JP4751066B2 - 治療剤 - Google Patents

Description

本発明は、生体内でインスリンが関連する疾病、例えば糖尿病や肥満症等の治療または予防に有用な医薬、食品、飲料又は飼料に関する。

インスリンは、哺乳動物の正常な炭水化物、タンパク質、及び脂肪代謝に必要なホルモンである。Ｉ型糖尿病のヒトは、生命を支えるホルモンであるインスリンが十分産生されないので、生存のために外部からのインスリン投与を必要とする。ＩＩ型糖尿病のヒトは、インスリン産生量の不足、インスリン抵抗性などの要因による不適切な血液グルコース量の適切な量への制御のために、インスリンの投与やインスリン分泌促進薬の投与が必要となる。しかし、ＩＩ型糖尿病のヒトの中でも、高インスリン血症やインスリン受容体異常、インスリン受容体の下流シグナルの異常などにより起こるインスリン抵抗性が要因の糖尿病患者については、インスリンやインスリン分泌促進薬を投与しても治療効果は見られないことがある。
近年、インスリンの副作用や上記の問題を解決するため、インスリンと同様の生理機能を有する物質（以下、インスリン様物質と称することもある）の開発が行われてきており、合成のベンゾキノン誘導体がインスリン様物質であること（例えば、国際公開第９９／５１２２５号パンフレット参照。）、またシコン（紫根）由来のシコニンがインスリン様物質であること（例えば、Ｋａｍｅｉ Ｒ．他７名，Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ｒｅｓ．Ｃｏｍｍｕｎ．，２００２年，Ｖｏｌ．２９２，Ｐ６４２−６５１参照。）が判明している。これらのようなインスリン様物質は、Ｉ型糖尿病患者だけでなく、ＩＩ型糖尿病患者、さらにはインスリン抵抗性が要因のＩＩ型糖尿病患者についても、インスリンと同様の生理活性を示すことにより症状を改善することが期待されている。
アシタバはセリ科の大型多年性草本であり、さまざまな健康促進効果が知られている。例えば、アシタバの有する生理活性としては、高血圧予防効果、抗菌作用、抗腫瘍作用、胃酸分泌抑制作用、抗癌効果、神経成長因子産生増強効果、肝細胞増殖因子産生増強作用が知られている（例えば、国際公開第０１／７６６１４号パンフレット参照。）。しかし、抗糖尿病作用や抗肥満作用等の、インスリン様作用についてはこれまで知られていなかった。
セロリはセリ科に属する、さまざまな生理作用が知られている植物である。セロリの生理作用としては、抗血液凝固作用、制がん作用等が知られている。しかし、抗糖尿病作用や抗肥満作用等の、インスリン様作用についてはこれまで知られていなかった。
パセリはセリ科に属する、さまざまな生理作用が知られている植物である。パセリの生理作用としては、貧血改善、食中毒予防作用、止血作用、疲労回復、発汗、利尿、保温効果等が知られている。しかし、抗糖尿病作用や抗肥満作用等の、インスリン様作用についてはこれまで知られていなかった。

本発明の目的は、天然物由来で安全で、簡便に摂取可能な、食品素材、医薬品素材として適したインスリン様作用を有する植物由来の処理物を開発し、当該処理物を用いた、医薬、食品、飲料または飼料を提供することにある。
以下、本発明を概説すれば、本発明の第１の発明は、セリ科植物由来処理物を有効成分として含有することを特徴とするインスリン量またはインスリン応答の変調を伴う疾患の治療剤又は予防剤に関する。
本発明の第２の発明は、セリ科植物由来処理物を有効成分として含有することを特徴とするインスリン様作用剤に関する。
本発明の第３の発明は、セリ科植物由来処理物を有効成分として含有することを特徴とするインスリン量またはインスリン応答の変調を伴う疾患の治療用又は予防用の食品、飲料又は飼料に関する。
本発明の第４の発明は、セリ科植物由来処理物を有効成分として含有することを特徴とする細胞へのグルコース取り込み促進剤に関する。
本発明の第５の発明は、セリ科植物由来処理物を有効成分として含有することを特徴とする脂肪細胞への分化誘導剤に関する。
本発明の第１〜５の発明において、セリ科植物としては、例えばアシタバ、セロリ又はパセリが例示される。

第１図は、アシタバ根抽出画分により分化誘導された脂肪細胞のトリグリセリド生合成量を示す図である。
第２図は、アシタバ根部抽出画分分画フラクション３、４により分化誘導された脂肪細胞のトリグリセリド生合成量を示す図である。
第３図は、アシタバ根抽出画分によるグルコース取り込み促進作用を示す図である。
第４図は、アシタバ葉抽出画分により分化誘導された脂肪細胞のトリグリセリド生合成量を示す図である。
第５図は、セロリ葉抽出画分により分化誘導された脂肪細胞のトリグリセリド生合成量を示す図である。
第６図は、セロリ葉抽出画分によるグルコース取り込み促進作用を示す図である。
第７図は、パセリ抽出画分により分化誘導された脂肪細胞のトリグリセリド生合成量を示す図である。
第８図は、パセリ抽出画分によるグルコース取り込み促進作用を示す図である。
第９図は、アシタバ根抽出画分により分化誘導された脂肪細胞のトリグリセリド生合成量を示す図である。
第１０図は、アシタバ根抽出画分によるグルコース取り込み促進作用を示す図である。
第１１図は、アシタバ葉抽出画分によるグルコース取り込み促進作用を示す図である。
第１２図は、アシタバ根抽出物分画フラクションによるグルコース取り込み促進作用を示す図である。
第１３図は、アシタバ根エタノール抽出画分によるグルコース取り込み促進作用のサイトカラシンＢによる阻害作用を示す図である。
第１４図は、アシタバ根エタノール抽出画分とインスリンによるグルコース取り込み促進作用の相乗効果を示す図である。
第１５図は、アシタバ根エタノール抽出画分により分化誘導した脂肪細胞でのインスリン刺激によるグルコース取り込み促進作用を示す図である。
第１６図は、アシタバ茎葉抽出画分により分化誘導された脂肪細胞のトリグリセリド生合成量を示す図である。

本発明において、セリ科植物とは、被子植物類セリ科に属する植物であって、例えばアシタバ、セリ、ミツバ、シシウド、ニンジン、セロリ、パセリ等が例示される。本発明においては、アシタバ、セロリ、パセリが特に好適に使用できる。本発明において、これらは単独でもしくは２種以上を混合して使用することができる。また、本発明に使用されるセリ科植物は、特に限定はないが、果実、種子、種皮、花、葉、茎、根、根茎及び／又は植物全体そのままを使用することができる。
本発明において有効成分として使用されるセリ科植物由来処理物としては、インスリン様作用を有していれば特に限定はないが、例えば抽出物、粉砕物、搾汁液、破砕物、化学処理物、酵素処理物をいい、特に好適には抽出物、粉砕物および搾汁液が例示される。本発明の有効成分として使用されるものであれば特に限定はない。各処理物は単独でもしくは２種以上を混合して使用することができる。
なお、本発明においてインスリン様作用とは、インスリンと同等の生理活性を示すものであれば特に限定はなく、例えば、細胞における糖、アミノ酸の取り込み促進、グリコーゲン、タンパク質合成及び分解抑制などの代謝調節作用が例示される。本発明の有効成分としては、少なくとも脂肪細胞への分化誘導作用または細胞へのグルコース取り込み促進作用を示せばよい。かかるインスリン様作用の有無については、後述の実施例３又は５に記載の方法により簡便に測定することができる。
本発明において、抽出物とは抽出溶媒を用いて抽出操作を行う工程を経て得られる物質のことをいう。抽出は、公知の抽出方法により以下のように行うことができる。例えば原料を粉砕もしくは細断した後、溶媒を用いてバッチ式もしくは連続式で行うことができる。抽出物を得る際の抽出溶媒としては、特に限定はないが、水、クロロホルム、エタノール、メタノール、イソプロピルアルコール等のアルコール類、アセトン、メチルエチルケトン等のケトン類、酢酸メチル、酢酸エチル等の親水性もしくは親油性の溶媒を挙げることができ、所望により単独で、もしくは適宜混合液として用いることができる。抽出溶媒の量は適宜決定すればよいが、通常、原料（固形分）に対し、重量で、好ましくは０．１〜１００倍量の抽出溶媒を使用すれば良い。抽出温度も適宜、目的に応じて決定すれば良いが、水抽出の場合は通常、好ましくは４〜１３０℃、より好ましくは２５〜１００℃である。また、溶媒中にエタノールが含まれる場合は４〜６０℃の範囲が好適である。抽出時間も、抽出効率を考慮し決定すればよいが、通常、好ましくは数秒〜数日、より好ましくは５分〜２４時間の範囲となるように、原料、抽出溶媒、抽出温度を設定するのが好適である。抽出操作は、たとえば、攪拌しながら又は静置して行えばよく、また、必要に応じて数回繰り返してもよい。以上の操作により、セリ科植物由来の抽出物（以下、本発明の抽出物と称することがある。）が得られる。抽出物は必要に応じ、ろ過、遠心分離、濃縮、限外ろ過、分子ふるい等の処理を行い、目的のインスリン様物質が濃縮された抽出物を調製することができる。抽出物や濃縮抽出物のインスリン様作用は、後述の実施例３又は５記載の方法により簡便に測定することができる。また、セリ科植物を公知の方法で茶葉状にし、これを用いた抽出物（例えば、アシタバ茶）もインスリン様作用を有していれば、本発明の抽出物として使用することができる。また、これらの抽出物を２種以上含有させて使用することもできる。なお、本発明においては異なった抽出法で得られた抽出物を２種以上含有させて使用することもできる。
また、本発明においては、セリ科植物由来の抽出物を公知の方法で分画することによって得られる画分や、分画操作を複数回繰り返すことにより得られる画分についても本発明の抽出物に包含される。上記の分画手段としては、抽出、分別沈殿、カラムクロマトグラフィー、薄層クロマトグラフィー等が挙げられる。得られた画分の精製を、インスリン様作用を指標としてさらに進めることにより、インスリン様物質を単離することもできる。
また、セリ科植物由来の抽出物以外の、セリ科植物由来処理物の製造方法としては、例えば植物を乾燥させ、粉砕することで粉状のセリ科植物由来の粉砕物を得ることができる。乾燥は、凍結乾燥により行うのが好ましい。また、凍結粉砕により粉砕物を得てもよい。
また、セリ科植物由来の搾汁液の製造方法としては、公知の植物の搾汁方法であれば特に限定はないが、例えばスクリュー式、ギア式、カッター式等の搾り機やジューサーを用いて搾汁することができる。また、前処理として細断あるいはすりつぶして、上述のジューサー又は布等で絞って搾汁液を得ることもできる。
破砕物とは、セリ科植物を砕き壊したものであり、一般には粉砕物よりも組織片が大きく、例えば、破砕機を使用することにより製造することができる。また、化学処理物とは、特に限定はないが、セリ科植物を酸処理、アルカリ処理、酸化処理、還元処理等に供して得られた物をいい、例えば、塩酸、硫酸、硝酸、クエン酸、酢酸等の無機酸や有機酸、又は水酸化ナトリウム、水酸化カリウム、アンモニア等の無機塩基や有機塩基を含む水溶液にセリ科植物を浸漬することにより製造することができる。化学処理物には、前記のような化学処理を受けた植物体に由来するすべてのものを含む。酵素処理物とは、例えば、ペクチナーゼ、セルラーゼ、キシラナーゼ、アミラーゼ、マンナナーゼ、グルコシダーゼ等による酵素処理物、微生物による酵素反応物（例えば、発酵物）をいい、例えば、セリ科植物に対して上記酵素を適当な緩衝液中で作用させることにより製造することができる。酵素処理物には、前記のような酵素処理を受けた植物体に由来するすべてのものを含む。さらに、セリ科植物由来処理物としては、例えば、セリ科植物の茎を切断し、その切断面から得られる汁液も包含される。
本発明において、セリ科植物由来処理物の形状としては、インスリン様作用を有していれば特に限定はないが、粉状、固形状、液状のいずれの形状であってもよい。また、当該物質を公知の方法で造粒して粒状の固形物として、本発明のセリ科植物由来処理物として使用することができる。造粒方法としては、特に限定はないが、転動造粒、攪拌造粒、流動層造粒、気流造粒、押出し造粒、圧縮成型造粒、解砕造粒、噴射造粒又は噴霧造粒等が例示される。粉状の当該セリ科植物由来処理物を液体、例えば水やアルコール等に溶解して液状とし、本発明のセリ科植物由来処理物として使用することもできる。
また、本発明においては、有効成分そのものを、例えば、本明細書に記載するインスリン量またはインスリン応答の変調を伴う疾患の治療用又は予防用の食品、飲料、飼料等として使用することができる。有効成分そのものを使用する態様としては、例えば、前記抽出物や粉砕物等を錠剤の形にしたものを挙げることができる。錠剤の製造は、公知の打錠方法に従って行えばよい。
また、本発明はセリ科植物由来処理物を高濃度又は高純度に含有する食品、飲料又は飼料を提供するが、これは従来の食品、飲料又は飼料と比べて、本発明の食品、飲料又は飼料中にインスリン様物質が高濃度及び／又は高純度に含有されていることを意味する。かかる食品、飲料又は飼料は、例えば、後述するようにして、従来の食品等に本発明の有効成分を含有せしめることにより製造することができる。
なお、本発明において、セリ科植物由来処理物を本発明の有効成分と称し、本発明の有効成分を含有するインスリン量またはインスリン応答の変調を伴う疾患の治療剤又は予防剤を本発明の治療剤又は予防剤と称することがある。
本発明に係る有効成分には、後述するように特に毒性は認められない。また、副作用の発生の心配もない。それゆえ、安全かつ適切に疾患の治療又は予防を行うことができる。従って、当該有効成分を含んでなる本発明の治療剤、予防剤、食品、飲料または飼料は、インスリン量またはインスリン応答の変調を伴う疾患の治療または予防に有効である。
また、本発明において、インスリン量またはインスリン応答の変調を伴う疾患としては、血中のインスリンレベルの変化、インスリンもしくはインスリン受容体の活性のレベルの変化、インスリン受容体の下流シグナルの異常、及びそれらの組み合わせから選択される因子によって特徴づけられる疾患が挙げられ、例えば、糖尿病、肥満症、動脈硬化、コカイン禁断症状、鬱血性心不全、心臓血管痙攣、大脳血管痙攣、クロム親和性細胞腫、神経節神経芽腫、ハンチントン病、高脂血症、高インスリン血症が例示される。糖尿病としては、Ｉ型糖尿病、ＩＩ型糖尿病のいずれもが例示される。また、ＩＩ型糖尿病としては、インスリンやインスリン分泌促進薬を投与しても治療効果の見られないようなインスリン抵抗性が要因の疾患についても包含される。
インスリンは脂肪前駆細胞の脂肪細胞への分化誘導を促進することが知られており、また成熟した脂肪細胞ではグルコースを取り込み、細胞内にトリグリセリドが蓄積されることが知られている（Ｒｕｂｉｎ Ｃ．Ｓ．ら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，Ｖｏｌ．２５３，Ｎｏ．２０，Ｐ７５７０〜７５７８（１９７８年））。すなわち、この方法を利用して、インスリンの代わりに被験物質を投与し、脂肪細胞への分化や細胞中のトリグリセリド生合成量を測定することで、被験物質のインスリン様作用を測定することができる。
また、インスリンはグルコース取り込み促進作用が知られており、成熟した脂肪細胞ではインスリンの作用により細胞内へのグルコースの取り込みが促進されることが知られている（Ｒｕｂｉｎ Ｃ．Ｓ．ら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，Ｖｏｌ．２５３，Ｎｏ．２０，Ｐ７５７９−７５８３（１９７８年））。すなわち、この方法を利用して、インスリンの代わりに被験物質を投与し、成熟脂肪細胞内へのグルコースの取り込み量を測定することで、被験物質のインスリン様作用を測定することができる。
本発明の治療剤または予防剤としては、本発明に係る前記有効成分を公知の医薬用担体と組み合わせて製剤化したものが挙げられる。
本発明の治療剤または予防剤の製造は、通常、前記有効成分を薬学的に許容できる液状または固体状の担体と配合することにより行われ、所望により溶剤、分散剤、乳化剤、緩衝剤、安定剤、賦形剤、結合剤、崩壊剤、滑沢剤等を加えて、錠剤、顆粒剤、散剤、粉末剤、カプセル剤等の固形剤、通常液剤、懸濁剤、乳剤等の液剤とすることができる。また、使用前に適当な担体の添加によって液状となし得る乾燥品や、その他、外用剤とすることもできる。
医薬用担体は、治療剤または予防剤の投与形態および剤型に応じて選択することができる。固体組成物からなる経口剤とする場合は、錠剤、丸剤、カプセル剤、散剤、細粒剤、顆粒剤等とすることができ、たとえば、デンプン、乳糖、白糖、マンニット、カルボキシメチルセルロース、コーンスターチ、無機塩などが利用される。また経口剤の調製に当っては、更に結合剤、崩壊剤、界面活性剤、潤沢剤、流動性促進剤、矯味剤、着色剤、香料などを配合することもできる。たとえば、錠剤または丸剤とする場合は、所望によりショ糖、ゼラチン、ヒドロキシプロピルセルロースなどの糖衣または胃溶性もしくは腸溶性物質のフィルムで被覆してもよい。液体組成物からなる経口剤とする場合は、薬理学的に許容される乳濁剤、溶液剤、懸濁剤、シロップ剤などとすることができ、たとえば、精製水、エタノールなどが担体として利用される。また、さらに所望により湿潤剤、懸濁剤のような補助剤、甘味剤、風味剤、防腐剤などを添加してもよい。
一方、非経口剤とする場合は、常法に従い本発明の前記有効成分を希釈剤としての注射用蒸留水、生理食塩水、ブドウ糖水溶液、注射用植物油、ゴマ油、落花生油、大豆油、トウモロコシ油、プロピレングリコール、ポリエチレングリコールなどに溶解ないし懸濁させ、必要に応じ、殺菌剤、安定剤、等張化剤、無痛化剤などを加えることにより調製することができる。また、固体組成物を製造し、使用前に無菌水または無菌の注射用溶媒に溶解して使用することもできる。
外用剤としては、経皮投与用または経粘膜（口腔内、鼻腔内）投与用の、固体、半固体状または液状の製剤が含まれる。また、座剤なども含まれる。たとえば、乳剤、ローション剤などの乳濁剤、外用チンキ剤、経粘膜投与用液剤などの液状製剤、油性軟膏、親水性軟膏などの軟膏剤、フィルム剤、テープ剤、パップ剤などの経皮投与用または経粘膜投与用の貼付剤などとすることができる。
以上の各種製剤は、それぞれ公知の医薬用担体などを利用して、適宜、常法により製造することができる。また、かかる製剤における有効成分の含有量は、その投与形態、投与方法などを考慮し、好ましくは後述の投与量範囲で当該有効成分を投与できるような量であれば特に限定されるものではない。
本発明の治療剤又は予防剤は、製剤形態に応じた適当な投与経路で投与される。投与方法も特に限定はなく、内用、外用および注射によることができる。注射剤は、たとえば静脈内、筋肉内、皮下、皮内などに投与し得、外用剤では、たとえば、座剤をその適する投与方法により投与すればよい。
本発明の治療剤または予防剤としての投与量は、その製剤形態、投与方法、使用目的および当該治療剤または予防剤の投与対象である患者の年齢、体重、症状によって適宜設定され一定ではない。一般には、製剤中に含有される前記有効成分の投与量で、好ましくはヒト（例えば、成人）１日当り０．１μｇ〜１ｇ／ｋｇである。もちろん投与量は、種々の条件によって変動するので、上記投与量より少ない量で十分な場合もあるし、あるいは範囲を超えて必要な場合もある。投与は、所望の投与量範囲内において、１日内において単回で、または数回に分けて行ってもよい。また、本発明の治療剤または予防剤はそのまま経口投与するほか、任意の飲食品に添加して日常的に摂取させることもできる。また、本発明の有効成分は、本発明の有効成分と同等の作用を有する物質、例えばインスリンと併用することにより、実施例２０に記載の通り、これらの相乗効果を期待することができる。
また、本発明は前記有効成分を含むインスリン様作用剤を提供することもできる。当該インスリン様作用剤としては、前記有効成分そのものであってもよく、また、前記有効成分を含む組成物であってもよい。当該インスリン様作用剤は、たとえば、前記有効成分を当該有効成分と同じ用途に使用可能な他の成分（例えばインスリン等）などと配合し、上記治療剤または予防剤の製造方法に準じて通常使用される試薬の形態に製造すればよい。当該インスリン様作用剤における前記有効成分の含有量は、当該インスリン様作用剤の投与方法、使用目的などを考慮し、本発明の所望の効果の発現が得られ得るような量であればよく、特に限定されるものではない。有効成分の含有量としては、例えば、０．０１〜１００重量％である。また、当該インスリン様作用剤の使用量も、本発明の所望の効果の発現が得られ得る量であれば特に限定されるものではない。特に、生体に投与して使用する場合には、好ましくは前記治療剤または予防剤における有効成分の投与量の範囲内で有効成分を投与できるような量で使用すればよい。インスリン様作用剤は、インスリン量またはインスリン応答の変調を伴う疾患において有用である。また、当該インスリン様作用剤は、これらの疾患に対する治療又は予防用の食品、飲料又は飼料の製造に使用することもできる。これらの食品、飲料又は飼料については、前述のインスリン量またはインスリン応答の変調を伴う疾患の治療用又は予防用の食品、飲料又は飼料に準じて使用することができる。また、当該インスリン様作用剤はインスリン量またはインスリン応答の変調を伴う疾患に対する薬物のスクリーニングにも有用である。さらに当該インスリン様作用剤は、インスリンによる細胞への作用メカニズム研究や、その細胞の物理的変化に関する機能研究にも有用である。
また、本発明のインスリン様作用剤をヒトに投与することにより、血中インスリン量の低下を期待することができる。すなわち、本発明のインスリン様作用剤を、治療又は予防にインスリン量の低下を要する疾患の治療又は予防剤として使用することもできる。当該疾患としては、特に限定はないが、高インスリン血症やアルツハイマー病等が例示される。また、インスリン受容体を介する刺激と延命効果については密接な関係があるという報告もあることから（Ｓｃｉｅｎｃｅ，ｖｏｌ．２９９，Ｐ５７２〜５７４（２００３年）；Ｎａｔｕｒｅ，ｖｏｌ．４２４，Ｐ２７７〜２８４（２００３年））、本発明のインスリン様作用剤を老化防止剤として使用することもできる。
本発明に係る有効成分には、後述するように特に毒性は認められない。また、副作用の発生の心配もない。それゆえ、安全かつ適切にインスリン様作用を発現することができる。従って、当該有効成分を含んでなる本発明の医薬、食品、飲料または飼料は、インスリン量またはインスリン応答の変調を伴う疾患の治療または予防に有効である。
また、本発明は、前記有効成分を含有、添加および／または希釈してなるインスリン量またはインスリン応答の変調を伴う疾患の治療用又は予防用の食品、飲料又は飼料を提供する。本発明の食品、飲料または飼料は、そのインスリン様作用により、インスリン量またはインスリン応答の変調を伴う疾患の症状改善、予防に極めて有用である。さらに、本発明の食品又は飲料は、血糖値を低下させる作用を有する、血糖値低下用の食品又は飲料であり、血糖値が気になる方や体脂肪が気になる方に対して有効な機能性食品又は飲料として有用である。
なお、本明細書において、「含有」とは食品、飲料または飼料中に本発明で使用される有効成分が含まれるという態様を、「添加」とは食品、飲料または飼料の原料に、本発明で使用される有効成分を添加するという態様を、「希釈」とは本発明で使用される有効成分に、食品、飲料または飼料の原料を添加するという態様をいうものである。
本発明の食品、飲料または飼料の製造法に特に限定はない。たとえば、配合、調理、加工などは一般の食品、飲料または飼料のものに従えばよく、それらの製造法により製造することができ、得られた食品、飲料または飼料にインスリン様作用を有する本発明に係る前記有効成分が含有されていれば良い。
本発明の食品または飲料としては特に限定はないが、たとえば、本発明に係る前記有効成分が含有されてなる、穀物加工品（小麦粉加工品、デンプン類加工品、プレミックス加工品、麺類、マカロニ類、パン類、あん類、そば類、麩、ビーフン、はるさめ、包装餅など）、油脂加工品（可塑性油脂、てんぷら油、サラダ油、マヨネーズ類、ドレッシングなど）、大豆加工品（豆腐類、味噌、納豆など）、食肉加工品（ハム、ベーコン、プレスハム、ソーセージなど）、水産製品（冷凍すりみ、かまぼこ、ちくわ、はんぺん、さつま揚げ、つみれ、すじ、魚肉ハム、ソーセージ、かつお節、魚卵加工品、水産缶詰、つくだ煮など）、乳製品（原料乳、クリーム、ヨーグルト、バター、チーズ、練乳、粉乳、アイスクリームなど）、野菜・果実加工品（ペースト類、ジャム類、漬け物類、果実飲料、野菜飲料、ミックス飲料など）、菓子類（チョコレート、ビスケット類、菓子パン類、ケーキ、餅菓子、米菓類など）、アルコール飲料（日本酒、中国酒、ワイン、ウイスキー、焼酎、ウオッカ、ブランデー、ジン、ラム酒、ビール、清涼アルコール飲料、果実酒、リキュールなど）、嗜好飲料（緑茶、紅茶、ウーロン茶、コーヒー、清涼飲料、乳酸飲料など）、調味料（しょうゆ、ソース、酢、みりんなど）、缶詰・瓶詰め・袋詰め食品（牛飯、釜飯、赤飯、カレー、その他の各種調理済み食品）、半乾燥または濃縮食品（レバーペースト、その他のスプレッド、そば・うどんの汁、濃縮スープ類）、乾燥食品（即席麺類、即席カレー、インスタントコーヒー、粉末ジュース、粉末スープ、即席味噌汁、調理済み食品、調理済み飲料、調理済みスープなど）、冷凍食品（すき焼き、茶碗蒸し、うなぎかば焼き、ハンバーグステーキ、シュウマイ、餃子、各種スティック、フルーツカクテルなど）、固形食品、液体食品（スープなど）、香辛料類などの農産・林産加工品、畜産加工品、水産加工品などが挙げられる。
本発明の食品または飲料は、前記有効成分が単独もしくは複数含有、添加および／または希釈されており、その含有量がインスリン様作用を発現するための必要量に相当するものであれば特にその形状に限定はなく、タブレット状、顆粒状、カプセル状等の形状の経口的に摂取可能な形状物も包含する。
また、本発明の飲料については、本発明の有効成分と、セリ科以外の植物、例えば野菜や果実等の搾汁液と混合もしくはセリ科植物と同時に搾汁して健康飲料とすることもできる。例えば、アシタバの搾汁液を水で希釈したり、ニンジン、小松菜、カブ、チンゲンサイ、トマト、ミカン、レモン、グレープフルーツ、キウイ、ほうれん草、ラディッシュ、大根、白菜、キャベツ、サラダ菜、レタス、ニラ、オクラ、ピーマン、キュウリ、インゲン、えだまめ、エンドウ、トウモロコシ、ニンニク、ルッコラ、ビワ、夏みかん、甘夏等の搾汁液、牛乳、豆乳等と混合してインスリン様作用を有する健康飲料とすることができる。
本発明の食品又は飲料中の前記有効成分の含有量は特に限定されず、その官能と活性発現の観点から適宜選択できるが、例えば食品１００重量％当たり好ましくは０．００００１重量％以上、より好ましくは０．０００１〜１０重量％、更に好適には０．０００６〜６重量％であり、例えば、飲料１００重量％当たり好ましくは０．００００１重量％以上、より好ましくは０．０００１〜１０重量％、更に好適には０．０００６〜６重量％である。また本発明の食品又は飲料は、好ましくは、それらに含有される有効成分が、例えばヒト（例えば、成人）１日当たり０．００１ｍｇ〜１０ｇ／ｋｇ、好ましくは０．１ｍｇ〜１ｇ／ｋｇとなるように摂取すればよい。
また、前記するように、有効成分を錠剤の形で食品等として提供する場合、有効成分の含有量としては、例えば、０．０１〜１００重量％である。一方、搾汁液をそのまま飲料とする場合、本発明の有効成分の含有量は、例えば、０．０１〜１００重量％である。
また、本発明は、前記有効成分を含有、添加および／または希釈してなる、インスリン様作用を有する生物用の飼料を提供するものであり、さらに、別の一態様として、前記有効成分を生物に投与することを特徴とする生物の飼育方法をも提供する。また、本発明の飼料の別の一態様として、前記有効成分を含有することを特徴とする生物飼育用剤が提供される。
これらの発明において、生物とはたとえば養殖動物、ペット動物などであり、養殖動物としては家畜、実験動物、家禽、魚類、甲殻類または貝類が例示される。飼料としては体調の維持および／または改善用飼料が例示される。生物飼育用剤としては浸漬用剤、飼料添加剤、飲料用添加剤が例示される。
これらの発明によれば、それらを適用する前記例示するような生物において、本発明に使用される前記有効成分のインスリン様作用に基づき、本発明の前記治療剤または予防剤によるのと同様の効果の発現が期待できる。すなわち、前記飼料等は、当該生物におけるインスリン量またはインスリン応答の変調を伴う疾患の治療または予防効果を有する。
本発明に使用される前記有効成分は通常、対象生物の体重１ｋｇ、１日当たり好ましくは０．０１〜２０００ｍｇ投与される。投与は、たとえば、当該有効成分を、対象生物に供する人工配合飼料の原料中に添加混合しておくか、人工配合飼料の粉末原料と混合した後、その他の原料にさらに添加混合することで行うことができる。また、前記有効成分の飼料中の含有量は特に限定されるものではなく、目的に応じて適宜設定すれば良いが、０．００１〜１５重量％の割合が好適である。
本発明の飼料の製造法に特に限定はなく、また配合も一般の飼料に準ずるものであればよく、製造された飼料中にインスリン様作用を有する本発明に係る前記有効成分が含まれていればよい。
本発明が適用できる生物としては限定はないが、養殖動物としては、ウマ、ウシ、ブタ、ヒツジ、ヤギ、ラクダ、ラマなどの家畜、マウス、ラット、モルモット、ウサギなどの実験動物、ニワトリ、アヒル、七面鳥、駝鳥などの家禽、ペット動物としてはイヌ、ネコなどが挙げられ、広く適用できる。
インスリン様作用を有する本発明に使用される前記有効成分を含んでなる飼料を摂取させること、またはインスリン様作用を有する本発明に使用される前記有効成分の含有液に対象生物を浸漬することにより、家畜、実験動物、家禽、ペット動物などの体調を良好に維持し、または、改善させたりすることができる。これらの例は、本発明の飼育方法に包含される。
また、本発明は前記有効成分を含む細胞へのグルコース取り込み促進剤を提供することもできる。当該グルコース取り込み促進剤としては、前記有効成分そのものであってもよく、また、前記有効成分を含む組成物であってもよい。当該グルコース取り込み促進剤は、たとえば、前記有効成分を当該有効成分と同じ用途に使用可能な他の成分（例えばインスリン等）などと配合し、上記治療剤または予防剤の製造方法に準じて通常使用される試薬の形態に製造すればよい。当該グルコース取り込み促進剤における前記有効成分の含有量は、当該グルコース取り込み促進剤の投与方法、使用目的などを考慮し、本発明の所望の効果の発現が得られ得るような量であればよく、特に限定されるものではない。有効成分の含有量としては、例えば、０．０１〜１００重量％である。また、該グルコース取り込み促進剤の使用量も、本発明の所望の効果の発現が得られ得る量であれば特に限定されるものではない。特に、生体に投与して使用する場合には、好ましくは前記治療剤または予防剤における有効成分の投与量の範囲内で有効成分を投与できるような量で使用すればよい。当該グルコース取り込み促進剤は、治療又は予防に細胞へのグルコース取り込み促進作用を要する疾患の治療又は予防に有用である。当該疾患としては、例えば上記のインスリン量またはインスリン応答の変調を伴う疾患のほか、心臓疾患、特に心筋梗塞、虚血後の心臓損傷等が例示される。また、当該グルコース取り込み促進剤は、細胞によるグルコースの取り込みを促進することから、筋肉細胞においては当該作用が機能することにより、筋肉増強作用、疲労回復作用を誘発することができる。また、当該グルコース取り込み促進剤は、これらの疾患に対する治療又は予防用の食品、飲料又は飼料の製造に使用することもできる。これらの食品、飲料又は飼料については、前述のインスリン量またはインスリン応答の変調を伴う疾患の治療用又は予防用の食品、飲料又は飼料に準じて使用することができる。また、当該グルコース取り込み促進剤は上記の治療又は予防に細胞へのグルコース取り込み促進作用を要する疾患に対する薬物のスクリーニングにも有用である。さらに当該グルコース取り込み促進剤は、細胞によるグルコース取り込み作用のメカニズム研究やその細胞の物理的変化等の機能研究にも有用である。
また、本発明は前記有効成分を含む脂肪細胞への分化誘導剤を提供することもできる。当該分化誘導剤が脂肪細胞に分化誘導できる前駆細胞としては、脂肪細胞に分化しうる細胞であれば特に限定はないが、例えば前駆脂肪細胞の他、繊維芽細胞や間葉系幹細胞等が挙げられる。当該分化誘導剤としては、前記有効成分そのものであってもよく、また、前記有効成分を含む組成物であってもよい。当該分化誘導剤は、たとえば、前記有効成分を当該有効成分と同じ用途に使用可能な他の成分（例えばインスリン等）などと配合し、上記治療剤または予防剤の製造方法に準じて通常使用される試薬の形態に製造すればよい。当該分化誘導剤における前記有効成分の含有量は、当該分化誘導剤の投与方法、使用目的などを考慮し、本発明の所望の効果の発現が得られ得るような量であればよく、特に限定されるものではない。有効成分の含有量としては、例えば、０．０１〜１００重量％である。また、当該分化誘導剤の使用量も、本発明の所望の効果の発現が得られ得る量であれば特に限定されるものではない。特に、生体に投与して使用する場合には、好ましくは前記治療剤または予防剤における有効成分の投与量の範囲内で有効成分を投与できるような量で使用すればよい。当該分化誘導剤は、治療又は予防に脂肪細胞への分化誘導作用を要する疾患の治療又は予防に有用である。当該疾患としては、例えば上記のインスリン量またはインスリン応答の変調を伴う疾患のほか、痛風、脂肪肝、胆石症、月経異常、不妊症等が例示される。また、当該分化誘導剤は、これらの疾患に対する治療又は予防用の食品、飲料又は飼料の製造に使用することもできる。これらの食品、飲料又は飼料については、前述のインスリン量またはインスリン応答の変調を伴う疾患の治療用又は予防用の食品、飲料又は飼料に準じて使用することができる。また、当該分化誘導剤は上記の治療又は予防に脂肪細胞への分化誘導作用を要する疾患に対する薬物のスクリーニングにも有用である。さらに当該分化誘導剤は、脂肪細胞への分化誘導作用のメカニズム研究やその物理的変化等の機能研究にも有用である。
本発明で使用される前記有効成分は、その作用発現にとっての有効量の投与を行っても毒性は認められない。たとえば経口投与の場合、アシタバ、セロリ又はパセリのエタノール抽出物をそれぞれ１ｇ／ｋｇでマウスに単回投与しても死亡例は認められない。また、前記有効成分は、ラットへの経口投与において１ｇ／ｋｇを経口単回投与しても死亡例は認められない。

以下、実施例を挙げて、本発明を更に具体的に説明するが、本発明はこれらの記載に何ら限定されるものではない。なお、実施例における％は特に記載がなければすべて容量％を意味する。
実施例１ アシタバ根抽出画分の調製
（１）アシタバ（Ａｎｇｅｌｉｃａ Ｋｅｉｓｋｅｉ）根部を凍結乾燥後、細かく粉砕したもの１０ｇに１００ｍＬのクロロホルムを加え、室温で３０分間抽出を行った。吸引ろ過後、残渣について同じ操作を繰り返した。これらのクロロホルム抽出液を合わせて、ロータリーエバポレーターで減圧濃縮後、乾固物を２．５ｍＬのジメチルスルホキシドに溶解してアシタバ根クロロホルム抽出画分を調製した。
（２）実施例１−（１）のクロロホルム抽出後残渣に１００ｍＬのエタノールを加え、室温で３０分間抽出を行った。吸引ろ過後、残渣について同じ操作を繰り返した。エタノール抽出液を合わせて、ロータリーエバポレーターで減圧濃縮後、乾固物を２．５ｍＬのジメチルスルホキシドに溶解してアシタバ根エタノール抽出画分を調製した。
実施例２ アシタバ根抽出画分の分画
アシタバ根部の乾燥粉末５．８ｋｇに２４リットルの酢酸エチルを加え、室温で３時間抽出を行い、吸引ろ過後、酢酸エチル抽出液と残渣に分けた。得られた酢酸エチル抽出液２００ｍＬについて、ロータリーエバポレーターで減圧濃縮後、クロロホルムに溶解し、シリカクロマトを用いて分画した。以下にその条件について示す。シリカゲルにはＢＷ−３００ＳＰ（富士シリシア化学社製：１００ｍＬ）を用いた。クロロホルム（５００ｍＬ）、クロロホルム：メタノール（容量比、以下、同様）＝１００：１（３００ｍＬ）、酢酸エチル（２００ｍＬ）の順に溶出を行った。溶出液は画分１（２８０ｍＬ）、画分２（２００ｍＬ）、画分３（２８０ｍＬ）、画分４（２４０ｍＬ）の順に分画、回収し、それぞれ減圧濃縮、乾固の後、２ｍＬのエタノールに溶解し、シリカカラム分画フラクション１〜４を得た。
実施例３ アシタバ根抽出画分による脂肪細胞への分化誘導
（１）脂肪細胞への分化誘導
脂肪細胞への分化誘導は前述のＲｕｂｉｎ Ｃ．Ｓ．らの方法を一部改良して行った。２００μＭアスコルビン酸を含む１０％ウシ胎児血清（ギブコ社製）含有ダルベッコ改良イーグル培地（シグマ社製，Ｄ６０４６）（以下Ａ−Ｄ−ＭＥＭ培地）に前駆脂肪細胞株３Ｔ３−Ｌ１（ＡＴＣＣ ＣＣＬ−９２．１）を４×１０^３個／ｍＬになるように懸濁し、１２穴マイクロタイタープレートのウェルに２ｍＬずつ加えて５％炭酸ガス存在下、３７℃で７日間培養した。なお、２、４日目に同培地により培地交換を行った。７日目に、０．２５μＭデキサメタゾンを含むＡ−Ｄ−ＭＥＭ培地に交換後、終濃度０．１％となるように実施例１−（１）で調製したアシタバ根クロロホルム抽出画分あるいは実施例１−（２）で調製したアシタバ根エタノール抽出画分を添加した。なお陽性対照として４μｌの５ｍｇ／ｍＬインスリン（タカラバイオ社製）水溶液添加の区分を、陰性対照として水添加の区分を設定した。各成分添加後４５時間の時点でＡ−Ｄ−ＭＥＭ培地に交換し、各ウェルに４μｌのアシタバ根クロロホルム抽出画分あるいはアシタバ根エタノール抽出画分、陽性対照として２μｌの５ｍｇ／ｍＬインスリン水溶液、陰性対照として水を添加し，さらに７日間培養した。なお、２、４日目に培地を交換し、その際各ウェルに、４μｌのアシタバ根クロロホルム抽出画分あるいはアシタバ根エタノール抽出画分、陽性対照として２μｌの５ｍｇ／ｍＬインスリン水溶液、陰性対照として水を添加した。
（２）トリグリセリド生合成量の測定
成熟脂肪細胞への分化誘導の指標として、またインスリン様作用の評価として細胞中のトリグリセリドの生合成量を測定した。培養終了後、培地を除き、リン酸緩衝塩溶液で２回細胞を洗浄し、１ｍＬのヘキサン：イソプロパノール＝３：２の溶媒を添加して３０分間室温に置いた後上清を回収した。この操作を再度繰り返し、得られた２ｍＬの上清を濃縮乾固した。沈殿を１００μｌのイソプロパノールに溶解後、溶液１０μｌ中に含まれるトリグリセリドの量をトリグリセライドＧ−テスト（和光純薬社製、ｃｏｄｅ ２７６−６９８０１）を用い測定した。また、測定は全て２連で行った。
この結果、水添加区分と比較してアシタバ根クロロホルム抽出画分あるいはアシタバ根エタノール抽出画分添加区分においてインスリンを添加した区分と同様にトリグリセリド生合成の誘導が確認できた。すなわち、アシタバ根クロロホルム抽出画分およびアシタバ根エタノール抽出画分に脂肪細胞への分化誘導作用が認められた。これを第１図に示す。第１図は、横軸に各サンプルを、縦軸にトリグリセリド生合成量（μｇ／ｍＬ）を示す。
実施例４ アシタバ根抽出物分画フラクションによる脂肪細胞への分化誘導
実施例２によって調製したアシタバ根抽出画分の各フラクションの脂肪細胞への分化誘導活性を実施例３記載の方法に準じて測定した。サンプルとして２．８７５ｍｇ／ｍＬシリカカラム分画フラクション３あるいは１０．８２５ｍｇ／ｍＬのシリカカラム分画フラクション４をそれぞれ４μｌ添加した。なお陽性対照として４μｌの５ｍｇ／ｍＬインスリン水溶液添加の区分を、陰性対照として水添加の区分を設定した。この後、実施例３記載の方法と同様に、培地およびサンプルの交換を行い、サンプル添加７日後に細胞中のトリグリセリドの量を測定した。
この結果、水添加区分と比較してシリカカラム分画フラクション３およびシリカカラム分画フラクション４添加区分においてインスリンを添加した区分と同様にトリグリセリド生合成の誘導が確認できた。すなわち、シリカカラム分画フラクション３およびシリカカラム分画フラクション４に脂肪細胞への分化誘導作用が認められた。これを第２図に示す。第２図は、横軸に各サンプルを、縦軸にトリグリセリド生合成量（μｇ／ｍＬ）を示す。
実施例５ アシタバ根抽出画分のグルコース取り込み促進作用
（１）成熟脂肪細胞の調製
成熟脂肪細胞への分化誘導は前述のＲｕｂｉｎ Ｃ．Ｓ．らの方法を一部改良し、行った。２００μＭアスコルビン酸を含む１０％ウシ胎児血清（ギブコ社製）含有ダルベッコ改良イーグル培地（シグマ社製，Ｄ６０４６）に３Ｔ３−Ｌ１細胞（ＡＴＣＣ ＣＣＬ−９２．１）を４×１０^３個／ｍＬになるように懸濁し、１２穴マイクロタイタープレートのウエルに２ｍＬずつ加えて５％炭酸ガス存在下、３７℃で７日間培養した。７日目に、２００μＭアスコルビン酸、０．２５μＭデキサメタゾン及び１０μｇ／ｍＬインスリン（タカラバイオ社製）、０．５ｍＭ ３−イソブチル１−メチルキサンチン（ナカライテスク社製、１９６２４−４４）を含む１０％ウシ胎児血清（ギブコ社製）含有ダルベッコ改良イーグル培地２ｍＬに交換した。４５時間後に２００μＭアスコルビン酸及び５μｇ／ｍＬインスリンを含む１０％ウシ胎児血清含有ダルベッコ改良イーグル培地２ｍＬに交換し、さらに２日後、４日後に同培地を交換し７日間培養することで成熟脂肪細胞を調製した。
（２）成熟脂肪細胞へのグルコース取り込み促進作用の測定
グルコース取り込み促進作用の評価として、またインスリン様作用の評価として成熟脂肪細胞においてサンプル刺激時の細胞内への２−デオキシグルコース取り込み量を測定した。
培養終了後、培地を除き、０．１ｗ／ｖ％牛血清アルブミン（シグマ社製、Ａ８０２２）含有ダルベッコ改良イーグル培地で２回細胞を洗浄した後、各ウエルそれぞれ終濃度０．０２５％、０．００８％のアシタバ根クロロホルム抽出画分ジメチルスルホキシド溶液あるいはアシタバ根エタノール抽出画分ジメチルスルホキシド溶液を含む同培地１ｍＬを添加し、５％炭酸ガス存在下、３７℃で一晩培養した。なお、陰性対照としてサンプルを添加しない区分を設定した。一晩培養後、ヘペス緩衝塩溶液（１４０ｍＭ ＮａＣｌ、５ｍＭ ＫＣｌ、２．５ｍＭ ＭｇＳＯ_４、１ｍＭ ＣａＣｌ_２、２０ｍＭ ＨＥＰＥＳ−Ｎａ（ｐＨ７．４））で２回細胞を洗浄し、各ウエルにそれぞれ終濃度０．０２５％、０．００８％のアシタバ根クロロホルム抽出画分ジメチルスルホキシド溶液あるいはアシタバ根エタノール抽出画分ジメチルスルホキシド溶液を含む同緩衝液０．９ｍＬを添加し、３７℃で７５分間培養した。この際陽性対照として、４５分間経過した時点でサンプルを添加していないウエルで終濃度１μｇ／ｍＬとなるようにインスリンを添加した区分を設定した。その後、０．５μＣｉ／ｍＬ ２−デオキシ−［１，２−^３Ｈ（Ｎ）］−グルコース（パーキンエルマーライフサイエンス社製、ＮＥＴ５４９Ａ）、１ｍＭ ２−デオキシグルコース（ナカライテスク社製、１０７２２−１１）含有ヘペス塩緩衝液１００μＬを添加し、さらに３７℃で１０分間培養した。培養終了後、上清を除去し、４℃に冷却したリン酸塩緩衝液で３回細胞を洗浄後、１％ノニデットＰ−４０含有リン酸塩緩衝液０．５ｍＬを添加し細胞を溶解することで、細胞中に取り込まれた２−デオキシ−［１，２−^３Ｈ（Ｎ）］−グルコースを溶出した。上清２５μｌを用いてＡｑｕａｓｏｌ−２（パーキンエルマーライフサイエンス社製、６ＮＥ９５２９）をシンチレーションカクテルとして液体シンチレーションカウンターＬＳ６５００（ベックマン社製）により放射活性を測定した。
この結果、各濃度のアシタバ根クロロホルム抽出画分およびアシタバ根エタノール抽出画分を添加した区分で陰性対照と比較してインスリンを添加した区分と同様に２−デオキシ［１，２−^３Ｈ（Ｎ）］−グルコース取り込みの促進が見られた。すなわち、アシタバ根クロロホルム抽出画分およびアシタバ根エタノール抽出画分にグルコース取り込み促進活性が認められた。これを第３図に示す。第３図は、横軸に各サンプルを、縦軸に２−デオキシ［１，２−^３Ｈ（Ｎ）］−グルコース量（ｄｐｍ）を示す。
実施例６ アシタバ葉抽出画分の調製
アシタバ葉の乾燥粉末２ｇずつに４０ｍＬの蒸留水、エタノール又は酢酸エチルを加え、３０分間抽出を行い、遠心分離にて抽出液と残渣に分けた。次いで残渣に対して各溶媒３０ｍＬによる抽出操作を２回繰り返した。なお、水抽出は６０℃、エタノール抽出、酢酸エチル抽出は室温で行った。得られた抽出液を集めてロータリーエバポレーターで濃縮した。最終的に、水抽出液については１０ｍＬの蒸留水に溶解し、アシタバ葉水抽出画分を得た。エタノール抽出液については８ｍＬのジメチルスルホキシドに溶解し、アシタバ葉エタノール抽出画分を得た。酢酸エチル抽出液については５ｍＬのジメチルスルホキシドに溶解し、アシタバ葉酢酸エチル抽出画分を得た。
実施例７ アシタバ葉抽出画分による脂肪細胞への分化誘導
実施例６によって調製したアシタバ葉水抽出画分およびアシタバ葉エタノール抽出画分の成熟脂肪細胞への分化誘導作用（インスリン様活性）を実施例３の方法に準じて測定した。
すなわち、サンプルとして、各ウエルにそれぞれ終濃度０．４％、０．２％、０．１％のアシタバ葉水抽出画分水溶液、あるいは各ウエルにそれぞれ終濃度０．０６６％、０．０２２％のアシタバ葉エタノール抽出画分ジメチルスルホキシド溶液を添加した区分を設定した。なお陽性対照として４μｌの５ｍｇ／ｍＬインスリン（タカラバイオ社製）水溶液添加の区分を、陰性対照としてジメチルスルホキシド添加の区分を設定した。この後実施例３記載の方法と同様に、培地およびサンプルの交換を行い、サンプル添加７日後に細胞中のトリグリセリドの量を測定した。
この結果、各濃度のアシタバ葉水抽出画分およびアシタバ葉エタノール抽出画分添加区分においてトリグリセリド生合成の誘導が認められた。すなわち、アシタバ葉水抽出画分およびアシタバ葉エタノール抽出画分に成熟脂肪細胞への分化誘導作用が認められた。これを第４図に示す。第４図は、横軸に各サンプルを、縦軸にトリグリセリド生合成量（μｇ／ｍＬ）を示す。
実施例８ セロリ葉抽出画分の調製
セロリ葉の乾燥粉末２ｇずつに４０ｍＬの蒸留水、エタノール又は酢酸エチルを加え、３０分間抽出を行い、遠心分離にて抽出液と残渣に分けた。次いで残渣に対して各溶媒３０ｍＬによる抽出操作を２回繰り返した。なお、水抽出は６０℃、エタノール抽出、酢酸エチル抽出は室温で行った。得られた抽出液を集めてロータリーエバポレーターで濃縮した。最終的に、水抽出液については１０ｍＬの蒸留水に溶解し、セロリ葉水抽出画分を得た。エタノール抽出液については５ｍＬのジメチルスルホキシドに溶解し、セロリ葉エタノール抽出画分を得た。酢酸エチル抽出液については５ｍＬのジメチルスルホキシドに溶解し、セロリ葉酢酸エチル抽出画分を得た。
実施例９ セロリ葉抽出画分による脂肪細胞への分化誘導
実施例８によって調製したセロリ葉水抽出画分、セロリ葉エタノール抽出画分およびセロリ葉酢酸エチル抽出画分の成熟脂肪細胞への分化誘導作用（インスリン様活性）を実施例３の方法に準じて測定した。
すなわち、サンプルとして、各ウエルにそれぞれ終濃度０．１％のセロリ葉水抽出画分水溶液、各ウエルにそれぞれ終濃度０．２％、０．０６６％、０．０２２％のセロリ葉エタノール抽出画分ジメチルスルホキシド溶液あるいはセロリ葉酢酸エチル抽出画分ジメチルスルホキシド溶液を添加した区分を設定した。なお陽性対照として４μｌの５ｍｇ／ｍＬインスリン（タカラバイオ社製）水溶液添加の区分を、陰性対照としてジメチルスルホキシド添加の区分を設定した。この後、実施例３記載の方法と同様に、培地およびサンプルの交換を行い、サンプル添加７日後に細胞中のトリグリセリドの量を測定した。
この結果、各濃度のセロリ葉水抽出画分、セロリ葉エタノール抽出画分およびセロリ葉酢酸エチル抽出画分添加区分においてトリグリセリド生合成の誘導が認められた。すなわち、セロリ葉水抽出画分、セロリ葉エタノール抽出画分およびセロリ葉酢酸エチル抽出画分に成熟脂肪細胞への分化誘導作用が認められた。これを第５図に示す。第５図は、横軸に各サンプルを、縦軸にトリグリセリド生合成量（μｇ／ｍＬ）を示す。
実施例１０ セロリ葉抽出画分によるグルコース取り込み促進作用
実施例８によって調製したセロリ葉エタノール抽出画分およびセロリ葉酢酸エチル抽出画分のグルコース取り込み促進作用の評価として、またインスリン様作用の評価として、実施例５記載の方法に準じて成熟脂肪細胞でのサンプル刺激時の細胞内への２−デオキシグルコース取り込み量を測定した。
すなわち、サンプルとして各ウエルにそれぞれ終濃度０．２％、０．０６６％のセロリ葉エタノール抽出画分ジメチルスルホキシド溶液あるいはセロリ葉酢酸エチル抽出画分ジメチルスルホキシド溶液を添加した。なお、陰性対照としてサンプルを添加しない区分を、陽性対照として、終濃度１μｇ／ｍＬとなるようにインスリンを添加した区分を設定した。この後同様に、細胞中に取り込まれた２−デオキシ−［１，２−^３Ｈ（Ｎ）］−グルコース量を測定した。
この結果、各濃度のセロリ葉エタノール抽出画分およびセロリ葉酢酸エチル抽出画分を添加した区分で陰性対照と比較してインスリンを添加した区分と同様に２−デオキシ［１，２−^３Ｈ（Ｎ）］−グルコース取り込みの促進が見られた。すなわち、セロリ葉エタノール抽出画分およびセロリ葉酢酸エチル抽出画分にグルコース取り込み促進活性が認められた。これを第６図に示す。第６図は、横軸に各サンプルを、縦軸に２−デオキシ［１，２−^３Ｈ（Ｎ）］−グルコース量（ｄｐｍ）を示す。
実施例１１ パセリ抽出画分の調製
パセリの乾燥粉末２ｇずつに４０ｍＬの蒸留水、エタノール又は酢酸エチルを加え、３０分間抽出を行い、遠心分離にて抽出液と残渣に分けた。次いで残渣に対して各溶媒３０ｍＬによる抽出操作を２回繰り返した。なお、水抽出は６０℃、エタノール抽出、酢酸エチル抽出は室温で行った。得られた抽出液を集めてロータリーエバポレーターで濃縮した。最終的に、水抽出液については１０ｍＬの蒸留水に溶解し、パセリ水抽出画分を得た。エタノール抽出液については５ｍＬのジメチルスルホキシドに溶解し、パセリエタノール抽出画分を得た。酢酸エチル抽出液については５ｍＬのジメチルスルホキシドに溶解し、パセリ酢酸エチル抽出画分を得た。
実施例１２ パセリ抽出画分による脂肪細胞への分化誘導
実施例１１によって調製したパセリ水抽出画分の成熟脂肪細胞への分化誘導作用（インスリン様活性）を実施例３の方法に準じて測定した。
すなわち、サンプルとして、各ウエルにそれぞれ終濃度０．４％、０．２％、０．１％のパセリ水抽出画分水溶液を添加した区分を設定した。なお陽性対照として４μｌの５ｍｇ／ｍＬインスリン（タカラバイオ社製）水溶液添加の区分を、陰性対照としてジメチルスルホキシド添加の区分を設定した。この後実施例３記載の方法と同様に、培地およびサンプルの交換を行い、サンプル添加７日後に細胞中のトリグリセリドの量を測定した。
この結果、各濃度のパセリ水抽出画分添加区分においてトリグリセリド生合成の誘導が認められた。すなわち、パセリ水抽出画分に成熟脂肪細胞への分化誘導作用が認められた。これを第７図に示す。第７図は、横軸に各サンプルを、縦軸にトリグリセリド生合成量（μｇ／ｍＬ）を示す。
実施例１３ パセリ抽出画分によるグルコース取り込み促進作用
実施例１１によって調製したパセリエタノール抽出画分およびパセリ酢酸エチル抽出画分のグルコース取り込み促進作用の評価として、またインスリン様作用の評価として、実施例５記載の方法に準じて成熟脂肪細胞でのサンプル刺激時の細胞内への２−デオキシグルコース取り込み量を測定した。
すなわち、サンプルとして各ウエルにそれぞれ終濃度０．２％、０．０６６％のパセリエタノール抽出画分ジメチルスルホキシド溶液あるいはパセリ酢酸エチル抽出画分ジメチルスルホキシド溶液を用いた。なお、陰性対照としてサンプルを添加しない区分を、陽性対照として、終濃度１μｇ／ｍＬとなるようにインスリンを添加した区分を設定した。この後同様に、細胞中に取り込まれた２−デオキシ−［１，２−^３Ｈ（Ｎ）］−グルコース量を測定した。
この結果、各濃度のパセリエタノール抽出画分およびパセリ酢酸エチル抽出画分を添加した区分で陰性対照と比較してインスリンを添加した区分と同様に２−デオキシ［１，２−^３Ｈ（Ｎ）］−グルコース取り込みの促進が見られた。すなわち、パセリエタノール抽出画分およびパセリ酢酸エチル抽出画分にグルコース取り込み促進活性が認められた。これを第８図に示す。第８図は、横軸に各サンプルを、縦軸に２−デオキシ［１，２−^３Ｈ（Ｎ）］−グルコース量（ｄｐｍ）を示す。
実施例１４ アシタバ根エタノール抽出画分及び酢酸エチル抽出画分の調製
アシタバ根の乾燥粉末２ｇずつに４０ｍＬのエタノール又は酢酸エチルを加え、３０分間、室温で抽出を行い、遠心分離にて抽出液と残渣に分けた。次いで残渣に対して各溶媒３０ｍＬによる抽出操作を２回繰り返した。得られた抽出液を集めてロータリーエバポレーターで濃縮した。最終的に、エタノール抽出液については１ｍＬのジメチルスルホキシドに溶解し、アシタバ根エタノール抽出画分を得た。酢酸エチル抽出液については１ｍＬのジメチルスルホキシドに溶解し、アシタバ根酢酸エチル抽出画分を得た。
実施例１５ アシタバ根エタノール抽出画分及び酢酸エチル抽出画分による脂肪細胞への分化誘導
実施例１４によって調製したアシタバ根エタノール抽出画分およびアシタバ根酢酸エチル抽出画分の成熟脂肪細胞への分化誘導作用（インスリン様活性）を実施例３の方法に準じて測定した。
すなわち、サンプルとして、各ウエルにそれぞれ終濃度０．０５、０．０２５％のアシタバ根エタノール抽出画分ジメチルスルホキシド溶液あるいはアシタバ根酢酸エチル抽出画分ジメチルスルホキシド溶液を添加した区分を設定した。なお陽性対照として４μｌの５ｍｇ／ｍＬインスリン（タカラバイオ社製）水溶液添加の区分を、陰性対照としてジメチルスルホキシド添加の区分を設定した。この後、実施例３記載の方法と同様に、培地およびサンプルの交換を行い、サンプル添加７日後に細胞中のトリグリセリドの量を測定した。
この結果、各濃度のアシタバ根エタノール抽出画分およびアシタバ根酢酸エチル抽出画分添加区分においてトリグリセリド生合成の誘導が認められた。すなわち、アシタバ根エタノール抽出画分およびアシタバ根酢酸エチル抽出画分に成熟脂肪細胞への分化誘導作用が認められた。これを第９図に示す。第９図は、横軸に各サンプルを、縦軸にトリグリセリド生合成量（μｇ／ｍＬ）を示す。
実施例１６ アシタバ根エタノール抽出画分及び酢酸エチル抽出画分によるグルコース取り込み促進作用
実施例１４によって調製したアシタバ根エタノール抽出画分およびアシタバ根酢酸エチル抽出画分のグルコース取り込み促進作用の評価として、またインスリン様作用の評価として、実施例５記載の方法に準じて成熟脂肪細胞でのサンプル刺激時の細胞内への２−デオキシグルコース取り込み量を測定した。
すなわち、サンプルとして各ウエルにそれぞれ終濃度０．１％、０．０５％のアシタバ根エタノール抽出画分ジメチルスルホキシド溶液あるいはアシタバ根酢酸エチル抽出画分ジメチルスルホキシド溶液を添加した。なお、陰性対照としてサンプルを添加しない区分を、陽性対照として、終濃度１μｇ／ｍＬとなるようにインスリンを添加した区分を設定した。この後同様に、細胞中に取り込まれた２−デオキシ−［１，２−^３Ｈ（Ｎ）］−グルコース量を測定した。
この結果、各濃度のアシタバ根エタノール抽出画分およびアシタバ根酢酸エチル抽出画分を添加した区分で陰性対照と比較してインスリンを添加した区分と同様に２−デオキシ［１，２−^３Ｈ（Ｎ）］−グルコース取り込みの促進が見られた。すなわち、アシタバ根エタノール抽出画分およびアシタバ根酢酸エチル抽出画分にグルコース取り込み促進活性が認められた。これを第１０図に示す。第１０図は、横軸に各サンプルを、縦軸に２−デオキシ［１，２−^３Ｈ（Ｎ）］−グルコース量（ｄｐｍ）を示す。
実施例１７ アシタバ葉抽出画分によるグルコース取り込み促進作用
実施例６によって調製したアシタバ葉エタノール抽出画分およびアシタバ葉酢酸エチル抽出画分のグルコース取り込み促進作用の評価として、またインスリン様作用の評価として、実施例５記載の方法に準じて成熟脂肪細胞でのサンプル刺激時の細胞内への２−デオキシグルコース取り込み量を測定した。
すなわち、サンプルとして各ウエルにそれぞれ終濃度０．２％、０．１％のアシタバ葉エタノール抽出画分ジメチルスルホキシド溶液あるいはアシタバ葉酢酸エチル抽出画分ジメチルスルホキシド溶液を添加した。なお、陰性対照としてサンプルを添加しない区分を、陽性対照として、終濃度１μｇ／ｍＬとなるようにインスリンを添加した区分を設定した。この後同様に、細胞中に取り込まれた２−デオキシ−［１，２−^３Ｈ（Ｎ）］−グルコース量を測定した。
この結果、各濃度のアシタバ葉エタノール抽出画分およびアシタバ葉酢酸エチル抽出画分を添加した区分で陰性対照と比較してインスリンを添加した区分と同様に２−デオキシ［１，２−^３Ｈ（Ｎ）］−グルコース取り込みの促進が見られた。すなわち、アシタバ葉エタノール抽出画分およびアシタバ葉酢酸エチル抽出画分にグルコース取り込み促進活性が認められた。これを第１１図に示す。第１１図は、横軸に各サンプルを、縦軸に２−デオキシ［１，２−^３Ｈ（Ｎ）］−グルコース量（ｄｐｍ）を示す。
実施例１８ アシタバ根抽出物分画フラクションによるグルコース取り込み促進作用
実施例２によって調製したアシタバ根抽出画分の各フラクションのグルコース取り込み促進作用の評価として、またインスリン様作用の評価として、実施例５記載の方法に準じて成熟脂肪細胞でのサンプル刺激時の細胞内への２−デオキシグルコース取り込み量を測定した。
すなわち、サンプルとして終濃度０．０３ｍｇ／ｍＬのシリカカラム分画フラクション１、終濃度０．０１３ｍｇ／ｍＬのシリカカラム分画フラクション２、終濃度０．００７７ｍｇ／ｍＬのシリカカラム分画フラクション３あるいは終濃度０．００９６ｍｇ／ｍＬのシリカカラム分画フラクション４を用いた。なお、陰性対照としてサンプルを添加しない区分を、陽性対照として、終濃度１μｇ／ｍＬとなるようにインスリンを添加した区分を設定した。この後同様に、細胞中に取り込まれた２−デオキシ−［１，２−^３Ｈ（Ｎ）］−グルコース量を測定した。
この結果、アシタバ根抽出画分の各フラクションを添加した区分で陰性対照と比較してインスリンを添加した区分と同様に２−デオキシ［１，２−^３Ｈ（Ｎ）］−グルコース取り込みの促進が見られた。すなわち、アシタバ根抽出画分のシリカカラム分画フラクション１、２、３、４のいずれにもグルコース取り込み促進活性が認められた。これを第１２図に示す。第１２図は、横軸に各サンプルを、縦軸に２−デオキシ［１，２−^３Ｈ（Ｎ）］−グルコース量（ｄｐｍ）を示す。
実施例１９ アシタバ根エタノール抽出画分によるグルコース取り込み促進作用のサイトカラシンＢによる阻害
実施例１６により示したアシタバ根エタノール抽出画分のグルコース取り込み促進作用が、グルコーストランスポーターの阻害剤であるサイトカラシンＢにより阻害されるか、実施例５記載の方法に準じて成熟脂肪細胞でのサンプル刺激時の細胞内への２−デオキシグルコース取り込みにおけるサイトカラシンＢの影響を試験した。
すなわち、サンプルとして終濃度０．１％となるようにアシタバ根エタノール抽出画分ジメチルスルホキシド溶液を添加した区分を設定した。なお、陰性対照としてサンプルを添加しない区分を、陽性対照として、終濃度１μｇ／ｍＬとなるようにインスリンを添加した区分を設定した。さらに各区分においてインスリンを添加した区分を設定した時期と同じ時期に終濃度４０μＭとなるようにサイトカラシンＢ（ナカライテスク社製、１０４３５−８１）を添加する区分を設定した。この後同様に、細胞中に取り込まれた２−デオキシ−［１，２−^３Ｈ（Ｎ）］−グルコース量を測定した。
この結果、アシタバ根エタノール抽出画分を添加した区分で陰性対照と比較してインスリンを添加した区分と同様に２−デオキシ−［１，２−^３Ｈ（Ｎ）］−グルコース取り込みの促進が見られたが、各区分ともにサイトカラシンＢ添加により２−デオキシ−［１，２−^３Ｈ（Ｎ）］−グルコース取り込みはほぼ完全に抑制された。すなわち、アシタバ根エタノール抽出画分によるグルコース取り込み促進活性は、インスリンと同様にグルコーストランスポーターを介していることが確認できた。これを第１３図に示す。第１３図は、横軸に各サンプルを、縦軸に２−デオキシ−［１，２−^３Ｈ（Ｎ）］−グルコース量（ｄｐｍ）を示す。
実施例２０ アシタバ根エタノール抽出画分とインスリンによるグルコース取り込み促進相乗作用
実施例１４により調製したアシタバ根エタノール抽出画分と低濃度インスリンとのグルコース取り込み促進相乗作用の評価として、実施例５記載の方法に一部準じて成熟脂肪細胞でのサンプル刺激時の細胞内への２−デオキシグルコース取り込み量を測定した。
成熟脂肪細胞の調製は実施例５−（１）記載の方法に準じて行った。
培養終了後、培地を除き、０．１％（ｗ／ｖ）牛血清アルブミン（シグマ社製、Ａ８０２２）含有ダルベッコ改良イーグル培地で２回細胞を洗浄した後、終濃度０．０２％のアシタバ根エタノール抽出画分ジメチルスルホキシド溶液を含む同培地１ｍＬを添加し、５％炭酸ガス存在下、３７℃で一晩培養した。なお、陰性対照としてアシタバ根エタノール抽出画分を含まない区分を設定した。一晩培養後、ヘペス緩衝塩溶液（１４０ｍＭ ＮａＣｌ，５ｍＭ ＫＣｌ，２．５ｍＭ ＭｇＳＯ_４，１ｍＭ ＣａＣｌ_２，２０ｍＭ ＨＥＰＥＳ−Ｎａ（ｐＨ７．４））で２回細胞を洗浄し終濃度０．０２％のアシタバ根エタノール抽出画分を含む同緩衝液０．９ｍＬを添加し、３７℃で４５分間培養した。続いて終濃度０．００１μｇ／ｍＬとなるようにインスリンを添加しさらに３０分間培養した。この際、対照として、アシタバ根エタノール抽出画分を添加していないウエルで終濃度０．００１μｇ／ｍＬとなるようにインスリンを添加した区分を設定した。また、サンプルを添加していない区分を陰性対照とした。その後、実施例５−（２）記載の方法と同様に、細胞中に取り込まれた２−デオキシ−［１，２−^３Ｈ（Ｎ）］−グルコース量を測定した。
この結果、アシタバ根エタノール抽出画分を添加した区分で陰性対照と比較してインスリンを添加した区分と同様に２−デオキシ−［１，２−^３Ｈ（Ｎ）］−グルコース取り込みの促進が見られたが、インスリンと同時に添加した区分において、インスリン単独で添加した区分およびアシタバ根エタノール抽出画分単独で添加した区分のいずれよりも、グルコース取り込みの促進が認められた。すなわち、アシタバ根エタノール抽出画分には、インスリンと同時に添加することにより、グルコース取り込み促進活性を相乗的に増加させる作用があることが認められた。これを第１４図に示す。第１４図は、横軸に各サンプルを、縦軸に２−デオキシ−［１，２−^３Ｈ（Ｎ）］−グルコース量（ｄｐｍ）を示す。
実施例２１ アシタバ根抽出画分により分化誘導した脂肪細胞でのインスリン刺激グルコース取り込み促進
実施例１４によって調製したアシタバ根エタノール抽出画分によって分化誘導した脂肪細胞を得たのち、インスリンの刺激によって該細胞のグルコース取り込みが促進するか確認した。
すなわち、サンプルとして、終濃度０．０５％のアシタバ根エタノール抽出画分ジメチルスルホキシド溶液を添加した区分を設定した。なお陽性対照として４μｌの５ｍｇ／ｍＬインスリン（タカラバイオ社製）水溶液添加の区分を設定した。この後、デキサメタゾン添加時期と同時期に終濃度０．５ｍＭ ３−イソブチル−１−メチルキサンチンを添加した以外は、実施例３記載の方法に準じて、培地およびサンプルの交換を行い、アシタバ根エタノール抽出画分あるいはインスリンにより分化誘導した成熟脂肪細胞を得た。
次に、実施例５記載の方法に準じて、得られた成熟脂肪細胞でのインスリン刺激時の細胞内への２−デオキシグルコース取り込み量を測定した。
すなわち、それぞれの成熟脂肪細胞において、インスリン無添加区分あるいは終濃度１μｇ／ｍＬとなるようにインスリンを添加した区分を設定した。この後同様に、細胞中に取り込まれた２−デオキシ−［１，２−^３Ｈ（Ｎ）］−グルコース量を測定した。
この結果、アシタバ根エタノール抽出画分により分化誘導した成熟脂肪細胞において、インスリンにより分化誘導した成熟脂肪細胞と同様に、インスリンの刺激により、２−デオキシ［１，２−^３Ｈ（Ｎ）］−グルコース取り込みの促進が見られた。すなわち、アシタバ根エタノール抽出画分により分化誘導した成熟脂肪細胞には、インスリン刺激グルコース取り込み促進が認められた。これを第１５図に示す。第１５図は、横軸に各サンプルを、縦軸に２−デオキシ［１，２−^３Ｈ（Ｎ）］−グルコース量（ｄｐｍ）を示す。
実施例２２ アシタバ茎葉抽出画分の調製
アシタバ茎葉の乾燥粉末２ｇに４０ｍＬのエタノールを加え、３０分間室温で抽出を行い、遠心分離にて抽出液と残渣に分けた。次いで残渣に対して同溶媒３０ｍＬによる抽出操作を２回繰り返した。得られた抽出液を集めてロータリーエバポレーターで濃縮した。最終的に１ｍｌのジメチルスルホキシドに溶解し、アシタバ茎葉エタノール抽出画分を得た。
実施例２３ アシタバ茎葉抽出画分による脂肪細胞への分化誘導
実施例２２によって調製したアシタバ茎葉エタノール抽出画分の成熟脂肪細胞への分化誘導作用（インスリン様活性）を実施例３の方法に準じて測定した。
すなわち、サンプルとして、各ウエルそれぞれ終濃度０．２、０．０６６、０．０２２％のアシタバ茎葉エタノール抽出画分ジメチルスルホキシド溶液を添加した区分を設定した。なお陽性対照として４μｌの５ｍｇ／ｍｌインスリン（タカラバイオ社製）水溶液添加の区分を、陰性対照としてジメチルスルホキシド添加の区分を設定した。この後、実施例３記載の方法と同様に、培地およびサンプルの交換を行い、サンプル添加７日後に細胞中のトリグリセリドの生合成量を測定した。
この結果、各濃度のアシタバ茎葉エタノール抽出画分添加区分においてトリグリセリド生合成の誘導が認められた。すなわち、アシタバ茎葉エタノール抽出画分に成熟脂肪細胞への分化誘導作用が認められた。これを第１６図に示す。第１６図は、横軸に各サンプルを、縦軸にトリグリセリド生合成量（μｇ／ｍＬ）を示す。
実施例２４ アシタバ根部エタノール抽出画分の調製
アシタバ根部の乾燥粉末２００ｇに１リットルのエタノールを加え、室温で３０分間抽出を行い、吸引ろ過後、エタノール抽出液と残査に分けた。次いで残渣に対して同溶媒１リットルによる抽出操作を１回繰り返した。得られたエタノール抽出液を集めてロータリーエバポレーターで濃縮した。得られた濃縮物を１００ｍｌのオリーブオイルに溶解し、アシタバ根部エタノール抽出画分を調製した。
実施例２５ アシタバ黄色汁液由来試料の調製
アシタバ茎部を切断し、切断面から黄色の汁液を採取した。得られた汁液をろ過した後、凍結乾燥させて、乾燥粉末２ｇを得た。それにオリーブオイルを加え１０ｍｌとし、アシタバ黄色汁液由来試料を調製した。
実施例２６ アシタバ由来処理物の糖尿病改善効果
ＩＩ型糖尿病モデルマウスを用いて実施例２４で得られたアシタバ根部エタノール抽出画分、および実施例２５で得られたアシタバ黄色汁液由来試料の病態改善効果を検討した。雌１１週齢のＫＫ−Ａｙマウス（日本クレア社製）を、各群５匹に分け実験を行った。オリーブ油に懸濁・溶解した各種サンプルを５ｍＬ／ｋｇで１日１回連日強制経口投与した。対照群には同様にオリーブ油を５ｍＬ／ｋｇで投与した。投与開始前日と７日目にマウス尾静脈より採血し、簡易血糖測定システムアキュチェックコンパクト（ロシュ・ダイアグノスティクス株式会社製）にて血糖値を測定した。アシタバ根部エタノール抽出画分およびアシタバ黄色汁液由来試料の投与により、血糖値の顕著な低下が認められた。尚、実験期間中、体重および一般症状に変化は認められなかった。

本発明により、セリ科植物由来処理物を有効成分として含有するインスリン量またはインスリン応答の変調を伴う疾患の治療用又は予防用の医薬、食品、飲料又は飼料が提供される。該医薬は糖尿病または肥満症等のインスリン量またはインスリン応答の変調を伴う疾患の治療剤又は予防剤として有用である。また、該食品又は飲料は、日常の飲食品として摂取することにより、インスリン量またはインスリン応答の変調を伴う疾患の症状改善等が可能となる。従って、セリ科植物由来処理物を含有する機能性飲食品はそのインスリン様作用により、生体の恒常性の維持に有用な機能性飲食品である。また、本発明により、セリ科植物由来処理物を含有するインスリン様作用剤も提供され、該インスリン様作用剤はインスリンの機能研究、インスリンに関連する疾患用医薬のスクリーニングに有用である。また、本発明により、セリ科植物由来処理物を含有する細胞へのグルコース取り込み促進剤も提供され、該グルコース取り込み促進剤は、治療又は予防に細胞へのグルコース取り込み促進作用を要する疾患の治療又は予防、当該疾患の治療又は予防用の食品、飲料又は飼料の製造、該グルコース取り込み促進作用を要する疾患に対する薬物のスクリーニングにも有用である。また、本発明により、セリ科植物由来処理物を含有する脂肪細胞への分化誘導剤も提供され、該分化誘導剤は、治療又は予防に脂肪細胞への分化誘導作用を要する疾患の治療又は予防、当該疾患の治療又は予防用の食品、飲料又は飼料の製造、該分化誘導作用を要する疾患に対する薬物のスクリーニングにも有用である。

Claims (3)

1. アシタバ由来処理物を有効成分として含有することを特徴とする、肥満症、動脈硬化、コカイン禁断症状、鬱血性心不全、心臓血管痙攣、大脳血管痙攣、クロム親和性細胞腫、神経節神経芽腫、ハンチントン病、高脂血症及び高インスリン血症からなる群より選択されるインスリン量またはインスリン応答の変調を伴う疾患の治療剤又は予防剤。
2. アシタバ由来処理物を有効成分として含有することを特徴とする筋肉増強剤。
3. アシタバ由来処理物を有効成分として含有することを特徴とする、痛風、脂肪肝、胆石症、月経異常及び不妊症からなる群より選択される疾患の治療剤又は予防剤。

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