JP6279466B2 - 新規な発現ベクター - Google Patents
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Description
本発明は，組換え体蛋白質を哺乳動物細胞内で効率よく発現させるための新規な発現ベクターに関し，詳しくは，遺伝子発現制御部位，その下流に所望の蛋白質をコードする遺伝子，更に下流に内部リボソーム結合部位，及び更に下流にグルタミン合成酵素をコードする遺伝子を含み，且つ該遺伝子発現制御部位又は該遺伝子発現制御部位とは別の遺伝子発現制御部位の下流に，ジヒドロ葉酸レダクターゼ遺伝子を更に含んでなる，発現ベクターに関する。
所望の蛋白質をコードする遺伝子を組み込んだ発現ベクターで形質転換された哺乳動物細胞を用いて，組換え体蛋白質を製造する方法は，医薬品製造等の産業分野で広く普及した技術であり，α-ガラクトシダーゼＡ，イズロン酸2-スルファターゼ，グルコセレブロシダーゼ，ガルスルファーゼ，α-L-イズロニダーゼ，酸性α-グルコシダーゼ等のリソソーム酵素，組織プラスミノーゲンアクチベーター（ｔ-PA），血液凝固第VII因子，血液凝固第VIII因子，血液凝固第IX因子等の血液凝固因子，エリスロポエチン，インターフェロン，トロンボモジュリン，卵胞刺激ホルモン，顆粒球コロニー刺激因子（G-CSF），各種抗体医薬等がこの技術を用いて製造され，医薬品として市販されている。
このとき，発現ベクターとして，強力な遺伝子発現を誘導する遺伝子制御部位，例えば，サイトメガロウイルス（ＣＭＶ）由来のプロモーター，ＳＶ４０初期プロモーター（ＳＶ４０エンハンサー／プロモーター），伸長因子１α（ＥＦ−１）プロモーターなどの下流に，所望の蛋白質をコードする遺伝子を組み込んだものを用いるのが一般的である。このような発現ベクターが導入された哺乳動物細胞は，発現ベクターに組み込んだ所望の蛋白質を発現するようになるが，その発現量は個々の細胞により異なり一様ではない。従って，組換え体蛋白質を効率よく生産するためには，発現ベクターが導入された哺乳動物細胞から，所望の蛋白質の発現レベルが高い細胞を選択するステップが必要となる。この選択ステップを行うために，発現ベクターには選択マーカーとして働く遺伝子が組み込まれている。
選択マーカーとして最も一般的なものはピューロマイシン，ネオマイシン等の薬剤を分解する酵素（薬剤耐性マーカー）である。哺乳動物細胞は一定濃度以上の上記薬剤の存在下で死滅する。しかし，発現ベクターが導入された哺乳動物細胞は，発現ベクターに組み込んだ薬剤選択マーカーによりに上記薬剤を分解し，これを無毒化又は弱毒化することができるので，上記薬剤存在下でも生存可能となる。従って，発現ベクターが導入された細胞を，上記薬剤をある一定濃度含む培地中で培養すると，薬剤選択マーカーを高レベルで発現する細胞のみが増殖して，それらが選択される結果となる。薬剤選択マーカーを高レベルで発現する細胞は，発現ベクターに同時に組み込んだ所望の蛋白質をコードする遺伝子も高レベルに発現する傾向があるので，結果として，所望の蛋白質を高レベルで発現する哺乳動物細胞が得られる。
所望の蛋白質を高レベルで発現する哺乳動物細胞を得る方法として，ジヒドロ葉酸レダクターゼ（ＤＨＦＲ）を選択マーカーとして利用する方法も知られている（非特許文献１）。ジヒドロ葉酸レダクターゼは，ジヒドロ葉酸をテトラヒドロ葉酸に還元する酵素である。哺乳動物細胞をＤＨＦＲの阻害剤である一定濃度以上のメトトレキサート（MTX）存在下で，チミジン・ヒポキサンチン欠乏培地で培養すると，細胞は死滅する。しかし，選択マーカーとしてＤＨＦＲ遺伝子が組み込まれた発現ベクターを哺乳動物細胞に導入すると，該細胞では，ＤＨＦＲの発現レベルが上昇するようになるので，より高濃度のMTX存在下でも増殖可能となる。このとき，MTXの濃度を徐々に上昇させながら培養を続けると，一層高濃度のMTX存在下でも増殖可能な細胞が得られる。この現象は，哺乳動物細胞のゲノム内に組み込まれた該発現ベクターが，ゲノム内で重複してコピー数を増やすことにより引き起こされると考えられている。すなわち，該発現ベクターのコピー数が増えることにより，一つの細胞中のゲノム内にあるＤＨＦＲの遺伝子数が増加することになり，相対的にＤＨＦＲの発現量が増加する。このとき，発現ベクターに同時に組み込んだ所望の蛋白質をコードする遺伝子のコピー数も重複して増加するので，所望の蛋白質を高レベルで発現する哺乳動物細胞が得られる。
選択マーカーとして，グルタミン合成酵素（ＧＳ）を用いる発現ベクターも知られている（特許文献１，２）。グルタミン合成酵素は，グルタミン酸とアンモニアからグルタミンを合成する酵素である。哺乳動物細胞をグルタミン合成酵素の阻害剤である一定濃度以上のメチオニンスルホキシミン（MSX）存在下で，グルタミン欠乏培地で培養すると，細胞は死滅する。しかし，選択マーカーとしてグルタミン合成酵素が組み込まれた発現ベクターを哺乳動物細胞に導入すると，該細胞では，グルタミン合成酵素の発現レベルが上昇するようになるので，より高濃度のMSX存在下でも増殖可能となる。このとき，MSXの濃度を徐々に上昇させながら培養を続けると，より高濃度のMSX存在下でも増殖可能な細胞が得られる。この現象は，選択マーカーとしてＤＨＦＲを利用したときと同様の機構により起こる。従って，発現ベクターに，ＧＳ遺伝子とともに所望の蛋白質をコードする遺伝子を組み込むことにより，所望の蛋白質を高レベルで発現する哺乳動物細胞が得られる。例えば，特許文献１には，ＧＳ遺伝子とメチオニンスルホキシミン（MSX）を用いることにより，ＤＨＦＲ遺伝子とメトトレキセート（MTX）を使用する場合よりも，ベクターＤＮＡのコピー数を増加し得ることが記載されている。また，特許文献２には，ＧＳ遺伝子とMSXを用いることにより，ホスト細胞のＤＮＡ中で，ＧＳ遺伝子のコピー数の増加に付随して，これと異なる異系遺伝子のコピー数をも増加させることができ，かくして所望のポリペプチドの生産のレベルを増大できることが記載されている。
このように，選択マーカーを含む発現ベクターは，効率の良い組換え体蛋白質の製造に適しており，広く用いられている。発現ベクター上で，所望の蛋白質をコードする遺伝子と選択マーカーをコードする遺伝子は，一般に，それぞれ別の遺伝子制御部位下に組み込まれる（特許文献３）。しかし，一つの遺伝子制御部位下に，所望の蛋白質と選択マーカーをコードする遺伝子を直列に組み込んで発現させる方法も知られており（特許文献４〜７），このとき，所望の蛋白質と選択マーカーをコードする遺伝子の間には，内部リボソーム結合部位（IRES: internal ribosome entry site）などが挿入され，これにより，一つの遺伝子制御部位から2つの遺伝子の発現が可能となる。内部リボソーム結合部位は種々知られており，例えば，ピコルナウイルス，ポリオウイルス，脳心筋炎ウイルス，鶏伝染性ファブリキウス嚢病ウイルス，由来のものがある（特許文献８〜１０）。
内部リボソーム結合部位を応用した発現ベクターとして，内部リボソーム結合部位の下流に選択マーカーとして単純ヘルペスウイルスチミジンキナーゼを組み込んだ発現ベクター（特許文献１１），２以上の内部リボソーム結合部位を用いて３種以上の遺伝子を結合させた発現ベクター（特許文献１２）が知られている。
上記のように，種々の発現ベクターの開発により，哺乳動物細胞を用いて組換え体蛋白質を製造する方法が，エリスロポエチン等の医薬品の製造において実用化されているが，その製造コストを低減するため，より効率のよい発現ベクターの開発が常に求められている。
Kaufman RJ. et al., Mol Cel Biol. 2, 1304-19 (1982)
組換え体蛋白質を哺乳動物細胞内で効率よく発現させるための新規な発現ベクター，該ベクターで形質転換された哺乳動物細胞，及び該哺乳動物細胞の製造方法を提供することを目的とする。
上記目的に向けた研究において，本発明者らは，遺伝子発現制御部位，並びに，その下流にヒト甲状腺刺激ホルモン（hTSH）等の所望の蛋白質をコードする遺伝子，更に下流に内部リボソーム結合部位，及び更に下流にグルタミン合成酵素をコードする遺伝子を含み，且つ該遺伝子発現制御部位の又は別の遺伝子発現制御部位の下流にジヒドロ葉酸レダクターゼをコードする遺伝子を更に含んだ発現ベクターを用いて，哺乳動物細胞を形質転換させることにより，該蛋白質をコードする遺伝子を高レベルで発現させることができることを見出し，本発明を完成した。すなわち，本発明は以下を提供する。
１．蛋白質を発現させるための発現ベクターであって，遺伝子発現制御部位（Ａ），並びに，その下流に該蛋白質をコードする遺伝子，更に下流に内部リボソーム結合部位，及び更に下流にグルタミン合成酵素をコードする遺伝子を含み，且つ，該遺伝子発現制御部位（Ａ）の又は該遺伝子発現制御部位（Ａ）とは別の遺伝子発現制御部位（Ｂ）の下流にジヒドロ葉酸レダクターゼ遺伝子を更に含んでなる，発現ベクター。
２．該遺伝子発現制御部位（Ａ）及び／又は該遺伝子発現制御部位（Ｂ）が，サイトメガロウイルス由来のプロモーター，ＳＶ４０初期プロモーター，伸長因子１プロモーターからなる群から選択されるものである，上記１の発現ベクター。
３．該内部リボソーム結合部位が，ピコルナウイルス科のウイルス，***ウイルス，Ａ型肝炎ウイルス，Ｃ型肝炎ウイルス，コロナウイルス，ウシ腸内ウイルス，サイラーのネズミ脳脊髄炎ウイルス，コクサッキーＢ型ウイルス，ヒト免疫グロブリン重鎖結合蛋白質遺伝子，ショウジョウバエアンテナペディア遺伝子，ショウジョウバエウルトラビトラックス遺伝子からなる群から選択されるウイルス又は遺伝子の5'非翻訳領域に由来するものである，上記１又は２の発現ベクター。
４．該内部リボソーム結合部位が，ピコルナウイルス科のウイルスの5'非翻訳領域に由来するものである，上記１又は２の発現ベクター，
５．該内部リボソーム結合部位が，マウス脳心筋炎ウイルスの5'非翻訳領域に由来するものである，上記１又は２の発現ベクター。
６．該内部リボソーム結合部位が，野生型の内部リボソーム結合部位の塩基配列に，１又は２以上の変異を加えたものである，上記１ないし５の何れかの発現ベクター，
７．該野生型の内部リボソーム結合部位の塩基配列が複数の開始コドンを含み，該変異により，それら複数の開始コドンのうち一部が破壊されたものである，上記６の発現ベクター。
８．該内部リボソーム結合部位が，配列番号１の塩基配列を含むものである，上記５の発現ベクター。
９．該内部リボソーム結合部位が，配列番号２の塩基配列を含むものである，上記５の発現ベクター。
１０．該内部リボソーム結合部位が，配列番号３の塩基配列を含むものである，上記５の発現ベクター。
１１．該内部リボソーム結合部位が，配列番号４の塩基配列を含むものである，上記５の発現ベクター。
１２．該内部リボソーム結合部位が，配列番号５の塩基配列を含むものである，上記５の発現ベクター。
１３．該内部リボソーム結合部位が，配列番号６の塩基配列を含むものである，上記５の発現ベクター。
１４．該蛋白質をコードする該遺伝子と該内部リボソーム結合部位との間の領域又はグルタミン合成酵素をコードする該遺伝子の下流の領域において，該内部リボソーム結合部位とは別の内部リボソーム結合部位及びその下流に薬剤耐性遺伝子を更に含んでなる，上記１ないし１３の何れかの発現ベクター。
１５．該遺伝子発現制御部位（Ａ）及び遺伝子発現制御部位（Ｂ）とは別に，更なる遺伝子発現制御部位（Ｃ）及びその下流に薬剤耐性遺伝子を更に含んでなる，上記１ないし１３の何れかの発現ベクター。
１６．該薬剤耐性遺伝子が，ピューロマイシン又はネオマイシン耐性遺伝子である，上記１４又は１５の発現ベクター。
１７．該蛋白質をコードする該遺伝子が，ヒト由来の遺伝子である上記１ないし１６の何れかの発現ベクター。
１８．ヒト由来の該遺伝子が，リソソーム酵素，組織プラスミノーゲンアクチベーター（ｔ-PA），血液凝固因子，エリスロポエチン，インターフェロン，トロンボモジュリン，甲状腺刺激ホルモン（TSH），卵胞刺激ホルモン，顆粒球コロニー刺激因子（G-CSF），及び抗体をコードする遺伝子からなる群から選択されるものである，上記１７の発現ベクター。
１９．ヒト由来の該遺伝子が，リソソーム酵素をコードする遺伝子である，上記１７の発現ベクター。
２０．該リソソーム酵素が，α-ガラクトシダーゼＡ，イズロン酸2-スルファターゼ，グルコセレブロシダーゼ，ガルスルファーゼ，α-L-イズロニダーゼ，及び酸性α-グルコシダーゼからなる群から選択されるものである，上記１９の発現ベクター。
２１．ヒト由来の該遺伝子が，エリスロポエチンをコードする遺伝子である上記１７の発現ベクター。
２２．上記１ないし２１の何れかの発現ベクターで形質転換された哺乳動物細胞。
２３．該哺乳動物細胞が，内因性のジヒドロ葉酸レダクターゼ遺伝子を欠損したものである，上記２２の細胞。
２４．該哺乳動物細胞が，ＣＨＯ細胞である，上記２２又は２３の細胞。
２５．（ａ）上記１ないし２１の何れかの発現ベクターを，哺乳動物細胞に導入するステップ，
（ｂ）該発現ベクターが導入された哺乳動物細胞を，ジヒドロ葉酸レダクターゼ阻害剤の存在下で選択培養するステップ，及び
（ｃ）該選択培養により選択された細胞を，グルタミン合成酵素阻害剤の存在下で更に選択培養するステップ
を含む，該蛋白質をコードする遺伝子を発現する形質転換細胞の製造方法。
２６．（ａ）上記１４ないし１６の何れかの発現ベクターを，哺乳動物細胞に導入するステップ，
（ｂ）該発現ベクターが導入された哺乳動物細胞を，ジヒドロ葉酸レダクターゼ阻害剤の存在下で選択培養するステップ，及び
（ｃ）該選択培養により選択された細胞を，グルタミン合成酵素阻害剤の存在下で更に選択培養するステップ
を含む，該蛋白質をコードする遺伝子を発現する形質転換細胞の製造方法であって，該ステップ（ａ）と該ステップ（ｂ）の間，又は該ステップ（ｂ）と該ステップ（ｃ）の間に，該発現ベクターが導入された哺乳動物細胞を，該薬剤耐性遺伝子に対応する薬剤の存在下で選択培養するステップを更に含む，製造方法。
１．蛋白質を発現させるための発現ベクターであって，遺伝子発現制御部位（Ａ），並びに，その下流に該蛋白質をコードする遺伝子，更に下流に内部リボソーム結合部位，及び更に下流にグルタミン合成酵素をコードする遺伝子を含み，且つ，該遺伝子発現制御部位（Ａ）の又は該遺伝子発現制御部位（Ａ）とは別の遺伝子発現制御部位（Ｂ）の下流にジヒドロ葉酸レダクターゼ遺伝子を更に含んでなる，発現ベクター。
２．該遺伝子発現制御部位（Ａ）及び／又は該遺伝子発現制御部位（Ｂ）が，サイトメガロウイルス由来のプロモーター，ＳＶ４０初期プロモーター，伸長因子１プロモーターからなる群から選択されるものである，上記１の発現ベクター。
３．該内部リボソーム結合部位が，ピコルナウイルス科のウイルス，***ウイルス，Ａ型肝炎ウイルス，Ｃ型肝炎ウイルス，コロナウイルス，ウシ腸内ウイルス，サイラーのネズミ脳脊髄炎ウイルス，コクサッキーＢ型ウイルス，ヒト免疫グロブリン重鎖結合蛋白質遺伝子，ショウジョウバエアンテナペディア遺伝子，ショウジョウバエウルトラビトラックス遺伝子からなる群から選択されるウイルス又は遺伝子の5'非翻訳領域に由来するものである，上記１又は２の発現ベクター。
４．該内部リボソーム結合部位が，ピコルナウイルス科のウイルスの5'非翻訳領域に由来するものである，上記１又は２の発現ベクター，
５．該内部リボソーム結合部位が，マウス脳心筋炎ウイルスの5'非翻訳領域に由来するものである，上記１又は２の発現ベクター。
６．該内部リボソーム結合部位が，野生型の内部リボソーム結合部位の塩基配列に，１又は２以上の変異を加えたものである，上記１ないし５の何れかの発現ベクター，
７．該野生型の内部リボソーム結合部位の塩基配列が複数の開始コドンを含み，該変異により，それら複数の開始コドンのうち一部が破壊されたものである，上記６の発現ベクター。
８．該内部リボソーム結合部位が，配列番号１の塩基配列を含むものである，上記５の発現ベクター。
９．該内部リボソーム結合部位が，配列番号２の塩基配列を含むものである，上記５の発現ベクター。
１０．該内部リボソーム結合部位が，配列番号３の塩基配列を含むものである，上記５の発現ベクター。
１１．該内部リボソーム結合部位が，配列番号４の塩基配列を含むものである，上記５の発現ベクター。
１２．該内部リボソーム結合部位が，配列番号５の塩基配列を含むものである，上記５の発現ベクター。
１３．該内部リボソーム結合部位が，配列番号６の塩基配列を含むものである，上記５の発現ベクター。
１４．該蛋白質をコードする該遺伝子と該内部リボソーム結合部位との間の領域又はグルタミン合成酵素をコードする該遺伝子の下流の領域において，該内部リボソーム結合部位とは別の内部リボソーム結合部位及びその下流に薬剤耐性遺伝子を更に含んでなる，上記１ないし１３の何れかの発現ベクター。
１５．該遺伝子発現制御部位（Ａ）及び遺伝子発現制御部位（Ｂ）とは別に，更なる遺伝子発現制御部位（Ｃ）及びその下流に薬剤耐性遺伝子を更に含んでなる，上記１ないし１３の何れかの発現ベクター。
１６．該薬剤耐性遺伝子が，ピューロマイシン又はネオマイシン耐性遺伝子である，上記１４又は１５の発現ベクター。
１７．該蛋白質をコードする該遺伝子が，ヒト由来の遺伝子である上記１ないし１６の何れかの発現ベクター。
１８．ヒト由来の該遺伝子が，リソソーム酵素，組織プラスミノーゲンアクチベーター（ｔ-PA），血液凝固因子，エリスロポエチン，インターフェロン，トロンボモジュリン，甲状腺刺激ホルモン（TSH），卵胞刺激ホルモン，顆粒球コロニー刺激因子（G-CSF），及び抗体をコードする遺伝子からなる群から選択されるものである，上記１７の発現ベクター。
１９．ヒト由来の該遺伝子が，リソソーム酵素をコードする遺伝子である，上記１７の発現ベクター。
２０．該リソソーム酵素が，α-ガラクトシダーゼＡ，イズロン酸2-スルファターゼ，グルコセレブロシダーゼ，ガルスルファーゼ，α-L-イズロニダーゼ，及び酸性α-グルコシダーゼからなる群から選択されるものである，上記１９の発現ベクター。
２１．ヒト由来の該遺伝子が，エリスロポエチンをコードする遺伝子である上記１７の発現ベクター。
２２．上記１ないし２１の何れかの発現ベクターで形質転換された哺乳動物細胞。
２３．該哺乳動物細胞が，内因性のジヒドロ葉酸レダクターゼ遺伝子を欠損したものである，上記２２の細胞。
２４．該哺乳動物細胞が，ＣＨＯ細胞である，上記２２又は２３の細胞。
２５．（ａ）上記１ないし２１の何れかの発現ベクターを，哺乳動物細胞に導入するステップ，
（ｂ）該発現ベクターが導入された哺乳動物細胞を，ジヒドロ葉酸レダクターゼ阻害剤の存在下で選択培養するステップ，及び
（ｃ）該選択培養により選択された細胞を，グルタミン合成酵素阻害剤の存在下で更に選択培養するステップ
を含む，該蛋白質をコードする遺伝子を発現する形質転換細胞の製造方法。
２６．（ａ）上記１４ないし１６の何れかの発現ベクターを，哺乳動物細胞に導入するステップ，
（ｂ）該発現ベクターが導入された哺乳動物細胞を，ジヒドロ葉酸レダクターゼ阻害剤の存在下で選択培養するステップ，及び
（ｃ）該選択培養により選択された細胞を，グルタミン合成酵素阻害剤の存在下で更に選択培養するステップ
を含む，該蛋白質をコードする遺伝子を発現する形質転換細胞の製造方法であって，該ステップ（ａ）と該ステップ（ｂ）の間，又は該ステップ（ｂ）と該ステップ（ｃ）の間に，該発現ベクターが導入された哺乳動物細胞を，該薬剤耐性遺伝子に対応する薬剤の存在下で選択培養するステップを更に含む，製造方法。
本発明によれば，哺乳動物細胞内で，所望の組換え体蛋白質を効率よく発現させるための，発現ベクターを得ることができる。該発現ベクターを哺乳動物細胞に導入し，次いで選択培養することにより，該組換え体蛋白質を効率よく生産する形質転換細胞を得ることができる。こうして得た形質転換細胞を用いれば，該組換え体蛋白質の製造コストを大幅に低減することができる。
本発明において，「遺伝子」の語は，構造遺伝子を意味する。また，「遺伝子発現制御部位」とは，その下流に存在する遺伝子の転写の頻度を制御（調節）することができるＤＮＡ上の領域のことであり，一般にプロモーター又はプロモーター遺伝子と称されるものである。遺伝子発現制御部位は，生体内で発現する遺伝子のほぼ全ての上流側に存在し，その転写の頻度を制御（調節）するものであり，その塩基配列は多様である。本発明において用いることのできる遺伝子発現制御部位は，その下流に組み込んだ遺伝子の転写を，哺乳動物細胞内において強力に誘導することができるものである限り特に限定はないが，好ましくはサイトメガロウイルス（CMV）由来のプロモーター，SV40 初期プロモーター等のウイルス由来のプロモーター，及び伸長因子１α(EF-1)プロモーターなどである。
本発明において，「内部リボソーム結合部位」とは，mRNA鎖の内部に存在する，リボソームが直接結合し且つキャップ構造非依存性に翻訳を開始し得る領域（構造），又は転写されることにより該領域を生じるDNA鎖の領域（構造）である。また，本発明において，「内部リボソーム結合部位をコードする遺伝子」とは，転写されることにより該領域を生じるDNA鎖の領域（構造）である。内部リボソーム結合部位は，一般に，IRES（internal ribosome entry site）と称され，ピコルナウイルス科のウイルス（ポリオウイルス，ライノウイルス，マウス脳心筋炎ウイルスなど），***ウイルス，Ａ型肝炎ウイルス，Ｃ型肝炎ウイルス，コロナウイルス，ウシ腸内ウイルス，サイラーのネズミ脳脊髄炎ウイルス，コクサッキーＢ型ウイルス等のウイルスの5'非翻訳領域，ヒト免疫グロブリン重鎖結合蛋白質，ショウジョウバエアンテナペディア，ショウジョウバエウルトラビトラックス等の遺伝子の5'非翻訳領域に見出されている。ピコルナウイルスの場合，そのIRESは，mRNAの5'非翻訳領域に存在する約450bpからなる領域である。ここで「ウイルスの5'非翻訳領域」とは，ウイルスのmRNAの5'非翻訳領域，又は転写されることにより該領域を生じるDNA鎖の領域（構造）である。
本発明において，内部リボソーム結合部位は，哺乳動物細胞内，特にチャイニーズハムスターの卵巣に由来する細胞（ＣＨＯ細胞）内で，内部リボソーム結合部位として機能するものである限り特に限定はなく，何れのものをも使用することができる。それらのうち，好ましくはウイルスの5'非翻訳領域に由来する内部リボソーム結合部位，より好ましくはピコルナウイルス科のウイルスの5'非翻訳領域に由来する内部リボソーム結合部位，更に好ましくはマウス脳心筋炎ウイルスの5'非翻訳領域に由来する内部リボソーム結合部位が挙げられる。
本発明において，内部リボソーム結合部位は，野生型の塩基配列を有するものをそのまま使用することができる。また，これら野生型の内部リボソーム結合部位の塩基配列に，１又は２以上の変異（例えば，置換，欠損，又は／及び挿入などをいう。）を加えた変異型の内部リボソーム結合部位も，哺乳動物細胞内（特にＣＨＯ細胞内）で内部リボソーム結合部位として機能するものである限り，何れのものをも使用することができる。また，２以上の内部リボソーム結合部位を融合させたキメラ型の内部リボソーム結合部位も，使用することができる。
また，本発明においては，内部リボソーム結合部位の制御下に，グルタミン合成酵素をコードする遺伝子（ＧＳ遺伝子）を配置することにより，ＧＳ遺伝子の発現量が制御される。ＧＳ遺伝子の発現量を，内部リボソーム結合部位下で制御することにより，後述するように，組換え体蛋白質を高レベルで発現する哺乳動物細胞を選択することが可能となる。
なお，本発明において，ＧＳ遺伝子の導入された細胞に限らず，選択マーカーの導入された細胞を選択するための培養を「選択培養」といい，導入された細胞を選択するために使用される培地を「選択培地」という。
内部リボソーム結合部位下でＧＳ遺伝子の発現量を制御する場合，種々の内部リボソーム結合部位の中から，好適なものが適宜選択して使用される。また，野生型の内部リボソーム結合部位に変異を加えたものも使用することもできる。
例えば，野生型の内部リボソーム結合部位に翻訳開始点として使用し得る開始コドン（ATG）が複数個存在する場合，これら開始コドンの一部を破壊した内部リボソーム結合部位が使用できる。ここに，「破壊」とは，ある遺伝子配列に変異を加えることにより，当該遺伝子配列が本来有する機能を発揮させないようにすることをいう。例えば，野生型のマウス脳心筋炎ウイルスの内部リボソーム結合部位の3'末端領域には，３つの開始コドン（ATG）が存在しており，その領域の塩基配列を配列番号１（5'- ATGataatATGgccacaaccATG-3'：開始コドンは，明示のため，大文字で表す。以下同じ。）で示す。この内部リボソーム結合部位の下流に存在するＧＳ遺伝子の発現量を減少させる場合，変異を加えて破壊する開始コドンは，好ましくは5’側から2番目及び3番目の開始コドンであり，より好ましくは2番目の開始コドンである。したがって，このような変異を加えた内部リボソーム結合部位としては，例えば，その3'末端が配列番号２（5'-ATGataatnnngccacaaccnnn-3'：nは任意の塩基，但し3個のnが開始コドンATGを構成する場合を除く。以下同じ。）若しくは配列番号７（5'-ATGataannnngccacaaccnnn-3'）の塩基配列であるもの，又は配列番号３（5'-ATGataatnnngccacaaccATG-3'）若しくは配列番号８（5'-ATGataannnngccacaaccATG-3'）の塩基配列であるものが挙げられる。より具体的には，その3’末端が配列番号４（5'-ATGataagcttgccacaaccATG-3'）の塩基配列である内部リボソーム結合部位であり，変異により5'側から2番目の開始コドンが破壊されたものである。更に詳しくは，野生型のマウス脳心筋炎ウイルスの内部リボソーム結合部位は，配列番号５の塩基配列を含むものである。また，該塩基配列に変異を加えたものとしては，配列番号６の塩基配列が挙げられる。
また，野生型及び／又は変異型の内部リボソーム結合部位の下流に配置したＧＳ遺伝子の発現量を，別の方法で更に調節することもできる。例えば，ＧＳ遺伝子を内部リボソーム結合部位の開始コドンに対してアウトオブフレームに組み込むことにより，あるいは内部リボソーム結合部位とＧＳ遺伝子との間に，転写若しくは翻訳を阻害する塩基配列を導入することによって，ＧＳ遺伝子の発現量を減少させることができる。転写を阻害する塩基配列は，特に限定はないが，例えば，ポリメラーゼ付加シグナル（5'-aataaa-3'）等がある。また，翻訳を阻害する塩基配列には，例えばリーディングスルーを誘導するストップコドン等がある。
本発明において，「グルタミン合成酵素」というときは，グルタミン酸とアンモニアからグルタミンを合成することができるものである限り特に限定はなく，哺乳動物，爬虫類，鳥類，両生類，麟翅目（Lepidoptera）に属するカイコ（Bombyx mori），夜盗蛾（Spodoptera frugiperda），シャクトリムシ（Geometridae）等，双翅目（Diptera）に属するショウジョウバエ（Drosophila）等の昆虫，原核生物，線虫，酵母，放線菌，糸状菌，子嚢菌，坦子菌及び植物由来を含め如何なる生物由来のものでもよいが，好ましくは哺乳動物のものであり，ヒト又はチャイニーズハムスター由来のもの（特に，ＣＨＯ細胞由来のもの）が好適に使用できる。
また，本発明において，「内因性ＧＳ遺伝子」というときは，発現ベクターが導入される細胞のゲノム上にもともと固有に存在するグルタミン合成酵素遺伝子のことをいい，「外因性ＧＳ遺伝子」というときは，発現ベクターにより細胞に導入されるグルタミン合成酵素遺伝子のことをいう。
また，「グルタミン合成酵素阻害剤」というときは，上記グルタミン合成酵素の活性を阻害することができるものである限り特に限定はなく，何れのものも用いることができるが，好ましくはメチオニンスルホキシミン（MSX）が挙げられる。
本発明の発現ベクターを導入した細胞をグルタミン合成酵素阻害剤（ＧＳ阻害剤）の存在下で培養すると，グルタミン合成酵素の発現量の低い細胞はグルタミンが合成できずに死滅するので，グルタミン合成酵素の発現量が相対的に高い細胞が選択的に得られることとなる。ＧＳ阻害剤の濃度を段階的に上昇させることにより，よりグルタミン合成酵素の発現量の高い細胞が得られる。グルタミン合成酵素の発現量の上昇は，主に，染色体上に組み込まれたＧＳ遺伝子が，遺伝子重複によりコピー数を増加させることによる。このとき，グルタミン合成酵素と共に発現ベクターに組み込んでおいた所望の蛋白質をコードする遺伝子も，遺伝子重複によりコピー数を増し，その結果，上記所望の蛋白質を高発現する細胞が得られる。
しかし，ＣＨＯ細胞は，内因性のＧＳ遺伝子を有するので，グルタミン合成酵素阻害剤により，この内因性ＧＳ遺伝子が重複によりコピー数を増加させる可能性がある。この場合，発現ベクターに組み込まれたＧＳ遺伝子の重複が起こらなくとも，グルタミン合成酵素阻害剤の存在下で細胞が増殖することになり，上記所望の蛋白質を高発現する細胞を得ることができない。この問題は，ＧＳ遺伝子とは別の第２の選択マーカー遺伝子を発現ベクターに更に組み込み，この第２の選択マーカーにより細胞を選択することで，解消できる。
まず，ＧＳ遺伝子と，ＧＳ遺伝子は異なる第２の選択マーカー遺伝子とを含む発現ベクターを細胞に導入する。次いで発現ベクターが導入された細胞を，ＧＳ遺伝子により選択培養する前に，第２の選択マーカーによって選択培養する。第２の選択マーカーによる選択においては，ＧＳ遺伝子は選択圧を受けないので，内因性ＧＳ遺伝子の影響を受けることなく，発現ベクターに組み込まれた当該第２の選択マーカー，ひいては発現ベクターに組み込まれた上記所望の蛋白質をコードする遺伝子及びＧＳ遺伝子を重複により増加させることができる。その結果，上記所望の蛋白質をある程度の高レベルで発現する細胞を得ることができる。この時点までの過程で，外因性ＧＳ遺伝子のコピー数は重複により増加するが，内因性ＧＳ遺伝子は，重複により増加することはない。
第２の選択マーカーによる選択の際に用いられる選択培地（第２の選択培地）は，第２の選択マーカーのコードする遺伝子産物の活性を阻害する薬剤，細胞毒性を有し且つ第２の選択マーカーのコードする遺伝子産物によって無毒化又は弱毒化される物質等の，第２の選択マーカーにより細胞を選択するための物質が選択物質として添加されたものであるか，又は第２の選択マーカー導入後の細胞が栄養要求性を示さなくなる物質（即ち，第２の選択マーカー導入前の細胞のみが栄養要求性を示す物質）が選択物質として除去されたものである。第２の選択マーカーがＤＨＦＲの場合，培地に添加される選択物質の例としては，メトトレキセート（MTX）及びアミノプテリンが挙げられる。また，第２の選択マーカーがＤＨＦＲの場合，培地から除去される選択物質は，ヒポキサンチン及びチミジンである。
第２の選択マーカーによる選択が選択物質を含有させた培地を用いて行われる場合，選択物質の濃度を段階的に上昇させることにより，第２の選択マーカーの発現量を一層高めた細胞を得ることができる。第２の選択マーカーの発現量の上昇は，主に第２の選択マーカーが遺伝子の重複によりコピー数を増加させることによるので，かかる手法により，発現ベクターに組み込まれた他の遺伝子，すなわちＧＳ遺伝子及び上記所望の蛋白質をコードする遺伝子を，重複により更に効率よく増加させることができる。
次いで，選択マーカーをＧＳ遺伝子に切り替えて細胞の選択を行う。ＧＳ遺伝子を選択マーカーとする選択開始時において，外因性ＧＳ遺伝子のコピー数は内因性ＧＳ遺伝子のそれと比較して増加した状態となっている。従って，この時点で，選択マーカーをＧＳ遺伝子に切り替えて細胞の選択をすることにより，数の上で優勢な外因性ＧＳ遺伝子が，内因性ＧＳ遺伝子と比較して，重複により増幅される可能性が確率的に高くなる。このように，ＧＳ遺伝子とは異なる第２の選択マーカーにより細胞を予め選択することにより，ＧＳ遺伝子による選択時において，内因性ＧＳ遺伝子の重複を抑制し，外因性ＧＳ遺伝子の重複を促進することができる。その結果，上記所望の蛋白質を高発現する細胞を効率よく取得することができる。
本発明において，第２の選択マーカーは，上記の組換え体蛋白質の発現を制御する遺伝子発現制御部位とは別の遺伝子発現制御部位（第２の遺伝子発現制御部位）を設けて，その下流に組み込んでよい。また，本発明において，第２の選択マーカーは，その上流に第２の内部リボソーム結合部位を設けこれを介して，上記所望の組換え体蛋白質をコードする遺伝子とその下流の内部リボソーム結合部位との間の領域に，又はＧＳ遺伝子の下流の領域に，組み込んでよい。これにより，第２の選択マーカーの発現量を，第２の内部リボソーム結合部位により制御することも可能となる。この場合，第２の内部リボソーム結合部位として，ＧＳ遺伝子の上流の内部リボソーム結合部位と同一の塩基配列のものを使用してもよく，また異なる塩基配列のものを使用してもよい。また，第２の内部リボソーム結合部位は，上記の種々の内部リボソーム結合部位から任意に選択し得る。
本発明において，第２の選択マーカーは，ＧＳ遺伝子とは別の選択マーカーである限り特に限定はないが，哺乳動物細胞に薬剤耐性を付与する遺伝子（薬剤耐性遺伝子）は，原則として第２の選択マーカーに含まれない。但し，後述する第３の選択マーカー遺伝子を発現ベクターに組み込み，これを用いて哺乳動物細胞の選択を更に行う場合は，第２の選択マーカーとして薬剤耐性遺伝子を使用し得る。ジヒドロ葉酸レダクターゼ（ＤＨＦＲ）遺伝子は，第２の選択マーカーとして好適に使用できる。
本発明において，「ジヒドロ葉酸レダクターゼ」（DHFR）というときは，NADPHを電子供与体として，ジヒドロ葉酸をテトラヒドロ葉酸に還元する反応に与る酵素をいい，そのような機能を有する酵素である限り，その起源に限定はなく，哺乳動物，爬虫類，鳥類，両生類，麟翅目（Lepidoptera）に属するカイコ（Bombyx mori），夜盗蛾（Spodoptera frugiperda），シャクトリムシ（Geometridae）等，双翅目（Diptera）に属するショウジョウバエ（Drosophila）等の昆虫，原核生物，線虫，酵母，放線菌，糸状菌，子嚢菌，坦子菌及び植物由来を含め如何なる生物由来のものでもよいが，好ましくは哺乳動物のものであり，ヒト，マウス又はチャイニーズハムスター由来のもの（特に，ＣＨＯ細胞由来のもの）が好適に使用できる。また，上記生物種の野生型酵素の他に，これら野生型酵素に変異が導入された変異型酵素も，酵素活性を有する限り使用することができ，それらも「ジヒドロ葉酸レダクターゼ」に包含される。かかる変異型酵素は，例えば，野生型酵素と比較して，酵素活性が異なるもの，ジヒドロ葉酸レダクターゼ阻害剤に対する感受性が異なるものがある。好適に使用できるジヒドロ葉酸レダクターゼの例として，マウスの野生型DHFR，マウスの野生型DHFRのN末端から31位のフェニルアラニンがトリプトファンに置換された変異型DHFRがある（Mclvor RS et al., Nucleic Acids Research, 18(23), 7025-32 (1990)）。マウスの野生型DHFRの塩基配列及びアミノ酸配列を，配列番号９及び配列番号１０に，上記変異型DHFRの塩基配列及びアミノ酸配列を，配列番号１１及び配列番号１２に示す。
また，本発明において，「内因性ＤＨＦＲ遺伝子」というときは，発現ベクターが導入される細胞のゲノム上にもともと固有に存在するＤＨＦＲ遺伝子のことをいい，「外因性ＤＨＦＲ遺伝子」というときは，発現ベクターにより細胞に導入されるＤＨＦＲ遺伝子のことをいう。また，本発明において，「ジヒドロ葉酸レダクターゼ阻害剤」というときは，上記ジヒドロ葉酸レダクターゼ（ＤＨＦＲ）の活性を阻害することができるものである限り特に限定はなく，何れのものも用いることができるが，好ましくは葉酸拮抗剤であり，更に好ましくはメトトレキセート（MTX），アミノプテリンが挙げられる。
本発明において，第２の選択マーカーとしてＤＨＦＲ遺伝子を含む発現ベクターを導入した細胞をジヒドロ葉酸レダクターゼ阻害剤（ＤＨＦＲ阻害剤）の存在下で培養すると，ＤＨＦＲの発現量の低い細胞はテトラヒドロ葉酸が合成できずに死滅するので，ＤＨＦＲの発現量が相対的に高い細胞が選択的に得られることとなる。ＤＨＦＲ阻害剤の濃度を段階的に上昇させることにより，よりＤＨＦＲの発現量の高い細胞が得られる。ＤＨＦＲの発現量の上昇は，主に，染色体上に組み込まれたＤＨＦＲ遺伝子が，遺伝子の重複によりコピー数を増加させることによる。このとき，発現ベクターに組み込まれた他の遺伝子，すなわちＧＳ遺伝子及び所望の蛋白質をコードする遺伝子も遺伝子重複によりコピー数を増す。その結果，所望の蛋白質をある程度高発現するとともに，外因性ＧＳ遺伝子のコピー数が，内因性ＧＳ遺伝子のそれと比較して増加した細胞が得られる。この時点で，選択マーカーをＧＳ遺伝子に切り替えて細胞の選択をすることにより，数のうえで優勢な外因性ＧＳ遺伝子が，内因性ＧＳ遺伝子と比較して，重複により増幅される可能性が確率的に高くなる。その結果，所望の蛋白質を高発現する細胞を効率よく取得することができる。
選択培地中に添加されるＤＨＦＲ阻害剤を段階的に上昇させる場合，その最大濃度は，ＤＨＦＲ阻害剤がメトトレキセートの場合，好ましくは0.25〜5μMであり，より好ましくは0.5〜1.5μMであり，更に好ましくは約1.0μMである。
本発明においては，発現ベクターに，ＧＳ遺伝子と第２の選択マーカーに加えて，更に第３の選択マーカーを導入してもよい。薬剤耐性遺伝子は，第３の選択マーカー遺伝子として好適に使用できる。本発明において，第３の選択マーカーとして使用できる薬剤耐性遺伝子は，哺乳動物細胞に薬剤耐性を付与することのできる遺伝子である限り特に限定はないが，好ましくは，細胞にピューロマイシン，ハイグロマイシン，ブラストサイジン，ネオマイシン等の薬剤に対する耐性を付与することのできる遺伝子である。ここにおいて，ピューロマイシン，ハイグロマイシン，ブラストサイジン，ネオマイシン等の薬剤は，それぞれ，「薬剤耐性遺伝子に対応する薬剤」である。これらの薬剤耐性遺伝子として，ピューロマイシン耐性遺伝子，ハイグロマイシン耐性遺伝子，ブラストサイジン耐性遺伝子，ネオマイシン耐性遺伝子が挙げられる。
本発明において，第３の選択マーカーは，組換え体蛋白質が制御を受ける遺伝子発現制御部位とは別の遺伝子発現制御部位（第３の遺伝子発現制御部位）を設けて，その下流に組み込むことにより，発現量を制御することができる。
また，本発明において，第３の選択マーカーは，その上流に第２の内部リボソーム結合部位（第２の選択マーカーの上流に第２の内部のリボソーム結合部位を設けてある場合は，第３の内部リボソーム結合部位。以下同じ。）を介して，組換え体蛋白質をコードする遺伝子と内部リボソーム結合部位との間の領域又はＧＳ遺伝子の下流の領域等に，組み込んでよい。これにより，第３の選択マーカーの発現量を，第２の内部リボソーム結合部位により制御することができる。この場合，第２の内部リボソーム結合部位として，ＧＳ遺伝子の上流の内部リボソーム結合部位及び第２の選択マーカーの上流の内部リボソーム結合部位（設けた場合）と同一のものを使用してもよく，また別のものを使用してもよい。また，第３の選択マーカーの上流の第２の内部リボソーム結合部位は，上記の種々の内部リボソーム結合部位から任意に選択し得る。また，この第２の内部リボソーム結合部位に関しても，上述と同様に，適宜変異を加えて最適化させてもよい。
上記の第２の選択マーカーが薬剤耐性遺伝子である場合，ここでいう第３の選択マーカー遺伝子として用いられる薬剤耐性遺伝子は，第２の選択マーカー以外の薬剤耐性遺伝子から選択される。第３の選択マーカーは，第２の選択マーカーと同様に，内因性ＧＳ遺伝子を重複させることなく，ＧＳ遺伝子を増幅させることができる。従って，第２の選択マーカーによる選択に先立って，若しくは当該選択の後に，第３の選択マーカーにより細胞の選択をすることにより，内因性ＧＳ遺伝子を重複させることなく，外因性ＧＳ遺伝子を重複させることができる。その結果，所望の蛋白質を高発現する細胞を更に効率よく取得することができる。
本発明において，発現ベクターに組み込まれる組換え体蛋白質をコードする遺伝子の動物種は，ヒトを含む哺乳動物由来のものを含め，特に限定はない。例えば，該遺伝子としては，本発明のベクターを医療用医薬品の製造に使用するときは，一般的にはヒト由来のものが用いられ，家畜用の医薬品の製造に使用するときは，一般的には治療対象と同種の家畜由来の遺伝子のものとなる。また，該組換え体蛋白質をコードする遺伝子の種類にも特に限定はないが，好ましくは，α−ガラクトシダーゼＡ，イズロン酸2−スルファターゼ，グルコセレブロシダーゼ，ガルスルファーゼ，α−L−イズロニダーゼ，酸性α−グルコシダーゼ等のリソソーム酵素，組織プラスミノーゲンアクチベーター（ｔ-PA），血液凝固第VII因子，血液凝固第VIII因子，血液凝固第IX因子等の血液凝固因子，エリスロポエチン，インターフェロン，トロンボモジュリン，卵胞刺激ホルモン，顆粒球コロニー刺激因子（G-CSF），ＤＮａｓｅＩ，甲状腺刺激ホルモン（TSH）又は各種抗体医薬をコードする遺伝子である。抗体医薬としては，マウス抗体，ヒト化マウス抗体，ヒト・マウスキメラ抗体，ヒト抗体等があり，例えば，ヒト・マウスキメラ抗ヒトCD20抗体であるリツキシマブがある。
本発明において，抗体を発現させる場合，抗体重鎖又は抗体軽鎖の何れかをコードする遺伝子が，ＧＳ遺伝子の発現を制御する遺伝子発現制御部位により，その発現が制御されるようにベクターに組込まれる一方，もう一方の鎖をコードする遺伝子は，これとは別に当該ベクター中に配置された遺伝子発現制御部位によりその発現が制御されるように組込まれる。このとき用いられる遺伝子発現部位は，抗体重鎖と抗体軽鎖が同等レベル発現するように，同じ種類の遺伝子発現部位を使用することが好ましい。
また，本発明において，ヘテロダイマーを形成する蛋白質を発現させる場合，ヘテロダイマーを形成する何れかのサブユニットをコードする遺伝子が，ＧＳ遺伝子の発現を制御する遺伝子発現制御部位によりその発現が制御されるように組込まれる一方，もう一方のサブユニットをコードする遺伝子は，これとは別に当該ベクター中に配置された遺伝子発現制御部位によりその発現が制御されるように組込まれる。このとき用いられる遺伝子発現部位は，２種のサブユニットが同等レベル発現するように，同じ種類の遺伝子発現部位を使用することが好ましい。このようなヘテロダイマーを形成する蛋白質としては，卵胞刺激ホルモン，甲状腺刺激ホルモン（TSH）がある。
本発明において，発現ベクターの哺乳動物細胞への導入は，哺乳動物細胞内において組換え体蛋白質をコードする遺伝子が発現されるようにする目的で行うものであり，この目的が達成できる限り如何なる方法を用いてもよい。発現ベクターは，通常環状のプラスミドであるが，これは，環状のままであっても，又は制限酵素で切断して直鎖状にしてからであっても，細胞に導入することができる。
本発明において，発現ベクターが導入される哺乳動物細胞は，目的の組換え体蛋白質が発現できるものである限り特に限定はないが，生体から取り出した臓器，筋組織，皮膚組織，結合組織，神経組織，血液，骨髄等から採取された細胞の初代培養細胞，継代培養細胞，及び継代培養しても形質が安定であるように株化された細胞の何れであってもよい。また，細胞は正常細胞，癌化細胞の何れであってもよい。特に好適に使用できる細胞は，チャイニーズハムスターの卵巣に由来するＣＨＯ細胞，ヒトの繊維芽細胞，及びアフリカミドリザルの腎線維芽細胞に由来するＣＯＳ細胞である。
また，発現ベクターが導入される哺乳動物細胞は，第２の選択マーカーに対応する内因性遺伝子に，変異を有する細胞であってもよい。
第２の選択マーカーに対応する内因性遺伝子の変異が，当該遺伝子の発現を減少又は欠損させるものであるか，又は内因性遺伝子がコードする蛋白質の機能を低下又は喪失させるものである場合，第２の選択マーカーによる選択時において，選択物質による選択圧が，外因性の第２の選択マーカーに強くかかり，第２の選択マーカーの重複がより促進される。例えば，第２の選択マーカーがＤＨＦＲ遺伝子の場合，内因性ＤＨＦＲ遺伝子の変異が，ジヒドロ葉酸レダクターゼの発現量を減少させ又はジヒドロ葉酸レダクターゼを欠損させるものである場合，ＤＨＦＲ遺伝子による選択時において，ＤＨＦＲ阻害剤による選択圧が専ら外因性ＤＨＦＲ遺伝子にかかり，外因性ＤＨＦＲ遺伝子の重複がより促進される。
従って，第２の選択マーカーに対応する内因性遺伝子に変異を有する細胞を使用することによって，所望の蛋白質を高発現する細胞を，より効率よく取得することができる。
発現ベクターが導入された哺乳動物細胞（発現ベクター導入細胞）は，ＧＳ遺伝子による選択に先立ち，細胞を第２の選択マーカーにより選択するための選択培地で培養される。このときの培地は，第２の選択マーカーがＤＨＦＲの場合，ＤＨＦＲ阻害剤を添加した培地である。このとき，アミノプテリン，メトトレキセート（MTX）がＤＨＦＲ阻害剤として好適に用いられる。また，第２の選択マーカーが薬剤耐性遺伝子の場合，その薬剤耐性遺伝子に対応する薬剤である。
第２の選択マーカーとしてＤＨＦＲを使用する場合，発現ベクターを導入する哺乳動物細胞として，内因性ＤＨＦＲ遺伝子に，ＤＨＦＲの発現量を減少又は欠損させるものである変異を有するものを使用できる。このような細胞には，例えばDG44株がある。DG44株は，内因性ＤＨＦＲ遺伝子を発現しておらず，従って当該細胞株を用いた場合，選択培養における選択圧が外因性ＤＨＦＲ遺伝子にのみにかかるので，外因性ＤＨＦＲ遺伝子を重複により効率よく増加させることができる。選択培養は，アミノプテリン，メトトレキセート（MTX）等のＤＨＦＲ阻害剤を含有する選択培地で行うことができる。このとき，ＤＨＦＲ阻害剤を段階的に上昇させることにより，よりＤＨＦＲの発現量が高い細胞が得られる。選択培地中に添加されるＤＨＦＲ阻害剤を段階的に上昇させる場合，その最大濃度は，ＤＨＦＲ阻害剤がメトトレキセートの場合，好ましくは0.25〜5μMであり，より好ましくは0.5〜1.5μMであり，更に好ましくは約1.0μMである。
また，ＤＨＦＲ遺伝子を欠損する細胞株は，ヒポキサンチン及びチミジンに対する栄養要求性を有するので，細胞を維持し又は増殖させるための培養はこれらを添加した培地で行われる。一方，外因性ＤＨＦＲ遺伝子を導入した細胞は，ヒポキサンチン及びチミジンに対する栄養要求性がないので，これらを培地に添加する必要はない。従って，第２の選択マーカーとしてＤＨＦＲ遺伝子を含む発現ベクターを，内因性ＤＨＦＲ遺伝子の欠損等により内因性ＤＨＦＲ遺伝子に由来するＤＨＦＲ活性を持たないか又はほとんど持たない細胞に導入した場合，選択培地として，ヒポキサンチン及びチミジン不含培地を用いることによっても，外因性ＤＨＦＲ遺伝子が導入された細胞を選択培養できる。また，ヒポキサンチン及びチミジン不含培地にＤＨＦＲ阻害剤を添加した培地を，選択培地として使用することもできる。
次いで，発現ベクター導入細胞は，ＧＳ遺伝子の導入された細胞を選択するための培地で培養される。このときの培地は，グルタミン合成酵素阻害剤（例えば，MSXなど）を添加したグルタミン不含又は低グルタミン培地中である。
選択培地中に添加されるＧＳ阻害剤の濃度を段階的に上昇させることにより，ＧＳ遺伝子の発現量がより多い発現ベクター導入細胞を選択することができる。これは，選択培養の過程で，発現ベクター導入細胞のゲノム中に組み込まれたＧＳ遺伝子の数が重複により増加し，ＧＳ遺伝子の発現量が相対的に増加した発現ベクター導入細胞のみが選択的に増殖することなどに起因する。このとき，発現ベクターに組み込んだ組換え体蛋白質をコードする遺伝子のコピー数も増加するので，該遺伝子の発現量も増加する。従って，発現ベクター導入細胞をこのように選択培養することにより，所望の組換え体蛋白質の発現量が相対的に多い発現ベクター導入細胞を選択することができる。本明細書においては，このように選択された発現ベクター導入細胞を，形質転換細胞という。
本発明において，選択培地中に添加されるＧＳ阻害剤の濃度を段階的に上昇させる場合において，その最大濃度は，ＧＳ阻害剤がメチオニンスルホキシミン（MSX）の場合，好ましくは100〜1000μMであり，より好ましくは200〜500μMであり，更に好ましくは約300μMである。
本発明において，ＧＳ遺伝子を選択マーカーによる選択培養をする前に，発現ベクターを導入した細胞を，第２の選択培養による選択培養に加えて，第３の選択マーカーにより選択するための選択培地で選択培養することもできる。この場合，第３の選択マーカーによる選択培養は，第２の選択培養の前後の何れで行ってもよい。第３の選択マーカーは薬剤耐性遺伝子である。従って，選択培地には，薬剤耐性遺伝子に対応する薬剤が添加される。このとき，選択培地の当該薬剤の濃度を段階的に上昇させることにより，より薬剤耐性遺伝子の発現量が高い細胞が得られる。選択培地中に添加される薬剤耐性遺伝子に対応する薬剤の濃度を段階的に上昇させる場合において，薬剤がピューロマイシンの場合，その最大濃度は，好ましくは3〜30μMであり，より好ましくは5〜20μMであり，更に好ましくは約10μMである。また、薬剤がG418の場合、その最大濃度は、好ましくは0.4〜1.5mg/mLであり、より好ましくは0.8〜1.2 mg/mLであり、更に好ましくは約1 mg/mLである。
以下，実施例を参照して本発明を更に詳細に説明するが，本発明が実施例に限定されることは意図しない。
〔pE-neoベクター及びpE-hygrベクターの構築〕
pEF/myc/nucベクター（インビトロジェン社）を，KpnIとNcoIで消化し，EF-1プロモーター及びその第一イントロンを含む領域を切り出し，これをＴ４ＤＮＡポリメラーゼで平滑末端化処理した。別に，pCI-neo（インビトロジェン社）を，BglII及びEcoRIで消化して，CMVのエンハンサー／プロモーター及びイントロンを含む領域を切除した後に，T4 DNA ポリメラーゼで平滑末端化処理した。これに，上記のEF-1αプロモーター及びその第一イントロンを含む領域（平滑末端化処理後のもの）を挿入して，pE-neoベクターを構築した（図１−１及び図１−２）。
pEF/myc/nucベクター（インビトロジェン社）を，KpnIとNcoIで消化し，EF-1プロモーター及びその第一イントロンを含む領域を切り出し，これをＴ４ＤＮＡポリメラーゼで平滑末端化処理した。別に，pCI-neo（インビトロジェン社）を，BglII及びEcoRIで消化して，CMVのエンハンサー／プロモーター及びイントロンを含む領域を切除した後に，T4 DNA ポリメラーゼで平滑末端化処理した。これに，上記のEF-1αプロモーター及びその第一イントロンを含む領域（平滑末端化処理後のもの）を挿入して，pE-neoベクターを構築した（図１−１及び図１−２）。
pE-neoベクターを，SfiI及びBstXIで消化し，ネオマイシン耐性遺伝子を含む約１kbpの領域を切除した（図２−１）。pcDNA3.1/Hygro(+)（インビトロジェン社）を鋳型にしてプライマーHyg-Sfi5'（配列番号１３）及びプライマーHyg-BstX3'（配列番号１４）を用いて，ＰＣＲ反応によりハイグロマイシン遺伝子を増幅した（図２−２）。増幅したハイグロマイシン遺伝子を，SfiI及びBstXIで消化し，上記のpE-neoベクターに挿入して，pE-hygrベクターを構築した（図２−３）。
〔pE-IRES-GS-puroの構築〕
発現ベクターpPGKIH（Miyahara M. et.al., J. Biol. Chem. 275,613-618(2000) ）を制限酵素（XhoI及びBamHI）で消化し，マウス脳心筋炎ウイルス（EMCV）に由来する内部リボソーム結合部位（IRES），ハイグロマイシン耐性遺伝子(Hygr遺伝子)及びマウスホスホグリセリン酸キナーゼ(mPGK)のポリアデニル化領域(mPGKpA)を含む塩基配列IRES-Hygr-mPGKpA（配列番号１５。5'末端から，塩基1〜6からなる領域が「XhoIサイト」，塩基120〜715及びこれに続く塩基716〜718（atg）からなる領域が「マウス脳心筋炎ウイルスの5'非翻訳領域に由来する内部リボソーム結合部位を含む塩基配列」，該塩基716〜718（atg）を含む塩基716〜1741からなる領域が「ハイグロマイシン耐性遺伝子をコードする塩基配列」，塩基1747〜2210からなる領域が「マウスホスホグリセリン酸キナーゼ(mPGK)のポリアデニル化領域を含む塩基配列」，及び3'末端の6個の塩基（塩基2211〜2216）からなる領域が「BamHIサイト」である。）よりなるDNA断片を切り出した（なお，Hygrr遺伝子に対応するアミノ酸配列は，配列番号１６で示されたものである。）。このDNA断片をpBluescript SK(-) （Stratagene社）のXhoI及びBamHIサイト間に挿入し，これをpBSK（IRES-Hygr-mPGKpA）とした（図３−１）。
発現ベクターpPGKIH（Miyahara M. et.al., J. Biol. Chem. 275,613-618(2000) ）を制限酵素（XhoI及びBamHI）で消化し，マウス脳心筋炎ウイルス（EMCV）に由来する内部リボソーム結合部位（IRES），ハイグロマイシン耐性遺伝子(Hygr遺伝子)及びマウスホスホグリセリン酸キナーゼ(mPGK)のポリアデニル化領域(mPGKpA)を含む塩基配列IRES-Hygr-mPGKpA（配列番号１５。5'末端から，塩基1〜6からなる領域が「XhoIサイト」，塩基120〜715及びこれに続く塩基716〜718（atg）からなる領域が「マウス脳心筋炎ウイルスの5'非翻訳領域に由来する内部リボソーム結合部位を含む塩基配列」，該塩基716〜718（atg）を含む塩基716〜1741からなる領域が「ハイグロマイシン耐性遺伝子をコードする塩基配列」，塩基1747〜2210からなる領域が「マウスホスホグリセリン酸キナーゼ(mPGK)のポリアデニル化領域を含む塩基配列」，及び3'末端の6個の塩基（塩基2211〜2216）からなる領域が「BamHIサイト」である。）よりなるDNA断片を切り出した（なお，Hygrr遺伝子に対応するアミノ酸配列は，配列番号１６で示されたものである。）。このDNA断片をpBluescript SK(-) （Stratagene社）のXhoI及びBamHIサイト間に挿入し，これをpBSK（IRES-Hygr-mPGKpA）とした（図３−１）。
pBSK (IRES-Hygr-mPGKpA)を鋳型とし，プライマーIRES5'（配列番号１７）及びプライマーIRES3'（配列番号１８）を用いて，PCRによりEMCVのIRESの一部を含むDNA断片を増幅させた。このDNA断片を制限酵素（XhoI及びHindIII）で消化し，pBSK
(IRES-Hygr-mPGKpA) のXhoI及びHindIIIサイト間に挿入し，これをpBSK (NotI-IRES-Hygr-mPGKpA) とした（図３−２）。pBSK（NotI-IRES-Hygr-mPGKpA）を制限酵素（NotI及びBamHI）で消化し，pE-hygrベクターのNotI及びBamHIサイト間に挿入し，これをプラスミドpE-IRES-Hygrとした（図３−３）。
(IRES-Hygr-mPGKpA) のXhoI及びHindIIIサイト間に挿入し，これをpBSK (NotI-IRES-Hygr-mPGKpA) とした（図３−２）。pBSK（NotI-IRES-Hygr-mPGKpA）を制限酵素（NotI及びBamHI）で消化し，pE-hygrベクターのNotI及びBamHIサイト間に挿入し，これをプラスミドpE-IRES-Hygrとした（図３−３）。
発現ベクターpPGKIHを鋳型とし，プライマーmPGKP5'（配列番号１９）及びプライマーmPGKP3'（配列番号２０）を用いて，PCRによりmPGKのプロモーター領域（mPGKp）を含む塩基配列（配列番号２１。5'末端から，塩基4〜9が「BglIIサイト」，これに続く塩基10〜516からなる領域が「マウスホスホグリセリン酸キナーゼ遺伝子のプロモーター領域（mPGKp）を含む塩基配列」，これに続く塩基524〜529からなる領域が「EcoRIサイト」である。）よりなるDNA断片を増幅させた。このDNA断片を制限酵素（BglII及びEcoRI）で消化し，pCI-neo（Promega社）のBglII及びEcoRIサイト間に挿入し，これをpPGK-neoとした（図３−４）。pE-IRES-Hygrを制限酵素（NotI及びBamHI）で消化してDNA断片（IRES-Hygr）を切り出し，pPGK-neoのNotI及びBamHIサイト間に挿入し，これをpPGK-IRES-Hygrとした（図３−５）。
CHO-K1細胞からcDNAを調製し，これを鋳型とし，プライマーGS5'（配列番号２２）及びプライマーGS3'（配列番号２３）を用いて，PCRによりGS遺伝子を含むDNA断片を増幅させた。このDNA断片を制限酵素（BalI及びBamHI）で消化し，pPGK-IRES-HygrのBalI及びBamHIサイト間に挿入し，これをpPGK-IRES-GS-ΔpolyAとした（図３−６）。
pCAGIPuro（Miyahara
M. et.al., J. Biol. Chem. 275,613-618(2000)）を鋳型とし，プライマーpuro5'（配列番号２４）及びプライマーpuro3'（配列番号２５）を用いて，PCRによりピューロマイシン耐性遺伝子（puror遺伝子）を含む塩基配列（配列番号２６。5'末端から，塩基2〜7からなる領域が「AflIIサイト」，これに続く塩基8〜607からなる領域が「ピューロマイシン耐性遺伝子（puror遺伝子）をコードする塩基配列」，及び，その次の塩基608〜619からなる領域が「BstXIサイト」である。）よりなるDNA断片を増幅させた（なお，puror遺伝子に対応するアミノ酸配列は，配列番号２７で示されたものである。）。このDNA断片を制限酵素（AflII及びBstXI）で消化し，発現ベクターpE-neoのAflII及びBstXIサイト間に挿入し，これをpE-puroとした（図３−７）。
M. et.al., J. Biol. Chem. 275,613-618(2000)）を鋳型とし，プライマーpuro5'（配列番号２４）及びプライマーpuro3'（配列番号２５）を用いて，PCRによりピューロマイシン耐性遺伝子（puror遺伝子）を含む塩基配列（配列番号２６。5'末端から，塩基2〜7からなる領域が「AflIIサイト」，これに続く塩基8〜607からなる領域が「ピューロマイシン耐性遺伝子（puror遺伝子）をコードする塩基配列」，及び，その次の塩基608〜619からなる領域が「BstXIサイト」である。）よりなるDNA断片を増幅させた（なお，puror遺伝子に対応するアミノ酸配列は，配列番号２７で示されたものである。）。このDNA断片を制限酵素（AflII及びBstXI）で消化し，発現ベクターpE-neoのAflII及びBstXIサイト間に挿入し，これをpE-puroとした（図３−７）。
pE-puroを鋳型とし，プライマーSV40polyA5'（配列番号２８）及びプライマーSV40polyA3'（配列番号２９）を用いて，PCRによりSV40後期ポリアデニル化領域を含むDNA断片を増幅させた。このDNA断片を制限酵素（NotI及びHpaI）で消化し，発現ベクターpE-puroのNotI及びHpaIサイト間に挿入し，これをpE-puro（XhoI）とした（図３−８）。pPGK-IRES-GS-ΔpolyAを制限酵素（NotI及びXhoI）で消化し，IRES-GS領域を含むDNA断片を切り出し，これを発現ベクターpE-puro（XhoI）のNotI及びXhoIサイト間に挿入し，これをpE-IRES-GS-puroとした（図３−９）。
〔pE-mIRES-GS-puroの構築〕
発現ベクターpE-IRES-GS-puroを鋳型とし，プライマーmIRES-GS5'（配列番号３０）及びプライマーmIRES-GS3'（配列番号３１）を用いて，PCRにより，EMCVのIRESからGSにかけての領域を増幅させ，EMCVのIRESの5'側から2番目に位置する開始コドン（ATG）に変異を加えて破壊したDNA断片を増幅させた。発現ベクターpE-IRES-GS-puroを鋳型として，このDNA断片と上記のプライマーIRES5'を用いて，PCRによりIRESからGSにかけての上記領域を含むDNA断片を増幅させた。このDNA断片を制限酵素（NotI及びPstI）で消化し，切り出されたDNA断片を，発現ベクターpE-IRES-GS-puroのNotI及びPstIサイト間に挿入し，これをpE-mIRES-GS-puroとした（図４）。
発現ベクターpE-IRES-GS-puroを鋳型とし，プライマーmIRES-GS5'（配列番号３０）及びプライマーmIRES-GS3'（配列番号３１）を用いて，PCRにより，EMCVのIRESからGSにかけての領域を増幅させ，EMCVのIRESの5'側から2番目に位置する開始コドン（ATG）に変異を加えて破壊したDNA断片を増幅させた。発現ベクターpE-IRES-GS-puroを鋳型として，このDNA断片と上記のプライマーIRES5'を用いて，PCRによりIRESからGSにかけての上記領域を含むDNA断片を増幅させた。このDNA断片を制限酵素（NotI及びPstI）で消化し，切り出されたDNA断片を，発現ベクターpE-IRES-GS-puroのNotI及びPstIサイト間に挿入し，これをpE-mIRES-GS-puroとした（図４）。
〔pE-mIRES-GSの構築〕
発現ベクターpE-neoを鋳型とし，プライマーSV40polyA5'-2（配列番号３２）及びプライマーSV40polyA3'-2（配列番号３３）を用いて，PCRによりSV40 後期polyA領域を含むDNA断片を増幅させた。このDNA断片を制限酵素（XhoI及びBamHI）で消化し，pE-mIRES-GS-puroのXhoI及びBamHIサイト間に挿入し，これをpE-mIRES-GSとした（図５）。
発現ベクターpE-neoを鋳型とし，プライマーSV40polyA5'-2（配列番号３２）及びプライマーSV40polyA3'-2（配列番号３３）を用いて，PCRによりSV40 後期polyA領域を含むDNA断片を増幅させた。このDNA断片を制限酵素（XhoI及びBamHI）で消化し，pE-mIRES-GS-puroのXhoI及びBamHIサイト間に挿入し，これをpE-mIRES-GSとした（図５）。
〔ヒト甲状腺刺激ホルモン（hTSH）発現ベクターの構築〕
〔pE-mIRES-GS-mNeoの構築〕
pCI-neo(インビトロジェン社)を鋳型とし，プライマーmNeoA5'（配列番号３４）及びプライマーmNeoA3'（配列番号３５）を用いて，PCRによりこのプラスミド全長を増幅させ，セルフライゲーションによりE182D変異型ネオマイシン耐性遺伝子（mNeor遺伝子）を含むプラスミドpCI-mNeoを構築した。pCI-mNeoベクターを鋳型としてプライマーmNeoB5'（配列番号３６）及びプライマーmNeoB3'（配列番号３７）を用いてPCRによりmNeor遺伝子を含むDNA断片を増幅させた。このDNA断片を制限酵素（EagI）で消化し，pUC57-IE1（Gene
Script社）のNotIに挿入し，これをpUC57-IE1-mNeoとした。pCI-neoを鋳型とし，プライマーmNeoC5'（配列番号３８）及びプライマーmNeoC3'（配列番号３９）を用いて，PCRによりネオマイシン耐性遺伝子（neor遺伝子）の3'領域及び合成ポリAシグナルを含む領域を増幅させ，これをメガプライマー(neo-polyA)とした。次に，pUC57-IE1-mNeoを鋳型とし，，プライマーmNeoD5'（配列番号４０）及びメガプライマー(neo-polyA)を用いて，PCRによりmNeor遺伝子及び合成ポリAシグナルを含む領域を増幅させた。得られたDNA断片を制限酵素（AflII及びBamHI）で消化し，pE-mIRES-GS-puroのAflII及びBamHIサイト間に挿入し，これをpE-mIRES-GS-mNeoとした（図６）。
〔pE-mIRES-GS-mNeoの構築〕
pCI-neo(インビトロジェン社)を鋳型とし，プライマーmNeoA5'（配列番号３４）及びプライマーmNeoA3'（配列番号３５）を用いて，PCRによりこのプラスミド全長を増幅させ，セルフライゲーションによりE182D変異型ネオマイシン耐性遺伝子（mNeor遺伝子）を含むプラスミドpCI-mNeoを構築した。pCI-mNeoベクターを鋳型としてプライマーmNeoB5'（配列番号３６）及びプライマーmNeoB3'（配列番号３７）を用いてPCRによりmNeor遺伝子を含むDNA断片を増幅させた。このDNA断片を制限酵素（EagI）で消化し，pUC57-IE1（Gene
Script社）のNotIに挿入し，これをpUC57-IE1-mNeoとした。pCI-neoを鋳型とし，プライマーmNeoC5'（配列番号３８）及びプライマーmNeoC3'（配列番号３９）を用いて，PCRによりネオマイシン耐性遺伝子（neor遺伝子）の3'領域及び合成ポリAシグナルを含む領域を増幅させ，これをメガプライマー(neo-polyA)とした。次に，pUC57-IE1-mNeoを鋳型とし，，プライマーmNeoD5'（配列番号４０）及びメガプライマー(neo-polyA)を用いて，PCRによりmNeor遺伝子及び合成ポリAシグナルを含む領域を増幅させた。得られたDNA断片を制限酵素（AflII及びBamHI）で消化し，pE-mIRES-GS-puroのAflII及びBamHIサイト間に挿入し，これをpE-mIRES-GS-mNeoとした（図６）。
〔pBlue-EF1/mIRES-mNeoの構築〕
pE-mIRES-GS-mNeoを制限酵素（EcoRI）で消化し，伸長因子１プロモーター（EF-1p），変異型内部リボソーム結合部位（mIRES）及びグルタミン合成酵素（GS）の一部を含むDNA断片を切り出した。このDNA断片をpBluescript
SK(+) （Stratagene社）のEcoRIサイトに挿入し，これをpBlue-EF1/mIRESとした（図７）。
pE-mIRES-GS-mNeoを制限酵素（EcoRI）で消化し，伸長因子１プロモーター（EF-1p），変異型内部リボソーム結合部位（mIRES）及びグルタミン合成酵素（GS）の一部を含むDNA断片を切り出した。このDNA断片をpBluescript
SK(+) （Stratagene社）のEcoRIサイトに挿入し，これをpBlue-EF1/mIRESとした（図７）。
pE-mIRES-GS-mNeoを制限酵素（PvuI）で消化し，変異型ネオマイシン耐性遺伝子（mNeor遺伝子）を含むDNA断片，及び，SV40 後期polyA領域を含むDNA断片を切り出した。このSV40 後期polyA領域を含むDNA断片を鋳型として，プライマーSVpA-Mega-F（配列番号４１）及びプライマーSVpA-BstXI-R（配列番号４２）を用い，PCRによりSV40 後期polyA領域を含む当該DNA断片を増幅させた。この遺伝子断片と上記mNeor遺伝子を含むDNA断片とをPCRにより繋ぎ合わせて，mNeor遺伝子の下流にSV40 後期polyA領域を含むDNA断片を作製した。このDNA断片を制限酵素（BstXI）で消化し，pBlue-EF1/mIRESのBstXIサイト間に挿入し，これをpBlue-EF1/mIRES-mNeoとした（図７）。
〔pBlue-EF1/SVpAの構築〕
発現ベクターpE-mIRES-GS-mNeoを鋳型とし，プライマーSVpA-Not-F（配列番号４３）及びプライマーSVpA-BstXI-R（配列番号４４）を用いて，PCRによりSV40 後期polyA領域を含むDNA断片を増幅させた。このDNA断片を制限酵素（NotI及びBstXI）で消化し，pBlue-EF1/mIRESのNotI及びBstXIサイト間に挿入し，これをpBlue-EF1/SVpAとした（図８）。
発現ベクターpE-mIRES-GS-mNeoを鋳型とし，プライマーSVpA-Not-F（配列番号４３）及びプライマーSVpA-BstXI-R（配列番号４４）を用いて，PCRによりSV40 後期polyA領域を含むDNA断片を増幅させた。このDNA断片を制限酵素（NotI及びBstXI）で消化し，pBlue-EF1/mIRESのNotI及びBstXIサイト間に挿入し，これをpBlue-EF1/SVpAとした（図８）。
〔pE-mDHFR31の構築〕
マウスの野生型DHFRのN末端から31位のフェニルアラニンがトリプトファンに置換されたものである配列番号１１の変異型DHFR（F31W）遺伝子（mDHFR31）を含むDNA（配列番号４５）を合成した。このDNAをpGEM-T easy vector（Promega社）の3'-T overhangs箇所に挿入し，これをpGEM(mDHFR31)とした。pGEM(mDHFR31)を制限酵素（AflII及びBstXI）で消化し，変異型DHFR（F31W）を含むDNA断片を切り出し，このDNA断片をpE-neoのAflII及びBstXIサイト間に挿入し，これをpE-mDHFR31とした（図９）。
マウスの野生型DHFRのN末端から31位のフェニルアラニンがトリプトファンに置換されたものである配列番号１１の変異型DHFR（F31W）遺伝子（mDHFR31）を含むDNA（配列番号４５）を合成した。このDNAをpGEM-T easy vector（Promega社）の3'-T overhangs箇所に挿入し，これをpGEM(mDHFR31)とした。pGEM(mDHFR31)を制限酵素（AflII及びBstXI）で消化し，変異型DHFR（F31W）を含むDNA断片を切り出し，このDNA断片をpE-neoのAflII及びBstXIサイト間に挿入し，これをpE-mDHFR31とした（図９）。
〔pCI-neo(hTSHα-WAP3'UTR)及びpCI-neo(hTSHβ-WAP3'UTR)の構築〕
ヒト甲状腺刺激ホルモンのα鎖（hTSHα）遺伝子を含むDNA（配列番号４６。5'末端から，塩基1〜6からなる領域が「MluIサイト」，塩基14〜364からなる領域が「hTSHα鎖をコードする塩基配列」，及び，これに続く塩基365〜372からなる領域が「NotIサイト」である。），及びヒト甲状腺刺激ホルモンのβ鎖（hTSHβ）遺伝子を含むDNA（配列番号４７。5'末端から，塩基1〜6からなる領域が「MluIサイト」，塩基14〜433からなる領域が「TSHβ鎖をコードする塩基配列」，及び，これに続く塩基434〜441からなる領域が「NotIサイト」である。）を合成し，それぞれpUC57に組み込んで，pUC57-hTSHα，pUC57-hTSHβとした（Shanghai ShineGene Molecular
Biotech社）。また，ウサギ乳清酸性タンパク質（WAP）の3'側非翻訳領域（WAP3'UTR）を含むDNA（配列番号４８）を合成し，pUC57に組み込んで，pUC57-WAP3'UTRとした（Shanghai ShineGene Molecular Biotech社）。
ヒト甲状腺刺激ホルモンのα鎖（hTSHα）遺伝子を含むDNA（配列番号４６。5'末端から，塩基1〜6からなる領域が「MluIサイト」，塩基14〜364からなる領域が「hTSHα鎖をコードする塩基配列」，及び，これに続く塩基365〜372からなる領域が「NotIサイト」である。），及びヒト甲状腺刺激ホルモンのβ鎖（hTSHβ）遺伝子を含むDNA（配列番号４７。5'末端から，塩基1〜6からなる領域が「MluIサイト」，塩基14〜433からなる領域が「TSHβ鎖をコードする塩基配列」，及び，これに続く塩基434〜441からなる領域が「NotIサイト」である。）を合成し，それぞれpUC57に組み込んで，pUC57-hTSHα，pUC57-hTSHβとした（Shanghai ShineGene Molecular
Biotech社）。また，ウサギ乳清酸性タンパク質（WAP）の3'側非翻訳領域（WAP3'UTR）を含むDNA（配列番号４８）を合成し，pUC57に組み込んで，pUC57-WAP3'UTRとした（Shanghai ShineGene Molecular Biotech社）。
hTSHα遺伝子を含むpUC57-hTSHαを鋳型とし，プライマーTSHα5'（配列番号４９）及びプライマーTSHα3'（配列番号５０）を用いて，PCRによりTSHα遺伝子を含むDNA断片を増幅させ，得られたDNA断片をメガプライマーTSHαとした。また，hTSHβ遺伝子を含むDNAを鋳型とし，プライマーTSHβ5'（配列番号５１）及びプライマーTSHβ3'（配列番号５２）を用いて，PCRによりTSHβ遺伝子を含むDNA断片を増幅させ，得られたDNA断片をメガプライマーTSHβとした。
WAP3'UTRを含むpUC57-
WAP3'UTRを鋳型とし，メガプライマーTSHαとプライマーWAP3'（配列番号５３）を用いて，PCRによりTSHα遺伝子とその下流にWAP3'UTRを有するDNA断片を増幅させた（hTSHα-WAP3'UTR）。また，WAP3'UTRを含むpUC57- WAP3'UTRを鋳型とし，メガプライマーTSHβとプライマーWAP3'を用いて，PCRによりTSHβ遺伝子とその下流にWAP3'UTRを有するDNA断片を増幅させた（hTSHβ-WAP3'UTR）。得られた各DNA断片を制限酵素（MluI及びNotI）で消化し，pCI-neoのMluI及びNotIサイト間に挿入し，それぞれpCI-neo（hTSHα-WAP3'UTR）及びpCI-neo（hTSHβ-WAP3'UTR）とした（図１０−１及び図１０−２）。
WAP3'UTRを鋳型とし，メガプライマーTSHαとプライマーWAP3'（配列番号５３）を用いて，PCRによりTSHα遺伝子とその下流にWAP3'UTRを有するDNA断片を増幅させた（hTSHα-WAP3'UTR）。また，WAP3'UTRを含むpUC57- WAP3'UTRを鋳型とし，メガプライマーTSHβとプライマーWAP3'を用いて，PCRによりTSHβ遺伝子とその下流にWAP3'UTRを有するDNA断片を増幅させた（hTSHβ-WAP3'UTR）。得られた各DNA断片を制限酵素（MluI及びNotI）で消化し，pCI-neoのMluI及びNotIサイト間に挿入し，それぞれpCI-neo（hTSHα-WAP3'UTR）及びpCI-neo（hTSHβ-WAP3'UTR）とした（図１０−１及び図１０−２）。
〔pE-mIRES-GS-mNeo(hTSHβ)の構築〕
pCI-neo(hTSHβ-WAP3'UTR)を制限酵素（MluI及びNotI）で消化し，hTSHβ遺伝子及びWAP3'UTRを含むDNA断片を切り出した。このDNA断片をpE-mIRES-GS-mNeoのMluI及びNotIサイト間に挿入し，これをpE-mIRES-GS-mNeo(hTSHβ)とした（図１１）。
pCI-neo(hTSHβ-WAP3'UTR)を制限酵素（MluI及びNotI）で消化し，hTSHβ遺伝子及びWAP3'UTRを含むDNA断片を切り出した。このDNA断片をpE-mIRES-GS-mNeoのMluI及びNotIサイト間に挿入し，これをpE-mIRES-GS-mNeo(hTSHβ)とした（図１１）。
〔pBlue-EF1/mIRES-mNeo(hTSHα)の構築〕
pCI-neo(hTSHα-WAP3'UTR)を制限酵素（MluI及びNotI）で消化し，hTSHα遺伝子及びWAP3'UTRを含むDNA断片を切り出した。このDNA断片をpBlue-EF1/mIRES-mNeoのMluI及びNotIサイト間に挿入し，これをpBlue-EF1/mIRES-mNeo(hTSHα)とした（図１２）。
pCI-neo(hTSHα-WAP3'UTR)を制限酵素（MluI及びNotI）で消化し，hTSHα遺伝子及びWAP3'UTRを含むDNA断片を切り出した。このDNA断片をpBlue-EF1/mIRES-mNeoのMluI及びNotIサイト間に挿入し，これをpBlue-EF1/mIRES-mNeo(hTSHα)とした（図１２）。
〔pE-mIRES-GS-mNeo-dual(hTSH)の構築〕
pBlue-EF1/mIRES-mNeo(hTSHα)を制限酵素（ClaI及びBglII）で消化し，伸長因子１プロモーター（EF-1p），hTSHα遺伝子，mIRES及び変異型ネオマイシン耐性遺伝子（mNeor遺伝子）を含むDNA断片を切り出した。このDNA断片をpE-mIRES-GS-mNeo(hTSHβ)のClaI及びBamHIサイト間に挿入し，これをヒト甲状腺刺激ホルモン（hTSH）発現用ベクターのpE-mIRES-GS-mNeo-dual(hTSH)とした（図１３）。
pBlue-EF1/mIRES-mNeo(hTSHα)を制限酵素（ClaI及びBglII）で消化し，伸長因子１プロモーター（EF-1p），hTSHα遺伝子，mIRES及び変異型ネオマイシン耐性遺伝子（mNeor遺伝子）を含むDNA断片を切り出した。このDNA断片をpE-mIRES-GS-mNeo(hTSHβ)のClaI及びBamHIサイト間に挿入し，これをヒト甲状腺刺激ホルモン（hTSH）発現用ベクターのpE-mIRES-GS-mNeo-dual(hTSH)とした（図１３）。
〔pE-mIRES-GS-mNeo-dual+mDHFR31(hTSH)の構築〕
pE-mDHFR31を鋳型として，プライマーdE-BbsI-F（配列番号５４）及びプライマーSynpA-BbsI-R（配列番号５５）を用いてPCRによりSV40初期プロモーター（ＳＶ４０エンハンサー／プロモーター），変異型DHFR（F31W）及び合成ポリアデニレーションシグナル(合成ポリアデニル化領域）を含むDNA断片を増幅させた。得られたDNA断片を制限酵素（BbsI）で消化し，pE-mIRES-GS-mNeo-dual(hTSH)のBsmBIサイト間に挿入し，これをヒト甲状腺刺激ホルモン（hTSH）発現用ベクターのpE-mIRES-GS-mNeo-dual+mDHFR31(hTSH)とした（図１４）。
pE-mDHFR31を鋳型として，プライマーdE-BbsI-F（配列番号５４）及びプライマーSynpA-BbsI-R（配列番号５５）を用いてPCRによりSV40初期プロモーター（ＳＶ４０エンハンサー／プロモーター），変異型DHFR（F31W）及び合成ポリアデニレーションシグナル(合成ポリアデニル化領域）を含むDNA断片を増幅させた。得られたDNA断片を制限酵素（BbsI）で消化し，pE-mIRES-GS-mNeo-dual(hTSH)のBsmBIサイト間に挿入し，これをヒト甲状腺刺激ホルモン（hTSH）発現用ベクターのpE-mIRES-GS-mNeo-dual+mDHFR31(hTSH)とした（図１４）。
〔pE-mIRES-GS-mNeo(RTX-H)の構築〕
リツキシマブ重鎖遺伝子を含むDNA（配列番号５６。5'末端から，塩基1〜6からなる領域が「MluIサイト」，塩基18〜1430からなる領域が「リツキシマブ重鎖をコードする塩基配列」，及び，これに続く塩基1431〜1438からなる領域が「NotIサイト」である。）を合成した。このDNAを制限酵素（MluI及びNotI）で消化し，得られたDNA断片をpE-mIRES-GS-mNeoのMluI及びNotIサイト間に挿入し，これをpE-mIRES-GS-mNeo(RTX-H)とした（図１５）。
リツキシマブ重鎖遺伝子を含むDNA（配列番号５６。5'末端から，塩基1〜6からなる領域が「MluIサイト」，塩基18〜1430からなる領域が「リツキシマブ重鎖をコードする塩基配列」，及び，これに続く塩基1431〜1438からなる領域が「NotIサイト」である。）を合成した。このDNAを制限酵素（MluI及びNotI）で消化し，得られたDNA断片をpE-mIRES-GS-mNeoのMluI及びNotIサイト間に挿入し，これをpE-mIRES-GS-mNeo(RTX-H)とした（図１５）。
〔pBlue-EF1/mIRES-mNeo(RTX-L)の構築〕
リツキシマブ軽鎖遺伝子を含むDNA（配列番号５７。5'末端から，塩基1〜6からなる領域が「MluIサイト」，塩基18〜725からなる領域が「リツキシマブ軽鎖をコードする塩基配列」，及び，これに続く塩基726〜733からなる領域が「NotIサイト」である。）を合成した。このDNAを制限酵素（MluI及びNotI）で消化し，得られたDNA断片をpBlue-EF1/mIRES-mNeoのMluI及びNotIサイト間に挿入し，これをpBlue-EF1/mIRES-mNeo(RTX-L)とした（図１６）。
リツキシマブ軽鎖遺伝子を含むDNA（配列番号５７。5'末端から，塩基1〜6からなる領域が「MluIサイト」，塩基18〜725からなる領域が「リツキシマブ軽鎖をコードする塩基配列」，及び，これに続く塩基726〜733からなる領域が「NotIサイト」である。）を合成した。このDNAを制限酵素（MluI及びNotI）で消化し，得られたDNA断片をpBlue-EF1/mIRES-mNeoのMluI及びNotIサイト間に挿入し，これをpBlue-EF1/mIRES-mNeo(RTX-L)とした（図１６）。
〔pE-mIRES-GS-mNeo-dual(RTX)の構築〕
pBlue-EF1/mIRES-mNeo(RTX-L)を制限酵素（ClaI及びBglII）で消化し，得られたDNA断片をpE-mIRES-GS-mNeo(RTX-H)のClaI及びBamHIサイト間に挿入し，これをリツキシマブ発現用ベクターのpE-mIRES-GS-mNeo-dual(RTX)とした（図１７）。
pBlue-EF1/mIRES-mNeo(RTX-L)を制限酵素（ClaI及びBglII）で消化し，得られたDNA断片をpE-mIRES-GS-mNeo(RTX-H)のClaI及びBamHIサイト間に挿入し，これをリツキシマブ発現用ベクターのpE-mIRES-GS-mNeo-dual(RTX)とした（図１７）。
〔pE-mIRES-GS-dual+mDHFR31(RTX)の構築〕
配列番号５７のリツキシマブ軽鎖遺伝子を含むDNAを含む合成DNAを，制限酵素（MluI及びNotI）で消化し，得られたDNA断片をpBlue-EF1/SVpAのMluI及びNotIサイト間に挿入し，これをpBlue-EF1/SVpA(RTX-L)とした（図１８−１）。
配列番号５７のリツキシマブ軽鎖遺伝子を含むDNAを含む合成DNAを，制限酵素（MluI及びNotI）で消化し，得られたDNA断片をpBlue-EF1/SVpAのMluI及びNotIサイト間に挿入し，これをpBlue-EF1/SVpA(RTX-L)とした（図１８−１）。
pBlue-EF1/SVpA(RTX-L)を，制限酵素（ClaI及びBglII）で消化し，得られたDNA断片をpE-mIRES-GS-mNeo(RTX-H)のClaI及びBamHIサイト間に挿入し，これをpE-mIRES-GS-dual(RTX)とした（図１８−２）。
pE-mDHFR31を鋳型として，プライマーdE-BbsI-F（配列番号５８）及びプライマーSynpA-BbsI-R（配列番号５９）を用いてPCRによりSV40初期プロモーター（ＳＶ４０エンハンサー／プロモーター，変異型DHFR（F31W）及び合成ポリアデニレーションシグナルを含むDNA断片を増幅させた。このDNA断片を制限酵素（BbsI）で消化し，pE-mIRES-GS-dual(RTX)のBsmBIサイト間に挿入し，これをリツキシマブ発現用ベクターのpE-mIRES-GS-dual+mDHFR31(RTX)とした（図１８−３）。
pE-mDHFR31を鋳型として，プライマーdE-BbsI-F（配列番号５８）及びプライマーSynpA-BbsI-R（配列番号５９）を用いてPCRによりSV40初期プロモーター（ＳＶ４０エンハンサー／プロモーター，変異型DHFR（F31W）及び合成ポリアデニレーションシグナルを含むDNA断片を増幅させた。このDNA断片を制限酵素（BbsI）で消化し，pE-mIRES-GS-dual(RTX)のBsmBIサイト間に挿入し，これをリツキシマブ発現用ベクターのpE-mIRES-GS-dual+mDHFR31(RTX)とした（図１８−３）。
〔hTSH発現細胞及びリツキシマブ発現細胞の作成〕
チャイニーズハムスターの卵巣に由来する細胞のCHO-K1細胞をエレクトロポレーション（Invitrogen社）により，pE-mIRES-GS-mNeo-dual(hTSH)，pE-mIRES-GS-mNeo-dual+mDHFR31(hTSH)，pE-mIRES-GS-mNeo-dual(RTX)及びpE-mIRES-GS-dual+mDHFR31(RTX)でそれぞれ形質転換した。形質転換後の細胞を，選択培地を用いて選択培養を行い，hTSH発現細胞及びRTX発現細胞を得た。
チャイニーズハムスターの卵巣に由来する細胞のCHO-K1細胞をエレクトロポレーション（Invitrogen社）により，pE-mIRES-GS-mNeo-dual(hTSH)，pE-mIRES-GS-mNeo-dual+mDHFR31(hTSH)，pE-mIRES-GS-mNeo-dual(RTX)及びpE-mIRES-GS-dual+mDHFR31(RTX)でそれぞれ形質転換した。形質転換後の細胞を，選択培地を用いて選択培養を行い，hTSH発現細胞及びRTX発現細胞を得た。
pE-mIRES-GS-mNeo-dual+mDHFR31(TSH)及びpE-mIRES-GS-dual+mDHFR31(RTX)
で形質転換させた細胞の選択培養においては，まず細胞を，メトトレキセート（WAKO社）を含むCD Opti CHO培地（Invitrogen社）で，培地中に含まれるメトトレキセートの濃度を段階的に上昇させながら培養し，最終的にメトトレキセートを0.5μMで含む培地で培養し，メトトレキセートに耐性を示す細胞を選択的に増殖させた。次いで，培地をメチオニンスルホキシミン（SIGMA社）を含むCD Opti CHO培地（Invitrogen社）に置き換えて，培地中に含まれるメチオニンスルホキシミンの濃度を段階的に上昇させながら培養し，最終的にメチオニンスルホキシミンを300μMの濃度で含む培地で培養し，メチオニンスルホキシミンに耐性を示す細胞を選択的に増殖させた。ここで得られた細胞をバルク細胞とした。
で形質転換させた細胞の選択培養においては，まず細胞を，メトトレキセート（WAKO社）を含むCD Opti CHO培地（Invitrogen社）で，培地中に含まれるメトトレキセートの濃度を段階的に上昇させながら培養し，最終的にメトトレキセートを0.5μMで含む培地で培養し，メトトレキセートに耐性を示す細胞を選択的に増殖させた。次いで，培地をメチオニンスルホキシミン（SIGMA社）を含むCD Opti CHO培地（Invitrogen社）に置き換えて，培地中に含まれるメチオニンスルホキシミンの濃度を段階的に上昇させながら培養し，最終的にメチオニンスルホキシミンを300μMの濃度で含む培地で培養し，メチオニンスルホキシミンに耐性を示す細胞を選択的に増殖させた。ここで得られた細胞をバルク細胞とした。
pE-mIRES-GS-mNeo-dual(TSH)及びpE-mIRES-GS-mNeo-dual(RTX)で形質転換させた細胞の選択培養においては，細胞を，メチオニンスルホキシミン及びG418を含むCD Opti CHO培地（Invitrogen社）で，培地中に含まれるメトトレキセート及びG418の濃度を段階的に上昇させながら培養し，最終的にメチオニンスルホキシミンを300μM，G418を1mg/mLの濃度で含む培地で培養し，これらの薬剤に耐性を示す細胞を選択的に増殖させた。ここで得られた細胞をバルク細胞とした。
上記の選択培養により得たバルク細胞を1〜3個/ウェルとなるように96ウェルプレートに播種し，CD Opti CHO培地（Invitrogen社）でコロニーが形成されるまで，約2週間培養した。培養上清中のhTSH，RTXの濃度を測定し，高発現のクローン細胞を得た。このとき，メチオニンスルホキシミンを300μMの濃度で培地に添加した。このようにして得られた高発現のクローン細胞を，hTSH発現細胞及びRTX発現細胞として，以下の実験に供した。
〔hTSH発現細胞のhTSH発現量の測定〕
選択培養して得たhTSH発現細胞を2×105
個/mLの細胞密度で300μMのメチオニンスルホキシミンを含有する5mLのCD Opti CHO培地で，37℃，5%
CO2存在下で10日間培養した。培養，3，7及び10日目に培養上清をサンプリングした。
選択培養して得たhTSH発現細胞を2×105
個/mLの細胞密度で300μMのメチオニンスルホキシミンを含有する5mLのCD Opti CHO培地で，37℃，5%
CO2存在下で10日間培養した。培養，3，7及び10日目に培養上清をサンプリングした。
マウス抗hTSH-betaモノクローナル抗体（Leinco Technologies社）溶液を96ウェルプレートに100μLずつ加え，室温で1時間静置して抗体をプレートに固定させた。液を捨て，プレートをTBS-T液（Tris：0.05M，NaCl：0.138 M，KCl：0.0027M，0.05％Tween20，pH 8.0）で３回洗浄した後，1％BSA／TBS-T液をプレートに200μLずつ加え，室温で1時間静置してプレートをブロッキングした。液を捨て，プレートをTBS-T液で３回洗浄後，サンプリングした培養上清を検体としてプレートに100μLずつ加え，室温で1時間静置した。このとき，必要に応じて，培養上清をTBS-T液で希釈した。また，hTSH（NIBSC社）をTBS-T液で0.244〜62.5
ng/mLの濃度に希釈したものを標準溶液として，検体と同様にプレートに加えて静置した。液を捨て，プレートをTBS-T液で３回洗浄後，HRP標識したマウス抗hTSH-alphaモノクロナール抗体（Leinco Technologies社）を２次抗体としてプレートに100μLずつ加え，室温で1時間静置した。プレートをTBS-T液で３回洗浄後，HRP基質（WAKO社）を加え，室温で15分間静置した後，硫酸を加えて反応を停止した。マイクロウエルプレートリーダーで490nmにおける吸光度を測定して，標準溶液の吸光度の測定値から得られた検量線に，検体の測定値を内挿し，検体に含まれるhTSHの濃度を求めた。
ng/mLの濃度に希釈したものを標準溶液として，検体と同様にプレートに加えて静置した。液を捨て，プレートをTBS-T液で３回洗浄後，HRP標識したマウス抗hTSH-alphaモノクロナール抗体（Leinco Technologies社）を２次抗体としてプレートに100μLずつ加え，室温で1時間静置した。プレートをTBS-T液で３回洗浄後，HRP基質（WAKO社）を加え，室温で15分間静置した後，硫酸を加えて反応を停止した。マイクロウエルプレートリーダーで490nmにおける吸光度を測定して，標準溶液の吸光度の測定値から得られた検量線に，検体の測定値を内挿し，検体に含まれるhTSHの濃度を求めた。
〔RTX発現細胞のリツキシマブ発現量の測定〕
選択培養して得たRTX発現細胞を2×105
個/mLの細胞密度で300μMのメチオニンスルホキシミンを含有する5mLのCD Opti CHO培地で，37℃，5%
CO2存在下で10日間培養した。培養，3，7及び10日目に培養上清をサンプリングした。
選択培養して得たRTX発現細胞を2×105
個/mLの細胞密度で300μMのメチオニンスルホキシミンを含有する5mLのCD Opti CHO培地で，37℃，5%
CO2存在下で10日間培養した。培養，3，7及び10日目に培養上清をサンプリングした。
リツキシマブ発現量の測定はHuman IgG ELISA Quantitation Set（Bethyl
Laboratories社）を用いて行った。ヤギ抗hIgG抗体（Bethyl Laboratories社）溶液を96ウェルプレートに100μLずつ加え，室温で1時間静置して抗体をプレートに固定させた。液を捨て，プレートをTBS-T液で３回洗浄した後，1％BSA／TBS-T液をプレートに200μLずつ加え，室温で1時間静置してプレートをブロッキングした。液を捨て，プレートをTBS-T液で３回洗浄後，サンプリングした培養上清を検体としてプレートに100μLずつ加え，室温で1時間静置した。このとき，必要に応じて，培養上清をTBS-T液で希釈した。また，リツキシマブ（中外製薬社）をTBS-T液で3.9〜500 ng/mLの濃度に希釈したものを標準溶液として，検体と同様にプレートに加えて静置した。液を捨て，プレートをTBS-T液で３回洗浄後，HRP標識したヤギ抗hIgG抗体（Bethyl Laboratories社）を２次抗体としてプレートに100μLずつ加え，室温で1時間静置した。プレートをTBS-T液で３回洗浄後，HRP基質（WAKO社）を加え，室温で15分間静置した後，硫酸を加えて反応を停止した。マイクロウエルプレートリーダーで490
nmにおける吸光度を測定して，標準溶液の吸光度の測定値から得られた検量線に，検体の測定値を内挿し，検体に含まれるリツキシマブの濃度を求めた。
Laboratories社）を用いて行った。ヤギ抗hIgG抗体（Bethyl Laboratories社）溶液を96ウェルプレートに100μLずつ加え，室温で1時間静置して抗体をプレートに固定させた。液を捨て，プレートをTBS-T液で３回洗浄した後，1％BSA／TBS-T液をプレートに200μLずつ加え，室温で1時間静置してプレートをブロッキングした。液を捨て，プレートをTBS-T液で３回洗浄後，サンプリングした培養上清を検体としてプレートに100μLずつ加え，室温で1時間静置した。このとき，必要に応じて，培養上清をTBS-T液で希釈した。また，リツキシマブ（中外製薬社）をTBS-T液で3.9〜500 ng/mLの濃度に希釈したものを標準溶液として，検体と同様にプレートに加えて静置した。液を捨て，プレートをTBS-T液で３回洗浄後，HRP標識したヤギ抗hIgG抗体（Bethyl Laboratories社）を２次抗体としてプレートに100μLずつ加え，室温で1時間静置した。プレートをTBS-T液で３回洗浄後，HRP基質（WAKO社）を加え，室温で15分間静置した後，硫酸を加えて反応を停止した。マイクロウエルプレートリーダーで490
nmにおける吸光度を測定して，標準溶液の吸光度の測定値から得られた検量線に，検体の測定値を内挿し，検体に含まれるリツキシマブの濃度を求めた。
〔結果（hTSH発現細胞のhTSH発現量）〕
ヒト甲状腺刺激ホルモン（hTSH）発現用ベクターのpE-mIRES-GS-mNeo-dual(hTSH)で形質転換させたCHO細胞では，培養開始後10日目の培地中のhTSHの濃度は，バルク細胞では22.0μg/mL，クローン細胞では29.2μg/mLであった。一方，第２の選択マーカーとしてDHFR遺伝子を組み込んだhTSH発現用ベクターであるpE-mIRES-GS-mNeo-dual+mDHFR31(hTSH)で形質転換させたCHO細胞では，培養開始後10日目の培地中のhTSHの濃度は，バルク細胞では35.3μg/mL，クローン細胞では85.2μg/mLであった（表１）。
すなわち，伸長因子１プロモーター（EF-1p），hTSH遺伝子，変異型内部リボソーム結合部位（mIRES），及び第１の選択マーカーとしてGS遺伝子をこの順で含むhTSH発現用ベクターであるpE-mIRES-GS-mNeo-dual(hTSH)と比較して，更に第２の選択マーカーとしてDHFR遺伝子を組み込んだhTSH発現用ベクターであるpE-mIRES-GS-mNeo-dual+mDHFR31(hTSH)で形質転換させたCHO細胞では，hTSHの発現量が，バルク細胞間で約1.6倍に，クローン細胞間で約2.9倍と，飛躍的に増加した。
ヒト甲状腺刺激ホルモン（hTSH）発現用ベクターのpE-mIRES-GS-mNeo-dual(hTSH)で形質転換させたCHO細胞では，培養開始後10日目の培地中のhTSHの濃度は，バルク細胞では22.0μg/mL，クローン細胞では29.2μg/mLであった。一方，第２の選択マーカーとしてDHFR遺伝子を組み込んだhTSH発現用ベクターであるpE-mIRES-GS-mNeo-dual+mDHFR31(hTSH)で形質転換させたCHO細胞では，培養開始後10日目の培地中のhTSHの濃度は，バルク細胞では35.3μg/mL，クローン細胞では85.2μg/mLであった（表１）。
すなわち，伸長因子１プロモーター（EF-1p），hTSH遺伝子，変異型内部リボソーム結合部位（mIRES），及び第１の選択マーカーとしてGS遺伝子をこの順で含むhTSH発現用ベクターであるpE-mIRES-GS-mNeo-dual(hTSH)と比較して，更に第２の選択マーカーとしてDHFR遺伝子を組み込んだhTSH発現用ベクターであるpE-mIRES-GS-mNeo-dual+mDHFR31(hTSH)で形質転換させたCHO細胞では，hTSHの発現量が，バルク細胞間で約1.6倍に，クローン細胞間で約2.9倍と，飛躍的に増加した。
〔結果（RTX発現細胞のリツキシマブ発現量）〕
RTX発現用ベクターのpE-mIRES-GS-mNeo-dual(RTX)で形質転換させたCHO細胞では，培養開始後10日目の培地中のリツキシマブの濃度は，バルク細胞では188.6μg/mL，クローン細胞では318.9μg/mLであった。一方，第２の選択マーカーとしてDHFR遺伝子を組み込んだRTX発現用ベクターであるpE-mIRES-GS-dual+mDHFR31(RTX)で形質転換させたCHO細胞では，培養開始後10日目の培地中のリツキシマブの濃度は，バルク細胞では174.1μg/mL，クローン細胞では401.5μg/mLであった（表２）。
すなわち，伸長因子１プロモーター（EF-1p），リツキシマブ遺伝子，変異型内部リボソーム結合部位（mIRES），及び第１の選択マーカーとしてGS遺伝子をこの順で含むRTX発現用ベクターであるpE-mIRES-GS-mNeo-dual(RTX)と比較して，更に第２の選択マーカーとしてDHFR遺伝子を組み込んだRTX発現用ベクターであるpE-mIRES-GS-dual+mDHFR31(RTX)で形質転換させた細胞では，RTXの発現量が，バルク細胞間ではほとんど同レベルであるものの，クローン細胞間では約1.26倍に増加した。
RTX発現用ベクターのpE-mIRES-GS-mNeo-dual(RTX)で形質転換させたCHO細胞では，培養開始後10日目の培地中のリツキシマブの濃度は，バルク細胞では188.6μg/mL，クローン細胞では318.9μg/mLであった。一方，第２の選択マーカーとしてDHFR遺伝子を組み込んだRTX発現用ベクターであるpE-mIRES-GS-dual+mDHFR31(RTX)で形質転換させたCHO細胞では，培養開始後10日目の培地中のリツキシマブの濃度は，バルク細胞では174.1μg/mL，クローン細胞では401.5μg/mLであった（表２）。
すなわち，伸長因子１プロモーター（EF-1p），リツキシマブ遺伝子，変異型内部リボソーム結合部位（mIRES），及び第１の選択マーカーとしてGS遺伝子をこの順で含むRTX発現用ベクターであるpE-mIRES-GS-mNeo-dual(RTX)と比較して，更に第２の選択マーカーとしてDHFR遺伝子を組み込んだRTX発現用ベクターであるpE-mIRES-GS-dual+mDHFR31(RTX)で形質転換させた細胞では，RTXの発現量が，バルク細胞間ではほとんど同レベルであるものの，クローン細胞間では約1.26倍に増加した。
〔結果（まとめ）〕
これらの結果は，遺伝子発現制御部位の下流に，外来遺伝子，変異型内部リボソーム結合部位，及び第１の選択マーカーとしてグルタミン合成酵素をこの順で組み込み，更に，第2の選択マーカーとしてジヒドロ葉酸レダクターゼ遺伝子を組み込んだ発現ベクターが，外来遺伝子を高レベルで発現させることができる発現ベクターとして機能することを示すものである。
これらの結果は，遺伝子発現制御部位の下流に，外来遺伝子，変異型内部リボソーム結合部位，及び第１の選択マーカーとしてグルタミン合成酵素をこの順で組み込み，更に，第2の選択マーカーとしてジヒドロ葉酸レダクターゼ遺伝子を組み込んだ発現ベクターが，外来遺伝子を高レベルで発現させることができる発現ベクターとして機能することを示すものである。
本発明は，哺乳動物細胞を用いて組換え体蛋白質を高レベルで発現させることができるため，組換え体蛋白質を含む製品，例えば，組換え体蛋白質を含有する医薬品の製造コストの低減に利用することができる。
１ LacZプロモーター
２ mPGKプロモーター
３ 配列番号１に示す塩基配列を含む野生型マウス脳心筋炎ウイルス由来の内部リボソーム結合部位（EMCV-IRES）
３a 配列番号４に示す塩基配列を含む変異型マウス脳心筋炎ウイルス由来の内部リボソーム結合部位（EMCV-mIRES）
４ mPGKのポリアデニル化領域(mPGKpA)
５ EF-1p及び第一イントロンを含む塩基配列
６ SV40後期ポリポリアデニル化領域
７ SV40初期プロモーター（ＳＶ４０エンハンサー／プロモーター）を含む領域
８ 合成ポリポリアデニル化領域
９ サイトメガロウイルスプロモーターを含む領域
１０ グルタミン合成酵素遺伝子
２ mPGKプロモーター
３ 配列番号１に示す塩基配列を含む野生型マウス脳心筋炎ウイルス由来の内部リボソーム結合部位（EMCV-IRES）
３a 配列番号４に示す塩基配列を含む変異型マウス脳心筋炎ウイルス由来の内部リボソーム結合部位（EMCV-mIRES）
４ mPGKのポリアデニル化領域(mPGKpA)
５ EF-1p及び第一イントロンを含む塩基配列
６ SV40後期ポリポリアデニル化領域
７ SV40初期プロモーター（ＳＶ４０エンハンサー／プロモーター）を含む領域
８ 合成ポリポリアデニル化領域
９ サイトメガロウイルスプロモーターを含む領域
１０ グルタミン合成酵素遺伝子
配列番号２：Modified murine
encephalomyocarditis virus; n is a, c, g, or t
配列番号３：Modified murine
encephalomyocarditis virus; n is a, c, g, or t
配列番号４：Modified murine
encephalomyocarditis virus
配列番号６：Modified murine
encephalomyocarditis virus
配列番号７：Modified murine encephalomyocarditis
virus; n is a, c, g, or t
配列番号８：Modified murine
encephalomyocarditis virus; n is a, c, g, or t
配列番号１１：Modified Mus musculus DHFR
配列番号１２：Synthetic Construct
配列番号１３：Primer Hyg-Sfi5', synthetic
sequence
配列番号１４：Primer Hyg-BstX3', synthetic sequence
配列番号１５：IRES-Hygr-mPGKpA, synthetic
sequence
配列番号１６：Synthetic Construct
配列番号１７：Primer IRES5', synthetic
sequence
配列番号１８：Primer IRES3', synthetic
sequence
配列番号１９：Primer mPGKP5', synthetic
sequence
配列番号２０：Primer mPGKP3', synthetic
sequence
配列番号２１：mPGKp, synthetic sequence
配列番号２２：Primer GS5', synthetic
sequence
配列番号２３：Primer GS3', synthetic
sequence
配列番号２４：Primer puro5', synthetic
sequence
配列番号２５：Primer puro3', synthetic
sequence
配列番号２６：Synthetic sequence containing
puromycin resistance gene
配列番号２７：Synthetic Construct
配列番号２８：Primer SV40polyA5', synthetic
sequence
配列番号２９：Primer SV40polyA3', synthetic
sequence
配列番号３０：Primer mIRES-GS5', synthetic
sequence
配列番号３１：Primer mIRES-GS3', synthetic
sequence
配列番号３２：Primer SV40polyA5'-2,
synthetic sequence
配列番号３３：Primer SV40polyA3'-2,
synthetic sequence
配列番号３４：Primer mNeoA5', synthetic
sequence
配列番号３５：Primer mNeoA3', synthetic
sequence
配列番号３６：Primer mNeoB5', synthetic
sequence
配列番号３７：Primer mNeoB3', synthetic
sequence
配列番号３８：Primer mNeoC5', synthetic
sequence
配列番号３９：Primer mNeoC3', synthetic
sequence
配列番号４０：Primer mNeoD5', synthetic
sequence
配列番号４１：Primer SVpA-Mega-F, synthetic
sequence
配列番号４２：Primer SVpA-BstXI-R, synthetic
sequence
配列番号４３：Primer SVpA-Not-F, synthetic
sequence
配列番号４４：Primer SVpA-BstXI-R, synthetic
sequence
配列番号４５：Synthetic sequence containing
Modified DHFR(F31W)
配列番号４６：Synthetic sequence containing
human TSH alpha
配列番号４７：Synthetic sequence containing
human TSH beta
配列番号４８：Synthetic sequence containing
WAP3'UTR
配列番号４９：Primer TSHalpha5', synthetic
sequence
配列番号５０：Primer TSHalpha3', synthetic
sequence
配列番号５１：Primer TSHbeta5', synthetic
sequence
配列番号５２：Primer TSHbeta3', synthetic
sequence
配列番号５３：Primer WAP3', synthetic
sequence
配列番号５４：Primer dE-BbsI-F, synthetic
sequence
配列番号５５：Primer SynpA-BbsI-R, synthetic
sequence
配列番号５６：Rituximab heavy chain,
synthetic sequence
配列番号５７：Rituximab light chain,
synthetic sequence
配列番号５８：Primer dE-BbsI-F, synthetic
sequence
配列番号５９：Primer SynpA-BbsI-R, synthetic
sequence
encephalomyocarditis virus; n is a, c, g, or t
配列番号３：Modified murine
encephalomyocarditis virus; n is a, c, g, or t
配列番号４：Modified murine
encephalomyocarditis virus
配列番号６：Modified murine
encephalomyocarditis virus
配列番号７：Modified murine encephalomyocarditis
virus; n is a, c, g, or t
配列番号８：Modified murine
encephalomyocarditis virus; n is a, c, g, or t
配列番号１１：Modified Mus musculus DHFR
配列番号１２：Synthetic Construct
配列番号１３：Primer Hyg-Sfi5', synthetic
sequence
配列番号１４：Primer Hyg-BstX3', synthetic sequence
配列番号１５：IRES-Hygr-mPGKpA, synthetic
sequence
配列番号１６：Synthetic Construct
配列番号１７：Primer IRES5', synthetic
sequence
配列番号１８：Primer IRES3', synthetic
sequence
配列番号１９：Primer mPGKP5', synthetic
sequence
配列番号２０：Primer mPGKP3', synthetic
sequence
配列番号２１：mPGKp, synthetic sequence
配列番号２２：Primer GS5', synthetic
sequence
配列番号２３：Primer GS3', synthetic
sequence
配列番号２４：Primer puro5', synthetic
sequence
配列番号２５：Primer puro3', synthetic
sequence
配列番号２６：Synthetic sequence containing
puromycin resistance gene
配列番号２７：Synthetic Construct
配列番号２８：Primer SV40polyA5', synthetic
sequence
配列番号２９：Primer SV40polyA3', synthetic
sequence
配列番号３０：Primer mIRES-GS5', synthetic
sequence
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配列番号３２：Primer SV40polyA5'-2,
synthetic sequence
配列番号３３：Primer SV40polyA3'-2,
synthetic sequence
配列番号３４：Primer mNeoA5', synthetic
sequence
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配列番号３６：Primer mNeoB5', synthetic
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Modified DHFR(F31W)
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human TSH alpha
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human TSH beta
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WAP3'UTR
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配列番号５６：Rituximab heavy chain,
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配列番号５７：Rituximab light chain,
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配列番号５８：Primer dE-BbsI-F, synthetic
sequence
配列番号５９：Primer SynpA-BbsI-R, synthetic
sequence
Claims (14)
- ヘテロダイマーを形成する蛋白質を発現させるための発現ベクターであって，遺伝子発現制御部位（Ａ），並びに，その下流にヘテロダイマーを形成する該蛋白質の第１のサブユニットをコードする遺伝子，更に下流に内部リボソーム結合部位，及び更に下流にグルタミン合成酵素をコードする遺伝子を含み，且つ，
該遺伝子発現制御部位（Ａ）とは別の遺伝子発現制御部位（Ａ’）の下流にヘテロダイマーを形成する該蛋白質の第２のサブユニットをコードする遺伝子を含み，
該遺伝子発現制御部位（Ａ）及び（Ａ’）の何れとも別の遺伝子発現制御部位（Ｂ）の下流にジヒドロ葉酸レダクターゼ遺伝子を更に含んでなる，発現ベクターであって，
該内部リボソーム結合部位が，マウス脳心筋炎ウイルスの５’非翻訳領域に由来するものであり，且つ，配列番号４で示される塩基配列を含む又は配列番号６で示される塩基配列からなるものである，発現ベクター。 - ヘテロダイマーを形成する該蛋白質の該第２のサブユニットをコードする遺伝子の下流に内部リボソーム結合部位，及び更に下流に薬剤耐性遺伝子を含んでなる，請求項１の発現ベクター。
- 該薬剤耐性遺伝子が，ピューロマイシン耐性遺伝子，ハイグロマイシン耐性遺伝子，ブラストサイジン耐性遺伝子，及びネオマイシン耐性遺伝子からなる群より選択されるものである，請求項２の発現ベクター。
- 該遺伝子発現制御部位（Ａ），（Ａ’），及び／又は該遺伝子発現制御部位（Ｂ）が，サイトメガロウイルス由来のプロモーター，ＳＶ４０初期プロモーター，伸長因子１プロモーターからなる群から選択されるものである，請求項１ないし３の何れかの発現ベクター。
- ヘテロダイマーを形成する該蛋白質の該第１のサブユニットをコードする該遺伝子とその下流の該内部リボソーム結合部位との間の領域又はグルタミン合成酵素をコードする該遺伝子の下流の領域において，該内部リボソーム結合部位とは別の内部リボソーム結合部位及びその下流に薬剤耐性遺伝子を更に含んでなる，請求項１ないし４の何れかの発現ベクター。
- 該遺伝子発現制御部位（Ａ），（Ａ’）及び（Ｂ）の何れとも別に，更なる遺伝子発現制御部位（Ｃ）及びその下流に薬剤耐性遺伝子を更に含んでなる，請求項１ないし４の何れかの発現ベクター。
- 該薬剤耐性遺伝子が，ピューロマイシン又はネオマイシン耐性遺伝子である，請求項５又は６の発現ベクター。
- 該蛋白質をコードする該遺伝子が，ヒト由来の遺伝子である請求項１ないし７の何れかの発現ベクター。
- ヒト由来の該遺伝子が，甲状腺刺激ホルモン（ＴＳＨ），卵胞刺激ホルモン，及び抗体をコードする遺伝子からなる群から選択されるものである，請求項８の発現ベクター。
- 請求項１ないし９の何れかの発現ベクターで形質転換された哺乳動物細胞。
- 該哺乳動物細胞が，内因性のジヒドロ葉酸レダクターゼ遺伝子を欠損したものである，請求項１０の細胞。
- 該哺乳動物細胞が，ＣＨＯ細胞である，請求項１０又は１１の細胞。
- （ａ）請求項１ないし９の何れかの発現ベクターを，哺乳動物細胞に導入するステップ，
（ｂ）該発現ベクターが導入された哺乳動物細胞を，ジヒドロ葉酸レダクターゼ阻害剤の存在下で選択培養するステップ，及び
（ｃ）該選択培養により選択された細胞を，グルタミン合成酵素阻害剤の存在下で更に選択培養するステップ
を含む，該蛋白質をコードする遺伝子を発現する形質転換細胞の製造方法。 - （ａ）請求項２ないし９の何れかの発現ベクターを，哺乳動物細胞に導入するステップ，
（ｂ）該発現ベクターが導入された哺乳動物細胞を，ジヒドロ葉酸レダクターゼ阻害剤の存在下で選択培養するステップ，及び
（ｃ）該選択培養により選択された細胞を，グルタミン合成酵素阻害剤の存在下で更に選択培養するステップ
を含む，該蛋白質をコードする遺伝子を発現する形質転換細胞の製造方法であって，該ステップ（ａ）と該ステップ（ｂ）の間，又は該ステップ（ｂ）と該ステップ（ｃ）の間に，該発現ベクターが導入された哺乳動物細胞を，該薬剤耐性遺伝子に対応する薬剤の存在下で選択培養するステップを更に含む，製造方法。
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|---|---|---|---|
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| EP (1) | EP2848687B1 (ja) |
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