JP2520155C - - Google Patents

Description

【発明の詳細な説明】 ［産業上の利用分野］ 本発明は、酵素や微生物菌体のような生体触媒を基質と反応させて種々の有用
物質を製造する方法において、該触媒反応を効率良く行う方法および該方法に用
いるための装置に関するものである。さらに詳しくは、本発明は、限外濾過膜を
併置した反応部と、生成物の分離機能を備えた晶析部とで構成される反応装置を
用い、反応混合物を該装置に循環させて生成物を析出させ、分離することにより
、高い基質濃度の反応混合物から生成物を蓄積させ、効率よく生体触媒反応を行
う方法およびそのための装置に関するものである。 ［従来技術と解決すべき課題］ 酵素や微生物を触媒とする反応は、その高い基質特異性により、常温、常圧の
緩和な条件下で効率良く進むことから、これらの生体触媒を用いて種々の有用物 質を製造する試みがなされている。これらの生体触媒を用いる反応は通常、水溶
液または水性懸濁液中で行なわれるが、これら生体触媒は、高温等の苛酷な条件
下では極めて容易に失活してしまうので、反応後、生成物を懸濁状の反応混合物
から分離し、さらに生体触媒をその活性を維持したままで回収して再利用するこ
とは極めて困難である。従って、たとえ充分な活性が残っていても反応液と一緒
に捨てなければならず、極めて不経済であった。 近年、上記問題の解決策として、固定化生体触媒の利用が高まっている。固定
化生体触媒とは、生体触媒を、適当な固体担体に吸着させるか、もしくは固体担
体に包括せしめてなる不溶性の触媒である。この固定化生体触媒を用いた物質生
産プロセスの利点として、生体触媒が安定化されており、反応の連続操作が可能
であること、生成物と生体触媒との分離が容易であり、澄明な反応液が得られる
こと、生体触媒の反復利用が可能であること等を挙げ得るが、他方、欠点として
、固定化時に生体触媒の一部変性および失活を免れ得ず活性が低下していること
、また、このような生体触媒反応の反応性は基質濃度に依存しているが、基質濃
度を高くすると生成物が飽和溶解度以上に生成し、触媒内部や表面に析出して反
応を円滑に行えなくなるという点が指摘される。即ち、多くの固定化生体触媒反
応では、蓄積できる生成物の濃度は、それ自身の反応温度における飽和溶解度に
よって決まるために、一般には飽和溶解度以上の生成物を得ることができなかっ
たのである。 このような状況下、固定化生体触媒反応での生産効率を向上する手段として、
基質や生成物等の低分子量物質は透過させるが、生体触媒等の高分子量物質を透
過させないような膜を用いて生体触媒を隔離することにより、全体として固定化
生体触媒作用を発揮させ、生体触媒の固定化操作に伴う活性の低下を防ぐ方法が
提案されている。しかしながら、この方法では、活性は充分に発現され得るが、
安定性は従来の吸着法や包括法で調製された固定化生体触媒の安定性に比べて低
く、失活し易いために、回収再利用には不適当である。他方、本出願人は、固定
化生体触媒を用いる反応において、反応の進行と同時に生成物の分離、精製を行
うことにより、反応液中の生成物濃度を高める方法を開示した（特開昭61−5789 号）。この方法によって、生成物の高濃度化は達成されたが、固定化に伴う活性
の低下という問題点は未解決のままであった。従って、本発明者らは、より効率
のよい生体触媒による反応方法を開発することを目的として鋭意、研究を重ねて
きた。 ［課題を解決するための手段］ 本発明は、上記の様々な課題を解決するものであって、生体触媒の活性を高く
維持しつつ、固定化生体触媒の機能を充分に発揮させ、高濃度の生成物を蓄積さ
せて効率よく反応させる方法および該方法に用いるための装置を提供するもので
ある。本発明方法は、生体触媒を透過させない限外濾過膜（以下、UF膜と称する
）を併置する反応部と、生成物の析出、分離機能を備えた晶析部とからなる反応
装置を用いることによって達成された。 即ち、本発明は、基質と固定化されていない生体触媒とを反応させて有用物質
を製造する方法において、限外濾過膜を併置する反応槽からなる反応部と、温度
調節機構を備えた晶析槽に濾過器を併置してなる晶析部とで構成された装置を用
い、反応混合物を反応槽から限外濾過膜に循環させて生成物に富む濾液を得、該
濾液を生成物の析出温度に設定した晶析槽に送って生成物を析出させ、濾過器で
分離した後、その母液を反応槽に循環させることを特徴とする方法、並びに該方
法に用いるための装置を提供するものである。 本発明方法は、たとえば、攪拌下、反応部の反応槽内で基質と生体触媒とを反
応させながら、これら出発物質と生成物とを含有する反応混合物を循環させてUF
膜に接触させ、生成物に富む濾液を分離し、該濾液を、生成物の溶解度が反応部
での飽和溶解度よりも低くなるように温度設定された晶析槽に送って析出させ、
得られた生成物を分離し、蓄積させた後、母液を再び反応部に戻して再使用する
ことで実施される。 本発明装置の反応槽に併置されるUF膜としては、生体触媒である微生物細胞や
酵素タンパク質の透過を妨げ、低分子量の基質や生成物のみを透過させる適当な
孔径の細孔膜である限り、その種類に制限なく、平膜、中空糸（ホローファイバ
ー）膜等から任意に選択することができる。しかしながら、分画分子量が約5,00 0〜50,000であって、単位体積当たりの透過面積が約２ないし30m²と大きいホロ
ーファイバー型式の膜が好ましい。 反応槽としては、基質と生体触媒間の外部拡散抵抗を除去するための機能を備
えたものであればいずれの型式のものであってもよく、適当な攪拌機の付いた攪
拌槽や、液流動用ポンプの付いた塔型式のものを用いることができる。 また、晶析槽としては、熱交換機能、固−液分離機能、攪拌機能を有するもの
であれば、いかなる型式のものを選択してもよい。 上記の如く、本発明方法では、反応槽〜UF膜、およびUF膜〜晶析槽〜反応槽間
に、反応液を循環させる。従って、本発明装置は、これらの各部位を送液ライン
で連結すると共に、液を循環させるための循環ポンプを適宜配設して構成されて
いる。 本発明方法は、通常の生体触媒による反応に広く適用可能である。そのような
反応には、たとえば、トランスアミナーゼのような酵素を粗酵素のまま、または
精製酵素として用いることができ、あるいは、トランスアミナーゼ活性を有する
パラコッカス・デニトリフィカンス（Paracoccus denitrificans）IFO12442やエ
ッシェリヒア・コリ（Escherichia coli）PA501株（特願昭62−313505号）の如
き微生物細胞の培養液をそのまま、あるいは濃縮精製した濃縮菌体として用いる
こともできる。このような生体触媒は市販されているか、または調製可能である
が、微生物細胞を用いるときには、反応液中に培養液由来の來雑物が混入するこ
とを避けると共に、取り扱いを容易にするために、培養液を1/5〜1/50程度に濃
縮精製したものを用いることが好ましい。 また、基質は、目的物質に対応するものが選択されるが、それが水溶性の場合
には、適当に高濃度の水溶液として用い、難溶性であれば、懸濁液として用いる
。反応槽への添加は、最初に一括して加えるか、あるいは反応中に数回に分けて
加えるいずれの方法でもよい。生体触媒反応が基質で阻害される場合には後者の
方法が好ましい。 本発明方法では、上記の如く、反応槽内の反応混合物を循環させてUF膜に接触
させ、生成物に富む濾液と生体触媒を含有する反応液とを分離する。後者はその まま反応槽に戻されるが、前者の濾液を晶析槽に導き、該槽内で生成物を析出さ
せて分離した後、反応母液を反応槽に戻す。この一連の反応機構を通して循環さ
れる反応液の流速は、反応槽〜UF膜間では生体触媒がUF膜内に貯溜されない程度
であればよく、UF膜〜晶析槽〜反応槽間では、反応効率の観点から、UF膜の濾液
中に基質が若干残存している状態が得られる程度の流速とするのが好ましい。 反応槽の温度は生体触媒の活性と安定性を維持するために、通常、０〜60℃の
範囲とするが、20〜45℃に設定することが好ましい。 晶析槽の温度は、反応温度における生成物の飽和溶解度よりも低い飽和溶解度
を与える温度に設定することが必要である。即ち、溶解度が温度上昇に伴って上
昇する物質の場合には、晶析槽の温度を反応槽の温度よりも低くし、その逆の場
合には高くすればよい。 次に、上記本発明方法の１実施態様を、図面に従って説明する。 第１図は本発明の反応装置の該略ブロック図である。反応槽（１）にはホロー
ファイバー型のUF膜（２）が、晶析槽（３）には濾過器（４）がそれぞれ併設さ
れており、これらの間にはポンプ（５）、（６）および（７）が配設され、反応
槽（１）からUF膜（２）には反応混合物が、UF膜（２）から晶析槽（３）にはUF
膜濾液が、そして濾過器（４）から反応槽（１）間には生成物分離後の母液が夫
々送液ライン（10）、（10′）、（10″）を通って循環するように構成されてい
る。反応槽（１）および晶析槽（３）にはそれぞれ、攪拌機（８）および（９）
が設けられている。晶析槽（３）に併置される濾過器（４）の形状および設置方
法は特に限定されるものでなく、第１図に示すように、晶析槽（４）にオーバー
フロー管を付け、その管の出口に設置してもよいが、晶析槽（３）の断面全域に
吸引式の平板式濾過板を設置したり、あるいは、円筒式濾過板を晶析槽（３）内
に浸漬して設ける方法（第２図参照）でもよい。 本発明装置を用いて生体触媒反応を行うには、まず、反応槽（１）に基質溶液
または基質懸濁液と生体触媒を入れ、反応混合物を攪拌機（８）で攪拌する。同
時に、反応混合物を、ポンプ（５）により送液ライン（10）を経てUF膜（２）に
導く。UF膜（２）がホローファイバー膜であれば、循環液を膜の内、外いずれに 導いてもよい。次いで、UF膜（２）を透過した濾液をポンプ（６）によって抜き
出し、送液ライン（10′）を経て晶析槽（３）に送り込むと、反応生成物の溶解
度が反応槽（１）内におけるよりも低くなるように温度設定された晶析槽（３）
内で生成物は過飽和となり、析出する。生成物が析出し、反応槽（１）内よりも
低濃度で飽和されたUF膜（２）濾液はオーバーフローして濾過機（４）に入り、
生成物が分離される。析出した生成物を晶析部に残し、母液をポンプ（７）によ
り送液ライン（10″）を経て反応槽（１）に戻すと、該液は未飽和の基質を溶解
し、再度反応に供せられる。 基質が消耗されるまでこの操作を繰り返して行うと、晶析部には懸濁状の生成
物のみが蓄積されることになる。 第２図は他の実施例を示す図であって、第１図の反応装置において、反応槽（
１）が除かれている。この場合には、基質を晶析槽（３）内に入れ、生体触媒を
UF膜（２）の空間に置いて、反応混合物を晶析槽（３）からUF膜（２）に循環さ
せて反応させる。この装置では、晶析部［晶析槽（３）と濾過器（４）］の実効
容積に対する反応部［UF膜（２）］の実効容積の比が小さいので、反応液への生
成物量の損失を少なくすることができる。 ［実施例］ 以下に実施例および実験例を挙げ、本発明をさらに詳しく説明する。実施例１ トランスアミナーゼ活性を有するDNA組換えエッシェリヒア・コリPA5
01株によるフェニルピルビン酸とＬ−アスパラギン酸からのＬ−フェニルアラニ
ンの生産 （１）装置 ホローファイバー型UF膜（旭化成、SIP1013、透過面積0.2m²、分画分子量6000
）の併置した反応槽（実効容積0.55l）と実効容積0.45ｌの外浴付き晶析槽およ
び円筒型平板濾過器（直径8cmφガラスフィルター）を第１図の様式で連結した
ものを用いる。 （２）生体触媒 微生物細胞を次の如く調製した。 まず、グルコース 0.2％、ラクトース１％、コーンスチープリカー２％、ミー
ストN 2％、グルタミン酸ナトリウム 0.5％、(NH₄)₂SO₄ 0.1％、K₂HPO₄ 0.7％、
KH₂PO₄ 0.3％、MgSO₄・7H₂O 0.025％、カラリン 0.03％を含む培地10l（pH 7.0
）にDNA組換えエッシェリヒア・コリPA501株（宿主：エッシェリヒア・コリHB10
1株；ベクター：pUC18；挿入DNA：パラコッカス・デニトリフィカンスのゲノムD
NAの一部）の前培養液0.1ｌを植菌し、37℃で22h 通気攪拌培養した。 培養液を遠心分離して1/37に濃縮し、濃縮微生物細胞を調製した。 （３）操作 濃縮微生物細胞5g、フェニルピルビン酸ナトリウム（１水塩）0.2mol、Ｌ−ア
スパラギン酸アンモニウム1.625molを反応槽に充填し全量を0.97ｌ(pH8.0)とし
た。 反応槽の温度を30℃に設定し、攪拌を行うと同時に槽内の基質と微生物細胞を
UF膜の外側（シェル側）を循環させた。 同時に、UF膜から濾液を0.51ｌの流速で抜き出し、５℃に設定した晶析槽に送
り、晶析槽からのオーバフロー液は濾過器を通して反応槽に戻した。 反応開始0.5時間後に反応槽に0.02molのフェニルピルビン酸ナトリウムを加え
、以後0.5時間間隔で同量のフェニルピルビン酸ナトリウムを加えて行き、7.5時
間で総量0.5molを仕込んだ。 24時間で反応を停止したところ、反応液中のフェニルピルビン酸は完全に消失
し、0.486molのＬ−フェニルアラニンが生成していた。 生成したＬ−フェニルアラニンのうち57％は固相に、残りの43％が液相に存在
していた。 この固相のＬ−フェニルアラニンを濾別し、その時得られた母液と洗滌液（0.
985ｌ>）に新たに濃縮微生物細胞5gとフェニルピルビン酸ナトリウムを加え（初
回0.05mol、以後は0.5時間毎に0.02mol、総仕込量0.25mol）、pHを8.0として24
時間反応させ、１回目の反応と同様に、蓄積したＬ−フェニルアラニンの結晶を
濾別した。この操作を合計３回行った（フェニルピルビン酸の総仕込量1.25mol
）ところ、生成したＬ−フェニルアラニンは1.185mol（転換率94.5％）となり、
こ のうち76.5％が結晶として回収できた。実施例２ トランスアミナーゼ活性を有するパラコッカス・デニトリフィカンス
IFO12442によるフェニルピルビン酸とＬ−アスパラギン酸からのＬ−フェニルア
ラニンの生産 （１）装置 ホローファイバー型UF膜（アミコン社、HIP10−８、透過面積0.083m²、分画分
子量10,000）と実効容積0.17ｌの外浴付晶析槽とを第２図の様式に従って連結し
て用いる。 （２）生体触媒 微生物細胞を次の如く調製した。 まず、グルコース１％、(NH₄)₂HPO₄ 0.2％、ミーストＮ（ビール酵母エキス）
１％、コーンスチープリカー１％、ペプトン 0.5％、KH₂PO₄ 0.1％、MgSO₄・7H₂
O 0.05％、カラリン0.03％を含む培地５ｌ（pH7.0）にパラコッカス・デニトリ
フィカンスIFO12442の前培養液0.05ｌを植菌し、30℃で24時間通気攪拌培養した
。培養液に１％のセチルトリメチルアンモニウムブロマイドを0.05ｌ添加し、30
℃で0.5時間放置して微生物細胞の活性化を行った後、遠心分離によって1/15に
濃縮し、濃縮微生物細胞を調製した。 （３）操作 この濃縮微生物細胞16gに水を加えて全量を0.031ｌとし、30℃に保温したUF膜
の外側空間部に充填した。他方、晶析槽には、0.064molのフェニルピルビン酸ナ
トリウム（１水塩）、0.204molのＬ−アスパラギン酸アンモニウム、２×10^-5mo
lのピリドキサル５′−リン酸（補酵素）を充填し、水で全量を0.165ｌとした。 晶析槽の温度を５℃に設定し、0.09ｌの循環流速で濾液循環を行い反応を開始
した。反応開始2，3，および12時間目にフェニルピルビン酸ナトリウムをそれぞ
れ0.031molずつ追加し、反応を続けたところ、25.5時間後フェニルピルビン酸は
完全になくなり、晶析槽にＬ−フェニルアラニンの結晶が蓄積した。 フェニルピルビン酸のＬ−フェニルアラニンへの転換率は92.4％で、そのうち
65.5％が固相に、そして残りの34.5％が液相に存在していた。 上記の実施例２で使用した生体触媒の固定化標品を用い、従来の晶析槽を備え
た装置、およびカラムを用いる連続系で以下の実験例に従って反応を行い、その
結果を比較した。実験例１ （ａ）晶析槽を備えた装置を用いる方法 実施例２−（２）で調製した濃縮微生物細胞をκ−カラギーナンゲルで包括し
た固定化パラコッカスデニトリフィカンスを用いてＬ−フェニルアラニンのけん
濁反応を行った。 （１）装置 実施例２の装置におけるUF膜に代えて、目皿式攪拌槽型反応器（実効容積0.13
ｌ）と実効容積0.325ｌの晶析槽を閉回路で連結（連結様式は第２図参照）した
ものを用いた。 （２）固定化生体触媒 固定化微生物細胞は次の如く調製した。 まず上記濃縮固定化微生物細胞80gに生理食塩水を加えて全量を0.16ｌとして4
0℃に保温した。 これと別にκ−カラギーナン12.5gを含んだ45℃の溶液0.207ｌを用意し、両者
を混合して10℃に冷却してゲル化した。 得られたゲルの塊を２％塩化カリウム溶液に浸せきし、10℃以下で一夜放置し
てから、平均粒径3m/mφに成形し、成形品を２％塩化カリウム溶液で洗浄して標
品とした。 （３）操作 上記（２）で調製した標品55gを反応槽に充填し、同時に晶析槽には0.1molの
フェニルピルビン酸ナトリウム、0.45molのＬ−アスパラギン酸アンモニウム、4
.5×10^-5molピリドキサル５′−リン酸を充填し、全量を0.315ｌ（pH8.0）とし
た。 反応槽の温度を30℃、晶析槽の温度を５℃に調節して濾液を1.16ｌ/hの流速で
循環し反応を開始した。 反応開始5.5、30.5、47.5、および55.5時間目にフェニルピルビン酸ナトリウ ムを0.05molずつ加えて反応を続けたところ、95時間目にフェニルピルビン酸は
完全になくなり、晶析槽にはＬ−フェニルアラニンの結晶が蓄積した。 この場合、フェニルピルビン酸のＬ−フェニルアラニンへの転換率は71.2％で
、生成したＬ−フェニルアラニンのうち、65.3％が固相に、残りの34.7％が液相
に存在した。 （ｂ）連続系による方法 上記（ａ）−（２）で調製した固定化微生物細胞を用い、連続系でＬ−フェニ
ルアラニンの生産を行った。 （１）装置および操作 使用した反応器は直径3cmφ、高さ25cmの外浴付円筒カラムで、この中に固定
化微生物細胞0.0685ｌ充填（充填率0.585）した。 カラムを30℃に制御し、その中へフェニルピルビン酸ナトリウム0.25M、Ｌ−
アスパラギン酸アンモニウム0.325M、ピリドキサル５′−リン酸10^-4Mの基質溶
液（pH8.0）をポンプによって連続的に供給した。 流速が0.0076ｌ/h（平均滞留時間9h）の時、カラム出口のフェニルピルビン酸
の濃度は０であり、Ｌ−フェニルアラニンの濃度は0.197Mであった。この値から
、フェニルピルビン酸のＬ−フェニルアラニンへの転換率は78.8％と計算される
。 以上の実施例２および実験例（ａ）および（ｂ）の反応で実際に蓄積したＬ−
フェニルアラニンの濃度と、微生物細胞当たりのＬ−フェニルアラニンの生産性
をまとめると第１表の如くとなった。 上記表より明らかな如く、本発明方法によれば従来の晶析槽を併置した固定化 生体触媒反応器や、カラム型反応器による生産法よりも、高濃度のＬ−フェニル
アラニンを蓄積でき、生産性が向上される。 ［発明の効果］ 上記の如く、本発明方法によれば、簡単な装置と操作により、生体触媒が高活
性を保った状態で、高濃度の基質の存在下、生成物を高濃度に製造し、蓄積させ
ることができる。従って、基質および生体触媒を無駄なく利用し、効率よく反応
を行うことができる。The present invention relates to a method for producing various useful substances by reacting a biocatalyst, such as an enzyme or a microbial cell, with a substrate. The invention relates to a method for performing the method and an apparatus for use in the method. More specifically, the present invention uses a reaction apparatus comprising a reaction section provided with an ultrafiltration membrane and a crystallization section having a product separation function, and circulates the reaction mixture through the reaction apparatus to produce a reaction mixture. TECHNICAL FIELD The present invention relates to a method for efficiently accumulating a product from a reaction mixture having a high substrate concentration by precipitating and separating a substance, thereby efficiently conducting a biocatalytic reaction, and an apparatus therefor. [Conventional technologies and problems to be solved] Reactions catalyzed by enzymes and microorganisms can proceed efficiently under moderate conditions of normal temperature and normal pressure due to their high substrate specificity. Attempts have been made to produce useful substances. Reactions using these biocatalysts are usually carried out in an aqueous solution or aqueous suspension, but these biocatalysts are very easily deactivated under severe conditions such as high temperatures. Is very difficult to separate from the reaction mixture in suspension and to recover and reuse the biocatalyst while maintaining its activity. Therefore, even if sufficient activity remains, it must be discarded together with the reaction solution, which is extremely uneconomical. In recent years, the use of immobilized biocatalysts has been increasing as a solution to the above problem. The immobilized biocatalyst is an insoluble catalyst in which the biocatalyst is adsorbed on a suitable solid carrier or is entrapped in the solid carrier. The advantages of the substance production process using this immobilized biocatalyst are that the biocatalyst is stabilized, continuous operation of the reaction is possible, the product can be easily separated from the biocatalyst, and a clear reaction can be achieved. A liquid can be obtained, the biocatalyst can be repeatedly used, and the like.On the other hand, the drawback is that the activity of the biocatalyst is reduced due to inevitable partial denaturation and deactivation of the biocatalyst during immobilization. In addition, the reactivity of such a biocatalytic reaction depends on the substrate concentration.However, when the substrate concentration is increased, the product is generated in excess of the saturation solubility and deposited on the inside or surface of the catalyst and the reaction can be carried out smoothly. It is pointed out that it will disappear. That is, in many immobilized biocatalytic reactions, the concentration of a product that can be accumulated is determined by the saturation solubility at its own reaction temperature, and thus, generally, a product having a saturation solubility or higher cannot be obtained. Under these circumstances, as a means to improve the production efficiency in the immobilized biocatalytic reaction,
By isolating the biocatalyst using a membrane that allows the passage of low molecular weight substances such as substrates and products but does not allow the permeation of high molecular weight substances such as biocatalysts, the immobilized biocatalyst action is exhibited as a whole, There has been proposed a method for preventing a decrease in activity due to a catalyst fixing operation. However, in this method, although the activity can be sufficiently expressed,
The stability is lower than the stability of the immobilized biocatalyst prepared by the conventional adsorption method or entrapment method, and it is not suitable for recovery and reuse because it is easily deactivated. On the other hand, the present applicant has disclosed a method of increasing the concentration of a product in a reaction solution by separating and purifying the product at the same time as the reaction proceeds in a reaction using an immobilized biocatalyst (Japanese Patent Application Laid-Open No. 61-1986). No.-5789). By this method, a high concentration of the product was achieved, but the problem of a decrease in activity due to immobilization remained unsolved. Therefore, the present inventors have intensively studied for the purpose of developing a more efficient reaction method using a biocatalyst. [Means for Solving the Problems] The present invention solves the above-mentioned various problems, and achieves the function of the immobilized biocatalyst sufficiently while maintaining the activity of the biocatalyst at a high level. The present invention provides a method for accumulating a product of the above and causing an efficient reaction, and an apparatus for use in the method. The method of the present invention uses a reaction apparatus including a reaction unit provided with an ultrafiltration membrane (hereinafter, referred to as a UF membrane) that does not allow the biocatalyst to permeate, and a crystallization unit having a function of separating and separating a product. Achieved by That is, the present invention provides a process for producing a useful substance by reacting a biocatalyst which is not a substrate immobilized, a reaction unit consisting of a reaction vessel to collocate ultrafiltration membrane, temperature
Use a device consisting of a crystallization section with a filter attached to a crystallization tank equipped with an adjustment mechanism.
The reaction mixture was circulated from the reaction vessel through an ultrafiltration membrane to obtain a product-rich filtrate.
The filtrate is sent to the crystallization tank set at the product precipitation temperature to precipitate the product,
It is intended to provide a method characterized by circulating the mother liquor to a reaction tank after separation, and an apparatus for use in the method. In the method of the present invention, for example, a reaction mixture containing these starting materials and a product is circulated while reacting a substrate and a biocatalyst in a reaction vessel in a reaction section under stirring, and UF is used.
The membrane is contacted, the product-rich filtrate is separated, and the filtrate is sent to a crystallization tank set at a temperature such that the solubility of the product is lower than the saturation solubility in the reaction section to be precipitated.
After separating and accumulating the obtained product, the mother liquor is returned to the reaction section and reused. The UF membrane juxtaposed in the reaction tank of the apparatus of the present invention, as long as it is a porous membrane having an appropriate pore size that prevents permeation of microbial cells and enzyme proteins that are biocatalysts and allows only low molecular weight substrates and products to permeate The type can be arbitrarily selected from flat membranes, hollow fiber (hollow fiber) membranes, and the like, without limitation. However, hollow fiber type membranes having a fractional molecular weight of about 5,000 to 50,000 and a large permeation area per unit volume of about 2 to 30 m ² are preferred. The reaction tank may be of any type as long as it has a function for removing external diffusion resistance between the substrate and the biocatalyst, and may be a stirring tank equipped with a suitable stirrer, Tower type with a water pump can be used. As the crystallization tank, any type may be selected as long as it has a heat exchange function, a solid-liquid separation function, and a stirring function. As described above, in the method of the present invention, the reaction solution is circulated between the reaction tank and the UF membrane and between the UF membrane and the crystallization tank and the reaction tank. Therefore, the apparatus of the present invention is configured such that these parts are connected by a liquid sending line, and a circulation pump for circulating the liquid is appropriately disposed. The method of the present invention is widely applicable to ordinary biocatalytic reactions. For such a reaction, for example, an enzyme such as transaminase can be used as a crude enzyme or as a purified enzyme, or an enzyme having transaminase activity such as Paracoccus denitrificans IFO12442 or Escherichia coli can be used. A culture solution of microbial cells such as (Escherichia coli) PA501 strain (Japanese Patent Application No. 62-313505) can be used as it is or as concentrated cells purified by concentration. Such biocatalysts are commercially available or can be prepared.However, when using microbial cells, it is necessary to avoid contamination of the reaction solution with foreign substances derived from the culture solution and to facilitate handling. It is preferable to use a culture solution which is concentrated and purified to about 1/5 to 1/50. As the substrate, one corresponding to the target substance is selected. When the substrate is water-soluble, it is used as a suitably high-concentration aqueous solution, and when it is hardly soluble, it is used as a suspension. The addition to the reaction tank may be carried out by any method at once, or by adding several times during the reaction. The latter method is preferred when the biocatalytic reaction is inhibited by the substrate. In the method of the present invention, as described above, the reaction mixture in the reaction vessel is circulated and brought into contact with the UF membrane to separate the product-rich filtrate from the reaction solution containing the biocatalyst. The latter is returned to the reaction tank as it is, but the former filtrate is guided to the crystallization tank, and the product is precipitated and separated in the crystallization tank, and then the reaction mother liquor is returned to the reaction tank. The flow rate of the reaction solution circulated through this series of reaction mechanisms may be such that the biocatalyst is not stored in the UF membrane between the reaction tank and the UF membrane. From the viewpoint of efficiency, it is preferable to set the flow rate to such an extent that a state in which the substrate slightly remains in the filtrate of the UF membrane can be obtained. The temperature of the reaction vessel is usually in the range of 0 to 60 ° C, preferably 20 to 45 ° C, in order to maintain the activity and stability of the biocatalyst. It is necessary to set the temperature of the crystallization tank to a temperature that gives a saturation solubility lower than the saturation solubility of the product at the reaction temperature. That is, in the case of a substance whose solubility increases with an increase in temperature, the temperature of the crystallization tank may be lower than the temperature of the reaction tank, and vice versa. Next, one embodiment of the method of the present invention will be described with reference to the drawings. FIG. 1 is a schematic block diagram of the reaction apparatus of the present invention. A hollow fiber type UF membrane (2) is provided in the reaction tank (1), and a filter (4) is provided in the crystallization tank (3). Pumps (5) and (6) are provided between these. ) And (7), the reaction mixture from the reaction tank (1) to the UF membrane (2) and the UF membrane from the UF membrane (2) to the crystallization tank (3).
The membrane filtrate and the mother liquor after product separation between the filter (4) and the reaction tank (1) are circulated through the liquid sending lines (10), (10 ') and (10 "), respectively. The reaction tank (1) and the crystallization tank (3) are provided with stirrers (8) and (9), respectively.
Is provided. The shape and installation method of the filter (4) juxtaposed to the crystallization tank (3) are not particularly limited. As shown in FIG. 1, an overflow pipe is attached to the crystallization tank (4). Although it may be installed at the outlet of the tube, a suction-type flat filter plate may be installed over the entire cross section of the crystallization tank (3), or a cylindrical filter plate may be immersed in the crystallization tank (3). (See FIG. 2). To carry out a biocatalytic reaction using the apparatus of the present invention, first, a substrate solution or a substrate suspension and a biocatalyst are placed in a reaction tank (1), and the reaction mixture is stirred by a stirrer (8). At the same time, the reaction mixture is guided by the pump (5) to the UF membrane (2) via the liquid sending line (10). If the UF membrane (2) is a hollow fiber membrane, the circulating fluid may be guided inside or outside the membrane. Next, the filtrate permeated through the UF membrane (2) is withdrawn by the pump (6) and sent to the crystallization tank (3) via the liquid sending line (10 '), and the solubility of the reaction product in the reaction tank (1) is increased. Crystallization tank set at a temperature lower than that in (3)
Within, the product becomes supersaturated and precipitates. The product precipitates out and the UF membrane (2), which is saturated at a lower concentration than in the reactor (1), overflows into the filter (4),
The product is separated. The precipitated product is left in the crystallization section, and the mother liquor is returned to the reaction tank (1) via the liquid sending line (10 ″) by the pump (7). The liquid dissolves the unsaturated substrate and reacts again. If this operation is repeated until the substrate is consumed, only the suspended product is accumulated in the crystallization part. Then, in the reaction apparatus shown in FIG.
1) has been removed. In this case, the substrate is put into the crystallization tank (3) and the biocatalyst is
The reaction mixture is placed in the space of the UF membrane (2) and circulated from the crystallization tank (3) to the UF membrane (2) for reaction. In this apparatus, since the ratio of the effective volume of the reaction section [UF membrane (2)] to the effective volume of the crystallization section [crystallization tank (3) and filter (4)] is small, the amount of product in the reaction solution is reduced. Loss can be reduced. EXAMPLES Hereinafter, the present invention will be described in more detail with reference to Examples and Experimental Examples. Example 1 DNA recombinant Escherichia coli PA5 having transaminase activity
Production of L-phenylalanine from phenylpyruvic acid and L-aspartic acid by strain 01 (1) Apparatus Hollow fiber UF membrane (Asahi Kasei, SIP1013, 0.2 m ² permeation area, molecular weight cut off 6000)
), A reaction vessel (effective volume 0.55 l), a crystallization tank with an external bath having an effective volume of 0.45 l, and a cylindrical plate filter (diameter 8 cmφ glass filter) connected in the manner shown in FIG. (2) Biocatalyst Microbial cells were prepared as follows. First, glucose 0.2%, lactose 1%, corn steep liquor 2%, mist N 2%, sodium glutamate 0.5%, (NH ₄ ) ₂ SO ₄ 0.1%, K ₂ HPO ₄ 0.7%,
10 l of medium containing 0.3% KH ₂ PO ₄ , 0.025% MgSO ₄ .7H ₂ O, and 0.03% caraline (pH 7.0
) To DNA recombinant Escherichia coli PA501 strain (host: Escherichia coli HB10)
1 strain; Vector: pUC18; Inserted DNA: Genome D of Paracoccus denitrificans
0.1 l of a preculture solution (part of NA) was inoculated, and cultured with aeration and agitation at 37 ° C for 22 hours. The culture was centrifuged and concentrated to 1/37 to prepare concentrated microbial cells. (3) Operation 5 g of concentrated microbial cells, 0.2 mol of sodium phenylpyruvate (monohydrate) and 1.625 mol of ammonium L-aspartate were charged into a reaction vessel to make a total volume of 0.97 l (pH 8.0). Set the temperature of the reaction tank to 30 ° C, stir, and at the same time, mix the substrate and microbial cells in the tank.
The outside (shell side) of the UF membrane was circulated. At the same time, the filtrate was withdrawn at a flow rate of 0.51 l from the UF membrane, sent to a crystallization tank set at 5 ° C., and the overflow from the crystallization tank was returned to the reaction tank through a filter. 0.5 hours after the start of the reaction, 0.02 mol of sodium phenylpyruvate was added to the reaction tank, and thereafter the same amount of sodium phenylpyruvate was added at 0.5 hour intervals, and a total of 0.5 mol was charged in 7.5 hours. When the reaction was stopped for 24 hours, the phenylpyruvic acid in the reaction solution completely disappeared, and 0.486 mol of L-phenylalanine was produced. Of the L-phenylalanine produced, 57% was in the solid phase and the remaining 43% was in the liquid phase. The L-phenylalanine in the solid phase was filtered off, and the mother liquor and the washing solution (0.
985 l), newly added 5 g of concentrated microbial cells and sodium phenylpyruvate (0.05 mol at the beginning, 0.02 mol every 0.5 hours thereafter, total charge 0.25 mol), pH 8.0 to 24
The reaction was allowed to proceed for a period of time, and the accumulated L-phenylalanine crystals were filtered off in the same manner as in the first reaction. This operation was performed three times in total (total charge of phenylpyruvic acid: 1.25 mol)
However, L-phenylalanine produced was 1.185 mol (conversion rate 94.5%),
Of these, 76.5% could be recovered as crystals. Example 2 Paracoccus denitrificans with transaminase activity
Production of L-phenylalanine from phenylpyruvic acid and L-aspartic acid by IFO12442 (1) Apparatus Hollow fiber type UF membrane (Amicon, HIP10-8, permeation area 0.083m ² , fractional molecular weight 10,000) and effective volume 0.17 l And a crystallization tank equipped with an external bath. (2) Biocatalyst Microbial cells were prepared as follows. First, glucose 1%, (NH ₄ ) ₂ HPO ₄ 0.2%, Mist N (beer yeast extract)
1%, corn steep liquor 1%, 0.5% _{peptone, KH 2 PO 4 0.1%,} MgSO 4 · 7H 2
0.05 L of a preculture of Paracoccus denitrificans IFO12442 was inoculated into 5 L of a medium (pH 7.0) containing 0.05% of O and 0.03% of caraline, and cultured under aeration and agitation at 30 ° C. for 24 hours. Add 0.05 L of 1% cetyltrimethylammonium bromide to the culture solution,
After standing at 0.5 ° C. for 0.5 hour to activate the microbial cells, the cells were concentrated to 1/15 by centrifugation to prepare concentrated microbial cells. (3) Operation To 16 g of the concentrated microbial cells, water was added to make the total volume 0.031 l, and the mixture was filled in the outer space of the UF membrane kept at 30 ° C. On the other hand, in the crystallization tank, 0.064 mol of sodium phenylpyruvate (monohydrate), 0.204 mol of ammonium L-aspartate, 2 × 10 ⁻⁵ mo
l of pyridoxal 5'-phosphate (coenzyme) and made up to 0.165 l with water. The temperature of the crystallization tank was set at 5 ° C., and the filtrate was circulated at a circulation flow rate of 0.09 l to start the reaction. 0.031 mol of sodium phenylpyruvate was added at 2, 3 and 12 hours after the start of the reaction, and the reaction was continued. After 25.5 hours, the phenylpyruvic acid completely disappeared and L-phenylalanine crystals were found in the crystallization tank. Accumulated. The conversion of phenylpyruvic acid to L-phenylalanine was 92.4%, of which
65.5% was in the solid phase and the remaining 34.5% was in the liquid phase. Using the immobilized sample of the biocatalyst used in Example 2 above, a reaction was carried out according to the following experimental examples in a conventional apparatus equipped with a crystallization tank and a continuous system using a column, and the results were compared. Experimental Example 1 (a) Method using an apparatus equipped with a crystallization tank L-cells were concentrated using immobilized Paracoccus denitrificans in which the concentrated microbial cells prepared in Example 2- (2) were covered with κ-carrageenan gel. A suspension reaction of phenylalanine was performed. (1) Apparatus Instead of the UF membrane in the apparatus of Example 2, a perforated stirred tank reactor (effective volume 0.13
1) and a crystallization tank having an effective volume of 0.325 l were connected in a closed circuit (refer to FIG. 2 for the connection mode). (2) Immobilized biocatalyst Immobilized microbial cells were prepared as follows. First, physiological saline was added to 80 g of the above-mentioned concentrated and immobilized microbial cells to make a total volume of 0.16 l.
It was kept at 0 ° C. Separately, 0.207 l of a 45 ° C. solution containing 12.5 g of κ-carrageenan was prepared, mixed, cooled to 10 ° C. and gelled. The obtained gel mass is immersed in a 2% potassium chloride solution, left overnight at 10 ° C. or less, then molded into an average particle size of 3 m / mφ, and the molded product is washed with a 2% potassium chloride solution to prepare a sample. And (3) Operation 55 g of the sample prepared in (2) was charged into a reaction vessel, and simultaneously, 0.1 mol of sodium phenylpyruvate, 0.45 mol of ammonium L-aspartate,
0.5 × 10 ⁻⁵ mol pyridoxal 5′-phosphoric acid was charged to make the total volume 0.315 l (pH 8.0). The temperature of the reaction tank was adjusted to 30 ° C., and the temperature of the crystallization tank was adjusted to 5 ° C., and the filtrate was circulated at a flow rate of 1.16 l / h to start the reaction. At 5.5, 30.5, 47.5, and 55.5 hours after the start of the reaction, the reaction was continued by adding 0.05 mol of sodium phenylpyruvate.At 95 hours, phenylpyruvic acid completely disappeared, and L-phenylalanine was added to the crystallization tank. Crystals accumulated. In this case, the conversion ratio of phenylpyruvic acid to L-phenylalanine was 71.2%. Of the L-phenylalanine produced, 65.3% was in the solid phase and the remaining 34.7% was in the liquid phase. (B) Method using a continuous system L-phenylalanine was produced in a continuous system using the immobilized microorganism cells prepared in the above (a)-(2). (1) Apparatus and operation The reactor used was a cylindrical column having a diameter of 3 cm and a height of 25 cm with an external bath, into which 0.0685 l of immobilized microorganism cells were filled (filling rate: 0.585). The column was controlled at 30 ° C, into which sodium phenylpyruvate 0.25M, L-
Ammonium aspartate 0.325 M, was continuously fed by pyridoxal 5'-phosphate 10 ^-4 M substrate solution (pH 8.0) Pump. When the flow rate was 0.0076 l / h (average residence time 9 h), the concentration of phenylpyruvic acid at the column outlet was 0, and the concentration of L-phenylalanine was 0.197M. From this value, the conversion of phenylpyruvic acid to L-phenylalanine is calculated to be 78.8%. L- actually accumulated in the reaction of Example 2 and Experimental Examples (a) and (b) described above.
Table 1 summarizes the concentration of phenylalanine and the productivity of L-phenylalanine per microbial cell. As is clear from the above table, according to the method of the present invention, it is possible to accumulate a higher concentration of L-phenylalanine than in the production method using a conventional immobilized biocatalytic reactor provided with a crystallization tank or a column-type reactor. The performance is improved. [Effects of the Invention] As described above, according to the method of the present invention, the product is produced at a high concentration in the presence of a high concentration of the substrate while maintaining the high activity of the biocatalyst by a simple apparatus and operation. , Can be accumulated. Therefore, the reaction can be performed efficiently using the substrate and the biocatalyst without waste.

【図面の簡単な説明】 第１図は本発明の実施例を示す装置の概略ブロック図、第２図は他の実施例を
示す装置の概略ブロック図である。 図中、（１）は反応槽、（２）はUF膜、（３）は晶析槽、（４）は濾過器、（
５）〜（７）はポンプ、（８）および（９）は攪拌機、（10）、（10′）および
（10″）は送液ライン。BRIEF DESCRIPTION OF THE DRAWINGS FIG. 1 is a schematic block diagram of an apparatus showing an embodiment of the present invention, and FIG. 2 is a schematic block diagram of an apparatus showing another embodiment. In the figure, (1) is a reaction tank, (2) is a UF membrane, (3) is a crystallization tank, (4) is a filter,
5) to (7) are pumps, (8) and (9) are agitators, and (10), (10 ') and (10 ") are liquid sending lines.

Claims (1)

【特許請求の範囲】 １．基質と固定化されていない生体触媒とを反応させて有用物質を製造する方
法において、限外濾過膜を併置する反応槽からなる反応部と、温度調節機構を備
えた晶析槽に濾過器を併置してなる晶析部とで構成された装置を用い、反応混合
物を反応槽から限外濾過膜に循環させて生成物に富む濾液を得、該濾液を生成物
の析出温度に設定した晶析槽に送って生成物を析出させ、濾過器で分離した後、
その母液を反応槽に循環させることを特徴とする方法。 ２．生体触媒がトランスアミナーゼであり、基質がフェニルピルビン酸および
Ｌ−アスパラギン酸であり、生成物がＬ−フェニルアラニンである請求項１ に
記載の方法。 ３．反応槽および固定化されていない生体触媒を透過させない限外濾過膜から
なる反応部と、温度調節機構を有する晶析槽および濾過器からなる晶析部とを相
互に連結してなることを特徴とする生体触媒反応用の装置。[Claims] 1. A method for producing a useful substance by reacting a substrate with a non- immobilized biocatalyst, comprising a reaction section comprising a reaction tank provided with an ultrafiltration membrane and a temperature control mechanism.
Using a device consisting of a crystallization section with a filter attached to the crystallization tank
The product is circulated from the reaction tank to an ultrafiltration membrane to obtain a product-rich filtrate, and the filtrate is
After sending the product to the crystallization tank set at the precipitation temperature to precipitate the product and separating it with a filter,
A method comprising circulating the mother liquor through a reaction tank . 2 . The biocatalyst is a transaminase, the substrate is phenylpyruvic acid and L-aspartic acid, and the product is L-phenylalanine. The method described in. 3 . It is characterized in that the reaction unit consisting of a reaction tank and an ultrafiltration membrane that does not allow the immobilized biocatalyst to permeate, and the crystallization unit consisting of a crystallization tank having a temperature control mechanism and a filter are interconnected. For biocatalytic reaction.