JP2016510749A - キナゾリノン抗生物質 - Google Patents
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Abstract
Description
[式中、
A1は、N又はCR3(例えば、CH、又はA1がR3によって置換されている場合はC)であり、
各R1は、独立して、H、ヒドロキシ、ハロ、トリフルオロメチル、アルキル、アルコキシ、アシルオキシ、アミノ、−CO2H、ニトロ、ニトリル、−NRx 2(式中、各Rxは、独立して、H、アルキル、アシル、ベンジル、又はアルコキシカルボニルである。)、−SO2−Ry(式中、Ryは、−OH、−NH2、アルキル又はアリールである。)、−NH−SO2−Ry(式中、Ryは、−OH、アルキル又はアリールである。)、−C(=O)NRx 2(式中、各Rxは、独立して、H、アルキル、ヒドロキシアルキル、シクロアルキル、アシル、ピコリニル、又はベンジルである。)、−CH2−N(H)R4(式中、R4は、H又はアシルである。)、−CH2−CO2H、複素環、−CH2−複素環、又は−C(=NH)NH2であり、
X1は、(C1〜C12)アルキル(ここで、アルキルは、シクロアルキル又は複素環によって任意選択で置換されている。)、(C1〜C2)アルキル−Ph−(R2)m、−C=C−シクロアルキル、−C=C−複素環、又は−C=C−Ph−(R2)m(式中、mは、1、2、3、4、又は5である。)であり、
各R2は、独立して、H、ヒドロキシ、ハロ、トリフルオロメチル、アルキル、アルコキシ、アシルオキシ、アミノ、−CO2H、ニトロ、ニトリル、−SO2−Ry(式中、Ryは、−OH、−NH2、アルキル又はアリールである。)、アルケニル、アルキニルであるか、又は2つのR2基は、それらが結合しているフェニル環上に1,2−ジオキソラン環を形成し、
各R3は、独立して、H、ヒドロキシ、ハロ、トリフルオロメチル、アルキル、−CO2H、−CO2−アルキル、又は−C(=O)NRx 2(式中、各Rxは、独立して、H、アルキル、ヒドロキシアルキル、アシル、ピコリニル、又はベンジルである。)であり、
各nは、独立して1、2、3、4、又は5である。]
の化合物、又はその薬学的に許容される塩若しくは溶媒和物を提供する。
[式中、A1、R1、R2、及びR3は、式(A)に対して定義した通りであり、R2の変数nは、1、2、3、4、又は5であり、A2は、N、N+Me、CH、又はR2によって置換されている場合はCであり、ダッシュによって表される結合は任意選択の二重結合を表す。]
の化合物、又はその薬学的に許容される塩若しくは溶媒和物である。
の化合物、又はその薬学的に許容される塩若しくは溶媒和物である。
の化合物、又はその薬学的に許容される塩若しくは溶媒和物である。
の化合物、又はその薬学的に許容される塩若しくは溶媒和物である。R1及びR2は、式(A)及び(I)〜(IV)において、それらが結合しているフェニル部分の任意の位置であり得る。例えば、R1は、式の残りに対するフェニル部分の結合部位の特にオルト、メタ又はパラ位であり得る。同様に、R2は、式の残りに対するフェニル部分の結合部位の特にオルト、メタ又はパラ位であり得る。したがって、本発明の化合物は、種々の実施形態において、R1とR2の9つの異なる組合せのそれぞれに対してR1とR2の位置異性体を有することができる。
の化合物、又はその薬学的に許容される塩若しくは溶媒和物である。
PBP−2aのX線構造を使用し、多数のスコアリング機能を用いてChemDivのZINCデータベースの薬剤様サブセットからの120万の化合物をインシリコでドッキング及びスコアリングすることによってスクリーニングが行われた(Autodock、Glide、Gold、及びChemScore)。最高得点の500の化合物が、より大きい厳重さを有するGlideにより再度スコアリングされた。そのうち90の高位の化合物が、細菌のESKAPEパネル(大腸菌に加えて、フェシウム菌(エンテロバクター・フェシウム、Enterobacter faecium)、黄色ブドウ球菌(Staphylococcus aureus)、肺炎桿菌(Klebsiella pneumonia)、アシネトバクター・バウマンニ(Acetinobacter baumannii)、緑膿菌(Pseudomonas aeruginosa)、及びエンテロバクター種(Enterobacter species))に対する抗菌活性について試験された。ESKAPEは、属名の先頭文字に対する頭字語である。ESKAPEパネルの各部は、多くの院内感染の主な原因となる。キナゾリノン1(スキーム1)は、黄色ブドウ球菌ATCC29213(メチシリン感受性黄色ブドウ球菌、MSSA:methicillin−sensitive Staphylococcus aureus)に対する2μg/mLのMICにより、この取り組みから見出された。しかしながら、化合物1のMICは、血清アルブミンの存在下で>128μg/mLまで増加し、非常に高い血漿タンパク質結合を示し、これは、さもなければ強力な抗生物質のインビボの有効性を低減し得る。
a 黄色ブドウ球菌株ATCC29213(MSSA)
b ICR雌マウス;化合物はivで投与,化合物2は経口でも投与(po);単回iv投与後のPKパラメーター(経口バイオアベイラビリティを除く);AUC=濃度−時間曲線下面積(area under the concentration−time curve)(μg.min/mL);CL=クリアランス(mL/min/kg);Vd=分布容積(mL);F=経口バイオアベイラビリティ(%)
c マウス腹膜炎感染モデル;5%ムチン中5×107cfuのMRSA ATCC27660で腹腔内感染されたICR雌マウス(n=6);リード化合物は感染30分後及び4.5時間後にivで与えられた;対照としてバンコマイシン(5mg/kg)(6/6のマウスが生存)及びビヒクル(0/6のマウスが生存)
a 日本で単離された臨床MRSA菌株;mecA陽性;エリスロマイシン,クリンダマイシン,オキサシリン,及びペニシリンに耐性
b 日本で単離されたMRSA菌株;mecA陽性;オキサシリン,ペニシリン,及びテトラサイクリンに耐性
c 臨床MRSA菌株;mecA陽性;リネゾリド,シプロフロキサシン,ゲンタマイシン,オキサシリン,ペニシリン,及びトリメトプリム/スルファメトキサゾール(trimeth/sulfa)に耐性
d 地域感染型のMRSA菌株;mecA陽性;メチシリン,オキサシリン,ペニシリン,及びテトラサイクリンに耐性
e ミシガン州からの臨床MRSA単離株;mecA陽性;vanA陽性;リネゾリド,シプロフロキサシン,ゲンタマイシン,オキサシリン,ペニシリン,及びトリメトプリム/スルファメトキサゾールに耐性
f ペンシルベニア州からの臨床MRSA単離株;mecA陽性;vanA陽性;バンコマイシン,シプロフロキサシン,エリスロマイシン,ゲンタマイシン,オキサシリン,及びペニシリンに耐性
a 日本で単離された臨床MRSA菌株;mecA陽性;クリンダマイシン,エリスロマイシン,オキサシリン,及びペニシリンGに耐性
b 米国で単離された地域感染型のMRSA菌株;mecA陽性;メチシリン,オキサシリン,ペニシリンG,及びテトラサイクリンに耐性
c オキサシリン又はセフェピムと2μg/mLのキナゾリノン7との組合せ
d オキサシリン又はセフェピムと0.03μg/mLのキナゾリノン9との組合せ
以下の定義は、明細書及び特許請求の範囲の明確な首尾一貫した理解を提供するために包含される。本明細書で使用されるとき、列挙されている用語は以下の意味を有する。すべてのその他のこの明細書で使用される用語及び語句は、当業者であれば理解するであろうそれらの通常の意味を有する。そのような通常の意味は、専門辞典、例えば、R.J.Lewis、John Wiley & Sons、ニューヨーク州ニューヨーク、2001年によるHawley’s Condensed Chemical Dictionary第14編などを参照することによって得ることができる。
本発明の実施形態は、本明細書に記載の化合物を用いて細菌を死滅させ、又は細菌の増殖を阻害するための方法を提供する。上で論じられたように、本発明の実施形態による種々の化合物は、ペニシリン結合タンパク質を標的にして設計される。他の実施形態において、本発明の実施形態による化合物は、細菌のその他の生物学的過程を標的にして設計され得る。
本明細書に記載の化合物の調製は、以下の実施例における方法によって調製されることが可能であり、又は有機合成の技術分野で知られている技術によって調製され得る。多くのアルキン、アレン、及び連結基が、市販されており、及び/又は当技術分野で記載されているようにして調製され得る。特に連結基を用いることに関わる本明細書に記載の化合物を調製するために使用され得る一般的合成法に関する情報は、Greg T.HermansonのBioconjugate Techniques、Academic Press、カリフォルニア州サンディエゴ(1996年)の中に見出すことができる。当業者に周知されているさらなる有用な反応は、Michael B.Smith及びJerry March、John Wiley & Sons出版社によるMarchのAdvanced Organic Chemistry Reactions,Mechanisms,and Structure、第5版;及びWuts等、(1999)、Protective Groups in Organic Synthesis、第3版、John Wiley & Sons出版社の中で参照される。
本明細書に記載の化合物は、治療用医薬組成物を、例えば、化合物を薬学的に許容される希釈剤、賦形剤、又は担体と組み合わせることによって調製するために使用され得る。化合物は、塩又は溶媒和物の形で担体に加えられ得る。例えば、化合物が安定な無毒の酸又は塩基の塩を形成するために十分に塩基性又は酸性である場合、塩としての化合物の投与は適切であり得る。薬学的に許容される塩の例は、生理学的に許容されるアニオンを形成する酸、例えば、トシル酸、メタンスルホン酸、酢酸、クエン酸、マロン酸、酒石酸、コハク酸、安息香酸、アスコルビン酸、α−ケトグルタル酸、及びβ−グリセロリン酸、により形成される有機酸付加塩である。塩酸塩、ハロゲン化物、硫酸塩、硝酸塩、重炭酸塩、及び炭酸塩を含む適切な無機塩も形成され得る。
化学:
有機試薬及び溶媒はSigma−Aldrich社から購入された。1H及び13CのNMRスペクトルはVarian INOVA−500に記録された。高分解質量スペクトルはBruker micrOTOF/Q2質量分析計を用いて得られた。
アントラニル酸(20g、146mmol)が、オルト酢酸トリエチル(45mL、245mmol)中に溶解され、2時間にわたって還流された。反応混合物は、氷の上で4時間にわたって冷却され、中間体を結晶化させた。得られた結晶は濾過され、ヘキサンで洗浄されて3(17g、72%の収率)を生じた。
1H NMR(500MHz,CDCl3)δ 2.47(s,3H)、7.50(t,J=7.38Hz,1H)、7.54(d,J=7.98Hz,1H)、7.80(t,J=7.18Hz,1H)、8.18(d,J=7.78Hz,1H)。13C NMR(126MHz,CDCl3)δ21.59、116.84、126.59、128.42、128.66、136.77、146.61、159.89、160.45。HRMS(m/z):[M+H]+、C9H8NO2の計算値、162.0550;実測値、162.0555。
化合物3(2g、12.4mmol)及び3−アミノフェノール(1.7g、12.4mmol)が、氷酢酸(8mL、140mmol)中で懸濁され、加熱により溶解された。反応物は5時間にわたって還流され、その時点で5mLの水がその冷却された反応混合物に加えられた。その得られた沈殿物は、濾過され、水で洗浄され、続いて冷たいエタノール及びヘキサンにより洗浄されて、4(3.19g、92%の収率)を生じた。
1H(500MHz,DMSO−d6)δ 2.87(s,3H)、7.52(t,J=7.38Hz,1H)、7.66〜7.73(m,3H)、7.84(t,J=7.38Hz,1H)、8.01(s,1H)、8.09(t,J=7.58Hz,2H)。13C NMR(126MHz,DMSO−d6)δ 24.13、120.48、126.32、126.47、126.72、129.52、129.83、130.01、132.40、133.07、134.67、138.18、147.37、154.13、161.44、166.58。HRMS(m/z):[M+H]+、C16H13N2O3の計算値、281.0921;実測値、281.0917。
化合物4(1.0g、3.6mmol)及び4−ホルミルベンゾニトリル(0.56g,4.3mmol)が、氷酢酸(5mL、87mmol)中で懸濁され、その懸濁液は加熱により溶解された。反応物は18時間にわたって還流され、5mLの水が、冷却された反応混合物に加えられた。得られた沈殿物は、濾過され、水で、続いて冷たいエタノール及びヘキサンで洗浄され、カルボン酸(0.77g、75%の収率)を提供した。HRMS(m/z):[M+H]+、C24H16N3O3に対する計算値、394.1186、実測値394.1214。カルボン酸(0.45g、1.1mmol)は、高温のエタノール中で溶解され、そこに2−エチルヘキサン酸ナトリウム(0.28g、1.7mmol)が加えられた。反応混合物は氷の上で2時間にわたって撹拌された。沈殿は、濾過され、冷たいエタノールで洗浄された。沈殿を約5mLの水に溶解し、溶液のその後の凍結乾燥によって生成物が得られ、ナトリウム塩としての2を生じた(0.4g、85%の収率)。
1H NMR(500MHz,DMSO−d6)δ 6.47(d,J=15.55Hz,1H)、7.59(m,3H)、7.74(d,J=5.38Hz,2H)、7.79(m,3H)、7.91(m,2H)、8.05(s,1H)、8.14(d,J=7.78Hz,2H)。13C NMR(126MHz,DMSO−d6)δ 111.56、118.61、120.76、123.42、126.50、127.01、127.35、128.26、129.99、130.06、130.12、132.33、132.83、133.46、134.89、136.95、137.03、139.25、147.21、150.74、161.25、166.52。HRMS(m/z):[M+H]+、C24H15N3NaO3の計算値、416.1006;実測値、416.0987。
本発明者らは、PBP2aのX線構造を用いて、多数のスコアリング機能を有するクロスドッキングを用いるZINCデータベースから120万の薬剤様化合物(drug−like compound)をコンピュータによってスクリーニングした。ハイスループットの仮想スクリーニングにより開始して、フィルタリングは厳密性(stringency)を増加させて段階的に行い、各段階でベストの得点の化合物が次の段階に送り込まれるようにした。最後のドッキング及び採点ステップは、特別な精密モードによるドッキングポーズのGlideリファインメントを含み、トップの2,500ポーズが構造の類似性によりクラスター化された。これらの内の118の高位の試料が殆どの院内感染の主な原因となる大腸菌及び細菌のESKAPEパネルに対する抗菌作用について試験された。抗生物質1(図2)がこの取り組みにおいて見出され、ESKAPEパネルの黄色ブドウ球菌ATCC29213(メシチリン耐性黄色ブドウ球菌、MSSA)に対して2μg/mLの最小阻害濃度(MIC)であった。しかしながら、MICは、ウシ血清アルブミン(BSA:bovine serum albumin)の存在下では>128μg/mLに増大し、高い血漿タンパク結合を示した。上記化合物はパネルのグラム陰性細菌に対しては活性を有しなかった。
a 品質管理MSSA菌株
b MSSA菌株;mecA陰性;エリスロマイシン,クリンダマイシン,及びペニシリンに耐性
c 日本で単離された臨床MRSA菌株;mecA陽性;エリスロマイシン,クリンダマイシン,オキサシリン,及びペニシリンに耐性
d 地域感染型のMRSA菌株;mecA陽性;メチシリン,オキサシリン,ペニシリン,及びテトラサイクリンに耐性
e MRSA菌株;mecA陽性;オキサシリン,ペニシリン,及びテトラサイクリンに耐性
f 臨床MRSA菌株;mecA陽性;リネゾリド,シプロフロキサシン,ゲンタマイシン,オキサシリン,ペニシリン,及びトリメタ/スルファに耐性
g ミシガン州からの臨床MRSA単離株;mecA陽性;vanA陽性;バンコマイシン,シプロフロキサシン,クリンダマイシン,エリスロマイシン,ゲンタマイシン,オキサシリン,及びペニシリンに耐性
h ペンシルベニア州からの臨床MRSA単離株;mecA陽性;vanA陽性;バンコマイシン,シプロフロキサシン,クリンダマイシン,エリスロマイシン,ゲンタマイシン,オキサシリン,及びペニシリンに耐性
ZINCデータベースのChemDivサブセットからの120万の薬剤様化合物のライブラリーが、PBP2aのX線構造に対するハイスループットの仮想スクリーニングのために準備された(PDB ID: 1VQQ)。トップスコアの10%の化合物が、Glide−SP、Autodock、Gold−chemscore、Gold−goldscore、及びGold−PLPによりクロスドッキングされた。それぞれからのトップスコアの2,000ポーズがGlide−XPモードを用いて抽出され、精製された。最後に、ベストの2,500が、階層的クラスター分析を用いて構造的類似性に従ってクラスター化された。これらから、118の化合物がインビトロの活性度実験のために選択された。
MICが、BBL(商標)Mueller−Hinton IIブロス中のCLSI微量希釈法(Wikler等、Clinical Laboratory Standards Institute Document M7−A7、29巻 (2009年))に続いて評価された。試験された菌株は、表2.1に記載されている。手短に言えば、化合物の2倍段階希釈物が、96ウェルのプレート中、トリプリケートで調製され、5×105cfu/mLの細菌懸濁液が接種された。プレートは、37℃で16〜20時間にわたってインキュベートされた。
抗生物質2が合成され、上述の実施例1で詳細に述べられているように特性化された。
HepG2細胞(ATCC HB−8065)が、単層培養において、10%ウシ胎仔血清、非必須アミノ酸、2mMのLグルタミン、及び1%ペニシリン−ストレプトマイシンが補充されたダルベッコ変法イーグル培地中、37℃及び5%CO2で維持された。一晩のインキュベーション後、その細胞は、化合物2により2μg/mLから128μg/mLの濃度で16時間にわたって処理された。その細胞は、ダルベッコのPBSで2回洗浄され、150μLのXTT希釈標準溶液がそれぞれのウェルに加えられ、その後3時間のインキュベーションが行われた。475nm(試験波長)及び660nm(参照波長)における吸光度が、マイクロプレートリーダーにより読み取られた。実験は、トリプリケートで行われ、2回繰り返された。IC50値は、GraphPadプリズム5を用いて計算された。
新鮮なヘパリン化されたヒト血液が、100mMのPBS、pH7.4中、10分間にわたる1,200gでの遠心分離によって3回洗浄された。10%赤血球(RBC:red−blood cell)懸濁液がPBSで用意された。0.5、5及び50μg/mLの抗生物質2が、10%RBC懸濁液のアリコートに添加され、37℃でインキュベートされた。0.2%トリトンの陽性対照が使用された。試料は、1,200gで10分間遠心分離され、その上清が541nmでの吸光度のために使用された。
化合物2(20μM)が、ブランクのマウス血漿中37℃でインキュベートされ、アリコートが特定の時点で採取され、2倍量のアセトニトリルを含む内部標準によりクエンチされた。試料は遠心分離され、逆相UPLCにより分析された。
化合物2(2μM)が、100mMのリン酸カリウム緩衝液、pH7.4、の中に1mMのNADPH及び3.3mMのMgCl2を含むプールされたラット又はヒトのS9(1mg/mL)と共に37℃でインキュベートされた。アリコートが、0、5、10、20、30、40、及び60分毎に採取され、2倍量のアセトニトリルを含む内部標準と混合された。その沈殿したタンパク質は20,000gで15分間遠心分離され、その上清は逆相UPLCにより分析された。
対数増殖期の黄色ブドウ球菌(ATCC29213)における放射性標識化前駆物質、[メチル−3H]−チミジン、[5−3H]−ウリジン、L−[4,5−3H]−ロイシン、又はD−[2,3−3H]−アラニン、のそれぞれDNA、RNA、タンパク質、又は細胞壁(ペプチドグリカン)中への取り込みは、既に公開された方法を用いて、120分のインキュベーション時間を通して20分毎に採取したアリコートで測定された(Wilson等、Antimicrob.Agents Chemother.39巻、1925〜33頁(1995年))。各経路に対する既知の抗生物質が陽性対照として使用された:それぞれ、シプロフロキサシン(0.5μg/mL)、リファンピシン(8ng/mL)、テトラサイクリン(31.25ng/mL)、及びホスホマイシン(16μg/mL)。
インビトロの翻訳のために、環状DNAに対する大腸菌S30抽出システムが使用されて、βガラクトシダーゼのためのlacZ遺伝子を含むプラスミドpCP19を用いる反応がセットアップされた。反応混合物に、抗生物質2の2倍の希釈物を補充し、レポーター溶解バッファーを含むβガラクトシダーゼ酵素アッセイシステムが使用されて、420nmでの吸光度を測定することによって、翻訳されるβガラクトシダーゼの量が定量化された。インビトロの転写のため、TranscriptAid T7高収量転写キットが、T7プロモーターの下でpET24a/dacB DNAコンストラクトと共に使用された。その精製されたプラスミドは、制限酵素XhoIを用いて直線化され、次いで製造業者の指示に従って精製された。一連の試料が調製され、抗生物質2の2倍の希釈物を補充した。試料は、変性1%ホルムアルデヒドアガロースゲル上で泳動することによって分析され、RNAを可視化するためにエチジウムブロマイドによって染色された。バンドの強度が数値化され、2の存在下で起こる転写の量を測定するために対照と比較された。
黄色ブドウ球菌(ATCC29213)、メチシリン感受性菌株、が、ディフコ・ルリア−ベルターニ(LB: Luria−Bertani)ブロス中、37℃でOD625が約0.8まで増殖された。細胞は、3,200gで30分間4℃で遠心分離され、冷たい100mMのNaH2PO4、50mMのNaHCO3、pH7.5の緩衝液で洗浄された。その細胞は、完全なEDTAフリーのプロテアーゼ阻害剤を含む10mLの冷たい緩衝液、200μg/mLのリゾスタフィン、15μg/mLのデオキシリボヌクレアーゼI、10mMのMgCl2、及び1mMのEDTA中に懸濁され、37℃で30分間インキュベートされた。細胞は各サイクルの間に2分の休憩のある5×1分サイクルでBranson Soniferを用いて超音波処理され、その溶解物は3,200gで20分間にわたって4℃で遠心分離機にかけられた。その上清は、次に32,000rpmで1時間にわたり、4℃で遠心分離機にかけられ、その沈殿物は冷たい緩衝液で1回洗浄された。得られた膜は、緩衝液中に再懸濁され、BCAタンパク質アッセイキットを用いて数値化され、濃度が9mg/mLに調整された。
Bocillin FL競合アッセイは、精製PBP2a及び膜抽出物により実施された。PBP2aは、前に記載したプロトコールを用いて精製された(Fuda等、J.Biol.Chem.279巻、40802〜40806頁(2004年))。精製PBP2aに対して、25mMのHEPES,pH7、1MのNaCl緩衝液中の1μMのタンパク質が変化する濃度の化合物2の存在下で、10分間にわたって37℃でインキュベートされた。膜抽出物に対して、100mMのNaH2PO4、pH7.5、50mMのNaHCO3中の150μgのその抽出物が変化する濃度の化合物2の存在下で、10分間にわたって37℃でインキュベートされた。Bocillin FL(精製されたタンパク質に対しては20μM及び膜に対しては30μM)が加えられ、その反応物は、さらに10分間インキュベートされ、次いでレミリーサンプルバッファー(2×原液)の添加及び5分間の沸騰によりクエンチされた。試料は遠心分離機にかけられ、SDS−PAGEにロードされ、そのゲルはStorm840スキャナーを用いて直ぐに可視化され、蛍光はImageQuantソフトウェアを用いて即座に定量化された。IC50値は、既報の方程式を用いる、GraphPadプリズム5を用いて計算された。
マウス(ICR雌、生後6〜8週間、17〜20gの体重)が、72±2°Fで12:12の明暗サイクルにより維持され、Teklad 2019 Extruded Rodent Diet(押出成形されたげっ歯類用の食品)及び水が適宜供給された。すべての手順は、ノートルダム大学動物実験委員会(the University of Notre Dame Institutional Animal Care and Use Committee)に従って実施された。
マウスのグループ(n=6/グループ)が、腹腔内(ip:intraperitoneally)にMRSA感染させられた(5%ブタのムチン中、5×107CFU/mLの最終濃度で0.5mLのATCC27660)。感染に続いて、マウスは、化合物2、バンコマイシン(5mg/kg、陽性対照)、又はビヒクルを感染の30分後及び4.5時間後に尾静脈注射による静脈注射投与量を与えられた。生存マウスの数を48時間モニタリングした。陰性対照(ビヒクル)は、典型的には、すべてのマウスの死をもたらした。キナゾリノン2は、生理食塩水に溶解され、殺菌濾過され、2.5、5、7.5、10、20、及び30mg/kgの投与量で投与された。ED50値は、GraphPadプリズム5を使用して計算された。
単一用量の化合物2がマウス(時点当たりn=3)に尾静脈注射によるか又はチューブによる経口投与により10mg/kgで投与された。血液が、心穿刺によってヘパリン化された注射器に、iv投与後2、5、20、及び40分並びに1、2、3、4、8、18、及び24時間に、po投与後は0.5、1、2、3、4、6、9、24、及び30時間に採取された。血液は、血漿を得るために遠心分離機にかけられた。50μLのアリコートの血漿が、内部標準を含む100μLのアセトニトリル(5μMの最終濃度)と混合され、続いて20,000gでの遠心分離機に15分間かけられた。その上清は、逆相UPLCにより分析された。PKパラメーターが、以下の血漿タンパク質結合及び薬物動態の項に記載されているようにして計算された(Gooyit等、J.Med.Chem.54巻、6676〜6690頁(2011年)も参照されたい)。
野生型PBP2a結晶を既に公開されている手順に従って成長させた。野生型PBP2a結晶は、1mMの抗生物質2を含む沈降溶液中に4℃で24時間にわたって浸された。結晶は次に、100Kでのフラッシュ冷却に先立って凍結保護物質(パラトン/パラフィン油の70:30v/vの混合物)中に少しの間、浸された。回折データセットが、SLS施設(スイス)におけるシンクロトロンビームラインPX1に0.9999Å波長で集められた。3つの別々の浸漬実験からもたらされたデータセットは一つにまとめられ、次いで下の構造決定及び精密化の項に記載されるようにして分子置換法によって解析され、精密化された。得られた1.95Åの解像度の複合体に関する結晶学的統計値が記録された。登録座標(deposited coordinate)に対するPDBのIDは4CJNである。
黄色ブドウ球菌菌株NRS70(N315とも称する)、NRS123(MW2、C1999000459、USA400、99065とも称する)、NRS128(NCTC8325及びRN0031とも称する)、NRS100(COLとも称する)、NRS119(SA LinR #12とも称する)、NRS120(SA LinR #13とも称する)、VRS1(HIP11714とも称する)、VRS2(HIP11983とも称する)が、黄色ブドウ球菌における抗菌薬耐性に関するネットワーク(NARSA:Network on Antimicrobial Resistance in Staphylococcus aureus)を通して得られた。黄色ブドウ球菌(S.aureus)ATCC 29213、ATCC 27660、MRSA252(ATCC BAA−1720)、表皮ブドウ球菌(S.epidermidis)ATCC 35547、スタフィロコッカス・ヘモリチカス(S.haemolyticus)ATCC 29970、フェシウム菌(E.faecium)NCTC 7171(ATCC 19734)、肺炎桿菌(K.pneumoniae)ATCC 700603、アシネトバクター・バウマンニ(A.baumannii)ATCC 17961、緑膿菌(P.aeruginosa)ATCC 27853、エンテロバクター・エロゲネス(E.aerogenes)ATCC 35029、及び大腸菌(E.coli)ATCC 25922は、アメリカ合衆国培養細胞系統保存機関(ATCC:American Type Culture Collection)から購入された。
血漿が1,200g及び200μLで遠心分離機にかけられ、急速平衡透析装置の試料室に入れられ、0.15mMのNaClが追加された350μLの0.1MのPBS、pH7.4、が隣接した室に加えられた。抗生物質2が、その試料室に10μMの最終濃度になるように加えられ、オービタルシェーカー中で37℃で6時間にわたって透析された。両方の室からのアリコートが、内部標準を含んでいる1:2v/vアセトニトリルによりクエンチされた。その試料は、miVac濃縮装置上で乾燥するまで濃縮され、その残渣は50:50のアセトニトリル/水の中に再懸濁された。試料は、UV/Vis検出を備えている逆相ウルトラパフォーマンス液体クロマトグラフィー(UPLC:ultraperformance liquid chromatography)により分析された。キナゾリノン2の血漿タンパク結合は、マウス中で98.0±0.04%、ヒトにおいては96.5±0.70%であった。
ウォーターズのAcquity UPLCシステムが使用され、それは、二元ソルベントマネジャー、オートサンプラー、カラムヒーター、及びフォトダイオードアレイ検出器が備えられていた。クロマトグラフィー条件は、10%アセトニトリル/90%水による2分間の0.4mL/分での溶離、それに続く80%アセトニトリル/20%水への10分間の直線勾配、及び100%アセトニトリルへの3分間の直線勾配並びに290nmのUV/Vis検出からなった。使用されたカラムはAcquity UPLC HSS C18の1.8μm、2.1×100mmであった。
最後の定量化可能なサンプリング時間までの濃度−時間曲線下面積(AUC0−last)が、台形公式によって計算された。AUC0−∞がAUC0−last+(Clast/k)として計算され、ここで、Clastは、最後の定量化可能なサンプリング時間における濃度であり、kは排出速度定数である。時間=0における濃度(C0)は、最初のサンプリング時間から対数線形回帰分析を用いる逆外挿によって見積もられた。半減期(t1/2α及びt1/2β)は、線形回帰によるその線の傾斜が速度定数kであり、t1/2α=ln 2/kである初期濃度時間又は最終濃度時間のデータの直線部から見積もられた。分布容積(Vd)は、投与量を初期濃度(C0)によって除することで計算された。クリアランス(CL)は、投与量をAUC0−∞によって除することで計算された。経口バイオアベイラビリティー(F)は、同等のiv及びpo用量が投与されたとき、AUCpoをAUCivによって除することによって計算された。
2の単回の10mg/kgのiv投与後(図3)、その化合物は、14.6分の分布t1/2α及び0.3L/kgの分布容積Vdで組織に急速に分布した(表2.2)。2の血漿中濃度は、2時間にわたってMICより上に維持され、24時間で0.142±0.053μg/mLまでゆっくり下降し、22.3時間の長い排出半減期を有した。AUC0−∞によって測定された全身暴露は1410μg・min/mLであった。その化合物は、マウスにおける肝血流量の10%より少ない7.07mL/min/kgの低いクリアランスを有した。2の単回の10mg/kgの経口(po)投与後、その化合物は、25分のt1/2吸収により急速に吸収された。1.29μg/mLの最高濃度が1時間で達成された。全身暴露は932μg・分/mLであった。その化合物は2.06時間の半減期で組織に分布した。最終的な半減期は長く(58.2時間)、絶対的経口バイオアベイラビリティは66%であった。
回折データセットがXDSを用いて処理され、CCP4パッケージからのSCALAによりスケールされ、構造は、初期モデルとしてPBP2a構造(PDB ID:1VQQ)によるPHASERを用いる分子置換によって解析された。そのモデルは、PHENIX及びBUSTERを用いるいくつかの繰り返しにより精密化された。ラマチャンドラン統計は、以下の通りである:最も好適な領域に97.3%の残基、許容される領域に2.50%の残基、そして許容されない領域に0.47%。
以下の配合表は、本明細書に記載されている式の化合物、本明細書に具体的に開示されている化合物、又はその薬学的に許容される塩若しくは溶媒和物(以下「化合物X」という。)の治療又は予防的投与に使用され得る典型的な医薬品剤形を説明している。
「化合物X」 100.0
ラクトース 77.5
ポビドン 15.0
クロスカルメロースナトリウム 12.0
微結晶性セルロース 92.5
ステアリン酸マグネシウム 3.0
300.0
「化合物X」 20.0
微結晶性セルロース 410.0
デンプン 50.0
デンプングリコール酸ナトリウム 15.0
ステアリン酸マグネシウム 5.0
500.0
「化合物X」 10.0
コロイド二酸化ケイ素 1.5
ラクトース 465.5
アルファー化デンプン 120.0
ステアリン酸マグネシウム 3.0
600.0
「化合物X」(遊離酸の形) 1.0
第二リン酸ナトリウム 12.0
リン酸1ナトリウム 0.7
塩化ナトリウム 4.5
1.0Nの水酸化ナトリウム溶液 適量
(7.0〜7.5にpH調整)
注射のための水 1mLまで適量
「化合物X」(遊離酸の形) 1.0
リン酸1ナトリウム 0.3
第2リン酸ナトリウム 1.1
ポリエチレングリコール400 200.0
1.0Nの水酸化ナトリウム溶液 適量
(7.0〜7.5にpH調整)
注射のための水 1mLまで適量
「化合物X」 20
オレイン酸 10
トリクロロモノフルオロメタン 5,000
ジクロロジフルオロメタン 10,000
ジクロロテトラフルオロエタン 5,000
「化合物X」 5%
カルボマー934 1.25%
トリエタノールアミン 適量
(5〜7にpH調整)
メチルパラベン 0.2%
純水 100gまで適量
「化合物X」 5%
メチルセルロース 2%
メチルパラベン 0.2%
プロピルパラベン 0.02%
純水 100gまで適量
「化合物X」 5%
プロピレングリコール 1%
無水軟膏基剤 40%
ポリソルベート80 2%
メチルパラベン 0.2%
純水 100gまで適量
「化合物X」 5%
白ろう 10%
流動パラフィン 30%
ベンジルアルコール 5%
純水 100gまで適量
「化合物X」 5%
ステアリン酸 10%
モノステアリン酸グリセリン 3%
ポリオキシエチレンステアリルエーテル 3%
ソルビトール 5%
パルミチン酸イソプロピル 2%
メチルパラベン 0.2%
純水 100gまで適量
Claims (32)
- 式(A):
[式中、
A1は、N又はCR3であり、
各R1は、独立して、H、ヒドロキシ、ハロ、トリフルオロメチル、アルキル、アルコキシ、アシルオキシ、アミノ、−CO2H、ニトロ、ニトリル、−NRx 2(式中、各Rxは、独立して、H、アルキル、アシル、ベンジル、又はアルコキシカルボニルである。)、−SO2−Ry(式中、Ryは、−OH、−NH2、アルキル又はアリールである。)、−NH−SO2−Ry(式中、Ryは、−OH、アルキル又はアリールである。)、−C(=O)NRx 2(式中、各Rxは、独立して、H、アルキル、ヒドロキシアルキル、シクロアルキル、アシル、ピコリニル、又はベンジルである。)、−CH2−N(H)R4(式中、R4は、H又はアシルである。)、−CH2−CO2H、複素環、−CH2−複素環、又は−C(=NH)NH2であり、
X1は、(C1〜C12)アルキル(ここで、アルキルは、シクロアルキル又は複素環によって任意選択で置換されている。)、(C1〜C2)アルキル−Ph−(R2)m、−C=C−シクロアルキル、−C=C−複素環、又は−C=C−Ph−(R2)m(式中、mは、1、2、3、4、又は5である。)であり、
各R2は、独立して、H、ヒドロキシ、ハロ、トリフルオロメチル、アルキル、アルコキシ、アシルオキシ、アミノ、−CO2H、ニトロ、ニトリル、−SO2−Ry(式中、Ryは、−OH、−NH2、アルキル又はアリールである。)、アルケニル、アルキニルであるか、又は2つのR2基は、それらが結合しているフェニル環上に1,2−ジオキソラン環を形成し、
各R3は、独立して、H、ヒドロキシ、ハロ、トリフルオロメチル、アルキル、−CO2H、−CO2−アルキル、又は−C(=O)NRx 2(式中、各Rxは、独立して、H、アルキル、ヒドロキシアルキル、アシル、ピコリニル、又はベンジルである。)であり、
各nは、独立して1、2、3、4、又は5である。]
の化合物、又はその薬学的に許容される塩若しくは溶媒和物。 - 式(A)の化合物は、式(I):
[式中、A1、R1、R2、及びR3は、式(A)に対して定義した通りであり、R2の変数nは、1、2、3、4、又は5であり、A2は、N、N+Me、CH、又はR2によって置換されている場合はCであり、ダッシュによって表される結合は任意選択の二重結合を表す。]
の化合物、又はその薬学的に許容される塩若しくは溶媒和物である、請求項1に記載の化合物。 - 式(I)の化合物は、式(II):
の化合物、又はその薬学的に許容される塩若しくは溶媒和物である、請求項2に記載の化合物。 - 式(II)の化合物は、式(III):
の化合物、又はその薬学的に許容される塩若しくは溶媒和物である、請求項3に記載の化合物。 - 式(III)の化合物は、式(IV):
の化合物、又はその薬学的に許容される塩若しくは溶媒和物である、請求項4に記載の化合物。 - 式(IV)の化合物は、式(V):
の化合物、又はその薬学的に許容される塩若しくは溶媒和物である、請求項5に記載の化合物。 - R1は、ヒドロキシ、アセトキシ、−CO2H、アミノ、−NH−C(=O)Me、−NH−C(=O)OMe、−NH−SO2Me、−C(=O)NH2、−C(=O)NH(C1〜C8)アルキル−OH、−C(=O)NH(3−ピコリニル)(ここで、ピコリニル基のピリジン部分はアルキル又はアルコキシによって任意選択で置換されている。)、−NH(C1〜C8)アルキル、又は−CH2NH−C(=O)Meである、請求項6に記載の化合物。
- R1は、ヒドロキシ、−CO2H、−NH−C(=O)Me、−NH−SO2Me、−NH−C(=O)OMe、又は−C(=O)N(H)CH2CH2OHである、請求項6に記載の化合物。
- R2は、H、ハロ、メチル、メトキシ、ニトロ、ニトリル、エチニルであるか、又は2つのR2が、それらが結合しているフェニル環上に1,2−ジオキソラン環を形成している、請求項6に記載の化合物。
- R2は、フルオロ、クロロ、ニトロ、ニトリル、メチル、又はエチニルである、請求項6又は8に記載の化合物。
- R1は、式(V)のキナゾリン核への結合の部位に対してメタ位に位置する、請求項2に記載の化合物。
- R2は、式(V)のエチレン部分への結合の部位に対してパラ位に位置する、請求項2に記載の化合物。
- メチシリン耐性黄色ブドウ球菌の菌株に対して2.5μg/mL未満の最小阻害濃度(MIC)を有する、請求項1〜12のいずれか一項に記載の化合物。
- ウシ血清アルブミンの存在下のΔMICが、ウシ血清アルブミンが存在しない場合と比較して8倍以下である、請求項13に記載の化合物。
-
である、請求項2に記載の化合物。 -
である、請求項3に記載の化合物。 -
である、請求項5に記載の化合物。 - 請求項1〜17のいずれか一項に記載の化合物を、薬学的に許容される担体、希釈剤、又は賦形剤と組み合わせて含む組成物。
- 細菌の増殖を阻害するための方法であって、細菌を有効抗菌量の請求項1〜17のいずれか一項に記載の化合物と接触させるステップを含む方法。
- 前記細菌は哺乳動物の表面又は内部に存在し、前記化合物は前記哺乳動物に経口で又は腹腔内に投与される、請求項19に記載の方法。
- 前記細菌はグラム陽性菌を含む、請求項20に記載の方法。
- 前記細菌は、腸球菌又は黄色ブドウ球菌の少なくとも1種の菌株を含む、請求項21に記載の方法。
- 前記細菌はブドウ球菌属の薬剤耐性の菌株である、請求項22に記載の方法。
- 前記細菌はメチシリン耐性黄色ブドウ球菌(MRSA)菌株である、請求項23に記載の方法。
- 細菌感染症の処置のための医薬を調製するための、請求項1〜17のいずれか一項に記載の化合物の使用。
- 前記細菌感染症は、腸球菌又は黄色ブドウ球菌の少なくとも1種の菌株によって引き起こされる、請求項25に記載の使用。
- 前記細菌感染症はブドウ球菌属の薬物耐性菌株によって引き起こされる、請求項26に記載の使用。
- 前記細菌感染症はメチシリン耐性黄色ブドウ球菌(MRSA)菌株によって引き起こされる、請求項27に記載の使用。
- 第2の抗菌性化合物をさらに含む、請求項19に記載の組成物。
- 第2の抗生物質は、アモキシシリン、アンピシリン、アズロシリン、メズロシリン、アパルシリン、ヘタシリン、バカンピシリン、カルベニシリン、スルベニシリン、チカルシリン、アズロシリン、メシリナム、ピブメシリナム、メチシリン、シクラシリン、タランピシリン、アスポキシシリン、オキサシリン、クロキサシリン、ジクロキサシリン、フルクロキサシリン、ナフシリン、ピバンピシリン、セファロチン、セファロリジン、セファクロール、セファドロキシル、セファマンドール、セファゾリン、セファレキシン、セフラジン、セフチゾキシム、セフォキシチン、セファセトリル、セフォチアム、セフォタキシム、セフスロジン、セフォペラゾン、セフチゾキシム、セフメノキシム、セフメタゾール、セファログリシン、セフォニシド、セフォジジム、セフピロム、セフタジジム、セフトリアキソン、セフピラミド、セフブペラゾン、セフォゾプラン、セフォセリス、セフルプレナム、セフゾナム、セフピミゾール、セフクリジン、セフィキシム、セフチブテン、セフジニル、セフポドキシムアキセチル、セフポドキシムプロキセチル、セフテラムピボキシル、セフェタメトピボキシル、セフカペンピボキシル、セフジトレンピボキシル、セフロキシム、セフロキシムアキセチル、ダプトマイシン、ロラカルベフ、ラタモキセフ、ペニシリン、セフェピム、アズトレオナム、カルモナム、チゲサイクリン、アミカシン、ゲンタマイシン、カナマイシン、ネオマイシン、ネチルマイシン、パロモマイシン、ストレプトマイシン、トブラマイシン、イミペネム、ビアペネム、メロペネム、エルタペネム、ファロペネム、ドリペネム、パニペネム、PZ−601、エリスロマイシン、アジスロマイシン、ジリスロマイシン、テリスロマイシン、クラリスロマイシン、レボフロキサシン、シプロフロキサシン、オフロキサシン、ガチフロキサシン、ノルフロキサシン、モキシフロキサシン、トロバフロキサシン、ピペラシリン、タゾバクタム、ダプトマイシン、又はセフタロリンである、請求項29に記載の組成物。
- βラクタム系抗生物質の抗菌効果を増加させるための方法であって、前記βラクタム系抗生物質を請求項1〜17のいずれか一項に記載の化合物と組み合わせて、同時に又は連続して、細菌感染症を有する対象に投与するステップを含み、それによって前記対象の細菌感染症で見出されるPBP2aの立体構造変化を引き起こし、それによって前記細菌感染症の細菌におけるβラクタム耐性を阻害し、前記βラクタム抗生物質の効果を増加させ、それによって前記細菌感染症の細菌を死滅又は阻害する、方法。
- それを必要とする対象における細菌感染症の処置のための医薬を調製するための、請求項1〜17のいずれか一項に記載の化合物の使用であって、前記医薬はβラクタム抗生物質をさらに含み、前記化合物は、前記対象の細菌感染症で見出されるPBP2aの立体構造変化を引き起こし、それにより前記細菌感染症の細菌におけるβラクタム耐性を阻害し、前記βラクタム抗生物質の効果を増加させ、それにより前記細菌感染症の細菌を死滅又は阻害することによって、前記βラクタム抗生物質の抗菌効果を増加させる、使用。
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