JP2010520236A - リソフィリンアナログとその使用法 - Google Patents
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Abstract
Description
本明細書に記載の発明は、国立衛生研究所に認定された認可番号DK 63521の下に政府支援を受けてなされたものである。米国政府は本発明に一定の権利を有する。
構造式II、構造式IIIの化合物、もしくはその薬学的に許容可能な塩と、薬学的に許容可能な担体もしくは添加剤と、を含む薬学的組成物(組成物は有効量の化合物もしくは塩を含むことが好ましい)。
1型糖尿病を処置もしくは予防する方法であって、そうした処置を必要とする哺乳類(ヒトなど)に、構造式II、構造式IIIの化合物、もしくはその薬学的に許容可能な塩を投与することを含む、方法。
構造式II、構造式IIIの化合物、もしくはその薬学的に許容可能な塩の、保護に有効な量を、(in vitroもしくはin vivoで)細胞に接触させることを含む、細胞生存能、特に膵臓β細胞を保護する能力を保護するための方法。
医療処置(1型糖尿病の処置など)で使用するための、構造式II、構造式IIIの化合物、もしくはその薬学的に許容可能な塩。
哺乳類(ヒトなど)の1型糖尿病を処置するための薬剤を調製するための、構造式II、構造式IIIの化合物、もしくはその薬学的に許容可能な塩の使用方法。
本発明を、以下の実施例および実施形態を参照して説明する。さらなる記載を必要とすること無く、当業者は、前述の記載および以下の実施例を用いて、開示された化合物を作成および利用し、請求された方法を実践することができると考えられる。従って、後述の実施可能な実施例は例示のために提供されるに過ぎず、いくつかの実施形態を具体的に指摘するものであって、本開示のそれ以外の部分をいかなる意味でも限定しようとするものではない。よって、これらの実施例は、下記で提供される教示の結果明らかとなるであろう、任意の全ての変形例を包含すると解釈されるべきである。
塩化ナトリウム(60 mg, 95%, 2.4 mmol)を、10 mlの無水DMFに溶解したフタルヒドラジド(330 mg, 2.0 mmol)溶液に加えた。0℃で30分間撹拌した後、1-ブロモブタン(0.2 ml, 1.8 mmol)および触媒量のヨウ化テトラブチルアンモニウムを加え、混合物を室温で一晩撹拌した。反応物質に水を加えて急冷し、反応混合物を酢酸エチルで抽出した。混合抽出物を水、飽和塩化ナトリウム水溶液で洗浄し、無水硫酸マグネシウムで乾燥させた。減圧下で溶媒を除去した。生成物をカラムクロマトグラフィー(シリカ、酢酸エチル)で精製し、CPW29(30 mg)とCPW30(25 mg)を得た。
MS(ESI) m/z 218.3 [MH]+
表題の化合物は、ブロモエタン(0.9 mmol)を用いて実施例1の手順により合成した。収率:CPW27(25 mg)およびCPW28(30 mg)
MS(ESI) m/z 190.3 [MH]+
表題の化合物は、1-クロロへキサン(1.8 mmol)を用いて実施例1の手順により合成した。収率:CPW31(25 mg)およびCPW32(27 mg)
表題の化合物は、1-ブロモオクタン(0.9 mmol)を用いて実施例1の手順により合成した。収率:CPW33(40 mg)
MS(ESI) m/z 274.5 [MH]+
表題の化合物は、1-ブロモデカン(0.9 mmol)を用いて実施例1の手順により合成した。収率:CPW34(50 mg)
MS(ESI) m/z 302.5 [MH]+
表題の化合物は、1-ブロモドデカン(0.9 mmol)を用いて実施例1の手順により合成した。収率:CPW35(67 mg)
MS(ESI) m/z 330.5 [MH]+
表題の化合物は、1-ブロモヘキサデカン(0.9 mmol)を用いて実施例1の手順により合成した。収率:CPW36(110 mg)
MS(ESI) m/z 386.8 [MH]+
表題の化合物は、1-クロロへキサン(0.9 mmol)を用いて実施例1の手順により合成した。収率:CPW37(82 mg)およびCPW39(115 mg)
MS(ESI) m/z 443.0 [MH]+
表題の化合物は、1-ブロモドコサン(0.9 mmol)を用いて実施例1の手順により合成した。収率:CPW38(146 mg)
MS(ESI) m/z 471.9 [MH]+
開示された化合物(CPW27-39)を、炎症性サイトカインで処理した後のアポトーシス保護(OD450の減少に反映される)、およびインスリン放出について、膵臓β細胞株で評価する。β細胞の保護効果について、いくつかの化合物はLSFに比肩する効能を示し、さらにアナログは低濃度(nm以下)で細胞を保護することができる。インスリン放出試験では、いくつかの化合物はグルコースに反応してLSFと同様の効果を示し得る。
開示された化合物は、インスリン分泌の誘導、細胞内ATP濃度、およびサイトカイン(ヒトIL-1β、IFN-γ、およびTNF-αの組み合わせ)暴露下での細胞死の低減効果について、ヒト膵島で評価することができる。
マウスインスリン分泌INS-1細胞株において、β細胞に対する開示された化合物の効果が研究され得る。細胞を、10% 熱失活FBS、10 mm HEPES、200 μm L-グルタミン、1 mm ピルビン酸ナトリウム、5 nm 2-メルカプトエタノール、50 U/ml ペニシリン、および50 μg/ml ストレプトマイシンを添加したpH 7.4のRPMI 1640培地(Life Technologies, Inc., Gaithersburg, MD)に保持する。加湿培養器に5% 二酸化炭素を供給して37℃で細胞を培養する。二日毎に新鮮な培地に交換する。細胞の播種密度は105/cm2とする。播種した細胞数が、全ての処理条件後の実際の細胞数を反映するよう、剥離して死んだ細胞を保持するために、培養容器をポリ-D-リジンおよびゼラチン(Sigma, St. Louis, MO)で覆う。組み換えマウスIL-1β(5 ng/ml)、IFNγ(100 ng/ml)、およびTNFα(10 ng/ml;R&D Systems, Inc., Minneapolis, MN)を併せて完全RPMI培地に懸濁させたものを用いて、INS-1細胞を処理する。LSF(Cell Therapeutics, Inc., Seattle, WAから提供)および試験化合物が、サイトカインと同時に、完全RPMI培地に加えられ得る。処理は18時間にわたって実施される。
炎症性サイトカインを含む場合と含まない場合で、INS-1細胞におけるインスリン分泌へのLSFアナログの効果が計測され得る。β細胞を、室温で2〜3時間にわたりアポトーシス検出色素で処理する。アポトーシス細胞は、顕微鏡下で赤紫色で認識され得る。結合していない色素を除去するために洗浄し、色素解離剤を加えた後、OD 450 nMで読み取って色濃度が定量化される。処理の終了時に、134 mm NaCl、4.7 mm KCl、1.2 mm KH2PO4、1.2 mm MgSO4、1.0 mm CaCl2、10 mm HEPES、0.1% BSAを含む、37℃、pH 7.4のKrebs-Ringer-bicarbonate-HEPES緩衝液(KRB)で細胞を洗浄する。細胞を同じ緩衝液中で30分間にわたって前培養した後、15 mM D-グルコースを添加したKRB中で60分間培養する(J. T. Baker, Phillipsburg, NJ)。上清を回収し、遠心して残存細胞を除去する。上清中に分泌されたインスリンは、マウスインスリンを標準として用いて、RIAで測定され得る。細胞は基底状態(3 mM)、およびグルコース刺激状態(28 mM)に保持される。
<細胞調製>
β-TC6細胞株を、10% 熱失活ウシ胎児血清、10 mM HEPES、200 pM L-グルタミン、50 units/ml ペニシリン、および50 μg/ml ストレプトマイシンを添加したpH 7.4のRPMI 1640培地(Life Technologies, Rockville, MD)に保持する。細胞は、37℃で5% 二酸化炭素を供給した加湿培養器で培養する。二日毎に新鮮な培地に交換する。細胞の播種密度は105/cm2とする。播種した細胞数が、全ての処理条件後に実際の細胞数を反映するよう、剥離して死んだ細胞を保持するために、実験に用いる培養容器(ディッシュおよびチャンバースライド)をポリ-D-リジンおよびゼラチン(Sigma, St. Louis, MO)で覆う。
β-TC6細胞を、媒体のみで処理するか、あるいは、組み換えマウスIL-1β(5 ng/ml)、IFN-γ(100 ng/ml)、TNF-α(10 ng/ml)(R&D Systems, Minneapolis, MN)を併せて完全RPMI培地に懸濁させたもので処理する。LSF(Cell Therapeutics, Inc., Seattle, WA)もしくはアナログを、サイトカインと同時に、完全RPMI培地に、1 nMから20 pMの範囲の濃度で加える。全ての処理は18時間にわたって行われる。
処理の終了時に、134 mM NaCl、4.7 mM KCl、1.2 mM KH2PO4、1.2 mM MgSO4、1.0 mM CaCl2、10 mM HEPES、0.1% ウシ血清アルブミンを含む、37℃、pH 7.4のKrebs-Ringer-bicarbonate-HEPES緩衝液(KRB)で細胞を洗浄する。細胞を同じ緩衝液中で30分間にわたって前培養した後、15 mM D-グルコースを添加したKRB中で60分間培養する(J. T. Baker, Phillipsburg, NJ)。上清を回収し、遠心して残存細胞を除去する。上清中に分泌されたインスリンは、マウスインスリンを標準として、EIAを用いて測定される。
マウス脾細胞を96-wellプレートに均等に播種して、LSFもしくは一連の試験化合物を添加したLPS(1.0 ng/ml)を使用して、もしくは使用せずに、18時間処理する。タンパク質溶解物をHybond-P膜に転写し、続いてリン酸化STAT4に対するポリクローナル抗体でプローブする。ハイブリダイゼーションした膜を、ECLおよびオートラジオグラフィーにかける。試料は三回繰り返す。
Claims (24)
- 構造式III:
R3はそれぞれ独立に、水素、C1-22アルキル、C2-22アルケニル、もしくはC2-22アルキニルであり、ただし少なくとも一つのR3基は水素ではない、化合物もしくはその薬学的に許容可能な塩。 - R3はそれぞれ独立に、水素、エチル、ブチル、ヘキシル、オクチル、デシル、ドデシル、ヘキサデシル、2-メチル-ヘキシル、3-メチル-ヘキシル、4-メチル-オクチル、5-エチル-オクチル、5-フェニル-オクチル、2-ヘキセニル、3-ヘキセニル、4-ヘキセニル、2-ヘキシニル、もしくは3-ヘキシニルである、請求項1に記載の化合物。
- R3はそれぞれ独立に、水素、エチル、ブチル、ヘキシル、オクチル、デシル、ドデシル、もしくはヘキサデシルである、請求項2に記載の化合物。
- R3はそれぞれ独立に、水素、エチル、ブチル、ヘキシル、もしくはオクチルである、請求項3に記載の化合物。
- 次の構造式を持つ、請求項1から4のいずれか一項に記載の化合物、およびその薬学的に許容可能な塩。
- 薬学的に許容可能な担体と組み合わせて、請求項1から5のいずれか一項に記載の化合物を含む、薬学的組成物。
- 哺乳類の病状もしくは症状を予防もしくは処置するための方法であって、
Th1サイトカイン誘導性機能障害もしくは1型糖尿病の発病からのβ細胞の保護が低減する可能性があり、そうした活性が望まれる場合に、
前記哺乳類へ、請求項1から5のいずれか一項に記載の化合物もしくはその薬学的に許容可能な塩の有効量を投与するステップを含む、方法。 - 前記病状もしくは症状は1型糖尿病である、請求項7に記載の方法。
- 前記哺乳類はヒトである、請求項7に記載の方法。
- 哺乳類の病状もしくは症状を予防もしくは処置するための方法であって、
膵臓β細胞の保護が望まれる場合に、
請求項1から5のいずれか一項に記載の化合物もしくはその薬学的に許容可能な塩の、保護に有効な量を、前記細胞に接触させるステップを含む、方法。 - 前記哺乳類はヒトである、請求項10に記載の方法。
- 哺乳類の病状もしくは症状を予防もしくは処置するための方法であって、
炎症性疾患および自己免疫疾患の処置が望まれる場合に、
前記哺乳類へ、請求項1から5のいずれか一項に記載の化合物もしくはその薬学的に許容可能な塩の有効量を投与するステップを含む、方法。 - 前記炎症性疾患もしくは自己免疫疾患は、アテローム性動脈硬化症、2型糖尿病、内臓型肥満関連疾患、多発性硬化症、炎症性腸疾患、乾癬、関節リウマチ、もしくはアルツハイマー病である、請求項12に記載の方法。
- 前記哺乳類はヒトである、請求項13に記載の方法。
- 薬物療法で使用するための、請求項1から5のいずれか一項に記載の化合物。
- 前記薬物療法は1型糖尿病の予防もしくは処置である、請求項15に記載の化合物。
- 1型糖尿病の予防もしくは処置用の薬剤を調製するための、請求項1から5のいずれか一項に記載の化合物の使用方法。
- 前記薬剤は生理学的に許容可能な担体を含む、請求項17に記載の使用方法。
- 前記薬剤は液体担体を含む、請求項18に記載の使用方法。
- 前記薬剤は固体担体を含む、請求項18に記載の使用方法。
- 哺乳類の病状もしくは症状の予防もしくは処置に有用な薬剤を調製するための、請求項1から5のいずれか一項に記載の化合物の使用方法であって、前記病状もしくは症状は炎症性疾患もしくは自己免疫疾患である、使用方法。
- 前記薬剤は生理学的に許容可能な担体を含む、請求項21に記載の使用方法。
- 前記薬剤は液体担体を含む、請求項22に記載の使用方法。
- 前記薬剤は固体担体を含む、請求項22に記載の使用方法。
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