JP2004222609A - 麹菌ｎｐｇＯ遺伝子 - Google Patents
麹菌ｎｐｇＯ遺伝子 Download PDFInfo
- Publication number
- JP2004222609A JP2004222609A JP2003015123A JP2003015123A JP2004222609A JP 2004222609 A JP2004222609 A JP 2004222609A JP 2003015123 A JP2003015123 A JP 2003015123A JP 2003015123 A JP2003015123 A JP 2003015123A JP 2004222609 A JP2004222609 A JP 2004222609A
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- gene
- ferrichrome
- phosphopantothenate
- protein
- recombinant vector
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
Images
Classifications
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
- Y02P—CLIMATE CHANGE MITIGATION TECHNOLOGIES IN THE PRODUCTION OR PROCESSING OF GOODS
- Y02P20/00—Technologies relating to chemical industry
- Y02P20/50—Improvements relating to the production of bulk chemicals
- Y02P20/52—Improvements relating to the production of bulk chemicals using catalysts, e.g. selective catalysts
Landscapes
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
Abstract
【解決手段】麹菌Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅのホスホパントテン酸転移酵素遺伝子（ｎｐｇＯ遺伝子）のクローニングが行われ、その塩基配列も決定された。
【効果】本発明に係るｎｐｇＯ遺伝子を非リボソーム型ペプチド合成酵素（ＮＲＰＳ）遺伝子（例えば、ペプチドシンテターゼ遺伝子ａｓｂ２又はａｓｂ４遺伝子）とともに高発現することにより、ａｓｂ２、ａｓｂ４単独では得られなかった活性型の非リボソーム型ペプチド（例えば、麹菌フェリクローム）を高生産することができるようになった。
【選択図】 なし
【効果】本発明に係るｎｐｇＯ遺伝子を非リボソーム型ペプチド合成酵素（ＮＲＰＳ）遺伝子（例えば、ペプチドシンテターゼ遺伝子ａｓｂ２又はａｓｂ４遺伝子）とともに高発現することにより、ａｓｂ２、ａｓｂ４単独では得られなかった活性型の非リボソーム型ペプチド（例えば、麹菌フェリクローム）を高生産することができるようになった。
【選択図】 なし
Description
【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は、麹菌のホスホパントテン酸転移酵素タンパク質、該タンパク質をコードする遺伝子、該遺伝子を含有する組み換えベクター、該組み換えベクターを含有する形質転換体、該遺伝子を含有する組み換え麹菌、該形質転換体が生産する非リボソーム型ペプチド、任意のペプチドシンテターゼ遺伝子を高発現した株にホスホパントテン酸転移酵素遺伝子を含有する組み換えベクターを導入した形質転換体、該形質転換体が生産する非リボソーム型ペプチド、任意のペプチドシンテターゼ遺伝子を高発現した麹菌にホスホパントテン酸転移酵素遺伝子を含有する組み換えベクターを導入した麹菌、該麹菌が生産する非リボソーム型ペプチドに関するものである。
【０００２】
【従来の技術】
細菌、放線菌、糸状菌などの微生物は、種々の低分子の二次代謝産物を生合成する能力を有し、これらは長い歴史の間、産業的に非常に利用されてきた。その二次代謝産物の中でもポリケチドや非リボソーム型ペプチドは、ペニシリン、シクロスポリンなどの抗生物質を代表に最も産業的に重要な二次代謝産物である。これらは従来野生株あるいは変異株による発酵法により生産されてきたが、その生産量は微量であるために非常に高価なものが多かった。よって安価にこれらの二次代謝産物を提供するために、遺伝子工学的手法による高生産法の確立が求められた。近年の生化学的な研究から、ポリケチドや非リボソーム型ペプチドの基本骨格の生合成にはポリケチド合成酵素（ＰＫＳ）や非リボソーム型ペプチド合成酵素（ＮＲＰＳ）が関与していることが明らかとなった。
【０００３】
ＰＫＳやＮＲＰＳは、複合型の巨大酵素であり、全長が１５，０００アミノ酸残基を越えるものも存在する。よって、そのコード遺伝子は、全長２０−５０ｋｂに及ぶものも存在する。このような長鎖の遺伝子はサブクローニングが難しく、遺伝子工学的手法を用いた高発現のために、ゲノム中に存在する該遺伝子のエンハンサー領域を高発現エンハンサーに相同組み換えさせる手法が行われた。しかし、該形質転換体は期待するほどの二次代謝産物の生産を示さないことが多く、実用的には該形質転換体は利用されていなかった。
【０００４】
この原因として、本発明者らは、以下のような仮説をたてた。複合型巨大酵素であるＰＫＳやＮＲＰＳは、複数のタンパク質機能モチーフを有しており、ＮＲＰＳの場合代表的なものとしてアミノ酸活性化ドメイン、アシルキャリアータンパク質、縮合ドメインがあげられる。このうちアシルキャリアータンパク質は、活性発現のために補欠因子として共有結合したホスホパントテン酸を要求する。この翻訳後の修飾は、Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｕｂｔｉｌｉｓにおいて、ホスホパントテン酸転移酵素によって触媒されることがＭｏｏｔｚ ＨＤ ｅｔ． ａｌ． （例えば、非特許文献１参照）によって示された。また、糸状菌Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｄｕｌａｎｓにおいてもホスホパントテン酸転移酵素遺伝子がクローニングされ、Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅのＬｙｓ５変異を相補できることが示された（例えば、非特許文献２参照）。
【０００５】
産業用微生物として多く利用される麹菌Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅにおいても上記ホスホパントテン酸転移酵素遺伝子が存在し、多くの二次代謝産物生産に寄与すると推測される。現在までに麹菌はフェリクロームとよばれる鉄イオンをキレートできる非リボソーム型ペプチドを生産できることが明らかとなっている。我々は麹菌のフェリクローム生合成に関与する遺伝子群としてフェリクローム生合成を負に制御する転写制御因子ｓｒｅＯ（例えば、特許文献１参照）、フェリクローム生合成の第一段階を触媒するオルニチンＮ５オキシゲナーゼをコードするａｓｂ１（特願２００１−１７６２６４）、麹菌のフェリクローム生合成に関与するペプチドシンテターゼ遺伝子をコードするａｓｂ２（特願２００１−３２４１１２）、麹菌のフェリクローム生合成に関与するクラスター遺伝子ａｓｂ３、ａｓｂＴ、ａｎｋＯ、ａｓｂＲ（特願２００１−３２４１８１）、麹菌のフェリクローム生合成に関与するペプチドシンテターゼ遺伝子をコードするａｓｂ４（特願２００２−３４８７５２）をクローニングしている。このうち、ａｓｂ２、ａｓｂ４の遺伝子は、高発現してもフェリクローム生産性の向上に寄与しなかった。
【０００６】
その原因について本発明者らは、各方面から検討した結果、これは、上記のホスホパントテン酸転移酵素による翻訳後修飾されなかったアポ酵素しか生産されず、活性型であるホロ酵素が生産されなかったためとの観点にはじめてたった。そして、本発明者らは、麹菌においても、ペプチドシンテターゼ遺伝子とともにホスホパントテン酸転移酵素遺伝子も高発現することにより目的の二次代謝産物の生産性を実用レベルに向上できることにはじめて着目し、２００２年に一部公開された麹菌Ａ．ｏｒｙｚａｅのゲノム配列から、麹菌の種々の二次代謝産物の生産性を実用レベルに向上できるホスホパントテン酸転移酵素をコードする遺伝子を取得できるとの新規着想を得た。
【０００７】
【非特許文献１】
「ジャーナル オブ バイオロジカル ケミストリー（Ｊ． Ｂｉｏｌ． Ｃｈｅｍ．）」、２７６、３７２８９−３７２９８、２００１
【０００８】
【非特許文献２】
ムーツ ＨＤ他（Ｍｏｏｔｚ ＨＤ ｅｔ． ａｌ．）、「ＦＥＭＳ マイクロバイオロジカル レター（ＦＥＭＳ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ． Ｌｅｔｔ．）」 ２１３、５１−５７、２００２
【０００９】
【特許文献１】
特開２００２−２７２４７７号公報
【００１０】
【発明が解決しようとする課題】
本発明は、麹菌Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅのフェリクロームを含む二次代謝産物の生産を自由に制御するために、麹菌のホスホパントテン酸転移酵素遺伝子を提供することにある。本発明の他の目的は、本遺伝子を含有する組み換えベクターとこの組み換えベクターを含有する形質転換体を提供することにある。また該形質転換体が生産する非リボソーム型ペプチドを提供することにある。さらに、任意のＮＲＰＳ、ＰＫＳを高発現させた株に上記組み換えベクターを導入した株を用いて、任意の非リボソーム型ペプチドを提供することにある。
【００１１】
現在までに我々は、麹菌のフェリクローム生合成に関与する遺伝子群としてフェリクローム生合成を負に制御する転写制御因子ｓｒｅＯ（特開２００２−２７２４７７）、フェリクローム生合成の第一段階を触媒するオルニチンＮ５オキシゲナーゼをコードするａｓｂ１（特願２００１−１７６２６４）、麹菌のフェリクローム生合成に関与するペプチドシンテターゼ遺伝子をコードするａｓｂ２（特願２００１−３２４１１２）、麹菌のフェリクローム生合成に関与するクラスター遺伝子ａｓｂ３、ａｓｂＴ、ａｎｋＯ、ａｓｂＲ（特願２００１−３２４１８１）、麹菌のフェリクローム生合成に関与するペプチドシンテターゼ遺伝子をコードするａｓｂ４（特願２００２−３４８７５２）をクローニングしている。このうち、ａｓｂ２、ａｓｂ４の遺伝子は、高発現してもフェリクローム生産性の向上に大きく寄与しなかった。これは、ホスホパントテン酸転移酵素による翻訳後修飾されなかったアポ酵素しか生産されなかったためとの新規観点にたった。
【００１２】
本発明者らは、上記新規観点にたち、麹菌においてもペプチドシンテターゼ遺伝子とともにホスホパントテン酸転移酵素遺伝子も高発現することにより目的の二次代謝産物の生産性を実用レベルに向上できることにはじめて着目し、２００２年に一部公開された麹菌Ａ．ｏｒｙｚａｅのゲノム配列から、麹菌の種々の二次代謝産物の生産性を実用レベルに向上できるホスホパントテン酸転移酵素をコードする遺伝子を取得できるとの新規着想を得た。
【００１３】
例えば、得られたホスホパントテン酸転移酵素遺伝子をフェリクローム生合成に関与するＮＲＰＳ遺伝子（非リボソーム型ペプチドの一種であるフェリクローム生合成に関与するペプチド合成酵素（ペプチドシンテターゼ）をコードする遺伝子：例えばａｓｂ２、ａｓｂ４遺伝子）とともに発現させれば、ＮＲＰＳ遺伝子単独発現の場合と異なり、ＮＲＰＳ遺伝子がコードするペプチドシンテターゼが非活性のアポ酵素として生産されるのではなく活性型のホロ酵素として生産され、その結果、フェリクロームの生産性が向上し得るとの新規着想を得た。そして、このような新規着想を実現することにより、効率的に生産されたフェリクロームは、例えば鉄キレート剤としての試薬のほか、貧血の改善効果が期待できる機能性食品や医薬品自体として有効利用できるだけでなく、これらに添加する成分としても利用可能となり、その有効性は非常に大きいものがある。
【００１４】
【課題を解決するための手段】
麹菌Ａ．ｏｒｙｚａｅは、酒、醤油、味噌などの我が国の伝統的醗酵産業で使用されてきた糸状菌である。本菌株は、上記醗酵産業で有用なタンパク質や低分子を非常に大量に生産することである。本菌株が持つ高いタンパク質生産能と醸造微生物としての安全性から、異種タンパク質生産の宿主として注目されている。（Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ、６、１４１９（１９８８）、特開昭６２−２７２９８８）。発明者らの研究から、Ａ．ｏｒｙｚａｅを用いた異種タンパク質生産においては、アスペルギルス属などの近種の遺伝子であれば、その生産能はさらに増大することが認められた。特にＡ．ｏｒｙｚａｅの遺伝子を、Ａ．ｏｒｙｚａｅの高発現プロモーター制御下で発現させた場合、非常に大量のタンパク質が生産されることを見出した（特開平１１−１５４２７１、特願２０００−３６７５４）。また、Ａ．ｏｒｙｚａｅは、上記のようなタンパク質、酵素のみならず、産業的にも非常に貴重な２次代謝産物である低分子成分の生産も報告されている。中でも麹菌が固体培養で生産するフェリクロームは、近年貧血などの鉄欠乏症用の機能性成分としても非常に注目されている物質である。
【００１５】
この麹菌のフェリクロームを医薬・食品に利用するためには、生産性をさらに向上させる必要があるが、変異法などの既存の菌株育種方法では、工業生産レベルにまで生産性が向上した変異株の取得はできなかった。そこで、本発明者らは、フェリクローム生合成に関与する遺伝子を単離し、これらの遺伝子の発現能を強化することによりフェリクロームの大量生産が可能であると考えた。
【００１６】
麹菌におけるフェリクローム生合成経路については、その生合成の第一段階はオルニチンＮ５オキシゲナーゼによるオルニチンのヒドロキシル化であり、続いてペプチドシンテターゼによるＮ−ヒドロキシオルニチンのトリペプチドにグリシン、セリン、アラニンの環状ペプチド化であると考えられる。現在までに我々は麹菌のフェリクローム生合成に関与する遺伝子群としてフェリクローム生合成を負に制御する転写制御因子ｓｒｅＯ（特願２００１−８３６４０）、フェリクローム生合成の第一段階を触媒するオルニチンＮ５オキシゲナーゼをコードするａｓｂ１（特願２００１−１７６２６４）、麹菌のフェリクローム生合成に関与するペプチドシンテターゼ遺伝子をコードするａｓｂ２（特願２００１−３２４１１２）、麹菌のフェリクローム生合成に関与するクラスター遺伝子ａｓｂ３、ａｓｂＴ、ａｎｋＯ、ａｓｂＲ（特願２００１−３２４１８１）、麹菌のフェリクローム生合成に関与するペプチドシンテターゼ遺伝子をコードするａｓｂ４（特願２００２−３４８７５２）をクローニングしている。このうち、ａｓｂ２、ａｓｂ４の遺伝子は、高発現してもフェリクローム生産性の向上に大きく寄与しなかった。
【００１７】
この原因として、本発明者らは、以下のような仮説をたてた。複合型巨大酵素であるＰＫＳやＮＲＰＳは、複数のタンパク質機能モチーフを有しており、ＮＲＰＳの場合代表的なものとしてアミノ酸活性化ドメイン、アシルキャリアータンパク質、縮合ドメインがあげられる。このうちアシルキャリアータンパク質は、活性発現のために補欠因子として共有結合したホスホパントテン酸を要求する。この翻訳後の修飾は、Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｕｂｔｉｌｉｓにおいて、ホスホパントテン酸転移酵素によって触媒されることがＭｏｏｔｚ ＨＤ ｅｔ． ａｌ． （Ｊ Ｂｉｏｌ Ｃｈｅｍ、２７６、３７２８９−３７２９８、２００１）によって示された。また、糸状菌Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｄｕｌａｎｓにおいてもホスホパントテン酸転移酵素遺伝子がクローニングされ、Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅのＬｙｓ５変異を相補できることが示された（Ｍｏｏｔｚ ＨＤ ｅｔ． ａｌ．、ＦＥＭＳ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ Ｌｅｔｔ、２１３、５１−５７、２００２）。
【００１８】
すなわち、ａｓｂ２、ａｓｂ４の遺伝子は、高発現してもフェリクローム生産性の向上に大きく寄与しなかったのは、ホスホパントテン酸転移酵素によって翻訳後修飾された活性型のホロ酵素であるＮＲＰＳが生産されなかったためであると本発明者らは考えた。よって、Ａ．ｏｒｙｚａｅからホスホパントテン酸転移酵素遺伝子をクローニングし、ａｓｂ２、ａｓｂ４の遺伝子とともに高発現させることにより大幅なフェリクローム生産能の上昇に寄与するとの新規着想を得た。その結果、フェリクロームの生産を自由に制御できる遺伝子組み換え麹菌を育種でき、フェリクロームの工業生産が可能になるとの新規着想を得た。以下、麹菌が生産するフェリクローム類の中でも、最も含有量の多いフェリクリシンの生産を中心に記述するが、本発明は全てのフェリクローム類に応用が可能な技術であり、フェリクリシンだけに限定するものではない。
【００１９】
我々は、フェリクリシン生合成に関与するＮＲＰＳ遺伝子ａｓｂ２、ａｓｂ４を高発現させ、その遺伝子産物を効率的にホスホパントテン酸転移酵素により翻訳後活性化させることにより、フェリクリシンの工業生産に適した遺伝子組み換え麹菌を育種することを試みた。
【００２０】
我々は、２００２年度に一部公開された麹菌のゲノム遺伝子配列から上記のホスホパントテン酸転移酵素遺伝子の探索が可能であると考えた。
【００２１】
麹菌ゲノムデータに含まれるコンティグ配列の中でＢｌａｓｔ検索結果から、ホスホパントテン酸転移酵素遺伝子と考えられる遺伝子を抽出した。その中でＧｅｎｅ ＦｉｎｄｉｎｇされたＣｏｎ１６１６−ＪＵＮＫ−１は、Ａ．ｎｉｄｕｌａｎｓのホスホパントテン酸転移酵素遺伝子ｎｐｇＡと５７％の相同性を示した。鉄制限培地の液体培養した麹菌菌体から調製したポリＡ＋ＲＮＡを鋳型に増幅したｃＤＮＡ解析から、本遺伝子はイントロンを含まなかった。本遺伝子は、３４３アミノ酸残基からなるタンパク質をコードしていた。得られた遺伝子をｎｐｇＯと命名した。
【００２２】
ｎｐｇＯの機能を同定するために、本遺伝子の麹菌での大量発現を試みた。まずフェリクローム生合成遺伝子のうちＮＲＰＳをコードするａｓｂ２を液体培養で高発現するｍｅｌＯプロモーター（特願平１１−１５４２７１）支配下で高発現させた麹菌を育種し、得られた形質転換体にｍｅｌＯプロモーター支配下でｎｐｇＯを発現するプラスミドをさらに形質転換した。このａｓｂ２、ｎｐｇＯともに高発現した形質転換体は、ａｓｂ２のみ高発現した対照株の８．５倍のフェリクロームを生産した。よって、ｎｐｇＯは、ａｓｂ２などのＮＲＰＳ遺伝子産物を活性型に変換することが示された。ｍｅｌＯ遺伝子は、麹菌のチロシナーゼ遺伝子として既知であり（Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ａｃｔａ．、１２６１（１）、ｐ．１５１、１９９５）、ｍｅｌＯプロモーター含有プラスミドを導入した形質転換体（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ ＭＥＬ−Ｐ４５０ｎｏｒ）は生命工学工業技術研究所（現、特許生物寄託センター）にＦＥＲＭ Ｐ−１７９４２として寄託されている。なお、ｍｅｌＯプロモーターの塩基配列を図１９に示す。
【００２３】
このように単離した遺伝子は単独であるいはｍｅｌＯやｇｌａＢ遺伝子プロモーター（特願平１１−１５４２７１、特開平１１−２４３９６５）のような高発現プロモーターと共に、Ａ．ｏｒｙｚａｅにて発現させて、ＮＲＰＳの活性を制御しうるものである。遺伝子導入方法は、例えば宿主としてｎｉａＤ変異株（例えば、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ １０１３−ｎｉａＤ：ＦＥＲＭ ｐ−１７７０７）を用いる公知方法により、目的遺伝子とマーカー遺伝子であるｎｉａＤ遺伝子を同時に導入する。（Ｓ． ＵｎｋｌｅらＭｏｌ． Ｇｅｎ． Ｇｅｎｅｔ．、２１８、ｐ．９９−１０４ １９８９）この遺伝子導入の際に、ベクター配列などの異種遺伝子を排除することにより、異種遺伝子を全く含まないセルフクローニング株の形質転換体を得ることができる。
【００２４】
以下に本発明の詳細について述べる。
【００２５】
麹菌のゲノム遺伝子コンティグ中に新規なホスホパントテン酸転移酵素遺伝子が存在することが示唆された。麹菌ゲノムデータに含まれるコンティグ配列の中でＢｌａｓｔ検索結果から、Ａ． ｎｉｄｕｌａｎｓのホスホパントテン酸転移酵素遺伝子ｎｐｇＡと相同性を有する遺伝子を抽出した。Ｃｏｎｔｉｇ１６１６（５７４５７ ｂｐ）中でＧｅｎｅ ＦｉｎｄｉｎｇされたＣｏｎ１６１６−ＪＵＮＫ−１（１１１９９−１２５５２）は、Ａ．ｎｉｄｕｌａｎｓのホスホパントテン酸転移酵素遺伝子ｎｐｇＡと５７％の相同性を示した。鉄制限培地の液体培養した麹菌菌体から調製したポリＡ＋ＲＮＡを鋳型にＲＴ−ＰＣＲで増幅したｃＤＮＡをクローニングし、塩基配列を決定した結果、Ｇｅｎｅ Ｆｉｎｄｉｎｇとは異なる正確なコーディング領域が明らかとなり、イントロンが存在しないことが明らかとなった。本遺伝子は配列番号１に示す３４３アミノ酸残基からなるタンパク質をコードしており、イントロンを含まなかった。コーディング領域は配列番号２の１から１０３２ｂｐである。得られた遺伝子をｎｐｇＯと命名した。すなわち、本発明に係る麹菌のホスホパントテン酸転移酵素のアミノ酸配列を配列番号１（図１、図２）に示し、それをコードする遺伝子（ｎｐｇＯ遺伝子）の塩基配列を配列番号２（図３）に示した。
【００２６】
さらにｎｐｇＯの機能解析のために、麹菌での発現解析を行った。フェリクローム生合成に関与するＮＲＰＳをコードするａｓｂ２をｍｅｌＯプロモーター支配下で、ｓＣをマーカーとして麹菌Ａ．ｏｒｙｚａｅ Ｍ−ＮＳ４に形質転換した。得られた形質転換体に対して、ｍｅｌＯプロモーター支配下のｎｐｇＯをｎｉａＤをマーカーとして形質転換した。得られた形質転換体は、３０℃７日間の鉄制限の液体培養で、ａｓｂ２のみ高発現した対照株の８．５倍のフェリクロームを生産した。よって、ｎｐｇＯは、ａｓｂ２などのＮＲＰＳ遺伝子産物を翻訳後活性型に変換することが示された。
【００２７】
本発明は、これら有用新知見に基づいてなされたものであって、ホスホパントテン酸転移酵素活性を有するタンパク質、それをコードする遺伝子、及びその利用に関するものであり、その態様例は以下に示される。
【００２８】
（態様１） 以下の（ａ）または（ｂ）のタンパク質：
（ａ）配列番号１で示されるアミノ酸配列からなるタンパク質、または、（ｂ）アミノ酸配列（ａ）においてアミノ酸が欠失、置換もしくは付加されたアミノ酸配列からなり、かつホスホパントテン酸転移酵素活性を有するタンパク質。
【００２９】
（態様２） 配列番号２の塩基配列で示される、請求項１記載のタンパク質（ａ）をコードする遺伝子、または、該遺伝子とストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、かつホスホパントテン酸転移酵素活性を有するタンパク質（ｂ）をコードする遺伝子のＤＮＡ。
【００３０】
本発明において、上記した特定のアミノ酸配列には、これと実質的に同一のアミノ酸配列も包含されるものである。本発明における特定のアミノ酸配列と実質的に同一のアミノ酸配列とは、該アミノ酸配列と全アミノ酸配列に亘ってアラインメントして比較した場合に、全体の平均で約３０％以上、好ましくは約５０％以上、更に好ましくは約８０％以上、特に好ましくは約９０％以上のアミノ酸が同一であるようなアミノ酸配列を意味する。従って、或るアミノ酸配列と実質的に同一のアミノ酸配列から成るタンパク質は、該アミノ酸配列から成るタンパク質と実質的に同等の機能を有するものと考えられる。
【００３１】
又、本発明タンパク質における特定のアミノ酸配列において一部のアミノ酸が欠失、置換又は付加されたアミノ酸配列とは、該アミノ酸配列から成るタンパク質と実質的に同等の機能を有する限りにおいて、好ましくは、１〜２０個程度、より好ましくは１〜１０個程度、さらに好ましくは数個のアミノ酸が欠失、置換又は付加したアミノ酸配列、或いはそれらを組み合わせたアミノ酸配列から成るものを意味する。又、タンパク質の「機能」とは、それが細胞（菌体）の内部及び／又は外部において示す生物学的機能又は活性を意味する。
【００３２】
上記の特定のアミノ酸配列と実質的に同一のアミノ酸配列から成るタンパク質、又はその一部のアミノ酸が欠失、置換又は付加したアミノ酸配列から成るタンパク質は、例えば、部位特異的変異導入法、遺伝子相同組換え法、プライマー伸長法、及びＰＣＲ法等の当業者に周知の方法を適宜組み合わせて、容易に作成することが可能である。
尚、その際に、実質的に同等の機能を有するためには、当該タンパク質を構成するアミノ酸のうち、同族アミノ酸（極性・非極性アミノ酸、疎水性・親水性アミノ酸、陽性・陰性荷電アミノ酸、芳香族アミノ酸など）同士の置換が可能性として考えられる。又、実質的に同等の機能の維持のためには、本発明の各タンパク質に含まれる機能ドメイン内のアミノ酸は保持されることが望ましい。
【００３３】
本明細書において、「ストリンジェントな条件下」とは、各塩基配列間の相同性の程度が、例えば、全体の平均で約８０％以上、好ましくは約９０％以上、より好ましくは約９５％以上であるような、高い相同性を有する塩基配列間のみで、特異的にハイブリッドが形成されるような条件を意味する。具体的には、例えば、温度６０℃〜６８℃において、ナトリウム濃度１５０〜９００ｍＭ、好ましくは６００〜９００ｍＭ、ｐＨ ６〜８であるような条件を挙げることが出来る。
ハイブリダイゼーションは、例えば、カレント・プロトコールズ・イン・モレキュラー・バイオロジー（Ｃｕｒｒｅｎｔ ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｂｉｏｌｏｇｙ（ｅｄｉｔｅｄ ｂｙ Ｆｒｅｄｅｒｉｃｋ Ｍ． Ａｕｓｕｂｅｌ ｅｔ ａｌ．、１９８７））に記載の方法等、当業界で公知の方法あるいはそれに準じる方法に従って行なうことができる。また、市販のライブラリーを使用する場合、添付の使用説明書に記載の方法に従って行なうことができる。
【００３４】
このように、本発明に係るｎｐｇＯ遺伝子は新規なものであって、従来既知のホスホパントテン酸転移酵素とは異なる新規ホスホパントテン酸転移酵素をコードする遺伝子、該新規ホスホパントテン酸転移酵素活性を有するタンパク質をコードする遺伝子、これらの遺伝子の少なくともひとつを含有する遺伝子、から選ばれる少なくともひとつを指示するものである（以下、単にｎｐｇＯ遺伝子ということもあり、その塩基配列（１０３２ｂｐ）を配列表の配列番号２、及び、図面の図３に示す。）
【００３５】
本発明に係るホスホパントテン酸転移酵素をコードする遺伝子（ｎｐｇＯ遺伝子）のＤＮＡは、その塩基配列が配列番号２（図３）に示すように、本発明者らによって明らかにされているので、当業者に周知の方法で調製することができる。例えば、本明細書において具体的な塩基配列で示される各ＤＮＡは、アスペルギルス・オリゼのゲノムを出発材料として用いて、例えば、実施例で記載したショットガン・クローニング法によって調製することができる。その際、断片化された各染色体ＤＮＡは、その長さ等に応じて、プラスミドベクター又はファージ等の適当なクローニングベクターに連結し、これを用いてエレクトロポレーション法等の適当な方法によって大腸菌等の適当な宿主細胞を形質転換し、該断片化各染色体ＤＮＡをクローニングする為の、クローンライブラリーを調製することができる。
更に、化学分解法（マキサム−ギルバート法）及びジデオキシ法等の公知の方法に従って、かかるクローンライブラリーから得られる断片化各染色体ＤＮＡの塩基配列を決定することができる。
【００３６】
或は、本明細書に記載された本発明ＤＮＡの塩基配列又はアミノ酸配列の情報に基づき、当業者に周知の化学合成、又は、本発明のプライマーを使用したＰＣＲにより増幅して調製することも出来る。
【００３７】
本発明に係るＤＮＡ源として用いるアスペルギルス・オリゼのゲノムの１例としては、アスペルギルス・オリゼＲＩＢ４０株のゲノムを使用することができる。なお、本菌株は、独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センターにＦＥＲＭ Ｐ−１８２７３として寄託されている。また、麹菌Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ（アスペルギルス・オリゼ）のゲノム配列も一部公開されているので、これをＤＮＡ源としてもよく、本発明に係るｎｐｇＯ遺伝子のＤＮＡの調製は容易である。その際、後記する具体的実施例によれば、本遺伝子のクローニングは更に容易である。
【００３８】
このように、ホスホパントテン酸転移酵素遺伝子（例えば、ｎｐｇＯ遺伝子）の調製が容易に行われるだけでなく、この遺伝子と非リボソーム型ペプチド合成酵素（ＮＲＰＳ）遺伝子（例えば、ａｓｂ２、ａｓｂ４遺伝子）とを共発現せしめて、非リボソーム型ペプチド（例えば、フェリクローム）を効率的に生産する新規形質転換体の調製も当業者にとって容易である。
【００３９】
すなわち、ｍｅｌＯプロモーター、ｎｉａＤ変異株はいずれも既知であり、寄託もされているので（ＦＥＲＭ Ｐ−１７９４２、ＦＥＲＭ Ｐ−１７７０７）、入手には何の困難性もないし、更に、既述のように、ａｓｂ２、ａｓｂ４についても既に特許出願が完了している（特願２００１−３２４１１２、特願２００２−２４８７５２）。ａｓｂ２遺伝子ＤＮＡの塩基配列を配列番号５（図６〜図１０）に示し、ａｓｂ４遺伝子ＤＮＡの塩基配列を配列番号６（図１１〜図１８）に示し、且つａｓｂ２遺伝子を導入した形質転換体エシェリヒア・コリ（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ）ＡＳＢ２は寄託されており（ＦＥＲＭ Ｐ−１８５４１）、これらの入手調製は容易である。
【００４０】
そして更に、宿主として用いた上記Ａ．ｏｒｙｚａｅ Ｍ−ＮＳ４は、独立行政法人酒類総合研究所より分譲していただける株であり、また本発明の形質転換もＰＥＧカルシウム法の常法を用いればよく、よって、本菌株は、当業者ならば、本発明の実施例に従えば容易に育種できる。本菌株を育種することによって、麹菌のフェリクロームの大量生産が可能となる。
【００４１】
以上の結果より、クローニングした遺伝子断片ｎｐｇＯには、ホスホパントテン酸転移酵素遺伝子がコードされていることが確認できた。得られたホスホパントテン酸転移酵素遺伝子をフェリクローム生合成に関与するＮＲＰＳ遺伝子ａｓｂ２、ａｓｂ４とともに発現させれば、フェリクロームの生産性を向上させることができる。また、こうして生産されたフェリクロームを鉄キレート剤としての試薬、ならびに貧血の改善効果が期待できる機能性食品への添加に提供するが可能となる。
以下、本発明の実施例について述べる。
【００４２】
【実施例１】
麹菌ゲノム配列コンティグからのホスホパントテン酸転移酵素遺伝子のクローニング
麹菌Ａ．ｏｒｙｚａｅ のＮＲＰＳの翻訳後活性化に関与する新規なホスホパントテン酸転移酵素遺伝子のクローニングを行うために、麹菌ゲノム配列コンティグの検索を行った。麹菌ゲノムデータに含まれるコンティグ配列の中でＢｌａｓｔ検索結果から、ホスホパントテン酸転移酵素遺伝子と考えられる遺伝子を抽出した。Ｇｅｎｅ ＦｉｎｄｉｎｇされたＣｏｎｔｉｇ１６１６（５７４５７ ｂｐ）中でＣｏｎ１６１６−ＪＵＮＫ−１（１１１９９−１２５５２）は、Ａ．ｎｉｄｕｌａｎｓのホスホパントテン酸転移酵素遺伝子ｎｐｇＡと５７％の相同性を示した。
【００４３】
この全長のｃＤＮＡを得るためにＲＴ−ＰＣＲを行った。３０℃、４日間鉄制限培地（２％グルコース、０．６％アスパラギン、０．１％リン酸１水素２カリウム、０．１％硫酸マグネシウム、０．０４％塩化カルシウム、ｐＨ６．０）で液体培養した麹菌菌体からニッポンジーン社ＩＳＯＧＥＮを利用して全ＲＮＡを抽出した。その全ＲＮＡから宝酒造Ｏｌｉｇｏｔｅｘ−ｄＴ３０＜Ｓｕｐｅｒ＞ｍＲＮＡ ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｋｉｔを用いてｍＲＮＡを抽出した。得られたｍＲＮＡ ０．５μｇをもとに宝酒造のＴａｋａｒａ ＲＮＡ ＬＡ ＰＣＲ ｋｉｔ （ＡＭＶ） ｖｅｒ．１．１によりＲＴ−ＰＣＲを試みた。プライマーはＰ１：配列番号３（図４）Ｐ２：配列番号４（図５）を利用した。 反応条件は、以下にしたがった。
【００４４】
ＰＣＲ条件
● ３０℃ （１０分）、４２℃ （６０分）、９９℃ （５分）、５℃ （５分）、９６℃ （５分），１サイクル
● ９６℃ （２０秒）、４５℃ （３０秒）、７２℃ （３分）、３０サイクル７２℃ （７分）、１サイクル
● ７２℃（７分）、１サイクル
【００４５】
反応液をアガロースゲル電気泳動で解析を行った結果、約１−ｋｂのフラグメントの増幅が認められた。本増幅産物の塩基配列を決定した結果、ゲノム配列でＧｅｎｅＦｉｎｄｉｎｇされていたのは、Ｃｏｎｔｉｇ１６１６（５７４５７ ｂｐ）中で １１１９９−１２５５２ ｂｐ（Ｃｏｎ１６１６−ＪＵＮＫ−１）であったが、実際には１０５９９−１１６３０ｂｐがコーディング領域であった。またイントロンは、存在しなかった。本遺伝子は配列番号１に示す３４３アミノ酸残基からなるタンパク質をコードしており、イントロンを含まなかった。コーディング領域は配列番号２の１から１０３２ｂｐである。また、Ａ．ｎｉｄｕｌａｎｓのホスホパントテン酸転移酵素遺伝子ｎｐｇＡと５７％の相同性を示した。得られた遺伝子をｎｐｇＯと命名した。
【００４６】
【実施例２】
ｎｐｇＯ遺伝子の麹菌での高発現
麹菌でのｎｐｇＯの機能を決定するために高発現を試みた。まず各種プラスミドを構築した。プラスミドＡは、ｐＵＣ１１９のＰｓｔＩ−ＨｉｎｄＩＩＩにＡ．ｏｒｙｚａｅの４．５−ｋｂ ｎｉａＤ、ｍｅｌＯプロモーター１−ｋｂとｎｐｇＯ １−ｋｂのＳａｌＩを順にサブクローニングした。プラスミドＢは、ｐＵＣ１１８のＢａｍＨＩにＡ．ｏｒｙｚａｅの３−ｋｂ ｓＣ ＢａｍＨＩ−ＢｇｌＩＩ、ｍｅｌＯプロモーター１−ｋｂとａｓｂ２ ６−ｋｂのＢａｍＨＩの順にサブクローニングした。対照として用いるプラスミドＣは、ｐＵＣ１１９のＰｓｔＩ−ＨｉｎｄＩＩＩにＡ．ｏｒｙｚａｅの４．５−ｋｂ ｎｉａＤをサブクローニングし、プラスミドＤは、ｐＵＣ１１８のＢａｍＨＩにＡ．ｏｒｙｚａｅの３−ｋｂ ｓＣ ＢａｍＨＩ−ＢｇｌＩＩをサブクローニングした。形質転換は、独立行政法人酒類総合研究所から供与されたＡ．ｏｒｙｚａｅ Ｍ−ＮＳ４（ｎｉａＤ、ｓＣ）を宿主として行った。目的の形質転換体は、Ｍ−ＮＳ４株にプラスミドＢ、プラスミドＡの順に形質転換した。また対照株１として、Ｍ−ＮＳ４株にプラスミドＤ、プラスミドＡの順に形質転換した株、対照株２としてＭ−ＮＳ４株にプラスミドＢ、プラスミドＣの順に形質転換した株を用いた。
【００４７】
得られた形質転換体を鉄制限培地（２％グルコース、０．６％アスパラギン、０．１％リン酸１水素２カリウム、０．１％硫酸マグネシウム、０．０４％塩化カルシウム、ｐＨ６．０）にて３０℃７日間の液体培養を行った。目的の形質転換体は４６．１ｍｇ／１Ｌ−ｂｒｏｔｈのフェリクロームを菌体外に分泌した。一方、対照株１は、３．５ｍｇ／１Ｌ−ｂｒｏｔｈ、対照株２は、５．４ｍｇ／１Ｌ−ｂｒｏｔｈの生産量を示した。形質転換体は、対照株２の８．５倍のフェリクロームを菌体外に分泌した。
【００４８】
以上の結果より、クローニングした遺伝子断片ｎｐｇＯには、ホスホパントテン酸転移酵素遺伝子がコードされていることが確認できた。得られたホスホパントテン酸転移酵素遺伝子をフェリクローム生合成に関与するＮＲＰＳ遺伝子ａｓｂ２、ａｓｂ４とともに発現させれば、フェリクロームの生産性を向上させることができる。またこうして生産されたフェリクロームを鉄キレート剤としての試薬、ならびに貧血の改善効果が期待できる機能性食品への添加に提供することが可能となる。
【００４９】
【発明の効果】
本発明により、麹菌Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅのフェリクロームを含む二次代謝産物の生産を自由に制御するために、麹菌のホスホパントテン酸転移酵素遺伝子ｎｐｇＯを提供することができた。またこの遺伝子をＮＲＰＳとともに高発現することにより、フェリクロームなどのＮＲＰＳによって生合成される非リボソーム型ペプチドの生産能を大きく改善できることができた。種々のＮＲＰＳ遺伝子を高発現させた麹菌で本遺伝子を高発現することにより、産業利用レベルの非リボソーム型ペプチド生産能が可能な麹菌を育種できることができた。
【００５０】
【配列表】
【図面の簡単な説明】
【図１】ホスホパントテン酸転移酵素のアミノ酸配列を示す。
【図２】同上の続きを示す。
【図３】ホスホパントテン酸転移酵素をコードする遺伝子（ｎｐｇＯ遺伝子）の塩基配列を示す。
【図４】プライマーＰ１を示す。
【図５】プライマーＰ２を示す。
【図６】ペプチドシンテターゼ遺伝子（ａｓｂ２遺伝子）の塩基配列を示す。
【図７】同上の続きを示す。
【図８】同上の続きを示す。
【図９】同上の続きを示す。
【図１０】同上の続きを示す。
【図１１】ペプチドシンテターゼ遺伝子（ａｓｂ４遺伝子）の塩基配列を示す。
【図１２】同上の続きを示す。
【図１３】同上の続きを示す。
【図１４】同上の続きを示す。
【図１５】同上の続きを示す。
【図１６】同上の続きを示す。
【図１７】同上の続きを示す。
【図１８】同上の続きを示す。
【図１９】ｍｅｌＯプロモーターの塩基配列を示す。
【発明の属する技術分野】
本発明は、麹菌のホスホパントテン酸転移酵素タンパク質、該タンパク質をコードする遺伝子、該遺伝子を含有する組み換えベクター、該組み換えベクターを含有する形質転換体、該遺伝子を含有する組み換え麹菌、該形質転換体が生産する非リボソーム型ペプチド、任意のペプチドシンテターゼ遺伝子を高発現した株にホスホパントテン酸転移酵素遺伝子を含有する組み換えベクターを導入した形質転換体、該形質転換体が生産する非リボソーム型ペプチド、任意のペプチドシンテターゼ遺伝子を高発現した麹菌にホスホパントテン酸転移酵素遺伝子を含有する組み換えベクターを導入した麹菌、該麹菌が生産する非リボソーム型ペプチドに関するものである。
【０００２】
【従来の技術】
細菌、放線菌、糸状菌などの微生物は、種々の低分子の二次代謝産物を生合成する能力を有し、これらは長い歴史の間、産業的に非常に利用されてきた。その二次代謝産物の中でもポリケチドや非リボソーム型ペプチドは、ペニシリン、シクロスポリンなどの抗生物質を代表に最も産業的に重要な二次代謝産物である。これらは従来野生株あるいは変異株による発酵法により生産されてきたが、その生産量は微量であるために非常に高価なものが多かった。よって安価にこれらの二次代謝産物を提供するために、遺伝子工学的手法による高生産法の確立が求められた。近年の生化学的な研究から、ポリケチドや非リボソーム型ペプチドの基本骨格の生合成にはポリケチド合成酵素（ＰＫＳ）や非リボソーム型ペプチド合成酵素（ＮＲＰＳ）が関与していることが明らかとなった。
【０００３】
ＰＫＳやＮＲＰＳは、複合型の巨大酵素であり、全長が１５，０００アミノ酸残基を越えるものも存在する。よって、そのコード遺伝子は、全長２０−５０ｋｂに及ぶものも存在する。このような長鎖の遺伝子はサブクローニングが難しく、遺伝子工学的手法を用いた高発現のために、ゲノム中に存在する該遺伝子のエンハンサー領域を高発現エンハンサーに相同組み換えさせる手法が行われた。しかし、該形質転換体は期待するほどの二次代謝産物の生産を示さないことが多く、実用的には該形質転換体は利用されていなかった。
【０００４】
この原因として、本発明者らは、以下のような仮説をたてた。複合型巨大酵素であるＰＫＳやＮＲＰＳは、複数のタンパク質機能モチーフを有しており、ＮＲＰＳの場合代表的なものとしてアミノ酸活性化ドメイン、アシルキャリアータンパク質、縮合ドメインがあげられる。このうちアシルキャリアータンパク質は、活性発現のために補欠因子として共有結合したホスホパントテン酸を要求する。この翻訳後の修飾は、Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｕｂｔｉｌｉｓにおいて、ホスホパントテン酸転移酵素によって触媒されることがＭｏｏｔｚ ＨＤ ｅｔ． ａｌ． （例えば、非特許文献１参照）によって示された。また、糸状菌Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｄｕｌａｎｓにおいてもホスホパントテン酸転移酵素遺伝子がクローニングされ、Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅのＬｙｓ５変異を相補できることが示された（例えば、非特許文献２参照）。
【０００５】
産業用微生物として多く利用される麹菌Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅにおいても上記ホスホパントテン酸転移酵素遺伝子が存在し、多くの二次代謝産物生産に寄与すると推測される。現在までに麹菌はフェリクロームとよばれる鉄イオンをキレートできる非リボソーム型ペプチドを生産できることが明らかとなっている。我々は麹菌のフェリクローム生合成に関与する遺伝子群としてフェリクローム生合成を負に制御する転写制御因子ｓｒｅＯ（例えば、特許文献１参照）、フェリクローム生合成の第一段階を触媒するオルニチンＮ５オキシゲナーゼをコードするａｓｂ１（特願２００１−１７６２６４）、麹菌のフェリクローム生合成に関与するペプチドシンテターゼ遺伝子をコードするａｓｂ２（特願２００１−３２４１１２）、麹菌のフェリクローム生合成に関与するクラスター遺伝子ａｓｂ３、ａｓｂＴ、ａｎｋＯ、ａｓｂＲ（特願２００１−３２４１８１）、麹菌のフェリクローム生合成に関与するペプチドシンテターゼ遺伝子をコードするａｓｂ４（特願２００２−３４８７５２）をクローニングしている。このうち、ａｓｂ２、ａｓｂ４の遺伝子は、高発現してもフェリクローム生産性の向上に寄与しなかった。
【０００６】
その原因について本発明者らは、各方面から検討した結果、これは、上記のホスホパントテン酸転移酵素による翻訳後修飾されなかったアポ酵素しか生産されず、活性型であるホロ酵素が生産されなかったためとの観点にはじめてたった。そして、本発明者らは、麹菌においても、ペプチドシンテターゼ遺伝子とともにホスホパントテン酸転移酵素遺伝子も高発現することにより目的の二次代謝産物の生産性を実用レベルに向上できることにはじめて着目し、２００２年に一部公開された麹菌Ａ．ｏｒｙｚａｅのゲノム配列から、麹菌の種々の二次代謝産物の生産性を実用レベルに向上できるホスホパントテン酸転移酵素をコードする遺伝子を取得できるとの新規着想を得た。
【０００７】
【非特許文献１】
「ジャーナル オブ バイオロジカル ケミストリー（Ｊ． Ｂｉｏｌ． Ｃｈｅｍ．）」、２７６、３７２８９−３７２９８、２００１
【０００８】
【非特許文献２】
ムーツ ＨＤ他（Ｍｏｏｔｚ ＨＤ ｅｔ． ａｌ．）、「ＦＥＭＳ マイクロバイオロジカル レター（ＦＥＭＳ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ． Ｌｅｔｔ．）」 ２１３、５１−５７、２００２
【０００９】
【特許文献１】
特開２００２−２７２４７７号公報
【００１０】
【発明が解決しようとする課題】
本発明は、麹菌Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅのフェリクロームを含む二次代謝産物の生産を自由に制御するために、麹菌のホスホパントテン酸転移酵素遺伝子を提供することにある。本発明の他の目的は、本遺伝子を含有する組み換えベクターとこの組み換えベクターを含有する形質転換体を提供することにある。また該形質転換体が生産する非リボソーム型ペプチドを提供することにある。さらに、任意のＮＲＰＳ、ＰＫＳを高発現させた株に上記組み換えベクターを導入した株を用いて、任意の非リボソーム型ペプチドを提供することにある。
【００１１】
現在までに我々は、麹菌のフェリクローム生合成に関与する遺伝子群としてフェリクローム生合成を負に制御する転写制御因子ｓｒｅＯ（特開２００２−２７２４７７）、フェリクローム生合成の第一段階を触媒するオルニチンＮ５オキシゲナーゼをコードするａｓｂ１（特願２００１−１７６２６４）、麹菌のフェリクローム生合成に関与するペプチドシンテターゼ遺伝子をコードするａｓｂ２（特願２００１−３２４１１２）、麹菌のフェリクローム生合成に関与するクラスター遺伝子ａｓｂ３、ａｓｂＴ、ａｎｋＯ、ａｓｂＲ（特願２００１−３２４１８１）、麹菌のフェリクローム生合成に関与するペプチドシンテターゼ遺伝子をコードするａｓｂ４（特願２００２−３４８７５２）をクローニングしている。このうち、ａｓｂ２、ａｓｂ４の遺伝子は、高発現してもフェリクローム生産性の向上に大きく寄与しなかった。これは、ホスホパントテン酸転移酵素による翻訳後修飾されなかったアポ酵素しか生産されなかったためとの新規観点にたった。
【００１２】
本発明者らは、上記新規観点にたち、麹菌においてもペプチドシンテターゼ遺伝子とともにホスホパントテン酸転移酵素遺伝子も高発現することにより目的の二次代謝産物の生産性を実用レベルに向上できることにはじめて着目し、２００２年に一部公開された麹菌Ａ．ｏｒｙｚａｅのゲノム配列から、麹菌の種々の二次代謝産物の生産性を実用レベルに向上できるホスホパントテン酸転移酵素をコードする遺伝子を取得できるとの新規着想を得た。
【００１３】
例えば、得られたホスホパントテン酸転移酵素遺伝子をフェリクローム生合成に関与するＮＲＰＳ遺伝子（非リボソーム型ペプチドの一種であるフェリクローム生合成に関与するペプチド合成酵素（ペプチドシンテターゼ）をコードする遺伝子：例えばａｓｂ２、ａｓｂ４遺伝子）とともに発現させれば、ＮＲＰＳ遺伝子単独発現の場合と異なり、ＮＲＰＳ遺伝子がコードするペプチドシンテターゼが非活性のアポ酵素として生産されるのではなく活性型のホロ酵素として生産され、その結果、フェリクロームの生産性が向上し得るとの新規着想を得た。そして、このような新規着想を実現することにより、効率的に生産されたフェリクロームは、例えば鉄キレート剤としての試薬のほか、貧血の改善効果が期待できる機能性食品や医薬品自体として有効利用できるだけでなく、これらに添加する成分としても利用可能となり、その有効性は非常に大きいものがある。
【００１４】
【課題を解決するための手段】
麹菌Ａ．ｏｒｙｚａｅは、酒、醤油、味噌などの我が国の伝統的醗酵産業で使用されてきた糸状菌である。本菌株は、上記醗酵産業で有用なタンパク質や低分子を非常に大量に生産することである。本菌株が持つ高いタンパク質生産能と醸造微生物としての安全性から、異種タンパク質生産の宿主として注目されている。（Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ、６、１４１９（１９８８）、特開昭６２−２７２９８８）。発明者らの研究から、Ａ．ｏｒｙｚａｅを用いた異種タンパク質生産においては、アスペルギルス属などの近種の遺伝子であれば、その生産能はさらに増大することが認められた。特にＡ．ｏｒｙｚａｅの遺伝子を、Ａ．ｏｒｙｚａｅの高発現プロモーター制御下で発現させた場合、非常に大量のタンパク質が生産されることを見出した（特開平１１−１５４２７１、特願２０００−３６７５４）。また、Ａ．ｏｒｙｚａｅは、上記のようなタンパク質、酵素のみならず、産業的にも非常に貴重な２次代謝産物である低分子成分の生産も報告されている。中でも麹菌が固体培養で生産するフェリクロームは、近年貧血などの鉄欠乏症用の機能性成分としても非常に注目されている物質である。
【００１５】
この麹菌のフェリクロームを医薬・食品に利用するためには、生産性をさらに向上させる必要があるが、変異法などの既存の菌株育種方法では、工業生産レベルにまで生産性が向上した変異株の取得はできなかった。そこで、本発明者らは、フェリクローム生合成に関与する遺伝子を単離し、これらの遺伝子の発現能を強化することによりフェリクロームの大量生産が可能であると考えた。
【００１６】
麹菌におけるフェリクローム生合成経路については、その生合成の第一段階はオルニチンＮ５オキシゲナーゼによるオルニチンのヒドロキシル化であり、続いてペプチドシンテターゼによるＮ−ヒドロキシオルニチンのトリペプチドにグリシン、セリン、アラニンの環状ペプチド化であると考えられる。現在までに我々は麹菌のフェリクローム生合成に関与する遺伝子群としてフェリクローム生合成を負に制御する転写制御因子ｓｒｅＯ（特願２００１−８３６４０）、フェリクローム生合成の第一段階を触媒するオルニチンＮ５オキシゲナーゼをコードするａｓｂ１（特願２００１−１７６２６４）、麹菌のフェリクローム生合成に関与するペプチドシンテターゼ遺伝子をコードするａｓｂ２（特願２００１−３２４１１２）、麹菌のフェリクローム生合成に関与するクラスター遺伝子ａｓｂ３、ａｓｂＴ、ａｎｋＯ、ａｓｂＲ（特願２００１−３２４１８１）、麹菌のフェリクローム生合成に関与するペプチドシンテターゼ遺伝子をコードするａｓｂ４（特願２００２−３４８７５２）をクローニングしている。このうち、ａｓｂ２、ａｓｂ４の遺伝子は、高発現してもフェリクローム生産性の向上に大きく寄与しなかった。
【００１７】
この原因として、本発明者らは、以下のような仮説をたてた。複合型巨大酵素であるＰＫＳやＮＲＰＳは、複数のタンパク質機能モチーフを有しており、ＮＲＰＳの場合代表的なものとしてアミノ酸活性化ドメイン、アシルキャリアータンパク質、縮合ドメインがあげられる。このうちアシルキャリアータンパク質は、活性発現のために補欠因子として共有結合したホスホパントテン酸を要求する。この翻訳後の修飾は、Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｕｂｔｉｌｉｓにおいて、ホスホパントテン酸転移酵素によって触媒されることがＭｏｏｔｚ ＨＤ ｅｔ． ａｌ． （Ｊ Ｂｉｏｌ Ｃｈｅｍ、２７６、３７２８９−３７２９８、２００１）によって示された。また、糸状菌Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｄｕｌａｎｓにおいてもホスホパントテン酸転移酵素遺伝子がクローニングされ、Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅのＬｙｓ５変異を相補できることが示された（Ｍｏｏｔｚ ＨＤ ｅｔ． ａｌ．、ＦＥＭＳ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ Ｌｅｔｔ、２１３、５１−５７、２００２）。
【００１８】
すなわち、ａｓｂ２、ａｓｂ４の遺伝子は、高発現してもフェリクローム生産性の向上に大きく寄与しなかったのは、ホスホパントテン酸転移酵素によって翻訳後修飾された活性型のホロ酵素であるＮＲＰＳが生産されなかったためであると本発明者らは考えた。よって、Ａ．ｏｒｙｚａｅからホスホパントテン酸転移酵素遺伝子をクローニングし、ａｓｂ２、ａｓｂ４の遺伝子とともに高発現させることにより大幅なフェリクローム生産能の上昇に寄与するとの新規着想を得た。その結果、フェリクロームの生産を自由に制御できる遺伝子組み換え麹菌を育種でき、フェリクロームの工業生産が可能になるとの新規着想を得た。以下、麹菌が生産するフェリクローム類の中でも、最も含有量の多いフェリクリシンの生産を中心に記述するが、本発明は全てのフェリクローム類に応用が可能な技術であり、フェリクリシンだけに限定するものではない。
【００１９】
我々は、フェリクリシン生合成に関与するＮＲＰＳ遺伝子ａｓｂ２、ａｓｂ４を高発現させ、その遺伝子産物を効率的にホスホパントテン酸転移酵素により翻訳後活性化させることにより、フェリクリシンの工業生産に適した遺伝子組み換え麹菌を育種することを試みた。
【００２０】
我々は、２００２年度に一部公開された麹菌のゲノム遺伝子配列から上記のホスホパントテン酸転移酵素遺伝子の探索が可能であると考えた。
【００２１】
麹菌ゲノムデータに含まれるコンティグ配列の中でＢｌａｓｔ検索結果から、ホスホパントテン酸転移酵素遺伝子と考えられる遺伝子を抽出した。その中でＧｅｎｅ ＦｉｎｄｉｎｇされたＣｏｎ１６１６−ＪＵＮＫ−１は、Ａ．ｎｉｄｕｌａｎｓのホスホパントテン酸転移酵素遺伝子ｎｐｇＡと５７％の相同性を示した。鉄制限培地の液体培養した麹菌菌体から調製したポリＡ＋ＲＮＡを鋳型に増幅したｃＤＮＡ解析から、本遺伝子はイントロンを含まなかった。本遺伝子は、３４３アミノ酸残基からなるタンパク質をコードしていた。得られた遺伝子をｎｐｇＯと命名した。
【００２２】
ｎｐｇＯの機能を同定するために、本遺伝子の麹菌での大量発現を試みた。まずフェリクローム生合成遺伝子のうちＮＲＰＳをコードするａｓｂ２を液体培養で高発現するｍｅｌＯプロモーター（特願平１１−１５４２７１）支配下で高発現させた麹菌を育種し、得られた形質転換体にｍｅｌＯプロモーター支配下でｎｐｇＯを発現するプラスミドをさらに形質転換した。このａｓｂ２、ｎｐｇＯともに高発現した形質転換体は、ａｓｂ２のみ高発現した対照株の８．５倍のフェリクロームを生産した。よって、ｎｐｇＯは、ａｓｂ２などのＮＲＰＳ遺伝子産物を活性型に変換することが示された。ｍｅｌＯ遺伝子は、麹菌のチロシナーゼ遺伝子として既知であり（Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ａｃｔａ．、１２６１（１）、ｐ．１５１、１９９５）、ｍｅｌＯプロモーター含有プラスミドを導入した形質転換体（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ ＭＥＬ−Ｐ４５０ｎｏｒ）は生命工学工業技術研究所（現、特許生物寄託センター）にＦＥＲＭ Ｐ−１７９４２として寄託されている。なお、ｍｅｌＯプロモーターの塩基配列を図１９に示す。
【００２３】
このように単離した遺伝子は単独であるいはｍｅｌＯやｇｌａＢ遺伝子プロモーター（特願平１１−１５４２７１、特開平１１−２４３９６５）のような高発現プロモーターと共に、Ａ．ｏｒｙｚａｅにて発現させて、ＮＲＰＳの活性を制御しうるものである。遺伝子導入方法は、例えば宿主としてｎｉａＤ変異株（例えば、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ １０１３−ｎｉａＤ：ＦＥＲＭ ｐ−１７７０７）を用いる公知方法により、目的遺伝子とマーカー遺伝子であるｎｉａＤ遺伝子を同時に導入する。（Ｓ． ＵｎｋｌｅらＭｏｌ． Ｇｅｎ． Ｇｅｎｅｔ．、２１８、ｐ．９９−１０４ １９８９）この遺伝子導入の際に、ベクター配列などの異種遺伝子を排除することにより、異種遺伝子を全く含まないセルフクローニング株の形質転換体を得ることができる。
【００２４】
以下に本発明の詳細について述べる。
【００２５】
麹菌のゲノム遺伝子コンティグ中に新規なホスホパントテン酸転移酵素遺伝子が存在することが示唆された。麹菌ゲノムデータに含まれるコンティグ配列の中でＢｌａｓｔ検索結果から、Ａ． ｎｉｄｕｌａｎｓのホスホパントテン酸転移酵素遺伝子ｎｐｇＡと相同性を有する遺伝子を抽出した。Ｃｏｎｔｉｇ１６１６（５７４５７ ｂｐ）中でＧｅｎｅ ＦｉｎｄｉｎｇされたＣｏｎ１６１６−ＪＵＮＫ−１（１１１９９−１２５５２）は、Ａ．ｎｉｄｕｌａｎｓのホスホパントテン酸転移酵素遺伝子ｎｐｇＡと５７％の相同性を示した。鉄制限培地の液体培養した麹菌菌体から調製したポリＡ＋ＲＮＡを鋳型にＲＴ−ＰＣＲで増幅したｃＤＮＡをクローニングし、塩基配列を決定した結果、Ｇｅｎｅ Ｆｉｎｄｉｎｇとは異なる正確なコーディング領域が明らかとなり、イントロンが存在しないことが明らかとなった。本遺伝子は配列番号１に示す３４３アミノ酸残基からなるタンパク質をコードしており、イントロンを含まなかった。コーディング領域は配列番号２の１から１０３２ｂｐである。得られた遺伝子をｎｐｇＯと命名した。すなわち、本発明に係る麹菌のホスホパントテン酸転移酵素のアミノ酸配列を配列番号１（図１、図２）に示し、それをコードする遺伝子（ｎｐｇＯ遺伝子）の塩基配列を配列番号２（図３）に示した。
【００２６】
さらにｎｐｇＯの機能解析のために、麹菌での発現解析を行った。フェリクローム生合成に関与するＮＲＰＳをコードするａｓｂ２をｍｅｌＯプロモーター支配下で、ｓＣをマーカーとして麹菌Ａ．ｏｒｙｚａｅ Ｍ−ＮＳ４に形質転換した。得られた形質転換体に対して、ｍｅｌＯプロモーター支配下のｎｐｇＯをｎｉａＤをマーカーとして形質転換した。得られた形質転換体は、３０℃７日間の鉄制限の液体培養で、ａｓｂ２のみ高発現した対照株の８．５倍のフェリクロームを生産した。よって、ｎｐｇＯは、ａｓｂ２などのＮＲＰＳ遺伝子産物を翻訳後活性型に変換することが示された。
【００２７】
本発明は、これら有用新知見に基づいてなされたものであって、ホスホパントテン酸転移酵素活性を有するタンパク質、それをコードする遺伝子、及びその利用に関するものであり、その態様例は以下に示される。
【００２８】
（態様１） 以下の（ａ）または（ｂ）のタンパク質：
（ａ）配列番号１で示されるアミノ酸配列からなるタンパク質、または、（ｂ）アミノ酸配列（ａ）においてアミノ酸が欠失、置換もしくは付加されたアミノ酸配列からなり、かつホスホパントテン酸転移酵素活性を有するタンパク質。
【００２９】
（態様２） 配列番号２の塩基配列で示される、請求項１記載のタンパク質（ａ）をコードする遺伝子、または、該遺伝子とストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、かつホスホパントテン酸転移酵素活性を有するタンパク質（ｂ）をコードする遺伝子のＤＮＡ。
【００３０】
本発明において、上記した特定のアミノ酸配列には、これと実質的に同一のアミノ酸配列も包含されるものである。本発明における特定のアミノ酸配列と実質的に同一のアミノ酸配列とは、該アミノ酸配列と全アミノ酸配列に亘ってアラインメントして比較した場合に、全体の平均で約３０％以上、好ましくは約５０％以上、更に好ましくは約８０％以上、特に好ましくは約９０％以上のアミノ酸が同一であるようなアミノ酸配列を意味する。従って、或るアミノ酸配列と実質的に同一のアミノ酸配列から成るタンパク質は、該アミノ酸配列から成るタンパク質と実質的に同等の機能を有するものと考えられる。
【００３１】
又、本発明タンパク質における特定のアミノ酸配列において一部のアミノ酸が欠失、置換又は付加されたアミノ酸配列とは、該アミノ酸配列から成るタンパク質と実質的に同等の機能を有する限りにおいて、好ましくは、１〜２０個程度、より好ましくは１〜１０個程度、さらに好ましくは数個のアミノ酸が欠失、置換又は付加したアミノ酸配列、或いはそれらを組み合わせたアミノ酸配列から成るものを意味する。又、タンパク質の「機能」とは、それが細胞（菌体）の内部及び／又は外部において示す生物学的機能又は活性を意味する。
【００３２】
上記の特定のアミノ酸配列と実質的に同一のアミノ酸配列から成るタンパク質、又はその一部のアミノ酸が欠失、置換又は付加したアミノ酸配列から成るタンパク質は、例えば、部位特異的変異導入法、遺伝子相同組換え法、プライマー伸長法、及びＰＣＲ法等の当業者に周知の方法を適宜組み合わせて、容易に作成することが可能である。
尚、その際に、実質的に同等の機能を有するためには、当該タンパク質を構成するアミノ酸のうち、同族アミノ酸（極性・非極性アミノ酸、疎水性・親水性アミノ酸、陽性・陰性荷電アミノ酸、芳香族アミノ酸など）同士の置換が可能性として考えられる。又、実質的に同等の機能の維持のためには、本発明の各タンパク質に含まれる機能ドメイン内のアミノ酸は保持されることが望ましい。
【００３３】
本明細書において、「ストリンジェントな条件下」とは、各塩基配列間の相同性の程度が、例えば、全体の平均で約８０％以上、好ましくは約９０％以上、より好ましくは約９５％以上であるような、高い相同性を有する塩基配列間のみで、特異的にハイブリッドが形成されるような条件を意味する。具体的には、例えば、温度６０℃〜６８℃において、ナトリウム濃度１５０〜９００ｍＭ、好ましくは６００〜９００ｍＭ、ｐＨ ６〜８であるような条件を挙げることが出来る。
ハイブリダイゼーションは、例えば、カレント・プロトコールズ・イン・モレキュラー・バイオロジー（Ｃｕｒｒｅｎｔ ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｂｉｏｌｏｇｙ（ｅｄｉｔｅｄ ｂｙ Ｆｒｅｄｅｒｉｃｋ Ｍ． Ａｕｓｕｂｅｌ ｅｔ ａｌ．、１９８７））に記載の方法等、当業界で公知の方法あるいはそれに準じる方法に従って行なうことができる。また、市販のライブラリーを使用する場合、添付の使用説明書に記載の方法に従って行なうことができる。
【００３４】
このように、本発明に係るｎｐｇＯ遺伝子は新規なものであって、従来既知のホスホパントテン酸転移酵素とは異なる新規ホスホパントテン酸転移酵素をコードする遺伝子、該新規ホスホパントテン酸転移酵素活性を有するタンパク質をコードする遺伝子、これらの遺伝子の少なくともひとつを含有する遺伝子、から選ばれる少なくともひとつを指示するものである（以下、単にｎｐｇＯ遺伝子ということもあり、その塩基配列（１０３２ｂｐ）を配列表の配列番号２、及び、図面の図３に示す。）
【００３５】
本発明に係るホスホパントテン酸転移酵素をコードする遺伝子（ｎｐｇＯ遺伝子）のＤＮＡは、その塩基配列が配列番号２（図３）に示すように、本発明者らによって明らかにされているので、当業者に周知の方法で調製することができる。例えば、本明細書において具体的な塩基配列で示される各ＤＮＡは、アスペルギルス・オリゼのゲノムを出発材料として用いて、例えば、実施例で記載したショットガン・クローニング法によって調製することができる。その際、断片化された各染色体ＤＮＡは、その長さ等に応じて、プラスミドベクター又はファージ等の適当なクローニングベクターに連結し、これを用いてエレクトロポレーション法等の適当な方法によって大腸菌等の適当な宿主細胞を形質転換し、該断片化各染色体ＤＮＡをクローニングする為の、クローンライブラリーを調製することができる。
更に、化学分解法（マキサム−ギルバート法）及びジデオキシ法等の公知の方法に従って、かかるクローンライブラリーから得られる断片化各染色体ＤＮＡの塩基配列を決定することができる。
【００３６】
或は、本明細書に記載された本発明ＤＮＡの塩基配列又はアミノ酸配列の情報に基づき、当業者に周知の化学合成、又は、本発明のプライマーを使用したＰＣＲにより増幅して調製することも出来る。
【００３７】
本発明に係るＤＮＡ源として用いるアスペルギルス・オリゼのゲノムの１例としては、アスペルギルス・オリゼＲＩＢ４０株のゲノムを使用することができる。なお、本菌株は、独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センターにＦＥＲＭ Ｐ−１８２７３として寄託されている。また、麹菌Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ（アスペルギルス・オリゼ）のゲノム配列も一部公開されているので、これをＤＮＡ源としてもよく、本発明に係るｎｐｇＯ遺伝子のＤＮＡの調製は容易である。その際、後記する具体的実施例によれば、本遺伝子のクローニングは更に容易である。
【００３８】
このように、ホスホパントテン酸転移酵素遺伝子（例えば、ｎｐｇＯ遺伝子）の調製が容易に行われるだけでなく、この遺伝子と非リボソーム型ペプチド合成酵素（ＮＲＰＳ）遺伝子（例えば、ａｓｂ２、ａｓｂ４遺伝子）とを共発現せしめて、非リボソーム型ペプチド（例えば、フェリクローム）を効率的に生産する新規形質転換体の調製も当業者にとって容易である。
【００３９】
すなわち、ｍｅｌＯプロモーター、ｎｉａＤ変異株はいずれも既知であり、寄託もされているので（ＦＥＲＭ Ｐ−１７９４２、ＦＥＲＭ Ｐ−１７７０７）、入手には何の困難性もないし、更に、既述のように、ａｓｂ２、ａｓｂ４についても既に特許出願が完了している（特願２００１−３２４１１２、特願２００２−２４８７５２）。ａｓｂ２遺伝子ＤＮＡの塩基配列を配列番号５（図６〜図１０）に示し、ａｓｂ４遺伝子ＤＮＡの塩基配列を配列番号６（図１１〜図１８）に示し、且つａｓｂ２遺伝子を導入した形質転換体エシェリヒア・コリ（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ）ＡＳＢ２は寄託されており（ＦＥＲＭ Ｐ−１８５４１）、これらの入手調製は容易である。
【００４０】
そして更に、宿主として用いた上記Ａ．ｏｒｙｚａｅ Ｍ−ＮＳ４は、独立行政法人酒類総合研究所より分譲していただける株であり、また本発明の形質転換もＰＥＧカルシウム法の常法を用いればよく、よって、本菌株は、当業者ならば、本発明の実施例に従えば容易に育種できる。本菌株を育種することによって、麹菌のフェリクロームの大量生産が可能となる。
【００４１】
以上の結果より、クローニングした遺伝子断片ｎｐｇＯには、ホスホパントテン酸転移酵素遺伝子がコードされていることが確認できた。得られたホスホパントテン酸転移酵素遺伝子をフェリクローム生合成に関与するＮＲＰＳ遺伝子ａｓｂ２、ａｓｂ４とともに発現させれば、フェリクロームの生産性を向上させることができる。また、こうして生産されたフェリクロームを鉄キレート剤としての試薬、ならびに貧血の改善効果が期待できる機能性食品への添加に提供するが可能となる。
以下、本発明の実施例について述べる。
【００４２】
【実施例１】
麹菌ゲノム配列コンティグからのホスホパントテン酸転移酵素遺伝子のクローニング
麹菌Ａ．ｏｒｙｚａｅ のＮＲＰＳの翻訳後活性化に関与する新規なホスホパントテン酸転移酵素遺伝子のクローニングを行うために、麹菌ゲノム配列コンティグの検索を行った。麹菌ゲノムデータに含まれるコンティグ配列の中でＢｌａｓｔ検索結果から、ホスホパントテン酸転移酵素遺伝子と考えられる遺伝子を抽出した。Ｇｅｎｅ ＦｉｎｄｉｎｇされたＣｏｎｔｉｇ１６１６（５７４５７ ｂｐ）中でＣｏｎ１６１６−ＪＵＮＫ−１（１１１９９−１２５５２）は、Ａ．ｎｉｄｕｌａｎｓのホスホパントテン酸転移酵素遺伝子ｎｐｇＡと５７％の相同性を示した。
【００４３】
この全長のｃＤＮＡを得るためにＲＴ−ＰＣＲを行った。３０℃、４日間鉄制限培地（２％グルコース、０．６％アスパラギン、０．１％リン酸１水素２カリウム、０．１％硫酸マグネシウム、０．０４％塩化カルシウム、ｐＨ６．０）で液体培養した麹菌菌体からニッポンジーン社ＩＳＯＧＥＮを利用して全ＲＮＡを抽出した。その全ＲＮＡから宝酒造Ｏｌｉｇｏｔｅｘ−ｄＴ３０＜Ｓｕｐｅｒ＞ｍＲＮＡ ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｋｉｔを用いてｍＲＮＡを抽出した。得られたｍＲＮＡ ０．５μｇをもとに宝酒造のＴａｋａｒａ ＲＮＡ ＬＡ ＰＣＲ ｋｉｔ （ＡＭＶ） ｖｅｒ．１．１によりＲＴ−ＰＣＲを試みた。プライマーはＰ１：配列番号３（図４）Ｐ２：配列番号４（図５）を利用した。 反応条件は、以下にしたがった。
【００４４】
ＰＣＲ条件
● ３０℃ （１０分）、４２℃ （６０分）、９９℃ （５分）、５℃ （５分）、９６℃ （５分），１サイクル
● ９６℃ （２０秒）、４５℃ （３０秒）、７２℃ （３分）、３０サイクル７２℃ （７分）、１サイクル
● ７２℃（７分）、１サイクル
【００４５】
反応液をアガロースゲル電気泳動で解析を行った結果、約１−ｋｂのフラグメントの増幅が認められた。本増幅産物の塩基配列を決定した結果、ゲノム配列でＧｅｎｅＦｉｎｄｉｎｇされていたのは、Ｃｏｎｔｉｇ１６１６（５７４５７ ｂｐ）中で １１１９９−１２５５２ ｂｐ（Ｃｏｎ１６１６−ＪＵＮＫ−１）であったが、実際には１０５９９−１１６３０ｂｐがコーディング領域であった。またイントロンは、存在しなかった。本遺伝子は配列番号１に示す３４３アミノ酸残基からなるタンパク質をコードしており、イントロンを含まなかった。コーディング領域は配列番号２の１から１０３２ｂｐである。また、Ａ．ｎｉｄｕｌａｎｓのホスホパントテン酸転移酵素遺伝子ｎｐｇＡと５７％の相同性を示した。得られた遺伝子をｎｐｇＯと命名した。
【００４６】
【実施例２】
ｎｐｇＯ遺伝子の麹菌での高発現
麹菌でのｎｐｇＯの機能を決定するために高発現を試みた。まず各種プラスミドを構築した。プラスミドＡは、ｐＵＣ１１９のＰｓｔＩ−ＨｉｎｄＩＩＩにＡ．ｏｒｙｚａｅの４．５−ｋｂ ｎｉａＤ、ｍｅｌＯプロモーター１−ｋｂとｎｐｇＯ １−ｋｂのＳａｌＩを順にサブクローニングした。プラスミドＢは、ｐＵＣ１１８のＢａｍＨＩにＡ．ｏｒｙｚａｅの３−ｋｂ ｓＣ ＢａｍＨＩ−ＢｇｌＩＩ、ｍｅｌＯプロモーター１−ｋｂとａｓｂ２ ６−ｋｂのＢａｍＨＩの順にサブクローニングした。対照として用いるプラスミドＣは、ｐＵＣ１１９のＰｓｔＩ−ＨｉｎｄＩＩＩにＡ．ｏｒｙｚａｅの４．５−ｋｂ ｎｉａＤをサブクローニングし、プラスミドＤは、ｐＵＣ１１８のＢａｍＨＩにＡ．ｏｒｙｚａｅの３−ｋｂ ｓＣ ＢａｍＨＩ−ＢｇｌＩＩをサブクローニングした。形質転換は、独立行政法人酒類総合研究所から供与されたＡ．ｏｒｙｚａｅ Ｍ−ＮＳ４（ｎｉａＤ、ｓＣ）を宿主として行った。目的の形質転換体は、Ｍ−ＮＳ４株にプラスミドＢ、プラスミドＡの順に形質転換した。また対照株１として、Ｍ−ＮＳ４株にプラスミドＤ、プラスミドＡの順に形質転換した株、対照株２としてＭ−ＮＳ４株にプラスミドＢ、プラスミドＣの順に形質転換した株を用いた。
【００４７】
得られた形質転換体を鉄制限培地（２％グルコース、０．６％アスパラギン、０．１％リン酸１水素２カリウム、０．１％硫酸マグネシウム、０．０４％塩化カルシウム、ｐＨ６．０）にて３０℃７日間の液体培養を行った。目的の形質転換体は４６．１ｍｇ／１Ｌ−ｂｒｏｔｈのフェリクロームを菌体外に分泌した。一方、対照株１は、３．５ｍｇ／１Ｌ−ｂｒｏｔｈ、対照株２は、５．４ｍｇ／１Ｌ−ｂｒｏｔｈの生産量を示した。形質転換体は、対照株２の８．５倍のフェリクロームを菌体外に分泌した。
【００４８】
以上の結果より、クローニングした遺伝子断片ｎｐｇＯには、ホスホパントテン酸転移酵素遺伝子がコードされていることが確認できた。得られたホスホパントテン酸転移酵素遺伝子をフェリクローム生合成に関与するＮＲＰＳ遺伝子ａｓｂ２、ａｓｂ４とともに発現させれば、フェリクロームの生産性を向上させることができる。またこうして生産されたフェリクロームを鉄キレート剤としての試薬、ならびに貧血の改善効果が期待できる機能性食品への添加に提供することが可能となる。
【００４９】
【発明の効果】
本発明により、麹菌Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅのフェリクロームを含む二次代謝産物の生産を自由に制御するために、麹菌のホスホパントテン酸転移酵素遺伝子ｎｐｇＯを提供することができた。またこの遺伝子をＮＲＰＳとともに高発現することにより、フェリクロームなどのＮＲＰＳによって生合成される非リボソーム型ペプチドの生産能を大きく改善できることができた。種々のＮＲＰＳ遺伝子を高発現させた麹菌で本遺伝子を高発現することにより、産業利用レベルの非リボソーム型ペプチド生産能が可能な麹菌を育種できることができた。
【００５０】
【配列表】
【図面の簡単な説明】
【図１】ホスホパントテン酸転移酵素のアミノ酸配列を示す。
【図２】同上の続きを示す。
【図３】ホスホパントテン酸転移酵素をコードする遺伝子（ｎｐｇＯ遺伝子）の塩基配列を示す。
【図４】プライマーＰ１を示す。
【図５】プライマーＰ２を示す。
【図６】ペプチドシンテターゼ遺伝子（ａｓｂ２遺伝子）の塩基配列を示す。
【図７】同上の続きを示す。
【図８】同上の続きを示す。
【図９】同上の続きを示す。
【図１０】同上の続きを示す。
【図１１】ペプチドシンテターゼ遺伝子（ａｓｂ４遺伝子）の塩基配列を示す。
【図１２】同上の続きを示す。
【図１３】同上の続きを示す。
【図１４】同上の続きを示す。
【図１５】同上の続きを示す。
【図１６】同上の続きを示す。
【図１７】同上の続きを示す。
【図１８】同上の続きを示す。
【図１９】ｍｅｌＯプロモーターの塩基配列を示す。
Claims (11)
- 以下の（ａ）または（ｂ）のタンパク質：
（ａ）配列番号１で示されるアミノ酸配列からなるタンパク質、または、（ｂ）アミノ酸配列（ａ）においてアミノ酸が欠失、置換もしくは付加されたアミノ酸配列からなり、かつホスホパントテン酸転移酵素活性を有するタンパク質。 - 配列番号２で示される塩基配列を含むＤＮＡであって、請求項１記載のタンパク質（ａ）をコードする遺伝子、または、該遺伝子とストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、かつホスホパントテン酸転移酵素活性を有するタンパク質（ｂ）をコードする遺伝子のＤＮＡ。
- 請求項２記載の遺伝子を含有する組み換えベクター。
- 請求項３記載の組み換えベクターを含む形質転換体。
- 請求項３記載の組み換えベクターを含む麹菌。
- 請求項４記載の形質転換体が生産する非リボソーム型ペプチド。
- 任意のペプチドシンテターゼ遺伝子を高発現した微生物に請求項３記載の組み換えベクターを導入した形質転換体。
- 該微生物が麹菌である請求項７記載の形質転換体。
- 請求項７又は８記載の形質転換体が生産する非リボソーム型ペプチド。
- 非リボソーム型ペプチド合成酵素遺伝子として麹菌のフェリクローム生合成に関するペプチドシンテターゼを遺伝子を使用し、非リボソーム型ペプチドがフェリクロームであること、を特徴とする請求項９記載の非リボソーム型ペプチド。
- 非リボソーム型ペプチド合成酵素をコードするＤＮＡを含有する組換えベクター、及び、ホスホパントテン酸転移酵素をコードするＤＮＡを含有する組換えベクターによって、宿主を形質転換し、該宿主を培養することによって、上記した双方のＤＮＡを同時に発現させること、を特徴とする活性型非リボソーム型ペプチドの製造方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2003015123A JP2004222609A (ja) | 2003-01-23 | 2003-01-23 | 麹菌ｎｐｇＯ遺伝子 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2003015123A JP2004222609A (ja) | 2003-01-23 | 2003-01-23 | 麹菌ｎｐｇＯ遺伝子 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JP2004222609A true JP2004222609A (ja) | 2004-08-12 |
Family
ID=32902964
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP2003015123A Pending JP2004222609A (ja) | 2003-01-23 | 2003-01-23 | 麹菌ｎｐｇＯ遺伝子 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JP2004222609A (ja) |
-
2003
- 2003-01-23 JP JP2003015123A patent/JP2004222609A/ja active Pending
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| EP1177311B1 (en) | In vitro macromolecule biosynthesis methods using exogenous amino acids and a novel atp regeneration system | |
| AU2015292421A1 (en) | Promoters derived from Yarrowia lipolytica and Arxula adeninivorans, and methods of use thereof | |
| AU2021225189A1 (en) | Increasing lipid production in oleaginous yeast | |
| JP3462218B2 (ja) | 糸状菌におけるヘムタンパク質生産を増加せしめるための方法 | |
| KR100762315B1 (ko) | 푸자리시딘 생합성 효소 및 이를 코딩하는 유전자 | |
| KR20170130559A (ko) | L-푸코오스의 생체촉매적 생산 | |
| CN107849573B (zh) | 生长和蛋白质生产的解偶联 | |
| JP2018102287A (ja) | イミダゾールジペプチド合成活性を有するタンパク質及びイミダゾールジペプチドの製造方法 | |
| WO2006085535A1 (ja) | テトラヒドロビオプテリン生合成酵素を用いたビオプテリン類の製造方法 | |
| US10246697B2 (en) | Colistin synthetases and corresponding gene cluster | |
| JP3961289B2 (ja) | 環状デプシペプチド合成酵素およびその遺伝子並びに環状デプシペプチドの大量生産系 | |
| US20160298095A1 (en) | Nucleic acid molecules for increased protein production | |
| JP3122762B2 (ja) | ２−デオキシ−シロ−イノソース合成酵素、アミノ酸配列、遺伝子塩基配列 | |
| Iacovelli et al. | Identification of a conserved N‐terminal domain in the first module of ACV synthetases | |
| JP2004222609A (ja) | 麹菌ｎｐｇＯ遺伝子 | |
| CN115896211A (zh) | 一种发酵生产胞磷胆碱的基因工程菌及应用 | |
| JP4756743B2 (ja) | 真菌の菌糸の成長 | |
| CN112639117A (zh) | 谷胱甘肽的制造方法 | |
| JP3961306B2 (ja) | 黒麹菌のフェリクローム生合成に関与するクラスター遺伝子 | |
| EP3676370B1 (en) | Compositions and methods using methanotrophic s-layer proteins for expression of heterologous proteins | |
| BRPI0708232A2 (pt) | microorganismo que produz cefalosporina, método para a construção de um microorganismo e processo para a produção de uma cefalosporina | |
| JP4170743B2 (ja) | 新規遺伝子ａｓｂ４及びその形質転換体と遺伝子産物の利用法 | |
| JP6952296B2 (ja) | エンハンサー | |
| EP1137784A1 (fr) | Methode d'isolement et de selection de genes codant pour des enzymes, et milieu de culture approprie | |
| JP3864303B2 (ja) | 麹菌のフェリクローム又はそのデフェリ体生合成に関与するオルニチンｎ５−オキシゲナーゼ遺伝子 |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| A621 | Written request for application examination |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621 Effective date: 20051114 |
|
| RD02 | Notification of acceptance of power of attorney |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A7422 Effective date: 20051114 |
|
| A131 | Notification of reasons for refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131 Effective date: 20080729 |
|
| A02 | Decision of refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A02 Effective date: 20081216 |