のポリオレフィン微多孔膜のBET比表面積が1m2/g〜30m2/gである、請求項1〜請求項4のいずれか1項に記載のクロマトグラフィー媒体用基材。
- 前記親水性のポリオレフィン微多孔膜の平均流量孔径が0.02μm〜5μmである、請求項1〜請求項5のいずれか1項に記載のクロマトグラフィー媒体用基材。
- 前記親水性のポリオレフィン微多孔膜のガーレ値が0.002秒/100mL/μm〜0.1秒/100mL/μmである、請求項1〜請求項6のいずれか1項に記載のクロマトグラフィー媒体用基材。
- 前記親水性のポリオレフィン微多孔膜は、ポリオレフィン微多孔膜の表面及び空孔内表面の少なくとも一方に界面活性剤が付着した微多孔膜である、請求項1〜請求項7のいずれか1項に記載のクロマトグラフィー媒体用基材。
- 前記親水性のポリオレフィン微多孔膜は、ポリオレフィン微多孔膜の表面及び空孔内表面の少なくとも一方にプラズマ処理が施された微多孔膜である、請求項1〜請求項8のいずれか1項に記載のクロマトグラフィー媒体用基材。
- 請求項1〜請求項9のいずれか1項に記載のクロマトグラフィー媒体用基材と、
前記クロマトグラフィー媒体用基材に設けられた検出部であって、被検出物質と特異的に結合する検出試薬が固定化された検出部と、
を備えたクロマトグラフィー媒体。 - 請求項10に記載のクロマトグラフィー媒体を含む、イムノクロマトグラフ用ストリップ。
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