JP2021504482A - Il‐6関連疾患を治療するためのヒト化抗体の液体製剤 - Google Patents
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Abstract
Description
(1)2〜100mg/mL抗IL‐6受容体ヒト化抗体と、
(2)5〜20mMヒスチジン塩緩衝液、または5〜20mMヒスチジン塩と5‐20mM酢酸ナトリウムとの組合せによる緩衝液である、緩衝剤によって前記製剤に形成されている緩衝系と、
(3)0.1〜1g/L界面活性剤と、
(4)30〜400mM安定剤と、
(5)注射用水と、が含まれる。
(1)18〜22mg/ml抗IL‐6受容体ヒト化抗体と、
(2)8〜15mMヒスチジン塩緩衝液と、
(3)0.45g/L〜0.65g/Lポリソルベート80と、
(4)40〜60mMアルギニン塩酸塩と、
(5)15〜25g/Lショ糖と、
(6)注射用水と、
が含まれており、pH値が6.0〜6.4であり、
または好ましくは、本願の抗体製剤には、
(1)18〜22mg/ml抗IL‐6受容体ヒト化抗体と、
(2)8〜15mMヒスチジン塩緩衝液と、
(3)0.45〜0.65g/Lポリソルベート80と、
(4)30〜45g/Lマンニトールと、
(5)注射用水と、
が含まれており、pH値が6.0〜6.4であり、
または好ましくは、本願の抗体製剤には、
(1)18〜22mg/ml抗IL‐6受容体ヒト化抗体と、
(2)8〜15mMヒスチジン塩と、
(3)0.45〜0.65g/Lポリソルベート80と、
(4)90〜110mM塩化ナトリウムと、
(5)注射用水と、
が含まれており、pH値が6.0〜6.4である。
より好適な実施形態として、本願の抗体製剤には、
(1)20mg/ml抗IL‐6受容体ヒト化抗体と、
(2)10mMヒスチジン塩緩衝液と、
(3)0.5g/Lポリソルベート80と、
(4)50mMアルギニン塩酸塩と、
(5)20g/Lショ糖と、
(6)注射用水と、
が含まれており、pH値が6.2であり、
またはより好ましくは、本願の抗体製剤には、
(1)20mg/ml抗IL‐6受容体ヒト化抗体と、
(2)10mMヒスチジン塩緩衝液と、
(3)0.5g/Lポリソルベート80と、
(4)30g/Lマンニトールと、
(5)注射用水と、
が含まれており、pH値が6.2であり、
またはより好ましくは、本願の抗体製剤には、
(1)20mg/ml抗IL‐6受容体ヒト化抗体と、
(2)10mMヒスチジン塩緩衝液と、
(3)0.5g/Lポリソルベート80と、
(4)42g/Lマンニトールと、
(5)注射用水と、
が含まれており、pH値が6.2であり、
またはより好ましくは、本願の抗体製剤には、
(1)20mg/ml抗IL‐6受容体ヒト化抗体と、
(2)10mMヒスチジン塩緩衝液と、
(3)0.5g/Lポリソルベート80と、
(4)100mM塩化ナトリウムと、
(5)注射用水と、
が含まれており、pH値が6.2である。
(1)緩衝剤、安定剤、界面活性剤を正確に量って、注射用水に溶解させるステップと、
(2)ステップ(1)で調製された液体を、pH値が5‐7になるように、水酸化ナトリウム水溶液で、好ましくは1M濃度の水酸化ナトリウム水溶液で調整するステップと、
(3)ステップ(2)で調製された液体を、細菌及び真菌がなくなるように、好ましくは0.22umウェル径のろ過膜で滅菌容器にろ過するステップと、
(4)ステップ(3)で調製された液体を抗体液に入れるステップと、を備える前記抗体製剤の調製方法を更に提供する。
BAT1806抗体は抗インターロイキン‐6受容体ヒト化抗体であり、抗体調製技術を利用してBAT1806を安定的に表現できるCHO細胞株を構築し、上澄みを得て表現した後にPROTEIN Aカラムで精製して得られたものである。
本願のモノクローナル抗体が含まれる液体製剤は、活性成分が安定保存できる製剤組合せを提供した。好適な製剤配合は、表1A、表1B、表1C、表1D、表1E、表1Fに示される。
(1)緩衝剤、安定剤、界面活性剤を正確に量って、注射用水に溶解させるステップと、
(2)ステップ(1)で調製された液体を、pH値が5‐7になるように、水酸化ナトリウム水溶液で、好ましくは1M濃度の水酸化ナトリウム水溶液で調整するステップと、
(3)ステップ(2)で調製された液体を、好ましくは0.22umウェル径のろ過膜で滅菌容器にろ過するステップと、
(4)ステップ(3)で調製された液体を抗体液に入れるステップと、を備える。
複数の緩衝液系を使って抗体安定性を検討する。
PB、L‐His、CB(NMS)、PB+HAC、CB+HAC、L‐His+NaAC
PB:15mMリン酸塩緩衝液、pH値6.0〜6.5
L‐His:10mMヒスチジン塩緩衝液、pH値6.0〜6.4
CB:10mMクエン酸塩緩衝液、pH値6.0〜6.4
PB+HAC:5mMリン酸塩+5mM酢酸ナトリウムの混合緩衝液、pH値6.0〜6.4
CB+HAC:5mMクエン酸塩+5mM酢酸ナトリウムの混合緩衝液、pH値6.0〜6.4
L‐His+NaAC:5mMヒスチジン塩+5mM酢酸ナトリウムの混合緩衝液、pH値6.0〜6.4
供試品を水で5mg/ml供試品溶液に希釈させる。クロマトカラムがTSK‐GEL G3000SWXL 7.8×300mm、5μm(TOSOH)であり、移動相が200mM K3PO4、250mM KCl(pH7.0)である。紫外線検出波長を280nmとし、カラム温度を30℃とする。サンプルロード量40μl(200μg蛋白質)、流速0.5ml/minで35minアイソクラティック運転して、クロマトグラムを記録し、積分を行った後、相対面積比較法で供試品溶液における単体、多量体の含有量パーセントを算出する。
供試品を水で5mg/ml供試品溶液に希釈させる。クロマトグラフィー条件:クロマトカラムがTSK‐GEL CM‐STAT(登録商標) 4.6×100mm、7μm(TOSOH)であり、移動相が移動相A(20mM ACES,pH8.0)及び移動相B(20mM ACES+200mM NaCl,pH8.0)であり、サンプルロード量が50μgであり、検出波長が280nmであり、下記の溶出勾配で勾配溶出を行い、運転時間が45minである。クロマトグラムを記録する。積分を行った後、相対ピーク面積比較法で主ピーク、酸エリア、塩基エリアの含有量パーセントをそれぞれ算出する。(クロマトグラムに対して手動で積分を行う。ベースラインが平坦になるような箇所でベースラインを作成する。積分の開始時間と終了時間は主ピークの保持時間前後約8分間である。主ピークの左右にある2つのバレーで垂線を引き、主ピークより前は酸エリアであり、主ピークより後は塩基エリアである(主ピークより後は塩基ピーク1、塩基ピーク2、塩基ピーク3の順で続く)。塩基エリアにおいて、各バレーで垂線を引く。)
安定剤を選定する系において、含まれる抗体、緩衝液及び安定剤を表4に示す。
界面活性剤を選定する系において、含まれる抗体、緩衝液、安定剤、界面活性剤を表5に示す。
実施例1に記載される方法で、抗体濃度20mg/mlのBAT1806抗体製剤A、製剤B、製剤C、製剤D及び濃度50mg/mlのBAT1806抗体製剤Fを調製する。製剤A、B、C、Dに対して‐20℃〜4℃で凍結融解を5回繰返し、製剤Fに対して‐20℃〜室温で凍結融解を5回繰り返す。抗体濃度をELISA検出して、5回凍結融解後の製剤溶液における抗体含有量の安定性を確認する。また、製剤A、B、C、Dに対して急速と遅速の凍結融解を、‐20℃〜4℃、‐20℃〜37℃、‐80℃〜4℃、‐80℃〜37℃でそれぞれ5サイクル行い、製剤Fに対して‐20℃〜室温で凍結融解を5回繰り返す。透明性、色、pH値、不溶性粒子、SEC、IEC、細胞活性変化を確認する。
前記製剤が微生物の増殖をサポートできるかについて明確にするために、医薬品製剤(製剤A、B、C、D)の微生物について検討する。微生物(例えば、黄色ブドウ球菌、ATDD‐NO.:6538p、Tritirachium Album、ATDD‐NO.:10231、アスペルギルスニガー、ATDD‐NO.:16404、環境分離物)を低レベル(NMT100 cfu/ml)で前記無菌製剤に接種して、接種済み製剤の全体微生物増殖を検出する。評価の指標は主に顕微鏡で確認する微生物数及び濁度変化である。このうち、濁度無しは、全体増殖の指標がなく、14日間後接種済み容器で検出することを意味する。なお、これらの容器から微生物を再度分離できない。表8によれば、室温20‐25℃で14日間保存する場合、前記製剤が微生物増殖をサポートしないことが分かる。
実施例1に記載される方法で、医薬品製剤A、製剤B、製剤C、製剤D、製剤E、製剤Fを調製する。前記6種類の製剤を生化学インキュベーターに(25±2)℃で6ヶ月放置し、0、1、2、3、6ヶ月目の月末でそれぞれサンプリングする。安定性の重点考察項目で検出を行い、サンプルの単体純度(SEC‐HPLC)、電荷異性体(IEC‐HPLC)、非還元キャピラリーゲル電気泳動(CE‐SDS‐NR)、不溶性粒子、細胞活性を考察する(表9を参照)。また、製剤Fに対して、加速条件における溶液性状、pH値、抗体含有量を更に考察した。
実施例1に記載される方法で医薬品製剤A、製剤B、製剤C、製剤Dを調製する。前記4種類の製剤を4℃で36ヶ月放置し、0、3、6、9、12、24、30、36ヶ月目の月末でそれぞれサンプリングする。サンプルの純度(SEC‐HPLC)、電荷異性体(IEC‐HPLC)、非還元キャピラリーゲル電気泳動(CE‐SDS‐NR)、不溶性粒子、細胞活性を考察する。結果は表11を参照する。表11によれば、本願の抗体製剤が4℃で安定を長時間維持でき、36ヶ月の場合依然として安定性を維持できる。
高温及び照射の条件における処方の安定性を考察するために、実施例1に記載される製剤E及び製剤Fに対して高温及び照射の検討をする。検出方法はその他の実施例を参照する。
実験条件:製剤Fを取り、200rpmで水平に置き、常温で48h振とうさせ、一定の時間ごとに溶液性状、抗体含有量、SEC、IEC、生物活性、CE‐SDS(還元と非還元)、不溶性粒子を検出する。検出方法はその他の実施例を参照する。
IL‐6関連疾病を治療するための抗インターロイキン‐6受容体ヒト化抗体BAT1806が、遺伝子工学の手段によってCHO細胞で表現されたものであるとともに、一連の標準的なクロマトグラフィーステップによって精製して得られたものである。BAT1806はIgG抗体であり、分子量が145 kDaである。1重鎖あたりに449個のアミノ酸が含まれ、分子量が53 kDaであり、重鎖アミノ酸配列は表16を参照する。1軽鎖あたりに214個のアミノ酸が含まれ、分子量が24 kDaであり、軽鎖アミノ酸配列は表17を参照する。
Wood et al., J Immunol. 145:3011 (1990)などの方法を参考にして、IL‐6Rに特異的に結合する抗インターロイキン‐6受容体ヒト化抗体BAT1806がCHO細胞で表現する。抗体が含まれる遺伝子の表現担体は慣例的な分子生物学方法で構築され(Molecular Cloning)、CHO‐k1細胞(ATCC CCL61)の由来細胞系を宿主細胞として表現する、高生産量安定細胞系の構築過程は下記のように簡単に説明する。宿主細胞を懸濁状態でCD‐CHO培地(Gibco、CA)で増殖させ、対数増殖期にある宿主細胞を取り遠心分離してから、新たなCD‐CHO培地に再懸濁させ、細胞密度が1.43×107個/mLとなるようにカウントしながら調整し、600ul前記細胞懸濁液をカップに入れた後、線形化されたプラスミド40ugを入れる(ピペットで細胞とプラスミドを均一に混合させる)。Bio‐radエレクトロポレーターでエレクトロポレーションを行い、器具パラメータを電気容量960uFD、電圧300Vに設定する。一般的に、電撃時間が15‐20ms範囲にある。電撃を受けた細胞を37℃まで予熱されたCD‐CHO培地に直ちに再懸濁させ、1ウェルあたり100ulで96ウェルプレートに接種し、2‐3日間後同じ量の選定培地を入れる(CD‐CHO media +50uM MSX)。96ウェルプレートの細胞培養上澄みを測定することで抗体の表現レベルを測定する。表現レベルの高いクローンを96ウェルプレートから24ウェルプレートまで移動させ、細胞が一定量まで増殖した後、1ウェルで3ml培地に2×105個細胞が含まれるように細胞を6ウェルプレートに移動させ、細胞の抗体生産量及び生産率を測定する。一般的に、20‐30個クローナルを振とうフラスコに移動させて更に評価する。表現量が最も高い最後の5‐8個クローンに対してサブクローン及び更なる表現検出を行う。液体を得て、低速遠心分離で細胞と培地を分離し、遠心分離された上澄みを高速遠心分離して更に沈殿させる。蛋白質Aでアフィニティ精製とイオン交換精製を行う。
実施例1に記載される方法で、抗体濃度20mg/mlのBAT1806抗体製剤A、製剤B、製剤C、製剤Dを調製し、細胞活性を検出する。検出方法は下記のように簡単に説明する。抗インターロイキン‐6受容体ヒト化抗体BAT1806標準品を標準品とし、開始終濃度を20ug/mlとし、勾配希釈を行い、50ul/ウェルで96ウェルプレートに入れる。検出待ちサンプルも検量線サンプルの希釈方法で希釈して、50ul/ウェルで96ウェルプレートに入れる。hIL‐6を4ng/mlまで希釈させ、50ul/ウェルで96ウェルプレートに入れる。対数増殖期のTF‐1細胞をとり、100000 cells/ウェル/100ulで96ウェルプレートに接種する。37℃ 5% CO2インキュベーターで72時間培養する。50ul/ウェルでCelltiter Glo試薬を入れる。室温で日陰に2時間放置した後、ELIASA(Molecular Devices SpectraMax)でCelltiterGlo法によりマイクロウェルプレートのデータを取得し、4つのパラメータで曲線のC値を当て嵌め(IC50)、計算式:相対比活性=[標準品IC50/検出待ちサンプルIC50]×100%により算出した結果が80%‐125%である場合、検出待ちサンプルの活性が正常であると考えられる。検出結果は表18を参照する。
動物体内薬力学評価は主に、抗インターロイキン‐6受容体ヒト化抗体の、カニクイザルのコラーゲン誘発関節炎(CIA)モデルに対する治療効果について検討する。具体的な実験ステップは下記の通りである。子牛II型コラーゲン免疫メスサルを使って、2回分けてCIAモデルを構築する。モデリングされた動物を、陰性対照NS組であるBAT1806製剤A組、BAT1806製剤B組、BAT1806製剤C組、BAT1806製剤D組の4組に均等に分け、1組あたりサル9匹、1回静脈投与で30mg/kgである。その後、4週間連続で観察し、組換え抗ヒトインターロイキン‐6受容体モノクローナル抗体のカニクイザルCIAモデルに対する治療効果について評価する。
Wisteriaマウス体内で薬物動態学について検討する。静脈注射で12mg/kg1回投与する場合、BAT1806製剤A、BAT1806製剤B、BAT1806製剤C、BAT1806製剤Dの4組を分け、1組あたり10匹で、オスとメスがそれぞれ半分で、投与前、投与直後、1h、2h、5h、24h、48h、96h、7日間、10日間、14日間で採血して、血中薬物濃度を検出する。皮下注射で12mg/kg1回投与する場合、BAT1806製剤A、BAT1806製剤B、BAT1806製剤C、BAT1806製剤Dの4組を分け、1組あたり10匹で、オスとメスがそれぞれ半分で、投与前、投与直後、5h、8h、24h、48h、96h、7日間、10日間、14日間でそれぞれ静脈採血する。これにより、各組の静脈または皮下投与は似たような薬物動態学の特徴を持つ。図8を参照する。
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Claims (10)
- (1)2〜100mg/mL抗IL‐6受容体ヒト化抗体と、(2)緩衝剤と、(3)0.1〜1.0g/L界面活性剤と、(4)30〜400mM安定剤と、(5)注射用水と、が含まれており、pH値が5.0〜7.0である抗体製剤であって、前記製剤には緩衝剤によって緩衝系が形成されており、前記緩衝系は、5〜20mMヒスチジン塩緩衝液、または5〜20mMヒスチジン塩と5〜20mM酢酸ナトリウムとの組合せによる緩衝液であり、好ましくは、前記抗IL‐6受容体ヒト化抗体の濃度が10‐90mg/mLであり、より好ましくは、前記IL‐6受容体ヒト化抗体の濃度が15‐50mg/mLであり、特に好ましくは、IL‐6受容体ヒト化抗体の濃度が18‐25mg/mLであり、好ましくは、前記抗体製剤的pH値が5.5〜6.5であり、より好ましくは、前記抗体製剤のpH値が6.0〜6.4であり、更に好ましくは、前記抗体製剤のpH値が6.2である、ことを特徴とする抗体製剤。
- 前記抗体が組換えヒト化抗ヒトインターロイキン‐6受容体モノクローナル抗体であり、好ましくは、前記抗体にはSEQIDNO.1に示される重鎖及びSEQIDNO.2に示される軽鎖が含まれており、より好ましくは、前記抗体にはSEQIDNO.1に示される2本の重鎖及びSEQIDNo.2に示される2本の軽鎖が含まれている、ことを特徴とする請求項1に記載の抗体製剤。
- 前記安定剤がアルギニン塩酸塩とショ糖との組合せ、マンニトール、塩化ナトリウムから選ばれ、好ましくは、前記安定剤が40〜200mMアルギニン塩酸塩と15〜70g/Lショ糖との組合せから選ばれ、または好ましくは、前記安定剤が30〜70g/Lマンニトールから選ばれ、または好ましくは、前記安定剤が100〜300mM塩化ナトリウムから選ばれ、好ましくは、前記界面活性剤がポリソルベート20、ポリソルベート80、ポロクサマー188の1種または複数種から選ばれ、より好ましくは、前記界面活性剤がポリソルベート80から選ばれ、より好ましくは、前記界面活性剤が0.1‐0.7g/Lポリソルベート80から選ばれる、ことを特徴とする請求項1又は2に記載の抗体製剤。
- (1)18〜22mg/ml抗IL‐6受容体ヒト化抗体と、(2)8〜15mMヒスチジン塩緩衝液と、(3)0.45g/L〜0.65g/Lポリソルベート80と、(4)40〜60mMアルギニン塩酸塩と、(5)15〜25g/Lショ糖と、(6)注射用水と、が含まれており、pH値が6.0〜6.4であり、または好ましくは、(1)18〜22mg/ml抗IL‐6受容体ヒト化抗体と、(2)8〜15mMヒスチジン塩緩衝液と、(3)0.45〜0.65g/Lポリソルベート80と、(4)30〜45g/Lマンニトールと、(5)注射用水と、が含まれており、pH値が6.0〜6.4であり、または好ましくは、(1)18〜22mg/ml抗IL‐6受容体ヒト化抗体と、(2)8〜15mMヒスチジン塩緩衝液と、(3)0.45〜0.65g/Lポリソルベート80と、(4)90〜110mM塩化ナトリウムと、(5)注射用水と、が含まれており、pH値が6.0〜6.4である、ことを特徴とする請求項1‐3の何れか1項に記載の抗体製剤。
- (1)20mg/ml抗IL‐6受容体ヒト化抗体と、(2)10mMヒスチジン塩緩衝液と、(3)0.5g/Lポリソルベート80と、(4)50mMアルギニン塩酸塩と、(5)20g/Lショ糖と、(6)注射用水と、が含まれており、pH値が6.2であり、または好ましくは、(1)20mg/ml抗IL‐6受容体ヒト化抗体と、(2)10mMヒスチジン塩緩衝液と、(3)0.5g/Lポリソルベート80と、(4)30g/Lマンニトールと、(5)注射用水と、が含まれており、pH値が6.2であり、または好ましくは、(1)20mg/ml抗IL‐6受容体ヒト化抗体と、(2)10mMヒスチジン塩緩衝液と、(3)0.5g/Lポリソルベート80と、(4)42g/Lマンニトールと、(5)注射用水と、が含まれており、pH値が6.2であり、または好ましくは、(1)20mg/ml抗IL‐6受容体ヒト化抗体と、(2)10mMヒスチジン塩緩衝液と、(3)0.5g/Lポリソルベート80と、(4)100mM塩化ナトリウムと、(5)注射用水と、が含まれており、pH値が6.2である、ことを特徴とする請求項1‐4の何れか1項に記載の抗体製剤。
- 前記製剤には更に塩基が含まれており、好ましくは、前記塩基がNaOHである、ことを特徴とする請求項1‐5の何れか1項に記載の抗体製剤。
- 前記抗体製剤の剤形が注射剤であり、好ましくは、前記製剤が皮下注射剤または静脈注射剤である、ことを特徴とする請求項1‐6の何れか1項に記載の抗体製剤。
- 前記製剤が室温で少なくとも1ヶ月安定性維持されており、好ましくは、前記製剤が2‐8℃で少なくとも36ヶ月安定性維持されており、好ましくは、該製剤が少なくとも5サイクル凍結融解された後に安定性維持されている、ことを特徴とする請求項1‐7の何れか1項に記載の抗体製剤。
- 前記抗体製剤がIL‐6関連疾患を治療するための医薬品製剤であり、好ましくは、前記IL‐6関連疾患が成人関節リウマチ、全身型若年性特発性関節炎、多関節型若年性特発性関節炎、巨細胞性動脈炎、巨大リンパ節過形成、免疫療法によるサイトカインストーム、成人スティル病、再発性多発軟骨炎、2型糖尿病、強直性脊椎炎、甲状腺眼症、関節リウマチによる心血管疾患、リウマチ性多発筋痛症、急性移植片対宿主病、非ST上昇型心筋梗塞、全身性エリテマトーデス、統合失調症、ぶどう膜炎、卵巣がん、抗好中球細胞質抗体関連血管炎、視神経脊髄炎、慢性糸球体腎炎、結腸直腸がんであり、より好ましくは、成人関節リウマチ、全身型若年性特発性関節炎、多関節型若年性特発性関節炎、巨細胞性動脈炎、巨大リンパ節過形成である、ことを特徴とする請求項1‐8の何れか1項に記載の抗体製剤。
- (1)緩衝剤、安定剤、界面活性剤を正確に量って、注射用水に溶解させるステップと、(2)ステップ(1)で調製された液体を、pH値が5‐7になるように、NaOH水溶液で、好ましくは1M濃度のNaOH水溶液で調整するステップと、(3)ステップ(2)で調製された液体を、好ましくは0.22umウェル径のろ過膜で滅菌容器にろ過するステップと、(4)ステップ(3)で調製された液体を抗体液に入れるステップと、を備える、ことを特徴とする請求項1‐9の何れか1項に記載の抗体製剤の調製方法。
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