JP3078312B2 - 物質の製造法 - Google Patents
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Description
リウム属に属し、組換え体プラスミドを保有する微生物
を用いた物質の製造法に関する。コリネバクテリウム属
またはブレビバクテリウム属に属する微生物は、各種の
アミノ酸の発酵生産に広く用いられている。
種の宿主・ベクター系を用いて、組換えDNA技術による
菌株改良が行われている。しかし、宿主微生物に導入し
た組換え体プラスミドは不安定で、脱落を起こすことが
あり、DNA技術を用いて作成した菌株を用いて、アミノ
酸を工業的規模で生産する場合の問題点となっている。
て、他の菌種ではいくつかの方法が報告されている。た
とえばプラスミドそのものを遺伝的に安定に保持させる
方法として、大腸菌では低コピープラスミドpSC101の安
定な分配に関する遺伝子parをプラスミドに組み込んで
安定化を図る方法が知られている[ジーン(Gene)、2
3、105(1983)〕。また、プラスミドの脱落株の生育を
抑制することによって、プラスミド保有株のみを優位に
生育させる方法もある。小規模の培養で通常用いられる
抗生物質の培地への添加は、その例である。さらに、生
育に必須の形質を欠損した宿主とその欠損形質を相補す
る遺伝子を有するプラスミドとの組合せにより、プラス
ミドを安定に保持させる方法もある。たとえば、枯草菌
では、アラニンラセマーゼ遺伝子の欠損した宿主と野生
型の同遺伝子を有するプラスミドとの組合せを用いる方
法〔バイオテクノロジー(Bio/Technology)、3、1003
(1985)〕、また大腸菌では、ジアミノピメリン酸要求
性宿主とその要求性を相補する遺伝子を有するプラスミ
ドとの組合せを用いる方法(特開昭63−233790)があげ
られる。いずれの場合にも、プラスミド脱落株は細胞壁
の成分として必須のD−アラニンまたはジアミノピメリ
ン酸を合成できないため溶菌してしまい、プラスミド保
有株のみが増殖することになる。この両者の方法では、
工業的規模での発酵において一般的に用いられる動植物
または酵母由来の抽出物を含む培地で培養する場合に
も、それら天然栄養物中にはD−アラニン及びジアミノ
ピメリン酸が含まれないため、プラスミド脱落株の増殖
を抑制できる。
クテリウム属菌種においては、組換え体プラスミドを宿
主細胞内に安定に保持させる方法は確立されていない。
またはブレビバクテリウム属菌種を用いて、工業的に大
規模なスケールで、物質たとえばアミノ酸などを製造す
る場合、種培養から本培養まで多数回の***増殖が伴う
ため、組換え体プラスミド脱落株が多くなる。これは生
産性の低下につながるので、組換え体プラスミドを宿主
微生物の細胞内に安定に保持させることによって、物質
を工業的に安価に製造する方法の開発が望まれている。
リウム属に属し、セリン要求性を有する微生物に、該セ
リン要求性を相補する遺伝子および所望の遺伝子を組み
込んだ組換え体プラスミドを導入して得られる形質転換
株を培地に培養し、培養物中に該形質転換株が生産する
物質を生成蓄積させ、該培養物から該物質を採取するこ
とを特徴とする物質の製造法を提供する。
属する微生物は、セリンの分解力が強く、培地中に含ま
れるセリンが培養の初期に速やかに分解消費されるた
め、プラスミドの脱落したセリン要求性の宿主菌は増殖
できず、結果としてプラスミド保有株のみが継代培養さ
れることになり、従来用いられていた形質転換株を用い
た物質の製造法よりも効率よく物質が製造できる。
テリウム属またはブレビバクテリウム属に属し、セリン
要求性の菌株であればいずれでもよい。これらのセリン
要求株が、さらに他の性質、たとえば各種栄養要求性、
薬剤耐性、薬剤感受性等を併せて持っていてもよい。こ
のような菌株を誘導する際の親株としては、次のような
菌株をあげることができる。
理法、たとえば紫外線照射またはN−メチル−N′−ニ
トロ−N−ニトロソグアニジン(NTG)や亜硝酸などの
化学処理を施した後、最少培地では生育できないが、セ
リンを含む最少培地では生育する変異株を分離すること
によって取得することができる。
子としては、いかなる微生物由来のものでもよい。その
ような遺伝子として、宿主がセリン生合成酵素の欠損変
異株である場合には、セリン生合成系遺伝子、具体的に
は3−ホスホグリセリン酸デヒドロゲナーゼ遺伝子、ホ
スホセリンアミノトランスフェラーゼ遺伝子あるいはホ
スホセリンホスファターゼ遺伝子をあげることができ
る。
グルタミン酸生産菌中で自律複製できるものであれば特
に限定されないが、例えばpCG1(特開昭57−134500)、
pCG2(特開昭58−35197)、pCG4、pCG11(いずれも特開
昭57−183799)、pCE54、pCB101(いずれも特開昭58−1
05999)、pCE51、pCE52、pCE53〔いずれもモレキュラー
・アンド・ジェネラル・ジェネティクス(Mol.Gen.Gene
t.)196、175(1984)〕などのプラスミドを使用するこ
とができる。
にして得ることができる。すなわち、染色体DNAとベク
ターDNAとの組換え体混成物を用いて、上記セリン要求
性変異を有する宿主を形質転換し、セリン非要求性とな
った形質転換株から目的の遺伝子を含む組換え体DNAと
して取得できる。形質転換は、プロトプラストを用いる
方法(特開昭57−186492および特開昭57−186489)によ
り実施することができる。
リン要求性を相補する遺伝子を含む組換え体DNAを宿主
・ベクター系として用いて、有用遺伝子を含むDNA断片
をコリネバクテリウム属またはブレビバクテリウム属菌
種に導入する。また、他の宿主・ベクター系を用いて、
有用遺伝子を含むDNA断片を含む組換え体プラスミドを
作成し、該組換え体プラスミドにセリン要求性を相補す
る遺伝子をさらに組み込んだ組換え体プラスミドを、セ
リン要求性変異株に導入してもよい。
レビバクテリウム属菌種に導入された場合に、該菌種に
物質の生産性を付与するものや、該菌種の生合成系を強
めるものなどがあげられる。具体的には、アミノ酸の生
合成経路上の律速ステップとなっている酵素の遺伝子
(特開平1−265892、特開昭63−105688、特開昭59−15
6292、特開昭60−24192、特開昭60−34197、特開昭63−
94985、特開昭59−156294、特開昭60−30693、特開昭62
−91193、特開昭61−209597、特開昭60−66989、特開昭
63−79597、特開昭63−102692、特開昭63−119688、特
開昭62−79788、特開昭62−186795、特開昭63−68091な
ど)があげられる。
み込んだ組換え体プラスミドを、セリン要求性を有する
微生物に導入して得られる形質転換株の培養は、該形質
転換株を炭素源、窒素源、無機物、アミノ酸、ビタミン
などを含有する培地中、好気的条件下、温度、pHなどを
調節しつつ培養を行えばよい。
ース、シュークロース、マルトース、マンノース、澱
粉、澱粉加水分解液、糖蜜などの炭水化物、ポリアルコ
ール、ピルビン酸、フマール酸、乳酸、酢酸などの各種
有機酸が使用できる。さらに微生物の資化性によって、
炭化水素、アルコール類なども用いられる。特に廃糖蜜
は好適に用いられる。
硫酸アンモニウム、炭酸アンモニウム、酢酸アンモニウ
ムなどの各種無機および有機アンモニウム塩類あるいは
尿素および他の窒素含有物質ならびにペプトン、NZ−ア
ミン、肉エキス、酵母エキス、コーン・スチープ・リカ
ー、カゼイン加水分解物、フィッシュミールまたはその
消化物、蛹加水分解物などの窒素含有有機物など種々の
ものが使用できる。
ン酸第二水素カリウム、硫酸アンモニウム、塩化アンモ
ニウム、硫酸マグネシウム、塩化ナトリウム、硫酸第一
鉄、硫酸マンガンおよび炭酸カルシウムなどを使用す
る。ビタミン、アミノ酸としては、使用する培地の炭素
源、窒素源などによって異なるが、必要に応じ、ビオチ
ン、サイアミンなどを添加する。また使用する菌株が、
要求性を示す場合は、その要求物質を添加する。
下に行う。培養温度は、一般に20〜40℃が好適である。
培地のpHは、中性付近に維持することが望ましい。培養
期間は通常1〜5日間である。形質転換株による物質の
生産は、導入する組換え体プラスミドや宿主微生物の性
質により異なるが、好適には、アミノ酸の生合成系の遺
伝子を組み込んだ組換え体プラスミドを導入することに
よりアミノ酸の生産性を高めた形質転換株によるアミノ
酸の生産に用いられる。
与する3−ホスホグリセリン酸デヒドロゲナーゼ(PGD
H)遺伝子を、トリプトファン合成系遺伝子含有プラス
ミドに組み込み、得られた組換え体プラスミドをPGDH遺
伝子欠損株コリネバクテリウム・グルタミクムSA95に保
有させ、L−トリプトファンの生産試験を行ったとこ
ろ、プラスミド保有株のみを選択的に増殖させることが
できた。
の染色体DNAおよび組換え体プラスミドpCDtrp157とベク
ターpCG116の調製: NB培地(粉末ブイヨン20g、酵母エキス5gを水1に
含み、pH7.2に調整した培地)で増殖したコリネバクテ
リウム・グルタミクムATCC31833の種培養20mlを、半合
成培地SSM〔グルコース20g、(NH4)2SO4 10g、尿素3g,
酵母エキス1g,KH2PO4 1g,MgCl2・6H2O 0.4g,FeSO4・7H2
O 10mg,MnSO4・4〜6H2O 0.2mg,ZnSO4・7H2O 0.9mg,CuS
O4・5H2O 0.4mg,Na2B4O7・10H2O 0.09mg、(NH4)6Mo7O
24・4H2O 0.04mg、ビオチン30μgおよびサイアミン塩
酸塩1mgを水1に含み、pH7.2に調整した培地〕400ml
に接種して30℃で振盪培養した。東京光電比色計で660n
mにおける吸光度(OD)を測定(以下特記しないかぎり
吸光度は660nmで測定)し、ODが0.2になった時点で培養
液へ0.5単位/ml濃度となるようにペニシリンGを添加し
た。さらに培養を継続し、ODが0.6になるまで生育させ
た。
(ヒドロキシメチル)アミノメタン(以下トリスと略
す)、0.005Mエチレンジアミン四酢酸二ナトリウム(以
下、EDTAと略す)、0.05M NaCl、pH8.0〕で洗浄後、リ
ゾチーム溶液(25%ショ糖、0.1M NaCl、0.05Mトリ
ス、0.8mg/mlリゾチーム、pH8.0)10mlに懸濁し、37℃
で2時間反応を行った。集菌した菌体から斎藤−三浦の
方法〔Saito,H.and Miura,K,:バイオキミカ・エ・バイ
オフィジカ・アクタ(Biochim,Biophys.Acta)、72,619
(1963)〕に従って高分子染色体DNAを単離した。
に開示されたコリネバクテリウム・グルタミクムの3−
デオキシ−D−アラビノ−ヘプツロソネート−7−ホス
フェートシンターゼ遺伝子およびトリプトファン合成系
遺伝子群を含むプラスミドである(第1図参照)。
・グルタミクムのプラスミドpCG11(特開昭57−13450
0)上のStu IおよびPst I切断部位に、M13 mp18 RF
DNA(宝酒造社製)をEcoR Iで切断後、クレノー断片
(宝酒造社製)で平滑末端に修復し、さらにPst Iで切
断して得たリンカーを両者の各々、平滑末端、接着末端
を利用して結合させたプラスミドである。pCG116は分子
長約6.5Kbのプラスミドで、単一の制限酵素切断部位と
してBgl II,Pst I,Sal I,Xba I,BamH I,Sma I,Kpn Iお
よびSac Iを有し、ストレプトマイシンおよび/または
スペクチノマイシン耐性の表現型を与える(第1図参
照)。
テリウム・グルタミクムATCC31833から次の方法でそれ
ぞれ単離した。
ム・グルタミクムATCC31833を、400mlSSM培地で、30℃
にて振盪培養し、上記と同様にしてペニシリンG処理
後、ODが約0.6になるまで生育させた。菌体を集菌しTES
緩衝液で洗浄後、リゾチーム溶液10mlに懸濁し、37℃で
2時間反応させた。反応液に5M NaCl 2.4ml、0.5M EDT
A(pH8.5)0.6ml、4%ラウリル硫酸ナトリウムと0.7M
NaClからなる溶液4.4mlを順次添加し、緩やかに混和
してから氷水上に15時間置いた。溶菌物を遠心管に移
し、4℃で60分間69,400×gの遠心分離にかけ上澄液を
回収した。これに重量百分率10%相当のポリエチレング
リコール(PEG)6,000(半井化学薬品社製)を加え、静
かに混和して溶解後、氷水上に置いた。10時間後、1,50
0×gで10分間遠心分離してペレットを回収した。TES緩
衝液5mlを加えてペレットを静かに再溶解してから1.5mg
/mlエチジウムブロマイド2.0mlを添加し、これに塩化セ
シウムを加えて静かに溶解し、密度を1.580に合わせ
た。
かけ、紫外線照射下に検知される遠心チューブ下方の密
度の高い位置のバンドを遠心チューブの側面から注射器
で抜きとることによって、pCDtrp157およびpCG116プラ
スミドDNAをそれぞれ分離した。この分画液を等容量の
イソプロピルアルコール液〔容量百分率90%イソプロピ
ルアルコール、10%TES緩衝液(この混液中に飽和溶解
量の塩化セシウムを含む)〕で5回処理してエチジウム
ブロマイドを抽出除去し、しかる後にTES緩衝液に対し
て透析した。
CC31833から調製したpCG116プラスミドDNA3μgを含む
反応液Y−100(トリス10mM、MgCl26mM、NaCl100mM、pH
7.5)60μに6単位のSal I(宝酒造社製、以下特記し
ない限り、制限酵素は宝酒造社製)を添加し、37℃で60
分間反応させた。一方、コリネバクテリウム・グルタミ
クムATCC31833の染色体DNA3μgを含むY−100反応液14
0μに6単位のSal Iを添加し、37℃で60分間反応させ
た。いずれも65℃で10分間加温して、反応を停止させ
た。
(トリス660mM、MgCl266mM、ジチオスレイトール100m
M、pH7.6)40μ、5mM ATP、T4リガーゼ(宝酒造社
製)300単位および水120μを加え、12℃で16時間反応
させた。
タミクムRS57(コリネバクテリウム・グルタミクムATCC
31833よりセリン要求性変異株として誘導されたPGDH遺
伝子欠損株)の形質転換に供した。RS57株の種培養4ml
を、セリン100μg/mlを含むSSM培地40mlに植菌して30℃
で振盪培養した。ODが0.2になった時点で上記(1)と
同様な方法でペニシリンG処理後、ODが0.6になるまで
生育させた。菌体を集菌し、該細胞をRCGP培地〔グルコ
ース5g、カザミノ酸5g、酵母エキス2.5g、K2HPO4 3.5
g、KH2PO41.5g、MgCl2・6H2O 0.41g、FeSO4・7H2O 10m
g、MnSO4・4〜6H2O 2mg、ZnSO4・7H2O 0.9mg、(N
H4)6Mo7O24・4H2O 0.04mg、ビオチン30μg、サイア
ミン塩酸塩2mg、コハク酸二ナトリウム135g、ポリビニ
ルピロリドン(分子量10,000)30gを水1に含む培
地〕に1mg/mlのリゾチームを含む溶液(pH7.6)10mlに
約109細胞/mlとなるように懸濁し、L型試験管に移して
30℃で16時間緩やかに振盪反応してプロトプラスト化し
た。
00×gで5分間遠心分離し、TSMC緩衝液(MgCl210mM、C
aCl230mM、トリス50mM、ショ糖400mM、pH7.5)1mlに再
懸濁して遠心洗浄後、TSMC緩衝液0.1mlに再懸濁した。
この菌液に2倍高濃度のTSMC緩衝液と上記リガーゼ反応
液の1対1混合液100μを加えて混和し、次いでTSMC
緩衝液中に20%PEG6,000を含む液0.8mlを添加して混合
した。3分後、RCGP培地(pH7.2)2mlを添加し、2,500
×gで5分間遠心分離にかけて上澄液を除去し、沈降し
たプロトプラストを1mlのRCGP培地に懸濁してから、こ
の菌液0.2mlをスペクチノマイシン400μg/mlを含むRCGP
寒天培地(RCGP培地に1.4%寒天を含む培地、pH7.2)に
塗布し、30℃で7日間培養した。
水で2回遠心洗浄後、生理食塩水1mlに懸濁した。この
菌液をスペクチノマイシン100μg/mlを含有する最少寒
天培地M1〔グルコース10g,(NH4)H2PO4 1g,KCl 0.2
g、MgSO4・7H2O 0.2g,FeSO4・7H2O 10mg,MnSO4・4〜6H
2O 0.2mg,ZnSO4・7H2O 0.9mg,CuSO4・5H2O 0.4mg,Na2B4
O7・10H2O 0.09mg、(NH4)6Mo7O24・4H2O 0.04mg、ビ
オチン50μg、p−アミノ安息香酸2.5mg、サイアミン
塩酸塩1mgおよび寒天16gを水1中に含み、pH7.2に調
整した培地〕上に再塗布して30℃で3日間培養し、スペ
クチノマイシン耐性で、セリン非要求性となった形質転
換株を選択した。これらの形質転換株から上記(1)と
同様な方法によりプラスミドDNAを単離した。形質転換
株の一株から得られ、pCser571と命名したプラスミド
は、各種制限酵素による切断産物をアガロースゲル電気
泳動で解析した結果、pCG116のSal I切断部位に2.7kbの
Sal I DNA断片が挿入された構造を有していることがわ
かった(第1図参照)。
Cser571を保有する形質転換株について、PGDH活性をE.S
ugimotoとL.I.Pizerの方法〔ジャーナル・オブ・バイオ
ロジカル・ケミストリー(J.Biol.Chem.)243、2081(1
968)に従って測定した。ATCC31833株のPGDH活性を1と
したときのpCser571を保有する形質転換株のPGDH活性は
約13倍に増加していたことから、pCser571に挿入されて
いる2.7kbのDNA断片上に、PGDH遺伝子が存在することを
確認した。
結: pCser571プラスミドDNA3μgを含むY−100反応液100
μに6単位のBamH Iを添加し、37℃で60分間反応後、
アガロースゲルから1.4kbのDNA断片を分画した。また、
pCDtrp157プラスミドDNA3μgを含むY−100反応液100
μに6単位のBamH Iを加え、37℃で60分間反応後、65
℃で10分間加温して反応を停止させた。両反応液を混合
し、2容のエタノールを加えてDNAを沈澱回収後、水200
μに溶解した。
40μ、5mM ATP40μ、T4リガーゼ300単位および水1
20μを加え、12℃で16時間反応させた。
(2)と同様な方法により形質転換した。スペクチノマ
イシン400μg/mlを含むRCGP寒天培地上に生育したスペ
クチノマイシン耐性コロニーをかき集め、生理食塩水で
2回遠心洗浄後、生理食塩水1mlに懸濁した。この菌液
をスペタチノマイシン100μg/mlを含有する最少寒天培
地M1上に再塗布して30℃で3日間培養し、スペクチノマ
イシン耐性で、セリン非要求性となった形質転換株を選
択した。これらの形質転換株から上記(1)と同様な方
法によりプラスミドDNAを単離した。形質転換株の一株
から得られ、pDTS9901と命名したプラスミドは、各種制
限酵素による切断産物をアガロースゲル電気泳動で解析
した結果、pCDtrp157のBamH I切断部位に1.4kbのBamH I
断片が挿入された構造を有していることがわかった(第
1図参照)。このようにして作製したpDTS9901を保有す
るコリネバクテリウム・グルタミクムATCC21854(コリ
ネバクテリウム・グルタミクムATCC13032から誘導され
たフェニルアラニンおよびチロシンの要求株)株は、平
成1年6月2日付で、コリネバクテリウム・グルタミク
ムK82(FERM BP−2444)として工業技術院微生物工業技
術研究所(微工研)に、ブダペスト条約に基づいて寄託
されている。
るL−トリプトファンの生産およびプラスミドの安定
性: コリネバクテリウム・グルタミクムATCC21854(コリ
ネバクテリウム・グルタミクムATCC13032から誘導され
たフェニルアラニンおよびチロシンの要求株)およびコ
リネバクテリウム・グルタミクムSA95(コリネバクテリ
ウム・グルタミクムATCC21854より、セリン要求性変異
株として誘導されたPGDH遺伝子欠損株)(平成2年9月
21日付で微工研にFERM BP−3108として寄託)の種培養4
mlをフェニルアラニン、チロシンおよびセリン各100μg
/mlを含むSSM培地40mlに植菌して、30℃で振盪培養し
た。ODが0.2になった時点で上記(1)と同様な方法で
ペニシリンG処理後、ODが0.6になるまで生育させた。
菌体を集菌し、該細胞を上記(2)と同様な方法により
リゾチーム処理して、プロトプラスト化した。このプロ
トプラストをpCDtrp157およびpDTS9901を用いて、上記
(2)と同様な方法により形質転換した。スペクチノマ
イシン耐性となった形質転換株から、上記(1)と同様
な方法によりプラスミドDNAを単離した。これらのプラ
スミドの各種制限酵素での切断解析により、形質転換株
が、pCDtrp157またはpDTS9901を保有することを確認し
た。
験管により次のように行った。
キス15g、NaCl2.5g、尿素1g、L−チロシン200mg、L−
フェニルアラニン200mgを水1に含み、pH7.2に調整し
た培地〕3ml中で30℃、24時間振盪培養した種培養0.5ml
を生産培地P1〔グルコース60g、KH2PO4 1g、K2HPO4 1
g、MgSO4・7H2O 1g、(NH4)2SO4 20g、コーン・スチ
ープ・リカー10g、MnSO4 10mg、ビオチン30μg、CaCO3
20gを水1に含み、pH7.2に調整した培地〕5mlの入っ
た太型試験管に接種し、30℃で72時間振盪培養した。培
養後、培養液を高速液体クロマトグラフィーを用いた
OPAポストカラム誘導体化法により定量して、L−トリ
プトファンの生成量を測定した。プラスミドの安定性試
験は、培養終了時の培養液を希釈後、NB寒天培地上に塗
布してコロニー分離し、得られたコロニーをスペクチノ
マイシン100μg/mlを含むNB寒天培地に移植して、同培
地上での生育の有無を観察することによって行った。
株は、プラスミドが培養終了時まで安定に保持されてい
る。
与するPGDH遺伝子をスレオニン合成系遺伝子含有プラス
ミドに組み込み、得られた組換え体プラスミドPGDH遺伝
子欠損株コリネバクテリウム・グルタミクムSA24に保有
させ、L−スレオニンの生産試験を行ったところ、プラ
スミド保有株のみを選択的に増殖させることができた。
115の調製: pChom10は、特開昭62−91193に開示されたコリネバク
テリウム・グルタミクムのホモセリンデヒドロゲナーゼ
(HD)遺伝子とホモセリンキナーゼ(HK)遺伝子を含む
3.6kbのDNA断片が、ベクターpCE54(特開昭58−10599
9)のSal I切断部位に挿入されたプラスミドである(第
2図参照)。
(特開昭57−134500)上のBal IIおよびPst I切断部位
に、M13 mp18RF DNAをBamH IおよびPst Iで切断した
リンカーを、両者の同一接着末端を利用して結合させた
プラスミドである。pCG115は分子長約6.4kbのプラスミ
ドで、単一の制限酵素切断部位としてXba I、Sal Iおよ
びPst Iを有し、ストレプトマイシンおよび/またはス
ペクチノマイシン耐性の表現型を与える(第2図参
照)。
テリウム・グルタミクムATCC31833の培養菌体から、実
施例1(1)と同様な方法により単離した。
の連結: 上記(1)で調製したpChom10プラスミドDNAおよびpC
G115プラスミドDNAを各々3μg含むY−100反応液200
μに、6単位のSal Iを添加し、37℃で60分間反応
後、65℃で10分間加熱して反応を停止させた。
40μ、5mM ATP 40μ、T4リガーゼ300単位および水1
20μを加え、12℃で16時間反応させた。
ム・グルタミクムK54(コリネバクテリウム・グルタミ
クムATCC31833よりスレオニン要求性変異株として誘導
されたHK遺伝子欠損株)(FERM P−8258)を実施例1
(2)と同様な方法により形質転換した。スペクチノマ
イシン400μg/mlを含むRCGP寒天培地上に生育したスペ
クチノマイシン耐性コロニーをかき集め、生理食塩水で
2回遠心洗浄後、生理食塩水1mlに懸濁した。この菌液
をスペクチノマイシン100μg/mlを含有する最少寒天培
地M1上に再塗布して30℃で3日間培養し、スペクチノマ
イシン耐性で、スレオニン非要求性となった形質転換株
を選択した。これらの形質転換株から、実施例1(1)
と同様な方法により、プラスミドDNAを単離した。形質
転換株の一株から得られ、pCGhom10と命名したプラスミ
ドは、各種制限酵素による切断産物をアガロースゲル電
気泳動で解析した結果、pCG115のSal I切断部位に3.6kb
のSal I断片が挿入された構造を有していることがわか
った(第2図参照)。
結: pCser571プラスミドDNA3μgを含むY−100反応液100
μに、6単位のSal Iを添加し、37℃で60分間反応
後、アガロースゲルから2.7kbのDNA断片を分画した。ま
た、pCGhom10プラスミドDNA3μgを含むY−100反応液1
00μに、0.5単位のSal Iを加え、37℃で10分間部分消
化後、アガロースゲルから10.0kbのDNA断片を分画し
た。両反応液を混合し、2容のエタノールを加えてDNA
を沈澱回収後、水200μに溶解した。
液40μ、5mM ATP40μ、T4リガーゼ300単位および
水120μを加え、12℃で16時間反応させた。
(1)と同様な方法により形質転換し、スペクチノマイ
シン耐性でセリン非要求性となった形質転換株を選択し
た。形質転換株の一株から得られ、pCHS10と命名したプ
ラスミドは、各種制限酵素による切断産物をアガロース
ゲル電気泳動で解析した結果、pCGhom10上に2ヵ所ある
Sal I切断部位の一方に、2.7kbのSal I断片が挿入され
た構造を有していることがわかった(第2図参照)。
−スレオニン生産およびプラスミドの安定性: コリネバクテリウム・グルタミクムATCC13032および
コリネバクテリウム・グルタミクムSA24(コリネバクテ
リウム・グルタミクムATCC13032よりセリン要求性変異
株として誘導されたPGDH遺伝子欠損株)を、pCGhom10お
よびpCHS10を用いて、実施例1(2)と同様な方法によ
り形質転換した。スペクチノマイシンに耐性となった形
質転換株から、実施例1(1)と同様な方法によりプラ
スミドDNAを単離した。これらのプラスミドの各種制限
酵素による切断解析の結果、形質転換株がpCGhom10また
はpCHS10を保有することを確認した。
より、次のように行った。
盪培養した種培養0.5mlを、生産培地T〔廃糖蜜200g、K
H2PO4 0.3g、MgSO4・7H2O 0.4g、(NH4)2SO4 20g、Fe
SO4・7H2O 10mg、MnSO4・4〜6H2O 10mg、コーン・ス
チープ・リカー8g、サイアミン塩酸塩200μg、ビオチ
ン200μg、CaCO3 40gを水1に含み、pH7.2に調整し
た培地〕5mlの入った太型試験管に接種し、30℃で72時
間振盪培養した。培養後、培養液を高速液体クロマト
グラフィーを用いたOPAポストカラム誘導体化法により
定量して、L−スレオニンの生成量を測定した。プラス
ミドの安定性試験は、実施例1(4)と同様な方法によ
り行った。
は、プラスミドが培養終了時まで安定に保持されてい
る。
それを相補する遺伝子を組換え体プラスミドに保有させ
ることで、プラスミド保有株のみを安定に継代培養する
ことができる。
示す。太い実線部分の染色体DNA断片上にはDS遺伝子
が、斜線部分の染色体DNA断片上にはトリプトファン生
合成遺伝子が、また破線部分の染色体DNA断片上にはPGD
H遺伝子が含まれている。 第2図はpCHS10の制限酵素切断地図とその作製工程を示
す。太い実線部分の染色体DNA断片上にはHD遺伝子とHK
遺伝子が、また破線部分のDNA断片上にはPGDH遺伝子が
含まれている。 プラスミドの大きさはキロベース(kb)で表示されてい
る。
Claims (4)
- 【請求項1】コリネバクテリウム属またはブレビバクテ
リウム属に属し、セリン要求性を有する微生物に、該セ
リン要求性を相補する遺伝子およびアミノ酸の生合成経
路上の律速ステップとなっている酵素の遺伝子を組み込
んだ組換え体プラスミドを導入して得られる形質転換株
を、培地に培養し、培養物中に該形質転換株が生産する
アミノ酸を生成蓄積させ、該培養物からアミノ酸を採取
することを特徴とするアミノ酸の製造方法。 - 【請求項2】セリン要求性を相補する遺伝子が、3−ホ
スホグリセリン酸デヒドロゲナーゼ遺伝子、ホスホセリ
ンアミノトランスフェラーゼ遺伝子またはホスホセリン
ホスファターゼ遺伝子である請求項1記載の製造方法。 - 【請求項3】コリネバクテリウム属またはブレビバクテ
リウム属に属し、セリン要求性を有する微生物に、該セ
リン要求性を相補する遺伝子およびアミノ酸の生合成経
路上の律速ステップとなっている酵素の遺伝子を組み込
んだ組換え体プラスミドを導入して得られる形質転換
株。 - 【請求項4】セリン要求性を相補する遺伝子が、3−ホ
スホグリセリン酸デヒドロゲナーゼ遺伝子、ホスホセリ
ンアミノトランスフェラーゼ遺伝子またはホスホセリン
ホスファターゼ遺伝子である請求項3記載の形質転換
株。
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