JP2002512216A - Ｂｔｋインヒビターならびにその同定方法および使用方法 - Google Patents

Ｂｔｋインヒビターならびにその同定方法および使用方法

Info

Publication number
JP2002512216A
JP2002512216A JP2000544627A JP2000544627A JP2002512216A JP 2002512216 A JP2002512216 A JP 2002512216A JP 2000544627 A JP2000544627 A JP 2000544627A JP 2000544627 A JP2000544627 A JP 2000544627A JP 2002512216 A JP2002512216 A JP 2002512216A
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
btk
lfm
cells
fas
cell
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
JP2000544627A
Other languages
English (en)
Inventor
ウックン、ファティ、エム．
ツェン、ヤグー
ゴーシュ、スタパ
Original Assignee
パーカー ヒューズ インスティテュート
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Priority claimed from US09/273,191 external-priority patent/US6303652B1/en
Application filed by パーカー ヒューズ インスティテュート filed Critical パーカー ヒューズ インスティテュート
Publication of JP2002512216A publication Critical patent/JP2002512216A/ja
Pending legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07D—HETEROCYCLIC COMPOUNDS
    • C07D311/00—Heterocyclic compounds containing six-membered rings having one oxygen atom as the only hetero atom, condensed with other rings
    • C07D311/02—Heterocyclic compounds containing six-membered rings having one oxygen atom as the only hetero atom, condensed with other rings ortho- or peri-condensed with carbocyclic rings or ring systems
    • C07D311/04—Benzo[b]pyrans, not hydrogenated in the carbocyclic ring
    • C07D311/06—Benzo[b]pyrans, not hydrogenated in the carbocyclic ring with oxygen or sulfur atoms directly attached in position 2
    • C07D311/08—Benzo[b]pyrans, not hydrogenated in the carbocyclic ring with oxygen or sulfur atoms directly attached in position 2 not hydrogenated in the hetero ring
    • C07D311/18—Benzo[b]pyrans, not hydrogenated in the carbocyclic ring with oxygen or sulfur atoms directly attached in position 2 not hydrogenated in the hetero ring substituted otherwise than in position 3 or 7
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P35/00—Antineoplastic agents
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P35/00—Antineoplastic agents
    • A61P35/02—Antineoplastic agents specific for leukemia
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P37/00—Drugs for immunological or allergic disorders
    • A61P37/02—Immunomodulators
    • A61P37/06—Immunosuppressants, e.g. drugs for graft rejection
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P37/00—Drugs for immunological or allergic disorders
    • A61P37/08—Antiallergic agents
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P43/00—Drugs for specific purposes, not provided for in groups A61P1/00-A61P41/00
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07C—ACYCLIC OR CARBOCYCLIC COMPOUNDS
    • C07C255/00—Carboxylic acid nitriles
    • C07C255/01—Carboxylic acid nitriles having cyano groups bound to acyclic carbon atoms
    • C07C255/23—Carboxylic acid nitriles having cyano groups bound to acyclic carbon atoms containing cyano groups and carboxyl groups, other than cyano groups, bound to the same unsaturated acyclic carbon skeleton
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07C—ACYCLIC OR CARBOCYCLIC COMPOUNDS
    • C07C317/00—Sulfones; Sulfoxides
    • C07C317/26—Sulfones; Sulfoxides having sulfone or sulfoxide groups and nitrogen atoms, not being part of nitro or nitroso groups, bound to the same carbon skeleton
    • C07C317/32—Sulfones; Sulfoxides having sulfone or sulfoxide groups and nitrogen atoms, not being part of nitro or nitroso groups, bound to the same carbon skeleton with sulfone or sulfoxide groups bound to carbon atoms of six-membered aromatic rings of the carbon skeleton
    • C07C317/34—Sulfones; Sulfoxides having sulfone or sulfoxide groups and nitrogen atoms, not being part of nitro or nitroso groups, bound to the same carbon skeleton with sulfone or sulfoxide groups bound to carbon atoms of six-membered aromatic rings of the carbon skeleton having sulfone or sulfoxide groups and amino groups bound to carbon atoms of six-membered aromatic rings being part of the same non-condensed ring or of a condensed ring system containing that ring
    • C07C317/38—Sulfones; Sulfoxides having sulfone or sulfoxide groups and nitrogen atoms, not being part of nitro or nitroso groups, bound to the same carbon skeleton with sulfone or sulfoxide groups bound to carbon atoms of six-membered aromatic rings of the carbon skeleton having sulfone or sulfoxide groups and amino groups bound to carbon atoms of six-membered aromatic rings being part of the same non-condensed ring or of a condensed ring system containing that ring with the nitrogen atom of at least one amino group being part of any of the groups, X being a hetero atom, Y being any atom, e.g. N-acylaminosulfones
    • C07C317/40—Y being a hydrogen or a carbon atom

Abstract

(57)【要約】 本発明はＢＴＫインヒビター、この同定方法、使用方法、およびＢＴＫインヒビターからなる薬学的化合物を提供するものである。

Description

【発明の詳細な説明】
【０００１】 ［発明の分野］ 本発明はチロシンキナーゼ科のインヒビターに関し、特にブルートン型チロシ
ンキナーゼ（BTK）のインヒビターに関する。
【０００２】 ［発明の背景］ アポプトーシスは、核を形成するDNAをオリゴヌクレオゾーム長さの断片に分
割するエンドヌクレアーゼを活性化させる生化学的事象の誘導カスケードが誘発
する真核細胞死の一般的な形態である。近年、正負のアポプトーシスレギュレー
ターと共に、アポプトーシス細胞死を引き起こす様々な生化学的事象が同定され
ている（ホワイリー エイら（Whyllie A., et al.）(1980) インターナショナル
レビュー サイトル（Int. Rev. Cytol）68、 251-305；ステラー エイチ（Stel
ler H.） (1995) サイエンス（Science）267、 1445-1449；フラスター エイ、
エバン ジー（Fraser, A., Evan, G.）(1996) セル（Cell）85、 781-784；およ
びコルスメイヤー エス ジェイ（Korsmeyer, S.J.）(1995)トレンド ジェネット
（Trends Genet.）11、 101-105）。
【０００３】 アポプトーシスは機能的な免疫システムの発育と保持において中枢的な役割を
果たしている。新生の標的腫瘍形成細胞はもちろん、自己反応性未熟／成熟リン
パ球のキラーT細胞による適時な自滅がアポプトーシスにより保証されている。
【０００４】 アポプトーシスの関与する有益効果に加え、不適切なアポプトーシスはヒト白
血病やリンパ腫を引き起こし、また薬物抵抗性の原因ともなる（コーン ジェイ
ジェイら（Cohen, J.J., et al.）(1992)アニューアル レビュー イミューノル
（Annu. Rev. Immunol.）10、 267-293；リネッテ ジー ピー（Linette, G.P.）
コルスメイヤー エス ジェイ(1994) カレント オピニオン セル バイオロジー（
Curr. Opin. Cell Biol.）6、809-815；およびトンプソン シー ビー（Thompson
, C.B.） (1995) サイエンス367、 1456-1462）。したがって、アポプトーシス
を調節する薬剤は、不適切なアポプトーシスが関与する疾患を治療する治療薬と
しても潜在的に有効であるといえる。このため、アポプトーシスの分子レギュレ
ーターの同定に向けて、非常に多くの研究が進行中であり、現在アポプトーシス
の調節に有効な新薬（化学的または生化学的）や新たな治療法が必要とされてい
る。このような新薬や治療法は癌（例えば、白血病やリンパ腫）や哺乳類の免疫
異常症の治療にも活用できると考えられる。またこのような新薬や治療法は、ヒ
トのリンパ性悪性腫瘍の病理に対する理解と共に、アポプトーシスの分子基盤（
例えば、プロアポプトーシスVS抗アポプトーシス調整信号）に対する理解を深め
るために行なわれる生体外または生体内研究用の薬理学的ツールとしても有用と
考えられる。
【０００５】 BTKは二重機能型アポプトーシスレギュレーターである。BTKは、B細胞中にお
いて放射線起因性アポプトーシスを促進する一方、Fas（脂肪酸合成酵素）活性
化アポプトーシスを抑制する（ウックン エフ エム（Uckun, F.M.）の解説：二
重機能型アポプトーシスレギュレーターとしてのブルートン型チロシンキナーゼ
（Commentary: Burton's Tyrosine Kinase (BTK) as a Dual-Function Regulato
r of Apoptosis）；またウックン エフ エムらの、DT-40リンパ腫b細胞における
放射線起因性アポプトーシスの媒体としてのBTK（BTK as a Mediator of Radiat
ion-induced Apoptosis in DT-40 Lymphoma B-Cells）、サイエンス273: 1096-1
100 (1996)も合わせて参照のこと）。
【０００６】 BTKはB細胞の少なくとも一部が活性酸素中間生成物に曝されると、STAT3転写
因子の抗アポプトーシス活動を低下調整することによってプロアポプトーシス的
方法で機能する。これに対し、BTKは死受容体Fasと結合し、FADD（アポプトーシ
ス信号の間、FasによるFLICEの保養および活性化に不可欠）との相互作用を弱め
、これによりFas結紮後のプロアポプトーシス死誘発信号（DISC）の組成を防止
する。 ［発明の要約］ 本発明はTec科チロシンキナーゼのインヒビターを提供するものであり、特にB
TKのインヒビターを提供する。本発明のインヒビターは、T細胞（Tec、Itk）やB
細胞（BTK）のようなTec科チロシンキナーゼ発現細胞に関する病的状態の治療に
有効である。
【０００７】 本発明は式I（化３）の化合物を提供する。
【０００８】
【化３】
【０００９】 式中R1は(C1-C3)アルキル、(C3-C6)シクロアルキルシクロアルキル、フェニル
またはNRaRb、R2はヒドロキシ、(C1-C6)アルコキシ、(C1-C6)アルカノイルオキ
シアミノ(C2-C5)アルコキシ、ヒドロキシ(C2-C5)アルコキシアミノ(C2-C5)アル
カノオキシ（alkanoxy）、またはヒドロキシ(C2-C5)アルカノオキシ、R3はシア
ノまたは(C1-C3)アルカノイル、R4は水素、(C1-C3)アルキル、ヒドロキシ(C2-C5 )アルキル、またはアミノ(C2-C5)アルキル、R5はアリールまたはヘテロアリール
である。RaおよびRbはそれぞれ（独立して）水素または(C1-C3)アルキルである
か、もしくはそれらが結合している窒素と共にピロリジノ、ピペリジノ、モルホ
リノ、またはチオモルホリノを形成する。またR1およびR5のアリールまたはヘテ
ロアリールを、R5がフェニルであり、上記フェニルは-S(O)2Rcで置換されるか、
またはハロおよび１以上の他の置換基で置換されているという条件の下で、それ
ぞれハロ、ニトロ、シアノ、ヒドロキシ、トリフルオロメチル、トリフルオロメ
トキシ、(C1-C3)アルコキシ、(C1-C3)アルキル、(C1-C3)アルカノイル、-S(O)2R c、 またはNRaRbから選択される１以上（例えば１、２、または３）の置換基（た
だしRcは(C1-C3)アルキル、またはアリール、もしくは薬学的に許容可能なこれ
らの塩）で任意に置換される。
【００１０】 本発明は式II（化4）の化合物を提供する。
【００１１】
【化４】
【００１２】 式中XはO、N、またはS、R1はH、アルキル、カルボキシル、好ましくはC1-C3ア
ルキルまたはC1-C3カルボキシル、R2はアルキル、好ましくはC1-C6アルキルであ
る。
【００１３】 本発明の化合物は、BTKドメインの複合結合ポケットモデルに合致するように
デザインされている。上記BTKドメインは、結合ポケットの分子体積（例えば、6
00立方オングストローム以下）よりも少ない分子体積を有し、上記ポケットの体
積の2/3（例えば、約400立方オングストローム）に近い体積を有することが好ま
しい。また本発明のインヒビターは上記結合ポケットの間隙を埋めるようデザイ
ンされており、結合を強化するためポケットの残基と相互作用しないことが最も
好ましい。
【００１４】 さらに本発明は、ブルートン型チロシンキナーゼの働きを抑制または防止する
薬剤と薬学的に許容可能な担体とを含有する薬学的合成物を提供する。
【００１５】 さらに本発明は、BTK発現細胞においてアポプトーシスを促進または誘発する
方法を提供するものであり、上記方法は上記細胞をBTKの作用を抑制または防止
する薬剤に接触させる工程を含む。
【００１６】 さらに本発明は、BTKが関与し、BTKの作用の抑制が望まれるような疾患（病的
状態）を治療する方法を提供するものであり、上記方法はこのような治療を必要
とする哺乳類に、BTKの作用を抑制または防止する薬剤を効果的な量だけ投与す
る工程を含む。
【００１７】 さらに本発明は、BTK発現細胞の薬物治療に対する抵抗性を低下させる方法を
提供するものであり、上記方法は上記細胞をBTKの作用を抑制または防止する薬
剤に接触させる工程を含む。
【００１８】 さらに本発明は、医薬的治療（好ましくは癌や他のBTK媒介疾患の治療）に用
いられるBTKインヒビターを提供すると共に、ヒト等の哺乳類におけるBTKが関与
する病的状態や病的徴候（例えば、白血病やリンパ腫などの癌）の治療薬の製造
において、式Iの化合物の使用を提供するものである。 ［発明の詳細な説明］ Fas/APO-1（CD95）細胞表面受容体（腫瘍壊死因子（TNF）受容体科のメンバー
）は、様々なタイプの細胞におけるアポプトーシスの主要なレギュレーターの一
つである。リンパ増殖性異常、免疫不全、自己免疫病を含む免疫システムホメオ
スタシオの病的状態には、Fasの機能異常が関連している（リュークスローキャ
ットら（Rieux-Laucat, et al.）(1995) サイエンス268、 1347-1349；および
フィッシャー ジー エイチ（Fischer, G.H.）(1995)セル81、 935-946）。多く
の（全てのではない）Fas陽性細胞タイプにおいて、細胞表面Fas分子の結紮によ
り急速かつ劇的にアポプトーシスが誘発される（ナガタ エス（Nagata, S.）(19
97) セル88、 355-365）。DT-40は放射線起因性アポプトーシスの分子機構を解
明するために用いられてきたニワトリのリンパ腫B細胞株を指す（ウックン エフ
エムら(1996) サイエンス273、 1096-1100）。DT-40細胞は、その表面にFasが
十分発現しているにもかかわらず、ヒトB細胞前駆白血病細胞と同様に、Fas結紮
の細胞傷害効果に対して抵抗性を有する。このことは、Fas媒介アポプトーシス
に対する強力な負のレギュレーターが存在することを示している。ブルートン型
チロシンキナーゼ（BTK）（タンパク質チロシンキナーゼ（PTK）のBTK/Tec科の
メンバー）はB直系リンパ球系細胞の成長と分化を調節する情報伝達経路に関わ
る細胞質PTKである（ローリングス ディー ジェイ（Rawlings, D. J.）、および
ウィッティ オー エヌ（Witte, O. N.）(1994) イミューノル レビュー（Immun
ol. Rev.）、138、 105-119；クラサキ ティー（Kurosaki, T.）(1997) カレン
ト オピニオン イミューノル（Curr Opin. Immunol）9、 309-318； およびウッ
クン エフ エム(1998) バイオケミカル ファーマコロジー等（Biochemical Phar
macology, et al.）、56、 683-691）。BTKは、細胞表面の受容体への種々の細
胞外配位子の結合に端を発する情報伝達経路へと参入する。Ｂ細胞抗原受容体（
BCR）の結紮後、ホスホリパーゼC-ガンマ2媒介カルシウム動員を誘発するため、
PTKs LynとSyk（クラサキ ティー (1997) カレント オピニオンイミューノル9、
309-318）との協調作用によるBTKの活性化が必要とされる（クラサキ ティー (
1997) カレント オピニオンイミューノル9、 309-318）。ヒトBTK遺伝子におけ
る突然変異は、伴性無ガンマロブリン血症（XLA）、すなわち免疫グロブリンを
産生する成熟した末梢B細胞の欠如によって特徴づけられる男性の免疫不全疾患
の原因となる（ツカダ エスら（Tsukada, S., et al.）(1993) セル72、 279-29
0；およびヴェトリー ディーら （Vetrie, D., et al.） (1993) ネイチャー（N
ature）361、 226-233）。マウスにおいては、BTK遺伝子の突然変異はネズミ科
の伴性免疫不全（Xid）の原因として認められている（ローリングス ディー ジ
ェイら(1993) サイエンス261、 358361）。
【００１９】 BTKはB系列リンパ球系細胞におけるFas/APO-1の死誘発信号複合体(DISC)のイ
ンヒビターであることがこれまでに示されてきた（ヴァシレフ エイら（Vassile
v, A., et al.）(1998) ジェイ バイオル ケム（J. Biol. Chem.）、274、1646-
1656）。加えて、現在ではBTKがセラミドおよびビンクリスチン起因性アポプト
ーシスを防止することがわかっている（現在の研究）。白血病／リンパ腫細胞の
行く末は、DISCによって活性化されたカスパーゼのプロアポプトーシス対抗効果
とBTKおよび／またはその置換基をも巻き込む上流側の反アポプトーシス調節機
構とのバランスにゆだねられている（ヴァシレフ エイら (1998) ジェイ バイオ
ル ケム、274、 1646-1656）。BTKのインヒビターはB直系（白血病／リンパ腫）
細胞の薬物感受性を高めやすい。したがって、BTK調節作用を有する薬剤は、BTK
発現悪性腫瘍やBTK発現細胞の増殖と抗体産生に起因する疾患の治療においては
化学的増感剤として、またB細胞の減少や欠乏を伴う体液免疫不全の治療におい
てはB細胞復元剤として使用可能である。さらにBTK調節剤は、B細胞の命令が引
き起こす移植臓器への激症拒絶、自己免疫病、および薬物（例えば抗体や生物学
的製剤）や、薬剤への抗体を発達させた患者の血液生成物（例えば第VIII因子の
ような凝固因子）に対する免疫の転換を防止する免疫抑制剤として有効に使用さ
れる。 ［BTKインヒビターの同定］ 強力かつ選択可能なBTKインヒビターLFM-13と他のBTKインヒビターは、実施例
２に述べるキナーゼドメインの三次元ホモロジーモデルを用いて同定された。こ
のモデルと実施例1および３に記載のサイズと接触情報を用い、補足的BTKインヒ
ビターをデザインし、テストを行った。このモデルと方法を用いることにより、
他の関連キナーゼの中から選択的にBTKと結合する化合物はもちろん、結合ポケ
ットと好適に相互作用する他の化合物をも同定することができる。結合ポケット
モデルにおける強固な結合または良好な適合は、強力なBTK抑制作用と互いに関
連する。
【００２０】 BTKの反アポプトーシス効果を抑制する薬剤の能力は、当技術分野では公知の
アッセイ、または以下の実施例に開示されるアッセイを用いて測定することがで
きる。したがって、当技術分野において公知の情報と共に、ここに述べられるモ
デルの情報およびスクリーンを使用することにより、BTK抑制特性を有する薬剤
を同定することができる。
【００２１】 BTKのインヒビターには、組換えDNA法によって製造されるインヒビター、例え
ばアンチセンス分子や転写インヒビター等も含まれる。btk転写に関する初期の
研究により、btk遺伝子の発現はSp1科およびPU.１科の転写因子の組合せ作用に
より調整されることが立証された（エス ミュラーら（S. Muller et al.）オン
コジーン（Oncogene）、1996、13、1955-1964；およびエイ ヒメルハムら（A. H
immelmann et al.）ブラッド（Blood）、 1996、 87、 1036-1044）。転写調整
要素はbtk遺伝子の1番目から10番目のイントロン中にて同定され、またbtk遺伝
子の発現の調整は多重転写因子を伴うことが最近の研究によりわかっている (
ジェイ ローラー エム イー（J. Rohrer, M.E）コンレイ（Conley）、ブラッド
、1998、91、214-221)。かかる転写因子の作用に影響を与える新規な薬剤は、ア
ポプトーシス信号のモジュレーターとして、治療プログラムに有効に使用される
と考えられる。ヒトの造血細胞におけるbtk遺伝子の発現が調整可能であること
は、骨髄細胞でのbtkの発現を増加させるレチノイン酸の能力や、B細胞でのbtk
の発現を減少させるホルボールエステルやTGF-1の能力によりすでに立証されて
いる(シー アイ イー スミスら（C.I.E. Smith et al.）、ジェイ イミューノル
（J. Immunol）、1994、152、557-565)。
【００２２】 よって、BTKの発現を抑制し、記載の治療効果を誘発するため、1以上の組換え
DNA法を用いることができる。このような方法には、例えば転写インヒビターの
アンチセンスシーケンスが含まれる。例えばBTKアンチセンス構造は直接BTK発現
に向けられていてもよい。そうでなければ、BTKアンチセンス構造はBTK調節シー
ケンス、例えばSp1科およびPU.1科の転写因子に対するアンチセンスシーケンス
に向けられていてもよい。アンチセンス構造は腫瘍細胞を標的にしていることが
好ましい。 ［本発明の化合物］ 本発明の化合物は、実施例で述べるBTKモデルポケットに好適に結合する特定
のBTKインヒビターであり、強力なBTK抑制作用を有する。本発明の化合物は式I
およびIIの化合物を含む。
【００２３】 本発明は式I（化５）の化合物を提供する。
【００２４】
【化５】
【００２５】 式中R1は(C1-C3)アルキル、(C3-C6)シクロアルキルシクロアルキル、フェニル
またはNRaRb、R2はヒドロキシ、(C1-C6)アルコキシ、(C1-C6)アルカノイルオキ
シアミノ(C2-C5)アルコキシ、ヒドロキシ(C2-C5)アルコキシアミノ(C2-C5)アル
カノオキシ（alkanoxy）、またはヒドロキシ(C2-C5)アルカノオキシ、R3はシア
ノまたは(C1-C3)アルカノイル、R4は水素、(C1-C3)アルキル、ヒドロキシ(C2-C5 )アルキル、またはアミノ(C2-C5)アルキル、R5はアリールまたはヘテロアリール
である。RaおよびRbはそれぞれ（独立して）水素または(C1-C3)アルキルである
か、もしくはそれらが結合している窒素と共にピロリジノ、ピペリジノ、モルホ
リノ、またはチオモルホリノを形成する。また、R1およびR5のアリールまたはヘ
テロアリールを、R5がフェニルであり、上記フェニルは-S(O)2Rcで置換されるか
、またはハロおよび１以上の他の置換基で置換されるという条件の下で、それぞ
れハロ、ニトロ、シアノ、ヒドロキシ、トリフルオロメチル、トリフルオロメト
キシ、(C1-C3)アルコキシ、(C1-C3)アルキル、(C1-C3)アルカノイル、-S(O)2Rc、
またはNRaRbから選択される１以上（例えば１、２、または３）の置換基（ただ
しRcは(C1-C3)アルキル、またはアリール、もしくは薬学的に許容可能なこれら
の塩）で任意に置換される。
【００２６】 本発明は式II（化６）の化合物を提供する。
【００２７】
【化６】
【００２８】 式中XはO、N、またはS、R1はH、アルキル、カルボキシル、好ましくはC1-C3ア
ルキルまたはC1-C3カルボキシル、R2はアルキル、好ましくはC1-C6アルキルであ
る。
【００２９】 式Iにおいて特に有用な化合物を58頁に示す。 アルファ-シアノ-ベータ-ヒドロキシ-ベータ-メチル-N-(2,5-ジブロモフェニル)
-プロペンアミド、 アルファ-シアノ-ベータ-ヒドロキシ-ベータ-メチル- N -[4-(メチルスルホニル
)フェニル]-プロペンアミド、 アルファ-シアノ-ベータ-ヒドロキシ-ベータ-メチル- N -[3-メチルスルホニル]
フェニル]-プロペンアミド、 アルファ-シアノ-ベータ-ヒドロキシ-ベータ-メチル- N -[3-ブロモ-4-(トリフ
ルオロメトキシ)-フェニル]プロペンアミド、 アルファ-シアノ-ベータ-ヒドロキシ-ベータ-メチル-N -(2,4-ジブロモフェニル
)-プロペンアミド、 アルファ-シアノ-ベータ-ヒドロキシ-ベータ-メチル- N -(2,4-ジクロルフェニ
ル)-プロペンアミド、 アルファ-シアノ-ベータ-ヒドロキシ-ベータ-メチル- N -(2,5-ジクロルフェニ
ル)-プロペンアミド、または アルファ-シアノ-ベータ-ヒドロキシ-ベータ-メチル- N -(3,4-ジクロルフェニ
ル)-プロペンアミド、 または薬学的に許容可能なこれらの塩。
【００３０】 式IIにおいて特に有用な化合物を63頁に示す。 ［定義づけ］ 特に言及がない限り、以下の定義を用いる。ハロはフルオロ、クロロ、ブロモ
、またはヨードである。アルキル、アルコキシ、アルケニル、アルキニル等は直
状もしくは枝状の基を指す。しかし、「プロピル」のような単一異性体について
述べる時は直鎖状の異性体のみを指すものとし、「イソプロピル」のような枝分
れ鎖状の異性体に関しては特に言及するものとする。アリールはフェニル基もし
くは9〜10の環原子を有する二環式または三環式の炭素環式基であり、少なくと
も１つの環が芳香族である。ヘテロアリールは、誘導された約8〜10の環原子を
有するオルト融合二環式複素環の基（特にベンゾ誘導体またはプロピレン、トリ
メチル、テトラメチレン基を融合させたベンゾ誘導体）と共に、炭素および非ペ
ルオキシド酸素（non-peroxide oxygen）、硫黄、およびN(X)（ただしXは存在し
ないかもしくはH、O、（C1-C4）アルキル、フェニル、またはベンジルから選択
される1〜4の複素原子からなる5または6の還原子を含有する単環式芳香環の環炭
素を介して結合される基を含む。
【００３１】 キラル中心を有する本発明の化合物を、光学的に活性なラセミ化合物の形で存
在させ、孤立させてもよいことは、当技術分野の熟練者には理解されると思われ
る。また、同質異像を呈する化合物があってもよい。記載の有用な特性を有する
本発明の化合物はラセミ化合物、光学的に活性な化合物、多形態化合物、または
立体異性形化合物、またはこれらの混合物はいずれの形態においても本発明に包
括される。また光学的に活性な形態を作成する方法（例えば、再結晶技術を用い
たラセミ化合物形態の分解、光学的に活性な出発物質からの合成、キラル合成、
キラル固定相を用いたクロマトグラフィー分離）は当技術分野では周知である。
さらに記載の標準的なアッセイ、または当技術分野において公知な類似のアッセ
イを用いてBTK抑制作用を測定することも、当技術分野では周知である。
【００３２】 以下に列挙する置換基や範囲の特定値または好適値は単なる例示に過ぎず、原
子団や置換基に対する規定範囲内での他の規定値やその他の値を除外するもので
はない。
【００３３】 具体的には、(C1-C3)アルキルはメチル、エチル、プロピル、または、イソプ
ロピル；(C1-C4)アルキルはメチル、エチル、プロピル、イソプロピル、ブチル
、イソブチル、またはsec-ブチル；(C3-C6)シクロアルキルはシクロプロピル、
シクロブチル、シクロペンチルまたはシクロヘキシル；(C3-C6)シクロアルキル(
C1-C6)アルキルは シクロプロピルメチル、シクロブチルメチル、シクロペンチ
ルメチル、シクロヘキシルメチル、2-シクロプロピルエチル、2-シクロブチルエ
チル、2-シクロペンチルエチル、または2-シクロヘキシルエチル；(C1-C3)アル
コキシはメトキシ、エトキシ、プロポキシ、イソプロポキシ；(C1-C6)アルコキ
シはメトキシ、エトキシ、プロポキシ、イソプロポキシ、ブトキシ、イソ-ブト
キシ、sec-ブトキシ、ペントキシ、3-ペントキシ、またはヘキシルオキシ；(C2-
C6)アルカノイルオキシはアセトキシ、プロパノイルオキシ、ブタンノイルオキ
シ、イソブタンノイルオキシ、ペンタノイルオキシ、またはヘキサノイルオキシ
；(C2-C4)アルケノールはビニル、アリル、1-プロペニル、2-プロペニル、1-ブ
テニル、2-ブテニル、または3-ブテニル；(C2-C4)アルキニルはエチニル、1-プ
ロピニル、2-プロピニル、1-ブチニル、2-ブチニル、または 3-ブチニル；ヒド
ロキシ(C1-C4)アルキルは ヒドロキシメチル、1-ヒドロキシエチル、2-ヒドロキ
シエチル、1-ヒドロキシプロピル、 2-ヒドロキシプロピル、3-ヒドロキシプロ
ピル、1-ヒドロキシブチル、または 4-ヒドロキシブチル；ヒドロキシ(C2-C4)
アルケニルlは 3-ヒドロキシ-1-プロペニル、 4-ヒドロキシ-1-ブテニル、 また
は4-ヒドロキシ-2-ブテニル；ヒドロキシ(C2-C4)アルキニルは 3-ヒドロキシ-1-
プロピニル、1-ヒドロキシ-2-プロピニル、3-ヒドロキシ-1-ブチニル、4-ヒドロ
キシ-1-ブチニル、1-ヒドロキシ-2-ブチニル、4-ヒドロキシ-2-ブチニル、1-ヒ
ドロキシ-3-ブチニル、または 2-ヒドロキシ-3-ブチニル；(C1-C4)アルキルチオ
はメチルチオ、エチルチオ、プロピルチオ、イソプロピルチオ、ブチルチオ、ま
たはイソブチルチオ；アリールはフェニル、インデニル、またはナフチル；ヘテ
ロアリールはフリル、イミダゾリル、トリアゾリル、トリアジニル（triazinyl
）、オキサゾール、 イソオキサゾール、チアゾリル、 イソチアゾール、ピラゾ
リル、ピロリル、ピラジニル、テトラゾリル、ピリジル、（またはその N-オキ
シド）、チエニル、ピリミジニル（またはその N-オキシド）、インドリル、イ
ソキノリル（またはその N-オキシド）またはキノリル（またはその N-オキシド
）のいずれかであってもよい。 ［特定値および好適値］ R1の特定値は(C1-C3)アルキル、または(C3-C6)シクロアルキルである。
【００３４】 R2の特定値はヒドロキシである。
【００３５】 R3の特定値はシアノである。
【００３６】 R4の特定値は水素である。
【００３７】 R5の特定値はハロに置換されたフェニル、およびハロ、 ニトロ、 シアノ、ヒ
ドロキシ、トリフルオロメチル、トリフルオロメトキシ、(C1-C3)アルコキシ、(
C1-C3)アルキル、(C1-C3)アルカノイル、およびNRaRbから選択される1、2、また
は3の他の置換基によって置換されたフェニルである。
【００３８】 R6の特定値はメチル、トリフルオロメチル、メトキシメチル、エチル、イソプ
ロピル、 tert-ブチル、またはプロピルである。
【００３９】 R7の特定値は水素、メチル、またはエチルである。
【００４０】 R9の特定値はアセチル、トリフルオロアセチル、プロパノイル、シクロ（crcl
o）プロピルカルボニル、ビニルカルボニル、2-プロペノイル、メトキシカルボ
ニル、メチルチオカルボニル、エトキシカルボニル、またはエチルチオカルボニ
ルである。
【００４１】 より詳細なR1の特定値は(C1-C3)アルキルである。
【００４２】 より詳細なR5の特定値はハロに置換されたフェニル、およびハロ、トリフルオ
ロメチル、トリフルオロメトキシ、および(C1-C3)アルコキシから選択される1、
2、または3の他の置換基によって置換されたフェニルである。
【００４３】 より詳細なR5の特定値は２または３のハロに置換されたフェニルである。
【００４４】 より詳細なR5の特定値は２のブロモに置換されたフェニルである。
【００４５】 式Iの好ましい化合物はα-シアノ-β-ヒドロキシ-β-メチル-N-(2,5-ジ ブロモフェニル) プロペンアミド、または薬学的に許容可能なその塩である。 [治療上での使用] BTK発現B細胞およびBTK発現B細胞プレカーサーは多数の疾患やB細胞悪性腫瘍
（例えば、急性リンパ芽球性白血病、慢性リンパ芽球性白血病、非ホジキンリン
パ腫、エプスタインバーウイルス性リンパ腫、骨髄腫）を含む症状、他の癌、B
細胞リンパ増殖性異常／自己免疫疾患（例えば、ループス、クローン氏病、（慢
性）移植片対宿主病）、マスト細胞異常（例えばアレルギーやアナフィラキシー
ショック）、不適切な血小板凝固に関連する症状、および異物移植（例えば、ブ
タからヒトへの心臓移植）の拒絶反応等の病因に関与している。
【００４６】 加えて、本発明の選択可能なBTKインヒビターを用いて、BTKが関与する他の病
気を同定することが可能であり、特にBTKによって調節された遺伝子の発現を同
定することが可能である。このことは当技術分野では公知の技術、例えばエイ
セーガルら（A. Sehgal et al.）ジャーナル オブ サージカル オンコロジー（J
ournal of Surgical Oncology）、 1998、67、234241によって提唱された技術に
類似する遺伝子プロファイリング技術を用いて行うことができる。BYTインヒビ
ターの存在下または不在下で細胞を培養した後、その細胞内における遺伝子発現
をプロファイリングすることは、BTKに調整された遺伝子の発現を同定する上で
有用である。AtlasｃDNA皮膜を用いた遺伝子発現のプロファイリングに有用な材
料は、クローンテック ラボラトリー株式会社（CLONTECH Laboratories, Inc.）
1020イースト メドウ サークル、ポロ アルト シーエイ94303（1020 East Meado
w Circle, Palo Alto, CA 94303）より入手可能である。ｃDNAのミクロ配列（mi
cro array）もまた商業的ソースに注文可能であるか、特注することができる。
【００４７】 かかる材料を製造者の指示にしたがって使用することで、MAPKAPキナーゼおよ
びc-myc腫瘍形成遺伝子等の特定の遺伝子の発現がBTKにより調節されることが明
らかになった。このような作用はBTKがあらゆる形態の癌の病因に関与している
可能性があることを示唆するものである。
【００４８】 BTKはチロシンキナーゼのTec科のメンバーである。Tecキナーゼは、例えばT細
胞中に発現する。本発明のTBKインヒビターはTecキナーゼ科の他のメンバーの作
用を抑制する上でも有用である。
【００４９】 BTKインヒビター（上記の式IおよびIIの化合物を含む）はBTKの作用を含むTec
科キナーゼの抑制や防止が指摘される異常の治療に使用することができる。BTK
インヒビターが化学的感作剤として有用であることもすでに発見されており、よ
って、他の化学療法剤（特にアポプトーシスを誘発する薬剤）と組み合わせて使
用することもできる。化学的感作作用を有するBTKインヒビターと組み合わせて
使用できる化学療法剤には、トポイソメラーゼIインヒビター（カンプトテシン
またはトポテカン（topotecan））、トポイソメラーゼIIインヒビター（例えば
、ダウノマイシンおよびエトポシド）、アルキル化剤（例えば、シクロホスファ
ミド、メルファラン、およびBCNU）、チューブリン用薬（例えば、タクソールお
よびビンブラスチン）、および生物学的薬剤（例えば、抗CD20抗体、IDEC 8、
イムノトキシン、サイトカイン等の抗体)である。 ［標的部位との共役］ 本発明の化合物は、BTKインヒビターの標的部位への共役により、治療される
細胞タイプへの特異な輸送の標的となり得る。BTKインヒビターへの共役に有用
な標的部位には、抗体、サイトカイン、および治療される細胞に対して特異な受
容体配位子が含まれる。
【００５０】 「共役」という用語は、2以上の分子に挟まれた混合物として形成された化合
物を指す。より具体的には、本発明においては、キナゾリン誘導体が、細胞に（
例えば共有に）結合されており、対象となる細胞への薬剤の効果的かつ特異な輸
送を行うため、特異な標的部位が共役化合物を形成している。
【００５１】 「標的部位」という用語は、所望の作用のため、本発明の化合物を特定のサイ
トに輸送する役割を果たす分子を指す。標的部位には、例えば特定の細胞表面に
特異に分子を結合させる分子も含まれる。本発明において有用な標的部位には、
抗細胞表面抗原抗体が含まれる。インターロイキンや顆粒細胞／大食細胞等の刺
激因子(GMCSF)を含むサイトカインも特異な標的部位であり、標的部位の受容体
を高レベルに発現する特定の細胞に結合するものとして知られている。 本発明のBTK抑制化合物を治療作用のため、細胞への標的とする上で特に有用な
標的部位はTacキナーゼ発現細胞に存在する配位子である。例えば、B細胞または
CD19のようなB直系癌細胞に存在する抗体は、B43のような抗CD19抗体の標的とな
る。また単一鎖断片を含む抗体断片を使用することも可能である。また、CD19の
ような表面抗原に対する自然配位子を用いることも可能である。Tecキナーゼ発
現T細胞は、例えばCD7抗原に向けてTXUのような抗CD7抗体の標的となる。 マス
ト細胞はCD48抗原を通じて抗CD48抗体の標的となる。このような表面抗原は、他
のものも含めて市販されており、例えばファーミンゲン（Pharmingen）より入手
可能である。
【００５２】 細胞質***もまた有用な標的部位である。T細胞はIL2およびIL7の、B細胞はIL
4の、マスト細胞はC-KIT、 MGF、GMCSF、および IL3の標的となり得る。Tecキナ
ーゼ発現癌細胞は、例えばEGFおよびIGFの標的となり得る。 ［塩としての化合物］ 薬剤（「化合物」）が安定な非毒性酸または塩基塩を形成するのに十分な塩基
性度または酸性度を有している場合は、このような化合物を塩の形で投与するの
が適切である。薬学的に許可可能な塩の例としては、生理的に許可可能なアニオ
ンを形成する酸を用いて形成された有機酸添加塩、具体的にはトシラート、ホン
酸ナトリウム、アセテート、クエン酸塩、マロン酸塩、酒石酸塩、こはく酸塩、
安息香酸塩、アスコルビン酸塩、アルファ-ケトグルタル酸、およびアルファ-グ
リセロりん酸等が挙げられる。また、塩酸塩、硫酸塩、硝酸塩、重炭酸塩、およ
び炭酸塩を含む好適な無機塩を形成してもよい。
【００５３】 薬学的に許可可能な塩は、当技術分野では公知の標準的手順を用いて得ること
ができ、例えば、生理的に許可可能なアニオンを産生する適切な酸を有するアミ
ン等の十分な塩基性度を有する化合物を反応させることによって得ることができ
る。アルカリ金属（例えば、ナトリウム、カリウムまたはリチウム）またはカル
ボン酸のアルカリ土金属（例えばカルシウム）塩を作成することも可能である。 ［前駆薬剤誘導体］ 本発明の化合物には、前駆薬剤誘導体を提供するため、官能基が接合されてい
てもよい。前駆薬剤は人体における薬物の使用を、例えば細胞内への参入を容易
化することによって容易にする。「前駆薬剤部位」との用語は、本発明の化合物
の使用を、例えば細胞内への参入または化合物の投与を容易化することによって
容易にする置換基を指す。前駆薬剤部位は分割酵素群よって生体内で分割される
。前駆薬剤部位の例としては、りん酸基、ペプチド結合物、および糖類が挙げら
れ、これらは体内で加水分解される。 ［薬剤的製剤］ 化合物は薬学的な組成物として製剤され、ヒト等の哺乳類のホストに対し、選
択された投与手順（すなわち経口または非経口、静脈、筋肉、局所または皮下経
路での投与）に適合する様々な形態で投与される。
【００５４】 したがって、化合物は、例えば経口投与では不活性の希釈液や同化可能な食用
担体等の薬学的に許可可能な賦形薬と組み合わせて体系的に投与される。これら
は硬性または軟性のゼラチンカプセルに内包しても、圧縮して錠剤にしても、ま
た、患者の規定食中に直接加えてもよい。経口治療投薬においては、化合物を1
以上の医薬品添加物と組み合せることができ、摂取可能な錠剤、口内錠、トロー
チ剤、カプセル剤、エリキシル、懸濁剤、シロップ剤、カシェ剤の形で使用して
もよい。このような組成物または調製物は、活性化合物を少なくとも0.1％含有
していなくてはならない。かかる組成物または調製物の割合は変更可能であり、
規定により与えられた単位剤形あたりの割合は２〜６０重量％であってもよい。
治療に有用な化合物中における活性化合物の量は、効果的な薬用量レベルが得ら
れる程度である。
【００５５】 錠剤、トローチ剤、丸剤、カプセル剤等は、トラガカントゴム、アラビアゴム
、コーンスターチ、またはゼラチン等の結着剤、リン酸二カルシウム（dicalciu
m phosphate）等の付形剤、コーンスターチ、バレイショデンプン、海藻酸等の
***剤（disintegrating agent）、ステアリン酸マグネシウム等の滑剤、ショ糖
、果糖、乳糖またはアスパルテーム等の甘味剤、ペパーミント、ウィンターグリ
ーン油、 またはサクランボ香料等の着香剤を含有していてもよい。単位剤形が
カプセル剤である場合、上記のタイプの材料に加え、植物性油またはポリエチレ
ングリコールのような液状担体が含有されていてもよい。様々な他の材料が剤皮
として、そうでなければ固形の単位剤形の物質的形態を調節するものとして存在
していてもよい。例えば、錠剤、丸剤、またはカプセル剤を、ゼラチン、ワック
ス、シェラック、または砂糖等でコーティングすることができる。シロップ剤や
エリキシルは活性化合物、甘味剤としての白糖または果糖、保存剤としてのメチ
ルおよびプロピルパラベン、色素、およびさくらんぼ味やみかん味などの着香料
を含有してもよい。単位剤形を調整するのに用いられるいかなる材料も、薬学的
に許容可能で、さらに適用される量で使用した場合において実質的に無毒でなく
てはならない。加えて、上記活性化合物を持効性薬剤およびデバイス（device）
に組み込むようにしてもよい。
【００５６】 このような化合物に、輸液または注射により静脈内または腹腔内に投与するこ
とができる。化合物またはその塩の溶液は水中で調整することができ、また非毒
性表面活性薬との混合が任意で行える。またグリセリン、液状ポリエチレングリ
コール、トリアセチン、およびこれらの混合物ならびに油の中で分散液を調整す
ることも可能である。通常の貯蔵および使用条件下において、このような調製物
は微生物の発育を防止する保存剤を含んでいる。
【００５７】 注射や輸液に適する薬学的剤形には、無菌水溶液/分散液や無菌粉薬が含まれ
る。上記無菌粉薬は、注射や輸液用の無菌水溶液/分散液の即興調整（extempora
neous preparation）に使用できる活性化合物を含有しており、またリポソーム
のカプセルに包まれている場合もある。いずれの場合においても、剤形は最終的
には無菌で、かつ製造および貯蔵条件下において流動的で安定でなくてはならな
い。液状の担体または賦形薬は、例えば水、エタノール、ポリオール (例えば、
グリコール、プロピレングリコール、 液状ポリエチレングリコール)、植物油
、非毒性グリセリルエステル系溶剤、またはこれらの好適な組成物からなる溶媒
または水性分散液媒体であってもよい。好適な流動性は、例えばリポソームの形
成、また分散液の場合や界面活性剤を使用した場合には、要求された粒径を保持
することによって保たれる。微生物の作用は、種々の抗菌剤または抗黴剤、例え
ば、パラオキシ安息香酸エステル類、クロロブタノール、フェノール、ソルビン
酸、チメロサール等によって防止できる。糖質、緩衝剤、塩化ナトリウム等のア
イソトニック剤を含有させることが好ましい場合が多い。注入可能な組成物の吸
収を延長するには、吸収を遅らせる薬剤（例えばモノステアリン酸アルミニウム
やゼラチン）を組成物中に使用すればよい。
【００５８】 注入可能な無菌溶液は、先に列挙した様々な他の成分を含む適切な溶媒に所要
量の活性化合物を組み込み、その後濾過により滅菌して調整される。無菌溶液の
調整に用いる無菌粉薬の場合、好ましい調整方法は真空乾燥技術および凍結乾燥
技術であり、いずれの方法においても活性化合物と予め無菌濾過した溶液中に存
在する補足的な所望の成分とを含む粉末が得られる。
【００５９】 局所投薬においては、化合物を純粋な形態、すなわち液体の状態で使用するこ
とができる。しかしながら、一般的には皮膚科学的に許可可能な担体（固形であ
っても液状であってもよい）と組合せ、組成物または製剤の形で皮膚に投与する
ことが好ましい。
【００６０】 有用な固形担体としては、タルク、クレー、微結晶性セルロース、シリカ、ア
ルミナ等、微細に分割された固形物が挙げられる。有用な液状担体としては水、
アルコールまたはグリコールまたは水とアルコールまたはグリコールの混合物
が挙げられ、このような担体中に本発明の化合物を、効果を呈する程度に溶解ま
たは分散させる。この時非毒性界面活性剤である酸を加えてもよい。与えられた
用途における特性を最大限に活かすため、フレグランスや補足的な抗菌薬等の補
助薬を添加することも可能である。得られた液体組成物は、吸収パッドから塗布
されても、包帯および他の手当用品に浸透させて用いても、ポンプ型または散霧
スプレーを用いて該当部位に吹きかけてもよい。
【００６１】 合成ポリマー、脂肪酸、脂肪酸塩およびエステル、 脂肪アルコール、修飾セ
ルロース（modified celluloses）、修正鉱質材料等の増粘剤も、液状担体と共
に用いて塗り広げ可能なペースト、ゲル剤、軟膏剤、石けん剤等を形成し、使用
者の皮膚に直接塗布することが可能である。
【００６２】 本発明の化合物を皮膚に輸送するのに使用される皮膚化学的に有用な組成物の
例は当技術分野においては公知である。具体的には ジャクエットら（Jacquet e
t al.）(米国特許. No. 4,608,392), ジェリア（Geria）(米国特許No. 4,992,47
8), スミスら（Smith et al）(米国特許. No.4,559,157) およびヴォルツマン（
Wortzman）(米国特許. No. 4,820,508)を参照されたい。
【００６３】 本発明の有用な投薬剤は、生体外の作用と生体内の作用を動物モデルで比較す
ることで決定される。マウスや他の動物、およびヒトに対する効果的な投薬剤の
補外法は当技術分野においては公知である。具体的には 米国特許No. 4,938,949
を参照されたい。
【００６４】 一般的にローション剤等の液状組成物中における本発明の化合物の濃度は0.1
〜25重量％であり、好ましくは0.5〜10重量％である。ゲル剤や粉薬のような半
固形または固形組成物における濃度は0.1〜5重量％であり、好ましくは0.5〜2.5
重量％である。
【００６５】 使用にあたって必要とされる組成物、または活性塩やその誘導体の量は、選択
された特有の塩によってだけではなく、投与の経路、治療される症状の特質、お
よび患者の年齢や症状によって変更され、最終的には付添い医師または臨床医の
自由裁量により変更される。
【００６６】 しかしながら、一般的には適切な摂取量は約0.5〜100mg/kg、例えば1日あたり
体重に対して約10〜75 mg/kgの範囲であり、1日あたり患者の体重1kgに対して3
〜50mgであり、好ましくは6〜90 mg/kg/dayの範囲、最も好ましくは15〜60 mg/k
g/dayの範囲である。
【００６７】 化合物は、活性化合物を5〜1000 mg、好都合には10〜750 mg、最も好都合には
50 to 500 mg含有する単位剤形の形で都合よく投与される。
【００６８】 活性化合物は、血漿濃度が約 0.5 〜75マイクロM、好ましくは約1 〜50マイク
ロM、より好ましくは約2〜30マイクロMになるよう投与されるのが理想的である
。これは、例えば活性成分の0.05〜5%溶液を静脈注射によって（任意で含塩物中
で）投与するか、または活性成分を1〜100 mg含有する巨丸剤として投与するこ
とで可能である。持緒点滴、または間欠的な輸液により血中濃度を0.01〜5.0 mg
/kg/hrに保つことが望ましい。
【００６９】 また所望の摂取量を、一回の摂取もしくは適度な間隔をあけた分割摂取（例え
ば、２、３、４、またはそれ以上の一日あたりの下位的摂取）として好都合に示
すことができる。下位的摂取そのものはさらに分割可能であり、例えば通気器か
らの複数吸引や、目への数滴の適用等、緩慢に間隔を空けた不連続な投与に分割
することも可能である。
【００７０】 ここに開示したように、BTKインヒビターが化学療法剤として有用であり、し
たがってアポプトーシスを促進する他の化学療法剤に対する癌細胞の感受性を増
加させる上でも有益であることが発見された。このように、BTKインヒビターは
他の化学療法剤と組み合わせて好都合に投与できる。加えて、BTKを抑制する薬
剤を含有する本発明の薬学的組成物は、アポプトーシスを促進する化学療法剤を
1以上含有していてもよい。
【００７１】
【実施例】
実施例１ BTKのFAS/APO-1 DISC阻害 以下の実施例は、BTKが、B-直系リンパ球系細胞中のFas/APO-1死誘発信号複合
体（DISC）インヒビターであることの生化学的および遺伝学的証拠を提供する。
BTKは、そのキナーゼおよびPHドメインを介してFasと関与し、FAS−FADD相互作
用を阻害するものであり、それはアポプトーシス信号中のFasによる死誘発タン
パク質分解酵素FLICEの補充および活性化にとって必須である。特に、BTKの強力
なインヒビターによるヒト白血病B細胞の治療は、BTK−Fasの関与を止め、Fas媒
介アポプトーシスへ細胞を感作させた。
【００７２】 細胞ライン、試薬、および生化学的アッセイ。BTK−欠乏DT−40リンパ腫B細胞
クローンの確立については既に記載がある（ウックン エフ エムら（Uckun, F.M
., et al.）(1996) サイエンス（Science ）273, 1096〜1100）。bik遺伝子を破
壊するために、ネオマイシン耐性遺伝子カセットを含有する標的構成物（すなわ
ちpcBTK−neo）もしくはヒスチジノール耐性遺伝子カセット（すなわちpcBTK−h
isD）を連続的にDT−４０細胞に導入した。標的ベクター、pcBTK−neoおよびpcB
TK−hisDは、ヒトBTKアミノ酸残基91〜124に対応するエキソンを含有する0.7kb
BglII-BamHIゲノムフラグメントを、neoまたはhisDカセットで置換することによ
って構成した。pcBTK−neoを線形にし、野生型DT-40細胞にエレクトロポレーシ
ョンによって導入した。３'フランキングプローブ（0.5 kb BglII-Bgl-II フラ
グメント)を用いたサザンブロット分析によってスクリーニングを行った。neo標
的クローンをpcBTK−hisDを用いて再び導入し、G418 (2 mg/mL)およびヒスチジ
ノール(1 mg/mL)の双方を用いて選別した。BTK欠乏DT−40クローンのサザンブロ
ット分析によって、neoおよびhisDプローブを用いたｂｔｋ座およびハイブリダ
イゼーションの双方における相同組換えは、標的クローンが、各構成物の単一コ
ピーを組込んだことを示すことが確認された。BTK欠乏DT−40中のBTK発現の欠如
は、免疫複合体キナーゼアッセイおよびウェスタンブロットアッセイによって確
認された（ウックン エフ エムら（1996）、サイエンス、273、1096〜1100）。
ヒトｂｔｋ ｃDNAでの突然変異をPfuポリメラーゼを用いたPCRによって導入し（
ストレイトジーン ラヨーラ、カリフォルニア、＃600153）、シーケンシングに
よって確認した。野生型および突然変異ｂｔｋｃDNAをｐApuro発現ベクター中に
サブクローニングし、BTK欠乏細胞中にエレクトロポレーションした。BTK免疫複
合体のPTK活性は、インビトロオートリン酸化（autophosphrylation）から測定
されるように、触媒ドメイン突然変異によって停止し、PHドメイン突然変異によ
って減少したが、SH２ドメインの突然変異による影響はなかった。野生型または
突然変異ヒトbtk遺伝子を導入された全てのBTK−欠乏DT-40クローン中で、等量
のBTKタンパク質をウェスタンブロット分析によって検出した（ウックン エフ
エムら（1996）、サイエンス、273, 1096-1100）。LYN欠乏DT−40クローンの確
立および特徴は既に報告されている（ウックン エフ エムら（1996）、サイエン
ス、273、1096〜1100）。これらのニワトリリンパ腫B細胞に加えて、続いてヒト
B-直系リンパ球系細胞ライン；NALM-6-UM1、BTK−陽性ヒトB細胞前駆体（プレ−
B急性リンパ芽球性白血病）細胞ライン；RAMOS-1 BTK−欠乏ヒトバーキット/B細
胞白血病ライン；およびKL2BTK−陽性ヒトEBV−形質導入正常Bリンパ芽細胞ライ
ンを使用した。
【００７３】 BTK、SYK、およびLYN に対する抗体は既に記載がある（ウックン エフ エムら
、 (1996) サイエンス、273, 1096〜1100; ジバージック アイら（Dibirdik, I.
, et al. ）(1998) ジャーナル オフ バイオロジカルケミストリー（J. of Biol
. Chem. ）273、4035-4039; およびウックン エフ エムら(1996)ジャーナルオフ
バイオロジカルケミストリー、271、6389〜6397)。BTKのポリクローナル抗体は
、BTKの第一の150アミノ酸 を含有するグルタチオンS-トランスフェラーゼ (GST
) 溶融タンパク質(アマーシャム ファルマシア バイオテック、アーリントンハ
イツ、イリノイ（Amersham Pharmacia Biotech, Arlington Heights, Illinois)
）でウサギを免疫処置することによって作製した。さらに、続く抗BTK抗体は、
精製溶融タンパク質：ポリクローナルヤギ抗BTKカルボキシル末端(サンタクルツ
バイオテクノロジー インク、サンタクルツ、カリフォルニア カタログ # SC110
7)、ポリクローナルヤギ抗BTKアミノ末端 (サンタクルツバイオテクノロジーイ
ンク、サンタクルツ、カリフォルニア カタログ#SC 1108)、および Btk SH2-SH3 ドメイン(aa219〜377)に対するポリクローナルウサギ血清のウエスタンブロット
において使用した。ポリクローナル抗MBP抗体は、ウサギを免疫処置することに
よって作製した。ヒトおよびニワトリFasタンパク質、ヤギポリクローナル抗FAD
D(sc-1171)、ヤギポリクローナル抗TRADD (sc-1163)、ヤギポリクローナル抗FLI
CE (sc-6135)と相互作用する前記ウサギポリクローナル抗-Fas (sc-715とsc-714
を1:1で混合) は、サンタクルツ バイオテクノロジー インクから購入し、製造
元の指示にしたがって使用した。モノクローナル抗Fas抗体 (F22120) は、トラ
ンスダクション ラボラトリー インク（レキシントン、KY、米国）（Transducti
on Laboratories, Inc. (Lexington, KY, USA)）から入手した。 免疫沈殿、免
疫複合体タンパク質キナーゼアッセイおよび高められた化学発光性（ECL）検出
システム（アマーシャム ファルマシア バイオテック、アーリントンハイツ、イ
リノイ）を用いたイムノブロッティングを、既知の方法で行った(ウックン エフ
エムら（1996）、サイエンス 273, 1096〜1100；ジバージック アイら (1998)
ジャーナルオフバイオロジカルケミストリー273, 4035〜4039;ウックン エフ
エムら(1996)、ジャーナル オフ バイオロジカルケミストリー、271、6389〜639
7; マハジャン エスら（Mahajan，S. et al.）(1995)モレキュラー セル バイオ
ロジー（Mol. Cell. Biol ）、15, 5304〜5311;ウックン エフ エムら(1993)ジ
ャーナルオフバイオロジカルケミストリー、268, 21172〜21184；ウックン エフ
エムら(1995) サイエンス 267、886〜91;およびウックン エフ エムら(1997)、
ブラッド（Blood）、89、3769〜3777)。BTKインヒビターアルファ−シアノ−ベ
ータ−ヒドロキシ−ベータ−メチル-N-(2,5-ジブロモフェニル) プロペンアミド
(LMA-13)を実施例２に記載の方法で調製した。
【００７４】 MBP-BTKおよびGST-BTK 溶融タンパク質の発現および精製。 cDNAs コード化全
長BTKおよび、そのキナーゼまたはPCR-生成5'および 3' BamHI 部位をもつPH ド
メインをIPTG-誘発可能Ptac プロモータを有する大腸菌（エシェリヒア コリ、E
. Coli）発現ベクターpMAL-C2 にクローニングした。これらのコード化シーケン
スと大腸菌malE遺伝子の3'末端との間をインフレーム溶融した。それはマルトー
ス結合タンパク質（MBP）をコードする。SH2、SH3またはSH2+SH3ドメインをPCR
生成5'および 3' BamHI 部位でコード化した cDNAをIPTG-誘発可能Ptacプロモー
ターをもつ大腸菌発現ベクターpGEX-2tにクローニングし、これらのコード化シ
ーケンスと大腸菌グルタチオンS−トランスフェラーゼ（GST）遺伝子の3' 末端
との間でインフレーム溶融を行った。生成した組換えプラスミッドを大腸菌DH5a
に形質転換した。単一の形質転換体を、アンピシリン(100μg/ml)を含有する5 m
lのルリア−バーテン（Luria-Burtain）(LB) 培地(1% トリプトン, 1% NaCl, 0.
5% イースト抽出物) 中に37℃で一晩膨張させた。 溶融タンパク質の発現をは
、10 mM IPTGで誘発した。前記細胞をソルヴァール（Sorvall）RC5B遠心分離に
おいて10分間 4°Cで、4,500 x gで遠心分離して回収し、スクロース−リゾチー
ム緩衝液(20 mM トリス、pH 8.0、150 mM NaCl、10 %スクロース、1 mM EDTA、2
0 mM リゾチーム)中に溶融し、さらに超音波処理によって破壊した。35,000 x g
で 4 °Cで1時間遠心分離して細胞ペレットを除去した後、GST-BTK溶融タンパ
ク質をグルタチオン−セファローズ （Sepharose）クロマトグラフィーによって
溶融タンパク質を精製した（ウックン エフ エムら(1996)、ジャーナルオフ バ
イオロジカルケミストリー、271, 6389〜6397)、一方、MBP-BTK溶融タンパク質
を アミロースアフィニティクロマトグラフィによって培溶液の上澄み液から精
製した(シュ ディーら（Hsu, D.,et al.）(1996)、バイオケミストリー（Bioche
mistry）35、13871〜77)）。
【００７５】 共焦レーザー走査マイクロスコピー。 抗Fas 抗体(1 μg/ml、24時間、37℃)
で処理した野生型およびBTK-欠乏DT-40細胞 をポリ-l-リジンでコーティングし
たカバーグラスに付着させ、氷冷(-20°C) メタノール中に15分間固定した。固
定後、そのカバーグラスを15分間、ホスフェート緩衝食塩水 (PBS)および0.1%
トリトンX-100で洗浄した。ウサギポリクローナル抗チューブリン抗体を用いて
製造元(シグマ、セントルイス ミズーリ（Sigma, St. Louis, MO）)の指示にし
たがって染色し、それらの細胞質を視覚化した。DNA を10分間、DNAと特異的な
染料である、トートー（toto）-3（モレキュラープローブ、ユージーン、オレゴ
ン（Molecular Probes, Eugene OR）)で標識し、核におけるアポプトーシス変化
を視覚化した。 BTK-MBP エレクトロポレーションしたBTK-欠乏DT-40細胞および
エレクトロポレーションしていないBTK-欠乏DT-40細胞をマルトース結合タンパ
ク質に対する抗体で標識した。第2の抗体は、ヤギ抗ウサギ蛍光複合体抗体であ
った。いくつかの実験において、共焦マイクロスコピーによってFas発現がある
かどうかについて細胞を調べた。手短に、細胞をポリ-L-リジンでコーティング
されたカバーグラス上に付着させ、40分間、2％の緩衝液食塩水中パラホルムア
ルデヒド（PBS）に固定させた。細胞を PBS + 115 mMグリシンですすぎ、ホル
ムアルデヒドで急冷し、その後、2%ウシ血清アルブミン(PBS+BSA)を含有するPBS
中にブロックした。Fasの細胞外ドメインに対するモノクローナル抗体（トラン
スダクション ラボ、レキシントン、KY、カタログ #F22120)をPBS+BSAに添加し
、カバーグラスをPBS中ですすぐ前に37℃で40分インキュベーションした。PBS+B
SA中に希釈させた蛍光標識した第２抗体（ヤギ抗マウス FITC H+L、チムド（Zym
ed）、サウスサンフランシスコ、カリフォルニア、カタログ no. 62-6511)を前
記カバーグラスに添加し、それらを再び37℃で40分間インキュベーションした。
もう一回洗浄し、細胞DNAを1 mM TOTO-3 (モレキュラープローブ、ユージーン、
オレゴン) で室温で20分間インキュベーションすることによって標識した。カバ
ーグラスを反転させ、ベクタシールド（Vectashield）（ベクターラボ、バーリ
ンガム 、カリフォルニア(Vector Labs, Burlinghame, CA)）中のスライドの上
に載せ、フォトブリーチングを防止するために爪つや出し（nail varnish）でシ
ールした。開口率の高い対物レンズを備えた落射蛍光用のニコンエクリプスE-80
0アップライト顕微鏡上に載せたバイオラッド（Bio-Rad）MRC 1024レーザー走査
共焦顕微鏡を用いてスライドを調べた（ウックン エフ エムら（1998）、クリニ
カルキャンサーリサーチ4、901〜912）。光学切片を得て、レーザーシャープソ
フトウエア（Lasersharp software）（バイオラッド、ヘラクレス、カリフォル
ニア (Bio-Rad, Hercules, CA)）を用いてステレオタイプの顕微鏡写真にした。
代表的なデジタル画像をジャズディスクに保存し、フォトショップソフトウエア
（Photoshop software）（アドーブシステム、マウンテンビュー、カリフォルニ
ア (Adobe Systems, Mountain View CA)）によって処理した。 画像は、フジピ
クトグラフィー（Fuji Pictography）（フジフォト、エルムスフォード、ニュー
ヨーク(Fuji Photo, Elmsford, NY)）の熱転写プリンターで印刷した。デジタル
データを作製し、DCD-ROMに保存した。
【００７６】 アポプトーシスアッセイ。アポプトーシスを誘発するために、細胞をアゴニス
ト抗Fas/APO-1抗体（バイオソースインターナショナル、カメリロ、カリフォル
ニア、ロット、04/1295）を最終濃度0.1μg/ml、0.5μg/ml、または1.0μg/mlで
処理した。MC540結合（アポプトーシスの初期マーカーとして）およびPI透過度
（アポプトーシスの進行状態のマーカーとして）をDT−40細胞において抗Fas抗
体に曝露24時間後、同時に既知の方法によって測定した（ウックン エフ エムら
（1996）サイエンス273、1096〜1100）。全細胞を、FACスタープラスフローサイ
トメータ(FACStar Plus flow cytometer)（ベクトンディキンソン、サンホセ、
カリフォルニア(Becton Dickinson, San Jose, CA)）を用いて分析した。全ての
分析は、アルゴンレーザからの488nm励起によって行った。MC540およびPI発光を
600nm短パス二色鏡で分割し、575nmバンドパスフィルターをフォトマルチプライ
ヤ管の前に置き、MC540発光を測定した。また、PI発光には635nmバンドパスフィ
ルターを用いた。
【００７７】 DNAのアポプトーシスフラグメンテーションを検出するために、抗Fasに曝露24
時間後にDT-40、NALM-6-UM1およびRAMOS-1細胞を集めた。トリトンX−100溶解物
からDNAを調製し、フラグメンテーションを分析した（ウックン エフ エムら（1
996）、サイエンス273、1096〜1100；ウックン エフ エムら（1995）、サイエン
ス、267、886〜91；およびウックン エフ エムら（1998）、クリニカル キャン
サー リサーチ4、901〜912）。細胞を、10mmol/Lの低張トリスHCl（pH7.4）、１
mmol/LのEDTA、0.2％のトリトンX-100洗剤中で溶解し；続いて、11,000 x gで遠
心分離を行った。アポプトーシスが関与するDNAフラグメンテーションを検出す
るために、上澄みを1.2％アガロースゲル上で電気泳動を行い、エチジウムブロ
ミドで染色後、DNAフラグメントを視覚化した。いくつかの実験では、バイオラ
ッド遺伝子パルサー（BioRad gene pulser）を用いて、バーグランドおよびスタ
ーキーの方法(バーグランド ディー、スターキー ジェー共著（Bergland, D. an
d Starkey, J.）(1991)サイトメトリー（Cytometry ）12、64〜67)で、Fas結紮
およびアポプトーシスアッセイの4時間前に僅かに修正して、MBP-BTK溶融タンパ
ク質（100μg/2.5×108細胞）をBTK欠乏DT−40細胞中にエレクトロポレーション
した（450V電界、125μF）。
【００７８】 MBP-BTKおよびGST−BTK溶融タンパク質を用いたプルダウンアッセイ（Pull Do
wn Assays）。GST−BTK溶融タンパク質をグルタチオン−アガローズビーズ（シ
グマアルドリッチ インク、セントルイス、ミズーリ(Sigma Aldrich, Inc., St.
Louis, MO）)と非共有結合させ、MBP−BTK溶融タンパク質を、飽和タンパク質
の条件下でアミローズビーズと非共有結合させた（ウックン エフ エムら(1996)
、ジャーナル オフ バイオロジカルケミストリー、271、6389〜6397;およびシュ
ディーら (1996)、バイオケミストリー、35、13871〜77）。手短に、各50μgの
タンパク質を50μlのビーズを用いて、2時間4℃でインキュベートした。そのビ
ーズを3回1％ ノニデット（Nonidet）P−40緩衝液で洗浄した。BTK-欠乏DT-40細
胞のNonidet−40溶解物、NALM-6-UMIヒト白血病B細胞前駆体、およびKL2ヒトEBV
−形質導入リンパ芽球性細胞を前記のように作製し（ウックン エフ エムら（19
96）サイエンス273、1096〜1100；およびウックン エフ エムら(1996)、ジャー
ナル オフ バイオロジカルケミストリー、271、6389〜6397）、500μｇの前記溶
解物を50μｌの溶融タンパク質結合ビーズを2時間氷上でインキュベートした。
溶融タンパク質吸着物を氷冷1％ノニデットP-40緩衝液で洗浄し、減少SDSサンプ
ル緩衝液中に再懸濁させた。サンプルを5分沸騰させ、その後SDS−PAGE上で分画
した。タンパク質をイモビロン（Immobilon）-P（ミリポア、ベッドフォード、
マサチューセッツ(Millipore, Bedford, MA)）膜に移し、膜を抗Fas（トランス
ダクション ラボラトリーインク、レキシントン、ケイー ワイ（Transduction L
abs, Lexington, KY）、カタログ #F22120)）を用いて下記に記載の方法でイム
ノブロッティングを行った（ウックン、エフ．エムら（1996）、サイエンス273
，1096−1100; ジバージック アイら (1998) ジャーナルオフバイオロジカルケ
ミストリー273, 4035〜4039; ウックン エフ エムら(1996)、ジャーナル オフ
バイオロジカルケミストリー、271、6389〜6397; およびウックン エフ エムら(
1997)、ブラッド、89、3769〜3777）。
【００７９】 Fas媒介アポプトーシスにおけるBTKの負電位調整を調べるための連続的な実験
において、まず、野生型DT−40細胞に及ぼすFas結紮の影響と相同組換えノック
アウトによって確立されたDT-40細胞のBTK−欠乏サブクローンに及ぼすFas結紮
の作用とを比較した（ウックン エフ エムら（1996）、サイエンス、273、1096
〜1100）。最後に、定量フローサイトメトリックアポプトーシス検出アッセイ（
ウックン エフ エムら（1996）、サイエンス、273，1096−1100）を使用した。M
C540結合およびよう化プロピジウム（PI）透過度を、アゴニスト性抗Fas抗体（1
μg／ｍL×24時間）での処置前後に同時に測定した。抗Fas抗体で処理した野生
型DT−40細胞においては、5％のみがアポプトーシス変化を示したが、BTK欠乏DT
−40細胞では96.3％でアポプトーシスが起こった。24時間でMC540単一蛍光塗料
（初期アポプトーシス）またはMC540/PI二重蛍光塗料（進行性アポプトーシス）
を測定した（図１）。特に、野生型btk遺伝子を組込まれたBTK欠乏性DT-40細胞
は、非常に僅かにアポプトーシスの流動細胞の証拠を示しただけだった。それは
、BTKが、Fas結紮によって誘発されるアポプトーシス死信号を阻害する重要な役
割を担うことの証拠を提供するものである。Src科PTKのプロアポプトーシス機能
に関する情報（ワディック ケー ジーら(Waddick, K.G., et al.) (1993) ラジ
エーションリサーチ（Radiation Research）、136, 313-319；シュロットマン
ケー イーら（Schlottmann, K.E., et al）リューコサイト バイオロジー（Leuk
ocyte Biology ）60、546〜554；およびアトキンソン イーエイら（Atkinson, E
.A., et al.）(1996)ジャーナルオフバイオロジカルケミストリー（J. Biol. Ch
em.）271, 5968〜5971)）および、LYN欠乏マウスからのB細胞のFas媒介アポプト
ーシス（ワング ジェーら（1996）、ジャーナル オフ エクスプレッションメデ
ィシン、184、831〜838）によれば、これらの実験の対照として誘発されたDT-40
細胞の抗Fas処置LYN欠乏サブクローンでは、僅かなアポプトーシスが認められた
だけであった（図１）。図２Aに示すように、BTK欠乏DT−４０細胞の全細胞溶解
物中でのウェスタンブロット分析では、BTKタンパク質は検出できなかった。し
かし、野生型ヒトbtk遺伝子を組み込まれたBTK欠乏DT−４０細胞は、野生型DT−
４０細胞よりBTK発現レベルがより高かった。しかし、これら３つのB細胞クロー
ンにおけるFasタンパク質発現レベルは、ほぼ等しかった（図２B）。これらの所
見を共焦マイクロスコピーによってさらに確認した。C.1〜C.3に示したように、
3つの細胞ラインはすべて類似のレベルの点状のFas染色を示した。連続的な光学
的切片の三次元再構成においては、3つの細胞ラインの細胞質および膜表面の双
方において、Fasの発現が確認され、発現レベルまたはパターンに対して検出可
能な差はなかった。したがって、野生型DT-40細胞またはFas媒介アポプトーシス
に対する野生型BTKによって再構成されたBTK欠乏DT-40細胞は、低レベルのFasタ
ンパク質発現によるものではなかった。また、BTK欠乏DT-40細胞のFas媒介アポ
プトーシスに対する感受性は、増大されたFasタンパク質発現によって引き起こ
されたものではなかった。
【００８０】 野生型対BTK欠乏DT-40細胞のレーザ走査共焦マイクロスコピーによる細胞形態
学的特徴の比較試験は、アゴニスト抗Fas抗体で処理した後、野生型細胞にアポ
プトーシスの証拠は認められなかった。しかし、BTK欠乏細胞は、収縮およびア
ポプトーシスと一致した核フラグメンテーションを示した（図３A）。アガロー
スゲル上で、抗Fas処理BTK欠乏DT-40のトリトンーX-100溶解物からのDNAは、ア
ポプトーシスと一致するはしご型フラグメンテーションパターンを示した。しか
し、野生型DT-40細胞中には、DNAフラグメンテーションは観察されなかった（図
３Ｂ）。これらの結果は、BTKがFas/APO-1-媒介アポプトーシスを阻害する直接
的な証拠を提供するものである。
【００８１】 BTKは、プレックストリン（pleckstrin）ホモロジー（PH）ドメインおよびテ
ックホモロジー（TH）ドメイン、オートリン酸化部位をチロシン223に含む単一S
rcホモロジー3（SH3）ドメイン、単一SH2ドメイン、およびトランスリン酸化部
位をチロシン551に含む触媒的キナーゼドメインを含有する独特のＮ末端領域で
ある（ローリングス ディージェー（Rawlings, D.J.）、ヴィッテ オーエヌ（Wi
tte, O.N）（1994）、イムノロジー レヴュー（Immunol. Rev.）138, 105-119）
；クロサキ ティー（Kurosaki, T）（1997）、カレントオピニオン イムノロジ
ー（Curr Opin. Immunol.）9、309〜318）。BTKのPHドメインは、様々なイソ型
タンパク質、キナーゼC、ヘテロトリメリックGタンパク質、ならびにBAP−135タ
ンパク質と相互作用する（ローリングス ディージェー、ヴィッテ オーエヌ（19
94）、イムノロジー レヴュー138, 105-119）；クロサキ ティー（1997）、カレ
ントオピニオン イムノロジー、9、309〜318）；ツカダ エス（Tsukada, S.）(1
994) ジャーナルオフバイオロジカルケミストリー269, 10217〜10220;およびヤ
ング ダブリュー 、デシデリオ エス（Yang, W., Desiderio, S） (1997) プロ
シーディング ナショナルアカデミーサイエンス（Proc Natl Acad Sci）米国、9
4, 604-609)）。SH3ドメインは、他のタンパク質のプロリンに富んだシーケンス
と相互作用することを示している。一方、SH2ドメインは、チロシンリン酸化タ
ンパク質（ヤング ダブリュー デシデリオ エス(1997)、プロシーディング ナシ
ョナルアカデミックサイエンス、米国、94, 604-609）。しかし、B直系リンパ球
系細胞中のBTK SH２またはSH3ドメインと相互作用する特異的なタンパク質は報
告されていない。触媒ドメイン中の突然変異、SH2ドメインならびにBTKのPHドメ
インは、ヒトXLAのB細胞個体発生の初期の段階で突然変異ブロックを引き起こす
ことがわかった（ポーソン ティー、ギッシュ ジー ディー（1992）セル、(Paws
on,T., Gish, G.D. (1992) Cell )71、359〜362；およびビーネン エムら（Vihi
nen, M., et al.）(1995) イムノロジーツディ（Immunol. Today ）16、 460〜4
65)）。PHドメインまたは触媒ドメイン突然変異を未成熟幹細胞中に誘発するこ
とによって作製されたBTK欠乏マウスは、欠乏B-細胞の発達および機能を示した
（カーナー ジェーディーら(Kerner, J.D., et al. (1995) イミュニティー（Im
munity ）3、301〜312）。したがって、BTKの異なる領域は、その生理学的機能
にとって重要である。BTKの、Fas媒介アポプトーシスの様々なドメインの負のレ
ギュレーションとの関与を調べるために、野生型ヒトｂｔｋ遺伝子、および突然
変異体を触媒ドメイン（Arg525〜Gln）、SH2ドメイン（Arg307〜Ala）、またはP
Hドメイン（Arg28〜Cys）のいずれかに持つヒトｂｔｋ遺伝子を、BTK欠乏DT-40
細胞中に導入した（ウックンエフエムら(1996)サイエンス、22, 1096〜1100）。
図３Cおよび３Dに示すように、野生型ヒトbtk遺伝子（ｒＷＴ）によって再構成
されたBTK欠乏DT-40細胞は、アゴニスト性Fas抗体による処理後、アポプトーシ
スを起こさなかった。一方、キナーゼ（ｒK-）、SH２（ｒｍSH2）,またはPH(rmP
H)ドメイン中に突然変異を有するヒトBTKを発現する再構成されたBTK欠乏DT−４
０細胞のFas活性は、図３Bに示した非再構成BTK欠乏DT-40細胞と同様、アポプト
ーシスを誘発した。したがって、キナーゼ、SH2、およびBTKのPHドメインは、Fa
s媒介アポプトーシスの負のレギュレーターとして重要であり、明らかに不可欠
である。
【００８２】 BTKの抗アポプトーシス機能を更に特徴づけるために、全長野生型BTKを含有す
るMBP溶融タンパク質を抗Fas抗体で処理する前に、電気泳動によって、BTK欠乏
細胞に4時間導入した。レーザ走査共焦マイクロスコピー（図４A）ならびに抗BT
Kおよび抗MBP抗体を用いたウェスタンブロット分析（図４B）によるこれらの細
胞の試験によって、エレクトロポレーションされた野生型BTKタンパク質の存在
が確認された。図４Cに示すように、野生型BTKタンパク質をエレクトロポレーシ
ョンによって導入することによって、Fas結紮のアポプトーシス効果に耐性のあ
るBTK欠乏DT-40細胞が付与され、BTKの抗アポプトーシス機能のための可能なメ
カニズムとしてBTKおよびFas信号形質導入経路間の直接的なタンパク質−タンパ
ク質相互作用を示唆した。
【００８３】 FasまたはTNF受容体−１の結紮によって開始した下流のプロアポプトーシス現
象は発光を開始している（フレーザー エイ エヴァン ジー(Fraser, A., Evan,
G.) (1996) セル、85, 781-784; キシュケル エフ シーら（Kischkel, F.C., et
al.） (1995) EMBO J. 14, 5579-5588; フー エス ビンセンツら（Hu S. Vince
nz, et al.）(1997) ジャーナル オフ バイオロジカル ケミストリー（J. Biol.
Chem.）272, 17255〜17257; デンヴェロークス キュー エルら（Deveraux, Q.L
., et al.） (1997)ネイチャー 388, 300〜304; ソーム エムら（Thome, M., et
al.）(1997)ネイチャー 386、517-521; ボールディン エムピーら（Boldin, M.
P., et al.）(1995)ジャーナルオフバイオロジカルケミストリー、270, 7795〜7
798; ロス エムら（Los, M., et al.）(1995) ネイチャー375, 81〜83; ボール
ディン エム ピーら(1996) セル 85, 803〜815; およびチネイヤン エイーエム
ら（Chinnaiyan, A.M., et al.）(1995)セル 81、505〜512)。 FasもTNF受容体
-1 も相同細胞内“死ドメイン”を含有しており、それは、プロアポプトーシス
死信号複合体（DISC）の中心的な役割を担っている(キシュケル エフシーら (1
995) EMBO J. 14, 5579-5588)。p55 TNF 受容体-1およびFas/CD95の死ドメイン
は、リガンド依存性補充、および多価アダプタータンパク質を含有する他の領域
とのヘテロ関連を媒介するドッキング部位として機能する。ＣＤ95の場合、死ド
メインを持つFas作用タンパク質(FADD)および受容体相互関連タンパク質(RIP);
およびＴＮＦ受容体−1の場合、TNF受容体-1-関連死ドメインタンパク質 (TRADD
)およびRIP（フレーザー エイ エヴァン ジー (1996) セル、85, 781〜784; キ
シュケル エフ シーら(1995) EMBO J. 14, 5579〜5588; およびチネイヤン エイ
ーエムら (1995)セル 81、505〜512)。FADDは Fas/CD95-とTNF受容体-1-リンク
アポプトーシス信号トランスダクション経路との集合点である。Fas/CD95は直接
的にFADDを補充するが、TNF 受容体-1はTRADDと結合し、その後、FADDを補充す
るアダプタータンパク質として機能する。リガンド結合に続くCD95-FADDまたはT
NF 受容体-1-TRADD-FADD複合体の形成は、アポプトーシスの誘導にとって重要で
ある。プロアポプトーシスDISCは、ICEプロテアーゼファミリーに属する細胞質
ゾルのカスパーゼ（caspase） FLICEを補充および付随的に活性化することによ
って達成される（フレーザー エイ エヴァン ジー (1996) セル、85, 781-784;
キシュケル エフ シーら(1995) EMBO J. 14, 5579〜5588; フー エス ビンセン
ツら (1997) ジャーナル オフ バイオロジカルケミストリー272、17255〜17257;
デンヴェロークス キュー エルら(1997)ネイチャー 388, 300〜304; ソーム エ
ムら (1997)ネイチャー 386, 517〜521; ボールディン エムピーら(1995)ジャー
ナルオフバイオロジカルケミストリー、270, 7795〜7798; ロス エムら (1995)
ネイチャー375, 81〜83; ボールディン エムピーら(1996) セル 85, 803〜815;
およびチネイヤンエイーエムら(1995)セル 81, 505〜512)。近年、タンパク質
の数が、Fas- 並びにTNF 受容体誘発性アポプトーシスのインヒビターとして同
定されている（フレーザー エイ エヴァン ジー(1996) セル、85, 781〜784; キ
シュケル エフ シーら(1995)EMBO J. 14, 5579〜5588; フー エス ビンセンツら
(1997) ジャーナル オフ バイオロジカルケミストリー272, 17255〜17257; デ
ンヴェロークス キュー エルら(1997)ネイチャー 388, 300〜304; ソーム エム
ら (1997)ネイチャー 386, 517〜521）。これらのタンパク質は、FADDまたはFLI
CEと直接的に相互作用し、それによってDISCアッセンブリーおよび機能に干渉す
る。特に、Fasの死ドメインは、免疫受容体チロシンベースの活性化モチーフ（I
TAM）と類似した保存YXXLモチーフを持つ。タンパク質およびFasを含有するSH２
タンパク質的結合部位としての シーケンスが近年、Fas媒介アポプトーシスに必
要なプロアポプトーシスレギュレーターとしてのFynおよびLckキナーゼと関与し
ていることがわかった(シュロットマン、ケイ イーら（Schlottmann, K.E., et
al.）、リュウコサイトバイオロジー（Leukocyte Biology） 60, 546〜554; お
よびアトキンソン イーエイら（Atkinson, E.A., et al.）(1996)ジャーナル オ
フ バイオロジカルケミストリー 271, 5968〜5971)。したがって、BTKがFasと相
互作用することができ、Fas結紮後のプロアポプトーシスDISCアッセンブリを阻
害することができるとの仮説を立てた。
【００８４】 まず、未処理DT-40細胞のノニダー（Nonider）P-40溶解物からのFas、FLIC、F
ADOおよびTRADD免疫複合体についてBTKが存在するかどうかを調べて、BTKがFas
およびDISCの他の部分と物理的関連の可能性を調べた。抗BTKイムノブロッティ
ングによるFas (他ではない)免疫複合体でのウエスタンブロッティング分析によ
ってBTKを検出した（図５A）。同様に、野生型ヒト btk 遺伝子によって再構成
された野生型DT−40細胞およびBTK欠乏DT−40細胞からのBTK免疫複合体中におけ
る抗FasイムノブロッティングによってFasを検出した（図５B）。BTKとFasタン
パク質の構成的関与は、ヒトB細前駆体白血病細胞ラインにおいてもNALM-6-UM1
においても認められた(図5C)。これらの結果を合わせると、BTKがFasタンパク質
と関与し得ること、およびこの物理的関与は、Fas受容体との前もって組み合わ
されている必要がないことを示す。図5Dからわかるように、Fasは、FADD免疫複
合体中にFasが検出されることから、BTK-欠乏DT-40細胞中のFADDと関与している
。Fas活性化BTK欠乏DT-40細胞、Fas関連FADD 分子は、抗FADDイムノブロッティ
ングによって検出された(図5D)。BTK欠乏 DT-40細胞とは対照的に、Fas-FADDは
、野生型ヒトBTKで再構成された未処理または抗Fas処理BTK-欠乏 DT-40細胞とは
あまり関与しないことがわかった(図 5B)。同様に、Fas-結紮は、ヒトNALM-6-UM
1 白血病細胞と関与するFas-FADD を高められなかった(図5C)。したがって、BTK
はFasと関与し、アポプトーシス信号中のFasによるFLICEの補充および活性化に
必須のタンパク質であるFADDとの相互作用を損なう。これらの結果はBTKが、ア
ポプトーシス信号トランスダクションの正または負のレギュレーターを含むマル
チメカニズムによるFas結紮によって誘発されるアポプトーシス信号の運命を変
えるかもしれないという可能性を除外しないが、それらは観察されたBTKの抗ア
ポプトーシス機能の少なくとも１つの事実を説明する。
【００８５】 ヒト白血病B細胞前駆体において観察されたBTK-Fas関連を更に解明するために
、われわれは、BTK-陽性NALM-6-UM1ヒトプレ-B 白血病細胞ラインとBTK-欠乏 RA
MOS-1 ヒト B-細胞白血病細胞ラインとのFas媒介アポプトーシスに対する感受性
を比較した。図６Aに示すように、これら２つの細胞ラインは、同レベルのFasタ
ンパク質を発現する。 BTK-欠乏 RAMOS-1細胞では、アゴニスト抗Fas抗体による
Fas結紮後、アポプトーシスが起こった。 しかし、BTK-陽性NALM-6-UM1細胞では
起こらなかった(図6B)。次に、レフルノミド（leflunomide）代謝物類似体アル
ファ-シアノ-ベータ-ヒドロキシ-ベータ-メチル-N-(2,5-ジブロモフェニル)プロ
ペンアミド(LMA-13)、BTKの強力なインヒビターがBTK-Fas関与およびNALM-6-UM1
細胞中でのFas媒介アポプトーシスに対する耐性に及ぼす影響を調べた。LMA-13-
処理したNALM-6-UM1細胞からの細胞溶解物全体の抗BTKおよび抗Fasウエスタンブ
ロット分析によれば、BTK(図6 C.1)または Fasタンパク質 (図6 C.2) 発現のレ
ベルの減少は認められなかった。BTK免疫複合体中にFasタンパク質は実質的に存
在せず、LMA-13 によるBTK阻害がBTK-Fas 関連を止めるという直接的な証拠を提
供するものである（図6 C.3)。特に、LMA-13での4時間の処理は、NALM-6-UM1 細
胞にアポプトーシスを誘発しなかったが、Fas媒介アポプトーシスに感受性を示
すヒト白血病細胞に高い耐性をもたらした（図 6D）。これらの結果は、さらにB
TKが生理学的に重要なFas-媒介アポプトーシスの負のレギュレーターであること
を示す。
【００８６】 BTK インヒビター LFM-A13がBTK-Fas 関連を止める事ができるということは、
BTKのキナーゼ活性がBTK-Fas複合体の形成に重要な役割を果たしていることを証
明している。BTKのFasとの関連がキナーゼ活性に依存するのかどうかを更に確立
するために、次に、野生型ヒトBTK (BTK-, rBTK[WT])またはキナーゼ不活性化突
然変異体(Arg525 −Gln)、ヒトBTK (BTK-, rBTK[K-])によって再構成されたBTK-
欠乏 DT-40細胞におけるBTK-Fas相互活性 を調べた。図7Aに示すように、これら
２つの細胞ラインからの細胞溶解物全体を抗BTKまたは抗Fas抗体用いてウエスタ
ンブロット分析を行ったところ、殆ど差はなかった(すなわち、2つの個別の実験
の双方において、BTK-, rBTK[K-] 細胞中でのBTKおよびFas発現レベルが僅かに
高いことが観察された)。BTK-, rBTK[WT] 細胞の溶解物のFas免疫複合体は、BTK
タンパク質を含有していた。これは、BTK-Fas関連 が抗Fas 抗体で細胞を処理す
ることによってさらに高められた（図7B、レーン1、 2)。対照的に、BTK-, rBTK
[K-] 細胞のFas 免疫複合体では、抗Fas抗体による処理とは無関係にBTKタンパ
ク質は検出できなかった（図7B、レーン3および4)。これらの結果はともに、BTK
とFasの関与がBTKのキナーゼ活性に依存することを示す。
【００８７】 次に、BTKとFasとの関与のための構造的要件を解明するために、全長MBP-BTK
とBTKの様々なドメインに対応する切形MBP-BTKおよびGST-BTK溶融タンパク質と
を結合させる実験を行った（図8A〜C）。 MBP-BTK 1〜659 (全長BTK)ならびにMB
P-BTK 408〜659("BTKキナーゼドメイン")およびMBP-BTK 2〜137 ("BTK PH ドメ
イン")は、BTK-欠乏 DT-40細胞 (図 8D)。ヒトNALM-6 プレ-B 白血病 細胞(図8E
)、およびKL2ヒトEBV-形質導入B-リンパ芽細胞(図8F) の溶解物からのFasを結合
し、引き出す（pull dowon）ことができた。しかし、Fasは、切形キナーゼドメ
イントランスリン酸化部位に対応するY551を含有する対照MBP-BTK 519〜567溶融
タンパク質(図７DのC5)、SH3およびSH2ドメインを含有するGST-BTK 219〜377、S
H3ドメインに対応するGST-BTK 219〜268、またはSH2ドメインに対応するGST-BTK
281-377 (後の２つは、BTK-欠乏 DT-40細胞からの溶解物のみを用いて使用され
た)とは結合しなかった（図8D-F）。
【００８８】 全長BTKの結晶構造はこれまでに報告されてこなかったが、最近報告されたPH
ドメインおよびBTKモチーフの構造 (ハイボーネン エム、サラスト エム（Hyvon
en, M., Saraste, M）(1997) EMBO J. 16, 3396〜3404) は、BTKとそのPH ドメ
インの結合能に適応できる有用な情報を提供する。FADDは、残基230-314から集
められた逆平行の６本のアルファ螺旋からなる死ドメインから主に構成されてい
るFasの細胞質ドメインと相互作用することが報告されている(ファング ビー ら
（Huang, B., et al.）(1996)ネイチャ 384, 638-641)。Fas死ドメインのYXXLシ
ーケンスを検討し、ITAMsと類似させ、チロシンリン酸化上のPTKのSH2ドメイン
、またはその他のメカニズムによって認識されていた (シュロットマン、ケイ
イーら、リュウコサイトバイオロジー、60, 546〜554; およびアトキンソン イ
ーエイら (1996)ジャーナルオフバイオロジカルケミストリー 271, 5968〜5971)
。 このYXXLシーケンスの配位を分析したところ、それがアルファ螺旋の中央に
位置し、その実質的な配位的変化は、アルファ螺旋がチロシン残基により影響さ
れやすくない限り、硬すぎてPTKと相互作用できないことがわかった。したがっ
て、YXXLシーケンスの構造的ジオメトリーは 、FasとBTKが、アトキンソン イー
エイら (1996)ジャーナルオフバイオロジカルケミストリー 271, 5968-5971に
示唆されているように、CD3-イプシオンITAM/ZAP-70のそれのように結合モード
を取り入れることを阻止しがちである。BTK SH2ドメインが全細胞溶解物からFas
を引き出す能力がこの考え方をさらに支持する。BTKはどのようにしてFas関与す
るのだろうか？ BTKとFasは、静電気によって相互にひきつけられることによって結合してもよ
く、また、Fas死ドメインのアルファ螺旋の既知の表面にある帯電残基と関与し
得る水素結合を介して結合してもよい。この結合は、FasとBTKとの間の界面を形
成する第３のタンパク質を媒介とし得る。BTKの SH2ドメインおよびキナーゼド
メインのその抗アポプトーシス機能に対する重要性は、BTKのチロシンリン酸化
基質がそのような界面を提供するかもしれないという仮説を助長する。
【００８９】 BTKがFas結紮のプロアポプトーシス効果をBTKを阻害し得るということが、正
常ヒトB-細胞個体発生中に成長するB細胞前駆体のアポプトーシスは、FasとBTK
によって相互に調整されるという仮説を助長する。キナーゼ中にBTKまたは突然
変異が存在しない場合、PHおよびSH2ドメインはXLAのフェノタイプに導くプレB
細胞の不適切なアポプトーシス細胞死を引き起こす可能性がある (ローリングス
ディー ジェー、ヴィッテ オー エヌ（1994）、イムノロジー、レヴュー，ツカ
ダ エスら、(1993)セル 72、279〜290；およびヴェトリー ディー（Vetrie, D）
(1993)ネイチャー 361、226〜233)。不適切なアポプトーシスはヒト白血病やリ
ンパ腫の病因、ならびに薬剤耐性の基礎となり、それはアポプトーシスを治療的
介入の重要な潜在的標的にする。化学療法薬(例えば、ビンクリスチン、ダウノ
ルビシンまたはタキソール)に曝された白血病/リンパ腫細胞の運命は 、対向す
る、DISCによって活性化されたカスパーゼ（caspases）プロアポプトーシス効果
と、BTKおよび／またはその基質と関わる上流の負の調整メカニズムとのバラン
スに存在し得る。したがって、BTKのインヒビターは、B直系白血病／リンパ腫細
胞の薬剤感受性を高める可能性がある。. 実施例２: 特異的なレフルノミド(leflunomide)代謝物類似体の合成 化学特性。全ての化学物質は、アルドリッチ（ミルウォーキー、ウィスコンシン
（Aldrich, Milwaukee, WI）から購入し、さらなる精製なしで使用した。特に記
載のない限り、各反応容器はゴム隔壁で固定されており、窒素雰囲気で反応を行
った。1Hおよび 13C NMR スペクトルをバリアンマーキュリー300インスツルメン
トスペクトロメータ（Varian Mercury 300 instrument spectrometer ）（パロ
アルト、カリフォルニア(Palo Alto, CA)）上において常温で特定の溶媒中に得
た。フィシャー-ジョンズ（Fisher-Johons）融点測定装置を用いて融点を測定し
、その融点は未補正値である。FT-IRスペクトルをニコレットプロテージ460スペ
クトロメータ（Nicolet Protege 460 spectrometer）（マディソン、ウィスコン
シン(Madison, WI)）上に記録した。HP 5973 マスセレクティブデテクター（Mas
s Selective Detector）を備えたHP 6890 GC システム(パロアルト、カリフォル
ニア)上にGC/MS スペクトルを得た。
【００９０】 MS (EI)スペクトルをHPシリーズ1100 LL/MSD上に得た。
【００９１】 LFMおよびLFM-A1-LFM-A14 (35,36)調製のための一般合成スキームを 図19に示
す。シアノ酢酸1を、ジイソプロピルカルボジアミド(DIC)の存在下で望ましいア
ニリン2 と結合させ、3を形成した。化合物３をNaHで処理し、その後 アセチル
クロリドでアクリル化し、LFMまたはLFM-A1〜LFM-A14を生成した。 一般的合成方法 1,3-ジイソプロピルカルボジイミド (1.75 g; 13.9 mmol) を0℃でシアノ酢酸
１(1.70 g; 20.0 mmol)とテトラヒドロフラン(25 mL)中置換アニリン2 (12.6 mm
ol)の望ましい溶液に添加した。その混合物を12時間室温で攪拌した。得られた
尿素沈殿物(反応副産物)を濾過によって除去し、そのろ液をエチルアセテートと
0.5 N HClに分けた。続いてその有機層を塩水で2回洗浄し、無水Na2SO4 上で乾
燥させ、回転蒸発（rotary-evaporation）によって濃縮した。粗固体生成物をエ
チルアルコールから再結晶化し、純化物3を得た（クオ イー エイら(1996)ジャ
ーナルオフメディカルケミストリー（ J. Med. Chem）39(23)、 4608〜21; およ
びスジョグレン イー アールら（Sjogren, E. R）(1991) ジャーナル オフ メデ
ィカル ケミストリー34、3295〜3301）。
【００９２】 水素化ナトリウム(0.93 g; 鉱油中60%; 23.2 mmol) を、0℃でテトラヒドロフ
ラン(40 mL)中3 (12.0 mmol)の溶液にゆっくり添加した。0℃で30分間攪拌後、
アセチルクロリド(1.04g; 13.2 mmol)を添加し、反応混合物を生成した。前記反
応をさらに1時間常温で継続し、酢酸(2 mL)を添加して急冷した。前記混合物を2
.5ｍLの塩酸を含有する氷水(100 mL) に注ぎ、粗生成物を析出させ、それを濾過
によって回収し、水で洗浄した。最終的な純粋生成物を再結晶によって得た。 物理的データ アルファ-シアノ-ベータ-ヒドロキシ-ベータ-メチル-N-[4-(トリフルオロメチル
)フェニル]-プロペンアミド (LFM)。 mp: 230 - 233°C; IR (KBr): 3303, 221
8, 1600 および 1555cm-1; 1H NMR (DMSO-d6): デルタ11.01 (s, 1H, NH), 7.75
(d, J = 8.4 Hz, 2H, ArH), 7.64 (d, J = 8.4 Hz, 2H, ArH), 2.22 (s, 3H, C
H3); GC/MS m/z 270 (M+), 161, 142, 111。 アルファ-シアノ-ベータ-ヒドロキシ-ベータ-メチル-N-（4-ブロモフェニル)プ
ロペンアミド (LFM-A1)。 mp: 213 - 214°C; IR (KBr): 3288, 2228, 1615, 15
55 cm-1; 1H NMR (DMSO-d6): デルタ10.51 (s, 1H, NH), 7.49 (s, 4H, ArH), 2
.25 (s, 3H, CH3); MS (EI) m/z 280 (M+)。 アルファ-シアノ-ベータ-ヒドロキシ-ベータ-メチル-N-（4-クロロフェニル)プ
ロペンアミド (LFM-A2)。 mp: 209 - 211°C; IR (KBr): 3298, 2223, 1598 お
よび 1552 cm-1; 1H NMR (DMSO-d6): δ 10.48 (s, 1H, NH), 7.54 ( d, J = 8.7 Hz, 2H, ArH), 7.45 (s br, 1H, OH), 7.36 (d, J = 8.7 Hz, 2H, A
rH), 2.25 (s, 3H, CH3); MS (CI) m/z 236 (M+), 129, 127。 アルファ-シアノ-ベータ-ヒドロキシ-ベータ-メチル-N-（4-フルオロフェニル)
プロペンアミド(LFM-A3)。 mp: 165 - 166°C; IR (KBr): 3298, 2218, 1610 お
よび 1560 cm-1; 1H NMR (DMSO-d6): デルタ10.33 (s, 1H, NH), 7.80 (s br, 1
H, OH), 7.53 (m, 2H, ArH), 7.16 (m, 2H, ArH), 2.26 (s, 3H, CH3); GC/MS m
/z 220 (M+), 111。 アルファ-シアノ-ベータ-ヒドロキシ-ベータ-メチル-N- [2-(取り不負悪露メチ
ル)フェニル]-プロペンアミド (LFM-A4)。 mp: 61 - 63°C; IR (KBr): 3435,
2209, 1619, 1952 および 1548 cm-1; 1H NMR (DMSO-d6): 10.99 (s, 1H, NH), 8.03 (d, J = 7.5 Hz, 1H, ArH), 7.67 (d, J = 7.5 Hz, 1H, Ar
H), 7.60 (dd, J = 7.5, 7.5 Hz, 1H, ArH), 7.29 (dd, J = 7.5, 7.5 Hz, 1H,
ArH) 5.71 (s br, 1H, OH), 2.20 (s, 3H, CH3); GC/MS m/z 270 (M+), 161, 14
1, 114。 アルファ-シアノ-ベータ-ヒドロキシ-ベータ-メチル-N- (2-ブロモフェニル)プ
ロペンアミド (LFM-A5)。 mp: 98 - 100°C; IR (KBr): 3351, 2214, 1609, 158
5 および 1536 cm-1; 1H NMR (DMSO-d6): デルタ10.76 (s, 1H, NH), 8.06 (dd,
J = 8.1, 1.5 Hz, 1H, ArH), 7.62 (dd, J = 8.1, 1.5 Hz, 1H, ArH), 7.33 (m
, 1H, ArH), 7.03 (m, 1H, ArH), 6.60 (s br, 1H, OH), 2.22 (s, 3H, CH3); )
; MS (EI) m/z 280 (M+), 173, 171。 アルファ-シアノ-ベータ-ヒドロキシ-ベータ-メチル-N- (2-クロロフェニル)プ
ロペンアミド(LFM-A6)。 mp: 93 - 94°C; IR (KBr): 3372, 2208, 1644, 1621
および 1587 cm-1; 1H NMR (DMSO-d6): デルタ10.96 (s, 1H, NH), 8.16 (d, J
= 8.1 Hz, 1H, ArH), 7.46 (dd, J = 7.5, 1.5 Hz, 1H, ArH), 7.29 (m, 1H, Ar
H), 7.08 (m, 1H, ArH), 2.22 (s, 3H, CH3); MS (CI) m/z 236 (M+), 129, 127
。 アルファ-シアノ-ベータ-ヒドロキシ-ベータ-メチル-N- (2-フルオロフェニル)
プロペンアミド (LFM-A7)。 mp: 118 - 119°C; IR (KBr): 3409, 2212, 161
3, 1591 および 1532 cm-1; 1H NMR (DMSO-d6): ラムダ10.70 (s, 1H, NH), 7.
91 (m, 1H, ArH), 7.23 (m, 1H, ArH), 7.13 (m, 2H, ArH), 7.10 (s br, 1H, O
H), 2.22 (s, 3H, CH3); GC/MS m/z 220 (M+), 111。 アルファ-シアノ-ベータ-ヒドロキシ-ベータ-メチル-N- [3-(トリフルオロメチ
ル)フェニル]-プロペンアミド (LFM-A8)。 mp: 182 - 184°C; IR (KBr): 3303,
2221, 1619 および 1572 cm-1; 1H NMR (DMSO-d6): デルタ10.79 (s, 1H, NH),
8.05 (s br, 1H, OH) 8.04 (s, 1H, ArH), 7.75 (d, J = 8.1 Hz, 1H, ArH),
7.53 (dd, J = 8.1, 7.5 Hz, 1H, ArH), 7.42 (d, J = 7.5 Hz, 1H, ArH), 2.2
4 (s, 3H, CH3); GC/MS m/z 270 (M+), 161。 アルファ-シアノ-ベータ-ヒドロキシ-ベータ-メチル-N-(3-ブロモフェニル)プロ
ペンアミド(LFM-A9)。 mp: 184 - 185°C; IR (KBr): 3303, 2228, 1610, 1595
および 1550 cm-1; 1H NMR (DMSO-d6): デルタ10.56 (s, 1H, NH), 7.89 (m, 1
H, ArH), 7.47 (m, 1H, ArH), 7.28 (m, 2H, ArH), 6.37 (s br, 1H, OH), 2.26
(s, 3H, CH3); MS (EI) m/z 282 (M+ + H, 81Br), 280 (M+ + H, 79Br), 173,
171。 アルファ-シアノ-ベータ-ヒドロキシ-ベータ-メチル-N- (3-クロロフェニル)プ
ロペンアミド(LFM-A10)。 mp: 184 - 187°C; IR (KBr): 3293, 2221, 1610,
1595 および 1557 cm-1; -H NMR (DMSO-d6): ラムダ10.61 (s, 1H, NH), 7.76 (
m, 1H, ArH), 7.42 (m, 1H, ArH), 7.33 (dd, J = 8.1, 8.1 Hz, 1H, ArH), 7.1
6 (m, 1H, ArH), 6.84 (s br, 1H, OH), 2.25 (s, 3H, CH3); MS (CI) m/z 239
(M+ + H, 37Cl), 237 (M+ + H 35Cl), 129, 127。 アルファ-シアノ-ベータ-ヒドロキシ-ベータ-メチル-N- (3-フルオロフェニル)
プロペンアミド(LFM-A11)。 mp: 136 - 138°C; IR (KBr): 3297, 2221, 1613,
1597 および 1567 cm-1; 1H NMR (DMSO-d6): デルタ10.54 (s, 1H, NH), 7.54 (
m, 1H, ArH), 7.33 (m, 2H, ArH), 6.93 (m, 1H, ArH), 2.27 (s, 3H, CH3); GC
/MS m/z 220 (M+), 111。 アルファ-シアノ-ベータ-ヒドロキシ-ベータ-メチル-N- [4-(トリフルオロメト
キシ)フェニル]-プロペンアミド(LFM-A12)。 mp: 182 - 183°C; IR (KBr): 33
08, 2213, 1625 および 1580 cm-1; 1H NMR (DMSO-d6): δ 10.57 ( s, 1H, NH), 7.90 (s br, 1H, OH), 7.64 (d, J = 8.7 Hz, 2H, ArH), 7.32 (d,
J = 8.7 Hz, 2H, ArH), 2.25 (s, 3H, CH3); GC/MS m/z 286 (M+), 177, 108。 アルファ-シアノ-ベータ-ヒドロキシ-ベータ-メチル-N- (2,5-ジブロモフェニル
)-プロペンアミド(LFM-A13)。 mp: 148 - 150°C; IR (KBr): 3353, 2211, 164
8 および 1590 cm-1; 1H NMR (DMSO-d6): デルタ11.41 (s, 1H, NH), 8.57 (d,
J = 2.4 Hz, 1H, ArH), 7.55 (d, J = 8.7 Hz, 1H, ArH), 7.14 (dd, J = 8.7,
2.4 Hz, 1H, ArH), 7.10 (s br, 1H, OH), 2.17 (s, 3H, CH3); MS (EI) m/z 36
2 (M+ + 4), 360 (M+ + 2), 358 (M+), 253, 251, 249, 150。 アルファ-シアノ-ベータ-ヒドロキシ-ベータ-メチル-N- (フェニル)プロペンア
ミド(LFM-A14)。 mp: 134 - 135°C; IR (KBr): 3281, 2214, 1605, 1579 およ
び 1554 cm-1; 1H NMR (DMSO-d6): デルタ10.33 (s, 1H, NH), 7.51 (d, J = 7.
5 Hz, 2H, ArH), 7.40 (s br, 1H, OH), 7.31 (dd, J = 7.5, 7.5 Hz, 2H, ArH)
, 7.11 (m, 1H, ArH), 2.26 (s, 3H, CH3); GM/MS m/z 202 (M+), 93。
【００９３】 上記一般的な方法と類似の方法使用して、下記化合物（化I）の化合物も調製
した。 アルファ-シアノ-ベータ-ヒドロキシ-ベータ-メチル-N- [4-(メチルスルホニル)
フェニル]-プロペンアミド；酢酸中過酢酸を含む対応する4-メチルチオ化合物を
酸化することによって調製； mp: 205-206°C; 1H NMR (DMSO-d6):デルタ11.26
(s, 1), 7.81 (d, 2), 7.76 (d, 2) , 3.15 (s, 3), 2.19 (s, 3); IR (KBr): 3
309, 2225, 1643および1586 cm-1; MS (EI) m/z 281.0 (M + H+),172.1。 アルファ-シアノ-ベータ-ヒドロキシ-ベータ-メチル-N- [３-(メチルスルホニル
)フェニル]-プロペンアミド；酢酸中過酢酸を含む対応する３-メチルチオ化合物
を酸化することによって調製； mp: 213-214°C; 1H NMR (DMSO-d6): δ 10.98
(s, 1), 8.18 (m, 1), 7.82 (m, 1) , 7.60 (m, 2), 3.18 (s, 3 ), 2.23 (s, 3); IR (KBr): 3278, 2231, 1607および 1555 cm-1; MS (EI) m/z
281.0 (M + H+),172.1。 アルファ-シアノ-ベータ-ヒドロキシ-ベータ-メチル-N- [３-ブロモ−4（トリフ
ルオロメトキシ)フェニル]-プロペンアミド；mp: 178-179°C; 1H NMR (DMSO-d6 ): δ 11.03 (s, 1), 8.12 (d, 1), 7.55 (dd, 1) , 7.45 (m, 1), 5.53 (s, 1), 2.20 (s, 3); IR (KBr): 3304, 2350, 1620 および 1602 cm- 1 ; MS (EI) m/z 365.0 (M + H+),255.9。 アルファ-シアノ-ベータ-ヒドロキシ-ベータ-メチル-N- (2,4-ジブロモフェニル
)-プロペンアミド; mp: 181-181°C; 1H NMR (DMSO-d6): δ 11.03 (s, 1), 8.14 (m, 1), 7.84 (d, 1) ,7.51 (dd, 1), 5.65 (s, 1), 2.20 (s, 3
); IR (KBr): 3360, 2205, 1591 および 1530 cm-1;MS (EI) m/z 361.0 (M + H+ ),249.9。 アルファ-シアノ-ベータ-ヒドロキシ-ベータ-メチル-N- (2,4-ジクロロフェニル
)-プロペンアミド; mp: 143-144°C; 1H NMR (DMSO-d6): δ 11.23 (s, 1), 8.29 (m, 1), 7.60 (d, 1) , 7.35 (dd, 1), 5.17 (s, 1), 2.18 (s,
3); IR (KBr): 3371, 2210, 1601および 1540 cm-1;MS (EI) m/z 271.0 (M + H+ ), 162.0。 アルファ-シアノ-ベータ-ヒドロキシ-ベータ-メチル-N- (2,5-ジクロロフェニル
) -プロペンアミド; mp: 143-144°C; 1H NMR (DMSO-d6): δ 11. 70 (s, 1), 8.51 (d, 1), 7.45 (d, 1) , 7.05 (dd, 1), 4.97 (s, 1), 2.14 (
s, 3); IR (KBr): 3370, 2215, 1581 および 1528 cm-1;MS (EI) m/z 271.0 (M
+ H+), 162.0。 アルファ-シアノ-ベータ-ヒドロキシ-ベータ-メチル-N- (3,4-ジジクロロフェニ
ル)-プロペンアミド; mp: 216-217°C; 1H NMR (DMSO-d6): δ 10. 74 (s, 1), 7.95 (m, 1), 7.54 (m, 1) , 7.47 (m, 1), 5.64 (s, 1), 2.23 (s,
3); IR (KBr): 3319, 2225および1612 cm-1;MS (EI) m/z 271.0 (M + H+), 162
.0。
【００９４】 テーブル１に記載のものと類似のBTK阻害アッセイを用いて、上記化合物が通
常IC50が20 μm/mL以下のBTKインヒビターとして機能することがわかった。前記
化合物はまた、実施例３に記載の方法と類似の方法でビンクリスチンおよびセラ
ミドを有するアポプトーシスに細胞を感作させることもわかった。 実施例３: 下記実施例は、BTKの特異的なインヒビターがどのようにしてデザイ
ンされるかについての情報を提供する。BTKのキナーゼドメインのホモロジーモ
デルを開示する。それはBTKのインヒビターのデザインおよび構造にとって有用
である。BTKの強力な選択的インヒビターである新規なレフルノミド代謝物類似
体を含む特異的な化合物を同定するためにホモロジーを使用することも開示され
ている。
【００９５】 抗アポプトーシスチロシンキナーゼBTKの強力なインヒビターを、アポプトー
シス促進特性および化学的感作特性（chemosensitizing properties）、抗白血
病薬としてデザインするための努力の中で、BTK キナーゼ ドメインの三次元ホ
モロジーモデルを下記に完全に記載したように構成した。モデル化試験によれば
、直方体の角を占有するLeu460, Tyr476, Arg525 およびAsp539 残基 を持つBTK
キナーゼドメインのヒンジ領域近くに別個の直方体結合ポケットが明らかにな
った。この直方体の大きさは約18オングストローム×8オングストローム×9オン
グストローム×17オングストロームであり、ポケットの厚さは約７オングストロ
ームであった。
【００９６】 BTKのキナーゼドメイン内の触媒部位に好適に結合する可能性の高いレフルノ
ミド代謝物（LFM）類似体の合理的なデザインのために、前向きドッキング方法
を採用した。化合物LFM-A13は、我々の計算によれば、Ki値は1.4 μMであったが
、それはヒト BTK を生体内でIC50 値17.2 ± 0.8 μMで阻害した。同様に、LFM
-A13は 組換えBTKのバキュロウイルス発現ベクターウイルス系での発現をIC50
値 2.5 μMに阻害した。結合ポケット中のLFM-A13のエネルギー的に好適な位置
は、その芳香環がTyr476 に近いことであり、そしてその置換基は、残基 Arg525 とAsp539に挟まれている。さらに、LFM-A13は、BTKと残基Asp539 およびArg525 を介して好ましい水素結合相互作用をすることが可能である。
【００９７】 BTKキナーゼアッセイにおけるその顕著な力価の他に、LFM-A13はまた、BTKの
特異性の高いインヒビターであることがわかった。100 μg/ml (〜278 μM)とい
う高濃度のときでさえ、この新規なインヒビターは、JAK1、JAK3、HCK、EGF-受
容体キナーゼ (EGFR)およびインスリン受容体キナーゼ (IRK)を含む他のタンパ
ク質チロシンキナーゼの酵素活性に影響を及ぼさなかった。
【００９８】 BTKの抗アポプトーシス機能にしたがって、BTK+ B-直系白血病細胞LFM-A13は
そのセラミド誘発性アポプトーシスまたはビンクリスチン誘発性アポプトーシス
に対する感受性を高めた。 レフルノミド代謝物およびその類似体の結晶構造 前記レフルノミド代謝物（LFM）およびその２つの類似体(LFM-A12, LFM-A13)
を様々な溶媒を用いて蒸発または、液体―液体分散によって結晶化した。単一結
晶からのX-線データを、MoKアルファ放射(ラムダ=0.7107 オングストローム)のS
MART CCD面積デテクター（ブルッカー アナリティカル X線システム（Bruker An
alytical X-ray Systems）（マディソン、ウィスコンシン））を用いて集めた。
体系的欠落（systematic absence）および集約的統計に基づいてスペースグルー
プを測定した。直接的な方法解決は、電子濃度マップからの非水素原子の大半を
提供した。複数の完全マトリックス最小自乗法／差フーリエサイクルを行い、残
りの非水素原子を位置づけた。全ての非水素原子を異方性の熱パラメータを用い
て精製した。水素原子を理想的な位置に配置し、相対的な等方性温度要因のライ
ディング原子（riding atoms）として精製した。その構造をF2の完全マトリック
ス最小自乗法を用いて精製した。結晶構造計算は、シリコングラフィックス（Si
licon Graphics）INDY R4400-SC コンピュータ (シリコングラフィックスインク
（Silicon Graphics Inc.）、マウンテンビューカリフォルニア)、またはプログ
ラムのSHELXTL V 5.0スイートを使用したペンタチウム（Pentium）コンピュータ
(シェルドリック、ジー（Sheldrick, G.）)5.0編、ブルッカーアナリティカルX
線システム（Bruker Analytical X-ray Systems,）、マディソンウィスコンシン
)を用いて行った。 BTKの キナーゼ ドメインのホモロジーモデルの構成。
【００９９】 タンパク質キナーゼの相同キナーゼ ドメインHCK、FGFR、IRKおよび cAPKのの
結晶構造を用いてBTKのホモロジーモデルを構成した(シッケリ エフ 、モアレフ
ィ アイおよびキュリアン ジェー（Sicheri, F., Moarefi, I., and Kuriyan, J
.）(1997)ネイチャー 385(6617)、602〜9; モハマディ エムら（Mohammadi, M.,
et al.）(1997)サイエンス、 276(5314)、955〜60；ハバード、エスアール(199
7) E M B O ジャーナル 16(18), 5572〜5581; およびチェング ジェーら（Zheng
, J., et al.）(1993) アクタクリスタル（Acta Cryst. ）D49, 362〜365)。ま
ず、ジーンバンク（GenBank） (ナショナルセンターフォーバイオテクノロジー
インフォメーション、ベゼスダ（National Center for Biotechnology Informat
ion, Bethesda, MD))からBTKのタンパク質シーケンスを入手し、BTKのホモロジ
ーモデル化を行った(スイスプロット（Swiss-Prot） # Q06187, ジュネーブ大学
、ジュネーブ、スイス（Univ. of Geneva, Geneva, Switzerland))。次にBTK キ
ナーゼ とコーディネートテンプレートの間の最も合理的なシーケンス配置を決
定した。これは、まずコーディネートインサイトIIプログラム（InsightII prog
ram ((1996)、モレキュラーシミュレーションインク（Molecular Simulations,
Inc.）、サンジエゴ、カリフォルニア)を用いて、HCK, FGFR, IRK,およびcAPKの
キナーゼ ドメインのCアルファコーディネートを重ね、比較のための最良の全体
構造を形成した。その後4つのシーケンス全てをそれらの構造の積み重ねに基い
て配置した(Cアルファ位が空間的に互いに関連している場合は、アミノ酸シーケ
ンスも一緒に配置した)。前記シーケンス 配列は、他のタンパク質シーケンスと
は異なるタンパク質中のループとしての特徴を持っていた。その構造的積み重ね
は、インサイトIIプログラム（1996、モレキュラーシミュレーションインク、サ
ンディエゴ カリフォルニア）のホモロジーモジュールおよびシリコングラフィ
ックス（ Silicon Graphics）INDIGO2コンピュータ(シリコングラフィックス イ
ンク、マウンテンビュー、カリフォルニア)を用いて行った。前記シーケンス配
列は、上記の検討に基づいて手動で調整し、積み重ねられたそれぞれのCアルフ
ァ位のシーケンスバラツキ特性を生成した。前記シーケンスバラツキ特性は次の
処置のための基礎としての機能を果たした。それは、ＢＴＫキナーゼを有する4
つの全てのタンパク質シーケンス 配列であった。この処理において、ＢＴＫキ
ナーゼの前記シーケンスはをプログラムに読み取り、前記シーケンスバラツキ特
性に基く既知のキナーゼタンパク質を用いて手動で調整した。次に、ＨＣＫの3D
コーディネートをテンプレートとして用いて一連の3D コーディネートをBTKキナ
ーゼ シーケンス に割り付けた。それは、インサイトIIプログラムのホモロジー
モジュールを採用した（1996、モレキュラーシミュレーションインク、1996、サ
ンディエゴ カリフォルニア）。シーケンス挿入ループ領域のためのコーディネ
ートを(ループを持たないHCKと関連付けて)前記プログラムによって自動的に生
成された限られた可能性から選択し、かつプログラムCHAINを用いた理想的なジ
オメトリーに手動で調整した (サック ジェー エス（Sack, J. S.）(1988) ジャ
ーナルオフモレキュラーグラフィックス（J. Mol. Graphics ）6、244〜245)。
最終的に、すべてのモデル作製プロセスにおいて導入される立体歪みをなくすよ
うに、前記構成されたBTKのモデルに対して、X-プロー（X-plor）プログラムを
用いたエネルギー最小化を行った(ブランジャー エイ ティー（Brunger, A. T.
） (1992), ニューヘブン（New Haven）、CT)。前記モデルから好ましくない立
体歪接触をスクリーニングし、必要であれば、そのような側鎖を回転異性体ライ
ブラリーデータベースを用いて、もしくは手動で側鎖を回転させることによって
再びモデル化した。BTK キナーゼドメインの最終的なホモロジーモデルは、理想
的な結合長0.01オングストロームおよびエネルギー最小化後の理想的な結合角2.
2°のRMS誘導体を有していた。その後、LFMのモデルコーディネートおよびその
類似体(後に結晶構造と比較した)と結合させてBTKのホモロジーを、BTK/インヒ
ビター複合体のモデル化試験のために使用した。 BTK キナーゼ ドメインのホモロジーモデルを用いたドッキング方法。
【０１００】 BTK/LFM類似体複合体のモデル化を、インサイトII内のドッキング モジュール
およびリガンドを受容体にドッキングさせるためのアフィニティースイートプロ
グラムを用いて行った。各LFM分子のエネルギー最小化コーディネートを生成し
、HCK/クエルセチン結晶構造中のクエルセチンの位置に基いて相互作用的にBTK
のATP結合部位にドッキングさせた（シェリ エフら、ジェー（Sicheri, F., et
al., J） (1997) ネイチャー385 (6617), 602-9)。BTKのキナーゼドメイン上の
水素原子を生成し、ドッキング方法開始前に受容体とリガンドの双方に電位をか
けた。インサイトIIプログラムのドッキング方法は、CVFF力場およびモンテカル
ロサーチストラテジー（Monte Carlo search strategy）を使用してドッキング
構造のサーチと評価を行った。受容体の大きさのためのコーディネートを固定し
ながら、結合部位の定義された領域を緩和させ、それによってタンパク質の異な
るインヒビターとの結合を調整した。インヒビターから５オングストロームの距
離内で結合設定を行い、この距離内にある残基を好ましい位置にシフトおよび／
または回転させリガンドを収容した。 受容体とインヒビター分子からなるよう
にアッセンブリを定義し、 固定したドッキングモードを用いてドッキングを行
った。 疎水性および親水性相互作用の近似値を求める計算を用いて、BTK触媒作
用部位中の各LFM類似体の10の最良のドッキング位を測定した。ルーディー（Lud
i）（ボーム エイチ ジェー (Bohm, H. J. (1992)、ジャーナル オフ コンピュ
ータ エイデド モレキュラー デザイン、1994、8、243〜256；1996 J. Comput.
Aided. Mol. Des. 6(6), 593〜606およびボーム エイチ ジェー (1992)、ジャー
ナル オフ コンピュータ エイデド モレキュラーデザイン、8(3), 243-56）を用
いて、各化合物の相対的結合能をランクし、各LFM類似体の様々なドッキング位
置を、結合定数(Ki)を評価するために使用されるインサイトII内で質的に評価し
、BTKの阻害を予測した。LFM類似体の力価を決定する構造−活性関係（SAR）を
確定するために、LFM類似体のKi の傾向を実験的に測定された化合物のチロシン
キナーゼ 阻害IC50 値を評価した。 組換えバキュロウイルス構成およびタンパク質発現。 アメリカ産行列毛虫ヨト
ウガ、スポドテラ フルギペルダ（Spodotera frugiperda）の雌の卵巣組織由来
のSf21 (IPLB-SF21-AE) 細胞 (バシレフ エイら（Vassilev, A., et al.）(1998
) ジャーナルオフバイオロジカルケミストリー、274, 1646-1656)をインビトロ
ゲン（Invitrogen）から入手し、10％FBSおよび1.0％抗生物質／抗真菌活性物質
(GIBCO-BRL)を添加したグレース昆虫細胞培地（Grace's insect cell medium）
を26〜28o C で保持した。保存細胞を1 L ベルコスピナーフラスコ（Bellco spi
nner flasks）内で総培地量600 m中で60〜90 rpmで0.2〜1.6×106/ml懸濁液中で
保持した。トリパンブルー染料を除くことによって測定した細胞生存能力を95〜
100%とした。
【０１０１】 ネズミBTK遺伝子を含有する組換えバキュロウイルスを既知の方法で構成した(
バシレフ エイら (1998) ジャーナルオフバイオロジカルケミストリー、274, 16
46-1656)。手短に、BTKコード化遺伝子をpBluescript SKII+ ベクター(Stratage
ne, La Jolla, Ca.) 励起した。BamHI およびこのフラグメントをpFastBac1 (Gi
bco-BRL)に結合させた。その後、得られたベクターpFastBac1-BTKを使用して、
バキュロウイルスシャトルベクター（バクシミド（bacmid）、bMON14272）をも
つ大腸菌DH10Bac 細胞 (Gibco-BRL)内の部位特異的転換によって組換えバキュロ
ウイルスを生成した。セルフェクション（Cellfectin）試薬 (Gibco-BRL)を用い
た標準的なリポソーム媒介方法でのトランスフェクションによって、得られた組
換えバクシミドDNAを昆虫細胞中に形質導入した。4日後、トランスフェクション
上澄みを集め、続いてプラーク精製し、上記のように分析した。キナーゼ死BTK
を上記の方法で生成させ(バシレフ エイら (1998) ジャーナルオフバイオロジカ
ルケミストリー、274, 1646-1656)、上記のように野生型BTKのためのバキュロウ
イルス発現ベクターにクローニングした。 JAK1および JAK3 キナーゼのための
バキュロウイルス発現ベクターを構成し、昆虫細胞に既に記載されているように
導入した、これは既に記載がある(グッドマン ピー エイら（Goodman, P. A., e
t al.） (1998)ジャーナルオフバイオロジカルケミストリー、273、17742〜48)
。 昆虫細胞からの組換えタンパク質の免疫沈殿。 図に簡単に示したように、BTK,
JAK1,またはJAK3のためのバキュロウイルス発現ベクターでSf21細胞を感染させ
た。細胞を集め、溶出し(10mM トリス pH7.6, 100mM NaCl, 1% ノニデットP-40,
10% グリセロール, 50mM NaF, 100mM Na3VO4, 50μg/ml フェニルメチルス
ルホニルフロリド、10 μg/ml アプロトニン（aprotonin）,μ g/mlロイペプ
チン)、キナーゼを溶解物からイムノプレシピテーョンした。これは既に報告さ
れている(バシレフ エイら (1998) ジャーナルオフバイオロジカルケミストリー
、274, 1646〜1656) 。昆虫細胞からの免疫沈殿のために下記抗体を用いた：ポ
リクローナルウサギ抗BTK血清(マハジャン エスら (1995)モレキュラーセルバイ
オロジー、15, 5304〜11)；抗JAK1 (HR-785), カタログ#sc-277、精製されたウ
サギポリクローナルIgGアフィニティー、0.1 mg/ml、サンタクルツバイオテクノ
ロジー、およびポリクローナルウサギ抗JAK3 (C-21, カタログ #sc-513、精製さ
れたウサギポリクローナルIgG アフィニティ, 0.2 mg/ml,サンタクルツバイオテ
クノロジー)。試験化合物に、免疫沈殿されたチロシンキナーゼを1時間曝露した
後、キナーゼアッセイを行った。他にも詳細に記載されている(マハジャン エス
ら (1995)モレキュラーセルバイオロジー、15、5304〜11；およびウックンエフ
エムら(1996)サイエンス、22, 1096〜1100)。免疫沈殿について前記の方法でウ
エスタンブロット分析を行った(バシレフ エイら (1998) ジャーナルオフバイオ
ロジカルケミストリー、274, 1646〜1656) 。 細胞ライン、試薬およびバイオケミカルアッセイ。DT40リンパ腫B 細胞ラインな
らびにBTK-欠乏 DT40 および野生型または突然変異ヒトBTK遺伝子によって再構
成されたその誘導体の確立と特徴について既に報告がある（ウックンエフエムら
(1996)サイエンス、22, 1096〜1100）。野生型または突然変異ヒトBTK遺伝子を
導入された全てのBTK−欠乏DT-40クローン中に、等量のBTKタンパク質をウェス
タンブロット分析によって検出したが、BTKタンパク質は、形質導入されたBTk欠
乏DT-40細胞中には検出されなかった（ウックン、エフ．エムら（1996）、サイ
エンス、273、1096〜1100）。ニワトリB細胞ラインDT40に由来する全ての細胞ラ
インを、10% 加熱不活化ウシ胎児血清、1% 加熱不活化ニワトリ血清、2 mM グル
タミン、ペニシリン、およびストレプトマイシンを添加したRPMI 1640培地中に
保持した。 細胞を37oCで 5% CO2 水飽和雰囲気中で成長させた。BTK陽性B-直系
白血病 細胞ラインNALM-6およびALL-1を、10%の加熱不活化ウシ胎児血清を添加
したRPMI1640培地中に保持した（ウックン、エフ．エムら（1995）、サイエンス
、267、886〜91）。COS-7シミアン腎臓細胞ラインおよびHepG2 ヒトヘパトーマ
細胞ラインはATCCから入手した。
【０１０２】 BTK, JAK1, JAK3および HCKに対する抗体はこれまでに記載されている (マハ
ジャン エスら (1995)モレキュラーセルバイオロジー、15, 5304〜11；バシレフ
エイら (1998) ジャーナルオフバイオロジカルケミストリー、274, 1646-1656
；グッドマン ピー エイら（Goodman, P. A., et al.） (1998)ジャーナルオフ
バイオロジカルケミストリー、273、17742〜48；およびウックンエフエムら(199
6)サイエンス、22, 1096〜1100)。BTKに対するポリクローナル抗体をBTKの第一
の150アミノ酸 を含有するグルタチオンS−トランスフェラーゼ(GST) 溶融タン
パク質(アマーシャム ファルマシア バイオテック インク)を用いてウサギを免
疫処置することによって作製した。モノクローナル抗Fas 抗体(F22120)は、トラ
ンスダクション ラボラトリー インク（レキシントン、KY、米国）から入手した
。免疫沈殿、免疫複合体タンパク質キナーゼアッセイおよび高められた化学発光
性（ECL）検出システム（アマーシャム ライフサイエンス（Amersham Life Scie
nce））を用いたイムノブロッティングを、既知の方法で行った (マハジャン エ
スら(1995)モレキュラーセルバイオロジー、15、5304〜11；バシレフ エイら(19
98)ジャーナルオフバイオロジカルケミストリー、274、1646〜1656；グッドマン
ピー エイら(1998)ジャーナルオフバイオロジカルケミストリー、273、17742〜
48；およびウックンエフエムら(1996)サイエンス、22, 1096〜1100)。電気泳動
に続き、キナーゼゲルをファットマン（Whatman ）3M 濾紙上で乾燥させ、モレ
キュラーイメージャー（Molecular Imager） (バイオラッド、ヘラクレス、カリ
フォルニア（Bio-Rad, Hercules, CA))上 ならびにフィルム上のオートラジオグ
ラフィーによってホスホイメージングを行った。同様に、全ての化学発光BTK ウ
エスタンブロットを３次元比重走査に付した。モレキュラーイメージャーおよび
分子分析／マコントシュイバージョン2.1ソフトウエア（Molecular Analyst/Mac
ontosh version 2.1 software）を用いたメージングデンシトメータ（Imaging D
ensitometer）を製造元（バイオラッド）の仕様書にしたがって使用した。各薬
物の濃度については、BTK キナーゼ 活性インデックスはホスホイメージャーユ
ニット（PIU）中のキナーゼ活性および比重走査(DSU)中のタンパク質バンドのベ
ースラインサンプルに対する比率を比較し、下記式を使用して測定した。式：活
性インデックス= [キナーゼ バンドのPIU／BTK タンパク質バンドのDSU]試験サンフ゜ル : [キナーゼバンドのPIU／BTKタンパク質バンドのDSU]ヘ゛ースライン対照サンフ゜ル。 記載のようにBTK 免疫複合体 タンパク質キナーゼアッセイのための外来基質と
してGST-IGアルファを使用することがある (マハジャン エスら (1995)モレキュ
ラーセルバイオロジー、15, 5304〜11) 。 セイヨウワサビペルオキシダーゼ複
合ヒツジ抗マウス、ロバ 抗ウサギ第二抗体およびECL試薬は、アマーシャム(オ
ークブルック、イリノイ（Oakbrook, IL))から購入した。インスリン受容体キナ
ーゼ (IRK)アッセイには、約 80%コンフフエンシー（confluency）に成長させた
HepG2 ヒトヘパトーマ細胞を無血清DMEMで1回洗浄し、CO2 インキュベータ内で3
7℃で3時間スターブさせた。続いて、細胞をインスリンで常温で10分間刺激した
(エリ リリー（Eli Lilly）、カタログ #CP-410;10ユニット/ ml/10 x106 細胞)
。このIRK活性化工程に続き、細胞を1回無血清培地で洗浄し、NP-40緩衝液に溶
出させ、IRKを抗IRb抗体(サンタクルツ、カタログ #sc-711, ポリクローナルIgG
)を用いて溶解物から免疫沈殿させた。免疫複合体 キナーゼアッセイを行う前に
、キナーゼ緩衝液を用いてビーズを均衡化した (30mM Hepes pH 7.4, 30mM NaCl
, 8mM MgCl2, 4mM MnCl2)。
【０１０３】 HCKキナーゼ アッセイにおいて、HCK-形質導入されたCOS-7 細胞を使用した。
COS−７内のHCKのクローニングと発現については既に記載されている(ソーフ エ
ス ジェーら（Saouaf, S. J., et al.）(1995)ジャーナルオフバイオロジカルケ
ミストリー270, 27072-8)。 pSV7c-HCK プラスミドを2×106 COS-7細胞にリポフ
ェクタミン（Lipofectamine） (GIBCO/BRL)を用いて導入し、48時間後にその細
胞を集めた。その細胞をNP-40緩衝液に溶解し、HCKを抗HCK抗体を有する全細胞
溶解物から免疫沈殿させた。 アポプトーシスアッセイ アポプトーシスを誘発するために、細胞をアゴニスト抗Fas/APO-1抗体 (ベン
ダー メッドシステム、シティー／ステート、ロット（Bender MedSystems, City
/State, Lot.）04/1295)を最終濃度0.1 μg/mlおよび0.5 μg/mlで、ビンクリス
チン（ビンクリスチンスルフェート、USP；ファルマシア、NDC 0013-7466-86,
ロットVCB019) を最終濃度10 ng/mlおよび100 ng/mlで、またはC2-セラミド(バ
イオモル（Biomol）、ロットM8107)を最終濃度10 μM, 50 μM, および/または1
00 μMで用いて処理した。MC540結合（アポプトーシスの初期マーカーとして）
およびPI透過度（アポプトーシスの進行状態のマーカーとして）をDT−40細胞に
おいて抗Fas抗体に曝露24時間後に、既知の方法によって同時に測定した（ウッ
クン、エフ エムら（1996）、サイエンス273、1096〜1100）。全細胞を、FACス
タープラスフローサイトメータ（ベクトンディキンソン、サンホセ、カリフォル
ニア）を用いて分析した。全ての分析は、アルゴンレーザーからの488nm励起に
よって行った。MC540およびPI発光を600nm短パス二色鏡で分割し、575nmバンド
パスフィルターをフォトマルチプライヤ管の前に置き、MC540発光を測定し、ま
た、PI発光には635nmバンドパスフィルターを用いた。BTKインヒビターがBCR-AB
L陽性ヒトALL細胞細胞ラインALL-1におけるセラミド誘発性アポプトーシスに及
ぼす影響を調べるために、細胞をインヒビター（200 μM LFM-A13)の存在下およ
び非存在下で37℃で４時間処理した。続いて細胞を洗浄し、PIおよびMC540で染
色し、マルチパラメータフローサイトメトリーを用いて前記方法で測定した(ウ
ックンエフエムら(1996)サイエンス、22, 1096〜1100)。
【０１０４】 DNAのアポプトーシスフラグメンテーションを検出するために、抗Fas、C2セラ
ミド、またはビンクリスチンに曝露24時間後にDT-40細胞を集めた。同様に、B18
.2, NALM-6およびALL-1 細胞をLFM-A13 (100 μM)、ビンクリスチン (VCR) (10
ng/ml)、C2-セラミド(C2-CER) (10 μM)、LFM-A13 (100 μM) + VCR (10 ng/ml)
、LFM-A13 (100 μM) + C2-CER (10 μM)で37℃で24時間処理した。DNAをトリト
ン-X-100溶解物から調製し、フラグメンテーションの分析を行った（ウックンエ
フエムら(1996)サイエンス、22, 1096〜1100)。手短に、細胞を10mmol/Lの低張
トリスHCl（pH7.4）、１mmol/LのEDTA、0.2％のトリトンX-100洗剤中で溶解し；
その後11000 gで遠心分離を行った。アポプトーシス関与DNAフラグメンテーショ
ンを検出するために、上澄みを1.2％アガロースゲル上で電気泳動し、エチジウ
ムブロミドで染色後、DNAフラグメントを視覚化した。 BTKは抗アポプトーシス酵素 BTKの抗アポプトーシス作用は、アポプトーシス誘発剤であるC2セラミド、ビ
ンクリスチン、および抗Fasモノクローナル抗体の、野生型DT40ニワトリBリンパ
腫細胞に対する効果と、ホモロジーの組み替えノックアウト(homologous recomb
ination knockout)によって確立されたDT40細胞のBTK欠乏サブクローンに対する
効果との比較によって評価された（ウカン、エフ・エムら(Uckun, F.M. et al)(
1996)「サイエンス(Science)22」,1096-1100）。セラミド合成酵素およびスフィ
ンゴミエリナーゼの生成物であるセラミドは、Fas媒介およびTNF受容体媒介死信
号を含む薄膜誘発アポプトーシス信号を下流の効果器まで伝達する第二のメッセ
ンジャーとして機能することが証明されている（エナリ・エム(Enari,M.)、ハセ
・エイ(Hase,A.)およびナガタ・エス(Nagata,S.)(1995)エンボ・ジェイ(EMBO J.
)14, 5201-5208）。一般的に使用されている抗白血病／リンパ腫薬であるビンク
リスチンを使用すると、処置されている細胞内でセラミドの時間依存性蓄積を生
じ、アポプトーシスにつながる。アガロースゲル上では、抗Fas処置BTK欠乏DT40
細胞のトリトン−Ｘ−100溶解物からのDNAが、アポプトーシスに特有のはしご型
フラグメンテーションパターンを示すのに対して、野生型DT40細胞にはフラグメ
ンテーションは観察されなかった（図9A、レーン7対レーン14）。従って、抗Fas
抗体処置はBTK欠乏DT40細胞内にアポプトーシスを生じさせたが、野生型DT40細
胞にはアポプトーシスは生じなかった。このことは、BTKがFas関与死誘発信号複
合体（DISC）のインヒビターであるという事実に一致する（ヴァシレフ、エイら
(Vassilev, A., et al.) (1998)、ジャーナル・バイオ・ケム(J. Biol. Chem.)
、274, 1646-1656）。特筆すべきことに、C2セラミド（＝N-アセチルスピンゴシ
ン(acetylspingosine)；合成細胞透過性セラミド類似体）またはビンクリスチン
を用いてのBTK欠乏DT40細胞の処置は、アガロースゲル電気泳動上のオリゴヌク
レオソームのDNAフラグメンテーションを誘発する際に抗Fas効果を再現すること
ができた。一方で野生型DT40細胞は両方の薬剤に耐性であり、アポプトーシスの
負のレギュレーターとしてのBTKの機能が確認された(図9)。
【０１０５】 抗アポプトーシス機能においてBTKの様々なドメインの関連性を調べる目的で
、野生型のヒトBTK遺伝子を、触媒ドメイン（Arg525〜Gln）、SH2ドメイン（Arg 307 〜Ala）またはPHドメイン（Arg28〜Cys）のいずれかに突然変異を抱えるヒト
BTK遺伝子と同じように、BTK欠乏FT-40細胞に導入した（エナリ・エム、(Enari,
M.)、ハセ・エイ(Hase, A.)およびナガタ・エス(Nagata, S.)(1995)、「エンボ
・ジャーナル(EMBO J.)14, 5201-5208）。図9Bに示されているように、野生型ヒ
トBTK遺伝子（WT）で再構成したBTK欠乏DT40細胞では、C2セラミド（レーン2〜4
）またはビンクリスチン（レーン8〜10）での処置後にアポプトーシスは起こら
なかったが、キナーゼ（K-）（レーン5〜7および11〜13）、SH2（ｍSH2）（レー
ン15〜17および21〜23）またはPH（ｍPH）ドメインに突然変異体を有するヒトの
BTKを表しているDT40サブクローンではアポプトーシスが起こった。従って、BTK
のキナーゼ、SH2、およびPHドメインは抗アポプトーシス機能にとって重要であ
る。 BTKキナーゼドメインのホモロジーモデル タンパク質／インヒビターモデル化研究で使用されるBTKの三次元コーディネ
ートは、上に詳細に述べたように、4つのタンパク質キナーゼドメイン（HCK、FG
FR、IRKおよびcAPKのキナーゼドメイン）用の周知の結晶構造のシーケンスを有
する構造上のアラインメントに基づいて構成されている（シシェリ・エフ(Siche
ri, F.)、モアレフィ・アイ(Moarefi, I.)、およびクリヤン・ジェイ(Kuriyan,
J.) (1997) 「ネイチャー(Nature)」 385(6617)、602-9; ムハムマディ、エムら
(Mohammadi, M., et al.)(1997) 「サイエンス276」(5314)、955-60; フバード
、エス・アール(Hubbard, S. R.) (1997) 「イー・エム・ビー・オー・ジャーナ
ル(The E. M. B. O. Journal)」 16(18)、 5572-5581; およびツェング、ジェイ
ら(Zheng, J., et al.) (1993)「アクタ・クリスト(Acta Cryst.)」 D49, 362-3
65)。モデル化BTKキナーゼドメイン（図10A）は、そのキナーゼドメインを2つの
葉に分割する中心部で触媒部位を有する予想通りのタンパク質キナーゼ襞(fold)
を持つ。それは、柔軟なヒンジによって大きいC-ターミナル葉に接続された小さ
いN−ターミナル葉で構成されている。N−ターミナル葉はベータ−ストランドが
豊富で、一方C−ターミナル領域は大抵螺旋状である。触媒部位は、2つの葉間の
裂で界面を形成する2枚のベータ−シートによって限定される。小分子インヒビ
ターが結合可能なのはこの触媒領域である。我々のモデル化研究により、BTKキ
ナーゼドメインの触媒部位がヒンジ領域付近で別個の平面矩形結合ポケットで構
成されていることが明らかとなった。矩形結合領域は、矩形の隅を占める残基Le
u460、Tyr476、Arg525およびAsp539によって限定されている。この矩形の寸法は
約18オングストロームＸ8オングストロームＸ9オングストロームＸ17オングスト
ロームで、ポケットの厚さは約7オングストロームである(図10B)。矩形のもっと
左側の隅は、Leu460（図10Bの黄色で示される）でヒンジ領域に接近し始めAsp53 9 （図10Bの青色で示される）まで右上に向かって8オングストローム延びている
時は目で見える。これは結合ポケットの最短辺であり、タンパク質の内核により
近く配置されている。ポケットの左辺は最も長く、Leu460から延びてTyr476に至
るまでヒンジ領域に沿って18オングストローム延びている。ポケットの右辺はヒ
ンジ領域の反対側で、Asp539からArg525（図10Bのピンク色で示す）まで約9オン
グストローム延びており、これはATPの糖およびトリホスフェート基用の結合サ
ブサイトのすぐ隣にある。結合部位のヒンジ領域は472〜481の残基で構成されて
いる。曝露した溶媒または矩形の4辺は触媒部位用のスロット形状の開口部に沿
ってTyr476からArg525まで17オングストローム延びている。結合ポケットは溶媒
投入領域で広くなり、結合部位の一番内側の領域に向かうにつれて狭くなって、
全体的に厚さが約7オングストロームと、比較的浅くなっている。ポケットの容
量は約500オングストローム3である。
【０１０６】 BTKキナーゼドメインの触媒部位残基のほとんどが他のチロシンキナーゼに比
べて保存されたが、特異なバリエーションが幾らか観察された。残基Asn526とAs
p539（ヒンジの反対側）は、EGFR、IRK、HCK、およびBTKに保存される。ヒンジ
領域の残基Thr474はIRK、JAK1およびJAK3内のMetに変化し、ヒンジ領域の残基Ty
r476はEGFRおよびIRK内のLeuに変化する。BTKの残基Ser538は他のキナーゼでは
保存されないが、JAK1およびIRKのGly、EGFRのThr、およびFGF受容体、JAK3、HC
KのAlaに変化する。結合部位の一領域はBTK内にCry481を含むが、これは対応す
るPDGF受容体（Asp）、FGF受容体（Asn）、およびIRK（Asp）の残基よりも疎水
性である。これらの残基の性質の違いが、BTKキナーゼドメインの選択的インヒ
ビターをデザインする基本となる。 強力なBTK-阻害作用を有するLFM類似体の構造を基にしたデザインおよび合成 BTKのキナーゼドメインの触媒部位に都合よく結合する可能性が非常に高いLFM
類似体を同定する上で目標となるモデル化研究において、BTKの触媒部位におけ
るインヒビターと残基間の結合相互作用を定量的に予測している推定Ki値を評価
することにした。各小分子LFM類似体は、高度なドッキング方法を用いて個別にB
TKキナーゼドメインの触媒部位にモデル化された（上記実験方法参照）。HCK結
晶構造（シシェリら、1997、「ネイチャー」385：602）中のケルセチンのポジシ
ョンはドッキング方法の適当な出発点を得るためのテンプレートとして使用され
た。各LFM類似体の様々なドッキングされたポジションは、採点法(scoring proc
edure)を用いてその性質について定性的に評価され、その後無細胞BTK阻害アッ
セイにおける化合物のIC50値と比較された。テーブル１に、LFMと、BTKを含むそ
の類似体に関する相互作用のスコア、計算Ki値および測定IC50値を示す。
【０１０７】 我々のモデル化研究では、インヒビターは、ほぼ疎水性である残基の2つの領
域に挟まれていた。ドッキングされたインヒビターの上方領域は残基Leu408、Va
l416、およびLys430から成り、ドッキングされたインヒビターの下方の残基はBT
K残基Leu528、Ser538、Gly480およびCys481を含む。我々のモデル化研究で評価
された全部の報告された化合物（テーブル１）の中で、化合物LFM-A13がBTKに最
も強く結合すると予測した。BTKの活性部位の臨界残基のポジションおよび化合
物LFM-A13のドッキングされたポジションを図11に示す。触媒部位に結合された
この分子が採り得る全配向のなかで、図11に示すものはBTKと最も高い相互作用
スコアを示した。この高い相互作用スコアは、活動的な好ましい結合モードおよ
び、それに対応する、1.4μMという低い計算Ki値を示唆するものである。このLF
M-A13の結合ポジションは、インヒビターの芳香環がTyr476残基に直面し、柔軟
性側鎖がAsp539およびArg525が残基側に延びるポジションである。芳香環はまた
、上方のLeu408およびVal416、並びに下方のGly480およびLeu528の疎水残基間に
挟まれている。残基Ser538はインヒビターの柔軟性側鎖下方にあり、側鎖の端部
は残基Asp539とArg525の間に配置されている。このポジションは、IRK複合体結
晶構造（フバード、1997 ################)）に見られるATP類似体ポジション
のそれに非常に似ている。我々のモデル化研究によると、LFM-A13の水酸基内のO
3原子はAsp539：Oとの水素結合を形成し、そのO4原子はArg525：Nと水素結合を
形成し得る。
【０１０８】 図12は、BTKの触媒部位でLFM-A13を化合物LFMおよびLFM-A12と一緒に重ねたド
ッキング位置を示す。LFMとLFM-A12分子はドッキングされて、HCK結晶構造のケ
ルセチンポジションに対応してヒンジ領域に沿って存在する。これらの分子の芳
香環はTyr476に近く、側鎖の端部が残基Asp539およびThr474の間に挟まれている
。これらの分子中のCF3基は溶媒投入領域の方を向いており上方のLeu408および
下方のGly480に囲まれている。LFMのOH基はAsp539の酸素原子に水素結合してお
り、LFM=A12に関しては、同基がThr474の酸素原子に水素結合する。テーブル１
に挙げられているLFM類似体は、LFM-A13以外全て、LFMまたはLFM-A12のようなヒ
ンジ領域に沿って存在し、その側鎖がAsp525とThr474ノ間に挟まれている。
【０１０９】 BTK作用部位におけるLFM、LFM-A12およびLFM-A13のドッキングされたポジショ
ンの比較より、3つの分子の芳香族部分が大体同じ領域（他の不活性LFM類似体に
ついてもいえることである）にあっても、LFM-A13の側鎖は他の側鎖から傾いて
離れ、残基Asp539とArg525の間に挟まれることが分かる。この回転は、LEM-A13
の2,5-ジブロモ基の一層望ましい配向によるものと考えられる。このようなわず
かに傾いたポジションと大きいBr基によって、LEM-A13とBTKの活性部位残基との
相互作用に2つの利点が得られる。
【０１１０】 第一の利点は、LEM-A13が活性部位残基Asp539およびArg525と2つの水素結合を
形成できる一方で、不活性LEM類似体はBTKのThr474またはAsp539のいずれか一方
と水素結合を1つだけ形成することである。結合に関する第二の利点は、BTKの活
性部位残基を有するLFM-A13が、他の12個の不活性LFM類似体と比べ、接触エリア
が広いということであり、その結果LEM-A13についての疎水性相互作用が大きく
なる。この特徴は、テーブル１においてLEM-A13の親油性スコアが相対的に高い
ことに反映されている。
【０１１１】 上記のモデル化研究結果より、LFM-A13が強力なBTK阻害作用を呈示するであろ
うという仮説が立てられた。この仮説をテストし記載されたBTKホモロジーモデ
ルの予測価を有効とする目的で、LFM-A13、LFMおよびテーブル１内に挙げられた
その他の11の類似体を合成した。LFM、LFM-A12およびLFM-A13の構造は、単結晶
エックス線拡散（これらの化合物の結晶データ、実験パラメータ、および統計を
改善したものがテーブル２でまとめられている）によって判断された。全構造が
平面的な形態を持つことが見出され、結合の長さおよび角度は全て予想範囲内で
あった。
【０１１２】 図13は、化合物LEM-A13のORTEPの表示である。LEM-A13の結晶構造より、分子
形態が、BTKを用いるドッキングの研究目的で生産され使用された、最小エネル
ギー分子コーディネートに非常に似ていることが証明された。このように結晶構
造と形態が似ていることから、ドッキングに用いられる分子モデルがモデル化研
究に適切であったことが示唆された。 LFM-A13によるBTKの特異的阻害 無細胞免疫複合体キナーゼのアッセイが、B18-2細胞から免疫沈殿したヒトBTK
（ウクン・エフ・エムら(Uckun, F. M., et al.) (1996) 「サイエンス」 22, 1
096-1100) （すなわち、野生型ヒトBTK遺伝子で再構成したBTK欠乏DT40ニワトリ
リンパ腫B細胞）の酵素作用への、LFMおよび12個のLFM類似体の効果を比較する
のに使用された。テーブル１に示すように、LFM-A13のみが6.2±0.3μg/ml（= 1
7.2±0.8μM）のIC50値という相当なBTK阻害作用を呈した。その他の化合物は、
100μg/mlという高い濃度（すなわち、LFM-A12については349μM、LFM-A14につ
いては495μMの範囲）であっても、BTKを阻害しなかった。
【０１１３】 LFM-A13は、IC50値が0.9μg/ml（すなわち約2.5μM、図14A）であるバキュロ
ウイルスベクトル発現系に発現される組み替えBTKに対しても、NALM-6ヒトB直系
ALL細胞溶解物（図14B）からのBTK免疫沈殿と同様、効果的である。その上、B18
.2細胞(図14C)またはNALM-6細胞（データは示されていない）をLEM-A13で処置す
ると、細胞のBTK作用の阻害が用量に依存するようになる。BTKに対するLFM-A13
の阻害作用は特異的であった。なぜなら、100μg/ml（すなわち約278μM；テー
ブル３、図15）という高濃度でヤーヌス・キナーゼJAK1およびJAK2、Src科キナ
ーゼHCK、および受容体科チロシンキナーゼIRKを含む、他のタンパク質チロシン
キナーゼの酵素作用に影響を及ぼしていなかったからである。 LFM-A13のBTK特異性の構造的基礎 生物学的アッセイより、LFM―A13はBTKの選択的インヒビターであるが、EGFR
、HCK、JAK1、JAK3およびIRKの阻害剤としては劣ることが証明された。この選択
性を評価するために、タンパク質キナーゼIRK、HCKおよびcAPKのホモロジー結晶
構造コーディネートをテンプレートとして用いて、EGFR、JAK1およびJAK3のホモ
ロジーモデルを構成した。モデルはその後、LFM-A13のような小分子の、これら
キナーゼの触媒部位への結合を研究し、またLFM-A13がどのようにしてBTKを阻害
しながらEGFR、IRK、JAK1、JAK3またはHCKを阻害しないのかをよりよく理解する
ために用いられた。これらの研究によって、BTMに関するLFM-A13の特異性に寄与
している可能性がある3つの因子が明らかにされた。
【０１１４】 小分子LFM-A13は、IRK、HCK、JAK3およびEGFRのキナーゼドメインにドッキン
グされた。テーブル３はこれらのキナーゼを含むLFM-A13に関する相互作用スコ
ア、計算Ki値、測定IC50データを示す。BTKに関するLFM-A13の選択性が、研究対
象となった他のキナーゼに存在しないBTK触媒部位残基との望ましい相互作用か
ら生じるものだと仮定された。BTK作用部位には他のPTKの残基とは異なる残基が
幾つか存在する。これらの違いは図16に示されており、図16はBTK触媒部位の骨
格鎖、BTKと他のキナーゼの残基の相違、ならびにBTK、HCK、JAK3、JAK1、EGFR
、およびIRKのキナーゼドメインのLFM-A13のドッキングされたポジションを示す
ものである。
【０１１５】 図16のポジションA、BおよびCに示された残基の相違が、BTKに関するLFM-A13
の特異性に寄与するのであろうと考えられる。IRK（灰色）およびJAK1/JAK3（ピ
ンク）といった、LFM-A13によって阻害されないキナーゼは、作用部位に突き出
してLFM-A13のような小分子が結合部位のヒンジ領域と密接するのを防止するポ
ジションAにおいて、メチオニン残基を含有する。その結果、LFM-A13はこれらの
タンパク質のキナーゼドメインのヒンジ領域との望ましい疎水性接触を失う可能
性があり、しっかりと結合しない。その上、ドッキングに関する研究により、BT
KキナーゼドメインのLFM-A13の望ましいポジションは、小分子の側鎖が残基Asp5 39 とArg525の間に配置され、それらと水素結合を形成する位置であることが示さ
れた。
【０１１６】 加えて、BTKのポジションBでの芳香族残基は、LFM-A13分子と受容体との疎水
相互作用、つまりEGFR（図16では赤色）およびIRK（図16では紺色）では消失し
ている相互反応を増加させる。これは、テーブル３に示されている親油性（疎水
相互作用）スコアに反映されている。他のキナーゼに関してはリポ(Lipo)スコア
が457から473の間の範囲である一方、BTKのリポスコアはそれよりも高く（より
望ましい）517である。最後に、BTKのポジションCでのArg525残基はLFM-A13に水
素結合し得る。この相互作用は、CポジションにAlaを含有するHCK（黄色）では
失われている。HCKキナーゼドメインでのLFM-A13の望ましいポジション（黄色で
示す）は、小分子がヒンジ領域に沿って整列しているポジションである。このポ
ジションでは、LFM-A13はHCKと水素結合を形成しないが、このようなことはBTK
では有り得ない。BTKのArg525の長い側鎖（ポジションC）は、LFM-A13との水素
結合に関与するが一方、HCKはこのポジションにAlaを有し同じ水素結合を形成す
ることができない。
【０１１７】 LFM-A13はB直系急性リンパ芽球性白血病（ALL）細胞のセラミド誘発アポプト
ーシスおよびビンクリスチン誘発アポプトーシスへの感受性を増強する。
【０１１８】 フイラデルフィア染色体（Ph++）ALLの患者は、集中マルチモダリティ治療プ
ログラム(intensive multimodality treatment program)を受けると気分が悪く
なる(have a dismal outcome)。このような患者の治療の失敗は、彼らの白血病
細胞のアポプトーシスの閾値を下げることができれば克服可能なはずである。我
々は、抗アポプトーシスチロシンキナーゼBTKを阻害することによって、LFM−A1
3が、Ph＋ALL細胞線ALL−1の感受性をC2セラミドに変更することが可能かどうか
判断しようと試みた。図17に示すように、LFM-A13による処置は、セラミド誘発
アポプトーシスに対するALL-1細胞の化学感受性を増強した。このことは、LFM-A
13とC2セラミドで処置した細胞は、C2セラミドのみまたはLFM-A13のみで処置し
た細胞に比べ、二重のPI/MC540蛍光（青色で示す）を示すパーセンテージが高い
、つまりアポプトーシスの段階が進行していることから明らかである。さらに、
アガロースゲル上で、B18.2ニワトリリンパ腫B細胞（すなわち、野生型ヒトBTK
遺伝子で再構成したBTK欠乏DT40細胞；図9参照）、NALM-6ヒトプレB ALL細胞、
およびALL−1細胞のトリトン‐Ｘ-100溶解物から採ったDNAは、LFM−A13とセラ
ミドまたはLFM−A13とビンクリスチンで処置を行った後のアポプトーシスに特有
のはしご型フラグメンテーションパターンを示した。これはLFM−A13、またはビ
ンクリスチンのみの処置後（図18）に比べて一層顕著であった。これらの結果よ
り、LFM−A13がB直系白血病／リンパ腫細胞の、セラミド誘発アポプトーシスお
よびビンクリスチン誘発アポプトーシスの両方に対する感受性を増強させること
が証明された。 実施例4 BTK阻害に関するDDE LFM-A13の調節 以下の実施例は、上記ホモロジーモデルおよびBTKの結合ドメインとその他の
タンパク質チロシンキナーゼ間の相違に関する情報が、特異的なBTKインヒビタ
ーである化学式Ｉの追加的化合物を同定する上でどのように使用されたかを記し
たものである。
【０１１９】 BTK触媒部位への結合を助けることを意図したLFM類似体の構造的および化学的
特徴は、以下に記載され図20A〜20Cに示されている。結合モード1（図20A〜図20
B）は、BTK触媒部位でのリード化合物LFM-A13に最も多いと思われる結合モード
を示す。リード化合物の調節に基づいて、図20Cに示されているように、結合の
第二のモードも可能である（結合モード2）。
【０１２０】 テーブル３は、10個のPTKすなわち、EGFR、Btk、Hck、Jak1、Jak3、IR、FGFR1
、PDGFRベータ、VEGFR2およびSrc間のATP結合部位の残基の相違を示す。
【０１２１】
【表１】
【０１２２】 BTKのインヒビター結合ポケットと、EGFR、Hck、Jak1、Jak3、IR、FGFR1、PDG
FRベータ、VEGFR2およびSrcのそれとの比較より、BTKのATP結合裂におけるSER53
8が独特であり（テーブル３）、特異的なBTKインヒビターデザインの標的である
ことが証明されている。この残基と相互作用する目的でデザインされたリガンド
は、BTKについて特異性を増していなければならなかったはずである。図20Bは、
SER538からの、NH、=OおよびドッキングされたLFM-13リガンドのOH基までの距離
（オングストローム）を示す。リガンドの芳香環が外向きで鎖が内側を向いてい
るBTK結合裂を観察した場合、この残基はリガンドの下方に配置されている。端
部がOまたはNになっており、NH、=OおよびOH基において適度な長さを持つ非平面
的な単鎖置換（図20B）であれば、Ser538を有する水素結合の形成が可能なはず
である。上記13レフルノミド代謝物質類似体についてのこの観察並びにモデル化
および生物学的データに基づいて、BTKのインヒビターになると予想される結合
ポケットと、よりよく相互反応するように、追加の化学式Ｉの化合物をデザイン
することができる。 実施例5 第二のＬＦＭ類似体生成物 以下の実施例は、SER538を標的としてデザインされた化学式Ｉの新規な化合物
がどのようにデザインおよび調製されたかを示すものである。
【０１２３】 図20A〜20Bに記載のデザインパラメータを用いて、LFM類似体の第二の生成物(
generation)（LFM−A15〜20）をデザインし合成した。その化合物は以下に示す
構造化学式を有する。
【０１２４】
【化７】
【０１２５】 以下の合成スキームは、それらの化合物を生成するのに使用された。 スキーム
【０１２６】
【化８】
【０１２７】 合成方法A 1,3-ジイソプロピルカルボジイミド（1.75ｇ; 13.9 mmol）を0℃でテトラヒド
ロフラン（25 mL）中のシアノ酢酸1の溶液（1.70ｇ; 20.0 mmol）および所望の
置換アニリン2（12.6 mmol）に添加した。混合物を室温で12時間攪拌した。尿素
沈殿物（反応副産物）を濾過によって除去し、酢酸エチルと0.5NのHClとに分離
した。引き続き有機層を塩水で二度洗浄し、無水Na2SO4で乾燥させて回転蒸発に
よって濃縮した。最後に、未加工の固形生成物をエチルアルコールから再結晶さ
せて純粋な3を得た。0℃で、水素化ナトリウム（0.93 g; 鉱物油中60%; 23.2 mm
ol）をテトラヒドロフラン（40 mL）中で3の溶液（12.0 mmol）にゆっくりと添
加した。0℃で30分間攪拌した後、アセチルクロライド（1.04ｇ; 13.2 mmol）を
その反応混合物に添加した。さらに1時間反応を続けた後、酢酸（2 mL）を添加
することにより急冷した。混合物を、塩酸を2.5 mL含有する氷水（100 mL）に注
いで未加工の生成物を沈殿させ、それを濾過によって回収して水で洗浄した。 合成方法B アルファ-シアノ-ベータ-ヒドロキシ-ベータ-メチル-N-[(メチルチオ)フェニ
ル]プロペンアミド（2.48g、10.0 mmol）を酢酸（150 mL）に溶解させ、過酢酸
（酢酸中32mL重量％溶液が8.6 mL）を添加した。混合物を一晩かけて室温で攪拌
し、水（75 mL）を添加した。沈殿物を濾過し水で洗浄した。再結晶により純粋
な生成物が得られた。 合成化合物の物理データ アルファ-シアノ-ベータ-ヒドロキシ-ベータ-メチル-N-[4-(メチルスルホニル)
フェニル]プロペンアミド 融点：205〜206℃。1H NMR（DMSO-d6）：デルタ11.26（s，1H，NH）、7.81 （d,
J=9.0Hz, 2H, ArH）、7.76（d, 9.0Hz, 2H, ArH）、3.15（s, 3H, SO2CH3）、2.
19（s, 3H, CH3）。IR(KBr)：3309、2225、1643および1586cm-1。MS(EI)：m/z28
1.0（M+H+）、172.1。 アルファ-シアノ-ベータ-ヒドロキシ-ベータ-メチル-N-[3-(メチルスルホニル)
フェニル]プロペンアミド 融点：213〜214℃。1H NMR（DMSO-d6）：デルタ10.98（s, 1H, NH）、8.18 （m,
1H, ArH）、7.82（m, 1H, ArH）、7.60（m, 2H, ArH）、3.18（s, 3H, SO2CH3
）、2.23（s, 3H, CH3）。IR(KBr)：3278、2231、1607および1555cm-1。MS(EI)
：m/z281.0（M+H+）、172.1。 アルファ-シアノ-ベータ-ヒドロキシ-ベータ-メチル-N-[3-ブロモ,4-(トリフル
オロメトキシ)フェニル]-プロペンアミド 融点：178〜179℃。1H NMR（DMSO-d6）：デルタ11.03（s，1H，NH）、8.12 （d,
J=2.4Hz, 1H, ArH）、7.55（dd, J=2.4, 9.0Hz, 1H, ArH）、7.45（m, 1H, ArH
）、5.53（s br, 1H, OH）、2.20（s, 3H, CH3）。IR(KBr)：3304、2350、1620
および1602cm-1。MS(EI)：m/z365.0（M+H+）、255.9。 アルファ-シアノ-ベータ-ヒドロキシ-ベータ-メチル-N-(2,4-ジブロモフェニル)
プロペンアミド 融点：181〜182℃。1H NMR（DMSO-d6）：デルタ11.03（s，1H，NH）、8.14 （m,
1H, ArH）、7.84（d, J=2.4Hz, 1H, ArH）、7.51（dd, J=2.4, 9.0Hz, 1H, ArH
）、5.65（s br, 1H, OH）、2.20（s, 3H, CH3）。IR(KBr)：3360、2205、1591
および1530cm-1。MS(EI)：m/z361.0（M+H+）、249.9。 アルファ-シアノ-ベータ-ヒドロキシ-ベータ-メチル-N-(2,4-ジクロロフェニル)
プロペンアミド 融点：143〜144℃。1H NMR（DMSO-d6）：デルタ11.23（s，1H，NH）、8.29（m,
1H, ArH）、7.60（d, J=2.4Hz, 1H, ArH）、7.35（dd, J=2.4, 9.0Hz, 1H, ArH
）、5.17（s br, 1H, OH）、2.18（s, 3H, CH3）。IR(KBr)：3371、2210、1601
および1540cm-1。MS(EI)：m/z271.0（M+）、162.0。 アルファ-シアノ-ベータ-ヒドロキシ-ベータ-メチル-N-(2,5-ジクロロフェニル)
プロペンアミド 融点：143〜144℃。1H NMR（DMSO-d6）：デルタ11.70（s，1H，NH）、8.51（d,
J=3.0Hz, 1H, ArH）、7.45（d, J=8.7Hz, 1H, ArH）、7.05（dd, J=3.0, 8.7Hz,
1H, ArH）、4.97（s br, 1H, OH）、2.14（s, 3H, CH3）。IR(KBr)：3402、220
5、1627および1606cm-1。MS(EI)：m/z271.0（M+）、162.0。 テーブル４ BTKを有するLFM類似体に関する、相互作用スコア、推定Ki値、およ
び測定IC50データ
【０１２８】
【化９】
【０１２９】
【表２】
【０１３０】 *M.S.はコノリー(Connolly)のMSプログラムを用いて計算した分子表面積。その
分子を構成する固い球原子と容積を共用することのない、所定の半径を持つプロ
ーブ球（水分子を表すことを意図する）範囲内の容積の境界として定義されてい
る。 上記実施例に記載されているように、第二の生成LFM類似体は、BTK結合ポケッ
トモデルとの相互作用について評価され、またBTKに対する阻害作用について評
価された。そのデータはテーブル４に示されており、そのデータから、これら新
規の化合物が特許性のあるBTKインヒビターであることが示されている。
【０１３１】 以下の合成スキームを用いて、化学式IIの化合物を入手容易な出発材料から調
製できる。 実施例6 BTKインヒビターとしてのベンゾピラン誘導体 上記の化学式IIの代表的な化合物は、BTKインヒビターとしてデザインされた
ものである。特に、R6がプロピル、R7が水素、R8がオキソ、そしてR9がプロパノ
イルである化学式IIの化合物（化合物「DDE11」）は、BTKの強力かつ選択的イン
ヒビターであることが見出されている。
【０１３２】 BTK結合部位のホモロジーモデルは、DDE11の類似体を同定する目的で用いられ
た。DDE11のBTKとの結合の分析を基にして、化学式IIの化合物をBTKのインヒビ
ターとしてデザイン、合成および同定した。BTK阻害作用目的で合成および分析
された化学式IIの化合物の構造を以下に示す。
【０１３３】
【化１０】
【０１３４】 X=O, N, S R1=H，アルキル、カルボニル、置換基を持つまたは持たない（C1-C3）アルキル
、置換基を持つまたは持たない（C1-C3）アルキル。 R2=アルキル、好ましくは（C1-C6）アルキル。 R3およびR4は、水素、ハロ、-OH、-SH、アミノ、ニトロ、シアノ、（C1-C6）ア
ルコキシ、（C1-C6）アルカノイル、（C1-C6）アルカノイルオキシ、アミド、カ
ルボキシまたはステラ(ster)でもよい。 R3およびR4は共に、カルボニルまたはチオカルボニルであってもよい。
【０１３５】
【化１１】
【０１３６】 酸触媒下でのフロログルシノールと必須(requsite)ベータ‐ケトエステルとの
反応により二環型類似体が生じ、これをフリーデル-クラフツ条件下、酸塩化物
（または無水物）でアシル化することによって、化学式IIの化合物が得られる。
【０１３７】 このような一般的な方法を用いて、化学式IIの一連の化合物を調製し、上記の
方法を用いてそのBTK阻害作用をテストした。その結果をテーブル５に示す。 テーブル５ ベンゾピラン誘導体の構造
【０１３８】
【化１２】
【０１３９】
【表３】
【０１４０】 文献（チェネラら(Chenera et al.)、「ジェイ・オーグ・ケム(J. Org. Chem.)
」, 1993, 58, 5605-5606）の方法に従って、5,7-ジヒドロキシ-4 プロピル-2H-
1-ベンゾピラン-2-オン （DDE 181）を調製した。エチルブチリルアセテート（2
6.3ｇ、167 mmol）中の無水フロログルシノール懸濁液（20.0ｇ, 159 mmol）を
、氷浴槽内で冷却された、機械攪拌されたトリフルオロメタンスルホン酸（50g
）に添加した。30分かけて添加すると、黄色のペーストが形成されたのでそれを
16時間攪拌した。水と氷を注意深く加えて反応物を急冷し、固形物を濾過して乾
燥させた。95%エタノール（30.1ｇ、81.9%）中で再結晶させることによって、分
析的に純粋な5,7-ジヒドロキシ-4 プロピル-クーマリンが得られた。1H NMR (DM
SO-d6 ) 0.95 (t, 3H), 1.59 (m, 2H), 2.85 (t, 2H), 5.84 (s, 1H), 6.19 (
d, 1H), 6.29 (d, 1H) 10.32 (s, 1H), 10.60 (s, 1H); GC/MS 220 (M*), 205,
192, 177, 164; IR (KBr) 3218, 1666, 1616 CM-1。
【０１４１】 5,7-ジヒドロキシ-8-プロパノイル-4-プロピル-2H-1-ベンゾピラン-2-オン （
DDE 11）。5,7-ジヒドロキシ-4プロピル-クーマリン（10ｇ、45 mmol）と無水AI
CI3（12ｇ、90 mmol）の混合物に、1,2-ジクロロエタン（120 mL）を添加した。
生じた懸濁液を激しく攪拌しながら75℃まで加熱した。30分間攪拌すると茶色の
スラリーが得られ、その後その混合物にニトロベンゼンを添加すると、オレンジ
色の溶液になった。1,2-ジクロロエタン（60mL）中の無水AICI3 （12g、90 mmol
）とプロピオン酸無水物（6.6ｇ、45 mmol）の溶液を、1〜2時間かけて一滴ずつ
添加した。添加後、混合物をさらに2時間75℃で攪拌し、その後室温になるまで
冷却した。生じた混合物を氷と1NのHClに注いだ。沈殿した生成物を濾過し酢酸
エチルに加えて追加の酢酸エチル（3Ｘ300mL）と共に水溶液を完全に抽出した。
化合した酢酸エチル抽出物をNa2SO4で乾燥させ、減圧下で溶媒を除去した。生じ
た固体をカラムクロマトグラフィーによって精製し（1：1 ヘキサン／酢酸エチ
ル ）、5,7-ジヒドロキシ-8-プロピオニル-4 プロピル-クーマリン （4.2ｇ、24
%）を得た。 240-245℃; 1H NMR (DMSO-d6)デルタ0.93 (t, 3H), 1.06 (t, 3H)
, 1.57 (セクステット 2H), 2.86 (t, 2H), 2.98 (q, 2H), 5.96 (s, 1H) 6.20
(s, 1H), 11.44 (s, 1H), 12.47 (s, 1H): GC/MS 294, 277, 276, 247; IR (KBr
) 3249, 1693, 1625 and 1592 cm-1; UV max (MeOH) 219, 288, 319 nm。
【０１４２】 5,7-ジヒドロキシ-8-カルボキサルデヒド-4-プロピル-2H-1-ベンゾピラン-2-
オン （DDE 213）を、デエスファンテら(Deesphante et al.(14))の方法に従っ
て調製した。ジクロロエタン（60 mL）中の5,7-ジヒドロキシ-4-プロピル-クー
マリン（1.00ｇ、5.59 mmol）溶液に、N-メチルホルムアニリド（1.23ｇ、9.10
mmol）およびPOC13（0.77ｇ、0.50 mmol）を添加した。反応混合物を75℃で4時
間攪拌し、その間に室温まで冷却させた。その後、飽和NaOAc水溶液を一滴ずつ
添加することによって、その溶液を中和した。形成された固形物をMeOHより濾過
、乾燥、再結晶させ、明るい茶色の固体（0.60ｇ、53 %）を得た。mp. 225-228
℃ (lit. mp. 236-237℃)(14); 1H NMR (DMSO-d6) デルタ 0.92 (t, 3H), 1.55
(m, 2H), 2.83 (t, 2H), 6.05 (s, 1H), 6.15 (s, 1H), 10.1 (s, 1H), 12.1 (b
s, 1H)。
【０１４３】 5,7-ジヒドロキシ-4-エチル-2H-1-ベンゾピラン-2-オン （DDE 214）。エチル
プロピオニルアセテート（1.24 mL、8.71 mmol）中のフロログルシノール懸濁液
（1.04ｇ、8.35 mmol）を0.5時間かけてトリフリック酸(triflic acid)（2 mL）
に添加した。反応物を氷浴槽内で16時間機械的に攪拌した。氷浴槽に注意深く注
ぎいれることによって反応物を急冷した。その固体を濾過および乾燥させ、白色
の固体（1.1ｇ、83.2 %）を得た。mp. 248-252℃; 1H NMR (DMSO-d6) デルタ 1.
15 (t, 3H), 2.91 (q, 2H), 5.83 (s, 1H), 6.17 (d, 1H), 6.26 (d, 1H) 10.3
(s, 1H) 10.6 (s, 1H)。
【０１４４】 5,7-ジヒドロキシ-8-アセチル-4-プロピル-2H-1-ベンゾピラン-2-オン（DDE 2
71）。5,7-ジヒドロキシ-4-プロピル-クーマリン（2.06ｇ、9.36 mmol）と無水A
ICI3（2.53ｇ、18.7 mmol）の混合物に、1,2-ジクロロエタン（120 mL）を添加
した。生じた懸濁液を激しく攪拌しながら75℃まで加熱した。30分攪拌すると、
茶色のスラリーが得られたので、その混合物にニトロベンゼンを導入するとオレ
ンジ色の溶液になった。1,2-ジクロロエタン（40 mL）中の無水AICI3（2.53ｇ、
18.7 mmol）と無水酢酸（0.88 mL、9.36 mmol）を、1〜2時間かけて一滴ずつ添
加した。添加後、混合物を75℃でさらに2時間攪拌してから、室温まで冷却した
。生じた混合物を氷と1NのHClに注いだ。沈殿した生成物を濾過して酢酸エチル
に入れ、酢酸エチル（3 x 100 mL）で水溶液を完全に抽出した。化合した酢酸エ
チル抽出物をNa2SO4で乾燥させ、減圧下で溶媒を除去した。生じた固体をカラム
クロマトグラフィーで精製（1:1 ヘキサン/酢酸エチル）し、5,7-ジヒドロキシ-
8-アセチル-4-プロピル-クーマリン（0.30ｇ、12 %）を得た。mp. 221-224°C;
1H NMR (DMSO-d6)デルタ 0.94 (t, 3H), 1.58 (セクステット、2H), 2.66 (s,
3H) 2.87 (t, 2H), 6.01 (s, 1H), 6.29 (s, 1H)。
【０１４５】 5,7-ジヒドロキシ-4-フェニル-2H-1-ベンゾピラン-2-オン （DDE 270）。エチ
ルベンゾイルアセテート（2.41 mL、13.8 mmol）中のフロログルシノール（2.10
ｇ、12.9 mmol）の懸濁液をトリフリック酸（4 mL）に0.5時間かけて添加した。
反応物を氷浴槽で16時間、機械的に攪拌した。反応物を、氷浴槽に注意深く注ぎ
いれることによって急冷した。その固体を濾過および乾燥させて、黄色の固体（
2.43ｇ、74.8 %）を得た。mp. 179-182℃; 1H NMR (DMSO-D6) デルタ 5.75 (s,
1H), 6.15 (s, 1H), 6.25 (s, 1H)。
【０１４６】 テーブル５に示すように、BTKキナーゼドメインモデルは有効なBTKインヒビタ
ーを予測する上で効果的であることが証明された。これらの化合物は、キナーゼ
アッセイにおいて、用量依存的にBTKを阻害した。（図21参照）具体的に言えば
、化学式IIの強力なBTKインヒビターは、DDE181、DDE12、DDE213およびDDE214を
含む。
【０１４７】 これらの化合物は、白血病細胞のような幾つかのタイプの細胞内でアポプトー
シスを促進する。図22A〜22Dに示されるように、これらの化合物を単独で用いて
の処置は、アポプトーシスおよび細胞死を誘発するのに十分であった。
【０１４８】 インヒビターはまた、化学治療剤に対する細胞の感受性を増加させる。図23に
示すように、DDE-11を化学治療剤C2-CERおよびビンクリスチン（VCR）と一緒に
投与すると、化学治療剤を単独で使用した場合よりも、細胞毒性が増加した。 実施例7 新規のBTKインヒビターデザイン 図24は、化合物をBTKのATP-結合部位にドッキングさせたという前提で、DDE11
およびLFM A13に共通の結合特徴を示したものである。いずれのインヒビターもA
sp525およびArg525と相互作用するよう配置された水素結合基（OH、CN）を含有
する。図25A〜25Bおよび26A〜26Nのような結合ポケットと標的残基をみる限り、
結合ポケットをよりよく満たし、ポケット内の適当な残基と好ましく相互作用す
る化合物のデザインは、図25Bおよび26Bに示唆されているものである。
【０１４９】 これらの化合物は、容量が大きく結合ポケット残基と相互作用するように基が
デザインされているため、強力なBTK阻害作用を持つことが予測される。
【０１５０】 全ての出版物、特許、および特許文献が参照用としてそれぞれ本文に導入され
ている。本発明は、あらゆる特定の、および好ましい実施態様および技術につい
て、これらを参照して記載されている。しかしながら、本発明の精神および請求
範囲を維持しつつ多くの変更や改良がなされ得るのは当然理解されるべきであろ
う。 テーブル１ BTKを有するLFM類似体についての相互作用スコア、計算Ki値および
測定IC50値
【０１５１】
【化１３】
【０１５２】
【表４】
【０１５３】a M.S.はコノリーのMSプログラムを用いて計算した分子表面積。その分子を構成
する固い球原子と容積を共用することのない、所定の半径を持つプローブ球（水
分子を表すことを意図する）範囲内の容積の境界として定義されている。bB.S.
、埋込み表面(buried surface)：ドッキングされたポジションに基づいてリュー
ディー(Ludi)によって計算されたタンパク質と接触している分子表面。cリュー
ディーKiは、リューディープログラムにおける経験上のスコア関数に基づいて計
算される。d 無細胞BTK阻害アッセイは、B18.2細胞から免疫沈殿されたBTKについての、3種
類の別個の実験で実施され、ホットキナーゼアッセイ(hot kinase assay)に先立
ってLFMおよびLFM類似体に1時間曝された。LFM-A13以外の化合物は、いずれの実
験でも、濃度を100μg/ml（349〜495μM）程度まで高くしても、BTKを阻害しな
かった。 テーブル２ 幾つかの異なるPTKを有するLFM-13についての相互作用スコア、計
算Ki値および測定IC50値
【０１５４】
【表５】
【０１５５】a M.S.はコノリーのMSプログラムを用いて計算した分子表面積。エラー！ブック
マークが定義されていません。その分子を構成する固い球原子と容積を共用する
ことのない、所定の半径を持つプローブ球（水分子を表すことを意図する）範囲
内の容積の境界として定義されている。b B.S.、埋込み表面：ドッキングされたポジションに基づいてリューディーによ
って計算されたタンパク質と接触している分子表面のパーセンテージ。c リューディーKiは、リューディープログラムにおける経験上のスコア関数に基
づいて計算される。d 無細胞BTK阻害アッセイは、方法のセクションで記載されているような、2〜3種
類の別個の実験で実施された。LFM-A13は、いずれの実験でも、濃度を100μg/ml
（278μM）程度まで高くしても、JAK3、IRK、EGFRまたはHCKを阻害しなかった。
代表的な実験の結果を図7に表す。
【０１５６】 本発明を下記の非制限的な実施例により説明する。
【図面の簡単な説明】
【図１】 BTKは、DT-40 リンパ腫B細胞におけるFas媒介アポプトーシスのインヒビター
である。2−パラメータと相関するFACSは、野生型(WT)、BTK-欠乏(BTK-)、LYN-
欠乏（LYN- )DT-40細胞ならびに対照マウスIgG MsIgG (1 μg/mL)または抗Fas (
1 μg/mL)での処置24時間後に、MC540またはPIで染色した野生型ヒトbtk遺伝子(
BTK; rBTK[WT])で再構成されたBTK-欠乏DT-40細胞を示す。 そのパーセンテージ
はMC540の単独蛍光発光によって測定されたアポプトーシス初期の細胞画分、お
よびMC540/PIの二重蛍光発光で測定された進行したアポプトーシスの細胞画分を
示す(ウックンエフエムら(1996)サイエンス、273, 1096〜1100)。
【図２Ａ〜２Ｃ】 野生型およびBTK欠乏D-40細胞中のFasタンパク質発現レベルを示す。図2Aは、
野生型BTK欠乏、BTK-欠乏およびヒトbtk遺伝子再構成BTK欠乏DT-40細胞における
BTKおよびACTINの発現レベルを示す。適切なモノクローナル抗体およびECL化学
的蛍光検出システム（アマーシャム ライフサイエンス、製造元の指示に従って
使用）を用いたウエスタンブロット分析によって測定した（ジバージック アイ
ら (1998)、ジャーナルオフバイオロジカルケミストリー273, 4035〜4039;およ
びウックン エフ エムら(1997)、ブラッド）。図2Bは、個別のクローンにおける
Fasタンパク質の発現レベルを比較するために、抗Fas抗体を用いて分解し、再び
ブロッティングした抗BTK抗体および抗ACTIN抗体によってイムノブロッティング
した膜を示す。図2Cは、 共焦マイクロスコピーによって調べたWTおよびBTK欠乏
DT-40細胞 でのFas発現レベルを示す。緑： 抗Fas標識; 青: Toto-3で核を染色
したDNA; 目盛りバー=10 mm。
【図３Ａ〜３Ｄ】 BTKは、Fas媒介アポプトーシスを阻害する。図3Aは、野生型細胞(WT) およびB
TK-欠乏(BTK-)DT-40細胞を示す写真であり、実施例に示すように1μg/mlの抗Fas
で24時間処理し、ウサギポリクローナル抗チューブリン抗体（緑の蛍光塗料）お
よびDNA特異的染料toto-3(青の蛍光塗料)で共染色し、レーザー走査共焦マイク
ロスコピーで調べた。WT細胞とは異なり、 BTK細胞の大半は、核のフラグメンテ
ーションョン (a,b,d)や伸縮(c)等のアポプトーシス変化を示している。バー=10
mm。図３Bは、抗Fas抗体に曝露されたWTおよびBTK-DT-40細胞を示すDNAゲルで
ある。 実施例に詳細に示すように、トリトン-X-100 溶解物からのDNAを集め、
分析し、フラグメンテーションを調べた(ウックン エフ エムら（1996）サイエ
ンス273、1096〜1100)。図3Cおよび3Dは、実施例に示すように野生型ヒト（ｒＷ
Ｔ）、キナーゼドメイン突然変異(rK-)、SH2-ドメイン突然変異(rmSH2)またはPH
ドメイン突然変異(rmPH)形態のヒトbtk 遺伝子によって再構成されたBTK-欠乏DT
-40細胞について、抗Fas 抗体誘発アポプトーシスに対する感受性を示す。採取
前に、対照を培地中PBSで、37℃で5% CO2で24時間処置した。
【図４Ａ〜４Ｃ】 BTKの抗アポプトーシス特性をBTK-DT40細胞のBTKタンパク質再構成物によって
確認した。実施例に示すように、抗Fas抗体で処置する前にマルトース結合タン
パク質 (MBP)またはMBP-BTKをBTK−DT-40にエレクトロポレーションした。図4A
は、MBPに対する抗体によって標識したMBP-BTK- エレクトロポレーションした B
TK-欠乏 DT-40細胞およびエレクトロポレーションしていないBTK欠乏DT-40 細胞
を示す写真である。第二の抗体は、ヤギ抗ウサギ蛍光複合体抗体であった。バイ
オラッド（Bio-Rad）MRC 1024レーザー走査共焦顕微鏡デジタル画像を用いて細
胞を分析し、アドーブフォトショップソフトウエアを用いて処理し、フジピクト
グラフィーで印刷した。エレクトロポレーションしていない対照細胞の背景に有
意な着色は見られなかった(図4 A.1)。矢印の先端は、MBP-BTK溶融タンパク質で
エレクトロポレーションした細胞の細胞質の物質と反応するMBP抗体を示す(図４
A.2)。MBP-BTK エレクトロポレーションした細胞中に2つの集団が観察された。
いくつかの細胞は細胞の周辺が非常に明るく標識されたが、他の細胞は細胞質内
部が大きな点状に着色されていた。緑=MBP、バー=10 mm。図4Bは、ウエスタンブ
ロットを示す。MBPまたはMBP-BTKでエレクトロポレーションしたBTK欠乏DT-40細
胞の溶解物ならびに上澄みを抗BTK抗体および抗MBP抗体を用いて実験方法に示し
たようにウエスタンブロット分析した。双方の抗体を有する115 kDa MBP-BTK溶
融タンパク質をMBP-BTK エレクトロポレーションした細胞からの溶解物中だけ（
上澄みなし）に検出した 。図4Cは、抗Fas抗体に曝露24時間後に集めたゲル細胞
である。トリトン-X-100溶解物からのDNAを分析し、フラグメンテーョンを前記
のように調べた（ウックン エフ エムら（1996）サイエンス273、1096〜1100；
およびウックン エフ エムら（1995）サイエンス267、886〜91）。MBP-BTKをエ
レクトロポレーションしたWT細胞もしくはBTK欠乏細胞ではなくBTK欠乏細胞中の
抗Fas処置誘発アポプトーシス を誘発した。MBP（陰性対照)のエレクトロポレー
ションは、アポプトーシスに影響を及ぼさなかった。
【図５Ａ〜５Ｄ】 BTKとFASとの関与およびFAS-FADD相互作用。未処理の野生型DT-40リンパ腫B-
細胞のノニデットP-40溶解物から免疫沈殿させたFas、FLICE、FADDおよびTRADD
免疫複合体を集め、洗浄し、2x SDSサンプル緩衝液中で沸騰させ、12.5％ ポリ
アクリルアミドゲル上で分画し、イモビロン-PVDF膜に移し、イムノブロッティ
ングによってBTKタンパク質の存在を調べた。実施例に記載のように、また図５A
に示したように行った。未処理対Fas活性化BTK欠乏DT-40リンパ腫B細胞から免疫
沈殿させたBTKおよびFADD免疫複合体(ならびに陽性対照FAS 免疫複合体)、野生
型ヒトbtk遺伝子で再構成されたもの、を回収し、洗浄し、2x SDSサンプル干渉
液中で沸騰させ、12.5％ ポリアクリルアミドゲル上で分画し、イモビロン-PVDF
膜に移し、イムノブロッティングによってBTKタンパク質の存在を調べた。実施
例に記載のように、また図５Bに示したように行った。BTK-陽性NALM-6-UM1ヒトB
細胞前駆体白血病細胞の溶解物からのFAS、FLICE、FADD、TRADDおよびBTK免疫複
合体を、図５Cに示すように、抗Fasウエスタンブロット分析した。実施例に示す
ようにFADDをBTK欠乏DT-40細胞の未処理対Fas活性化(抗Fas 1 μg/ml、1時間)の
ノニデットP-40溶解物から免疫沈殿させた。免疫複合体を集め、洗浄し、2x SDS
サンプル干渉液中で沸騰させ、12.5％ ポリアクリルアミドゲル上で分画し、イ
モビロン-PVDF膜に移し、イムノブロッティングによってモノクローナル抗Fas抗
体を調べた(図5D)。同様に、同じ細胞からのFAS免疫複合体を調べイムノブロッ
ティングによってFADDの存在を調べた。
【図６Ａ〜６Ｄ】 BTK発現および機能との関係におけるヒト直系白血病細胞のFas結紮に対する反
応。BTK陽性NALM-6-UM1(N6-U1)およびBTK欠乏RAMOS-1細胞からの全細胞溶解物の
抗BTKおよびアクチン二重抗体ウエスタンブロット分析(図5A)。同じ細胞溶解物
の抗Fasウエスタンブロット分析。 [B]細胞を抗Fas抗体に濃度0.1 μg/mまたは1
.0μg/mlで抗Fas抗体に曝露24時間後に集め、フラグメンテーョンを調べた。ウ
ックン エフ エムら（1996）サイエンス273、1096〜1100;およびウックン エフ
エムら（1995）サイエンス267、886〜91に記載の方法で行った。BTK-陽性N6-U1
細胞中ではなく、BTK-欠乏RAMOS-1細胞中に抗Fas 処置アポプトーシスを誘発し
た。[C.1]および[C.2] BTKインヒビターLMA-13で処理した(10 μM x 4時間)全細
胞溶解物の抗BTKおよび抗Fas ウエスタンブロット分析。[C.3] BTK免疫複合体を
未処置(=- インヒビター)およびLMA-13-処置(10 μM x 4 時間) (= +インヒビタ
ー)N6-U1細胞によって免疫沈殿させた抗BTK抗体の抗Fasおよび抗BTKウエスタン
ブロット分析。 [D]N6-U1細胞を抗Fas抗体に濃度0.1μg/mlもしくは1.0μg/mlで
曝露24時間後に集め、トリトン-X-100溶解物からのDNAを分析し、フラグメンテ
ーションを調べた。ウックン エフ エムら（1996）サイエンス273、1096〜1100
；およびウックン エフ エムら（1996）サイエンス267、886〜91に記載の方法で
行った。LMA-13-前処置した(10 μM ×4時間) (= インヒビター+) N6-U1細胞中
の抗Fas処置誘発アポプトーシス。対照的に、BTK インヒビター(=インヒビター-
)で前処置しなかったN6-U1細胞ではアポプトーシスは観察されなかった。[A.1]
、[A.2]、[C.1]、[C.2]および[C.3]のウエスタンブロット分析にはECL検出シス
テム（アマーシャム ファルマシア バイオテック、アーリントンハイツ、イリノ
イ、カタログNo.RPN2106）を用いた。
【図７Ａ〜７Ｂ】 キナーゼ-不活性BTKはFasに関与しない。抗BTK(A.1)および抗Fas (A.2) 野生
型ヒトBTK (BTK-, rBTK[WT]) (レーン1)またはキナーゼ ドメイン突然変異不活
性ヒトBTK (BTK-, rBTK[K-] (レーン2)によって再構成されたBTK欠乏DT-40細胞
からの溶解物の全細胞のウエスタンブロット分析(図7A)。BTKおよびFasの発現レ
ベルを適切な抗体およびECL化学的蛍光検出システムを用いたイムノブロッティ
ングによって測定した。図7Bは、BTK-、rBTK[WT]細胞からのFas免疫複合体(レー
ン 1) または抗Fas抗体前処置なし(レーン 2)およびBTK-、rBTK[K-]細胞から抗F
as抗体前処理を行った (レーン 3) または抗Fas抗体前処理を行わない(レーン4)
の抗BTK (B.1)および抗Fas(B.2) ウエスタンブロット分析を示す。全細胞溶解物
のノニデットP-40から免疫沈殿させた前記免疫複合体を集め、洗浄し、2x SDSサ
ンプル干渉液中で沸騰させ、12.5％ ポリアクリルアミドゲル上で分画し、イモ
ビロン-PVDF膜に移し、イムノブロッティングBTKおよびFasタンパク質の存在を
前記方法に記載のように行った。
【図８Ａ〜８Ｆ】 ニワトリおよびヒトB-直系リンパ腫細胞ににおけるBTK溶融タンパク質とFasタ
ンパク質の結合。図8Aは、BTKの様々なドメインに対応する全長および切形MBP-
およびGST-溶融タンパク質BTKの模式図を示す。包括的なアミノ酸(AA)シーケン
スを各切形突然変異体によって示す。触媒ドメイン（対照として使用）内のY551
トランスリン酸化部位を含有するBTK1-659、BTK 408-659、BTK2-137ならびにBTK
519-567をMBPに溶融した。BTK219-377、BTK 281-377 およびBTK219-268をGSTに
溶融した。図8Bは、MBP-BTK and GST-BTK 溶融タンパク質（7.5 μg/レーン)を1
2%のポリアクリルアミドゲルを使用したSDS-PAGEによって分析し、クーマシーR-
250ブルーでゲル染色して視覚化した。図8Cは、ドメイン特異的抗体を用いた、
キナーゼ-(BTK 408-659)、PH-(BTK 2-137)およびSH2-SH3-ドメイン(BTK 219-377
)に対応するタンパク質の精製BTKのウエスタンブロット分析である。実験方法に
記載。図8D〜8Fは、BTK-Fas相互作用におけるBTKのキナーゼおよびPHドメインの
機能的役割を示す。[図8D] BTK欠乏DT-40ニワトリリンパ腫B-細胞; [図 8E]ヒト
NALM-6プレB白血病細胞; [図8F]: KL2ヒトEBV-形質導入リンパ芽細胞。MBP-BTK
およびGST-BTK溶融タンパク質をプルダウン結合アッセイに使用して、それらがB
TK 欠乏DT-40細胞中でFasと相互作用する能力を、実施例に記載の方法で調べた
。溶融タンパク質吸着物および対照サンプルC1-C5 (C1(=CON):細胞溶解物および
アミローズビーズ(溶融タンパク質を添加しない); C2:細胞溶解物およびグルタ
チオン-アガロースビーズ (溶融タンパク質を添加しない); C3: MBP-BTK 1-659
およびアミローズビーズ (細胞溶解物なし); C4: GST-BTK 219-268およびグルタ
チオン-アガロースビーズ (細胞溶解物を添加しない); C5: MBP-BTK 519-567お
よびアミローズビーズおよび細胞溶解物)をSDS-PAGEによって溶解し、モノクロ
ーナル抗Fas抗体でイムノブロッティングし、ECLで成長させた。
【図９Ａ〜９Ｂ】 BTKの抗アポプトーシス機能。 野生型およびBTK欠乏 (BTK-)DT-40 リンパ腫B
細胞(図9A)ならびにC2-CER、ビンクリスチン(VCR)または 抗Fas 抗体で再構成し
たBTK-DT-40細胞または突然変異ヒトBTK (図9B)を用いて実施例に記載のように
処置した。野生型BTK BTK(Arg525 〜Gln)、BTK(Arg28〜Cys)およびBTK(Arg307〜
Ala)を発現するBTK欠乏DT-40(BTK-)細胞をそれぞれBTK- 、rBTK(WT)、BTK-、rBT
K(K-)、BTK- 、rBTK(mPH)および BTK-、rBTK(mSH2)にデザインした。賦形剤(PBS
中0.1% DMSO) 処置および薬物処置細胞を、集める前に培養培地中で24時間37℃
で5% CO2 で処置した。トリトン-X-100溶解物からのDNAを分析し、フラグメンテ
ーョンを上記のように調べた（ウックンエフエムら(1996)サイエンス、22、1096
〜1100）。
【図１０Ａ〜１０Ｂ】 BTKキナーゼドメインのホモロジーモデル。図10Aは、BTKキナーゼドメインの
ホモロジーモデルをリボンで表している。LFM-A13分子をBTKの触媒部位空間補充
モデルとして示した。モルスクリプトおよびラスター３Dプログラム（Prepared
using Molscript and Raster3D programs） (ベーコン ディージェー（Bacon, D
. J.）およびアンダーソン ダブリュー エフ（Anderson, W. F.）(1988) ジャー
ナルオフモレキュラーグラフィックス6, 219〜20; クローリス ピー （Kraulis,
P.）(1991)ジャーナルオフアプライドクリスタル（J. Appl. Cryst.）24、946
〜50;およびメリット イー エー（Merritt, E. A.）およびマーフィー エム イ
ー ピー（Murphy, M. E. P.）(1994)アクタクリスタル（Acta Cryst.）D50、869
〜73)を使用して調製した。図 10Bは、BTKキナーゼドメインの触媒部位残基のバ
ックボーンの空間補充描写を表す。BTKのC-アルファ鎖を青いリボンで示す。 直
方体の結合ポケットの4つの角の残基を黄色、ピンク、緑、青で示す。BTKインヒ
ビターLFM-A13のボールおよびスティックモデルを多色で示し、BTKのキナーゼ活
性部位における好ましい配向性を示す。インサイトIIプログラム((1996)、モレ
キュラーシミュレーション インク、サンディエゴ、カリフォルニア)を使用して
調製した。
【図１１】 BTKのキナーゼドメインの触媒部位（青いリボン）におけるLFM-A13分子（多色
）のドッキング位置。破線は、BTKにおけるLFM-A13とキナーゼドメイン残基との
水素結合を表す。
【図１２】 BTKのキナーゼドメイン触媒部位(青いリボン)における積み重ねられたドッキ
ング位置；LFM(紫)、LFM-A12(赤)および LFM-A13(多色)。
【図１３】 BTKインヒビター、LFM-A13の結晶構造のORTEP写真。
【図１４Ａ〜１４Ｃ】 LFM-A13がBTKのチロシンキナーゼ活性に及ぼす影響。バキュロウイルスベクタ
ー発現システム中で生成されたBTKの純度の高い(＞90%) BTK調製物を1時間室温
でLFM-A13を用いて支持された濃度で処理した。図14Aに示された酵素活性をキナ
ーゼアッセイにおいてオートリン酸化を10分間測定することによって、実施例に
記載の方法で測定した。BTKをB18.2 細胞 (すなわち、野生型ヒトBTKによって再
構成されたBTK-DT-40 細胞)からイムノプレシピテーョンさせ、LFM-A13または賦
形剤(PBS中0.1% DMSO)で1時間処理し、 その後PTK活性を調べ、GST-Igaのオート
リン酸化およびリン酸化によって測定した。外因的キナーゼ基質を使用した。キ
ナーゼのデータを図 14Bに示す。B18.2 リンパ腫B-細胞をLFM-A13で処理し、そ
の後溶出し、BTK免疫複合体キナーゼ アッセイおよびウエスタンブロットを実施
例に記載の方法で行った。そのデータを図 14Cに示す。PIU: ホスホイメージャ
ーユニット; DSU、比重走査ユニット; CON、対照。
【図１５】 図 15: LFM-A13、JAK1、JAK3、HCKおよびIRKのチロシンキナーゼ活性に及ぼす
影響。適切なバキュロウイルス発現ベクターを用いてSf21昆虫卵巣細胞からJAK1
およびJAK3を免疫沈殿させた。pSV7c-HCKプラスミドを用いてCOS-7 細胞から免
疫沈殿させたHCK。 実験方法に記載の方法でHepG2 ヘパトーマ細胞から免疫沈殿
させたIRKをLFM-A13で処理し、その後インビトロキナーゼアッセイを行った。
【図１６】 BTKのためのLFM-A13の選択のための基本構造。レフルノミド代謝物類似体LFM-
A13(多色)のドッキングされた位置とあわせて、A、Bおよび Cポジションにおけ
る選択された少量の残基を用いたBTK ホモロジーモデルを蛍光ブルーで示した。
EGFRのモデルを用いてLFM-A13およびポジションBのEGFRとBTKの間の残基の差を
用いてドッキングされたポジションを赤で示した。HCKの結晶構造を持つLFM-A13
およびポジションCにおけるHCKとBTKの間の残基の差を用いてドッキングされた
ポジションを黄色で示した。JAK3/JAK1およびJAK3/JAK1とBTK の間の残基の差の
モデルを用いてドッキングされたLFM-A13のポジションをピンクで示した。IRKの
結晶構造およびポジションAおよびBにおけるIRKとBTKの間のLFM-A13のドッキン
グされたポジションを青で示した。
【図１７】 LFM-A13がヒト白血病細胞のセラミド感受性に及ぼす影響。FACS関連3次元パラ
メータ (FSC、前向き分散=大きさ; PI、よう化プロピジウムからの蛍光発光、
およびMC540染色からの蛍光発光)は、賦形剤 (PBS中0.1% DMSO)、C2-セラミド(C
2-CER) (10 μM)、LFM-A13 (200 μM)またはLFM-A13 および C2-CERでの処理24
時間後 MC540およびPIで染色したALL-1 Ph/t(9;22)+ ヒトALL細胞を示す。その
パーセンテージはMC540単一蛍光発光によって測定されたアポプトーシス初期の
細胞画分、およびMC540/PI二重蛍光発光で測定された進行したアポプトーシスの
細胞画分を示す。
【図１８Ａ〜１８Ｃ】 LFM-A13の化学的感作的影響。野生型ヒトBTK遺伝子(すなわちB18.2 クローン) で再構成されたBTK欠乏DT-40細胞 (図 18A)、NALM-6ヒト前B-ALL細胞 (図 18B)
および全-1ヒトPh+ ALL細胞(図18C) をLFM-A13 (100 μM)、ビンクリスチン(VCR
) (10 ng/ml)、C2-セラミド(C2-CER) (10 μM)、LFM-A13 (100 μM)および VCR
(10 ng/ml)、 LFM-A13 (100 μM)およびC2-CER (10 μM)で37℃で24時間処置し
た。トリトン-X-100 溶解物からのDNAを分析し、フラグメンテーションを、ウッ
クンエフエムら(1996)サイエンス、22, 1096〜1100に記載の方法で調べた。
【図１９】 図１９はLFM-13および他の関連化合物の合成を示している。
【図２０】 図２０はLFM-13と BTK接合ポケットとの接合相互作用を示している。
【図２１】 図２１はBTKのチロシンキナーゼ効果を示している。バキュロウイルスベクト
ル発現システムによって産生されたBTKの高度精製（90％以上）調整物は、記載
の濃度のDDE11により室温下にて1時間処理された。BTKの酵素活性は、以下に示
すようにキナーゼアッセイ中で10分間測定することにより決定される。
【図２２Ａ〜２２Ｄ】 図２２ＡはTUNNELアッセイ制御のデータを示している。図２２Ｂは100 μMの
濃度でのDDE11のデータを示している。図２２ＣはNALM-6細胞における流動細胞
アッセイを示している。図２２Ｄは NALM-6細胞におけるDDE11 に対する流動細
胞アッセイデータを示し、DDE11がアポプトーシスを誘発することを示している
。
【図２３】 図２３は、ヒト白血病細胞のセラミドまたはビンクリスチン感作 に対するDDE
-11 の効果を示している。上述のように図１７に対する研究が行われたが、BTK
インヒビターとして使用されたのはDDE11である。
【図２４】 図２４は、BTKにおけるATP結合サイトへの化合物のドッキングに基づくとLFM-
A13双方の結合特性を示している。これらの化合物は共にASP 525 とAry 523と相
互反応する水素結合基を含有している。
【図２５Ａ〜２５Ｂ】 図２５Ａ〜２５Ｂは、BTKにおけるATP結合サイトへの化合物のドッキングに基
づく新規のインヒビターのデザインを示している。図２５Ａに示す残基はAtP結
合サイトに配置され、インヒビターの官能基と相互作用する。代表的な化合物は
図２５Ｂに示されている。
【図２６Ａ〜２５Ｂ】 図２６Ａ〜２５Ｂは、BTK-1 ATP結合ポケットによりよく合致するようデザイ
ンされた補足的新規化合物を示している。 提案されている化合物は図２５Ｂに
示されている。これらの化合物は強力なBTK抑制作用を有すると予想される。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.7 識別記号 ＦＩ テーマコート゛(参考） Ａ６１Ｐ 37/06 Ａ６１Ｐ 37/06 37/08 37/08 43/00 43/00 １１１ １１１ Ｃ０７Ｃ 317/40 Ｃ０７Ｃ 317/40 Ｃ０７Ｄ 311/18 Ｃ０７Ｄ 311/18 (81)指定国 ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＣＹ， ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＩ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，Ｉ Ｔ，ＬＵ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ ，ＣＦ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＧＷ，ＭＬ， ＭＲ，ＮＥ，ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＰ(ＧＨ，ＧＭ，Ｋ Ｅ，ＬＳ，ＭＷ，ＳＤ，ＳＬ，ＳＺ，ＵＧ，ＺＷ)，Ｅ Ａ(ＡＭ，ＡＺ，ＢＹ，ＫＧ，ＫＺ，ＭＤ，ＲＵ，ＴＪ ，ＴＭ)，ＡＥ，ＡＬ，ＡＭ，ＡＴ，ＡＵ，ＡＺ，ＢＡ ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＢＹ，ＣＡ，ＣＨ，ＣＮ，ＣＵ， ＣＺ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＥ，ＥＳ，ＦＩ，ＧＢ，ＧＤ，Ｇ Ｅ，ＧＨ，ＧＭ，ＨＲ，ＨＵ，ＩＤ，ＩＬ，ＩＮ，ＩＳ ，ＪＰ，ＫＥ，ＫＧ，ＫＰ，ＫＲ，ＫＺ，ＬＣ，ＬＫ， ＬＲ，ＬＳ，ＬＴ，ＬＵ，ＬＶ，ＭＤ，ＭＧ，ＭＫ，Ｍ Ｎ，ＭＷ，ＭＸ，ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ，ＰＴ，ＲＯ，ＲＵ ，ＳＤ，ＳＥ，ＳＧ，ＳＩ，ＳＫ，ＳＬ，ＴＪ，ＴＭ， ＴＲ，ＴＴ，ＵＡ，ＵＧ，ＵＺ，ＶＮ，ＹＵ，ＺＡ，Ｚ Ｗ (72)発明者 ゴーシュ、スタパ アメリカ合衆国、55126 ミネソタ州、シ ョアビュー、オックスフォード ストリー ト エヌ．4121 Ｆターム(参考） 4C062 EE27 EE28 4C086 AA01 AA02 AA03 BA08 MA01 MA02 MA04 NA05 NA14 ZA54 ZA59 ZA66 ZA81 ZA89 ZB07 ZB13 ZB21 ZB26 ZB27 ZB33 ZC20 4C206 AA01 AA02 AA03 HA13 MA01 MA02 MA04 NA05 NA14 ZA54 ZA59 ZA66 ZA81 ZB07 ZB21 ZB26 ZB27 ZB33 ZC20 4H006 AA01 AA03 AB28 AB29 TA02 TB04 TB58 TC34

Claims (29)

    【特許請求の範囲】
  1. 【請求項１】 式Iで表される化合物： 【化１】 式中R1は(C1-C3)アルキル、(C3-C6)シクロアルキル、フェニルまたはNRaRb； R2はヒドロキシ、(C1-C6)アルコキシ、(C1-C6)アルカノイルオキシアミノ(C2-C5 )アルコキシ、ヒドロキシ(C2-C5)アルコキシアミノ(C2-C5)アルカノオキシ（alk
    anoxy）、またはヒドロキシ(C2-C5)アルカノオキシ； R3はシアノまたは(C1-C3)アルカノイル； R4は水素、(C1-C3)アルキル、ヒドロキシ(C2-C5)アルキル、またはアミノ(C2-C5 )アルキル； R5はアリールまたはヘテロアリールであり： RaおよびRbはそれぞれ（独立して）水素または(C1-C3)アルキルであるか、もし
    くはそれらが結合している窒素と共にピロリジノ、ピペリジノ、モルホリノ、ま
    たはチオモルホリノを形成し； R1およびR5のアリールまたはヘテロアリールは、R5がフェニルであり、前記フェ
    ニルは-S(O)2Rcで置換されるか、またはハロおよび１以上の他の置換基で置換さ
    れるという条件の下で、それぞれハロ、ニトロ、シアノ、ヒドロキシ、トリフル
    オロメチル、トリフルオロメトキシ、(C1-C3)アルコキシ、(C1-C3)アルキル、(C 1 -C3)アルカノイル、-S(O)2Rc、またはNRaRbから選択される１以上（例えば１、
    ２、または３）の置換基（ただしRcは(C1-C3)アルキル、またはアリール、もし
    くは薬学的に許容可能なこれらの塩）で任意に置換される。
  2. 【請求項２】式IIで表される化合物： 【化２】 式中XはO、N、またはS； R1はH、アルキル、カルボキシル、好ましくはC1-C3アルキルまたはC1-C3カルボ
    キシル； R2はアルキル、好ましくはC1-C6アルキルである。
  3. 【請求項３】 前記化合物の分子体積が約350〜550立方オングストロームであ
    る請求項１または２に記載の化合物。
  4. 【請求項４】 LFM-A13、LFM-A15、LFM-A16、LFM-A17、LFM-A18、LFM-A19、ま
    たはLFM-A20構造と、薬学的に許容可能な担体とを有する請求項１に記載の化合
    物を含む薬学的組成物。
  5. 【請求項５】 DDE181、DDE11、DDE213、DDE214、またはDDE270の構造を有す
    る請求項２に記載の化合物を含む薬学的組成物。
  6. 【請求項６】 DDE213またはDDE270の構造を有する化合物。
  7. 【請求項７】 Tec科チロシンキナーゼの作用の抑制方法で、前記キナーゼを
    請求項１または２に記載の化合物に接触させることを含む方法。
  8. 【請求項８】 前記化合物がLFM-A13、LFM-A15、LFM-A16、LFM-A17、LFM-A18
    、 LFM-A19、LFM-A20、 DDE181、DDE11、 DDE213、DDE214、またはDDE270である
    請求項７に記載の方法。
  9. 【請求項９】 TecキナーゼのATP結合部位への結合の競争的抑制を通じて前記
    の抑制が行われる請求項７に記載の化合物。
  10. 【請求項１０】 請求項１または２に記載の化合物を投与することにより、SR
    Cまたはヤーヌス（Janus）科チロシンキナーゼの作用を抑制することなく、Tec
    科キナーゼの作用を特異的に抑制する方法。
  11. 【請求項１１】 Tecキナーゼ発現細胞におけるTecキナーゼの作用を抑制する
    方法で、前記細胞を請求項１または２に記載の化合物に接触させることを含む方
    法。
  12. 【請求項１２】 前記細胞が癌細胞、リンパ性悪性腫瘍またはリンパ腫、リン
    パ増殖性疾患に関与する細胞、Bリンパ球、もしくはマスト細胞である請求項１
    １に記載の方法。
  13. 【請求項１３】 Tec科チロシンキナーゼ作用の影響による病的状態の治療方
    法で、請求項１または２に記載の化合物を投与することを含む方法。
  14. 【請求項１４】 前記病的状態が癌である請求項１３に記載の方法。
  15. 【請求項１５】 前記癌が、白血病、リンパ腫、乳癌、前立腺癌、肺癌、結腸
    癌、メラノーマ、脳腫瘍または膀胱癌である請求項１４に記載の方法。
  16. 【請求項１６】 請求項１または２に記載の化合物を投与することにより、宿
    主の免疫反応を調節する方法。
  17. 【請求項１７】 前記病的状態が、B細胞悪性腫瘍、B細胞リンパ増殖性疾患ま
    たは自己免疫病、マスト細胞異常、不適切な血小板凝固や異種移植（xeno ransp
    lants）の拒絶反応に関する疾患である請求項１３に記載の方法。
  18. 【請求項１８】 前記病的状態が急性リンパ芽球性白血病、慢性リンパ球性白
    血病(chronic lymphocitic leukemia)、非ホジキンリンパ腫、エプスタインバー
    ウイルス性リンパ腫(EBV lymphomia)、骨髄腫、ループス、クローン氏病、慢性
    または移植片対宿主病（chronic or graft-versus-host disease）、アレルギー
    、またはアナフィラキシーショックである請求項１３に記載の方法。
  19. 【請求項１９】 請求項１または２に記載の化合物を投与することにより、Te
    c科キナーゼ発現細胞が関与する病的異常を防止する方法。
  20. 【請求項２０】 BTKにより調整された遺伝子の発現を変更する方法で、BTKイ
    ンヒビターを投与することを含む方法。
  21. 【請求項２１】 前記インヒビターが請求項１または２に記載の化合物である
    請求項２０に記載の方法。
  22. 【請求項２２】 Tec科発現細胞におけるアポプトーシスを促進または抑制す
    る方法で、請求項１または２に記載の化合物を投与することを含む方法。
  23. 【請求項２３】 化学療法剤に対する癌細胞の感受性を高める方法で、BTKイ
    ンヒビターと化学療法剤とを合わせて投与することを含む方法。
  24. 【請求項２４】 前記BTKインヒビターが請求項１または２に記載の化合物で
    ある請求項２３に記載の方法。
  25. 【請求項２５】 Tec科キナーゼのインヒビターを同定する方法で、BTKの複合
    結合ポケットモデルへのインヒビターへの合致を分析することを含む方法。
  26. 【請求項２６】 昆虫の細胞に発現した精製BTK。
  27. 【請求項２７】 薬物療法に用いられる請求項１、５、６、１０、１１、また
    は１２に記載の化合物。
  28. 【請求項２８】 BTKの作用が関与する疾患の治療に有益な医薬品を調製する
    ための、BTKの作用を抑制または防止する薬剤の使用。
  29. 【請求項２９】 前記疾患が急性リンパ芽球性白血病、慢性リンパ球性白血病
    (chronic lymphocitic leukemia)、非ホジキンリンパ腫、エプスタインバーウイ
    ルス性リンパ腫(EBV lymphomia)、骨髄腫、ループス、クローン氏病、慢性また
    は移植片対宿主病、アレルギー、およびアナフィラキシーショックである請求項
    ２８の使用。
JP2000544627A 1998-04-17 1999-04-19 Ｂｔｋインヒビターならびにその同定方法および使用方法 Pending JP2002512216A (ja)

Applications Claiming Priority (5)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US8209498P 1998-04-17 1998-04-17
US09/273,191 US6303652B1 (en) 1998-08-21 1999-03-19 BTK inhibitors and methods for their identification and use
US60/082,094 1999-03-19
US09/273,191 1999-03-19
PCT/US1999/008556 WO1999054286A2 (en) 1998-04-17 1999-04-19 Btk inhibitors and methods for their identification and use

Publications (1)

Publication Number Publication Date
JP2002512216A true JP2002512216A (ja) 2002-04-23

Family

ID=26767041

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2000544627A Pending JP2002512216A (ja) 1998-04-17 1999-04-19 Ｂｔｋインヒビターならびにその同定方法および使用方法

Country Status (13)

Country Link
EP (1) EP1071658B1 (ja)
JP (1) JP2002512216A (ja)
KR (1) KR20010042804A (ja)
AT (1) ATE269295T1 (ja)
AU (1) AU3653099A (ja)
CA (1) CA2328962A1 (ja)
DE (1) DE69918089T2 (ja)
ES (1) ES2222705T3 (ja)
HU (1) HUP0102661A2 (ja)
IL (1) IL139080A0 (ja)
MX (1) MXPA00010150A (ja)
NO (1) NO20005224L (ja)
WO (1) WO1999054286A2 (ja)

Cited By (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2009060835A1 (ja) * 2007-11-05 2009-05-14 Kyoto University 新規ユビキリン結合性小分子
JP2010521439A (ja) * 2007-03-14 2010-06-24 ウニベルジタデグリ・ストゥディ・ディ・ミラノ−ビコッカ 上皮腫瘍細胞における薬剤耐性のモジュレータ化合物
JP2011500752A (ja) * 2007-10-23 2011-01-06 エフ．ホフマン−ラ ロシュ アーゲー 新規なキナーゼ阻害剤
JP2013525281A (ja) * 2010-04-05 2013-06-20 マンカインド コーポレ−ション ＩＲＥ−１αインヒビター
JP2015536656A (ja) * 2012-11-28 2015-12-24 コーニング インコーポレイテッド 肝細胞機能の増強のための細胞培養培地
JP2016515592A (ja) * 2013-04-02 2016-05-30 エフ．ホフマン−ラ ロシュ アーゲーＦ． Ｈｏｆｆｍａｎｎ−Ｌａ Ｒｏｃｈｅ Ａｋｔｉｅｎｇｅｓｅｌｌｓｃｈａｆｔ ブルトンチロシンキナーゼの阻害剤
JP2016523858A (ja) * 2013-08-02 2016-08-12 バイオンシル ソシエタ ア レスポンサビリタ リミタータ イン リクイダツィオーネ がんを治療するためのｂｔｋ阻害剤とフルオロウラシルとの併用

Families Citing this family (49)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6303652B1 (en) 1998-08-21 2001-10-16 Hughes Institute BTK inhibitors and methods for their identification and use
US6306897B1 (en) 1999-03-19 2001-10-23 Parker Hughes Institute Calanolides for inhibiting BTK
ATE260269T1 (de) 1999-11-05 2004-03-15 Cytovia Inc Substituierte 4h-chromene und ähnliche verbindungen als kaspasis aktivatoren und apoptosis induktoren und deren verwendung
JP2003516351A (ja) * 1999-11-30 2003-05-13 パーカー ヒューズ インスティテュート コラーゲン誘導血小板凝集阻害剤
US6589992B2 (en) 1999-11-30 2003-07-08 Parker Hughes Institute Inhibiting collagen-induced platelet aggregation
GB0005345D0 (en) * 2000-03-06 2000-04-26 Mathilda & Terence Kennedy Ins Methods of treating sepsis septic shock and inflammation
AU2001236361A1 (en) * 2000-10-20 2002-05-06 Parker Hughes Institute Treatment of asthma with lfm analogues
US20030040461A1 (en) * 2000-10-23 2003-02-27 Mcatee C. Patrick Modulators of Bruton'sTyrosine Kinase and Bruton's Tyrosine Kinase intermediates and methods for their identification and use in the treatment and prevention of osteoporosis and related diseases states
ATE366720T1 (de) * 2001-03-07 2007-08-15 Telik Inc Substituierte diarylharnstoffe als stimulatoren der fas-vermittelten apoptose
DE10112924A1 (de) * 2001-03-13 2002-10-02 Erich Eigenbrodt 1-Butansäurederivate, pharmazeutische Zusammensetzungen enthaltend solche Derivate und Verwendungen solcher Derivate
US20040152772A1 (en) * 2001-03-13 2004-08-05 Erich Eigenbrodt 1-butyric acid derivatives and the use thereof
EP1392283A4 (en) 2001-05-16 2004-10-20 Cytovia Inc COUMARINS AND SUBSTITUTED QUINOLINES USED AS CASPASE ACTIVATORS
US6858607B1 (en) 2001-05-16 2005-02-22 Cytovia, Inc. 7,8-fused 4H-chromene and analogs as activators of caspases and inducers of apoptosis and the use thereof
ATE450531T1 (de) 2001-05-16 2009-12-15 Cytovia Inc Substituierte 4h-chromene und analoga als aktivatoren von caspasen und induktoren von apoptose, und deren verwendung als antikrebsmittel
AU2002329000A1 (en) * 2001-09-24 2003-04-07 University Of Aarhus Methods for diagnosis and treatment of diseases associated with altered expression of pik3r1
EP1509515A4 (en) 2002-05-16 2006-07-05 Cytovia Inc SUBSTITUTED 4-ARYL-4H-PYRROLO 2,3-H | CHROMENES AND ANALOGUES AS ACTIVATORS OF CASPASES AND INDUCERS OF APOPTOSIS AND THEIR USE
US7476741B2 (en) 2002-05-16 2009-01-13 Cytovia, Inc. Substituted 4H-chromens, 2H-chromenes, chromans and analogs as activators of caspases and inducers of apoptosis and the use thereof
JP2005538165A (ja) 2002-09-06 2005-12-15 シェボ ビオテック アクティエン ゲゼルシャフト 解糖酵素及び／又はアミノ基転移酵素錯体調節用化合物
AR045037A1 (es) 2003-07-10 2005-10-12 Aventis Pharma Sa Tetrahidro-1h-pirazolo [3,4-c] piridinas sustituidas, composiciones que las contienen y su utilizacion.
RU2007118691A (ru) * 2004-10-19 2008-11-27 Авентис Фармасьютикалз Инк. (Us) Применение 4-трифторметилфениламида (z)-2-циано-3-гидрокси-бут-2-еновой кислоты для лечения воспалительных заболеваний кишечника
US20100160292A1 (en) * 2006-09-11 2010-06-24 Cgi Pharmaceuticals, Inc Kinase Inhibitors, and Methods of Using and Identifying Kinase Inhibitors
ES2585902T3 (es) 2006-09-22 2016-10-10 Pharmacyclics Llc Inhibidores de tirosina cinasa de Bruton
US20120101113A1 (en) 2007-03-28 2012-04-26 Pharmacyclics, Inc. Inhibitors of bruton's tyrosine kinase
WO2009147624A2 (en) * 2008-06-05 2009-12-10 Alembic Limited A process for preparing teriflunomide
CN102159214A (zh) 2008-07-16 2011-08-17 药品循环公司 用于实体肿瘤的治疗的布鲁顿酪氨酸激酶的抑制剂
MX2020004501A (es) 2010-06-03 2021-11-09 Pharmacyclics Llc El uso de inhibidores de la tirosina quinasa de bruton (btk).
EA201490265A1 (ru) 2011-07-13 2014-12-30 Фармасайкликс, Инк. Ингибиторы тирозинкиназы брутона
US8377946B1 (en) 2011-12-30 2013-02-19 Pharmacyclics, Inc. Pyrazolo[3,4-d]pyrimidine and pyrrolo[2,3-d]pyrimidine compounds as kinase inhibitors
US9365566B2 (en) 2012-03-27 2016-06-14 Takeda Pharmaceutical Company Limited Cinnoline derivatives
CA3218491A1 (en) 2012-06-04 2013-12-12 Pharmacyclics Llc Crystalline forms of a bruton's tyrosine kinase inhibitor
BR112015001690A2 (pt) 2012-07-24 2017-11-07 Pharmacyclics Inc mutações associadas com a resistência a inibidores da tirosina quinase de bruton (btk)
BR112015011171A2 (pt) 2012-11-15 2017-07-11 Pharmacyclics Inc compostos de pirrolopirimidina como inibidores da quinase
JO3377B1 (ar) 2013-03-11 2019-03-13 Takeda Pharmaceuticals Co مشتقات بيريدينيل وبيريدينيل مندمج
WO2015017812A1 (en) 2013-08-02 2015-02-05 Pharmacyclics, Inc. Methods for the treatment of solid tumors
WO2015023703A1 (en) 2013-08-12 2015-02-19 Pharmacyclics, Inc. Methods for the treatment of her2 amplified cancer
TN2016000094A1 (en) 2013-09-30 2017-07-05 Pharmacyclics Llc Inhibitors of bruton's tyrosine kinase.
AU2014361798B2 (en) 2013-12-13 2020-06-11 Dana-Farber Cancer Institute, Inc. Methods to treat lymphoplasmacytic lymphoma
AU2014361800B2 (en) 2013-12-13 2020-05-07 Dana-Farber Cancer Institute, Inc. Methods to treat lymphoplasmacytic lymphoma
US9885086B2 (en) 2014-03-20 2018-02-06 Pharmacyclics Llc Phospholipase C gamma 2 and resistance associated mutations
CN105272882B (zh) * 2014-07-23 2019-05-31 欣凯医药化工中间体（上海）有限公司 一种环保简便制备泰瑞米特的方法
EP3174539A4 (en) 2014-08-01 2017-12-13 Pharmacyclics, LLC Inhibitors of bruton's tyrosine kinase
WO2016022942A1 (en) 2014-08-07 2016-02-11 Pharmacyclics Llc Novel formulations of a bruton's tyrosine kinase inhibitor
WO2016065138A1 (en) 2014-10-22 2016-04-28 Dana-Farber Cancer Institute, Inc. Thiazolyl-containing compounds for treating proliferative diseases
AU2016226279B2 (en) 2015-03-03 2021-11-11 Pharmacyclics Llc Pharmaceutical formulations of Bruton's tyrosine kinase inhibtor
US20190105407A1 (en) 2016-03-31 2019-04-11 Takeda Pharmaceutical Company Limited Isoquinolinyl triazolone complexes
WO2018111902A1 (en) 2016-12-12 2018-06-21 Multivir Inc. Methods and compositions comprising viral gene therapy and an immune checkpoint inhibitor for treatment and prevention of cancer and infectious diseases
CA3129665A1 (en) 2019-03-21 2020-09-24 Onxeo A dbait molecule in combination with kinase inhibitor for the treatment of cancer
EP4054579A1 (en) 2019-11-08 2022-09-14 Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale (INSERM) Methods for the treatment of cancers that have acquired resistance to kinase inhibitors
WO2021148581A1 (en) 2020-01-22 2021-07-29 Onxeo Novel dbait molecule and its use

Family Cites Families (11)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE2555685A1 (de) * 1975-12-11 1977-06-23 Hoechst Ag Neue cyanessigsaeureanilid-derivate, verfahren zu ihrer herstellung und diese verbindungen enthaltende mittel
EP0527736B1 (de) * 1990-05-18 1997-04-16 Hoechst Aktiengesellschaft Isoxazol-4-carbonsäureamide und hydroxyalkyliden-cyanessigsäureamide, diese verbindungen enthaltende arzneimittel und deren verwendung
CA2080554A1 (en) * 1991-10-15 1993-04-16 Mitsubishi Chemical Corporation Styrene derivatives
GB9200275D0 (en) * 1992-01-08 1992-02-26 Roussel Lab Ltd Chemical compounds
WO1994014789A1 (en) * 1992-12-23 1994-07-07 Smithkline Beecham Corporation Coumarin derivatives as retroviral inhibitors
GB9322781D0 (en) * 1993-11-04 1993-12-22 Roussel Lab Ltd Aromatic amides
US5700823A (en) * 1994-01-07 1997-12-23 Sugen, Inc. Treatment of platelet derived growth factor related disorders such as cancers
US5489697A (en) * 1994-08-03 1996-02-06 Medichem Research, Inc. Method for the preparation of (+)-calanolide A and intermediates thereof
US5608085A (en) * 1995-02-27 1997-03-04 The University Of Tennessee Research Corporation Synthesis of optically active calanolides A and B and enantiomers and related compounds
AU5259296A (en) * 1995-04-07 1996-10-23 Warner-Lambert Company Flavones and coumarins as agents for the treatment of athero sclerosis
IT1289238B1 (it) * 1996-12-10 1998-09-29 Bio S S P A Ora Bio S S R L Composizioni farmaceutiche per il trattamento di infezioni virali comprendenti una 4 arilcumarina

Cited By (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2010521439A (ja) * 2007-03-14 2010-06-24 ウニベルジタデグリ・ストゥディ・ディ・ミラノ−ビコッカ 上皮腫瘍細胞における薬剤耐性のモジュレータ化合物
KR101791981B1 (ko) * 2007-03-14 2017-11-01 비온실 에스.알.엘. 화학요법 약물-내성 상피성 종양을 치료하기 위한 ｓｉＲＮＡ-매개 유전자 침묵화
JP2011500752A (ja) * 2007-10-23 2011-01-06 エフ．ホフマン−ラ ロシュ アーゲー 新規なキナーゼ阻害剤
WO2009060835A1 (ja) * 2007-11-05 2009-05-14 Kyoto University 新規ユビキリン結合性小分子
JP2013525281A (ja) * 2010-04-05 2013-06-20 マンカインド コーポレ−ション ＩＲＥ−１αインヒビター
JP2017206555A (ja) * 2010-04-05 2017-11-24 マンカインド コーポレ−ション ＩＲＥ−１αインヒビター
JP2015536656A (ja) * 2012-11-28 2015-12-24 コーニング インコーポレイテッド 肝細胞機能の増強のための細胞培養培地
JP2016515592A (ja) * 2013-04-02 2016-05-30 エフ．ホフマン−ラ ロシュ アーゲーＦ． Ｈｏｆｆｍａｎｎ−Ｌａ Ｒｏｃｈｅ Ａｋｔｉｅｎｇｅｓｅｌｌｓｃｈａｆｔ ブルトンチロシンキナーゼの阻害剤
JP2016523858A (ja) * 2013-08-02 2016-08-12 バイオンシル ソシエタ ア レスポンサビリタ リミタータ イン リクイダツィオーネ がんを治療するためのｂｔｋ阻害剤とフルオロウラシルとの併用

Also Published As

Publication number Publication date
ES2222705T3 (es) 2005-02-01
MXPA00010150A (es) 2002-05-14
EP1071658B1 (en) 2004-06-16
EP1071658A2 (en) 2001-01-31
DE69918089T2 (de) 2005-07-14
AU3653099A (en) 1999-11-08
NO20005224L (no) 2000-12-18
CA2328962A1 (en) 1999-10-28
NO20005224D0 (no) 2000-10-17
WO1999054286A3 (en) 2000-05-04
KR20010042804A (ko) 2001-05-25
DE69918089D1 (de) 2004-07-22
WO1999054286A2 (en) 1999-10-28
HUP0102661A2 (hu) 2001-11-28
ATE269295T1 (de) 2004-07-15
IL139080A0 (en) 2001-11-25

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP2002512216A (ja) Ｂｔｋインヒビターならびにその同定方法および使用方法
US6365626B1 (en) BTK inhibitors and methods for their identification and use
EP1158968B1 (en) Jak-3 inhibitors for treating allergic disorders
US6355678B1 (en) Inhibitors of the EGF-receptor tyrosine kinase and methods for their use
US10954198B2 (en) Benzylideneguanidine derivatives and therapeutic use for the treatment of protein misfolding diseases
JP2015532287A (ja) Ｉｒｅ１の調節
EP1163243A2 (en) Calanolides for inhibiting btk
WO2019057175A1 (zh) 治疗或预防肥胖或其相关疾病的化合物及其应用
US10765669B2 (en) Pharmaceutical composition for preventing or treating DYRK-related diseases, containing pyridine-based compound as active ingredient
KR20160115544A (ko) 메트포민을 포함하는 것을 특징으로 하는 난소암 치료 및 예방용 조성물
US9975853B2 (en) Tetrahydroisoquinolinone derivatives and their use in the inhibition of the HSP70 protein
KR20180069732A (ko) 페난트란-락탐계 화합물을 유효성분으로 함유하는 dyrk 관련 질환의 예방 또는 치료용 약학적 조성물