JP3026367B2 - ハロヒドリンエポキシダ−ゼ遺伝子を有する組換え体プラスミドにより形質転換された微生物による3−ヒドロキシニトリル化合物の製造法 - Google Patents
ハロヒドリンエポキシダ−ゼ遺伝子を有する組換え体プラスミドにより形質転換された微生物による3−ヒドロキシニトリル化合物の製造法Info
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- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
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Description
プロパノールをエピハロヒドリンに変換する活性および
その逆反応を触媒する活性を有する酵素(以下ハロヒド
リンエポキシダーゼと略す)遺伝子DNAをベクタープ
ラスミドに連結した組換え体プラスミドを宿主微生物に
導入した形質転換微生物による、3−ヒドロキシニトリ
ル化合物の製造法に関する。3−ヒドロキシニトリル化
合物は、種々の医薬品や生理活性物質の合成原料として
有用な物質として知られている。
ヒドリンから4−ハロ−3−ヒドロキシブチロニトリル
を製造する方法は、先に、本発明者らの一部により見出
されている(特願平1−185992号明細書参照)。
しかし、これら脱ハロゲン化酵素を有する微生物の触媒
能力は高くなく、工業的に用いる場合には満足できるも
のではない。
クローン化された脱ハロゲン化酵素遺伝子によるエピハ
ロヒドリンから4−ハロ−3−ヒドロキシブチロニトリ
ルへの変換反応では、菌体内に多数の遺伝子を存在させ
ることができるため微生物の触媒能力を従来の方法に比
して飛躍的に増大させることが期待できる。このような
状況下、本発明者らの一部は、エピハロヒドリンを4−
ハロ−3−ヒドロキシブチロニトリルに変換する酵素が
ハロヒドリンエポキシダーゼであることを見い出し、さ
らに微生物由来のハロヒドリンエポキシダーゼ酵素遺伝
子DNAをベクタープラスミドに挿入して組換え体プラ
スミドを得、この組換え体プラスミドを導入した形質転
換体によりハロヒドリンエポキシダーゼを発現させるこ
とに成功した。
体によるハロヒドリンエポキシダーゼ酵素反応が、エピ
ハロヒドリン以外の1,2−エポキシ化合物にも適用で
き、3−ヒドロキシニトリル化合物の製造に有用できる
ことを見い出し、本発明を完成させた。すなわち、本発
明は、微生物由来のハロヒドリンエポキシダーゼ酵素遺
伝子DNAをベクタープラスミドに連結した組換え体プ
ラスミドにより形質転換された形質転換微生物の培養
液、菌体または菌体処理物を、シアン化アルカリの存在
下で、下記一般式〔I〕で示される1,2−エポキシ化
合物に作用させ、これを下記一般式(II〕で示される
3−ヒドロキシニトリル化合物に変換せしめることを特
徴とする3−ヒドロキシニトリル化合物の製造法、であ
る。
ドリンエポキシダーゼ遺伝子DNAをベクタープラスミ
ドに連結した組換え体プラスミドにより形質転換された
微生物であり、この組換え体プラスミドとして、 (1)配列番号:1で示されるアミノ酸配列またはその
一部の配列を有しハロヒドリンエポキシダーゼ活性を有
するポリペプチドをコードするDNA配列、 (2)配列番号:2で示されるアミノ酸配列またはその
一部の配列を有しハロヒドリンエポキシダーゼ活性を有
するポリペプチドをコードするDNA配列、 (3)上記(1)項のハロヒドリンエポキシダーゼ活性
を有するポリペプチドをコードするDNA配列が、配列
番号:3で示されるDNA配列またはその一部の配列か
らなるもの、 (4)上記(2)項のハロヒドリンエポキシダーゼ活性
を有するポリペプチドをコードするDNA配列が、配列
番号:4で示されるDNA配列またはその一部の配列か
らなるもの、 の少なくとも一つを含むものが挙げられる。
で使用し得る形質転換微生物におけるDNA供与体微生
物としては、コリネバクテリウムsp.N−1074
(微工研条寄第2643号)、ミクロバクテリウムs
p.N−4701(微工研条寄第2644号)等が挙げ
られ、その菌学的性質はそれぞれ特開平2−29128
0号公報に記載されている。ベクターとしては、プラス
ミドベクター(例えばpUC18 、pUC19、pU
C118、pUC119等)、ファージベクター(例え
ばλgt11等)のいずれでもよい。また、形質転換に
用いられる宿主微生物としては、エシェリシア コリ
(E.coli)JM105株あるいは同JM109株
が挙げられるが、特に、これらに限定されるものではな
く、他の宿主生物を用いることもできる。一例として、
コリネバクテリウムsp.N−1074(微工研条寄第
2643号)のハロヒドリンエポキシダーゼ遺伝子の
E.coli JM109株 へのクローニングを、以
下に示す。
74染色体DNAの調製とDNAライブラリーの作成: コリネバクテリウムsp.N−1074からSaito
and Miuraの方法〔Biochim.Bio
phys.Acta 72,619(1963)参照〕
により染色体DNAを分離し、これを制限酵素(Bam
HIあるいはBglII)で切断後、ベクタープラスミ
ドpUC18に挿し組換え体DNAのライブラリーを作
成した。
NAの選別: 工程(1)で調製した組換え体ライブラリーによる形質
転換体を宿主生物としてE.coli JM109株を
用いて塩化カルシウム法〔J.Mol.Biol.5
3,154(1970)〕により作成し、その中からハ
ロヒドリンエポキシダーゼ活性を示すようになったもの
を選別した。選別は以下のようにして行った。アンピシ
リン(100μg/ml)とIPTG(1ml)を含む
LB寒天培地(1%バクトトリプトン、0.5%バクト
イーストエキス、0.5%NaC1、1.5%寒天)に
作成した形質転換体のコロニーを形成させた。10mM
トリス−塩酸緩衝液(pH7.5)、0.02%ブロモ
クレゾールパープル、1%1,3−ジクロロ−2−プロ
パノールを染み込ませたロ紙にコロニーを移し、室温に
て数時間放置した。ハロヒドリンエポキシダーゼ活性を
持つコロニーは塩酸を遊離しコロニー付近のpHは低下
し、pH指示薬であるブロモクレゾールパープルは青紫
色から黄色に変化するため、肉眼観察によりハロヒドリ
ンエポキシダーゼ遺伝子を持つ株を選別することができ
る。
エポキシダーゼ活性を有しているかどうかは次のように
して調べることができる。これらの株をアンピシリン
(50μg/ml)とIPTG(1mM)を含むLB培
地(1%バクトトリプトン、0.5%バクトイーストエ
キス、0.5%NaCl)にて37℃で一夜培養する。
菌体を50mMトリス−硫酸緩衝液(pH8)で2回洗
浄後、1%1,3−ジクロロプロパノールを含む1Mト
リス−硫酸緩衝液(pH8)に懸濁し、20℃にてイン
キューベートした。一定時間後、生成するエピクロルヒ
ドリンをガスクロマトグラフィーにて定量した。こうし
て得られた形質転換株から再びプラスミドDNAを取り
出し、選別された2種の目的のプラスミドを得た。これ
らのプラスミドをpST001およびpST005、な
らびにこれらのプラスミドが導入された形質転換体をJ
M109/pST001およびJM109/pST00
5と称する。
エポキシダーゼ遺伝子の位置の決定: 工程(2)で得られたプラスミドについて制限酵素地図
を作成した。その後、より小さなDNA断片を持つプラ
スミドを作成した。これらのプラスミドによって工程
(2)と同様にして形質転換された株のハロヒドリンエ
ポキシダーゼ活性の有無によって目的遺伝子の含まれて
いる箇所を決定した。この過程で、pST001のBa
mHI−Bgl1.3Kb断片を含むpST015(p
UC118ベクター)およびpST005のBamHI
−PstI1.1Kb断片を含むpST111(pUC
118ベクター)プラスミドを作成した(図1)。 こ
れらのプラスミドが導入された形質転換体をJM109
/pST015およびJM109/pST111と称す
る。
ST111のハロヒドリンエポキシダーゼ遺伝子に関す
る部分のDNAの塩基配列を決定した(配列番号:5お
よび配列番号:6)。なお、ここで得られた形質転換体
JM109/pST001、JM109/pST00
5、JM109/pST015およびJM109/pS
T111は、工業技術院微生物工業技術研究所(微工
研)に、それぞれ微工研菌寄第11961号、微工研菌
寄第11962号、微工研菌寄第12064号および微
工研菌寄第12065号として寄託されている。
液体培養で行われるが、固体培養によっても行うことが
できる。培地としては、例えばLB培地が用いられる。
培養は10〜50℃の温度で、pH2〜11の範囲で行
われる。微生物の生育を促進させるために通気攪拌を行
ってもよい。
養液あるいは遠心分離などにより得た菌体の懸濁液に基
質を添加する方法、菌体処理物(例えば菌体破砕物、粗
酵素・精製酵素等の菌体抽出物等)あるいは常法により
固定化した菌体または菌体処理物等の懸濁液に基質を添
加する方法、微生物の培養時に基質を培養液に添加して
培養と同時に反応を行う方法等により、シアン化アルカ
リの存在下に、前記一般式〔I〕で示される1,2−エ
ポキシ化合物に作用させて、これを前記一般式〔II〕
で示される3−ヒドロキシニトリル化合物に変換するこ
とができる。
化合物は、例えば、1,2−エポキシプロパン、1,2
−エポキシブタン、1,2−エポキシヘキサン等であ
る。また、シアン化アルカリは、シアン化カリウム、シ
アン化ナトリウム等である。反応液中の基質濃度は特に
限定するものではないが、0.1〜10(W/V)%が
好ましく、また、シアン化アルカリの使用量は、通常基
質の1〜3倍量(モル)である。基質は反応液に一括し
て加えるかあるいは分割添加することができる。反応温
度は5〜50℃、反応pHは4〜10の範囲で行うこと
が好ましい。反応時間は基質等の濃度、菌体濃度あるい
はその他の反応条件等によって変わるが、通常1〜12
0時間で終了するように条件を設定するのが好ましい。
ヒドロキシニトリル化合物は公知の方法を用いて採取お
よび精製することができる。例えば、反応液から遠心分
離などの方法を用いて菌体を除いた後、酢酸エチルなど
の溶媒で抽出を行い、減圧下に溶媒を除去することによ
り3−ヒドロキシニトリル化合物のシロップを得ること
ができる。また、これらのシロップを減圧下に蒸留する
ことによりさらに精製することもできる。
クローン化されたハロヒドリンエポキシダーゼ遺伝子が
菌体内に多数存在する形質転換微生物の使用により、シ
アン化アルカリの存在下、1,2−エポキシ化合物から
3−ヒドロキシニトリル化合物を効率よく製造すること
が可能である。
含むLB培地18lにJM109/pST001を接種
し37℃にて16時間振盪培養を行った。得られた培養
液から遠心分離により菌体を回収し、100mM トリ
ス−硫酸緩衝液(pH8.0)50mlで洗浄後、同緩
衝液に懸濁し菌体懸濁液を調製した。菌体を超音波破砕
した後、遠心分離して沈澱物を除去し、上清を菌体抽出
液とした。常法にて硫安分画を行い、DEAE−セファ
セル、Phenyl−セファロースおよびOctyl−
セファロース(ファルマシア製)を用いたカラムクロマ
トグラフィーによって酵素を精製した。400mMのト
リス−硫酸緩衝液(pH8.0)にシアン化カリウムを
200mMになるように溶かした後、1Nの硫酸でpH
を8.0に調整し、この溶液25mlに精製酵素溶液
(タンパク濃度:30mg/ml)0.1mlと400
mMの1,2−エポキシブタン溶液25mlを加え、2
0℃で2時間反応した。反応液をガスクロマトグラフィ
ーで分析したところ、100mMの3−ヒドロキシバレ
ロニトリルが生成していた。なお、本反応生成物は、反
応液から酢酸エチルで抽出することによって単離した
後、NMR、赤外吸光スペクトルおよびマススペクトル
による分析から、3−ヒドロキシバレロニトリルである
ことを確認した。
ロパンを使用して実施例1と同様の反応を行ったとこ
ろ、71mMの3−ヒドロキシブチロニトリルが生成し
た。本反応生成物は実施例1と同様にして同定した。
それぞれJM109/pST015およびJM109/
pST111を接種し、37℃にて16時間培養を行っ
た。これらの培養液をそれぞれ遠心分離して菌体を集
め、100mMトリス−硫酸緩衝液(pH8.0)50
mlで洗浄後、同緩衝液25mlに懸濁し菌体懸濁液を
調製した。400mMのトリス−硫酸緩衝液(pH8.
0)にシアン化カリウムを200mMとなるように溶か
した後、1Nの硫酸でpHを8.0に調整した溶液50
mlを作成し、この溶液に上記菌体懸濁液と200mM
の1,2−エポキシブタン溶液をそれぞれ25ml加
え、20℃で30分(JM109/pST015)およ
び20℃で15分(JM109/pST111)反応さ
せた。反応液をガスクロマトグラフィーで分析したとこ
ろ、それぞれ11.1mM(JM109/pST01
5)および7.2mM(JM109/pST111)の
3−ヒドロキシバレロニトリルが生成していた。
ロパン使用して実施例3と同様の反応を行ったところ、
それぞれ3.6mM(JM109/pST015)およ
び6.2mM(JM109/pST111)の3−ヒド
ロキシブチロニトリルが生成していた。
5、pST015およびpST111の制限酵素地図を
示す。
Claims (5)
- 【請求項1】 微生物由来のハロヒドリンエポキシダー
ゼ酵素遺伝子DNAをベクタープラスミドに連結した組
換え体プラスミドにより形質転換された形質転換微生物
の培養液、菌体または菌体処理物を、シアン化アルカリ
の存在下で、下記一般式〔I〕で示される1,2−エポ
キシ化合物に作用させ、これを下記一般式〔II〕で示さ
れる3−ヒドロキシニトリル化合物に変換せしめること
を特徴とする3−ヒドロキシニトリル化合物の製造法。 【化1】 〔R は炭素数1〜4のアルキル基を表す〕 - 【請求項2】 ハロヒドリンエポキシダーゼ酵素遺伝子
DNAが、配列番号:1で示されるアミノ酸配列または
その一部の配列を有しハロヒドリンエポキシダーゼ活性
を有するポリペプチドをコ−ドするDNA配列からなる
請求項1記載の3−ヒドロキシニトリル化合物の製造
法。 - 【請求項3】 ハロヒドリンエポキシダーゼ酵素遺伝子
DNAが、配列番号:2で示されるアミノ酸配列または
その一部の配列を有しハロヒドリンエポキシダーゼ活性
を有するポリペプチドをコ−ドするDNA配列からなる
請求項1記載の3−ヒドロキシニトリル化合物の製造
法。 - 【請求項4】 ハロヒドリンエポキシダーゼ活性を有す
るポリペプチドをコードするDNA配列が、配列番号:
3で示されるDNA配列またはその一部の配列からなる
請求項2記載の3−ヒドロキシニトリル化合物の製造
法。 - 【請求項5】 ハロヒドリンエポキシダーゼ活性を有す
るポリペプチドをコードするDNA配列が、配列番号:
4で示されるDNA配列またはその一部の配列からなる
請求項3記載の3−ヒドロキシニトリル化合物の製造
法。
Priority Applications (1)
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---|---|---|---|
JP3062597A JP3026367B2 (ja) | 1991-03-04 | 1991-03-04 | ハロヒドリンエポキシダ−ゼ遺伝子を有する組換え体プラスミドにより形質転換された微生物による3−ヒドロキシニトリル化合物の製造法 |
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Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP3062597A JP3026367B2 (ja) | 1991-03-04 | 1991-03-04 | ハロヒドリンエポキシダ−ゼ遺伝子を有する組換え体プラスミドにより形質転換された微生物による3−ヒドロキシニトリル化合物の製造法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
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JPH05317066A JPH05317066A (ja) | 1993-12-03 |
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Family
ID=13204897
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP3062597A Expired - Lifetime JP3026367B2 (ja) | 1991-03-04 | 1991-03-04 | ハロヒドリンエポキシダ−ゼ遺伝子を有する組換え体プラスミドにより形質転換された微生物による3−ヒドロキシニトリル化合物の製造法 |
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-
1991
- 1991-03-04 JP JP3062597A patent/JP3026367B2/ja not_active Expired - Lifetime
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JPH05317066A (ja) | 1993-12-03 |
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