JP2014507154A - 組織特異性を改変し、aav9媒介遺伝子導入を改善するための組成物および方法 - Google Patents
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Abstract
Description
本発明は、国立衛生研究所(National Institute of Health)からの助成金NHLBI P01番号P01−HL−059407の下で、政府の支援によりなされた。政府は本発明において一定の権利を有する。
et al,(2006)J Virol,80:9093−9103;W.Xiao,et al,(1999)J Virol,73:3994−4003]。AAV5に基づくベクターもまた、N−結合シアル酸(SA)への結合を必要とするが、脳への直接注入に伴うCNSへの形質導入の増強を示す[RW Walters et al,(2001)J Biol Chem,276:20610−20616;BL Davidson,et al,(2000)Proc Natl Acad Sci USA,97:3428−3432]。ヒト遺伝子治療のためのAAVベクターの可能性は、ヒトおよび非ヒト霊長類組織中の潜在ゲノムに由来する新規カプシドの大規模かつ多様なファミリーの発見を通して拡大した。これによって、AAVファミリーの数は、6つの抗原クレードにまたがる120を超えるゲノムに拡大した[G.Gao et al,(2003)Proc Natl Acad Sci USA,100:6081−6086;G.Gao,et al,(2004)J Virol,78:6381−6388;G Gao et al,(2002)Proc Natl.Acad Sci USA,99:11854−11859]。高解像度のX線結晶構造およびより低解像度の低温電子顕微鏡再構成像が、AAVカプシドの多くに対して決定され、表面に露出した合計9つの超可変領域を含む高度に保存されたコア領域が示された[HJ Nam et al,(2007)J Virol,81:12260−12271]。これらの新規内在性カプシドに基づくベクターの評価は、免疫学的続発症の減少に加え、実質的に向上した形質導入効率の達成の点から、かなり有望なものになっている[上記に引用のG.Gao et al,(2002)Proc Natl Acad.Sci]。
−1368]および脊髄性筋萎縮症などの疾患の治療ためのニューロン[S.Duque,et al,(2009)Mol Ther,17:1187−1196;KD Foust et al,(2009)Nat Biotechnol,27:59−65]のターゲティングにおいて極めて有望であることが示された。AAV9はまた、体液性応答を誘発することなく肺の肺胞上皮細胞に極めて効率的に形質導入し、ベクターの効率的な再投与を可能にする[MP Limberis and JM Wilson,(2006)Proc Natl.Acad Sci.USA,103:12993−12998]。しかしながら、これらの指向性を媒介する受容体はまだ明らかにされていない。
て、これらの残基に結合することによりβ−ガラクトースが遮断される。
メーションに影響を及ぼすことがない別の適切なアミノ酸が選択される。例えば、Arg、His、Lys、Asp、Glu、Ser、Thr、Asp、Gln、Cys、Ala、Val、Isle、Leu、Met、Phe、Tyr、Trpである。一実施形態では、このアミノ酸は、プロリン以外の群から選択される。
クレードFは、AAV vp1アミノ酸配列のアライメントに基づいて、(少なくとも1000レプリケートの)少なくとも75%のブートストラップ値および0.05以下のポアソン補正距離尺度による近隣結合アルゴリズムを使用して決定された場合に、AAV9、hu.14/AAV9[GenBank受託番号AY530579]、hu.31[AY530596]、およびhu.32[GenBank受託番号AY530597]と系統発生的に関連するAAV群である。近隣結合アルゴリズムは、文献に広範囲に記載されている。例えば、M.Nei and S.Kumar,Molecular Evolution and Phylogenetics(Oxford University Press,New York(2000)を参照のこと。このアルゴリズムを実行するために使用することができるコンピュータプログラムが入手可能である。例えば、MEGA v2.1プログラムは、改変Nei−Gojobori法を実行する。これらの手法およびコンピュータプログラム、ならびにAAV vp1カプシドタンパク質の配列を使用すると、当業者は、選択されたAAVが、本明細書で同定されたクレードの1つに含まれるか、他のクレードに含まれるか、またはこれらのクレードの外であるか容易に判定することができる。
アソン補正距離尺度による近隣結合アルゴリズムを使用して決定された場合に、系統発生的に関連する。
ノ酸であってもよい。適切な断片の例が、本明細書に記載される。
NTIユーティリティも使用される。上記のプログラムに含有されるものを含めて、ヌクレオチド配列同一性を評価するために使用できる、当技術分野で公知のいくつかのアリゴリズムもまた存在する。別の例として、ポリヌクレオチド配列は、GCGバージョン6.1の中のプログラムであるFasta(商標)を使用して比較することができる。Fasta(商標)は、クエリー配列と検索配列との間の最良のオーバーラップ領域のアライメントおよびパーセント配列同一性を提供する。例えば、核酸配列間のパーセント配列同一性は、参照により本明細書に組み込まれるGCGバージョン6.1に提供されるように、そのデフォルトパラメーター(語長6およびスコアリングマトリックスについてはNOPAMファクター)と共にFasta(商標)を使用して決定することができる。また、多重配列アラインメントプログラムは、アミノ酸配列についても利用可能であり、例えば、「Clustal X」、「MAP」、「PIMA」、「MSA」、「BLOCKMAKER」、「MEME」、および「Match−Box」プログラムがある。一般に、これらのプログラムはいずれもデフォルト設定で使用される。ただし、当業者は必要に応じてこれらの設定を変更することができる。あるいは、当業者は、参照のアルゴリズムおよびプログラムにより提供されるものと少なくとも同レベルの同一性またはアライメントを提供する別のアルゴリズムまたはコンピュータプログラムを利用することができる。例えば、JD Thomson et al,(1999)Nucl.Acids.Res.,”A comprehensive comparison of multiple
sequence alignments”,27(13):2682−2690を参照のこと。
その変形体は、他の成分、要素、整数、工程等について排他的である。
一態様では、本発明は、AAV9カプシドを有するアデノ随伴ウイルス(AAV)ウイルスベクターのターゲティングおよび/または細胞取り込み効率を改変する方法を提供する。本方法は、AAV9をベースとした送達ビヒクルに結合するようにβ−ガラクトースのアベイラビリティを改変する組成物を被験体に送達する工程を含む。一実施形態では、所望の標的細胞の表面は、末端のシアル酸残基および末端から2番目のβ−ガラクトース残基を有し、このβ−ガラクトース残基が露出するように本発明により改変されるグリカンを含有する。
である。別の変形形態では、組成物は坐薬形態である。液体形態の組成物は、静脈内、筋肉内、および皮下経路、舌下または鼻腔内経路を含む、標準的方法により投与することができる。一実施形態では、担体は、0.9%塩化ナトリウム中の0.1%〜0.4%のフェノールである(米国薬局方)。
(Cold Spring Harbor,NY)を参照されたい。あるいは、ペプチドはまた、周知の固相ペプチド合成法により合成することができる(Merrifield,(1962)J.Am.Chem.Soc.,85:2149;Stewart and Young,Solid Phase Peptide Synthesis(Freeman,San Francisco,1969)pp.27−62)。これらおよび他の適切な生成方法は、当業者の知識の範囲内であり、本発明を限定するものではない。
V配列は、文献または例えばGenBank(登録商標)、PubMed(登録商標)等のデータベースから入手可能であるなどの公表された配列を参照して、合成または他の適切な手段によって得ることができる。
ミニ遺伝子は、導入遺伝子およびその調節配列ならびに5’および3’AAV逆方向末端反復配列(ITR)で最低限構成される。一実施形態では、AAV血清型2のITRが使用される。しかしながら、他の適切な供給源に由来するITRが選択されてもよい。カプシドタンパク質の中にパッケージングされ、選択された宿主細胞に送達されるのがこのミニ遺伝子である。
導入遺伝子は、目的のポリペプチド、タンパク質、または他の産物をコードする導入遺伝子に隣接するベクター配列に対して異種の核酸配列である。この核酸コード配列は、宿主細胞中での導入遺伝子の転写、翻訳、および/または発現が可能になるように調節成分に作動的に連結される。
をコードする配列により分離されてもよい。例えば、ML Donnelly,et al,(Jan 1997)J.Gen.Virol.,78(Pt 1):13−21;S.Furler,S et al,(June 2001)Gene Ther.,8(11):864−873;H.Klump,et al.,(May 2001)Gene Ther.,8(10):811−817を参照されたい。この2AペプチドはIRESより著しく小さく、空間が制限因子となる場合に使用するのによく適合する。より多くの場合には、導入遺伝子が大きく、マルチサブユニットからなる場合、または2つの導入遺伝子が同時送達される場合、所望の導入遺伝子またはサブユニットを担持するrAAVは、それらが単一ベクターゲノムを形成するようにインビボでコンカテマー化することを可能にするために、同時投与される。そのような実施形態では、第1のAAVは、単一導入遺伝子を発現する発現カセットを担持することができ、第2のAAVは、宿主細胞中で共発現するための異なる導入遺伝子を発現する発現カセットを担持することができる。しかしながら、選択された導入遺伝子は、任意の生物学的に活性な産物または他の産物、例えば、研究にとって望ましい産物をコードしてもよい。
ミニ遺伝子について上記に同定された主要なエレメントに加え、ベクターはまた、プラスミドベクターで形質移入されたかまたは本発明により作製されたウイルスに感染した細胞中でのその転写、翻訳、および/または発現を可能にするように導入遺伝子に作動的に連結される従来の調節領域を含む。本明細書で使用される場合、「作動的に連結される」配列は、目的の遺伝子に近接する発現制御配列および目的の遺伝子を制御するためにトランスでまたは離れて作用する発現制御配列の両方を含む。
t al,(1996)Proc.Natl.Acad.Sci.USA,93:3346−3351]、テトラサイクリン抑制系[Gossen et al,(1992)Proc.Natl.Acad.Sci.USA,89:5547−5551]、テトラサイクリン誘導系[Gossen et al,(1995)Science,268:1766−1769、さらにHarvey et al,(1998)Curr.Opin.Chem.Biol.,2:512−518も参照のこと]、RU486誘導系[Wang et al,(1997)Nat.Biotech.,15:239−243、およびWang et al,(1997)Gene Ther.,4:432−441]およびラパマイシン誘導系[Magari et al,(1997)J.Clin.Invest.,100:2865−2872]が挙げられる。この文脈において有用となりうる他のタイプの誘導性プロモーターは、特定の生理学的状態、例えば温度、急性期、細胞の特定の分化状態により、または複製細胞においてのみ調節されるものである。
ミニ遺伝子は、宿主細胞に送達される任意の適切なベクター、例えばプラスミド上に担持することができる。本発明に有用なプラスミドは、複製、および場合によっては原核細
胞、哺乳動物細胞、またはその両方での組み込みに適するように操作することができる。これらのプラスミド(または5’AAV ITR−異種分子−3’AAV ITRを担持する他のベクター)は、真核生物および/または原核生物におけるミニ遺伝子ならびにこれらの系の選択マーカーの複製を可能にする配列を含有する。選択可能マーカーまたはレポーター遺伝子としては、とりわけ、ジェネテシン、ハイグロマイシン、またはピューリマイシン(purimycin)抵抗性をコードする配列を挙げることができる。プラスミドはまた、アンピシリン抵抗性など、細菌細胞中でベクターの存在を伝達するために使用できる特定の選択可能レポーターまたはマーカー遺伝子を含有することができる。プラスミドの他の成分としては、複製起点およびエプスタインバーウイルス核抗原を使用するアンプリコンシステムなどのアンプリコンを挙げることができる。このアンプリコンシステムまたは他の同様のアンプリコン成分は、細胞中での高コピーのエピソーム複製を可能にする。好ましくは、ミニ遺伝子を担持する分子は、細胞に形質移入され、そこでは一過性に存在することができる。あるいは、ミニ遺伝子(5’AAV ITR−異種分子−3’ITRを担持する)は、染色体性にまたはエピソームとしてのいずれかで、宿主細胞のゲノムに安定に組み込まれてもよい。特定の実施形態では、ミニ遺伝子は、複数コピーで、場合によっては、ヘッドトゥーヘッド、ヘッドトゥーテール、またはテールトゥーテールのコンカテマーで存在することができる。適切な形質移入手法は公知であり、宿主細胞にミニ遺伝子を送達するために容易に利用することができる。
ミニ遺伝子に加えて、宿主細胞は、宿主細胞において本発明の新規AAVカプシドタンパク質(またはその断片を含むカプシドタンパク質)の発現を駆動する配列、およびミニ遺伝子に見出されるAAV ITRの供給源と同じ供給源のrep配列または交差相補(cross−complementing)供給源のrep配列を含有する。パッケージング宿主細胞はまた、本発明のrAAVをパッケージングするためにヘルパー機能を必要とする。そのようなヘルパー機能は、当技術分野で周知であり、本明細書で繰り返されることはない。同様に、AAVカプシドを有する適切なベクターを生成する方法は公知である。[例えば、米国特許出願公開第2007/0036760号明細書を参照のこと]。
む断片)を含有する完全長カプシドを生成することができる。さらに別の実施形態では、変異体AAV9カプシドを有するベクターまたはAAV9ガラクトース結合ドメインを含有するように操作されたAAVが、同様の手法を使用して組み立てられる。
標的であるこれらの細胞のベクター媒介形質導入の実質的な増加とをもたらすノイラミニダーゼとAAV9ベクターとのマウス肺への同時注入により実証された。
al,(Aug 18 1998)Proc.Natl.Acad Sci USA,95(17):10158−63]。同様に、例えば、COPDおよび他の肺障害の治療に有用な抗炎症性サイトカインまたは他の分子を含む、他の肺症状の治療のための遺伝子を使用することができる。
/ニューレグリン/ARIA/neu分化因子(NDF)ファミリーのいずれか1つ、神経成長因子(NGF)、脳由来神経栄養因子(BDNF)、ニューロトロフィンNT−3およびNT−4/5、毛様体神経栄養因子(CNTF)、グリア細胞由来神経栄養因子(GDNF))、ニュールツリン、アグリン、セマフォリン/コラプシンのファミリーのいずれか1つ、ネトリン−1およびネトリン−2、肝細胞増殖因子(HGF)、エフリン、ノギン、ソニックヘッジホッグ、ならびにチロシンヒドロキシラーゼを含む、ホルモンならびに増殖因子および分化因子が含まれる。
うるような酵素が含まれる。例えば、マンノース−6−リン酸を含有する酵素は、リソソーム蓄積症の治療に利用することができる(例えば、適切な遺伝子としては、β−グルクロニダーゼをコードする遺伝子(GUSB)が挙げられる)。
618号明細書、欧州特許第0 182 448号明細書、欧州特許第0 162 067号明細書、欧州特許第0 786 474号明細書、欧州特許第0 533 862号明細書、欧州特許第0 506 757号明細書、欧州特許第0 874 057号明細書、欧州特許第0 795 021号明細書、欧州特許第0 670 332号明細書、欧州特許第0 500 734号明細書、欧州特許第0 232 112号明細書、および欧州特許第0 160 457号明細書;Sanberg et al.,(1992)XXth Int.Congress of the World Fed.Of Hemophilia and Lind et al.,(1995)Eur.J.Biochem.,232:19。
可変領域およびT細胞リンパ腫のT細胞受容体の可変領域が含まれ、これらは、一部の実施形態では、自己免疫疾患に対する標的抗原としても使用される。モノクローナル抗体17−1Aにより認識されるポリペプチドおよび葉酸結合ポリペプチドを含む、腫瘍細胞でより高レベルで見出されるポリペプチドなどの他の腫瘍関連ポリペプチドを、標的ポリペプチドとして使用することができる。
本発明は、固体担体に結合したβ−ガラクトースを使用する、AAV9の単離および検出のための方法を提供する。本発明はまた、β−ガラクトースに対する結合部位を有する別のクレードF AAVの精製、またはβ−ガラクトースに対する結合部位を含有する、いわゆる「空のAAV9カプシド」(その中にパッケージングされたゲノム配列を含まないインタクトカプシドタンパク質)に容易に適用することができる。例えば、キメラAAVカプシドを含有するAAVベクター、例えば、AAV9の一部、またはβ−ガラクトース結合部位を有する他のクレードFカプシドタンパク質を含有するベクターは、本発明に従って検出、分離、および単離することができることは理解されよう。本明細書の全体にわたる便宜のために、本明細書に記載のβ−ガラクトースに特異的な結合部位を有するこれらのウイルスベクターおよび他のタンパク質は、「精製標的」と称される。前に指摘したように、このセクションでのAAV9との記載は簡潔表現のために使用するものであって、β−ガラクトースに対する結合部位を有する他のAAVカプシドを排除するものではないことは理解されよう。
ンフレット;1999年6月3日に公表された国際公開第99/27140号パンフレット;米国特許第6,096,273号明細書;2000年3月16日に公表された国際公開第00/14197号パンフレットに記載されたものが含まれる。
ては、当業者に容易に明らかになるものの中では、酢酸(例えば、1mM)および酢酸ナトリウムなどのその塩、ならびに0.1Mグリシン(pH3)が挙げられる。精製標的(例えば、AAV9細胞結合ドメインを有する)の溶出に続いて、AAVを従来の手法による濃縮に供することができる。
検出するために有用なキットを提供する。上記の成分を含有することに加えて、そのようなキットは、分子への精製標的の結合を視覚的に検出することを可能にするマーカー試薬も含有することができる。このキットは、被験体からの生体試料、例えば血液の中の精製標的の検出に特によく適合する。このタイプのキットは、上記のβ−ガラクトース連結担体および試薬を含有することに加えて、視覚的に検出可能なマーカーをさらに含むことができる。
A.結合アッセイ
結合アッセイについては、細胞を150cm2フラスコから掻き集め、100μlの冷無血清(SF)培地中にて、5×105細胞/ウェルで96ウェルプレート上に播種した。Penn Vector(http://www.med.upenn.edu/gtp/−vector_core.shtml)により以前に記載されたように、AAVベクターを生産し、100μlの冷SF培地中に5×109ゲノムコピー(GC)/wellで加え、4℃で1時間インキュベートした。細胞をSF培地で3回洗浄し、200μlのPBS中に再懸濁した。全DNAを、QIAamp DNA Miniキット(QIAGEN)を使用して抽出した。細胞に結合したGCをリアルタイムPCRにより定量した。使用したプライマーおよびプローブは、ベクターゲノムのSV40ポリA配列に相補的にした。Fプライマー:AGCAATAGCATCACAAATTTCACAA[配列番号2];Rプライマー:CCAGACATGATAAGATACATTGATGAGTT[配列番号3];TaqManプローブ:6FAM−AGCATTTTTTTCACTGCATTCTAGTTGTGGTTTGTC[配列番号4]−TAMRA。細胞形質導入アッセイについては、細胞を、黒壁透明底96ウェルプレートに105細胞/ウェルで一晩播種した。次いで、プレートを4℃で15分間静置し、ffLucを発現するAAVベクターの109GCを100μlの冷SF培地に加え、4℃で1時間インキュベートした。次いで、細胞をSF培地で3回洗浄した。血清含有温培地を補充し、細胞を37℃で48時間インキュベートした。1ウェル当たり150μg/mlのD−ルシフェリン基質を加え、ルミノメーターを使用して相対光単位/秒(RLU/s)を測定することにより、ffLuc発現をモニターした。
細胞形質導入アッセイについては、細胞を150cm2フラスコから掻き集め、黒壁透明底96ウェルプレートに5×s105細胞/ウェルで一晩播種した。次いで、プレートを4℃で15分間静置し、ffLucを発現するAAVベクターの109GCを100μlの冷SF培地に加え、4℃で1時間インキュベートした。次いで、細胞をSF培地で3回洗浄した。血清含有温培地を補充し、細胞を37℃で48時間インキュベートした。1ウェル当たり150μg/mlのD−ルシフェリン基質を加え、ルミノメーターを使用して相対光単位/秒(RLU/s)を測定することにより、ffLuc発現をモニターした。
50μlのPBS中で100mUのNA含有または非含有のAAV。ベクター注入の1時間前またはそれと同時のいずれかでNAを投与した。肺におけるnLacZ遺伝子発現を、以前に記載の方法[Bell,et al,Histochem Cell Biol,124(6):2427−35(2005)]により、投与21日後に検討した。肺
切片を、倍率100倍および200倍の両方で検査した。誘導気道のLacZ陽性細胞を、倍率200倍の視野当たりの陽性細胞をカウントすることにより定量した。マウスをケタミン/キシラジンで麻酔し、30μlのPBS中の100mU NAまたは対照としてPBS単独を鼻腔内注入した。以前に記載の方法(上記に引用のBell,2005)により、1時間後に肺を採取し、切片を冷(−20℃)アセトン中で5分間固定した。次いで、肺切片を、Carbo−free(商標)Blocking Solution(Vector laboratories)でブロッキングし、15μg/mlのローダミン標識トウゴマ(Ricinus Communis)アグルチニンI(RCA I)および7.5μg/mlのフルオレセイン標識セイヨウニワトコレクチン(Sambucus Nigra)(SNA)と共に室温で30分間インキュベートした。次いで、スライドをPBS中で2回洗浄し、DAPIと共にVectashield(Vector laboratories)中に封入した。画像を、広視野(200倍)および共焦点顕微鏡(Zeiss LSM 510共焦点顕微鏡)の両方により取得した。筋肉、心臓、肝臓、および脳のRCA染色については、未処置マウスから器官を取り出し、上記のように切片を染色した。脳のCD31染色については、スライド48をラット抗CD31一次抗体(BD Pharmingen)とインキュベートし、次いでフルオレセイン標識抗ラット二次抗体(Vector Laboratories)およびローダミン標識RCAとインキュベートした。肺のα−チューブリン染色については、スライドを上記のように処理した。ただし、切片は、4%パラホルムアルデヒド中で固定し、マウス抗α−チューブリン一次抗体(Sigma)で染色し、次いでフルオレセイン標識ウマ抗マウス二次抗体(Vector Laboratories)およびローダミン標識RCAで染色した。画像を倍率400倍で取得した。統計的有意性をスチューデントの2テイルt検定を使用して判定した。0.001未満のP値を、有意であると見なした。データは、平均値±SDとして示した。
Pro−5細胞を、100μlのSF培地中で、50mU/mlのコレラ菌(Vibrio cholerae)由来NAIII型(Sigma)を用いて、または対照細胞を培地のみで37℃で2時間処理した。次いで、一部の細胞を、50μlの反応緩衝液(Sigma)中で、60mU/mlのβ−(1,4)−ガラクトシダーゼを用いて、または対照細胞を反応緩衝液のみで37℃で3時間さらに処理した。次いで、細胞を3回洗浄した後、上記のように、結合および形質導入試験を行った。レクチン競合試験については、Pro−5細胞を、最初にNAで処理してシアル酸を除去した。細胞を冷SF培地で洗浄し、100μlのSF培地中で50μg/mlのレクチンを、または対照として培地のみを加え、4℃で15分間インキュベートした。次いで、レクチン溶液を除去し、AAVベクター(結合に対して5×109GC、そして形質導入アッセイに対して109GC)と50μg/mlのレクチンの混合物または対照としてベクターのみを加え、4℃で1時間インキュベートした。次いで、細胞を洗浄し、上記のように、AAVの結合または形質導入について分析した。この試験に使用したレクチンには、ガラクトシル(β−1,4)N‐アセチルグルコサミンに結合するエリスリナ・クリスタガリ(Erythrina Cristagalli)レクチン(ECL)、末端ガラクトース残基に結合するトウゴマ(Ricinus Communis)アグルチニンI(RCA I)、N‐アセチルグルコサミンに結合し、シアル酸を介して相互作用もする小麦胚芽アグルチニン(WGA)、(α−1,3))および(α−1,6)マンノースに結合するアマリリス(Hippeastrum)ハイブリッドレクチン(HHL)、α−ガラクトースに結合するグリフォニア・シンプリシフォリア(Griffonia Simplicifolia)レクチンI イソレクチンB4(GSL B4)、およびα結合フコースに結合するロータス・テトラゴノロブス(Lotus Tetragonolobus)レクチン(LTL)(Vector Laboratories)が含まれる。
グリカンマイクロアレイ(GMA)結合試験については、AAV9のウイルス様粒子(VLP)を、以前に記載のように[Mitchell,et al,2004,PLoS
Biol 2(8):E234]、Bac−to−Bacバキュロウイルス発現系/Sf9発現系を使用して調製し、Consortium for Functional Glycomics(CFG;NIH National Institute of General Medicine Science Initiative)のCores DおよびHにより開発されたハイスループットグリカンマイクロアレイでスクリーニングした。プリントアレイ(printed array)(Mammalian Printed Array[PA]V4.1、http://www.functional−glycomics.org/static/consortium/resources/resourcecoreh14.shtml)は、465種の異なる天然および合成の哺乳動物グリカンで構成され、これらには、共有結合アミン官能性を付与されたグリカンへのアミンカップリングまたはアミン反応性のN−ヒドロキシスクシンイミド活性化スライドガラスへのグリカン結合を使用して生成された異なる結合および修飾を有するシアル酸付加糖が含まれる。グリカンまたは複合糖質当たり6つのレプリケートを含有するプリントスライド(printed slide)を、200μg/mlのAAV9 VLPとインキュベートし、次いで、カプシドモノクローナル抗体であるADK9(Jurgen Kleinschmidt,German Cancer Research Centre,Heidelberg,Germanyにより提供)を、結合したカプシドの上に載せ、続いて検出のためにFITC標識二次抗体(5μg/mlで)を載せた。ScanArray 5000共焦点スキャナ(Perkin Elmer Inc.)を使用して、蛍光強度を検出した。IMAGENE画像解析ソフトウェア(BioDiscovery,El Segundo,CA)を利用して画像を分析した。各グリカンについての相対的結合は、最高値および最低値を使用せずに計算した、6つのレプリケートのうちの4つについての平均相対蛍光単位(RFU)として表した。結合データは以下の2つの選択基準を使用して解析した:(I)最高RFU値を有するグリカンの平均値の3標準偏差以内にあったグリカン、および(II)平均RFU値を計算するために使用した4つのレプリケートのRFU間の変動係数(%CV)が20%未満のグリカン(%CV=データの標準偏差と平均値との比をパーセントとして表現して定義した変動係数)。グリカンアレイデータの生成に関連する情報は、以下のURL/アクセッションサイトのオープンアクセスウェブサイトから入手可能である:http://www.functionalglycomics.org/glycomics/HServlet?operation=view&sideMenu=no&psId=primscreen_3528。このデータセットに含まれるものは、生データ、標準化データ、試料アノテーション、実験デザイン、グリカンアレイのアノテーション、および実験プロトコール(アクセッションid primscreen_3528)である。
本明細書に記載のように、以前に記載された、いくつかのAAV(血清型1、2、5、および6)および新規AAV血清型7、8、9、およびrh32.33を、糖鎖付加の遺伝学および生化学を研究するために使用されるCHO細胞株Pro−5に対する結合について、エキソ−β−シアリダーゼ(ノイラミニダーゼ、NA)により処理して、また処理せずにスクリーニングした。第一世代AAVに関する結果は、NA前処理(図1A)がAAV2の結合に影響を及ぼさず、AAV1、AAV5、およびAAV6の結合を少なくとも2ログ低下させるという点で予想通りであった(図1B)。新規AAVに関する試験では、AAV7、8、およびrh32.33の結合にはNA処理の影響は示されなかったが、AAV9では、予想外にも結合が2.5ログ上昇することが示された(図1B)。
と、またはSAを除去すると結合が増強した分子が露出されることのいずれかを推測した。最も可能性の高い候補は、SAに富んだほとんどのグリカン上の末端から2番目にあるβ−1,3またはβ−1,4ガラクトースであろうと考えられた(図1A)。これらの仮説は、最初に、糖鎖付加に関与した種々の酵素が欠損した、親CHO細胞株であるPro−5の体細胞変異体を使用して、レクチン抵抗性に基づき探究した[SK Patnaik and P.Stanley(2006)Methods Enzymol 416:159−182]。Lec−2は、CMP−SAゴルジトランスポーターが欠損しており、末端SAを欠くNおよびO−グリカンの完全補完体を有しているはずである(図1A)。Lec−8は、UDP−Galゴルジトランスポーターが欠損しており、SAとガラクトース糖の両方を欠くN−およびO−グリカンを産生するはずである(図1A)。ホタルルシフェラーゼ(ffLuc)を発現する、AAV2、6、および9に基づくベクターを、Pro−5、Lec−2、およびLec−8細胞とインキュベートし、結合および形質導入について分析した(図2A、B)。AAV2の結合および形質導入は、3つの細胞株すべてにおいて同じであり、AAV6に関しては、Pro−5細胞に対してLec−2およびLec−8細胞で低下した。これは、AAV6進入の促進においてSAが重要であることを実証する以前の研究に基づいて予測されるものである。AAV9については、結合および形質導入は、Lec−2において実質的に増加したが、Lec−8細胞ではベースラインレベルに低下した。これは、末端β−ガラクトースに対する結合が、SAの取り込み阻害よりも取り込みを促進するという仮説とより一致している。結合と形質導入との一致は、末端ガラクトースに対する結合がAAV9形質導入の律速段階であることを示唆する。シアル酸除去の影響は、形質導入に対してよりも結合に対しての方が大きく、進入後の段階も形質導入を制限する可能性が示唆される。
ロアレイを使用して、さらに検討した。生化学的および分子的手法により決定された、シアル酸付加されたグリカンに対するAAV1の結合(Wu et al.,2006,J
Virol,80:9093−9103)を、同様の戦略を使用して確認した。我々の分析では、各グリカンについて、アレイ±1SD内の4つのレプリケートの平均値による相対蛍光単位(RFU)を尺度として結合を評価した(6つのレプリケート内の最高および最低の結合を除去した)。4つのレプリケート内の変動は、%CVとして評価し、それが20未満の場合、低いと見なした。AAV9カプシドに対して特異的結合親和性を有するグリカンの選択は、以下の2つの独立した基準に基づくものであった;RFUを尺度とした高い全体的な結合量および%CVによる評価に基づく4つのレプリケート間の低い変動。最も高い結合量のグリカンとは、最も高い結合量のグリカン415の3S.D.以内に入る平均RFU値を有するものとして、任意に定義された。高い結合親和性の基準を満たした4つのグリカンのうち3つが、20未満の%CVによる評価によれば、高い特異性を示した。これら3つのグリカンである415、297、および399は、AAV9結合に対する潜在的な受容体と見なすのに十分な親和性および特異性を示した。全結合量および結合特異性に基づいて、AAV9への結合特異性があるとして選択された3つのグリカンはすべて、β−1,4結合(415および399)またはβ−1,3結合(297)のいずれかを有する末端ガラクトース(Gal)を有することが示された。各グリカンは、それらの構造中に、GalNAcにβ1−3またはβ1−6結合したGalβ1−4(Fucα1−3)GlcNAcを含有し、AAV9への結合には、シアル酸を欠損するグリカンが構造的に関連することが示唆される。細胞ベースの結合/形質導入実験と結合データをまとめると、AAV9の親和性における末端β−ガラクトース結合の役割が確認される。
ターゲティングを可能にするという点でユニークである(Inagaki,K.,S.et al.(2006),Mol Ther 14(1):45−53.;Duque,et al.,(2009)Mol Ther 17:1187−1196;K.D.Foust,et al,(2009),Nat Biotechnol 27:59−65)。1011および1012ゲノムコピー(GC)/マウスの用量でAAV9ベクターをIV投与した後のlacZの形質導入が分析された。これは、RCA染色による末端β−ガラクトースの存在と相関した。記載されているように、肝臓は、低用量のベクターでも効率的に形質導入され[Vandendriessche,et al,2007,J
Thromb Haemost 5(1):16−24)];より高用量のベクターでは、心臓および骨格筋に効率的に形質導入することが可能である。[上記に引用のInagaki,2006]。骨格および心臓の組織に由来する筋繊維の表面には、RCAへの結合により証明されるように、高レベルの末端β−ガラクトースが示された。肝血管の内皮表面は明るく染色されたが、肝細胞にはより低レベルのRCA結合が示された。
for bovine norovirus Newbury2 expected to prevent cross−species transmission.PLoS Pathog 5(7):e1000504.)。
Spring Harbor Laboratory Press:p.101−11
3)。結合データに関する重要な注意は、結合親和性が、形質導入を媒介するグリコシル化受容体における機能的な重要性と必ずしも相関しないことである。重要な遺伝子治療ベクターに対する受容体は、インビトロで十分特徴づけられているが、インビボ形質導入に対するこれらの受容体の重要性はほとんど確認されていない。インビトロとインビボの形質導入間の不一致の一例は、ヒトアデノウイルス5(Ad5)である。コクサッキーウイルスおよびアデノウイルスの受容体(CAR)が、インビトロ研究に基づいて、Ad5に対する受容体として単離され、インビボ遺伝子導入に伴うCARの重要性を確認する試みでは、CAR結合性を除去されたAd5が利用された。静脈内投与後における、CAR結合性を除去されたAd5ベクターの形質導入レベルおよび肝選択的プロフィールは、Ad5と同様であり、インビボでは潜在的な重複した取り込み経路が示唆された。インビボでのAd5形質導入の機序研究により、血液凝固因子の存在によって、非CAR依存性経路を通して形質導入が媒介されうることが判明した。これと比較して、NAと組み合わせた、AAV9ベクターによる肺指向遺伝子導入に関する我々の研究は、AAV9による誘導気道上皮細胞の形質導入におけるβ−ガラクトース結合の重要性を直接確認した。
この研究では、我々は、ガラクトースに結合するために必要なAAV9カプシドの特定のアミノ酸を同定することを目的とした。部位特異的突然変異誘発および細胞結合アッセイに加え、コンピュータリガンドドッキング研究によって、我々は、20面体の3回対称軸周りの突起の基底部にポケットを形成する、ガラクトース結合に必要な5つのアミノ酸を発見した。これらのアミノ酸の重要性はまた、マウス肺におけるインビボ研究により確認された。ガラクトースへのAAV9結合に必要な相互作用の同定は、ベクター工学の進歩をもたらしうる。
AAV9カプシドの3回対称軸周りの突起の基底部にガラクトース結合ポケットが発見された。このことは、分子ドッキング研究によっても確認された。
1.細胞株
細胞株はすべて、米国培養細胞系統保存機関(American Type Culture Collection)(ATCC)から入手した。親細胞株Pro−5、シアル酸欠損細胞株Lec−2、およびガラクトース欠損細胞株Lec−8を含む、3つの異なるチャイニーズハムスター卵巣(CHO)細胞株を、結合および形質導入の実験に使用した。これらの細胞は、10%ウシ胎児血清(FBS)および1%ペニシリン/ストレプトマイシンに加え、リボヌクレオシドおよびデオキシリボヌクレオシドを添加したα−最小必須培地(α−MEM)(Invitrogen)中で培養した。
雄性C57BL/6マウス(6〜8週齢)をCharles River Laboratoriesから購入し、University of PennsylvaniaにあるTranslational Research Laboratoriesの動物施設に収容した。動物処置はすべて、Institutional Animal Care and Use Committee of the University of Pennsylvaniaから承認を受けた。
AAV9カプシド配列の特定の荷電アミノ酸または極性アミノ酸を、図3A〜3Bに示すように、非極性アラニンへの変異のために選択した。突然変異誘発は、Agilent
TechnologiesのQuikChange Lightning Site−Directed Mutagenesis Kitを使用して実施した。その後、インビトロでの結合および形質導入のアッセイに使用するための変異体ベクターを小規模生産するために、6ウェルプレート(9.6cm2)におけるHEK293細胞の3重の形質移入を、AAV2 rep遺伝子および変異体AAV9 cap遺伝子を発現するプラスミド、ならびにAAV2逆方向末端反復配列に隣接し、サイトメガロウイルス(CMV)プロモーターから発現されるffLuc導入遺伝子を発現するプラスミドおよびアデノウイルスヘルパープラスミド(pAdΔF6)を使用して実施した。合計2mlの培地中で72時間後、細胞および上清を回収し、3回の凍結/解凍サイクルに付した後、3500×gで30分間遠心分離して細胞片を除去した。ベクター(GC/ml)の力価は、定量PCRにより決定した。
インビボで使用するためのAAVベクターは、以下に記載のPenn Vectorによって生産および精製された:http://www.med.upenn.edu/gtp/vector_core/production.shtml。ニワトリβ−アクチンプロモーター由来で、AAV2逆方向末端反復配列に隣接したnLacZを発現するプラスミドを、AAV2 rep遺伝子およびAAV9または変異体のcap遺伝子をコードするプラスミドおよびアデノウイルスヘルパープラスミド(pAdΔF6)を有するHEK293細胞の3重の形質移入によりパッケージングした。イオジキサノール勾配遠心分離によりベクターを精製し、定量PCRにより力価を決定した。
結合アッセイについては、Pro−5、Lec−2、およびLec−8細胞を150cm2フラスコから掻き取り、100μlの冷無血清α−MEM中にて、5x105細胞/ウェルで96ウェルプレートに播種した。ベクターを100μlの冷α−MEM中に5x
109GC/ウェルで加え、4℃で1時間インキュベートした。次いで、細胞を、200μlのα−MEMで3回洗浄し、200μlのPBSに再懸濁した。全DNAをQIAamp DNA Mini Kit(QIAGEN)を使用して抽出し、細胞に結合したベクターGCを定量PCRにより測定した。形質導入アッセイについては、105細胞/ウェルを、黒壁透明底96ウェルプレートに一晩播種した。培地を除去後、ffLuc(109GC)を発現するAAVベクターを、100μlの完全培地中で細胞に加え、37℃で48時間インキュベートした。次いで、100μlのα−MEM中で、ウェル当たり150μg/mlのD−ルシフェリン基質を加え、ルミノメーターを使用して、相対光単位/秒(RLU/s)を測定することにより、ffLuc発現を決定した。変異体ベクターのインビトロ形質導入効率を図4Aおよび4Bに示す。
実施例3に記載のように、マウスをケタミン/キシラジンで麻酔し、30μlのPBS中の100mUのNAを鼻腔内注入した。1時間後に、nLacZを発現するAAV9または変異体ベクターの1011GCを、50μlのPBSで鼻腔内に送達した。投与21日後、肺でのβ−gal発現を以前に記載の方法(上記に引用のBell,2005)により検討した。肺切片を倍率100倍で検査した。
AAV9カプシド上のガラクトース結合部位を予測するために、分子ドッキングウェブサーバーPatchDock(http://bioinfo3d.cs.tau.ac.il/PatchDock/index.html)(Schneidman−Duhovny,et al.,Nucleic Acids Res 33(Web Server issue):W363−7 2005)を使用して、分子ドッキングを実施した。ヒトガレクチン−3に結合したガラクトースのX線結晶構造、PDB登録番号1A3Kを利用して、ガラクトースの座標を準備した(Seetharaman,et al.,J Biol Chem,273(21):13047−52(1998)。AAV9のX線結晶構造の座標(未公表データ)を用い、VIPERdb Oligomerジェネレータ(http://viperdb.scripps.edu/oligomer_multi.php)(Carrillo−Tripp,Nucleic Acids
Res,37 (Database issue):D436−42(2009)を使用して、三量体を構築した。AAV9三量体に対する出力PDBファイルを、表面到達可能で、ウイルスカプシドの表面ループの構造的完全性を維持するアミノ酸を含むように短縮した。分子ドッキングの入力ファイルとしての短縮したAAV9三量体PDBファイルに含まれるアミノ酸は、N262−Y277、L435−G475、およびF501−M559であった。分子ドッキングを、方向を指定しない形式で実施して、ガラクトースと相互作用する可能性のある、AAV9カプシド上の部位を評価した。ドッキングはまた、短縮したAAV9三量体およびシアル酸を使用して実施した。ウマ鼻炎ウイルスとそのシアル酸受容体との複合体のX線結晶構造、PDB登録番号2XBOを利用して、シアル酸の座標を準備した(Fry,et al.J Gen Virol,91(Pt8):1971−7(2010)。
1.N470は、AAV9ガラクトース結合に必要である
ガラクトース結合に関与しうる、AAV9カプシドの潜在的なアミノ酸を同定するために、AAV9のカプシドアミノ酸配列を、AAV1、2、6、7、および8など、ガラクトースに結合しない他の血清型の配列にアライメントし、いずれのアミノ酸がAAV9にユニークであるか判定した。このアライメントに基づいて、極性または荷電側鎖のいずれかを有する14個のアミノ酸を選択し、非極性のアラニンに変異させて、AAV9結合に対する影響を検討した(図3A)。これらの変異体カプシドコンストラクトを使用して、
小規模調製法によりベクターを作製し、野生型AAV9と比較して同様の力価を得た。
さらなるAAV9変異体を生成させて、構造的にN470周辺にあるアミノ酸のいずれがまたガラクトース結合に寄与するかを決定した。この第2セットの変異体は、VR I、IV、V、およびVIIを含む、カプシドの多重確定可変領域(VR)の全体にわたるアミノ酸を標的とし、これらは、ビリオンの構築された20面体構造では、互いに近接している。N470近辺の19個のアミノ酸をアラニンへの変異のために選択し(図3B)、ベクターを小規模法により生産した。以前のように、変異体はすべて、AAV9対照と同様の高力価ベクターであり、変異はいずれも、カプシド集合体に対して負の効果を及ぼさなかった。次いで、変異体ベクターについて、Pro−5、Lec−2、およびLec−8細胞に対する結合能を試験した(図3B)。再び、AAV9は、Pro−5およびLec−8細胞と比較して、Lec−2細胞への結合が100倍増加する予想された結果を示した。試験された変異体のほとんどもまたこの表現型を示したが、4つの変異体はLec−2細胞への結合が消失することが示された。D271、N272、Y446、またはW503の変異はすべて、AAV9のガラクトース結合能を消失させた。
インビトロでのAAV9変異体の形質導入を評価するために、ホタルルシフェラーゼ(ffLuc)を発現するベクターを、Pro−5およびLec−2細胞に加えた。ガラク
トース結合を失った5つの変異体(N470A、D271A、N272A、Y446A、W503A)、ならびにガラクトース結合を保持する2つの変異体(S469AおよびE500A)およびAAV9対照ベクターを細胞に加え(MOI=104)、48時間後にffLuc発現を評価した。予想通り、ガラクトース結合能を欠く変異体では、AAV9、S469A、およびE500Aと比較して、Lec−2細胞の形質導入が3倍以上低下することが示された。W503AおよびN272Aは、バックグラウンドのほんの少し上の最低の形質導入レベルを示した。Pro−5細胞に関しては、この細胞が結合のための豊富な末端ガラクトース残基を欠いているので、全体的な形質導入は2〜5倍低下した。しかしながら、それでも、Lec−2細胞について測定されたものと同様の形質導入の傾向が観察された。ガラクトース結合が欠損した変異体は、最低の形質導入を示し、ガラクトース結合を保持する2つの変異体(S469AおよびE500A)およびAAV9対照ベクターは、より高レベルの形質導入を示した。しかしながら、E500Aは、Pro−5細胞上で、AAV9よりもほぼ2倍高い発現を示し、このベクターが好ましい細胞内相互作用を有しうることが示唆された。
AAV9ベクターの鼻腔内投与の前に、マウスにノイラミニダーゼ(NA)を鼻腔内送達すると、肺の誘導気道上皮の効率的なAAV9形質導入が可能になる。このようになる理由は、NAが気道細胞の表面グリカンから末端シアル酸残基を切断し、これにより、内在するガラクトース残基が露出し、AAV9結合および形質導入が可能になるためである。ガラクトース結合が欠損した変異体ベクターが、インビボで誘導気道上皮に形質導入することができるか否かを試験した。核標的化LacZ(nLacZ)を発現するベクター(1011GC)を、100mU NAの注入の1時間後、マウスに鼻腔内送達し、次いで、21日後に肺を取り出し、β−gal発現に対して染色した。AAV9対照ベクターは、我々の以前の結果に基づいて予想されるように、効率的な誘導気道形質導入を示した。ガラクトースへの結合能を失った5つの変異体(N470A、D271A、N272A、Y446A、およびW503A)は、誘導気道上皮に形質導入することができず、インビボでもガラクトース結合能がないことが実証された。ガラクトース結合を保持する、S469AおよびE500Aの変異体は、AAV9と同様に、効率的な誘導気道形質導入を示した。
AAV9の構造についての知識を使用して、カプシド表面上のガラクトース結合にとって重要なアミノ酸の位置を決定した。分子ドッキング手法を使用して、AAV9 VP三量体上のガラクトース結合部位を同定した。上位100のドッキング結果を評価し、カプシドの内部表面上にガラクトースを置いたドッキング解は廃棄した。残りの13個の解はすべて、N470と近接してガラクトースをドッキングし、13個の解のうちの12個は、N470とW503の間にガラクトースをドッキングする。N470、D271、N272、Y446、およびW503は、3回対称軸周りの突起の基底部にポケットを形成する。このポケットは、2回軸および5回軸に面する突起の外側表面およびVR Iにより形成される、2回軸と5回軸の間の小さな表面突起によって形成される。AAV9は、ガラクトース残基がこの領域の中でどのように適合しているかをさらに説明する結合ポケットを含有する。ガラクトース結合にとって重要であることが見出された非極性のA472およびV473のアミノ酸は、結合ポケットの底部に位置しており、したがって、ガラクトース糖がうまく挿入されることを可能にするように見える。ガラクトース結合部位の興味深い特徴は、結合にとって重要であることが示されたアミノ酸が2つの異なるモノマーに由来することであり、そこでは、Y446、N470、A472、およびV473が結合ポケットの底を形成し、結合ポケットの蓋を形成するアミノ酸であるD271、N272、およびW503が別の担当モノマーに由来する。これにより、適切に集合したカプシ
ドのみが受容体に結合できることを保証する機序が提供されうる。意味あることには、ガラクトース結合ポケットの同定に続いて、同じカプシド領域へのシアル酸分子のドッキングを試みたところ、このグリカンは立体障害によりポケットに収容することができないことがわかった。この観察はAAV9によるシアル酸結合の欠如と一致している。
AAV9の細胞表面グリカンとの相互作用を研究するこれまでの実験により、このベクターが細胞受容体としてガラクトースを使用することが実証された。Pro−5、HEK293、およびHuh−7を含む、複数の細胞株のAAV9結合および形質導入の分析により、NAを使用して、細胞表面グリカンから末端シアル酸残基を酵素的に除去すると、AAV9結合の顕著な増加がもたらされることが明らかとなった。この増加は、AAV9結合および形質導入を容易にする、内在するガラクトース糖の露出によるものである。CHO糖鎖付加変異細胞株であるLec−2およびLec−8ならびにレクチン競合アッセイを使用するさらなる研究により、ガラクトースのこの役割が確認された。加えて、マウスに鼻腔内送達されたNAは、気道細胞の表面上にある末端ガラクトース残基の増加、したがってAAV9形質導入の増加をもたらした。
Virol 77(12):6995−7006)。これらのアミノ酸は、カプシドの3回対称に関連した突起それぞれの内面上に塩基性パッチを形成する。HSに結合することが示されたAAV6も、AAV2について観察されたものと類似の位置に、R485、R488、K528、およびK533を含むアミノ酸の同様の塩基性ストレッチを含有する(Ng,et al.,2010,J Virol 84(24):12945−57)。加えて、突然変異誘発研究により、K493、K459、R576、およびK531はすべて、AAV6のHS結合に必要であることが示され、近隣に位置している。3回軸周りの突起の基底部に位置するAAV9のガラクトース結合ドメインは、3回軸に面する内面上に位置するAAV2のHS結合領域と比較すると、この構造の反対側にある。AAV6のHS結合残基はまた、AAV9ガラクトース結合残基と比較すると、突起の外壁上に位置するが、VR IIIおよび20面体の2回軸により近い対壁に位置する。これらの観察は、3回軸周りの突起を構築するアミノ酸および構造の重要性ならびに異なるAA
V血清型に対する受容体認識におけるこの領域に隣接する残基の重要性をさらに説明する。それはまた、AAVカプシド、特に表面に露出した突起によく見られる構造可変性は、感染を成功させるために、異なる表面分子の利用を可能にするように進化してきたものであり、それぞれの形質導入表現型の重要な決定要素となるという提案を支持する。
C57BL6マウス(6〜8週齢、体重20〜25g、雄性)を、ケタミン/キシラジンの混合物で麻酔した。次いで、マウスに対し、ノイラミニダーゼ(NA)(Sigma、N7885)を5μl、それぞれの鼻孔に投与した(NAを合計80〜100mU)。NA前処置の10分以内に、ニワトリβ−アクチンプロモーターの転写制御下にあるホタルルシフェラーゼ(ffLuc)を発現するAAV9ベクター(合計用量1011GC)を、PBSで希釈した15μlアリコートとして注入した(鼻孔当たり15μl)。マウスを回復させて、導入遺伝子発現(ffLuc)を、ベクター接種の24時間後という早期にモニターした。
Claims (33)
- クレードF AAV由来のカプシドを有するアデノ随伴ウイルス(AAV)ベクターのターゲティングおよび/または細胞取り込み効率を改変する方法であって、前記方法が、クレードF AAVに結合するβ−ガラクトース残基を含む細胞の能力を改変する組成物を被験体に送達する工程を含む方法。
- 前記方法が、末端のシアル酸および末端から2番目のβ−ガラクトースを有する細胞表面グリカンを含む細胞を有する被験体に、ノイラミニダーゼと組み合わせて、前記AAVウイルスベクターを送達する工程を含み、それによって、前記ノイラミニダーゼが、末端シアル酸を切断し、最後から二番目のβ−ガラクトースを末端β−ガラクトースに変換する、請求項1に記載の方法。
- 前記方法が、前記ノイラミニダーゼで前記被験体を前処置する工程を含む、請求項2に記載の方法。
- 前記方法が、前記AAVウイルスベクターおよびノイラミニダーゼを、実質的に同時に前記被験体に送達する工程を含む、請求項2に記載の方法。
- 前記AAVウイルスベクターが、前記ノイラミニダーゼをさらに含む担体で前記被験体に送達される、請求項4に記載の方法。
- 前記ノイラミニダーゼが、細菌ノイラミニダーゼまたはヒトノイラミニダーゼからなる群から選択される、請求項2〜5のいずれか一項に記載の方法。
- 前記末端近傍のβ−ガラクトース残基が、前記被験体において、AAV細胞表面受容体を有する第1サブセットの細胞で機能的に除去され、それによって、前記サブセットの細胞によるAAV取り込みが低下または消失し、AAVクレードF受容体を有する、前記被験体の第2サブセットの細胞がAAVの新たな標的になる、請求項1に記載の方法。
- 前記β−ガラクトースが酵素的に除去される、請求項1に記載の方法。
- 前記β−ガラクトースが、前記AAVベクターと組み合わせて、ガラクトシダーゼを前記第1サブセットの細胞に送達することにより酵素的に除去される、請求項8に記載の方法。
- 末端β−ガラクトース残基に結合するレクチンが、前記AAVベクターと組み合わせて、AAVクレードF受容体を天然に有する、被験体の第1サブセットの細胞に送達され、その結果、前記AAVベクターに結合する前記受容体の能力が、前記第1サブセットの細胞において機能的に除去され、前記AAVベクターが、AAVクレードF受容体を天然に有する、前記被験体の第2サブセットの細胞にターゲティングされる、請求項7に記載の方法。
- 前記レクチンが、カルシウム依存性レクチン、エリスリナ・クリスタガリ(Erythrina Cristagalli)レクチン(ECL)、マクロファージガラクトースレクチン(MGL)、ヒトスカベンジャー受容体C型レクチン(SRCL)、およびヒトマクロファージカルシウム依存性(C型)レクチンからなる群から選択される、請求項10に記載の方法。
- 前記MGLがヒトまたはラットのMGLから選択される、請求項1に記載の方法。
- 前記AAVベクターならびに末端シアル酸残基および末端近傍のβ−ガラクトース残基を有するグリカンを改変するための組成物が肺の中に注入される、請求項1〜12のいずれか一項に記載の方法。
- 前記カプシドがAAVクレードFカプシドから選択され、前記AAVクレードが、1000単離物当たり少なくとも75%のブートストラップ値および0.05以下のポアソン補正距離尺度による近隣結合ヒューリスティックを使用して決定された場合に、AAV9に系統発生的に関連する、請求項1〜13のいずれか一項に記載の方法。
- 前記クレードが、少なくともAAV hu.14/AAV9、hu.31、およびhu.32を含む、請求項14に記載の方法。
- 前記クレードが、AAV9またはその受容体結合ドメインを含有するAAVを含む、請求項14に記載の方法。
- 末端シアル酸残基および末端近傍のβ−ガラクトース残基を有するグリカンを含む細胞表面受容体を有する細胞において、アデノ随伴ウイルス(AAV)ベクターの遺伝子送達を増加させる方法であって、前記方法が、ノイラミニダーゼおよびAAV9細胞結合ドメインを含むカプシドを有するアデノ随伴ウイルス(AAV)ベクターを含む組合せ剤を被験体に送達する工程を含み、前記ベクターが、AAV逆方向末端反復配列を有するミニ遺伝子および宿主細胞においてその発現を指示する調節配列に作動的に連結された異種遺伝子をさらに含む方法。
- 前記AAVベクターがAAV9カプシドを含み、前記AAV9カプシドがアミノ酸203〜736を有するAAV9 vp3と少なくとも95%同一である、請求項17に記載の方法。
- 前記ノイラミニダーゼが前記AAVの送達前に前記被験体に送達される、請求項17に記載の方法。
- クレードF AAV由来のカプシドを有するアデノ随伴ウイルス(AAV)ウイルスベクターを単離するための方法であって、前記方法が、
固体担体に連結されたβ−ガラクトースを含む分子に接触させるように、クレードF AAV由来のカプシドを有する前記アデノ随伴ウイルス(AAV)ウイルスベクターを含む試料を曝露して、それによってβ−ガラクトースに対する結合部位を有する精製標的を、その分子に選択的に結合させる工程と、
前記固体担体を洗浄して、前記固体担体に非特異的に結合している物質を前記試料から除去する工程と、
前記固体担体から前記ウイルスベクターを分離する工程と
を含む方法。 - 前記分離されたウイルスベクターを濃縮する工程をさらに含む、請求項20に記載の方法。
- 前記固体担体がアフィニティークロマトグラフィーカラムに充填される、請求項20または21に記載の方法。
- (a)ノイラミニダーゼ、(b)AAVクレードFカプシドを有するアデノ随伴ウイルス(AAV)ベクターであって、前記ベクターが、AAV逆方向末端反復配列を有するミ
ニ遺伝子および宿主細胞においてその発現を指示する調節配列に作動的に連結された異種遺伝子をさらに含むベクター、および(c)薬学的に許容可能な担体の組合せを含む組成物。 - (a)レクチン、(b)AAVクレードFカプシドを有するアデノ随伴ウイルス(AAV)ベクターであって、前記ベクターが、AAV逆方向末端反復配列を有するミニ遺伝子および宿主細胞においてその発現を指示する調節配列に作動的に連結された異種遺伝子をさらに含むベクター、および(c)薬学的に許容可能な担体の組合せを含む組成物。
- 前記クレードFカプシドがAAV9細胞結合ドメインを含む、請求項23または24に記載の組成物。
- 前記AAVベクターがAAV9カプシドを含み、前記AAV9カプシドがアミノ酸203〜736にわたる配列番号123のアミノ酸と少なくとも95%同一である、請求項23〜25のいずれか一項に記載の組成物。
- 前記AAVが、1000単離物当たり少なくとも75%のブートストラップ値および0.05以下のポアソン補正距離尺度による近隣結合ヒューリスティックを使用して決定された場合に、AAV9に系統発生的に関連する、請求項26に記載の組成物。
- 前記AAVが、hu.31およびhu.32のカプシドから選択される、請求項27に記載の組成物。
- 前記ノイラミニダーゼが、細菌ノイラミニダーゼまたはヒトノイラミニダーゼからなる群から選択される、請求項23〜28のいずれか一項に記載の組成物。
- 操作されたAAV9細胞結合ドメインを含むAAVカプシドを有する組換えAAVベクターであって、前記AAV9細胞結合ドメインが、AAV9、配列番号1の番号付けに基づいた位置で、ガラクトース結合ドメインを形成するアミノ酸Y446、N470、A472、V473、D271、N272、およびW503を含み、これらのアミノ酸の1つまたは複数が、AAV9細胞結合ドメインが操作されたAAVカプシドにとって天然である別のアミノ酸に置換されている、組換えAAVベクター。
- 誘導気道に形質導入する野生型(wt)AAV9の天然の能力を実質的に低下または除去するように改変された組換えAAV9ベクターであって、前記ベクターが、配列番号1の位置に基づく位置271、446、および470からなる群から選択される天然AAV9アミノ酸が置換されているAAV9カプシドを有する、組換えAAV9ベクター。
- 前記天然AAV9アミノ酸がアラニンに置換される、請求項31に記載の組換えAAV9ベクター。
- 肝臓および心臓に形質導入する能力を保持させながら、気道上皮へのAAV9ベクターのターゲティングを消失させる方法であって、前記方法が、配列番号1の位置に基づく位置271、446、および470からなる群から選択される天然AAV9アミノ酸を別のアミノ酸に置換する工程を含む方法。
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