JP2013106618A - 胚性幹細胞分化を調整する方法 - Google Patents
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Abstract
【解決手段】胚の2細胞期および胚性幹細胞に特異的な発現を示す遺伝子Zscan4を記載する。Zscan4と共発現される9種の遺伝子の同定も記載する。Zscan4発現の阻害は、2細胞胚から4細胞胚への移行を阻害し、胚盤胞の着床、拡大およびアウトグロースを防止する。幹細胞の分化を阻害する方法、胚性幹細胞の胚盤胞アウトグロースを促進する方法、およびZscan4を発現する幹細胞の亜集団を同定する方法を提供する。桑実胚特異的な発現を示す遺伝子としてのTrim43の同定を記載する。また、異種ポリペプチドに機能的に連結されたZscan4プロモーターまたはTrim43プロモーターを含む、単離された発現ベクター、およびその使用も提供する。さらに、Zscan4プロモーターおよびTrim43プロモーターに機能的に連結されたマーカータンパク質をコードするトランスジーンを含むトランスジェニック動物も提供する。
【選択図】なし
Description
本願は、参照により完全に本明細書に組み入れられる2007年3月26日出願の米国仮出願
第60/920,215号に基づく優先権の恩典を主張する。
本願は、細胞分化の分野に関し、特に、本明細書に記載されるZscan4または一つもしく
は複数のZscan4共発現遺伝子の発現により同定され得る幹細胞の亜集団を同定し、使用す
る方法、およびZscan4を改変することにより分化を阻害し、生存能を延長する方法に関す
る。本願は、桑実胚期に高発現される遺伝子としてのTrim43の同定にも関する。
幹細胞は、神経系、骨髄、表皮、骨格筋、および肝臓を含むいくつかの体細胞組織にお
いて同定されている。この「保留された」細胞集団は、成体動物における個々の組織内の
ホメオスタシスの維持を担っていると考えられている。幹細胞の数およびそれらの分化決
定は、早期老化または腫瘍形成を回避するために、胚発生の間、そして成体動物において
厳密に制御されていなければならない。異なる体性幹細胞が、自己再生および多発達(mu
lti-developmental)潜在能力の特性を共有しており、このことから、共通の細胞機構の
存在が示唆される。
能性細胞であり、即ち、それらは体内に存在するあらゆる細胞(骨細胞、筋細胞、および
脳細胞等)を生成することができる。ES細胞は、発生中のマウス胚盤胞の内部細胞塊から
単離されている(Evanset al., Nature 292:154-156, 1981(非特許文献1);Martin et
al.,Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 78:7634-7636, 1981(非特許文献2);Robertson
et al.,Nature 323:445-448, 1986(非特許文献3);Doetschman et al., Nature 330:
576-578, 1987(非特許文献4);およびThomaset al., Cell 51 :503-512, 1987(非特
許文献5);米国特許第5,670,372号(特許文献1))。さらに、ES細胞特性を有するヒト
細胞が、内部胚盤胞細胞塊(Thomson et al., Science 282:1145-1147, 1998(非特許文
献6))および発生中の生殖細胞(Shamblottet al., Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 9
5:13726-13731,1998(非特許文献7))から最近単離された(米国特許第6,090,622号(
特許文献2)、PCT公開第WO00/70021号(特許文献3)および第WO00/27995号(特許文献4)
も参照のこと)。
かしながら、発生中の組織における複雑なシグナルのネットワークの中で、分化を阻害し
、増殖を増加させるよう機能する個々の遺伝子産物を同定した研究は、ほとんど存在しな
い。
胚の2細胞期の間に、かつ胚性幹細胞において特異的に発現される遺伝子としてのZscan
4の同定が、本明細書に記載される。さらに、発生中の胚においてZscan4と類似の発現パ
ターンを示すZscan4共発現遺伝子の同定が、本明細書に記載される。また、胚発生の桑実
胚期において豊富に発現される遺伝子としてのTrim43の同定も、本明細書に記載される。
、本明細書に提供される。一つの態様において、幹細胞の分化の阻害は、幹細胞の生存能
を増加させる。もう一つの態様において、幹細胞の分化の阻害は、幹細胞の老化を防止す
る。本明細書に記載されるように、幹細胞は、胚性幹細胞、胚性生殖細胞、生殖系列幹細
胞、または多分化能性成体前駆細胞を含むが、これらに限定はされない、任意の型の幹細
胞であり得る。
ウトグロース(outgrowth)を促進することを含む、胚性幹細胞の胚盤胞アウトグロース
を促進する方法も、本明細書に提供される。
をトランスフェクトすることを含む、Zscan4を発現する幹細胞の未分化亜集団を同定する
方法が、提供される。ここで、レポーター遺伝子の発現は、Zscan4が幹細胞の亜集団にお
いて発現されていることを示す。一つの態様において、プロモーターはZscan4cプロモー
ターである。
ターも、提供される。一つの態様において、Zscan4プロモーターはZscan4cプロモーター
である。もう一つの態様において、異種ポリペプチドは、マーカー、酵素、または蛍光性
タンパク質である。また、異種ポリペプチドに機能的に連結されたTrim43プロモーターを
含む発現ベクターも提供される。いくつかの態様において、Trim43プロモーターは、SEQ
ID NO:31として示される核酸配列の少なくとも一部を含む。本明細書に記載された発現ベ
クターを含む単離された胚性幹細胞も、提供される。
68777およびPif1のうちの一つまたは複数の発現を検出することを含む、Zscan4を発現す
る幹細胞の未分化亜集団を同定する方法も、提供される。この方法に従って同定された単
離された幹細胞も提供される。
例えば、本願発明は以下の項目を提供する。
(項目1)
幹細胞におけるZscan4の発現を増加させ、それにより幹細胞の分化を阻害する工程を含
む、幹細胞の分化を阻害する方法。
(項目2)
Zscan4の発現の増加が、Zscan4a、Zscan4b、Zscan4c、Zscan4d、Zscan4e、Zscan4f、ヒ
トZSCAN4、またはそれらの組み合わせの発現の増加を含む、項目1記載の方法。
(項目3)
細胞におけるZscan4の発現の増加が、プロモーターに機能的に連結されたZscan4をコー
ドする核酸により幹細胞をトランスフェクトすることを含む、項目1または2記載の方法
。
(項目4)
Zscan4をコードする核酸がSEQID NO:61を含む、項目3記載の方法。
(項目5)
Zscan4をコードする核酸が、Zscan4c(SEQID NO:19)、Zscn4d(SEQ ID NO:21)、ま
たはZscan4f(SEQID NO:25)と少なくとも95%同一である、項目3記載の方法。
(項目6)
プロモーターが構成性プロモーターである、項目3〜5のいずれか一項記載の方法。
(項目7)
プロモーターが誘導性プロモーターである、項目3〜5のいずれか一項記載の方法。
(項目8)
Zscan4をコードする核酸を含むベクターにより細胞をトランスフェクトする工程を含む
、項目3〜5のいずれか一項記載の方法。
(項目9)
ベクターがウイルスベクターである、項目8記載の方法。
(項目10)
幹細胞の分化の阻害が、幹細胞の生存能を増加させる、項目1〜9のいずれか一項記載
の方法。
(項目11)
幹細胞の分化の阻害が、幹細胞の老化を防止する、項目1〜9のいずれか一項記載の方
法。
(項目12)
幹細胞が、胚性幹細胞、胚性生殖細胞、生殖系列幹細胞、または多分化能性成体前駆細
胞である、項目1〜11のいずれか一項記載の方法。
(項目13)
胚性幹細胞におけるZscan4の発現を増加させ、それにより胚性幹細胞の胚盤胞アウトグ
ロース(outgrowth)を促進する工程を含む、胚性幹細胞の胚盤胞アウトグロースを促進
する方法。
(項目14)
Zscan4の発現の増加が、Zscan4a、Zscan4b、Zscan4c、Zscan4d、Zscan4e、Zscan4f、ヒ
トZSCAN4、またはそれらの組み合わせの発現の増加を含む、項目13記載の方法。
(項目15)
細胞におけるZscan4の発現の増加が、プロモーターに機能的に連結されたZscan4をコー
ドする核酸により幹細胞をトランスフェクトすることを含む、項目13または14記載の方
法。
(項目16)
Zscan4をコードする核酸がSEQID NO:61を含む、項目15記載の方法。
(項目17)
Zscan4をコードする核酸が、Zscan4c(SEQID NO:19)、Zscn4d(SEQ ID NO:21)、ま
たはZscan4f(SEQID NO:25)と少なくとも95%同一である、項目15記載の方法。
(項目18)
プロモーターが構成性プロモーターである、項目15〜17のいずれか一項記載の方法。
(項目19)
プロモーターが誘導性プロモーターである、項目15〜17のいずれか一項記載の方法。
(項目20)
Zscan4をコードする核酸を含むベクターにより細胞をトランスフェクトする工程を含む
、項目15〜17のいずれか一項記載の方法。
(項目21)
ベクターがウイルスベクターである、項目20記載の方法。
(項目22)
Zscan4プロモーターとレポーター遺伝子とを含む発現ベクターにより細胞をトランスフ
ェクトする工程を含む、Zscan4を発現する幹細胞の亜集団を同定する方法であって、レポ
ーター遺伝子の発現により、Zscan4が幹細胞の亜集団において発現していることが示され
る、方法。
(項目23)
Zscan4プロモーターがZscan4cプロモーターである、項目22記載の方法。
(項目24)
Zscan4cプロモーターが、SEQID NO:28のヌクレオチド1〜2540として示される核酸配列
を含む、項目23記載の方法。
(項目25)
Zscan4cプロモーターが、SEQID NO:28のヌクレオチド1〜2643として示される核酸配列
を含む、項目23記載の方法。
(項目26)
Zscan4cプロモーターが、SEQID NO:28のヌクレオチド1〜3250として示される核酸配列
を含む、項目23記載の方法。
(項目27)
Zscan4cプロモーターが、SEQID NO:28のヌクレオチド1〜3347として示される核酸配列
を含む、項目23記載の方法。
(項目28)
発現ベクターが、SEQ ID NO:28として示される核酸配列を含む、項目22記載の方法。
(項目29)
異種ポリペプチドをコードする核酸に機能的に連結されたZscan4cプロモーターを含む
、単離された発現ベクター。
(項目30)
Zscan4cプロモーターが、SEQID NO:28のヌクレオチド1〜2540として示される核酸配列
を含む、項目29記載の単離された発現ベクター。
(項目31)
Zscan4cプロモーターが、SEQID NO:28のヌクレオチド1〜2643として示される核酸配列
を含む、項目29記載の単離された発現ベクター。
(項目32)
Zscan4cプロモーターが、SEQID NO:28のヌクレオチド1〜3250として示される核酸配列
を含む、項目29記載の単離された発現ベクター。
(項目33)
Zscan4cプロモーターが、SEQID NO:28のヌクレオチド1〜3347として示される核酸配列
を含む、項目29記載の単離された発現ベクター。
(項目34)
ポリペプチドが、マーカー、酵素、または蛍光性タンパク質である、項目29〜33のい
ずれか一項記載の単離された発現ベクター。
(項目35)
ベクターがウイルスベクターである、項目29〜34のいずれか一項記載の単離された発
現ベクター。
(項目36)
ベクターがプラスミドベクターである、項目29〜34のいずれか一項記載の単離された
発現ベクター。
(項目37)
項目29〜36のいずれか一項記載の発現ベクターを含む、単離された胚性幹細胞。
(項目38)
異種ポリペプチドをコードする核酸に機能的に連結されたTrim43プロモーターを含む、
単離された発現ベクター。
(項目39)
Trim43プロモーターがSEQID NO:31として示される核酸配列を含む、項目38記載の単
離された発現ベクター。
(項目40)
ポリペプチドが、マーカー、酵素、または蛍光性タンパク質である、項目38または39
記載の単離された発現ベクター。
(項目41)
ベクターがウイルスベクターである、項目38〜40のいずれか一項記載の単離された発
現ベクター。
(項目42)
ベクターがプラスミドベクターである、項目38〜40のいずれか一項記載の単離された
発現ベクター。
(項目43)
項目38〜42のいずれか一項記載の発現ベクターを含む単離された胚性幹細胞。
(項目44)
AF067063、Tcstv1/Tcstv3、Tho4、アルギナーゼII、BC061212およびGm428、Eif1a、EG6
68777およびPif1のうちの一つまたは複数の発現を検出する工程を含む、Zscan4を発現す
る幹細胞の亜集団を同定する方法。
(項目45)
項目40記載の方法に従い同定された、単離された幹細胞。
くつかの態様の詳細な説明から、より明白になるだろう。
I. 略語
CDS コーディング配列
CMV サイトメガロウイルス
DNA デオキシリボ核酸
d.p.c. 交尾後日数
EC 胚性癌腫
EG 胚性生殖
ES 胚性幹
GS 生殖系列幹
GFP 緑色蛍光タンパク質
hCG ヒト絨毛性ゴナドトロピン
ICM 内部細胞塊
IVF 体外受精
LIF 白血病抑制因子
maGSC 多分化能性成体生殖系列幹細胞
MAPC 多分化能性成体前駆細胞
PCR ポリメラーゼ連鎖反応
qRT-PCR 定量的逆転写酵素ポリメラーゼ連鎖反応
RNA リボ核酸
siRNA 低分子干渉RNA
TS 栄養膜幹
USSC 非拘束体性幹細胞
ZGA 接合子ゲノム活性化
特記しない限り、技術用語は、慣例的用法に従って使用される。分子生物学における一
般的な用語の定義は、Oxford University Press出版のBenjamin Lewin, Genes V(1994)
(ISBN0-19-854287-9);Blackwell Science Ltd.出版のKendrew et al. (eds.), The E
ncyclopedia ofMolecular Biology(1994)(ISBN 0-632-02182-9);およびVCH Publis
hers, Inc.出版のRobertA. Meyers (ed.), Molecular Biology and Biotechnology:a Co
mprehensive DeskReference(1995)(ISBN 1-56081-569-8)に見出され得る。
化。物質の量は、産生される物質の量の差違により、所望の機能を有する物質の量の差違
により、または物質の活性化の差違により、変化し得る。変化は増加または減少であり得
る。改変は、インビボまたはインビトロであり得る。いくつかの態様において、ポリペプ
チドまたはポリヌクレオチドの有効量の改変は、物質の有効量(レベル)の少なくとも約
50%、60%、70%、80%、90%、95%、96%、97%、98%、99%、または100%の増加ま
たは減少である。ポリペプチドまたはポリペプチドの有効量の改変には、細胞におけるZs
can4の発現の増加が含まれる。もう一つの態様において、ポリペプチドまたはポリヌクレ
オチドの改変は、細胞の分化、増殖、または生存能のような細胞の生理学的特性に影響を
与える。例えば、幹細胞におけるZscan4の発現の増加は、分化を阻害し、幹細胞の生存能
を促進する。
れは、内部細胞塊または胚結節および外部細胞塊または栄養膜を保有している。ヒト胚盤
胞は、70〜100個の細胞を含む。本明細書において使用されるように、胚盤胞アウトグロ
ースとは、胚盤胞の内部細胞塊に由来する胚性幹細胞を培養する過程をさす。胚盤胞アウ
トグロースの促進とは、胚盤胞に由来する胚性幹細胞の生存能および増殖の増強をさす。
る調節配列を欠くDNA片。cDNAは、細胞から抽出されたメッセンジャーRNAからの逆転写に
より実験室において合成される。
発現遺伝子」とも呼ばれる)は、胚発生の間に、ES細胞においてZscan4と類似の発現パタ
ーンを示す遺伝子である。特に、共発現遺伝子は、Zscan4と同一のES細胞の未分化亜集団
において発現され、胚発生の間、これらの遺伝子は、2細胞期において最も豊富に発現さ
れる。AF067063、Tcstv1/Tcstv3、Tho4、アルギナーゼII、BC061212およびGm428、Eif1a
、EG668777およびPif1を含む、9種の共発現遺伝子が、本明細書に記載される。しかしな
がら、共発現遺伝子には、本明細書に開示されたものに限定されず、Zscan4と類似の発現
パターンを示す任意の遺伝子が含まれる。
NO:34)は、886塩基対長であり、マウス特異的であると考えられるいくつかの仮説タンパ
ク質(例えば、SEQID NO:35)をコードする3個のエキソンへと組織化されている。
る。BC061212の全長cDNA配列(SEQID NO:36)は、1625塩基対長であり、481残基長のタ
ンパク質(SEQID NO:37)をコードする4個のエキソンへと組織化されている。
ID NO:38)は、1325塩基対長であり、360残基長のタンパク質(SEQID NO:39)をコード
する5個のエキソンへと組織化されている。
おいて、そして一酸化窒素合成のダウンレギュレーションにおいて役割を果たし得る。ア
ルギナーゼIIの全長cDNA配列(SEQID NO:40)は、1415塩基対長であり、354残基長のタ
ンパク質(SEQID NO:41)をコードする8個のエキソンへと組織化されている。
)は858塩基対長であり、171残基のタンパク質(SEQID NO:43)をコードする2個のエキ
ソンを含有している。Tsctv3の全長cDNA配列(SEQ ID NO:44)は、876塩基対長であり、1
69残基のタンパク質(SEQID NO:45)をコードする1個のエキソンを含有している。この
タンパク質のファミリーは、およそ170残基長のいくつかの仮説タンパク質からなり、マ
ウスに特異的であると考えられる。
るRNA認識モチーフ(RRM)および核小体低分子リボ核タンパク質(snRNP)のタンパク質
成分を有するタンパク質をコードする。Tho4の全長cDNA配列(SEQ ID NO:46)は、811塩
基対長であり、163残基長のタンパク質(SEQID NO:47)をコードする3個のエキソンへと
組織化されている。
48)は、2881塩基対長であり、144アミノ酸のタンパク質(SEQID NO:49)をコードする
。
遺伝子である。EG668777の全長cDNA配列(SEQID NO:50)は1918塩基対長であり、547残
基のタンパク質(SEQID NO:51)をコードする1個のエキソンを含有している。
塩基対長であり、650アミノ酸のタンパク質(SEQID NO:53)をコードする12個のエキソ
ンを含有している。
のようなポリペプチドをコードするポリヌクレオチド。20種の天然アミノ酸が存在し、そ
の大部分が複数のコドンにより特定される。従って、ヌクレオチド配列によりコードされ
るポリペプチドのアミノ酸配列が不変である限り、全ての縮重ヌクレオチド配列が含まれ
る。
。本開示の情況において、胚性幹細胞の分化とは、特定の細胞系統に向けた細胞の発達を
さす。細胞は、より分化するにつれて、分化能、または複数の異なる細胞型になる能力を
失う。本明細書において使用されるように、分化の阻害とは、特定の系統への細胞の発達
の防止または遅延を意味する。
」は任意の生物に由来し得る。ES細胞は哺乳動物に由来し得る。一つの態様において、ES
細胞は、マウス、ラット、ウサギ、モルモット、ヤギ、ブタ、ウシ、サル、およびヒトか
ら作製される。ヒトおよびマウスに由来するES細胞が好ましい。ES細胞は、多能性細胞で
ある、即ち、体内に存在するあらゆる細胞(骨細胞、筋細胞、および脳細胞等)を発生さ
せることができる。マウスES細胞を作製する方法は、参照により本明細書に組み入れられ
る米国特許第5,670,372号に見出され得る。ヒトES細胞を作製する方法は、参照により本
明細書において組み入れられる米国特許第6,090,622号、PCT公開第WO00/70021号、および
PCT公開第WO00/27995号に見出され得る。
「増大」または「増大した」という用語は、この過程をさす。「増殖する」、「増殖」、
または「増殖した」という用語は、「増大する」、「増大」、または「増大した」という
単語と交換可能に使用され得る。典型的には、増大の間、細胞は成熟細胞を形成するよう
分化しない。
クターの能力を破壊することなく、外来核酸の挿入を可能にする核酸分子である。ベクタ
ーは、複製起点のような宿主細胞における複製を許容する核酸配列を含むことができる。
ベクターは、一つまたは複数の選択可能マーカー遺伝子およびその他の遺伝要素も含むこ
とができる。発現ベクターとは、挿入された遺伝子の転写および翻訳を可能にするために
必要な調節配列を含有しているベクターである。
するポリペプチドまたはポリヌクレオチドをさす。
生物または真核生物であり得る。この用語は、本宿主細胞の子孫も含む。複製の間に起こ
る変異が存在するかもしれないため、全ての子孫が親細胞と同一ではないかもしれないこ
とが理解される。しかしながら、そのような子孫も、「宿主細胞」という用語が使用され
る場合、含まれる。
生物の細胞、即ち、他の染色体および染色体外のDNAおよびRNAから実質的に分離または精
製されている。従って、「単離された」という用語には、標準的な核酸精製法により精製
された核酸が包含される。その用語には、宿主細胞における組み換え発現により調製され
た核酸も、化学的に合成された核酸も包含される。同様に、「単離された」タンパク質は
、そのタンパク質が天然に存在している生物の細胞の他のタンパク質から実質的に分離ま
たは精製されており、宿主細胞における組み換え発現により調製されたタンパク質も、化
学的に合成されたタンパク質も包含する。
ることはできない細胞をさす。
シ、および家禽のような家畜、イヌ、ネコ、ウマ、ハムスターのような競技動物もしくは
ペット、マウスのようなげっ歯動物、またはライオン、トラ、もしくはクマのような動物
園動物が含まれるが、これらに限定はされない。一例において、非ヒト動物は、トランス
ジェニックのマウス、ウシ、ヒツジ、またはヤギのようなトランスジェニック動物である
。非限定的な一つの具体例において、トランスジェニック非ヒト動物はマウスである。
合、その第一の核酸配列はその第二の核酸配列と機能的に連結されている。例えば、プロ
モーターがコーディング配列の転写または発現に影響を与える場合、そのプロモーターは
そのコーディング配列と機能的に連結されている。一般に、機能的に連結された核酸配列
は、連続しており、二つのタンパク質コーディング領域を接合する必要がある場合には、
同一のリーディングフレーム内にある。
ton'sPharmaceutical Sciences, by E. W. Martin, Mack Publishing Co., Easton, PA,
15thEdition (1975)は、本明細書に開示された融合タンパク質の薬学的送達のために適
している組成物および製剤を記載している。
製剤は、通常、水、生理食塩水、平衡塩溶液、水性デキストロース、グリセロール等のよ
うな薬学的かつ生理学的に許容される液体を媒体として含んでいる注入可能な液体を含む
。固形組成物(例えば、散剤、丸剤、錠剤、またはカプセル剤)の場合、従来の非毒性の
固形担体には、例えば、薬学的等級のマンニトール、ラクトース、デンプン、またはステ
アリン酸マグネシウムが含まれ得る。生物学的に中性の担体に加えて、投与される薬学的
組成物は、湿潤剤または乳化剤、保存剤、およびpH緩衝剤等、例えば、酢酸ナトリウムま
たはソルビタンモノラウレートのような微量の非毒性の補助物質を含有することができる
。
効果を誘導することができる化学的化合物、低分子、またはその他の組成物。「インキュ
ベートすること」は、薬物が細胞と相互作用するために十分な量の時間を含む。「接触さ
せること」は、固形または液状の薬物を細胞と共にインキュベートすることを含む。
てを形成することができるが、完全な生物を自律的に形成することはできない細胞をさす
。
オチドには、オリゴヌクレオチドが含まれ、染色体に見出される遺伝子配列も含まれる。
「オリゴヌクレオチド」とは、ネイティブのリン酸ジエステル結合により接合された複数
の接合されたヌクレオチドである。オリゴヌクレオチドは6〜300ヌクレオチド長のポリヌ
クレオチドである。オリゴヌクレオチドアナログとは、オリゴヌクレオチドと同様に機能
するが、天然には存在しない部分を有するモエティをさす。例えば、オリゴヌクレオチド
アナログは、ホスホロチオエートオリゴデオキシヌクレオチドのような改変された糖モエ
ティまたは糖間結合のような天然には存在しない部分を含有していてもよい。天然に存在
するポリヌクレオチドの機能的アナログは、RNAまたはDNAに結合することができ、ペプチ
ド核酸(PNA)分子を含む。
。アミノ酸がアルファ-アミノ酸である場合、L-光学異性体またはD-光学異性体のいずれ
かが使用され得るが、L-異性体が好ましい。本明細書において使用されるような「ポリペ
プチド」または「タンパク質」という用語は、任意のアミノ酸配列を包含し、糖タンパク
質のような修飾された配列を含むものとする。「ポリペプチド」という用語には、特に、
天然に存在するタンパク質も、組み換えまたは合成により作製されたものも内含されるも
のとする。
プチドの部分をさす。「ポリペプチドの機能的断片」という用語は、Zscan4のようなポリ
ペプチドの活性を保持しているポリペプチドの断片全てをさす。生物学的に機能的な断片
は、例えば、抗体分子に結合することができるエピトープのような小さいポリペプチド断
片から、細胞内の表現型変化の特徴的な誘導またはプログラミングに関与することができ
る、例えば、細胞の増殖または分化に影響することができる大きなポリペプチドまで、様
々なサイズであり得る。「エピトープ」とは、抗原との接触に応答して生成した免疫グロ
ブリンに結合することができるポリペプチドの領域である。従って、Zscan4またはZscan4
の保存的バリアントの生物学的活性を含有している、より小さいペプチドは、有用なもの
として含まれる。
、それが天然に関連している他のタンパク質、脂質、炭水化物、またはその他の材料が実
質的に除去されているポリペプチドをさす。一つの態様において、ポリペプチドは、それ
が天然に関連している他のタンパク質、脂質、炭水化物、またはその他の材料が少なくと
も50%、例えば、少なくとも80%除去されている。もう一つの態様において、ポリペプチ
ドは、それが天然に関連している他のタンパク質、脂質、炭水化物、またはその他の材料
が少なくとも90%除去されている。さらにもう一つの態様において、ポリペプチドは、そ
れが天然に関連している他のタンパク質、脂質、炭水化物、またはその他の材料が少なく
とも95%除去されている。
ドされたタンパク質の機能的および免疫学的な同一性を保存するために、最小限に抑えら
れるべきである。従って、いくつかの非限定的な例において、Zscan4ポリペプチドまたは
本明細書に開示されたその他のポリペプチドは、高々2個、高々5個、高々10個、高々20個
、または高々50個の保存的置換を含む。タンパク質の免疫学的同一性は、それが抗体によ
り認識されるか否かを決定することにより査定され得;そのような抗体により認識される
バリアントは、免疫学的に保存されている。cDNA配列バリアントは、好ましくは、20個以
下、好ましくは10個以下のアミノ酸置換をコードされたポリペプチドへ導入するであろう
。バリアントのアミノ酸配列は、ネイティブアミノ酸配列と、例えば、少なくとも80%、
90%、またはさらには95%もしくは98%同一であり得る。
リダイゼーションにより相補的な標的DNA鎖とアニールし、次いで、DNAポリメラーゼ酵素
により標的DNA鎖に沿って伸長される短い核酸、例えば、10ヌクレオチド以上の長さのDNA
オリゴヌクレオチド。プライマー対は、例えば、当技術分野において公知のポリメラーゼ
連鎖反応(PCR)またはその他の核酸増幅法により、核酸配列の増幅のために使用され得
る。
パク質をコードすることが示されている核酸配列の少なくとも10ヌクレオチドを含み得る
。特異性を増強するため、開示された核酸配列の15、20、30、40、50、60、70、80、90、
または100個の連続ヌクレオチドを含むプローブおよびプライマーのような、より長いプ
ローブおよびプライマーも利用され得る。プローブおよびプライマーを調製し使用する方
法は、参照、例えば、Sambrook et al. (1989) Molecular Cloning:A Laboratory Manual
, Cold SpringHarbor, New York;Ausubel et al. (1987) Current Protocols in Molec
ular Biology,Greene Publ. Assoc. & Wiley-Intersciences;Innis et al. (1990) PCR
Protocols,A Guide to Methods and Applications, Innis et al. (Eds.), Academic P
ress, SanDiego, CAに記載されている。PCRプライマー対は、例えば、Primer(バージョ
ン0.5,1991, Whitehead Institute for Biomedical Research, Cambridge, MA)のよう
なその目的のためのコンピュータプログラムを使用することにより、公知の配列から導出
され得る。
ローブまたはプライマーが、ストリンジェントな条件の下で、実質的に、標的配列を含む
所定の試料の中の標的配列にのみハイブリダイズすることを示す。
幹細胞の正常な成長および/または生存が可能である持続時間の拡張をさす。
。プロモーターは、転写開始部位の近くの必要な核酸配列を含む。プロモーターは、任意
で、遠位のエンハンサー要素またはリプレッサー要素も含む。「構成性プロモーター」と
は、絶えず活性であり、外部のシグナルまたは分子による調節を受けないプロモーターで
ある。対照的に、「誘導性プロモーター」の活性は、外部のシグナルまたは分子(例えば
、転写因子)により調節される。
関心対象の遺伝子または核酸配列に機能的に連結された遺伝子である。レポーター遺伝子
は、関心対象の遺伝子もしくは核酸が、細胞において発現されているか否か、または細胞
において活性化されているか否かを決定するために使用される。レポーター遺伝子は、典
型的には、蛍光のような容易に同定可能な特徴、または酵素のような容易にアッセイされ
る産物を有する。レポーター遺伝子は、宿主細胞に抗生物質耐性を付与することもできる
。一つの態様において、レポーター遺伝子は蛍光性タンパク質Emeraldをコードする。も
う一つの態様において、レポーター遺伝子は蛍光性タンパク質Strawberryをコードする。
ない。
個の娘細胞を産生する)、かつ特殊な細胞型を与える(分化能)特有の能力を有する細胞
。幹細胞には、ES細胞、EG細胞、GS細胞、MAPC、maGSC、およびUSSCが含まれるが、これ
らに限定はされない。一つの態様において、幹細胞は、複数の所定の細胞型の完全に分化
した機能細胞を生成させることができる。インビボの幹細胞の役割は、動物の正常な生活
の間に破壊される細胞を交換することである。一般に、幹細胞は無限に***することがで
きる。***の後、幹細胞は、幹細胞として残存するか、前駆細胞になるか、または最終分
化に進むことができる。前駆細胞とは、少なくとも一つの所定の細胞型の完全に分化した
機能細胞を生成させることができる細胞である。一般に、前駆細胞は***することができ
る。***の後、前駆細胞は、前駆細胞として残存するか、または最終分化に進むことがで
きる。
する幹細胞の「亜集団」とは、Zscan4を発現していることが同定された所定の集団の中の
幹細胞の一部分である。一つの態様において、亜集団は、Zscan4プロモーターおよびレポ
ーター遺伝子を含む発現ベクターを使用して同定される。ここで、細胞におけるレポータ
ー遺伝子の発現の検出が、細胞がZscan4を発現しており、亜集団の一部であることを示す
。本明細書に記載されるように、Zscan4を発現するES細胞の亜集団は、さらに、AF067063
、Tcstv1/Tcstv3、Tho4、アルギナーゼII、BC061212およびGm428、Eif1a、EG668777およ
びPif1を含む、本明細書に開示された一つまたは複数の遺伝子の共発現により同定され得
る。
胞)のみがこの能力を保有する(幹細胞は保有しない)
殖系列DNAに(即ち、その細胞の大部分もしくは全部のゲノム配列に)安定的に組み込ま
れた非内因性(異種)核酸配列を有する非ヒト動物、通常、哺乳動物。異種核酸は、例え
ば、当技術分野において周知の方法により、宿主動物の胚または胚性幹細胞の遺伝子操作
により、そのようなトランスジェニック動物の生殖系列へ導入される。「トランスジーン
」とは、(例えば「ノックイン」トランスジェニック動物の作製のための)発現構築物の
形態の異種核酸、または(例えば「ノックアウト」トランスジェニック動物の作製のため
の)標的遺伝子の内部もしく隣接部への挿入により標的遺伝子発現の減少をもたらす異種
核酸のような、そのような異種核酸をさすものである。
する過程をさす。トランスフェクションは、以下に限定はされないが、リポソーム媒介ト
ランスフェクション、電気穿孔、および注入のような、多数の方法のうちのいずれかによ
り達成され得る。
ことが本明細書において同定された遺伝子。Trim43のヌクレオチド配列およびアミノ酸配
列は、それぞれSEQID NO:32およびSEQ ID NO:33として本明細書に提供される。
された遺伝子の群。マウスにおいて、「Zscan4」という用語は、3種の偽遺伝子(Zscan1-
ps1、Zscan4-ps2、およびZscan4-ps3)、ならびに6種の発現遺伝子(Zscan4a、Zscan4b、
Zscan4c、Zscan4d、Zscan4e、およびZscan4f)を含む遺伝子の集合をさす。本明細書にお
いて使用されるように、Zscan4は、ヒトZSCAN4も含む。Zscan4は、Zscan4ポリペプチドお
よびZscan4ポリペプチドをコードするZscan4ポリヌクレオチドをさす。
、本発明が属する技術分野の当業者により一般的に理解されるのと同一の意味を有する。
単数形「一つの(a)」、「一つの(an)」、および「その(the)」は、文脈がそうでな
いことを明白に示さない限り、複数の対象を含む。同様に、「または」という単語は、文
脈がそうでないことを明白に示さない限り、「および」を含むものとする。従って、「A
またはBを含む」とは、A、またはB、またはAおよびBを含むことを意味する。核酸または
ポリペプチドについて与えられた全ての塩基サイズまたはアミノ酸サイズおよび全ての分
子量または分子量値が、近似であり、説明のために提供されていることが、さらに理解さ
れるべきである。本明細書に記載されたものと類似しているかまたは等価である方法およ
び材料が、本発明の実施または試行において使用され得るが、好適な方法および材料が以
下に記載される。本明細書中に言及された全ての刊行物、特許出願、特許、およびその他
の参照が、参照により完全に組み入れられる。矛盾する場合には、用語の説明を含む本明
細書が適用されるであろう。さらに、材料、方法、および例は、例示的なものであり、限
定するためのものではない。
胚性幹細胞を含む幹細胞のような細胞の分化の阻害および増殖の増加において有用なZs
can4ポリペプチドおよびこれらのポリペプチドをコードするポリヌクレオチドが、本明細
書に開示される。未分化状態の幹細胞、特に、ES細胞は、以前には比較的均質の細胞集団
であると考えられていた。しかしながら、未分化ES細胞の中の独特の細胞集団の存在を確
立し、これらの細胞を同定し単離する手段を提供する、幹細胞の亜集団におけるZscan4の
独特の発現が、本明細書に記載される。また、未分化ES細胞亜集団においてZscan4と共発
現される9種の遺伝子の同定も、本明細書に記載される。これらの遺伝子には、AF067063
、Tcstv1/Tcstv3、Tho4、アルギナーゼII、BC061212およびGm428、Eif1a、EG668777およ
びPif1が含まれる。さらに、桑実胚特異的な遺伝子発現を示す遺伝子としてのTrim43の同
定が、本明細書に記載される。
ことが、本明細書に開示される。3種の偽遺伝子(Zscan4-ps1、Zscan4-ps2、およびZscan
4-ps3)ならびに6種の発現遺伝子(Zscan4a、Zscan4b、Zscan4c、Zscan4d、Zscan4e、お
よびZscan4f)を含む、Zscan4関連遺伝子の属が存在する。Zscan4属は、ヒトZSCAN4も含
む。さらに、AF067063、Tcstv1/Tcstv3、Tho4、アルギナーゼII、BC061212およびGm428、
Eif1a、EG668777およびPif1が、胚発生の間にZscan4と共発現されることが、本明細書に
開示される。これらの遺伝子は、Zscan4と同様に、胚発生の間に、2細胞期において最も
豊富に発現される。
方法が、本明細書に提供される。本明細書に記載されるように、Zscan4の使用は、Zscan4
a、Zscan4b、Zscan4c、Zscan4d、Zscan4e、Zscan4f、およびヒトZSCAN4を含む任意のZsca
n4遺伝子の使用を含む。いくつかの態様において、Zscan4遺伝子は、Zscan4c(SEQID NO
:19)、Zscan4d(SEQID NO:21)、またはZscan4f(SEQ ID NO:25)と少なくとも90%、
少なくとも95%、少なくとも96%、少なくとも97%、少なくとも98%、または少なくとも
99%同一である。もう一つの態様において、Zscan4遺伝子はSEQID NO:60を含む。
方法に従って達成され得る。一つの態様において、幹細胞におけるZscan4の発現の増加は
、プロモーターに機能的に連結されたZscan4をコードするヌクレオチドにより幹細胞をト
ランスフェクトすることを含む。プロモーターは、構成性プロモーターまたは誘導性プロ
モーターを含む任意の型のプロモーターであり得る。一つの態様において、幹細胞は、プ
ロモーターに機能的に連結されたZscan4をコードするヌクレオチド配列を含むベクターに
よりトランスフェクトされる。ベクターは、ウイルスベクターまたはプラスミドベクター
のような任意の型のベクターであり得る。一つの態様において、Zscan4ヌクレオチド配列
は、Zscan4c(SEQID NO:19)、Zscan4d(SEQ ID NO:21)、またはZscan4f(SEQ ID NO:2
5)と少なくとも90%、少なくとも95%、少なくとも96%、少なくとも97%、少なくとも9
8%、または少なくとも99%同一である。もう一つの態様において、Zscan4ヌクレオチド
配列はSEQ IDNO:60を含む。
存能を増加させる。もう一つの態様において、幹細胞の分化の阻害は、幹細胞の老化を防
止する。本明細書に記載されるように、幹細胞は、胚性幹細胞、胚性生殖細胞、生殖系列
幹細胞、または多分化能性成体前駆細胞を含むが、これらに限定はされない、任意の型の
幹細胞であり得る。
ロースを促進することを含む、胚性幹細胞の胚盤胞アウトグロースを促進する方法も、本
明細書に提供される。胚盤胞アウトグロースの促進は、アウトグロースの効率の増加、ま
たは胚盤胞アウトグロースに起因する胚性幹細胞の数の増加を含み得る。一つの態様にお
いて、方法は、胚盤胞アウトグロースの初期の間に、例えば、幹細胞の増殖前に、細胞に
おけるZscan4の発現を増加させることを含む。本明細書に記載されるように、Zscan4には
、Zscan4a、Zscan4b、Zscan4c、Zscan4d、Zscan4e、Zscan4f、およびヒトZSCAN4を含む任
意のZscan4遺伝子が含まれる。一つの態様において、Zscan4遺伝子は、Zscan4c(SEQID
NO:19)、Zscan4d(SEQID NO:21)、またはZscan4f(SEQ ID NO:25)と少なくとも90%
、少なくとも95%、少なくとも96%、少なくとも97%、少なくとも98%、または少なくと
も99%同一である。もう一つの態様において、Zscan4遺伝子はSEQID NO:60を含む。
連結されたZscan4をコードするヌクレオチド配列により幹細胞をトランスフェクトするこ
とを含む。プロモーターは、誘導性プロモーターまたは構成性プロモーターを含む任意の
型のプロモーターであり得る。一つの態様において、細胞は、プロモーターに機能的に連
結されたZscan4をコードするヌクレオチドを含むベクターによりトランスフェクトされる
。ベクターは、ウイルスベクターまたはプラスミドベクターを含む任意の型のベクターで
あり得る。
フェクトすることを含む、Zscan4を発現する幹細胞の亜集団を同定する方法も提供される
。ここで、レポーター遺伝子の発現は、Zscan4が幹細胞の亜集団において発現されている
ことを示す。一つの態様において、プロモーターはZscan4cプロモーターである。もう一
つの態様において、Zscan4cプロモーターは、SEQID NO:28のヌクレオチド1〜2643、1〜3
250、または1〜3347のような、SEQID NO:28のヌクレオチド1〜2540として示された核酸
配列を含む。もう一つの態様において、発現ベクターは、SEQ ID NO:28として示された核
酸配列を含む。本明細書に記載されるように、Zscan4を発現するES細胞の亜集団は、未分
化状態にある。さらに、AF067063、Tcstv1/Tcstv3、Tho4、アルギナーゼII、BC061212お
よびGm428、Eif1a、EG668777およびPif1のような一つまたは複数のZscan4共発現遺伝子の
発現を検出することにより、ES細胞の未分化亜集団を同定する方法が提供される。これら
の遺伝子の発現の検出は、例えば、RT-PCR、ノーザンブロット、またはインサイチューハ
イブリダイゼーションのような、当技術分野において周知の任意の手段を使用して達成さ
れ得る。さらに、この方法に従って同定された、単離された幹細胞が提供される。
む単離された発現ベクターも、提供される。一つの態様において、Zscan4プロモーターは
Zscan4cプロモーターである。もう一つの態様において、Zscan4cプロモーターは、SEQID
NO:28のヌクレオチド1〜2643、1〜3250、または1〜3347のようなSEQID NO:28のヌクレ
オチド1〜2540として示された核酸配列を含む。もう一つの態様において、異種ポリペプ
チドは、マーカー、酵素、または蛍光性タンパク質である。発現ベクターは、ウイルスベ
クターまたはプラスミドベクターを含むが、これらに限定はされない、任意の型のベクタ
ーであり得る。
ES細胞が、さらに提供される。一つの態様において、Zscan4プロモーターはZscan4cプロ
モーターである。もう一つの態様において、Zscan4cプロモーターは、SEQ ID NO:28のヌ
クレオチド1〜2643、1〜3250、または1〜3347のようなSEQID NO:28のヌクレオチド1〜25
40として示された核酸配列を含む。もう一つの態様において、異種ポリペプチドは、マー
カー、酵素、または蛍光性タンパク質である。一つの態様において、蛍光性タンパク質は
Emeraldである。
む単離された発現ベクターも、提供される。一つの態様において、Trim43プロモーターは
、SEQ IDNO:31として示された核酸配列の少なくとも一部を含む。発現ベクターに含まれ
るSEQ IDNO:31の一部は、Trim43が発現される細胞における異種ポリペプチドの転写を促
進することができるSEQID NO:31の少なくとも一部である。いくつかの態様において、Tr
im43プロモーター配列は、SEQID NO:31と少なくとも70%、少なくとも80%、少なくとも
90%、少なくとも95%、または少なくとも99%同一である。もう一つの態様において、Tr
im43プロモーターはSEQID NO:31を含む。もう一つの態様において、Trim43プロモーター
はSEQ IDNO:31からなる。いくつかの態様において、異種ポリペプチドは、マーカー、酵
素、または蛍光性タンパク質である。一例において、蛍光性タンパク質はStrawberryであ
る。発現ベクターは、ウイルスベクターまたはプラスミドベクターを含むが、これらに限
定はされない、任意の型のベクターであり得る。
ターを含有しているES細胞も、提供される。一つの態様において、Trim43プロモーターは
、SEQ IDNO:31として示された核酸配列の少なくとも一部を含む。いくつかの態様におい
て、Trim43プロモーター配列は、SEQID NO:31と少なくとも70%、少なくとも80%、少な
くとも90%、少なくとも95%、または少なくとも99%同一である。もう一つの態様におい
て、Trim43プロモーターはSEQID NO:31を含む。もう一つの態様において、Trim43プロモ
ーターはSEQID NO:31からなる。もう一つの態様において、異種ポリペプチドは、マーカ
ー、酵素、または蛍光性タンパク質である。一例において、蛍光性タンパク質はStrawber
ryである。
Zscan4a、Zscan4b、Zscan4c、Zscan4d、Zscan4e、Zscan4f、またはヒトZSCAN4を特異的に
認識する。AF067063、Tcstv1/Tcstv3、Tho4、アルギナーゼII、BC061212およびGm428、Ei
f1a、EG668777、またはPif1によりコードされたポリペプチドの少なくとも一部に対して
産生された抗体を含む、各Zscan4共発現遺伝子に特異的な抗体も、提供される。
るトランスジェニック動物も、本明細書に記載される。一つまたは複数のZscan4共発現遺
伝子のポリヌクレオチド配列を含むトランスジーンを保持しているトランスジェニック動
物も、提供される。そのようなトランスジェニック動物には、トランスジェニックマウス
が含まれるが、これに限定はされない。
ランスジーン)を含むトランスジェニック非ヒト動物が、さらに提供される。いくつかの
態様において、異種ポリペプチドは、マーカー、酵素、または蛍光性タンパク質である。
一例において、異種ポリペプチドは、蛍光性タンパク質である。一例において、蛍光性タ
ンパク質はEmeraldである。一つの態様において、Zscan4プロモーターはZscan4cプロモー
ターである。もう一つの態様において、Zscan4cプロモーターは、SEQ ID NO:28のヌクレ
オチド1〜2643、1〜3250、または1〜3347のようなSEQID NO:28のヌクレオチド1〜2540と
して示された核酸配列を含む。
能的に連結された異種ポリペプチドをコードする核酸配列をさらに含む。一つの態様にお
いて、Trim43プロモーターは、SEQID NO:31として示される核酸配列を含む。異種ポリペ
プチドは、例えば、マーカー、酵素、または蛍光性タンパク質であり得る。一つの態様に
おいて、異種ポリペプチドは、蛍光性タンパク質である。一例において、蛍光性タンパク
質はStrawberryである。いくつかの態様において、トランスジェニック非ヒト動物はトラ
ンスジェニックマウスである。
に提供される。一つの態様において、トランスジェニック非ヒト動物はトランスジェニッ
クマウスである。
幹細胞の分化を阻害する方法が、本明細書に開示される。幹細胞の生存能を増加させ、
かつ/または増殖を誘導する方法も、本明細書に開示される。幹細胞の老化を阻害する方
法も、本明細書に提供される。方法は、細胞におけるZscan4ポリペプチドのレベルを改変
し、それにより、細胞の分化を阻害し、かつ/または増殖を誘導し、かつ/または細胞の
老化を阻害することを含む。細胞はインビボまたはインビトロであり得る。
細書において示される。Zscan4発現の阻害は、また、胚盤胞の拡大および着床を防止し、
胚盤胞からの胚性幹細胞のアウトグロースを防止する。さらに、胚性幹細胞において、Zs
can4発現は、未分化幹細胞の亜集団にのみ検出される。従って、Zscan4の発現は、ES細胞
の生存能および増殖にとって必要な、未分化状態でのES細胞の維持において重要な役割を
果たしている。Zscan4は、胚盤胞からのES細胞のアウトグロースを可能にするためにも重
要である。従って、分化を阻害し、生存能を増加させ、幹細胞の老化を防止するために、
幹細胞におけるZscan4の発現を増加させる方法が、本明細書に提供される。本明細書に提
供される方法は、ES細胞の胚盤胞アウトグロースを促進するためにZscan4の発現を増加さ
せることも含む。
。一例において、Zscan4の発現は、対照と比較して増加させられる。増加した発現には、
Zscan4 mRNAまたはポリペプチドの少なくとも約30%、50%、75%、100%、または200%
の増加のような(これらに限定はされない)、対照と比較した細胞中のZscan4 mRNAまた
はポリペプチドの量の少なくとも20%の増加が含まれるが、これに限定はされない。好適
な対照には、野生型幹細胞のような、Zscan4発現を改変する薬剤と接触させられていない
か、またはZscan4をコードするベクターによりトランスフェクトされていない細胞が含ま
れる。好適な対照には、標準値も含まれる。例示的なZscan4アミノ酸配列は、SEQ ID NO:
16(Zscan4a)、SEQID NO:18(Zscan4b)、SEQ ID NO:20(Zscan4c)、SEQ ID NO:22(Z
scan4d)、SEQ IDNO:24(Zscan4e)、SEQ ID NO:26(Zscan4f)、およびSEQ ID NO:30(
ヒトZSCAN4)として配列表に示される。
たは30に示されたアミノ酸配列に少なくとも約80%、85%、90%、95%、または99%相同
なアミノ酸配列を含むポリペプチドが含まれる。さらなる態様において、Zscan4ポリペプ
チドは、SEQID NO:16、18、20、22、24、26、または30の中に2個以下、5個以下、10個以
下、20個以下、または50個以下の保存的アミノ酸置換のような、50個以下の保存的アミノ
酸置換を含んでいるような、SEQ ID NO:16、18、20、22、24、26、または30の保存的バリ
アントである。もう一つの態様において、Zscan4ポリペプチドは、SEQ ID NO:16、18、20
、22、24、26、または30に示されるようなアミノ酸配列を有する。
易に調製され得る。一つの態様において、Zscan4ポリペプチドの断片は、Zscan4ポリペプ
チドの少なくとも8個、10個、15個、または20個の連続アミノ酸を含む。もう一つの態様
において、Zscan4ポリペプチドの断片は、全長Zscan4上に見出される特定の抗原性エピト
ープを含む。さらなる態様において、Zscan4の断片は、関心対象の細胞へ移入された場合
に、以下に限定はされないが、細胞の分化の阻害または増殖の増加のようなZscan4の機能
を付与する断片である。
Zscan4ポリペプチドを精製することができる。実質的に純粋なポリペプチドは、非還元ポ
リアクリルアミドゲル上で単一の主要なバンドを与えるであろう。Zscan4ポリペプチドの
純度は、アミノ末端アミノ酸配列分析によっても決定され得る。
カウンターパートポリペプチドと比較して実質的に等価な活性を有するペプチドをもたら
し得る。そのような修飾は、部位特異的変異誘発によるもののような計画的なものである
かもしれないし、または自発的なものであるかもしれない。これらの修飾により作製され
たポリペプチドは、全て、本明細書に含まれる。
ク質を容易に作製することができる。任意で、リンカーが、Zscan4ポリペプチドと第二の
関心対象のポリペプチドとの間に含まれていてもよい。融合タンパク質には、Zscan4ポリ
ペプチドおよびマーカータンパク質を含むポリペプチドが含まれるが、これに限定はされ
ない。一つの態様において、マーカータンパク質は、Zscan4ポリペプチドを同定または精
製するために使用され得る。例示的な融合タンパク質は、緑色蛍光タンパク質、6ヒスチ
ジン残基、またはmycと、Zscan4ポリペプチドとを含むが、これらに限定はされない。
クレオチドと呼ばれる。これらのポリヌクレオチドには、Zscan4をコードするDNA配列、c
DNA配列、およびRNA配列が含まれる。Zscan4ポリペプチドをコードするポリヌクレオチド
は、全て、Zscan4ポリペプチドを認識する抗体との結合、または細胞の分化もしくは増殖
の調整のような認識された活性を有するポリペプチドをコードする限り、本明細書に含ま
れることが理解される。ポリヌクレオチドには、遺伝暗号の結果として縮重している配列
が含まれる。20種の天然アミノ酸が存在するが、その大部分は複数のコドンにより特定さ
れる。従って、ヌクレオチド配列によりコードされたZscan4ポリペプチドのアミノ酸配列
が、機能的に不変である限り、全ての縮重ヌクレオチド配列が含まれる。Zscan4ポリヌク
レオチドは、本明細書に開示されるようなZscan4ポリペプチドをコードする。Zscan4をコ
ードする例示的なポリヌクレオチド配列は、SEQ ID NO:12(Zscan4-ps1)、SEQ ID NO:13
(Zscan4-ps2)、SEQID NO:14(Zscan4-ps3)、SEQ ID NO:15(Zscan4a)、SEQ ID NO:1
7(Zscan4b)、SEQID NO:19(Zscan4c)、SEQ ID NO:21(Zscan4d)、SEQ ID NO:23(Zs
can4e)、SEQ IDNO:25(Zscan4f)、およびSEQ ID NO:29(ヒトZSCAN4)として配列表に
示される。
、Zscan4d(SEQID NO:21)、またはZscan4f(SEQ ID NO:25)と少なくとも90%、少なく
とも95%、少なくとも96%、少なくとも97%、少なくとも98%、または少なくとも99%同
一である。もう一つの態様において、Zscan4遺伝子はSEQ ID NO:60を含む。
または原核生物もしくは真核生物のゲノムDNAに組み入れられているか、または他の配列
から独立して別の分子(例えば、cDNA)として存在している組換えDNAが含まれる。ヌク
レオチドは、リボヌクレオチド、デオキシリボヌクレオチド、またはいずれかのヌクレオ
チドの修飾型であり得る。その用語には、一本鎖型および二本鎖型のDNAが含まれる。ま
た、生理学的条件下で、開示されたZscan4ポリペプチド(例えば、SEQ ID NO:16、18、20
、22、24、26、または30をコードするポリヌクレオチド)をコードするDNAに、断片が選
択的にハイブリダイズすることを許容するのに十分な、少なくとも15塩基長の上記核酸配
列の断片が、この開示に含まれる。「選択的にハイブリダイズする」という用語は、無関
係のヌクレオチド配列を排除する中程度または高度にストリンジェントな条件の下でのハ
イブリダイゼーションをさす。
鎖の使用が、本明細書において企図される。Zscan4ポリヌクレオチドまたはそれらの相補
鎖の断片は、一つまたは複数のZscan4タンパク質の発現を阻害するためのsiRNA分子とし
て設計され得る。一つの態様において、siRNA化合物はZscan4偽遺伝子の断片である。siR
NAを調製し使用する方法は、参照により本明細書に組み入れられる米国特許第6,506,559
号に一般に開示されている(参照により本明細書に組み入れられるMilhavet et al., Pha
rmacologicalReviews 55:629-648, 2003;およびGitlin et al., J. Virol. 77:7159-71
65, 2003による概説も参照のこと)。siRNAの二本鎖構造は、単一の自己相補的なRNA鎖ま
たは二つの相補的なRNA鎖により形成され得る。
またはヌクレオシドのいずれかに修飾を含んでいてもよい。例えば、天然RNAのホスホジ
エステル結合は、ヘテロ原子である窒素または硫黄のうちの少なくとも一つを含むよう修
飾され得る。RNA構造の修飾は、dsRNAにより発生するいくつかの生物における全身パニッ
ク応答を回避しつつ、特異的な遺伝子阻害を可能にするために調整され得る。同様に、塩
基は、アデノシンデアミナーゼの活性を阻止するために修飾され得る。
いう点で、阻害は配列特異的である。標的配列の一部と同一のヌクレオチド配列を含有し
ている核酸が、阻害に使用され得る。標的配列と比べて挿入、欠失、および単一点変異を
有するRNA配列も、阻害のために有効であることが見出されている。配列同一性は、当技
術分野において公知のアラインメントアルゴリズム、およびヌクレオチド配列間の差違率
の計算により最適化され得る。または、RNAの二重鎖領域は、標的遺伝子転写物の一部と
ハイブリダイズすることができるヌクレオチド配列として機能的に定義され得る。
(Gribskovand Devereux, Sequence Analysis Primer, Stockton Press, 1991、および
その中に引用された参照を参照のこと)、ならびに、例えば、デフォルトパラメーターを
使用してBESTFITソフトウェアプログラムにおいて実行されるようなSmith-Watermanアル
ゴリズム(例えば、Universityof Wisconsin Genetic Computing Group)によるヌクレ
オチド配列間の差違率の計算によって最適化され得る。阻害RNAと特定の標的遺伝子配列
の一部との間の90%を越える配列同一性、またはさらには100%の配列同一性が、好まし
い。または、RNAの二重鎖領域は、特定の標的遺伝子の一部とハイブリダイズすることが
できるヌクレオチド配列として機能的に定義され得る(例えば、400mM NaCl、40mM PIPES
pH6.4、1mMEDTA、50℃または70℃での12〜16時間のハイブリダイゼーション;それに続
く洗浄)。同一のヌクレオチド配列の長さは、少なくとも20、25、50、100、200、300、
または400塩基であり得る。RNAとZscan4との間の100%の配列同一性は、本発明の方法を
実施するために必要とはされない。
;または、細胞外に、空洞、間質空間、生物の循環系へ導入されてもよいし、経口導入さ
れてもよいし、またはRNAを含有している溶液に生物を浸すことにより導入されてもよい
。核酸を導入する物理的方法には、RNAを含有している溶液の注入、RNAにより覆われた粒
子の照射、RNAの溶液への細胞もしくは生物の浸漬、またはRNAの存在下での細胞膜の電気
穿孔が含まれる。ウイルス粒子へパッケージングされたウイルス構築物は、発現構築物を
細胞へ効率的に導入することができ、発現構築物によりコードされたRNAの転写を提供す
ることができる。脂質媒介担体輸送、リン酸カルシウムのような化学物質媒介輸送等のよ
うな、細胞に核酸を導入するための当技術分野において公知のその他の方法も、使用され
得る。従って、RNAは、以下の活性のうちの一つまたは複数を実施する成分と共に導入さ
れ得る:細胞によるRNA取り込みを増強する、二重鎖のアニーリングを促進する、アニー
ルされた鎖を安定化する、または標的遺伝子の阻害を増加させる。
ンビボで転写を媒介することができ、またはクローニングされたRNAポリメラーゼが、イ
ンビボもしくはインビトロで、転写のために使用され得る。インビボのトランスジーンま
たは発現構築物からの転写のためには、調節領域が、(1つまたは複数の)RNA鎖を転写す
るために使用され得る。RNAは、手動の反応または自動化された反応により化学的にまた
は酵素的に合成され得る。RNAは、細胞RNAポリメラーゼまたはバクテリオファージRNAポ
リメラーゼ(例えば、T3、T7、SP6)により合成され得る。発現構築物の使用および作製
は、当技術分野において公知である(例えば、PCT公開WO97/32016;米国特許第5,593,874
号、第5,698,425号、第5,712,135号、第5,789,214号、および第5,804,693号;ならびにそ
の中に引用された参照)。化学的にまたはインビトロ酵素的合成により合成された場合、
RNAは、細胞への導入の前に精製され得る。例えば、RNAは、溶媒もしくは樹脂を用いた抽
出、沈殿、電気泳動、クロマトグラフィ、またはそれらの組み合わせにより混合物から精
製され得る。または、RNAは、試料加工による損失を回避するため、精製することなく、
または最小限の精製により使用され得る。RNAは、保管のために乾燥させられるか、また
は水性溶液に溶解させられ得る。溶液は、二重鎖のアニーリングおよび/または安定化を
促進するため緩衝剤または塩を含有していてもよい。
ーに含まれ得る。従って、適当なプロモーター、エンハンサー、転写ターミネーター、タ
ンパク質をコードする遺伝子の前の開始コドン(即ち、ATG)、イントロンのためのスプ
ライシングシグナル、mRNAの適切な翻訳を許容するためのその遺伝子の正確なリーディン
グフレームの維持、および終止コドンを含むその他の発現制御配列が、発現ベクターに含
まれ得る。一般に、発現制御配列には、転写を指図するのに十分な最小の配列、プロモー
ターが含まれる。
選択を可能にする特別な遺伝子(例えば、抗生物質耐性カセット)を含有している。使用
に適しているベクターには、哺乳動物細胞における発現のためのpMSXND発現ベクター(Le
e and Nathans,J. Biol. Chem. 263:3521, 1988)が含まれるが、これに限定はされない
。一般に、発現ベクターはプロモーターを含むであろう。プロモーターは誘導性または構
成性であり得る。プロモーターは組織特異的であり得る。好適なプロモーターには、チミ
ジンキナーゼプロモーター(TK)、メタロチオネインI、多面体、ニューロン特異的エノ
ラーゼ、チロシンヒドロキシラーゼ、ベータ-アクチン、またはその他のプロモーターが
含まれる。一つの態様において、プロモーターは異種プロモーターである。
位置する。任意で、エンハンサー要素も含まれており、一般に、ベクター上のいかなる場
所に位置付けられても、増強効果を有することができる。しかしながら、増加した活性の
量は、一般に、距離と共に縮小するであろう。
ために使用され得る。宿主には、単離された微生物、酵母、昆虫、および哺乳動物の細胞
のみならず、生物内に位置する細胞も含まれる。宿主における発現および複製が可能な生
物学的に機能的なウイルスベクターおよびプラスミドDNAベクターは、当技術分野におい
て公知であり、任意の関心対象の細胞をトランスフェクトするために使用され得る。細胞
が哺乳動物細胞である場合、遺伝子変化は、一般に、細胞ゲノムへのDNAの導入(即ち、
安定的)、またはエピソームとしてのDNAの導入により達成される。従って、宿主細胞は
、Zscan4ポリペプチドを作製するために使用され得る。または、発現ベクターは、幹細胞
のような関心対象の宿主細胞を形質転換するために使用され得る。
術によって導入されている細胞(またはその子孫細胞)である。組換えDNAによる宿主細
胞のトランスフェクションは、当技術分野において周知であるような従来の技術により実
施され得る。宿主が大腸菌のような原核生物である場合には、DNA取り込みの可能なコン
ピテント細菌が、指数増殖期の後に採集された細胞から調製され、続いて当技術分野にお
いて周知の手法を使用したCaCl2法により処理され得る。または、MgCl2またはRbClが使用
されてもよい。所望により、宿主細胞のプロトプラストを形成した後、または電気穿孔に
よって、形質転換が実施されてもよい。
な従来の機械的手法、電気穿孔、リポソームに包まれたプラスミドの挿入、またはウイル
スベクターのようなDNAのトランスフェクションの方法が使用され得る。真核細胞は、Zsc
an4をコードするDNA配列と、ネオマイシン耐性のような選択可能な表現型をコードする第
二の外来DNA分子とで共形質転換されてもよい。もう一つの方法は、真核細胞を一過性に
感染または形質転換し、タンパク質を発現させるために、シミアンウイルス40(SV40)ま
たはウシパピローマウイルスのような真核生物ウイルスベクターを使用することである(
例えば、EukaryoticViral Vectors, Cold Spring Harbor Laboratory, Gluzman ed., 19
82を参照のこと)。ウイルスベクターのその他の非限定的な具体例には、アデノウイルス
ベクター、レンチウイルスベクター、レトロウイルスベクター、および仮性狂犬病ベクタ
ーが含まれる。
の分化を誘導し、または増殖を減少させることが可能である。一つの態様において、細胞
は、以下に限定はされないが、胚性幹細胞、生殖系列幹細胞、または多分化能性成体前駆
細胞のような幹細胞である。いくつかの例において、Zscan4ポリペプチド、またはZscan4
ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドが、分化を減少させ、かつ/または増殖を増
加させるために幹細胞へ導入される。
たはヒトの細胞が利用され得る。ES細胞は、未分化状態で無限に増殖することができる。
さらに、ES細胞は全能性細胞である。即ち、それらは、体内に存在するあらゆる細胞(骨
細胞、筋細胞、脳細胞等)を発生させることができる。ES細胞は、発生中のマウス胚盤胞
の内部細胞塊(ICM)から単離されている(Evanset al., Nature 292:154-156, 1981;M
artin et al.,Proc. Natl. Acad. Sci. 78:7634-7636, 1981;Robertson et al, Nature
323:445-448,1986)。さらに、ES特性を有するヒト細胞が、内部胚盤胞細胞塊(Thomso
n et al.,Science 282:1145-1147, 1998)および発生中の生殖細胞(Shamblott et al,
Proc. Natl.Acad. Sci. USA 95:13726-13731, 1998)から単離され、ヒトおよび非ヒト
霊長類の胚性幹細胞が作製されている(参照により本明細書に組み入れられる米国特許第
6,200,806号を参照のこと)。
作製され得る。一つの態様において、霊長類ES細胞はSSEA-3;SSEA-4、TRA-1-60、および
TRA-1-81を発現する単離された「ES培地」である(米国特許第6,200,806号を参照のこと
)。ES培地は、20%ウシ胎仔血清(FBS;Hyclone)、0.1mMβ-メルカプトエタノール(S
igma)、1%非必須アミノ酸ストック(GibcoBRL)を含む、80%ダルベッコ修飾イーグル
培地(DMEM;ピルビン酸不含高グルコース製剤、GibcoBRL)からなる。一般に、霊長類E
S細胞は、ES細胞培地の存在下でマウス胚性繊維芽細胞のコンフルエントな層の上に単離
される。一例において、胚性繊維芽細胞は、(SASCOより入手可能なCF1のような)非近交
系マウスに由来する12日齢胎仔から入手されるが、その他の株が代用されてもよい。0.1
%ゼラチン(I型;Sigma)により処理された組織培養ディッシュが利用され得る。成体に
存在するコミットされた「多分化能性」幹細胞と比較して、ES細胞を区別する特色には、
培養物中で未分化状態を無限に維持するES細胞の能力、およびES細胞が有する全ての異な
る細胞型へと発達する潜在能力が含まれる。マウスES細胞とは異なり、ヒトES(hES)細
胞は、期特異的な胚性抗原SSEA-1を発現せず、特異的なモノクローナル抗体により認識さ
れるもう一つの糖脂質細胞表面抗原であるSSEA-4を発現する(例えば、Amit et al., Dev
el. Biol.227:271-278, 2000を参照のこと)。
の証拠について毎日観察する(周期1日目=月経開始日)。月経周期8日目から開始する卵
胞期の間、毎日、血液試料を採取し、黄体形成ホルモンの血清濃度をラジオイムノアッセ
イにより決定する。月経周期9日目から黄体形成ホルモンサージの48時間後まで、雌を、
立証された繁殖能を有する雄アカゲザルと対にし;黄体形成ホルモンサージの翌日に***
を採取する。***後6日目、拡大した胚盤胞を、非外科的子宮フラッシングにより収集す
る。この手法は、一般に、1ヶ月にアカゲザル1匹につき平均0.4〜0.6個の生存可能な胚の
回収をもたらす(Seshagiriet al., Am J Primatol 29:81-91, 1993)。
殖性の雄および最大5匹の子孫を含む家族内で維持する。黄体期の中期から後期の間、0.7
5gのプロスタグランジンPGF2aアナログクロプロステノール(Estrumate,Mobay Corp, Sh
awnee, KS)を筋肉注入することにより、卵巣周期を制御する。0日目(クロプロステノー
ル注入直前)、3日目、7日目、9日目、11日目、および13日目に血液試料を採取する。血
漿プロゲステロン濃度をELISAにより決定する。血漿プロゲステロン濃度が10ng/ml以上に
なる前日を***日とする。***後8日目、拡大した胚盤胞を、非外科的子宮フラッシュ法
(Thomsonet al., J Med Primatol. 23:333-336, 1994)により回収する。この手法は、
1ヶ月にマーモセット1匹につき平均1.0個の生存可能な胚の作製をもたらす。
手術(immunosurgery)のため、胚盤胞を、30分間、DMEM中の50倍希釈のウサギ抗マーモ
セット脾臓細胞抗血清(マーモセット胚盤胞のため)または50倍希釈のウサギ抗アカゲザ
ル(アカゲザル胚盤胞のため)に曝し、次いで、DMEMで5分間3回洗浄し、次いで5倍希釈
のモルモット補体(Gibco)に3分間曝す。DMEMでさらに2回洗浄した後、穏和なピペッテ
ィングにより、完全な内部細胞塊(ICM)から、溶解した栄養外胚葉細胞を除去し、ICMを
マウス不活性化(3000ラドのガンマ照射)胚性繊維芽細胞に播種する。
る塊を内胚葉アウトグロースから除去し、3〜5分間、1%ニワトリ血清が補足された0.05
%トリプシン-EDTA(Gibco)に曝し、火炎研磨されたマイクロピペットによる穏和なピペ
ッティングにより穏和に分離させる。
て観察する。ES様の形態を示すコロニーを個別に選択し、上記のようにして再分割する。
ES様の形態とは、高い核・細胞質比および大きな核小体を有する緻密なコロニーと定義さ
れる。次いで、得られたES細胞を、その培養物が密になる1〜2週毎に短時間のトリプシン
処理またはダルベッコリン酸緩衝生理食塩水(カルシウムまたはマグネシウム不含および
2mM EDTA含有のPBS)への曝露により定期的に分割する。初期継代細胞も凍結し液体窒素
中に保管する。
Universityof Wisconsin State Hygiene Laboratoryによるもののような)標準的なGバ
ンディング(G-banding)技術により核型分析され、霊長類種の公開された核型と比較さ
れ得る。
胞への発達の速度は、種間で数日変動する場合があり、培養ICMの発達の速度が種間で変
動するであろう。例えば、***の6日後、アカゲザル胚は拡大胚盤胞期にあるが、マーモ
セット胚は***の7〜8日後まで同期に達しない。アカゲザルES細胞系は、免疫手術の7〜1
6日後に初めてICM由来細胞を分割することにより入手され得るが;マーモセットES細胞は
免疫手術の7〜10日後の初回分割により導出された。その他の霊長類も発達速度が異なっ
ているため、胚収集のタイミングおよび初回ICM分割のタイミングは、霊長類種間で変動
するが、同一の技術および培養条件が、ES細胞単離を可能にするであろう(霊長類ES細胞
についての完全な考察およびそれらの作製については、参照により本明細書に組み入れら
れる米国特許第6,200,806号を参照のこと)。
ES細胞も、体外受精(IVF)胚に由来する着床前胚から導出され得る。未使用のヒトIVFに
より作製された胚に対する実験は、胚が14日齢未満であれば、シンガポールおよび英国の
ような多くの国々で許可されている。高品質の胚のみがES単離に適している。1細胞ヒト
胚を拡大胚盤胞へと培養するための現在の規定培養条件は、記載されている(Bongso et
al., HumReprod. 4:706-713, 1989を参照のこと)。ヒト胚をヒト卵管細胞と共培養する
ことは、高い胚盤胞品質の作製をもたらす。細胞共培養物または改良された規定培地にお
いて成長したIVF由来拡大ヒト胚盤胞は、非ヒト霊長類に関して上に記載された同一の手
法によりヒトES細胞の単離を可能にする(米国特許第6,200,806号を参照のこと)。
知の方法を使用して、多様な起源から単離され得る。前駆細胞は、外胚葉、中胚葉、また
は内胚葉の起源であり得る。インビトロで入手され維持され得る任意の前駆細胞が、本発
明の方法に従って使用される可能性を有する。そのような細胞には、皮膚および消化管の
裏打ちのような上皮組織の細胞、胚性心筋細胞、ならびに神経前駆細胞が含まれる(Stem
ple andAnderson, 1992, Cell 71 :973-985)。
組織を生じる(Caplan,J. Orth. Res 641-650, 1991)。骨および軟骨に分化することが
できる間葉細胞も、骨髄から単離されている(Caplan, J. Orth. Res. 641-650, 1991)
。米国特許第5,226,914号は、骨髄から間葉系幹細胞を単離するための例示的な方法を記
載している。
eth. Cell Bio.21A:229, 1980)により、ケラチノサイトが、皮膚および消化管の裏打ち
のような組織から入手されてもよい。皮膚のような重層上皮組織においては、基底板に最
も近い層、胚層内の前駆細胞の有糸***により再生が起こる。消化管の裏打ち内の前駆細
胞は、この組織の迅速な再生速度を提供する。細胞は、肝臓幹細胞(PCT公開WO94/08598
を参照のこと)または腎臓幹細胞(Karp et al., Dev. Biol. 91:5286-5290, 1994を参照
のこと)であってもよい。
、ニューロンおよび膠細胞を生じる神経芽細胞およびグリオブラスト(glioblasts)に分
化する。発達の間に、神経管に由来する細胞は、CNSのニューロンおよび神経膠を生じる
。神経増殖因子(NGF)のような発達の間に存在するある種の因子は、神経細胞の成長を
促進する。神経幹細胞および前駆細胞を単離し培養する方法は、当業者に周知である(Ha
zel and Muller,1997;米国特許第5,750,376号)。ニューロン前駆細胞を単離し培養す
る方法は、例えば、米国特許第6,610,540号に開示されている。
Zscan4プロモーターまたはTrim43プロモーターは、異種核酸配列の発現を指図するため
に発現ベクターに含まれ得る。適当なエンハンサー、転写ターミネーター、タンパク質を
コードする遺伝子の前の開始コドン(即ち、ATG)、イントロンのためのスプライシング
シグナル、mRNAの適切な翻訳を許容するその遺伝子の正確なリーディングフレームの維持
、および終止コドンを含むその他の発現制御配列が、Zscan4プロモーターまたはTrim43プ
ロモーターと共に、発現ベクターに含まれ得る。一般に、プロモーターは、異種核酸配列
の転写を指図するのに十分な最小配列を少なくとも含む。いくつかの例において、異種核
酸配列はポリペプチドをコードする。しかしながら、異種核酸は、阻害性RNAのような任
意の関心対象のRNA配列であり得る。
する特別の遺伝子も含有している。使用に適しているベクターには、哺乳動物細胞におけ
る発現のためのpMSXND発現ベクター(Leeand Nathans, J. Biol. Chem. 263:3521, 1988
)が含まれるが、これに限定はされない。一例において、エンハンサーは、Zscan4プロモ
ーターまたはTrim43プロモーターの上流に位置するが、エンハンサー要素は、一般に、ベ
クター上のいかなる場所に位置付けられても増強効果を有することができる。しかしなが
ら、増加した活性の量は、一般に、距離と共に縮小するであろう。さらに、プロモーター
活性のさらに大きな増加を生じるため、2コピー以上のエンハンサー配列を順に機能的に
連結することが可能である。
対象のポリペプチドは、トランスフェクトされた細胞の機能に影響を与えるポリペプチド
のような異種ポリペプチドであり得る。関心対象のポリペプチドには、抗生物質耐性を付
与するポリペプチド、受容体、癌遺伝子、および神経伝達物質が含まれるが、これらに限
定はされない。関心対象のポリペプチドは、関心対象の細胞を同定するために使用される
マーカーポリペプチドであってもよい。マーカーポリペプチドには、従来の分子生物学手
法を使用して同定され得る、蛍光性ポリペプチド、酵素、または抗原が含まれる。例えば
、ポリペプチドは、(緑色蛍光タンパク質、Emerald(Invitrogen, Carlsbad, CA)、Str
awberry(Clontech,Mountain View, CA)、オワンクラゲ(Aequoria victoria)、もし
くはディスコソマ(Discosoma)DSRedのような)蛍光性マーカー;(ヒト成長ホルモン、
ヒトインスリン、ヒトHLA抗原のような)抗原性マーカー;(CD4もしくは任意の細胞表面
受容体のような)細胞表面マーカー;または(lacZ、アルカリホスファターゼのような)
酵素マーカーであり得る。宿主細胞におけるこれらのマーカーを同定するための技術は、
免疫組織化学および蛍光顕微鏡検を含み、当技術分野において周知である。
ペプチドに翻訳される必要はない。その他の関心対象の分子の非限定的な具体例には、関
心対照のRNAに相補的なアンチセンスRNA分子、リボザイム、低分子阻害性RNA、および天
然に存在するtRNAまたは修飾されたtRNAが含まれる。
転換するために使用され得る。宿主には、単離された微生物、酵母、昆虫、および哺乳動
物の細胞が含まれ、生物体内に位置している細胞も含まれる。宿主における発現および複
製が可能な生物学的に機能的なウイルスベクターおよびプラスミドDNAベクターは、当技
術分野において公知であり、任意の関心対象の細胞をトランスフェクトするために使用さ
れ得る。細胞が哺乳動物細胞である場合、遺伝子変化は、一般に、細胞ゲノムへのDNAの
導入(安定的組み込み)により達成される。しかしながら、ベクターは、エピソームとし
て維持されてもよい。
み換えDNA技術によって導入されている細胞(またはその子孫細胞)である。組換えDNAに
よる宿主細胞のトランスフェクションは、当技術分野において周知であるような従来の技
術により実施され得る。宿主が大腸菌のような原核生物である場合には、DNA取り込みの
可能なコンピテント細菌が、指数増殖期の後に採集された細胞から調製され、続いて当技
術分野において周知の手法を使用してCaCl2法により処理され得る。または、MgCl2または
RbClが使用されてもよい。所望により、宿主細胞のプロトプラストを形成した後、または
電気穿孔によって、形質転換が実施されてもよい。
手法、電気穿孔、リポソームに包まれたプラスミドの挿入、またはウイルスベクターのよ
うな、DNAのトランスフェクションの方法が使用され得る。真核細胞は、Zscan4プロモー
ターを含むDNA配列と、ネオマイシン耐性のような選択可能な表現型をコードする第二の
外来DNA分子とで共形質転換されてもよい。もう一つの方法は、真核細胞を一過性に感染
または形質転換し、タンパク質を発現させるために、シミアンウイルス40(SV40)または
ウシパピローマウイルスのような真核生物ウイルスベクターを使用することである(例え
ば、EukaryoticViral Vectors, Cold Spring Harbor Laboratory, Gluzman ed., 1982を
参照のこと)。ウイルスベクターのその他の非限定的な具体例には、アデノウイルスベク
ター、レンチウイルスベクター、レトロウイルスベクター、および仮性狂犬病ベクターが
含まれる。
Zsan4プロモーター配列を含む発現ベクターは、Zscan4を発現する細胞を同定するために
使用される。一つの態様において、Zscan4プロモーターはZscan4cプロモーターである。
いくつかの態様において、Zscan4cプロモーターは、Zsan4cのエキソンおよび/またはイ
ントロン配列を含む。異種タンパク質は、典型的には、マーカー、酵素、または蛍光性タ
ンパク質である。一つの態様において、異種タンパク質は、緑色蛍光タンパク質(GFP)
、またはEmeraldのようなGFPのバリアントである。
において、亜集団は、Zscan4プロモーター配列およびレポーター遺伝子を含む発現ベクタ
ーにより幹細胞をトランスフェクトすることにより同定される。一つの態様において、Zs
can4プロモーターはZscan4cプロモーターである。もう一つの態様において、Zscan4cプロ
モーターは、SEQID NO:28のヌクレオチド1〜2643、1〜3250、または1〜3347のようなSEQ
ID NO:28のヌクレオチド1〜2540として示された核酸配列を含む。
ーであり得る。一つの態様において、レポーター遺伝子は、GFP、またはEmeraldのような
GFPのバリアントである。レポーター遺伝子の発現は、細胞がZscan4を発現することを示
す。レポーター遺伝子の発現を検出する方法は、レポーター遺伝子の型に依って変動し、
当技術分野において周知である。例えば、蛍光性レポーターが使用される場合、発現の検
出は、蛍光標示式細胞分取または蛍光顕微鏡検により達成され得る。Zscan4を発現する幹
細胞の亜集団の同定は、Zscan4に対して特異的な抗体の使用またはインサイチューハイブ
リダイゼーションを含むが、これらに限定はされない、別の方法によっても達成され得る
。一つの態様において、Zscan4を発現するES細胞の亜集団は、AF067063、Tcstv1/Tcstv3
、Tho4、アルギナーゼII、BC061212およびGm428、Eif1a、EG668777およびPif1を含む一つ
または複数のZscan4共発現遺伝子の発現を検出することにより同定される。
ターも、本明細書に記載される。異種タンパク質は、典型的には、マーカー、酵素、また
は蛍光性タンパク質である。一つの態様において、異種タンパク質は蛍光性タンパク質St
rawberryである。いくつかの態様において、Trim43プロモーター配列は、SEQID NO:31と
少なくとも70%、少なくとも80%、少なくとも90%、少なくとも95%、または少なくとも
99%同一である。もう一つの態様において、Trim43プロモーターはSEQID NO:31を含む。
もう一つの態様において、Trim43プロモーターはSEQ ID NO:31からなる。
されたES細胞が、本明細書に提供される。一つの態様において、ES細胞は安定的な細胞系
である。
本明細書に開示されたZscan4ポリヌクレオチド配列は、下記のように、トランスジェニ
ックマウスのようなトランスジェニック動物の作製においても使用され得る。AF067063、
Tcstv1/Tcstv3、Tho4、アルギナーゼII、BC061212およびGm428、Eif1a、EG668777およびP
if1を含む、一つまたは複数のZscan4共発現遺伝子のポリヌクレオチド配列を含有してい
るトランスジェニック動物も作製され得る。
むトランスジーンを保持している非ヒト動物が作成される。有用な特定のプロモーターに
は、免疫グロブリンプロモーター、ニューロン特異的プロモーター、またはインスリンプ
ロモーターのような組織特異的プロモーターが含まれるが、これらに限定はされない。有
用な特定のプロモーターには、以下に限定はされないが、とりわけ、チミジンキナーゼプ
ロモーターまたはヒトβ-グロビンミニマルまたはアクチンプロモーターのような構成性
プロモーターが含まれる。Zscan4プロモーターも使用され得る。
能的に連結された、マーカー、酵素、または蛍光性タンパク質のような異種ペプチドをコ
ードする核酸を含むトランスジーンを保持している。一例において、Zscan4プロモーター
はZscan4cプロモーターまたはその一部である。もう一つの態様において、Zscan4cプロモ
ーターは、SEQID NO:28のヌクレオチド1〜2643、1〜3250、または1〜3347のようなSEQ I
D NO:28のヌクレオチド1〜2540として示された核酸配列を含む。一例において、異種ペプ
チドは蛍光性タンパク質Emeraldである。
能的に連結された、マーカー、酵素、または蛍光性タンパク質のような異種ペプチドをコ
ードする核酸を含むトランスジーンを保持している。一例において、Trim43プロモーター
は、SEQ IDNO:31のヌクレオチド配列またはその一部を含む。発現ベクターに含まれるSE
Q ID NO :31の一部は、Trim43が発現される細胞における異種ポリペプチドの転写を促進
することができるSEQID NO:31の少なくとも一部である。いくつかの態様において、Trim
43プロモーター配列は、SEQID NO:31と少なくとも70%、少なくとも80%、少なくとも90
%、少なくとも95%、または少なくとも99%同一である。もう一つの態様において、Trim
43プロモーターはSEQ IDNO:31を含む。もう一つの態様において、Trim43プロモーターは
SEQ ID NO:31からなる。一例において、異種ペプチドは蛍光性タンパク質Strawberryであ
る。
ンスジーン、異種ペプチドをコードする核酸配列に連結されたZscan4プロモーターを含む
トランスジーンと、異種ペプチドをコードする核酸配列に連結されたTrim43プロモーター
を含むトランスジーンとを保持している。いくつかの場合において、トランスジェニック
非ヒト動物は、Zscan4プロモータートランスジーンおよびTrim43プロモータートランスジ
ーンを含むマウスである。一つの具体例において、Zscan4プロモーター配列に機能的に連
結された異種ポリペプチドは蛍光性タンパク質Emeraldであり、Trim43プロモーター配列
に機能的に連結された異種ポリペプチドは蛍光性タンパク質Strawberryである。このマウ
スは「レインボー」マウスと呼ばれる(下記実施例10を参照のこと)。
し、4細胞期から桑実胚期には赤色を示す(発現は桑実胚期に最も強くなる)。適切なタ
イミングおよび強度でのこれらの色の発現は、正確な遺伝子プログラムの進行を示し、従
って、着床前胚の適切な発達の指標として使用され得る。これらの胚は、体外受精(IVF
)のためのヒト胚の最適化された培養培地の開発;IVFの臨床施設および研究施設におけ
る技術者および医師のトレーニング;化合物および薬物の胚毒性についての試験;ならび
に核移植/クローニング手法の成功した核再プログラム化の指標としての用途を含むが、
これらに限定はされない、多様な用途を有する。
での調製により、産物を作製するためにベクターへ導入され得、次いで、それが増幅され
る(例えば、Sambrooket al., Molecular Cloning:a Laboratory Manual, Cold Spring
Harbor Press, 1989を参照のこと)。その後、増幅された構築物は、ベクターから切除さ
れ、トランスジェニック動物の作製において使用するために精製される。
において有用である。「非ヒト動物」には、非ヒト霊長類、ブタ、ウシ、および家禽のよ
うな家畜、イヌ、ネコ、ウマ、ハムスター、げっ歯動物のような競技動物もしくはペット
、またはライオン、トラ、もしくはクマのような動物園動物が含まれるが、これらに限定
はされない。一つの非限定的な具体例において、非ヒト動物は、以下に限定はされないが
、トランスジェニックのマウス、ウシ、ヒツジ、またはヤギのようなトランスジェニック
動物である。一つの非限定的な具体例において、トランスジェニック動物はマウスである
。特定の例において、トランスジェニック動物は、同一種の非トランスジェニック対照(
野生型)動物と比較して、ある細胞型の改変された増殖および/または分化を有する。
の微量注入または感染等による細胞内レベルでの計画的な遺伝子操作により、直接または
間接的に受容された遺伝子情報を保持している細胞を含有している。この分子は、動物の
染色体の内部に組み込まれていてもよいし、または染色体外で複製するDNA配列として含
まれていてもよく、例えば、酵母人工染色体へと工作され得る。トランスジェニック動物
は、遺伝子情報が取り上げられ、生殖系列細胞に組み入れられており、従って、子孫へ情
報を伝達する能力を付与するような「生殖細胞系」トランスジェニック動物であり得る。
そのような子孫が、実際に、その情報の一部または全部を保有しているのであれば、それ
らもトランスジェニック動物である。
ェニック動物は、ポリヌクレオチドが、成熟動物の生殖系列細胞のDNAへ安定的に組み込
まれ、正常なメンデルの方式に従い遺伝されるような様式で、マーカーをコードするDNA
を単細胞胚へ導入することにより作製され得る。胚顕微操作の技術の進歩は、哺乳動物受
精卵への異種DNAの導入を許容する。例えば、全能性または多能性の幹細胞が、微量注入
、リン酸カルシウム媒介沈殿、リポソーム融合、レトロウイルス感染、またはその他の手
段により形質転換され得る。次いで、形質転換細胞が胚へ導入され、次いで、胚がトラン
スジェニック動物へと発達する。一つの非限定的な方法において、発達中の胚が、所望の
DNAを含有しているレトロウイルスにより感染され、感染胚からトランスジェニック動物
が作製される。
核または細胞質に注入され、その胚が成熟トランスジェニック動物へと発達させられる。
これらの技術は周知である。例えば、哺乳動物(マウス、ブタ、ウサギ、ヒツジ、ヤギ、
ウシ)受精卵への異種DNAの微量注入の標準的な実験法の概説には、以下のものが含まれ
る:Hoganet al., Manipulating the Mouse Embryo, Cold Spring Harbor Press, 1986
;Krimpenfortet al., Bio/Technology 9:86, 1991;Palmiter et al., Cell 41 :343,
1985;Kraemer etal., Genetic Manipulation of the Early Mammalian Embryo, Cold S
pring HarborLaboratory Press, 1985;Hammer et al., Nature 315:680, 1985;Purcel
et al.,Science 244:1281, 1986;米国特許第5,175,385号;米国特許第5,175,384号。
Zscan4ポリペプチドまたはその断片もしくは保存的バリアントは、Zscan4のエピトープ
と免疫反応性であるか、またはZscan4のエピトープに特異的に結合する抗体を作製するた
めに使用され得る。ポリクローナル抗体、異なるエピトープ特異性を有するプールされた
モノクローナル抗体から本質的になる抗体、別個のモノクローナル抗体調製物が含まれる
。一つの態様において、Zscan4抗体は、Zscan4a、Zscan4b、Zscan4c、Zscan4d、Zscan4e
、Zscan4f、およびヒトZSCAN4を含む、全てのZscan4タンパク質を認識する。もう一つの
態様において、抗体はただ一つのZscan4タンパク質を特異的に認識する。本明細書におい
て使用されるように、特異的に特定のZscan4タンパク質に対する抗体の能力とは、抗体が
、あるZscan4タンパク質の発現を検出し、その他のZscan4タンパク質は検出しないことを
意味する。別の態様において、抗体は、二つ以上の異なるZscan4タンパク質を認識する。
例えば、Zscan4抗体は、SCANドメインを含むZscan4タンパク質(例えば、Zscan4c、Zscan
4d、Zscan4f)のみを認識するかもしれない。または、Zscan4抗体は、ジンクフィンガー
ドメインを含むが、SCANドメインを欠くZscan4タンパク質(例えば、Zscan4a、Zscan4b、
Zscan4e)のみを認識するかもしれない。
または複数のタンパク質に対する抗体も、産生され得る。従って、いくつかの態様におい
て、AF067063、Tcstv1/Tcstv3、Tho4、アルギナーゼII、BC061212およびGm428、Eif1a、E
G668777もしくはPif1によりコードされたポリペプチド、またはそれらの断片もしくは保
存的バリアントが、ポリペプチドのエピトープと免疫反応性であるか、またはポリペプチ
ドのエピトープに特異的に結合する抗体を作製するために使用され得る。
ポリペプチドまたはその断片もしくは保存的バリアントが、Trim43のエピトープと免疫反
応性であるか、またはTrim43のエピトープに特異的に結合する抗体を作製するために使用
され得る。
on ofPolyclonal Antisera,」 in:Immunochemical Protocols, pages 1-5, Manson, ed.
, Humana Press,1992;Coligan et al., 「Production of Polyclonal Antisera in Rab
bits, Rats,Mice and Hamsters,」 in:Current Protocols in Immunology, section 2.4
.1, 1992を参照のこと。
e 256:495, 1975;Coliganet al., sections 2.5.1-2.6.7;およびHarlow et al. in:An
tibodies:aLaboratory Manual, page 726, Cold Spring Harbor Pub., 1988を参照のこ
と。簡単に説明すると、モノクローナル抗体は、抗原を含む組成物をマウスに注入し、血
清試料を取り出すことにより抗体産生の存在を確証し、Bリンパ球を入手するため脾臓を
取り出し、ハイブリドーマを作製するためBリンパ球を骨髄腫細胞と融合させ、ハイブリ
ドーマをクローニングし、抗原に対する抗体を産生する陽性クローンを選択し、そしてハ
イブリドーマ培養物から抗体を単離することにより入手され得る。モノクローナル抗体は
、多様なよく確立されている技術によりハイブリドーマ培養物から単離され精製され得る
。そのような単離技術には、プロテインAセファロースを用いたアフィニティクロマトグ
ラフィ、サイズ排除クロマトグラフィ、およびイオン交換クロマトグラフィが含まれる。
例えば、Coliganet al., sections 2.7.1-2.7.12 and sections 2.9.1-2.9.3;Barnes e
t al.,Purification of Immunoglobulin G (IgG), in:Methods in Molecular Biology,
Vol. 10, pages79-104, Humana Press, 1992を参照のこと。
。インビトロ増幅は、ウシ胎仔血清のような哺乳動物血清、または微量元素、および正常
マウス腹膜滲出細胞、脾細胞、胸腺細胞、もしくは骨髄マクロファージのような成長を支
持する補助因子が任意で補足された、ダルベッコ修飾イーグル培地またはRPMI1640培地の
ような好適な培養培地において実施され得る。インビトロ作製は、比較的純粋な抗体調製
物を提供し、所望の抗体を大量に得るための規模拡大を可能にする。大規模なハイブリド
ーマ培養は、エアリフトリアクター、連続撹拌リアクター、または固定化もしくは捕捉さ
れた細胞培養物における均質懸濁培養により実施され得る。インビボ増幅は、抗体産生腫
瘍の成長を引き起こすために、同一遺伝子マウスのような親細胞と組織適合性の哺乳動物
に細胞クローンを注入することにより実施され得る。任意で、動物は、炭化水素、特に、
プリスタン(テトラメチルペンタデカン)のような油により注入前に初回刺激される。1
〜3週間後に、所望のモノクローナル抗体が、動物の体液から回収される。
ための一般的な技術は、例えば、PCT公開WO91/11465(1991年);およびLosman et al.,
Int. J. Cancer46:310, 1990に見出され得る。
由来してもよい。ヒト化モノクローナル抗体は、マウス免疫グロブリンの重鎖および軽鎖
の可変部に由来するマウス相補性決定領域をヒト可変ドメインに移し、次いで、マウスカ
ウンターパートのフレームワーク領域内にヒト残基を置換することにより作製される。ヒ
ト化モノクローナル抗体に由来する抗体成分の使用は、マウス定常領域の免疫原性に関連
した可能性のある問題を除去する。マウス免疫グロブリン可変ドメインをクローニングす
るための一般的な技術は、例えば、Orlandi et al., Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 86
:3833, 1989により記載されている。ヒト化モノクローナル抗体を作製するための技術は
、例えば、Joneset al., Nature 321 :522, 1986;Riechmann et al., Nature 332:323,
1988;Verhoeyenet al., Science 239:1534, 1988;Carter et al., Proc. Natl. Acad
. Sci. U.S.A.89:4285, 1992;Sandhu, Crit. Rev. Biotech. 12:437, 1992;およびSin
ger et al, J.Immunol. 150:2844, 1993により記載されている。
由来してもよい。例えば、Barbas et al., in:Methods:a Companion to Methods in Enzy
mology, Vol. 2,page 119, 1991;Winter et al., Ann. Rev. Immunol. 12:433, 1994を
参照のこと。ヒト免疫グロブリンファージライブラリーを作製するために有用なクローニ
ングベクターおよび発現ベクターは、例えば、STRATAGENE Cloning Systems(La Jolla,
CA)より入手され得る。
チャレンジに応答して特異的なヒト抗体を産生するよう「工作された」トランスジェニッ
クマウスから入手される。この技術においては、内因性の重鎖および軽鎖の遺伝子座のタ
ーゲティングされた破壊を含有している胚性幹細胞系に由来するマウスの系統に、ヒトの
重鎖および軽鎖の遺伝子座の要素が導入される。トランスジェニックマウスは、ヒト抗原
に特異的なヒト抗体を合成することができ、それらマウスはヒト抗体分泌ハイブリドーマ
を作製するために使用され得る。トランスジェニックマウスからヒト抗体を入手する方法
は、Greenet al., Nature Genet. 7:13, 1994;Lonberg et al., Nature 368:856, 1994
;およびTayloret al., Int. Immunol. 6:579, 1994により記載されている。
b')2、およびFvのようなそれらの断片も含まれる。これらの抗体断片は、それらの抗原ま
たは受容体に選択的に結合する能力をある程度保持しており、以下のように定義される:
(1)抗体分子の一価抗原結合断片を含有している断片Fabは、酵素パパインにより完全な
抗体を消化して、完全な軽鎖および一つの重鎖の一部を得ることにより作製され得る;
(2)抗体分子の断片Fab'は、ペプシンにより完全な抗体を処理した後、還元して、完全
な軽鎖および重鎖の一部を得ることにより入手され得る;抗体1分子当たり2個のFab'断片
が入手される;
(3)完全な抗体を酵素ペプシンにより処理し、その後還元せずに入手され得る抗体の断
片(Fab')2;F(ab')2は、2個のジスルフィド結合によりつながれた2個のFab'断片からなる
二量体である;
(4)二つの鎖として発現された軽鎖の可変領域および重鎖の可変領域を含有している遺
伝学的に工作された断片として定義されるFv;ならびに
(5)遺伝学的に融合された単鎖分子として、好適なポリペプチドリンカーにより連結さ
れた、重鎖の可変領域、軽鎖の可変領域を含有している遺伝学的に工作された分子として
定義される単鎖抗体(SCA)。
Lane,Antibodies:A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory, New York,
1988を参照のこと)。エピトープは、抗体のパラトープが結合する抗原上の任意の抗原決
定基である。エピトープ決定基は、通常、アミノ酸または糖側鎖のような分子の化学的に
活性な表面の基からなり、通常、特別な電荷特徴と共に特別な三次元構造特徴を有する。
における発現により調製され得る。抗体断片は、従来の方法により、完全な抗体のペプシ
ン消化またはパパイン消化により入手され得る。例えば、抗体断片は、F(ab')2と呼ばれ
る5S断片を提供するためにペプシンによる抗体の酵素的切断により作製され得る。この断
片は、3.5SFab'一価断片を作製するため、チオール還元剤を使用し、そして任意で、ジ
スルフィド結合の切断に起因するスルフヒドリル基のための保護基を使用してさらに切断
され得る。または、ペプシンを使用した酵素的切断は、2個の一価Fab'断片および1個のFc
断片を直接作製する(米国特許第4,036,945号および米国特許第4,331,647号、ならびにそ
れらの中に含有されている参照;Nisonhoff et al., Arch. Biochem. Biophys. 89:230,
1960;Porter,Biochem. J. 73:119, 1959;Edelman et al., Methods in Enzymology, V
ol. 1, page 422,Academic Press, 1967;およびColigan et al. at sections 2.8.1-2.
8.10 and2.10.1-2.10.4を参照のこと)。
せるための重鎖の分離、断片のさらなる切断、またはその他の酵素的、化学的、もしくは
遺伝学的な技術のような、その他の抗体切断法が使用されてもよい。
(Inbar etal., Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 69:2659, 1972)。または、可変鎖が
、分子間ジスルフィド結合によって連結されていてもよいし、またはグルタルアルデヒド
のような化学物質により架橋されていてもよい。例えば、Sandhu(前記)を参照のこと。
好ましくは、Fv断片は、ペプチドリンカーにより接続されたVH鎖およびVL鎖を含む。これ
らの単鎖抗原結合タンパク質(sFv)は、オリゴヌクレオチドにより接続されたVHドメイ
ンおよびVLドメインをコードするDNA配列を含む構造遺伝子を構築することにより調製さ
れる。構造遺伝子は発現ベクターに挿入され、続いてそれが、大腸菌のような宿主細胞に
導入される。組換え宿主細胞は、リンカーペプチドが2個のVドメインを橋渡している単一
のポリペプチド鎖を合成する。sFvを作製する方法は、当技術分野において公知である(W
hitlow et al.,Methods:a Companion to Methods in Enzymology, Vol. 2, page 97, 19
91;Bird et al.,Science 242:423, 1988;米国特許第4,946,778号;Pack et al., Bio/
Technology 11:1271, 1993;およびSandhu(前記)を参照のこと)。
ある。CDRペプチド(「最小認識単位」)は、関心対象の抗体のCDRをコードする遺伝子を
構築することにより入手され得る。そのような遺伝子は、例えば、抗体産生細胞のRNAか
ら可変領域を合成するためにポリメラーゼ連鎖反応を使用することにより調製される(La
rrick et al.,Methods:a Companion to Methods in Enzymology, Vol. 2, page 106, 19
91)。
疫感作抗原として使用して調製され得る。動物を免疫感作するために使用されるポリペプ
チドまたはペプチドは、宿主細胞において作製された実質的に精製されたポリペプチド、
インビトロで翻訳されたcDNA、または化学合成に由来し得、所望により、担体タンパク質
にコンジュゲートされていてもよい。ペプチドに化学的にカップリングされるそのような
一般的に使用される担体には、キーホールリンペットヘモシアニン(KLH)、チログロブ
リン、ウシ血清アルブミン(BSA)、および破傷風トキソイドが含まれる。次いで、カッ
プリングされたペプチドが、動物(例えば、マウス、ラット、またはウサギ)を免疫感作
するために使用される。
チドまたはペプチドが結合しているマトリックスへの結合、およびそこからの溶出により
、さらに精製され得る。当業者は、ポリクローナル抗体およびモノクローナル抗体の精製
および/または濃縮のための免疫学分野において一般的な様々な技術を承知しているであ
ろう(例えば、Coliganet al., Unit 9, Current Protocols in Immunology, Wiley Int
erscience, 1991を参照のこと)。
することも可能である。例えば、第一のモノクローナル抗体に対して作成された抗イディ
オタイプモノクローナル抗体は、第一のモノクローナル抗体が結合するエピトープの「像
」である超可変領域内の結合ドメインを有するであろう。
ISAもしくはRIAのようなイムノアッセイのような標準的な抗体抗原アッセイにより、測定
または決定される。そのようなアッセイは、抗体の解離定数を決定するために使用され得
る。「解離定数」という語句は、抗原に対する抗体の親和性をさす。抗体の解離定数(KD
=1/K、ここでKは親和性定数である)が、例えば、<1μM、<100nM、または<0.1nMであ
る場合、抗体と抗原との間には結合の特異性が存在する。抗体分子は、典型的には、より
低い範囲のKDを有するであろう。KD=[Ab-Ag]/[Ab][Ag]。ここで、[Ab]は抗体の平衡時濃
度であり、[Ag]は抗原の平衡時濃度であり、かつ[Ab-Ag]は抗体抗原複合体の平衡時濃度
である。典型的には、抗原と抗体との間の結合相互作用には、静電引力、ファンデルワー
ルス力、および水素結合のような可逆性の非共有結合性の会合が含まれる。
知の多数の手段を使用して、Zscan4に特異的に結合する抗体に連結され得る。例示的なエ
フェクター分子には、放射標識、蛍光性マーカー、または毒素(例えば、シュードモナス
外毒素(PE)、毒素および接合の考察については、「MonoclonalAntibody-Toxin Conjug
ates:Aiming theMagic Bullet,」 Thorpe et al., 「Monoclonal Antibodies in Clinic
al Medicine,」Academic Press, pp. 168-190, 1982;Waldmann, Science, 252:1657, 1
991;米国特許第4,545,985号および米国特許第4,894,443号を参照のこと)が含まれるが
、これらに限定はされない。共有結合性および非共有結合性の両方の付着手段が使用され
得る。抗体にエフェクター分子を付着させるための手法は、エフェクターの化学構造によ
って変動する。ポリペプチドは、典型的には、エフェクター分子の結合をもたらす抗体上
の好適な官能基との反応のために利用可能である多様な官能基;例えば、カルボン酸(CO
OH)、遊離アミン(-NH2)、またはスルフヒドリル(-SH)基を含有している。または、
抗体は付加的な反応性官能基を露出させるかまたは付着させるために誘導体化される。誘
導体化は、PierceChemical Company(Rockford, IL)から入手可能なもののような多数
のリンカー分子の付着を含み得る。リンカーは、エフェクター分子に抗体を接合するため
に使用される任意の分子であり得る。リンカーは、抗体およびエフェクター分子の両方と
共有結合を形成することができる。好適なリンカーは、当業者に周知であり、直鎖型もし
くは分岐型の炭素リンカー、複素環式炭素リンカー、またはペプチドリンカーを含むが、
これらに限定はされない。抗体およびエフェクター分子がポリペプチドである場合、リン
カーは、それらの側鎖を通して(例えば、システインへのジスルフィド結合を通して)構
成アミノ酸に接合されてもよいし、または末端アミノ酸のアルファ炭素のアミノ基および
カルボキシル基に接合されてもよい。
らエフェクター分子を遊離させることが望ましい。従って、これらの状況において、イム
ノコンジュゲートは、標的部位の近傍で切断可能な結合を含むであろう。抗体からエフェ
クター分子を放出するリンカーの切断は、標的細胞の内部または標的部位の近傍でイムノ
コンジュゲートが受ける酵素活性または条件により促され得る。
薬物、毒素、およびその他の薬剤を抗体に付着させるための報告されている多数の方法を
考慮すれば、当業者は、抗体またはその他のポリペプチドに所定の薬剤を付着させるため
の好適な方法を決定することができるであろう。
。これらの実施例は、記載された特定の特色または態様に本発明を限定するものと解釈さ
れるべきではない。
Zscan4の特徴決定が本明細書に開示される。Zscan4は、胚の後期2細胞期に、かつ胚性
幹細胞において、一過性および特異的な発現を示すことが本明細書において示される。理
論によって拘束はされないが、Zscan4は、デノボ(de novo)転写、接合子ゲノム活性化
の第一波の間に排他的に発現される唯一の遺伝子である。
、哺乳動物遺伝子収集プロジェクトにより配列決定された(Gerhard et al Genom Res. 1
4:2121-2127,2004)。Genbankアクセッション番号BC050218(SEQ ID NO:11)の下で寄託
されたcDNA配列は、506アミノ酸のタンパク質をコードする4個のエキソンに組織化された
2292bpを含んでいた。下記実施例に記載されるように、このcDNAクローンをプローブとし
て使用して、高レベルのZscan4転写物が後期2細胞期胚に検出された。最初のcDNAがES細
胞から単離されたため、下記実施例に記載されるように、後期2細胞期胚に由来するRNAに
対してRT-PCRを実施し、増幅産物を配列決定した。増幅された配列は、2268bp長であり、
ES細胞から単離されたcDNAと同様に、506アミノ酸のタンパク質をコードした。ES細胞お
よび後期2細胞胚から単離されたcDNAクローンのヌクレオチド配列およびアミノ酸配列の
分析は、それらが二つの異なる類似遺伝子であることを示した。
定された。3種のコピーは、偽遺伝子であり、マウス遺伝子命名法の慣習によりZscan4-ps
1(SEQ ID NO:12)、Zscan4-ps2(SEQID NO:13)、およびZscan4-ps3(SEQ ID NO:14)
と命名された。残りの6種の遺伝子コピーは転写され、ORFをコードし、従って、それらは
、Zscan4a(SEQID NO:15および16)、Zscan4b(SEQ ID NO:17および18)、Zscan4c(SEQ
ID NO:19および20)、Zscan4d(SEQID NO:21および22)、Zscan4e(SEQ ID NO:23およ
び24)、ならびにZscan4f(SEQID NO:25および26)と命名された。Zscan4c、Zscan4d、
およびZscan4fは、506アミノ酸のタンパク質をコードし、Zscan4a、Zscan4b、およびZsca
n4eは、それぞれ360アミノ酸、195アミノ酸、および195アミノ酸のより短いタンパク質を
コードする。SEQID NO:16、18、20、22、24、26、または30として示されたアミノ酸配列
のいずれかを含むポリペプチド、またはこれらポリペプチドをコードするポリヌクレオチ
ドは、本明細書に開示された方法において有用である。SEQ ID NO:12、13、または14とし
て示されたZscan4偽遺伝子をコードするポリヌクレオチドも、本明細書に開示された方法
において有用である。
され得、Zscan4cが主要な転写物であることを証明した。Zscan4dは2細胞期胚における主
要な転写物であった;しかしながら、低レベルのZscan4a、Zscan4e、およびZscan4fも検
出され得た。Zscan4cはES細胞cDNAライブラリーに由来し、Zscan4dは2細胞胚cDNAライブ
ラリーに由来したため、これらの所見は各cDNAクローンの起源と一致している。さらに、
Zscan4の発現は、(内部細胞塊を含む)胚盤胞または初期胚盤胞アウトグロースにおいて
は検出されなかった。およそ6日間のアウトグロースの後、Zscan4発現は未分化ES細胞の
亜集団において検出された。
、適切な発達にとって重大であることが、本明細書において示される。下記実施例に記載
されるように、胚におけるZscan4発現の阻害は、2細胞胚から4細胞胚への移行を阻止し、
胚盤胞の拡大を防止し、胚盤胞の着床を防止し、胚盤胞アウトグロースからのES細胞の増
殖を防止した。
発も、本明細書に記載される。さらに、2細胞期特異的な発現を示す9種のZscan4共発現遺
伝子の同定も記載される。
)遺伝子としてのTrim43の同定も、本明細書に示される。二つのトランスジーン(第一の
トランスジーンは、Zscan4cプロモーターに機能的に連結されたEmeraldを含み、第二のト
ランスジーンは、Trim43プロモーターに機能的に連結されたStrawberryを含む)を含むト
ランスジェニックマウスの開発も、本明細書に記載される。
マウスZscan4d遺伝子の同定およびクローニング
マウス着床前胚のDNAマイクロアレイデータ(Hamataniet al., Dev. Cell 6:117-131,
2004)を使用して、2細胞胚における特異的な発現についてZscan4d遺伝子を同定した。
対応するcDNAクローン(no.C0348C03;R1ES細胞、129株;Genbankアクセッション番号BC
050218、SEQ IDNO:11)が、以前に記載されたマウスcDNAコレクションにおいて同定され
た(Sharovet al., PLoS Bio. 1:E74, 2003)。この全長cDNA配列に基づき、プライマー
対
を設計し、2細胞胚(B6D2F1マウス)からこの遺伝子の全長cDNA配列をPCR増幅するために
使用した。簡単に説明すると、mRNAを2細胞胚から抽出し、DNAase(DNA不含、Ambion)に
より処理した。mRNAをオリゴ-dTプライマーとアニールさせ、ThermoScriptReverse Tran
scriptase(Invitrogen)を用いてcDNAへと逆転写した。全長cDNAクローンを、ExTaq Po
lymerase(TakaraMirus Bio, Madison, WI)を用いてPCR増幅し、Wizard SV GelおよびP
CR Clean-UpSystem(Promega Biosciences, San Luis Obispo, CA)を用いて精製し、Di
rectional TOPOCloning Kit (Invitrogen)を用いてpENTRプラスミドベクターにクロー
ニングし、ABI 3100Genetic Analyzer(PE Applied Biosystems)上で、BigDye Termina
torキット(PEApplied Biosystems, Foster City, CA)およびDyeEX 96 Kit(Qiagen Va
lencia, CA)を使用して完全に配列決定した。配列は、SEQID NO:21として本明細書に示
される。
Zscan4オルソログを入手するために使用した。オープンリーディングフレーム(ORF)を
、ORFファインダー(NationalCenter for Biotechnology Informationよりオンラインで
利用可能)によって推定し、タンパク質ドメインをPfam HMMデータベース(オンラインで
利用可能)によって同定した。配列距離法およびVector NTIソフトウェア(Invitrogen,
Carlsbad, CA)を使用したNeighborJoining(NJ)アルゴリズム(Saitou and Nei, 1987
)によって決定されたアミノ酸配列の系統樹を用いて、オルソロガスな関係を査定した。
た。
公共データベースからダウンロードされた個々のBACクローン配列(RPCI-23およびRPCI
-24 BACライブラリー:C57BL/6J株)を使用して組み立てられたZscan4遺伝子座のゲノム
配列をバリデートするため、サザンブロット分析を実施した。エキソン3を含有している
プローブを設計し、プライマー対
を使用して、ES細胞(C57BL/6)から抽出されたマウスDNAから増幅した。GFXPCR DNAお
よびゲルバンド精製キット(GE Healthcare)を使用してPCR産物を精製した。ES細胞(C5
7BL/6株由来のBL6.9系)から抽出された15μgのマウスゲノムDNAを、制限酵素(MspI、Ta
qI、およびMspI/TaqI、図3Bを参照のこと)により一夜消化し、1%(w/v)アガロースゲル
上で分画し、ニトロセルロース膜上に移し、固定化した。ブロットに、標準的な条件の下
で、ランダムプライミングされた32P標識DNAプローブをハイブリダイズさせた。膜を、各
30分の3回の洗浄(室温にて2×SSC/0.1%(w/v)SDS、42℃にて0.5×SSC/0.1%(w/v)SDS、
および室温にて0.1×SSC/0.1%(w/v)SDS)に供し、-80℃で48時間オートラジオグラフィ
に供した。
ES細胞(TransgenicCore Laboratory of the Johns Hopkins University School of M
edicine(Baltimore,MD)から購入された129.3ES細胞)および2細胞胚(B6D2F1マウス)
からcDNAを合成した。Zscan4cDNA断片を、全てのZscan4パラログと100%マッチするZsca
n4特異的なプライマー対
を使用して増幅した。これらのcDNA断片を、以下のプライマーを使用して配列決定した:
これらの配列の電気泳動図を、以下のようにして、Zscan4の9種のパラロガスコピーの相
対発現レベルを計算するために使用した。(ゲノム配列から予測されたか、またはcDNAク
ローンを配列決定することにより決定された)転写物の配列情報に基づき、一つまたは少
数のパラロガスコピーがヌクレオチドミスマッチに基づき区別され得るヌクレオチド位置
を同定した。phredベースコーリングプログラム(バージョン0.020425.c(Ewinget al.,
GenomeRes. 8:175-185, 1998))を使用して、これらのヌクレオチド部位について、電
気泳動図中の4個の塩基全ての振幅を入手した。ノイズレベル(即ち、9種のパラロガスコ
ピーのいずれにも存在しない塩基の振幅の平均)を差し引いた後、各塩基(A、T、G、C)
の振幅を入手した。全てのミスマッチヌクレオチド位置と最も一致している発現レベルを
見出す最小二乗フィッティングによって、パラロガスコピーの各々の発現レベルを計算し
た。
5IU妊娠雌馬血清ゴナドトロピン(PMS;Sigma,St Louis, MO, USA)を注入し、46〜47
h後に5IUヒト絨毛性ゴナドトロピン(HCG;Sigma)を注入することにより、4〜6週齢B6D2
F1マウスを過***させた(NationalInstitute on Aging Animal Care and Use Committe
eにより承認されたプロトコル#220MSK-Mi)。未受精卵を、標準的な方法(Nagyet al.,
2003, 「Manipulationof the Mouse Embryo, A Laboratory Manual,」 Cold Spring Har
bor Laboratory Press,New York)により、HCGの21h後に採集した。ウシ精巣ヒアルロニ
ダーゼ(HY、0.1%(w/v)、300Umg-1)が補足されたM2培地(MR-015-D)におけるインキュ
ベーションによって卵丘細胞を除去した後、未受精卵を充分に洗浄し、良好な形態につい
て選択し、収集した。受精卵(1細胞胚)も、未受精卵と同一の方式で、交尾させた過排
卵マウスから採集した。受精卵(1細胞胚)を、5%CO2の雰囲気で、37℃で、カリウム濃
縮合成卵管培地(KSOMaaMR-121-D)において培養した。胚移植手法のため、3.5d.p.c.胚
盤胞を、2.5d.p.c.偽妊娠ICR雌マウスの子宮に移した。
の1細胞期胚のうちのいくつかが卵割を開始した時、初期2細胞期胚を選択し、もう一つの
微小滴培養物へと移した。それらのうちのいくつかが第二卵割を開始するまで、初期2細
胞期胚を培養し、未だ2細胞期にある胚を収集した。これらの胚は、後期2細胞期に同期化
されていた。
)に、以下の標的配列、shZscan4(gagtgaattgctttgtgtc、SEQ ID NO:9)およびsiContro
l(ランダム化21量体、agagacatagaatcgcacgca、SEQID NO:10)を挿入することにより、
マウスZscan4に対するsiRNAを構成性発現するプラスミドベクターを構築した。このベク
ターは、サイトメガロウイルス(CMV)プロモーターの下で緑色蛍光タンパク質(GFP)マ
ーカーを含有している。RNA干渉実験のため、1〜2pl(2〜3ng/μl)の直鎖化ベクターDNA
(shZscan4またはshControl)を接合子の雄精核に微量注入した。プラスミドpPyCAGIP(C
hambers et al.,Cell 113:643-655, 2003)にZscan4dのCDSをクローニングすることによ
り、Zscan4d遺伝子を構成性発現するプラスミドベクターを構築した。過剰発現実験のた
め、ScaIによって直鎖化された1〜2pl(2〜3ng/l)のプラスミドDNA(Zscan4dが挿入され
たpPyCAGIPベクターまたはインサートなしのpPyCAGIPベクター)を接合子の雄精核に微量
注入した。
scan4、およびsiControl)を接合子の細胞質に微量注入することにより、一過性RNA干渉
実験を実施した。siRNAの最適量は、siRNAの異なる濃度(4、20、および100ng/μl)を試
験することにより決定された。
ピエントへの培養胚盤胞の移植は、標準的なプロトコル(Nagy et al., 2003, 「Manipul
ation of theMouse Embryo, A Laboratory Manual,」 Cold Spring Harbor Laboratory
Press, New York)に従って行われた。全ての培地が、SpecialtyMedia(Phillipsburg,
NJ)から購入された。
まず、マウスES細胞系(129株に由来し、TheTransgenic Core Laboratory of the Joh
ns HopkinsUniversity School of Medicine(Baltimore, MD, USA)から購入された129.
3系)を、夾雑フィーダー細胞を除去するために、白血病抑制因子(LIF)の存在下で、ゼ
ラチンコーティングされたペトリ皿で2代にわたり培養した。次いで、細胞を、1〜2×105
/ウェル(1〜2×104/cm2)の密度でゼラチンコーティングされた6穴プレートに播種し、
完全ES培地(DMEM、15%FBS;1000U/mlESGRO(mLIF;Chemicon, Temecula, CA);1mMピ
ルビン酸ナトリウム;0.1mM NEAA;2mMグルタミン酸;0.1mMベータメルカプトエタノール
、および1ml当たり50U/50μgのペニシリン/ストレプトマイシン)で3日間培養した。
で、ゼラチン化チャンバースライド上で、15%ウシ胎仔血清、15mM HEPES緩衝液、100単
位/mlのペニシリン、100μg/mlのストレプトマイシン、100μM非必須アミノ酸、4.5mML-
グルタミン、および100μMβ-メルカプトエタノールが補足されたDMEM(Gibcoカタログ
番号10313-021)中で個々に培養した。
プラスミドDNA(クローンC0348C03)をSalI/NotIにより消化し、対照としてジゴキシゲ
ニン標識されたアンチセンスプローブおよびセンスプローブへとインビトロで転写した。
若齢(7週齢)B6D2F1/Jマウスから入手された胚を、4%パラホルムアルデヒドで固定し、
以前に記載されたプロトコルに従い、ホールマウントインサイチューハイブリダイゼーシ
ョン(WISH)を実施するために使用した。同プロトコルに従い、培養ES細胞に対してもWI
SHを実施した(Yoshikawaet al., Gene Expr. Patterns 6:213-224, 2006)。
定量的逆転写酵素(qRT)-PCR実験のための胚は、前記のようにして収集され、1細胞、初
期2細胞胚、後期2細胞胚、4細胞胚、8細胞胚、桑実胚、および胚盤胞胚のため、それぞれ
hCG後23時間目、43時間目、55時間目、66時間目、80時間目、および102時間目に採集され
た。10個の同期化された完全な胚の三つのサブセットを、PBT1×(0.1%トゥイーンX20
が補足されたPBS)に移し、液体窒素で保管した。これらの胚のプールを、凍結/解凍に
よって機械的に破砕し、cDNA調製のためのテンプレートとして直接使用した。各プールか
らcDNAを合成するため、Ovation系(NuGentechnologies, San Carlos, CA, USA)を使用
した。次いで、cDNAを、全部で1000μlに25倍希釈し、2μlをqPCRのためのテンプレート
として使用した。qPCRは、以前に記載されたようにして(Falcoet al., Reprod. Biomed
. Online13:394-403, 2006)、ABI7900HT Sequence Detection System(Applied Biosys
tems, FosterCity, CA, USA)上で実施され、データは、ΔΔCt方法(Falco et al., Re
prod. Biomed.Online 13:394-403, 2006;Livak and Schmittgen, Methods 25:402-408,
2001)により、ChukおよびH2afzによって規準化された。RNA干渉実験に供された胚は、
上記のような正常着床前胚と同一の方式で分析された。
受精後、母方に保存されたRNAおよびタンパク質によって支配される母性遺伝子プログ
ラムが、新たに形成された接合子ゲノムからの接合子ゲノム活性化(ZGA)と呼ばれるデ
ノボ転写により支配される胚性遺伝子プログラムに切り替わらなくてはならない(DePamp
hilis et al., 「Activationof Zygotic Gene Expression」 In Advances in Developme
ntal Biologyand Biochemistry, Vol. 12, pp. 56-84, Elsevier Science B.V., 2002;
Latham andSchultz, Front Biosci. 6:D748-759, 2001)。ZGAは、動物発生における最
初の、かつ最も重大な事象の一つである。初期の報告は、ZGAが1細胞期の間に開始するこ
とを確立した(Aokiet al., Dev. Biol. 181:296-307, 1997)(Nothias et al., J. Bi
ol. Chem.270:22077-22080, 1995;Ram and Schultz, Dev. Biol. 156:552-556, 1993)
。しかしながら、DNAマイクロアレイ分析による網羅的な遺伝子発現プロファイリングに
よって、1細胞期に発現が増加することが同定されたほぼ全ての遺伝子が、RNAポリメラー
ゼIIを阻止するアルファ-アマニチン処理に対して非感受性であることが最近明らかにな
った(Hamataniet al, Dev. Cell 6:117-131, 2004;Zeng and Schultz, Dev. Biol. 28
3:40-57, 2005)。従って、これらの研究は、多くのZGA遺伝子を同定しただけでなく、接
合子ゲノムのデノボ転写が、マウス着床前発生の2細胞期の間に開始することも明らかに
した(Hamataniet al., Dev. Cell 6:117-131, 2004;Zeng and Schultz, Dev. Biol. 2
83:40-57, 2005)。さらに、ZGAの主要なバーストが、初期2細胞期ではなく後期2細胞期
の間に起こることが示された(Hamatani et al., Dev. Cell 6:117-131, 2004)。
2000)、Mhr6a/Ube2a(Roestet al., Mol. Cell Biol. 24:5485-5495, 2004)、および
Brgl/Smarca4(Bultmanet al., Genes Dev. 20:1744-1754, 2006)の機能喪失変異体に
ついて報告されている。発生抑止のタイミングは、ZGAのものと一致するが、これらの遺
伝子は、卵形成の間に発現され、卵母細胞に保存されるのであって、2細胞期に転写され
るのではない。従って、これらの母性効果遺伝子はZGAの研究には適していない。従来、Z
GAは、外因性プラスミド由来のレポーター遺伝子(Nothiaset al., J. Biol. Chem. 270
:22077-22080)、またはHsp70.1(Christianset al., 1995)、eIF-4C(Davis et al.,
Dev. Biol.174:190-201, 1996)、Xist(Zuccotti et al., Mol Reprod. Dev. 61 :14-2
0, 2002)、およびその他の遺伝子(DePamphiliset al., 「Activation of Zygotic Gen
e Expression」 InAdvances in Developmental Biology and Biochemistry, Vol. 12, p
p. 56-84,Elsevier Science B. V., 2002)のような、内因性であるが、ある程度遍在性
に発現される遺伝子を使用して、研究されてきた。TEAD-2/TEF-4(Kaneko et al., Devel
opment124:1963-1973, 1997)およびPou5f1/Oct4(Palmieri et al., Dev. Biol. 166:2
59-267, 1994)は、ZGAで選択的に発現される転写因子と見なされているが(DePamphilis
et al., 「Activationof Zygotic Gene Expression」 In Advances in Developmental
Biology andBiochemistry, Vol. 12, pp. 56-84, Elsevier Science B.V., 2002)、こ
れらの遺伝子は、2細胞胚以外の細胞で発現されることが公知である。従って、個々のZGA
遺伝子、特に、2細胞期に排他的に発現される遺伝子を同定し、研究することが、重要で
ある。
過性のスパイク様発現を示す遺伝子の群が同定された(Hamatani et al., Dev. Cell 6:1
17-131, 2004)。公共の発現配列タグ(EST)データベース(NCBI/NIH)でこれらの遺伝
子の発現を調査することによって、470万個のマウスESTのうちの29個のcDNAクローンによ
ってのみ表される新規の遺伝子が同定された。これらのcDNAクローンは、ES細胞および着
床前胚に由来するcDNAライブラリーから単離された。さらに、以前のDNAマイクロアレイ
データは、この遺伝子の発現が、ES細胞には検出されるが、胚性癌腫(EC)細胞(F9およ
びP19)、栄養膜幹(TS)細胞、または神経幹/前駆(NS)細胞には検出されないことを
示した(Aibaet al, Stem Cells 24:889-895, 2006)。
., PLoS Biol.1:E74, 2003))が、Mammalian Gene Collection(MGC)プロジェクトに
よって完全に配列決定された(Genbankアクセッション番号BC050218;SEQ ID NO:11(Ger
hard et al.,Genome Res. 14:2121-2127, 2004))。このcDNAクローンをプローブとし
て使用したホールマウントインサイチューハイブリダイゼーション(WISH)によって、後
期2細胞胚において高レベルの転写物が検出された(図1A)。転写物は、未受精卵および3
細胞胚を含む他の着床前期の胚には検出されず、このことから、後期2細胞期における遺
伝子発現の高い特異性および転写物の比較的短い半減期が示唆された。定量的逆転写酵素
PCR(qRT-PCR)分析により、WISH結果が確認された(図1B)。以前のマイクロアレイ分析
は、後期2細胞期におけるこの遺伝子の発現が、α-アマニチン(RNApol IIに基づく転写
のブロッカー)で処理された胚で抑制されたことを示し(Hamatani et al., Dev. Cell 6
:117-131, 2004)、このことから、この遺伝子がZGAの主要なバーストの間にデノボ転写
されることが確認された。一過性の発現パターンは、インビトロ培養胚および新鮮に単離
されたインビボ胚の両方で観察された(Hamatani et al., Dev. Cell 6:117-131, 2004)
。
2292bpの全長cDNA配列(BC050218;SEQID NO:11)は、4個のエキソンに組織化され、5
06アミノ酸のタンパク質をコードしていた(図2A)。このcDNAクローンは、ES細胞から作
成されたcDNAライブラリーから単離されたため(Sharovet al., PLoS Biol. 1 :E74, 20
03)、後期2細胞期胚から単離されたRNA上でRT-PCRを実施することにより、もう一つのcD
NAクローンを単離し、完全に配列決定した(SEQID NO:21)。この2268bp cDNAクローン
は、506アミノ酸のタンパク質をコードした。DNA配列およびタンパク質配列は、これらの
二つのcDNA(SEQID NO:11および21)が密接な類似性を有する二つの異なる遺伝子である
ことを明白に示した。ドメイン予測分析は、それぞれN末端およびC末端にあるSCAN(ロイ
シンリッチ要素)ドメインおよび4ジンクフィンガードメインを明らかにした(図2B)。S
CANドメイン(50%)およびジンクフィンガードメイン(59%)における高度の保存を有
する45%のアミノ酸配列類似性を共有している仮説ヒトオルソログ-ジンクフィンガー・S
CANドメイン含有4(ZSCAN4)も同定された(図7)。
トは、ヒトZSCAN4のシンテニー領域である第7染色体の近位領域において複数のヒットを
明らかにした(図8)。このゲノム領域の一つの注目すべき特色は、極めて類似した配列
セグメントの反復であった。Zscan4の各コピーおよび周辺領域の配列は相互に極めて類似
しており、そのため、この領域の組み立てられたゲノム配列は、他の領域のものより不正
確であった。この領域のゲノム構造をよりよく理解するため、個々のBACクローン配列を
、この領域から、およそ850kbのゲノム配列コンティグへと手動で再組立てした(図3A)
。各コピーを区別するハイブリダイゼーションプローブまたはオリゴヌクレオチドを見出
すのが困難であったため、遺伝子コピー間の小さな配列差違を区別することができる制限
酵素を使用した。C57BL/6JマウスゲノムDNAを、TaqI単独、MspI単独、またはTaqI/MspIで
消化することにより、サザンブロット分析を実施した(図3BおよびC)。検出されたDNA断
片は、全て、組み立てられたゲノム配列で予測された9種のパラロガスZscan4遺伝子を確
認した。
列化したところ、9種の遺伝子コピーが見出され、それらは全て、マルチエキソン遺伝子
組織を有していた(図2、3A)。3種の遺伝子コピーは、利用可能なEST情報およびRT-PCR
産物の配列決定分析に基づき、転写される証拠が見出されなかったため、明らかに偽遺伝
子であった。従って、それら遺伝子を、マウス遺伝子命名法の慣習により、Zscan4-ps1(
SEQ ID NO:12)、Zscan4-ps2(SEQID NO:13)、およびZscan4-ps3(SEQ ID NO:14)と命
名した。残りの6種の遺伝子コピーは、転写され、ORFをコードしたため、Zscan4a(SEQI
D NO:15)、Zscan4b(SEQID NO:17)、Zscan4c(SEQ ID NO:19)、Zscan4d(SEQ ID NO:
21)、Zscan4e(SEQID NO:23)、およびZscan4f(SEQ ID NO:25)と命名された。これら
の遺伝子のうち3種、Zscan4a、Zscan4b、およびZscan4eは、SCANドメインを含んでいるが
、4ジンクフィンガードメインは含んでいない、それぞれ、360、195、および195アミノ酸
のORFをコードした(図2B)。
コードした。これらの遺伝子の主な特色は、図3Aに要約される。Zscan4cは、ES細胞から
単離されたcDNAクローン(C0348C03;Genbankアクセッション番号BC050218;Gm397;SEQ
ID NO:11)に相当する。Zscan4dは、2細胞胚から単離されたcDNAクローン(SEQID NO:21
)に相当する。Zscan4fは、ゲノム配列から予測された遺伝子(Genbankアクセッション番
号XM_145358;SEQID NO:27)に相当する。これらの3種の遺伝子間の類似性は、ORFにつ
いてもmRNAについても極めて高かった(図7)。従って、これらの3種の遺伝子は同一の機
能を有する可能性が最も高い。各パラログの発現レベルを測定するために、9種のZscan4
パラログのDNA配列を、ClustalX多重配列アラインメントプログラムによって分析したと
ころ、各パラログに特異的な配列差違の存在が示された。2細胞胚およびES細胞における
各遺伝子の発現レベルを調査するため、2細胞胚およびES細胞からRT-PCRによって増幅さ
れたcDNA断片を配列決定した。各パラログの発現レベルは、多形部位における各ヌクレオ
チドの振幅に基づいて推定された。結果は図3Aに要約される。2細胞胚においては、Zscan
4dが主要な転写物であった(90%)。対照的に、ES細胞においては、Zscan4cが主要な転
写物であり(40%)、Zscan4fもそれよりは少なかったが有意な転写物であった(24%)
。これらの結果は各cDNAクローンの起源と一致していた;Zscan4cはES細胞cDNAライブラ
リー由来であり、Zscan4dは2細胞胚ライブラリー由来であった。
Zscan4遺伝子の機能を特徴決定するための第一工程として、着床前発生に研究の焦点を
当てた。最初に、標準的な遺伝子ターゲティング戦略を実施する可能性を探究したが、そ
れは以下の三つの理由により困難であった。第一に、Zscan4パラログおよび周辺ゲノム領
域の配列はあまりにも類似しているため、特定の遺伝子のためのターゲティング構築物を
設計することができない。第二に、主要に発現されたZscan4dに加えて、少なくとも3種の
他の類似のコピー(Zscan4a、Zscan4e、およびZscan4f)が、2細胞胚において転写される
ため、Zscan4d-/-表現型は、他のZscan4パラログによって機能的に補償される可能性が極
めて高い。第三に、およそ850kbのZscan4遺伝子座内に、まだ遺伝子としてはアノテート
されていないが、予測されている他の遺伝子が存在するため、Zscan4遺伝子座全体を欠失
させる戦略は魅力的でない。従って、siRNA技術を使用した。RNAiおよびsiRNA技術は、着
床前胚において特定の遺伝子の発現を阻止するために成功裡に使用されているが(Kim et
al.,Biochem. Biopys. Res. Commun. 296:1372-1377, 2002;Stein et al., Dev. Biol
. 286:464-471,2005)、広範に認識されているオフターゲット効果が、一般に、大きな
問題である(Jacksonet al., Rna 12:1179-1187, 2006;Scacheri et al., Proc. Natl.
Acad.Sci. U.S.A. 101:1892-1897, 2004;Semizarov et al., Proc. Natl. Acad. Sci.
U.S.A.100:6347-6352, 2003)。Zscan4に対するsiRNAの効果の信頼性を高めるために、
3種の独立したsiRNA技術、オリゴヌクレオチドに基づくsiRNA(ここで、siZscan4と呼ば
れる、Invitrogenから入手);ベクターに基づくshRNA(ここで、shZscan4と呼ばれる、G
enscriptから入手);およびオリゴヌクレオチドsiRNAの混合物(ここで、plus-siZscan4
と呼ばれる、Dharmaconから入手)によって、siRNA実験を実施した(図4A、B)。siZscan
4、shZscan4、plus-siZscan4のために使用されたオリゴヌクレオチド配列は、Zscan4bお
よびZscan4eと2bpのミスマッチを有していたshZscan4を除いて、Zscan4a、Zscan4b、Zsca
n4c、Zscan4d、Zscan4e、およびZscan4fのcDNA配列と100%マッチした(図4A、B)。
発生の間、胚を観察した(図4CおよびD)。shControlを注入された胚の過半数(58.8%)
が、既に4細胞期に達していたhCGの61時間後、shZscan4を注入された胚の過半数(78.8%
)が、2細胞期のままであった。shControlを注入された胚の過半数(70.0%)が胚盤胞期
に達したhCGの98時間後までに、shZscan4を注入された胚の過半数(52.5%)が桑実胚期
にしか達していなかった。Zscan4 RNAレベルの有意な低下(およそ95%)が、qRT-PCR分
析によって確認された(図4E)。総合すると、これらの結果は、shZscan4を注入された胚
の発生が2細胞期と4細胞期との間で約24時間遅延し、続いて、shControlを注入された胚
のものと比較可能なスピードでその後の期への進行が起こることを示す。本質的に同一の
結果が、二つの異なるsiRNA技術:siZscan4(図9)およびplus-siZscan4(図10)を使用
して入手された。
しば、拡大胚盤胞の形成に失敗した(4.5d.p.c;siControlを注入された胚の6%に対して
siZscan4を注入された胚の45%;図9B)。これらの胚盤胞が3.5d.p.cですら、何らかの欠
陥を有しているか否かを試験するために、shZscan4を注入された胚盤胞を、偽妊娠マウス
の子宮に移植した。shZscan4を注入された胚盤胞はいずれも着床しなかったが、shContro
lを注入された胚は大部分が着床した(表1)。インビトロ胚盤胞アウトグロース実験は、
shZscan4を注入された胚盤胞の細胞が培養物中で増殖し得ないことを決定した(表1)。
これらの結果から、後期2細胞期におけるZscan4の一過性の発現が、適切な胚盤胞の発達
のために必要とされることが明白に証明された。
)および着床後発達(B)
*hCG注入の21〜23時間後に、接合子の雄精核に、shZscan4ベクターまたはshControlベク
ターが微量注入された。これらの胚から形成された初期胚盤胞(3.5d.p.c.)が、胚盤胞
アウトグロース(A)および胚移植(B)の試験に供された。アウトグロースアッセイにお
いては、6日間の培養後の増殖中細胞の存在が、成功したアウトグロースと見なされた。
は、shZscan4が初期2細胞期胚の1個の割球に注入された場合、胚のおよそ28%が3細胞胚
になったという実際により、さらに支持された(図5A)。shZscan4注入を受容した1個の
割球は2細胞割球として残存し、他方の割球は、4細胞割球のサイズを有する2個のより小
さい割球へと卵割した(図5D)。続いて、これらの胚(24%)は、不均一に卵割した胚、
典型的には、2細胞サイズの割球1個および8細胞サイズの割球4個を含む5細胞胚になった
(図5B、E)。これらの胚は、最終的には、胚盤胞様の構造を形成したが、それらは、胚
盤胞様の細胞塊と、しばしばGFP陽性(shRNAを注入された割球のマーカー)であった桑実
胚様の細胞塊の混合物であるようであった(図5C、F、G)。対照的に、shControlが初期2
細胞期に1個の割球に注入された場合には、ほぼ全ての胚が正常に卵割した(図5A、B、C
)。
ラスミドを接合子の雄精核に微量注入することにより、Zscan4dを過剰発現させた。Zscan
4dプラスミドを注入された胚は、対照プラスミドを注入された胚に類似した発達の速度を
示したが、前者胚盤胞はアウトグロース生成に失敗し(表2A)、着床に失敗した(表2B)
。これらの結果は、Zscan4dの適時のダウンレギュレーションも、胚盤胞の適切な発達に
とって重要であることを示唆している。
胞アウトグロース(A)および着床後発達(B)
*Zscan4d遺伝子を構成性発現するプラスミドベクターまたは対照空ベクターが、hCG注入
の21〜23時間後に、接合子の雄精核に微量注入された。これらの胚から形成された初期胚
盤胞(3.5d.p.c.)が、表1に記載されたのと同一の試験に供された。
an4発現の分析
Zscan4の発現パターンの一つの興味深い局面は、後期2細胞胚およびES細胞における排
他的な発現である。ES細胞はICMに由来し、ES細胞において発現される多くの遺伝子が、I
CMにおいても発現されるため(例えば、Yoshikawaet al., Gene Expr. Patterns 6:213-
224, 2006)、これは反直観的であるように見える。従って、胚盤胞、胚盤胞アウトグロ
ース、およびES細胞におけるZscan4の発現を、WISHを使用して調査した。結果は、ICMお
よび初期胚盤胞アウトグロースを含む胚盤胞におけるいかなる場所にも、Zscan4の発現が
検出されないことを証明した(図6A)。しかしながら、Zscan4の発現は、アウトグロース
の6日目までに細胞の極一部に検出され始めた。驚くべきことに、Zscan4の強い発現は、
未分化コロニーの中のES細胞の極一部にのみ検出された。対照的に、多能性の周知のマー
カーであるPou5f1(Oct3/4)の発現は、胚盤胞のICM、胚盤胞アウトグロースの中の細胞
の大部分、および未分化コロニーの中のES細胞の過半数に検出された(図6A)。cDNA配列
の密接な類似性のため、各Zscan4パラログはWISHによって区別され得なかったが、前述の
RT-PCR産物の配列決定による発現分析は、Zscan4cおよびZscan4fが、胚盤胞アウトグロー
スの中の細胞およびES細胞の亜集団にWISHによって検出された遺伝子であったことを示し
ている。
本明細書中の先の実施例に記載されたように、Zscan4発現は未分化ES細胞の亜集団にの
み検出される。このES細胞の亜集団を同定し、Zscan4を発現するその他の細胞を同定する
ため、Zscan4cプロモーター配列およびEmeraldレポーター遺伝子(緑色蛍光タンパク質の
バリアント)を含む発現プラスミドを開発した。発現ベクターの成分および方向は図11に
例示される。Zscan4cプロモーター-Emerald発現ベクターの配列はSEQID NO:28として示
される。発現ベクターの成分のSEQ ID NO:28のヌクレオチド範囲は、表3に提供される。
細胞およびEmerald陰性細胞を同定するために蛍光標示式細胞分取によって分析した。Zsc
an4が細胞に発現される場合、それはEmerald陽性である。結果は、マウスES細胞のおよそ
3〜5%がZscan4を発現することを示す(図12)。
、Oct4、Oct3/4としても公知)の発現について定量的リアルタイムPCR(qPCR)によって
分析した。図12に示されるように、Pou5f1は、Emerald陽性細胞およびEmerald陰性細胞の
両方に同レベルで発現されるが、Zscan4cは、Emerald陽性細胞においてEmerald陰性細胞
より高度に発現される。データは、このベクターにおいて使用されたZscan4cプロモータ
ー配列が、内因性Zscan4c遺伝子の発現を再現し得ることを示しており、従って、Zscan4c
プロモーター-Emerald発現ベクターは、Zscan4発現細胞を精製するために使用され得る。
データは、Zscan4発現細胞および非発現細胞の両方が、多能性マーカーPou5f1発現を保持
していることを示しており、従って、このES細胞の亜集団は、標準的な多能性マーカーに
よっては同定され得ない。
実施例6に記載されたZscan4cプロモーター発現ベクターが細胞に安定的に取り込まれた
マウスES細胞系を確立した。ES細胞系は、Zscan4cプロモーターの制御下でEmeraldを発現
する。マウスES細胞に直鎖化プラスミドDNAをトランスフェクトした後、細胞を選択可能
マーカー(ブラストサイジン)の存在下で培養した。ブラストサイジン耐性ES細胞クロー
ンを単離し、さらなる分析のために使用した。
)にのみ発現される。従って、Zscan4プロモーター発現ベクターが取り込まれたES細胞系
は、細胞の小さな割合、およそ3パーセントにおいてのみ発現を示す。
(実施例7に記載されたような)Zscan4cプロモーターで安定的にトランスフェクトされ
たマウスES細胞系を使用して、Emerald(+)細胞およびEmerald(-)細胞の遺伝子発現パター
ンを比較するために、DNAマイクロアレイ分析を実施した。Emerald(+)細胞およびEmerald
(-)細胞をFACSによって分取し、全RNAを各細胞集団から単離した。これらのRNAを標識し
、NIA-Agilent44K DNAマイクロアレイ(Agilent Technologies)にハイブリダイズさせ
た。
o4、アルギナーゼII、BC061212およびGm428、Eif1a、EG668777およびPif1。マウスES細胞
におけるこれらの遺伝子の発現を確認するため、インサイチューハイブリダイゼーション
を実施した。これらの遺伝子のうち6種(AF067063、Tcstv3、Tho4、アルギナーゼII、BC0
61212、Gm428)の2細胞胚特異的な発現プロファイルは、図13A〜Gに示される。
8細胞期および桑実胚期に特異的に発現される遺伝子を同定するため、公共に利用可能
なEST頻度データ(TIGRMouse Gene Index;MGI Library Expression Search;NIA Mouse
GeneIndex(Sharov et al., PLoS Bio. 1:E74, 2003))およびマウス着床前胚からの
マイクロアレイデータ(Hamatani et al., Dev. Cell 6(1):117-31, 2004)を使用した。
候補遺伝子を選択した後、Trim43(三要素モチーフ含有タンパク質43)の特異的な発現パ
ターンを確認するために、定量的RT-PCR分析を実施した。
いては低レベルのTrim43発現が検出された。Trim43タンパク質の機能は未知である。Trim
43のヌクレオチド配列およびアミノ酸配列は、それぞれ、SEQID NO:32およびSEQ ID NO:
33として本明細書に提供される。Trim43プロモーターの核酸配列は、SEQID NO:31として
本明細書に提供される。
本明細書に記載されるように、第一の異種ポリペプチド(Emerald)に機能的に連結さ
れたZscan4cプロモーターを含む発現ベクター、および第二の異種ポリペプチド(Strawbe
rry)に機能的に連結されたTrim43プロモーターを含む発現ベクターが作成された。これ
らの発現構築物の両方が組み込まれたトランスジェニックマウス(「レインボー」マウス
)を作成することができる。
のDNA断片、およびインスレーター-Trim43プロモーター-Strawberryを含有している8672
塩基対のDNA断片が、マウス受精卵(B6C3×B6)の精核を共注入する。
緑色を示し、4細胞期から桑実胚期に(Strawberryの発現により)赤色を示すであろう(
ピーク発現は桑実胚期に起こる)。胚発生の適当な期におけるEmeraldおよびStrawberry
の発現は、胚の適切な発達を示す。従って、これらの胚は、多数の研究的および臨床的な
目的のために有用であろう。例えば、レインボーマウスから入手される胚は、IVF診療所
において使用されるヒト胚に適用され得る、胚の最適化された培養条件を開発するために
使用され得る。さらに、これらの胚は、胚に対する毒性について化合物または薬物を試験
するために使用され得る。胚は、核移植手法のための成功した核再プログラム化の指標と
しても使用され得る。
提供する。本開示は、さらに、Zscan4プロモーター配列、およびZscan4を発現する幹細胞
の亜集団の同定を含む、その使用法を提供する。記載された方法の正確な詳細が、記載さ
れた発明の本旨を逸脱することなく、変動し得る、または修飾され得ることは明白であろ
う。本発明者らは、特許請求の範囲の範囲および本旨に含まれるそのような修飾および変
動を全て主張する。
添付の配列表に収載された核酸配列およびアミノ酸配列は、37C.F.R.1.822において定
義されるようなヌクレオチド塩基のための標準的な略号およびアミノ酸のための3文字記
号を使用して示される。各核酸配列の一方の鎖のみが示されるが、表示された鎖の参照に
より相補鎖も含まれるものと理解される。添付の配列表において:
SEQ ID NO:1および2は、2細胞胚からのZscan4dの増幅のための順方向および逆方向のPCR
プライマーのヌクレオチド配列である。
SEQ ID NO:3および4は、Zscan4のエキソン3を含有するよう設計されたプローブを増幅す
るためのPCRプライマーのヌクレオチド配列である。
SEQ ID NO:5は、Zscan4PCR配列決定プライマーZscan4_Forのヌクレオチド配列である。
SEQ ID NO:6は、Zscan4PCR配列決定プライマーZscan4_Revのヌクレオチド配列である。
SEQ ID NO:7は、Zscan4配列決定プライマーZscan4_400Revのヌクレオチド配列である。
SEQ ID NO:8は、Zscan4配列決定プライマーZscan4_300Revのヌクレオチド配列である。
SEQ ID NO:9は、shZscan4siRNAのヌクレオチド配列である。
SEQ ID NO:10は、siControlsiRNAのヌクレオチド配列である。
SEQ ID NO:11は、ES細胞由来のcDNAクローン(クローン番号C0348C03)Genbankアクセッ
ション番号BC050218(2003年4月3日受託)のヌクレオチド配列である。
SEQ ID NO:12は、Zscan4-ps1のヌクレオチド配列である。
SEQ ID NO:13は、Zscan4-ps2のヌクレオチド配列である。
SEQ ID NO:14は、Zscan4-ps3のヌクレオチド配列である。
SEQ ID NO:15および16は、Zscan4aのヌクレオチド配列およびアミノ酸配列である。
SEQ ID NO:17および18は、Zscan4bのヌクレオチド配列およびアミノ酸配列である。
SEQ ID NO:19および20は、Zscan4cのヌクレオチド配列およびアミノ酸配列である。
SEQ ID NO:21および22は、Zscan4dのヌクレオチド配列およびアミノ酸配列である。
SEQ ID NO:23および24は、Zscan4eのヌクレオチド配列およびアミノ酸配列である。
SEQ ID NO:25および26は、Zscan4fのヌクレオチド配列およびアミノ酸配列である。
SEQ ID NO:27は、参照により本明細書に組み入れられる2006年1月10日受託のGenbankアク
セッション番号XM_145358のヌクレオチド配列である。
SEQ ID NO:28は、Zscan4-Emerald発現ベクターのヌクレオチド配列である。
SEQ ID NO:29および30は、ヒトZSCAN4(参照により本明細書に組み入れられる2002年9月6
日受託のGenbankアクセッション番号NM_152677)のヌクレオチド配列およびアミノ酸配列
である。
SEQ ID NO:31は、Trim43プロモーターのヌクレオチド配列である。
SEQ ID NO:32および33は、Trim43のヌクレオチド配列およびアミノ酸配列である。
SEQ ID NO:34および35は、AF067063(参照により本明細書に組み入れられる2004年5月29
日受託のGenbankアクセッション番号NM_001001449)のヌクレオチド配列およびアミノ酸
配列である。
SEQ ID NO:36および37は、BC061212(参照により本明細書に組み入れられる2003年11月15
日受託のGenbankアクセッション番号NM_198667.1)のヌクレオチド配列およびアミノ酸配
列である。
SEQ ID NO:38および39は、Gm428(参照により本明細書に組み入れられる2007年2月22日受
託のGenbankアクセッション番号NM_001081644)のヌクレオチド配列およびアミノ酸配列
である。
SEQ ID NO:40および41は、アルギナーゼII(参照により本明細書に組み入れられる2000年
1月26日受託のGenbankアクセッション番号NM_009705)のヌクレオチド配列およびアミノ
酸配列である。
SEQ ID NO:42および43は、Tcstv1(参照により本明細書に組み入れられる2007年7月12日
受託のGenbankアクセッション番号NM_018756)のヌクレオチド配列およびアミノ酸配列で
ある。
SEQ ID NO:44および45は、Tcstv3(参照により本明細書に組み入れられる2002年10月13日
受託のGenbankアクセッション番号NM_153523)のヌクレオチド配列およびアミノ酸配列で
ある。
SEQ ID NO:46および47は、Tho4(参照により本明細書に組み入れられる2005年12月2日受
託のGenbankアクセッション番号XM_902103)のヌクレオチド配列およびアミノ酸配列であ
る。
SEQ ID NO:48および49は、Eif1a(参照により本明細書に組み入れられる2002年8月3日受
託のGenbankアクセッション番号NM_010120)のヌクレオチド配列およびアミノ酸配列であ
る。
SEQ ID NO:50および51は、EG668777(参照により本明細書に組み入れられる2006年4月27
日受託のGenbankアクセッション番号XM_001003556)のヌクレオチド配列およびアミノ酸
配列である。
SEQ ID NO:52および53は、Pif1(参照により本明細書に組み入れられる2002年12月24日受
託のGenbankアクセッション番号NM_172453)のヌクレオチド配列およびアミノ酸配列であ
る。
SEQ ID NO:54は、Plus-siZscan4(J-064700-05)標的配列のヌクレオチド配列である。
SEQ ID NO:55は、Plus-siZscan4(J-064700-06)標的配列のヌクレオチド配列である。
SEQ ID NO:56は、Plus-siZscan4(J-064700-07)標的配列のヌクレオチド配列である。
SEQ ID NO:57は、Plus-siZscan4(J-064700-08)標的配列のヌクレオチド配列である。
SEQ ID NO:58は、siZscan4標的配列のヌクレオチド配列である。
SEQ ID NO:59は、shZscan4標的配列のヌクレオチド配列である。
SEQ ID NO:60は、Zscan4c、Zscan4d、およびZscan4fのヌクレオチド1〜1848のヌクレオチ
ドコンセンサス配列である。
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