HU217025B - Hepatitis C vírus-(HCV) antigénkészítmények az anti-HCV-antitestek kimutatására immunoassay-kben - Google Patents

Hepatitis C vírus-(HCV) antigénkészítmények az anti-HCV-antitestek kimutatására immunoassay-kben Download PDF

Info

Publication number
HU217025B
HU217025B HU9203146A HUP9203146A HU217025B HU 217025 B HU217025 B HU 217025B HU 9203146 A HU9203146 A HU 9203146A HU P9203146 A HUP9203146 A HU P9203146A HU 217025 B HU217025 B HU 217025B
Authority
HU
Hungary
Prior art keywords
hcv
antigen
domain
epitope derived
cvh
Prior art date
Application number
HU9203146A
Other languages
English (en)
Inventor
Qui-Lim Choo
Michael Houghton
George Kuo
Original Assignee
Chiron Corp.
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Family has litigation
First worldwide family litigation filed litigation Critical https://patents.darts-ip.com/?family=24005897&utm_source=***_patent&utm_medium=platform_link&utm_campaign=public_patent_search&patent=HU217025(B) "Global patent litigation dataset” by Darts-ip is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Application filed by Chiron Corp. filed Critical Chiron Corp.
Publication of HU9203146D0 publication Critical patent/HU9203146D0/hu
Publication of HUT62706A publication Critical patent/HUT62706A/hu
Publication of HU217025B publication Critical patent/HU217025B/hu

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/005Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from viruses
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/576Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor for hepatitis
    • G01N33/5767Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor for hepatitis non-A, non-B hepatitis
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2770/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA ssRNA viruses positive-sense
    • C12N2770/00011Details
    • C12N2770/24011Flaviviridae
    • C12N2770/24211Hepacivirus, e.g. hepatitis C virus, hepatitis G virus
    • C12N2770/24222New viral proteins or individual genes, new structural or functional aspects of known viral proteins or genes

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Communicable Diseases (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Thermistors And Varistors (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Abstract

A találmány tárgya szilárd mátrix felületén immőbilizált hepatitis Cvírűs- (HCV) antigénkészítmény, amely egy vagy több kémiaiszintézissel vagy rekőmbináns kifejezés útján nyert peptidettartalmaz, HCV elleni antitestek imműnőassay-vel történőmeghatárőzására, amely az alábbi antigéneket tartalmazza: a) egy elsőHCV-antigént, mely a HCV-pőliprőtein C dőménjéből származó epitóppalrendelkezik, és b) legalább egy tővábbi HCV-antigént, melyet az alábbicsőpőrtból választanak ki: i) egy, a HCV-pőliprőtein NS3 dőménjébőlszármazó epitóppal rendelkező HCV-antigén; ii) egy, a HCV-pőliprőteinNS4 dőménjéből származó epitóppal rendelkező HCV- antigén; iii) egy, aHCV-pőliprőtein S dőménjéből származó epitóppal rendelkező HCV-antigén; iv) egy, a HCV-pőliprőtein NS5 dőménjéből származó epitóppalrendelkező HCV- antigén. ŕ

Description

A jelen találmány hatáskörébe a HCV (korábban nem A, nem B [Non-A, Non-B] néven ismert) meghatározására alkalmas immunoassay-k tartoznak. Részletesebben olyan HCV-antigénkészítmények, melyek az antiHCV-antitestek meghatározására alkalmas immunoassay-k széles skáláját teszik lehetővé.
A régebben nem A, nem B (Non-A, Non-B; NANBH) hepatitis néven ismert betegségről, melyet vírus által okozott betegségnek hittek, kiderült, hogy örökölhető betegség vagy betegségcsoport, és így megkülönböztethető volt a vírusokhoz kapcsolódó májbetegségek más formáitól, beleértve az ismert hepatitisvírusok által okozott betegségektől, azaz a hepatitis A vírustól (HAV), a hepatitis B vírustól (HBV) és a delta-hepatitisvírustól (HDV) éppúgy, mint a citomegalovírus (CMV), vagy az Epstein-Barr-vírus (EBV) által indukált hepatitistől. A NANBH-t először transzíüzióval kezelt egyéneknél azonosították. Az emberről csimpánzra való átvitel és a csimpánzok közötti sorozatos átvitel azt tette nyilvánvalóvá, hogy a NANBH az átvihető fertőző anyag, illetve anyagok hatására jelentkezik. Epidemiológiailag egyértelmű, hogy a NANBH-nak három típusa fordul elő: a víz által átvitt járványos típus; a vér által átvitt, vagy a parenterálisan átvitt típus; és a szórványosan előforduló (társadalmi igények) típus. Ugyanakkor eddig nem sikerült a NANBH-ért felelős átvihető anyagot azonosítani, és a NANBH klinikai diagnosztizálása és azonosítása elsődlegesen más vírusmarkerek fertőzésének kizárásával történt. Az igazinak vélt NANBH-antigének és antitestek detektálására alkalmas eljárások közé tartozik az agargél-diffiizió, a számlálásos immunoelektroforézis (counterimmunoelectrophoresis), az immunofluoreszcencia-mikroszkópia, az immun-elektronmikroszkópia, a radioimmunoassay, és az ELISA (enzyme-linked immunosorbent assay). Ugyanakkor ezek közül a mérések közül egy sem bizonyult eléggé érzékenynek, specifikusnak és reprodukálhatónak a NANBH diagnosztikai tesztje céljára.
1987-ben a Chiron Corporation kutatói (a jelen találmány tulajdonosa) azonosították az első nukleinsavat, mely definiálhatóan a vér által átvitt NANB-hez kapcsolódik. Lásd EPO Pub. No. 318.216; Houghton és társai, Science 244: 359 (1989). Az említett publikációk egy izolátumnak az új vírusosztályból, a hepatitis C-ból (HCV) való klónozását ismertetik, az itt bemutatott izolátumprototípust „HCVl”-nek nevezték el. A HCV egy RNS-genommal rendelkező, Flavi-szerű vírus.
A 456.637 számú amerikai egyesült államokbeli szabadalmi leírás (Houghton és társai), melyet itt referenciaként említünk, számos rekombináns HCV-polipeptidnek a HCV cDNS expressziója által történő előállítását, és az említett polipeptidek immunológiai reaktivitásának HCV-vel fertőzött betegek szérumával való ellenőrzését ismerteti. Ez a limitált ellenőrzés azt mutatta, hogy a vizsgált polipeptidek közül legalább öt erősen immunogén volt; ezeket mint 5-1-1, Cl00, C33c, CA279a és CA290a polipeptideket azonosították. Ebből az öt polipeptidből az 5-1-1 az igazinak vélt NS4 doménen helyezkedik el; a Cl00 az igazinak vélt NS3 és NS4 dómén között ível át; a C33c az igazinak vélt NS3 doménben helyezkedik el, míg a CA279a és a CA290a az igazinak vélt C doménban helyezkedik el. Az ellenőrzés eredménye azt mutatta, hogy az összes szérummal nemcsak az egyedülálló polipeptid volt immunológiailag reaktív. így tökéletesített tesztek szükségesek, melyek minden, vagy több, a HCV-pozitív egyénekből származó mintával reagálnak.
A feltalálók további szerológiai vizsgálatokat végeztek a HCV-antigénen, melyek megerősítették, hogy az összes szérummal nemcsak az egyedülálló polipeptid volt immunológiailag reaktív. Ennek az univerzálisan minden HCV-fertőzött szérummal reaktív egyedülálló polipeptidnek a hiánya inter alia a HCV-epitópok törzsről törzsre történő megváltozásának, az egyénről egyénre történő humorális válasz megváltozásának és/vagy a betegség szerológiai állapota megváltozásának tulajdonítható.
Ezek a további tanulmányok az egyedülálló HCVpolipeptidnél jóval hatékonyabban detektálható HCV-antitestek detektálására alkalmas HCV-antigénkészítmények azonosítását tették lehetővé a feltalálók számára.
Ennek megfelelően a találmány tárgya szilárd mátrix felületén immobilizált hepatitis C vírus (HCV) antigénkészítmény egy vagy több kémiai szintézissel vagy rekombináns kifejezés útján nyert pepiidben, HCV-nek immunassay-vel történő meghatározására. A készítmény az alábbi antigéneket tartalmazza:
a) egy első HVC antigént, mely a HVC poliprotein C doméjéből származó epitóppal rendelkezik, és
b) legalább egy további HCV-antigént, melyet az alábbi csoportból választhatunk ki:
i) egy, a HCV-poliprotein NS3 doménjéből származó epitóppal rendelkező HCV-antigén;
ii) egy, a HCV-poliprotein NS4 doménjéből származó epitóppal rendelkező HCV-antigén;
iii) egy, a HCV-poliprotein S doménjéből származó epitóppal rendelkező HCV-antigén;
iv) egy, a HCV polipropotein NS5 doménjéből származó epitóppal rendelkező HCV-antigén.
Olyan körülmények között dolgozunk, melyek lehetővé teszik az antitest-antigén reakciót és a detektálást az említett antitesteknek, illetve az említett antigének immunkomplexe jelenlétében.
A találmány kivitelezése során a találmány egy HCV-antigénkészítményt nyújt, mely az antigénekből álló fúziós fehérje formájában van jelen. Egy másik kivitelezés során az antigének készítménye egyéni antigének formájában van jelen, melyek általánosan egy szilárd mátrixhoz kapcsolódnak. Egy további kivitelezés során az antigének készítménye egyéni antigének elegye formájában van jelen.
A továbbiakban a találmány eljárást nyújt HCV-antitesteknek az említett antitesteket feltehetően tartalmazó emlőstestrészekben való detektálására, ahol az említett testrészeket a fent említett HCV-antigénkészítménnyel hozzuk kapcsolatba, olyan körülmények között, melyek lehetővé teszik az antitest-antigén reakciót és a detektálást az említett antitestek, illetve az említett antigének immunkomplexe jelenlétében.
A továbbiakban a találmány in vitro eljárást nyújt a
HCV-antitesteknek az említett antitesteket feltehetően
HU 217 025 Β tartalmazó emlóstestkomponensekben való detektálására, ahol az említett testkomponenseket a fenti készítménnyel hozzuk kapcsolatba egyidejűleg, illetve sorozatban, ahol olyan körülmények között dolguzunk, melyek lehetővé teszik az antitest-antigén reakciót és a detektálást az említett antitestek, illetve az említett antigének immunkomplexe jelenlétében.
A továbbiakban a találmány a HCV-antitesteknek az említett antitesteket feltehetően tartalmazó emlőstestrészekben való detektálására alkalmas mérés kivitelezésére nyújt egy kitet, ahol az említett antitestek kiszerelt készítménye az alábbiakat tartalmazza:
a) a HVC antigének említett készítményét,
b) standard kontrollreagenseket, és
c) utasításokat a mérés kivitelezéséhez.
Az 1. ábra a C-DNS-nek a HCV-poliproteinre nézve érzékeny és nem érzékeny (sense, anti-sense) szálának nukleotidszekvenciáját mutatja be, és az érzékeny szál által kódolt aminosavszekvenciát.
A 2. ábra az 1. ábra aminosavszekvenciájának vázlata, mely a HCV-polipeptid igazinak vélt doménjeit mutatja be.
Definíciók
A „HCV-antigén” a legalább öt aminosavból álló polipeptidekre vonatkozik, általánosabban a legalább 8-10 aminosavból álló polipeptidekre, melyek egy, a HCV izolátumon található epitópot definiálnak. Előnyös esetben az epitóp egyenértékű a HCV-vel. Amennyiben az antigént alfanumerikus kóddal jelöljük, a C dómén epitópját is alfanumerikusán adjuk meg.
A „szintetikus” kifejezés egy HCV-antigén jellemzése esetében arra vonatkozik, hogy a HCV-antigén vagy mesterségesen, például kémiai úton, vagy rekombináns szintézissel lett előállítva.
A „domének” azokra a 2. ábrán látható HCV-poliprotein-szegmensekre vonatkoznak, melyek általánosan a HCV igazinak vélt strukturális és nemstrukturális fehérjéinek felelnek meg. A dómén jelölései általában a flavivirális fehérjéknél megnevezett konvencióknak felelnek meg. A doméneknek a 2. ábrán látható elhelyezkedése csak megközelítés. Az „NS” jelzés „nemstrukturális” doménekre vonatkozik, míg az „S” a burokdoméneket jelöli, és a „C” a nukleokapszid vagy a magdoméneket jelöli.
A „fúziós polipeptid” olyan polipeptidre vonatkozik, melyben a HCV-antigén(ek) a természetben elő nem forduló, egyedülálló, folyamatos aminosavlánc része(i). A HCV-antigének peptidkötéseken keresztül közvetlenül kapcsolódhatnak egymáshoz, vagy közbenső szekvenciák által szeparáltak lehetnek. A fúziós polipeptidek a HCV-vel exogén aminosavszekvenciákat is tartalmazhatnak.
Az „általános szilárd mátrix” szilárd test, melyhez az egyéni HCV-antigének, vagy a HCV-antigéneket tartalmazó fúziós polipeptidek kovalensen, vagy - például hidrofób adszorpcióval - nemkovalensen kapcsolódhatnak.
Az „emlőstestkomponensek” (mammalian body component) emlős eredetű (például humán) testfolyadékra vagy -szövetre vonatkozik, mely általában az egyén által termelt antitesteket tartalmazza. Ezek a testkomponensek a szakmában általánosan ismertek, ilyenek például korlátozások nélkül a vér, a plazma, a szérum, a gerincfolyadék, a nyirokfolyadék, a légzőrendszer szekréciós termékei, a bél- vagy a húgy- és ivarszervi traktus, a könnyek, a nyálka, a tej, a fehérvértestek és a mielómák.
Az „immunológiailag reaktív” kifejezés azt jelenti, hogy a szóban forgó antigén a HCV-vel fertőzött egyén szérumában általában szignifikáns mennyiségben jelen levő anti-HCV-antitesttel specifikusan reagál.
Az „immunkomplex” kifejezés azokra az elegyekre, illetve aggregátumokra vonatkozik, melyek az antitestnek az antigén epitópjával való kapcsolódásakor keletkeznek.
A 2. ábra a HCV-polipeptid igazinak vélt doménjeit mutatja be. A készítményben alkalmazott antigének doménjei az alábbiak: C, S (vagy E), NS3, NS4 és NS5. A C dómén feltehetőleg a HCV-fehérje nukleokapszidját definiálja. Ez az 1. ábrán a polipeptid N-terminusától megközelítőleg 120 aminosav távolságig terjeszkedik. Az S dómén feltehetőleg a virion burokfehérjét és a mátrix- (M) fehérjét határozza meg, és az 1. ábrán megközelítőleg a 120. aminosavtól a 400. aminosavig tart. Az NS3 dómén megközelítőleg az 1050. aminosavtól az 1640. aminosavig tart, és feltehetőleg a virális proteázt alkotja. Az NS4 dómén az NS3 terminusától a 2000. aminosavig tart. Az NS4 fehéije funkciója eddig ismeretlen. Végül az NS5 dómén megközelítőleg a 2000. aminosavtól a poliprotein végéig tart, és feltehetőleg a virális polimerázt határozza meg.
Az 1. ábrán látható szekvencia a HCV1 izolátum szekvenciája. A vér által átvitt HCV-től eltérő törzsek szekvenciája várhatóan eltér az 1. ábrán látható szekvenciától, főleg a burok (S) és a nukleokapszid (C) doméneknél. Az ilyen eltérő szekvenciával rendelkező HCV-antigének alkalmazása szintén a jelen találmány tárgykörébe tartozik, de a változás nem gyengíti szignifikánsan az antigén immunológiai reaktivitását a HCVvel fertőzött egyén szérumával szemben.
A teljes vagy megcsonkított doméneket tartalmazó HCV-antigének, a doménfragmentumok antigenicitása a szakmai gyakorlattal rendelkezők számára könnyen ellenőrizhető. A készítményben alkalmazott HCV-antigének előnyös esetben a meghatározott dómén immundomináns részét is tartalmazzák (azaz azt a részt, mely a polipeptid immunológiai reaktivitásáért elsődlegesen felelős). A C dómén esetén előnyös esetben a C doménantigén a dómén teljes szekvenciájának nagy részét tartalmazza. A C22-ként jelölt antigén (lásd 4. példa, lent) különösképpen előnyös. Az S domén-antigénje előnyös esetben tartalmazza a dómén N-terminális végén levő hidrofób szubdomént. Ez a hidrofób szubdomén megközelítőleg a 199. aminosav és a 328. aminosav között helyezkedik el az 1. ábrán. Az S2-vel jelölt HCV-antigén (lásd 3. példa, lent) különösképpen előnyös. A hidrofób szubdomén azonos irányú szekvenciája igény esetén szintén az S domén-antigénjébe tartozik.
Egy előnyben részesített NS3 domén-antigén a C33c jelzéssel ellátott antigén. Ez az antigén az 1. ábrán az
HU 217 025 Β
1192-1457. aminosavakat tartalmazza. Egy előnyben részesített NS4 antigén a C100 jelzéssel ellátott antigén, ami az 1. ábrán a 1569-1931. aminosavakat tartalmazza. Egy előnyben részesített NS5 antigén, ami az 1. ábrán a 2054-2464. aminosavakat tartalmazza.
A HCV-antigén polipeptid formájában fordulhat elő, mely teljes mértékben a HCV-aminosav-szekvenciából áll, vagy a HCV-vel exogén szekvenciát tartalmazhat (azaz exogén szekvenciát tartalmazó fúziós fehéije formájában fordulhat elő). Rekombinánsan előállított HCVantigén esetén az antigén fúziós fehéijeként történő előállítása, mint például SÓD, α-faktor, vagy ubiquitin (lásd a 4.751.180, a 4.870.008 számú egyesült államokbeli szabadalmi leírásokat, melyek ismertetik a SÓD, az α-faktor és az ubiquitin fúziós fehérjék expresszióját) fokozhatja az antigén expressziójának mértékét és/vagy fokozhatja az antigén vízoldhatóságát. A fúziós fehérjék, például az α-faktor vagy az ubiquitin fúziója a gazda expressziója által történik, melynek során az eltávolítja a heterológ szekvenciát. Az α-faktor egy szekréciós rendszer, míg az ubiquitin a citoplazmában marad.
Az antigénkészítmények előállítása továbbá fúziós fehéijeként is történhet. így például a C22-t és a C33c-t kódoló folyamatos DNS-fragmentum megszerkesztése egy expressziós vektorba klónozással történhet, és a C22 és C33c fúziós fehérje expresszálására alkalmazható. Hasonló módon hozhatjuk létre a Cl00-ból származó C22 fúziós fehérjét; az S2-ből származó C22-t; a C22 és egy NS5 antigént; a C22-t, a C33c-t és az S2-t; a C22-t, a ClOO-at és az S2-t; a C22-t, a C33c-t, a ClOO-at és az S2-t. A bemutatott domének alternatív fragmentumait is alkalmazhatjuk.
A találmány szerinti HCV-antigének előállítása előnyös esetben rekombináns úton, vagy jól ismert szilárd fázisú kémiai eljárással történhet. Ugyanakkor az antigének a disszociált HCV-ből vagy HCV-részecskékből affinitáskromatográfiával izolált antitestekkel szemben termeltek is lehetnek.
Amennyiben az előállítás rekombináns technikával történik, a standard eljárások során az antigént kódoló cDNS megszerkesztése, a DNS expressziós vektorba klónozása, a gazdasejt - például a baktérium - transzformálása és az ilyen, az antigént termelő DNS expresszálása alkalmazható. Amint fent említettük, kívánatos lehet az antigén fúziós fehérjeként történő expresszálása, így az expresszió fokozható, a tisztítás megkönnyíthető és az oldhatóság fokozható. A HCV-antigének előállítására alkalmas eljárásokat az alábbi példákban és a 456.637 sorozatszámú szabadalmi sorozatban ismertetjük.
A HCV-antigéneket két vagy több antigénből álló fúziós fehéije formájában történő elegyítéssel, általános szilárd mátrixon egyéni immobilizálással vagy fizikai keveréssel elegyíthetjük. Az antigén fúziós fehérjéit szintén a szilárd mátrixon (hozzákötéssel) immobilizálhatjuk. A fehérjéknek a szilárd mátrixhoz kovalensen, illetve nem kovalensen való hozzákapcsolása céljából alkalmazható eljárások és módszerek a szakmában jól ismert eljárások. A szilárd felület természete a mérés formátuma szerint változik. A mikrotiterlyukakban végzett mérés során a szilárd felület a lyuk fala vagy teteje lehet. A gyöngyöket alkalmazó mérés során a szilárd felület a gyöngyök felszíne lesz. A „dipstick”-et alkalmazó mérések során (azaz amikor a szilárd testet pórusos vagy szálas anyagból, például szövetből vagy papírból állítjuk elő) a felszín annak az anyagnak a felülete lesz, melyből a „dipstick”-et készítettük. Az agglutinációs mérések során a szilárd felület a latex- vagy a zselatinrészecskék felszíne lesz. Amennyiben a mátrixhoz egyéni antigéneket kötünk, azok a felületen homogénen szétoszolhatnak, illetve valamilyen minta szerint, így például sávokban, ami megkönnyíti az antigénkötések észrevételét.
Az egyszerű antigénelegyek az antigént megfelelő oldószerben vagy diszpergálóközegben tartalmazzák.
A HCV-antigéneket gyakorlatilag olyan mérésekben alkalmazhatjuk, melyek egy ismert antigént alkalmaznak az antitestek detektálására. Ezeknek a méréseknek általános jellemzője az, hogy az antigént a HCVantitesteket feltehetően tartalmazó emlőstestkomponensekkel hozzuk kapcsolatba, olyan körülmények között, melyek lehetővé teszik, hogy az antigén valamely ilyen, a testkomponensben jelen levő antitesthez kapcsolódjon. Ezek a körülmények a fiziológiai hőmérséklet, a pH és az antigénfelesleget alkalmazó ionerősség. Az antigénnek a mintával történő inkubálását az antigént tartalmazó immunkomplex detektálása követi.
Az immunoassay-k tervezése során számos változtatás léphet fel, és a szakmában számos változat ismert, így például szilárd támasztékot alkalmazó, illetve immunocsapadék-képzéses eljárást alkalmazhatunk. A legtöbb mérés jelzett antitestet vagy polipeptidet alkalmaz; a jelzés enzimes, fluoreszcens, kemilumineszcens, radioaktív vagy festékmolekula lehet. Olyan mérések is ismeretesek, melyek biotint, avidint alkalmaznak, vagy enzimmel jelzett és közvetített immunoassay-k, mint például az ELISA.
Az immunoassay kivitelezése, korlátozások nélkül, homogén vagy heterogén formában történhet, standard vagy kompetitív módon. A heterogén formánál a polipeptidet szilárd mátrixhoz vagy támasztékhoz kapcsoljuk, ami megkönnyíti az inkubálás után a mintának a polipeptidtől történő elválasztását. A szilárd támasztékok nitro-cellulóz (azaz membrán- vagy mikrotiterlyukforma), poli(vinil-klorid) (azaz ívek vagy mikrotiterlyukak), polisztirén-latex (azaz gyöngyök vagy mikrotiterlemezek), poli(vinil-fluorid) („Immulon” néven ismert), diazotált papír, nejlonmembránok, aktivált gyöngyök és Protein A gyöngyök lehetnek. így például a heterogén formáknál Dynatech Immulon™ 1 vagy Immulon™ 2 mikrotiterlemezeket, vagy 0,25 inch átmérőjű polisztirolgyöngyöket (Precision Plastic Ball) alkalmazhatunk. Az antigenikus polipeptideket tartalmazó szilárd támaszték mosása általában a vizsgálandó minta eltávolítása és a kötött antitestek eltávolítása után történik. A szakmában mind a standard, mind a kompetitív forma általánosan ismert.
Homogén forma esetén a vizsgálandó mintát az antigénkészítmény oldatával inkubáljuk. Például olyan körülményeket alkalmazhatunk, melyek mellett a képződő
HU 217 025 Β antigén-antitest komplex kicsapódik. Ezeknél a méréseknél a szakmában mind a standard, mind a kompetitív forma általánosan ismert.
A standard forma esetén az antigén-antitest komplexet képző HCV-antitestek mennyiségét közvetlenül ellenőrizzük. Ezt az anti-HCV-antitestek epitópját felismerő, jelzett antixenogenikus (például antihumán) antitestek meghatározásával végezhetjük, melyek felismerik az anti-HCV-antitesteknek a komplexképződés következtében kapcsolódott epitópját. A kompetitív forma esetén a mintában levő HCV-antitestek mennyiségére a komplexben levő, ismert mennyiségű, jelzett antitest (vagy egyéb kompetitív ligandum) kötésének kompetitív hatásából következtetünk.
Az anti-HCV-antitestet (vagy kompetitív mérés esetén a kompetitív antitestet) tartalmazó komplexek képződését a formától függően számos jól ismert eljárással detektálhatjuk. így például a komplexben lévő, nem jelzett HCV-antitesteket antixenogenikus Ig-konjugátum alkalmazásával detektálhatjuk, mely egy jelzéssel (azaz egy enzimjelzéssel) képzett komplex.
Immunocsapadék-képzéses vagy agglutinációs mérés esetén a HCV-antigének és -antitestek közötti reakció során háló keletkezik, ami az elegyből vagy a szuszpenzióból kicsapódik, és így látható csapadékréteg vagy -film képződik. Amennyiben anti-HCV-antitest nincs jelen a vizsgálandó mintában, nem képződik látható csapadék.
Az említett immunoassay-k céljára a HCV-antigének kiszerelése kitekben történik. A kit általában különálló edényekben tartalmazza az antigének készítményét (vagy mindegyiket szilárd mátrixhoz kötve, vagy szeparálva azokkal a reagensekkel, melyek azoknak a mátrixhoz kötődését segítik), a kontroll antitestkészítmény (pozitív és/vagy negatív), amennyiben a méréshez azonos és jelképző reagensek szükségesek, és a jelzés közvetlen jelt nem hoz létre, jelzett antitesteket (azaz enzimszubsztrátot). A mérés kivitelezéséhez szükséges utasítások (azaz leírások, magnetofonszalag, VCR, CDROM stb.) szintén a kithez tartoznak.
Az alábbi példák a találmányt szemléltetik minden korlátozás nélkül. A pl, p35 és p99 peptideket az EP 90125342 számú leírás, a CA 290a peptidet a WO 90/11089 számú irat ismerteti.
1. példa: A C33c HCV-antigén szintézise
A C33c HCV-antigén az NS3 dómén szekvenciáját tartalmazza. Ez speciálisan az 1. ábrán látható 1192-1457. aminosavakat tartalmazza. Az antigént baktériumban állítottuk elő, fúziós fehéije formájában, humán szuperoxid-diszmutáz (SÓD) alkalmazásával, az alábbiak szerint. A pSODcfl vektort [Steiner és társai (1986), J. Virol. 58:9] EcoRI és BamHI alkalmazásával tártuk fel, és a keletkezett EcoRI, BamHI fragmentumot az alábbi linkerhez ligáltuk, melynek eredményeképpen pcflEF keletkezett:
GATC CTG GAA TTC TGA TAA
GAC CTT AAG ACT ATT TTA A
A 1192-1457. aminosavakat kódoló és EcoRI végeket tartalmazó cDNS-klónt pcflEF-be illesztettük, így pcflEF/C33c-t kaptunk. Az expressziós szerkezetet D1210 E. coli sejtekbe transzformáltuk.
A transzformátumokat egy fúziós fehéije expreszszálására használtuk, ami keretben (in frame) az N-terminusán SOD-ot, és a C-terminusán C33c antigént tartalmazott. Az expresszálás ampicillint (100 pg/ml) tartalmazó, 1500 ml mennyiségű Luria táptalajon (Luria broth) történt, a transzformáns 15 ml mennyiségű, egyéjszakás tenyészetével. A sejtek 0,3 O. D.-ig növekedtek, 2 mM végső koncentráció eléréséig IPTG-t adtunk hozzá, és a tenyésztést addig folytattuk, míg a sejtek az 1 O. D.-t elérték, ezután 3000 xg mellett, 4 °C-on, 20 perces centrifugálással összegyűjtöttük a sejteket. A kiszerelt sejteket -80 °C-on több hónapig tároltuk.
A SOD-C33c polipeptid megtisztítása céljából a baktériumsejteket, melyekben a polipeptidet expreszszáltuk, ozmotikus hatásnak vagy mechanikai feltárásnak vetettük alá, a SOD-C33c-t tartalmazó oldhatatlan frakciót izoláltuk, alkalikus foszfatázzal differenciálóextrakciónak vetettük alá, és az extraktumban levő fúziós fehéijét S-Sepharose és Q-Sepharose oszlopokon kromatográfiásan tisztítottuk.
Az ozmotikus hatásnak vagy mechanikai feltárásnak eredményeképpen kapott nyersextraktumot az alábbi eljárással dolgoztuk fel. A kiszerelt sejtek egy grammját 10 ml mennyiségű, 0,02 M Tris-HCl-t, pH 7,5, 10 mM EDTA-t és 20% szukrózt tartalmazó oldatban felszuszpendáltuk, és 10 percig jégen inkubáltuk. Ezután a sejteket 4000xg mellett, 4 °C-on, 15 perces centrifugálással pelletizáltuk. A felülúszó eltávolítása után a sejtpelletet 10 ml Al pufferben (0,01 M Tris-HCl, pH 7,5, 1 mM EDTA, 14 mM β-merkapto-etanol [BME]) felszuszpendáltuk, és 10 percig jégen inkubáltuk. A sejteket 4000xg mellett, 4 °C-on, 15 perces centrifugálással ismét pelletizáltuk. A tiszta felülúszó (I. periplazmikus frakció) eltávolítása után a sejtpelletet Al pufferben felszuszpendáltuk, 10 percig jégen inkubáltuk, majd 4000xg mellett, 4 °C-on, 15 perces centrifugálással ismét pelletizáltuk. A tiszta felülúszó (II. periplazmikus frakció) eltávolítása után a sejtpelletet A2 pufferben (0,02 M Tris-HCl, pH 7,5, 1 mM EDTA, 14 mM BME, 1 mM PMSF) felszuszpendáltuk. A sejtek feltárása céljából a szuszpenziót (5 ml) 7,5 ml Dyno-mill ólommentes savval mosott üveggyöngyökre (átmérő 0,10-0,15 mm) (beszerezve a Glen-Mills, Inc. cégtől) vittük Falcon-csőben, és két percig a legnagyobb sebességgel kevertük, majd legalább két percig jégen hűtöttük; a keveréses-hűtéses eljárást további négyszer megismételtük. A keverés után kapott szuszpenziót kis erősséggel üvegtölcséren szűrtük át; az üveggyöngyöket A2 pufferrel kétszer átmostuk, majd a szűrletet és a mosófolyadékot elegyítettük.
A nyersextraktum oldhatatlan frakcióját 4000xg mellett, 4 °C-on, 15 perces centrifugálással összegyűjtöttük, 10 ml mennyiségű A2 pufferrel kétszer mostuk, és 5 ml mennyiségű MILLI-Q vízzel felszuszpendáltuk.
A SOD-C33c-t tartalmazó frakciót NaOH-nak (2 M) és NaCl-nek (2 M) a szuszpenzióhoz történő hozzáadásával, úgy, hogy mindegyiknek 20 mM volt a végső koncentrációja, elválasztottuk az oldhatatlan
HU 217 025 Β anyagtól, az elegyet 1 percig kevertük, 20 000xg mellett, 4 °C-on, 20 percig centrifugáltuk, és a felülúszót visszatartottuk.
A SOD-C33c S-Sepharose oszlopon történő megtisztítása céljából a felülúszó frakciót 6 M urea, 0,05 M Tris-HCl, pH 7,5, 14 mM BME és 1 mM EDTA végső koncentrációra állítottuk be. Ezt a frakciót vittük fel a S-Sepharose Fást Flow (1,5 χ 10 cm) oszlopra, melyet B pufferrel (0,05 M Tris-HCl, pH 7,5, 14 mM BME és 1 mM EDTA) ekvilibráltunk. A minta felvitele után az oszlopot két oszloptérfogatnyi B pufferrel mostuk. Az átfolyó és a mosófrakciókat összegyűjtöttük. A felvitel és a mosás során 1 ml/perc folyadékrátát alkalmaztunk; az összegyűjtött frakciók térfogata 1 ml volt. A SODC33c-t tartalmazó frakciók azonosítása céljából aliquot frakciókat analizáltunk gélelektroforézissel, SDS-t tartalmazó 10%-os poliakrilamid gélen, majd Coomassie kékkel festettük azt. A frakciók Western biot eljárással is analizálhatók, közvetlenül a SÓD ellen termelt antitestek alkalmazásával. A SOD-C33c-t tartalmazó frakciókat pooloztuk.
A SOD-C33c további tisztítása Q-Sepharose oszlopon (1,5x5 cm) történt, melyet B pufferrel ekvilibráltunk. A poolozott, SOD-C33c-t tartalmazó frakciókat, melyeket az S-Sepharose oszlopon végzett kromatográfia eredményeként kaptunk, felvittük az oszlopra. Az oszlopot ezután B pufferrel mostuk, és 60 ml mennyiségű 0,0-0,4 M NaCl B pufferben levő oldatával eluáltuk. A felvitel, a mosás és az elúció során 1 ml/perc folyadékrátát alkalmaztunk; az összegyűjtött frakciók térfogata 1 ml volt. Minden, a Q-Sepharose oszlopon kapott frakciót az S-Sepharose oszlopnál ismertetett eljárás szerint analizáltunk. Az oszlopon eluált SOD-C33c csúcsot 0,2 M NaCl-nél kaptuk.
A Q-Sepharose oszlopon kapott SOD-C33c tisztasága 90% felett volt, amit a poliakrilamid gélek és a humán SÓD ellen termelt monoklonális antitesteket alkalmazó immunobiot eljárások is alátámasztottak.
2. példa: A HCV Cl00 antigén szintézise
A HCV C100 antigén az NS3 és az NS4 doménekből származó szekvenciákat tartalmazza. Az 1. ábrán a 1569-1931. aminosavakat tartalmazza. Ezt az antigént élesztőben termeltük. A fenti aminosavakat kódoló 1270 bp-ból álló, EcoRI terminussal rendelkező cDNSffagmentumot előállítottuk.
Az élesztő expressziós vektor megszerkesztése, melynek során ezt a fragmentumot közvetlenül a S.
cerevisiae ADH2/GAP promoterbe fuzionáltuk, egy olyan eljárás során történt, ami a C100 szekvencia PCReljárással történő amplifikációjából áll. A klónozás után a C100 szekvenciát kivágtuk, és egy, az ADH2/GAP promotert tartalmazó szekvenciával ligáltuk az élesztő15 vektor nagyobb fragmentumához.
A C100 PCR-amplifikációja során vektorként Ps3-56cl00m vektort alkalmaztunk, melyet Sall-es feltárással linearizáltunk. A pS3-56 egy pBR322— származék, ami a humán szuperoxid-diszmutáz-gén
ADH2/GAPDH hibrid élesztőpromoter ellentétesen haladó ágát tartalmazó expressziós kazettát, valamint egy azonos irányban haladó a-faktor transzkripciós terminátort tartalmaz.
Az amplifikáció céljából alkalmazott oligonukleotid primereket az expressziós vektorba való klónozás megkönnyítésére és egy transzlációs terminátorkodon beviteléhez terveztük. Az új 5’-HindlII és 3’-Sáli helyek előállítása a PCR-oligonukleotidokkal történt. A Sáli helyeket tartalmazó oligonukleotidok tehát a kettős terminátorkodont kódolják, ami a következő: TAA és TGA. A HindlII helyeket tartalmazó oligonukleotidok tehát egy, a pgap63 génből származó, le nem fordított szekvenciát tartalmaznak, ami az AUG kodonnal közvetlenül ellentétes irányban helyezkedik el.
A pEco63GAPDH gént Holland és Holland (1980), valmint Kniskem és társai (1986) ismertetik. A C100 közvetlen expressziója céljából az alábbi PCR-primereket alkalmaztuk:
’5 GAG TGC TCA AGC TTC AAA ACA AAA TGC CTC ACT TTC TAT CCC AGA CAA AGC AGA GT 3’ és ’5 GAG TGC TCG TCG ACT CAT TAG GGG GAA ACA TGG TTC CCC CGG GAG GCG AA 3’.
A PCR-amplifikáció céljából alkalmazott primerek és templátok a Cetus-Perkin-Elmer PCR-kitből származtak, az eljárást a gyártó utasításai szerint hajtottuk végre. A PCR-t 29 ciklusban, 94 °C-on egy perc alatt, 37 °C-on két perc alatt, és 72 °C-on tíz perc alatt hajtottuk végre; a végső inkubálás 72 °C-on tíz percig tartott. A DNS-t -4 °C-on vagy -20 °C-on egy éjszakán keresztül tároltuk.
Az amplifikáció után a PCR-terméket HindlII és Sáli alkalmzásával tártuk fel. Az 1,1 kb méretű főterméket gélelektroforézissel tisztítottuk meg, és az eluált tisztított terméket egy, a pBR322-ből származó nagy Sall-HindlII fragmentummal ligáltuk. A megfelelő rekombinánsok izolálása céljából kompetens HB101 sej50 teket transzformáltunk a rekombináns vektorokkal, és a klónozás után a klónból kivágott Sall-HindlII fragmentumok előre várt mérete alapján azonosítottuk a kívánt rekombinánsokat. A kiónok egyikét, mely a megfelelő mérettel rendelkező Sall-HindlII fragmentumot tartalmazta, pBR322/C100d-nek neveztük el. Azt, hogy ez a klón az amplifikált ClOO-at tartalmazta, a Sall-Híndül fragmentum közvetlen szekvenciaanalízisével erősítettük meg.
A ClOO-at tartalmazó expressziós vektort a pBR322/C 100 d-ből származó Sall-HindlII fragmentumot egy 13,1 kb méretű, a pBS24.1 BamHI-Sall ffagentumhoz, és egy, az ADH2/GAP promotert tartalmazó 1369 bm BamHI-HindlII fragmentumhoz ligáltuk.
HU 217 025 Β (Az utóbbi fragmentumot az EPO 164.566 ismerteti.) A pBS24.1 vektort az U. S. S. N. 382.805 számú leírás ismerteti (1989. július 19.) Az ADH2/GAP promotert a vektor pPGAP/AG/HindlII HindllI és BamHI alkalmazásával történő feltárásával és a 1369 bp méretű fragmentum gélen történő tisztításával kaptuk.
A kompetens HB101 sejteket transzformáltuk a rekombináns vektorokkal; a megfelelő rekombinánst egy 2464 bp méretű fragmentum és egy 13,1 bp méretű fragmentum létrehozásával azonosítottuk, melyeket a klónozott vektor BamHI és Sáli alkalmazásával történő feltárásával kaptunk. A megfelelő klónozott rekombináns vektorok egyikét pClOO d#3-nak neveztük el.
A Cl00 expresszálása céljából a Saccharomyces cerevisiae AB122 (MATa leu2 ura3-53 prb 1-1122 pep4-3 prcl-407[cir-0]) kompetens sejtjeit a pC100 #3 expressziós vektorral transzformáltuk. A transzformált sejteket URA-szorbitolra vittük, és az egyes transzformánsokat csíkok formájában Leu lemezekre vittük fel.
Az egyes ki ónokat Leu , ura közegben tenyésztettük, 2% glükóz jelenlétében, 30 °C-on, 24-36 óráig. 2% glükózt tartalmazó, egy liter mennyiségű Yeast Extráét Peptone Médiumot (élesztőextraktumos pepton tápközeg) 10 ml egyéjszakás tenyészettel inokuláltunk, és a kapott tenyészetet 30 °C-on, 400 rpm keverési ráta és 1 1 levegő/1 1 közeg/perc (azaz lvvm) levegőráta mellett 48 órán keresztül hagytuk növekedni. A fermentor pH-ját nem ellenőriztük. A tenyészetet a New Brunswick Science Corp. által gyártott BioFlo II fermentorban tenyésztettük. A fermentáció után a sejteket izoláltuk, és Cl00 expressziójukat meghatároztuk.
Az expresszált Cl00 polipeptid analízisét a transzformáit sejtekkel végeztük, teljes sejtlizátumon, és a nyersextraktumokat különálló élesztőtelepekről nyertük, melyeket a Leu lemezekről kaptunk. A sejtbzátumot és a nyersextraktumot SDS poliakrilamid gélen gélelektroforézissel és Western biot eljárással vizsgáltuk meg. A Western biot eljárást élesztőben expresszált SODC100 polipeptiddel szemben termelt nyúl-poliklonálisantitestekkel hajtottuk végre. A C100 polipeptid előre várt mérete 364 aminosav volt. Az expresszált polipeptidek a gélelektroforézis alapján MWr 39,9 K értékkel rendelkeztek.
Minden bemutatott analitikai eljárás azt bizonyítja, hogy az expresszált Cl00 polipeptid a teljes sejtlizá15 tumban jelen volt, míg a nyersextraktumból hiányzott. Az eredmények szerint az expresszált Cl00 polipeptid feltehetőleg oldhatatlan.
3. példa: A HCVS2 antigén expressziója
A HCV S2 antigén az S dómén hidrofób N-terminusa szekvenciáját tartalmazza. Ez az 1. ábrán a 199-328. aminosav.
Az S2 polipeptidet kódoló expressziós vektor létrehozásának eljárása és élesztőben való expressziója hasonló volt a C100 polipeptid expressziójának 2. példában ismertetett eljárásával.
A PCR-reakció templátja a pBR322/Pil4a vektor volt, amit HindlII-al végzett feltárással linearizáltunk. A Pil4a a 199-328. aminosavakat kódoló cDNSklón.
Az S2-t kódoló szekvencia PCR-amplifíkációja során primerként alkalmazott oligonukleotidok szekvenciája az alábbi volt.
Az S2 szekvencia 5’-régiójára:
5’ GAG TGC TCA AGC TTC AAA ACA AAA TGG GGC TCT
ACC ACG TCA CCA ATG ATT GCC CTA AC 3’ az S2 szekvencia 3’-régiójára:
’5 GAG TGC TCG TCG ACT CAT TAA GGG GAC CAG TTC
ATC ATC ATA TCC CAT GCC AT 3’.
Az 5’-terület primerje egy HindllI helyet és egy ATG startkodont visz be az amplifikált termékbe. A 3’terület primerje egy transzlációs stopkodont és egy Sáli helyet visz be az amplifikált termékbe.
A PCR-t 29 ciklusban, 94 °C-on egy perc alatt, 37 °C-on két perc alatt, és 72 °C-on tíz perc alatt hajtottuk végre; a végső inkubálás 72 °C-on tíz percig tartott.
A PCR-reakció fő terméke egy 413 bp-ból álló fragmentum volt, melyet gélen tisztítottunk meg. A tisztított fragmentumot egy, a HindllI és a Sáli fragmentummal feltárt, a pBR322-ből származó nagyobb fragmentumhoz ligáltuk, így kaptuk a pBR322/S2d plazmidot.
A 413 bp méretű HindlII-Sall S2 fragmentumnak az ADH2/GAP promotert tartalmazó 1,36 bp méretű BamHI-HindlII fragmentummal és a pBS24,l élesztővektor nagyméretű BamHI-Sáli fragmentumával történő ligálása eredményeképpen rekombináns vektorokat 45 kaptunk, melyeket klónoztunk. A megfelelő rekombináns vektorokat a BamHI-el és a Sall-el történő feltárás után egy 1,7 kb fragmentum jelenlétével azonosítottuk.
Egy, az amplifikált szekvenciából létrehozott expressziós vektort, és egy, közvetlenül az ADH2/GAP promoterbe fuzionált S2-t kódoló szekvenciát azonosítottunk mint pS2d#9.
4. példa: A HCVC antigén szintézise
A HCV C22 antigén a C doménről származik. Ez az
1. ábrán az 1 -122. aminosav.
A C polipeptidet kódoló expressziós vektor létrehozásának eljárása és élesztőben való expressziója az alábbi eltéréseken kívül hasonló volt a C100 polipeptid expresszíójának a 2. példában ismertetett eljárá60 sával.
HU 217 025 Β
A PCR-reakció templátja a pBR322/Ag30a vektor volt, amit HindlII-mal végzett feltárással linearizáltunk. Az Ag30a az 1-122. aminosavakat kódoló cDNS-klón.
A C szekvencia 5’-régiójára:
5’ GAG TGC AGC TTC AAA ACA AAA TGA ATC CTA AAC CTC AAA AAA AAA AC : és
A C szekvencia 3’-régiójára:
’5 GAG TGC TCG TCG ACT CAT TAA CCC GAC CTA CGC CGG GGG TCT GT 3’.
Az 5’-terület primerje egy HindlII helyet visz be az amplifikált termékbe, míg a 3’-terület primerje egy 15 transzlációs stopkodont és egy Sáli helyet visz be az amplifikált termékbe. A PCR-t 29 ciklusban, 94 °C-on egy perc alatt, 37 °C-on két perc alatt, és 72 °C-on tízperc alatt hajtottuk végre; a végső inkubálás 72 °C-on tíz percig tartott. 20
A PCR-reakció fő terméke egy 381 bp-ból álló fragmentum volt. Ennek a fragmentumnak a pBR322 nagy Sall-HindlII fragmentummal történő ligálása a pBR322/C2 plazmidot eredményezte.
A 381 bp méretű HindlII-Sall C-nek, mely a 25 pBR322/C2-ből kivágott fragmentumot kódolja, az ADH2/GAP promotert tartalmazó, 1,36 bp méretű BamHI-HindlII fragmentummal és a pBS24.1 élesztővektor nagyméretű BamHI-Sall fragmentumával történő ligálása eredményeképpen rekombináns vektorokat 30 kaptunk, melyeket klónoztunk. A megfelelő rekombináns vektorokat a BamHI-gyel és a Sall-gyel való feltárás után egy 1,74 kb fragmentum jelenlétével azonosítottuk. Egy, az amplifikált szekvenciából létrehozott expressziós vektort és egy, közvetlenül az ADH2/GAP 35 promoterbe fuzionált C-t kódoló szekvenciát azonosítottunk mint pC22.
Az expresszált C polipeptid analízisét a transzformált sejtekkel végeztük, teljes sejtlizátumon, és a nyersextraktumokat különálló élesztőtelepekről nyertük, melye- 40 két a Leu lemezekről kaptunk. A sejtlizátumot és a nyersextraktumot SDS poliakrilamid gélen gélelektroforézissel vizsgáltuk meg. A C polipeptid előre várt mérete 122 aminosav volt. Az expresszált polipeptidek a gélelektroforézis alapján MWr 13,6 Kd értékkel rendelkeztek. 45
5. példa: Az NS5 polipeptid szintézise
Ez a polipeptid az NS5 dómén N-terminusának szekvenciáját tartalmazza. Az NS5 polipeptidet kódoló expressziós vektor létrehozásának eljárása és expresz- 50 sziója az alábbi eltéréseken kívül hasonló volt a C33c polipeptid expressziójának az 1. példában ismertetett eljárásával.
6. példa: Radioimmunoassay (RIA) a HCV-antitestekre 55
Az 1 -5. példában említett HCV-antigéneket RIA-eljárással vizsgáltuk, így detektáltuk a klinikailag HCVbetegnek diagnosztizált (nem A, nem B [Non-A, NonB]) egyének szérumában és fizetett vérdonorok szérumában a HCV ellen termelt antitesteket. 60
A C-t kódoló szekvencia PCR-amplifíkációja során primerként alkalmazott oligonukleotidok szekvenciája az alábbi volt.
GCA CGA
AAA TTG CGC
A RIA Tsu és Herzenberg (1980) eljárásán alapul; Selected Methods in Cellular Immunology (W. H. Freeman & Co.), pp. 373-391. Az eljárás lényege az alábbi. Mikrotiterlemezeket tisztított HCV-antigénnel vonunk be (coating). A bevont lemezeket a szérummintával vagy megfelelő kontrollal inkubáljuk. Az inkubálás alatt az antitestek, amennyiben jelen vannak a rendszerben, immunológiailag hozzákötődnek a szilárd fázisú antigénhez. A nem kötött anyag eltávolítása és a mikrotiterlemezek mosása után a humán antitest-NANBV antigénkomplexeket 125I-jelzett birkaanti-humán immunoglobulinnal történő inkubálással detektáljuk. A nem kötött jelzett antitesteket leszívással távolítjuk el, és a lemezeket mossuk. Az egyes lyukakban meghatározzuk a radioaktivitást; a kötött humán anti-HCV-antitestek mennyisége arányos a lyukakban mért radioaktivitás-értékekkel.
Részletesen az eljárást az alábbi módon hajtjuk végre. 100 μΐ mennyiségű, 0,125 M Na-borát-pufferben, pH 8,3 és 0,075 M NaCl-ben (BBS) 0,1-0,5 pg HCV-antigént tartalmazó aliquot mennyiségeket viszünk az egyes lyukakba a mikrotiterlemezekre (Dynatech Immulon 2 Removawell Strips). A lemezt egy éjszakán keresztül 4 °C-on nedves kamrában inkubáljuk, az antigénoldatot eltávolítjuk, és a lyukakat 3szor 0,02% Triton Χ-100-at tartalmazó BBS-sel mossuk. A nemspecifikus kötések megakadályozása céljából a lyukakat szarvasmarha-szérumalbuminnal (BSA) vonjuk be, 100 μΐ 5 mg/ml koncentrációjú BSA BBSben készített elegyének a bevitelével, majd a lemezeket egy órán keresztül szobahőmérsékleten inkubáljuk; az inkubálás után a BSA-oldatot eltávolítjuk. A bevont lyukakban levő antigének a szérummal reagálnak a 100 μΐ mennyiségű, 1:100 hígítású, 10 mg/ml BSA-t tartalmazó, 0,01 M Na-foszfát-pufferben, pH 7,2, 0,15 M NaCl-ben készült szérummintákkal a szérumot tartalmazó lyukak 1 órás, 37 °C-on történő inkubálása alatt. Az inkubálás után a szérummintákat leszívással eltávolítjuk, és a lyukakat BBST-vel ötször mossuk. Az antigénhez kötött antitestek mennyiségét 125I-jelzett F’(ab)2 birka-anti-humán IgG-nek a bevont lyukakhoz kötődése által határozzuk meg. Az egyes lyukakhoz hozzáadjuk a jelzett anyag 100 μΐ-es aliquot mennyiségeit (fajlagos aktivitás 5-20 pCi/pg), a lemezeket 1 órán keresztül 37 °C-on inkubáljuk, és az anyagfelesleget leszívással távolítjuk el, majd a lemezt BBST-vel ötször mossuk. Az egyes lyukakban
HU 217 025 Β kötött radioaktivitás mértékét τ-sugárzást detektáló számlálóval határozzuk meg.
Az 1. táblázat a HCV-fertőzöttnek diagnosztizált egyének szérumának vizsgálati eredményeit mutatja be.
1. táblázat
Beteg Antigén
S2 C22 C100 C33c NS5
CVH IVDA P P P(+ ++) P P
CVH IVDA P P P(+) P P
CVH IVDA P P P(+) P P
CVH NOS P P P P P
AVH NOS HS N N N N N
AVH NOS HS P N N N N
AVH NOS HS P N N N N
AVH NOS HS P/N N N N N
AVH PTVH N N N P/N N
AVH NOS HS N N N N N
AVH NOS N N N N P
AVH PTVH N N N N N
AVH IVDA N P N P P
AVH PTVH P P/N N N P
AVH NOS N P N N N
AVH IVDA N P N P P
AVH NOS HS P/N N N N N
AVH PTVH N N N N N
CVH IVDA P P P P P
CVH IVDA P P P P P
AVH NOS HS N N N N N
CVH PTVH P P N N N
AVH PTVH P N P(+) P(+ + +) N
CVH PTVH N P P P P
CVH NOS HS P P P P N
CVH NOS N P P/N P P
CVH IVDA N N N P N
AVH IVDA P P P P P
AVH IVDA P P P P P
CVH IVDA P P P P P
AVH IVDA P/N P N P P
AVN IVDA N P P P N
CVH PTVH P P/N N N N
CVH NOS N N N N N
CVH NOS N N N N N
CVH IVDA P P P P P
AVH IVDA P P P P P
CVH PTVH P P P P P
AVH PTVH? N P P P P
AVH IVDA N P N P N
AVH NOS N N N N N
HU 217 025 Β
1. táblázat (folytatás)
Beteg Antigén
S2 C22 C100 C33c NS5
AVH NOS N N N N N
CVH NOS N P N N P
CVH NOS P P N N N
CVH NOS HS P P P P P
CVH PTVH P P N P P
AVH nurse P P N N N
AVH IVDA P P P P N
AVH IVDA N P P(+) P(+ + +) N
AVH nurse P/N P N N N
AVH PTVH P/N P P N P
AVH NOS N P/N N N P
AVH NOS N P N P N
AVH PTVH P P/N N N N
AVH PTVH N P N P P
AVH PTVH P P P P P
AVH PTVH N P N N P
CVH PTVH P/N P P(+) P(+ + +) N
AVH PTVH N P/N P(+) P(+ + +) P
AVH PTVH P (?) P N P
CVH PTVH N P N P P
CVH PTVH N P P P P
CVH PTVH N N N N N
AVH NOS N N N N N
AVH nurse P P N N N
CVH PTVH N P N N P
AVH IVDA N P N P/N N
CVH PTVH P P P(+) P(+ + +) P
AVH NOS P P N N N
AVH NOS P/N P N N P
AVH PTVH P/N P P P P
AVH NOS N P P P P/N
AVH IVDA N P N N P
AVH NOS N P/N N N N
AVH NOS P P N N P
AVH PTVH N P P P P
crypto P P P P P
CVH NOS N P P P P
CVH NOS N N N N N
AVH PTVH N P P(+) P(++) N
AVH PTVH N P/N P(+) P(++) P
AVH PTVH N P/N P(+) P(++) P
CVH IVDA P P P P P
CVH IVDA P P P P P
HU 217 025 Β
1. táblázat (folytatás)
Beteg Antigén
S2 C22 C100 C33c NS5
CVH IVDA P P P P P
CVH IVDA P P P P P
AVH NOS N P N N N
CVH IVDA P P P P P/N
AVH IVDA P P P P N
AVH NOS P P N N N
AVH NOS P P N N N
CVH PTVH P P N N P/N
AVH PTVH N P N P P
AVH NOS N N N N N
AVH NOS N P N N N
AVH NOS P N N N N
CVH NOS N N N N N
AVH NOS N P/N N N N
AVH IVDA N P P P P
crypto N P N N P/N
crypto P P P/N P P
AVH IVDA N N P P N
AVH IVDA N P P P N
AVH NOS N N N N N
AVH NOS N N N N N
CVH IVDA P P P P P
CVH PTVH N N N N N
CVH PTVH P P P(+) P(+ + +) P
CVH PTVH P P P(+) P(+ ++) P
CVH NOS P/N N N N N
CVH NOS N N N N N
CVH PTVH P P P P P
CVH PTVH P P P P P
CVH PTVH P P P P P
AVH IVDA N P P P P
CVH NOS N N N N N
CVH NOS N N N N N
CVH PTVH P P P P P
AVH NOS P P N N P/N
AVH NOS N P/N N N N
CVH PTVH P P N N P
CVH NOS N P/N N N N
AVH NOS N P N N N
AVH NOS N P N N N
CVH PTVH N P N N N
AVH IVDA N P N P P
AVH NOS P N N N N
HU 217 025 Β
1. táblázat (folytatás)
Beteg Antigén
S2 C22 C100 C33c NS5
CVH NOS N N N N N
CVH NOS N N N N N
CVH IVDA P P P P P
CVH IVDA P/N P P P P
CVH IVDA P P P P P
CVH IVDA N P P P P
AVH NOS N P N N N
CVH IVDA N P N N P
CVH IVDA N P N N P
AVH PTVH P P N P P
AVH PTVH P P N P P
CVH NOS N P/N N N P/N
CVH NOS N P N N N
CVH NOS N N N N N
CVH PTVH P P P P P
CVH PTVH P P P P P
CVH PTVH P P P P P
AVH IVDA N P N N P
AVH IVDA N P P(++) P(+) P
CVH PTVH P P P P P
AVH PTVH N P P P P
CVH PTVH? N P P P P
CVH PTVH? P/N P P P P
CVH NOS HS P P N N N
CVH IVDA P P P P N
CVH PTVH N P P P P
CVH PTVH P P P P P/N
CVH NOS P P P P P
CVH IVDA P P P P P
CVH PTVH P P P P N
CVH PTVH P P P P P
CVH NOS N N N N P/N
CVH NOS N P/N N N P/N
CVH PTVH P P P P P
CVH NOS N P N N N
CVH NOS N N N N N
CVH NOS P P N N P/N
CVH NOS N N N N N
CVH NOS HS P P P P P
CVH NOS HS P P P P P
CVH PTVH N N N N N
AVH PTVH N P P P P
AVH NOS - -
HU 217 025 Β
1. táblázat (folytatás)
Beteg Antigén
S2 C22 C100 C33c NS5
CVH PTVH N P P/N P(+ + +) N
crypto P P P P P
crypto P P P P P
crypto N P N N N
crypto N P P P P
CVH PTVH P P P P P
crypto N N N N N
crypto N P N N P/N
crypto N P N N P
crypto P P P P P
crypto N P N P N
crypto - -
crypto - -
CVH NOS - -
AVH IVDA N P N P(+) P
AVH IVDA N P/N N P(++) N
AVH=akut virális hepatitis
CVH=krónikus virális hepatitis PTVH=poszttranszfűziós virális hepatitis IVDA=intravenásdrog-használó crypto=kriptogcnikus hepatitis NOS=ncm egyértelmű forrás P=pozitív
N =negatív
Az eredmények szerint egyik egyedülálló antigén sem reagált az összes szérummal. A legreaktívabb a C22 és a C33c volt, míg az S2 az egyes valódinak vélt, akut HCV-esetek szérumaival reagált, melyekkel más antigén nem lépett reakcióba. Az eredmények alapján a két antigén elegye, mely a leginkább megfelelő detektálási sorozatot biztosította, a C22 és a C33c volt. Amennyiben az akut fertőzés maximumát kívánjuk detektálni, a készítménynek az S2-t is célszerű tartalmaznia.
A 2. táblázat a fizetett vérdonorok szérumának vizsgálati eredményeit mutatja be.
2. táblázat
Donor Antigén
C100 C33c C22 S2 NS5
1 N N N N N
2 N N N N N
3 P P P P P
4 N N N N N
5 N N N N N
Donor Antigén
C100 C33c C22 S2 NS5
6 N N N N N
7 N N N N N
8 N N N N N
9 N N N N N
10 N N N N N
11 N N N N N
12 N N N N N
13 N N N N N
14 N N N N N
15 N N N N N
16 N N N N N
17 N N N N N
18 P P P P P
19 P P N P P
20 P P N P P
21 N N N N N
HU 217 025 Β
2. táblázat (folytatás)
Donor Antigén
C100 C33c C22 S2 NS5
22 N P P N P
23 P P P P P
24 N N N N N
25 N N N N N
26 N N N N N
27 N N N N N
28 N N N N N
29 N N N N N
30 N N N N N
31 P P P N P
32 N N N N N
33 N N N N N
34 N N N N P
35 N N P N P
36 N N N N N
37 N N N N N
38 N N N N N
39 N N N N N
40 N N N N N
41 N N N N P
42 N N N N N
43 N N N N N
44 N N N N N
45 N N N N N
46 N N N N N
47 P P N N P
48 N N N N N
49 N N N N N
50 N N N N N
51 N P P N P
52 N N N N N
53 N P P N P
54 P P P P N
55 N N N N N
56 N N N N N
57 N N N N N
58 N N N N N
59 N N N N N
60 N N N N N
61 N N N N N
62 N N N N N
63 N N N N N
Donor Antigén
C100 C33c C22 S2 NS5
64 N N N N N
65 N N N N N
66 N N N N N
67 N N N N N
68 N N N N N
69 N N N N N
70 P P P P P
71 N N N N N
72 N N N N N
73 P P P P N
74 N N N N N
75 N N N N N
76 N N N N P
77 N N N N N
78 N N N N N
79 N N N N N
80 N N N N N
81 N N N N N
82 N N N N N
83 P P N N N
84 N N P N N
85 N N N N N
86 P P P P N
87 N N N N N
88 N N N N N
89 P P P P P
90 P P P P N
91 N N N N P
92 P P P N N
93 N N N N N
94 N N N N N
95 N N N N N
96 N N N N N
97 N N N N N
98 N P P P P
99 P P P P P
100 N N N N N
101 P P P P P
102 N N N N N
103 N N N N N
104 N N N N
105 P P P P N
106 N N N N N
HU 217 025 Β
2. táblázat (folytatás)
Donor Antigén
C100 C33c C22 S2 NS5
107 N N N N N
108 N N N N N
109 P P P P P
110 P P P N P
lll P P P N P
112 N N N N N
113 P P P P P
114 N N N N N
115 N N N N N
116 P P P P P
117 N N N N N
118 N N N N N
119 N N N N N
120 P P P P P
121 N N N N N
122 N P P N P
123 N N N N N
124 N N N N N
125 N N N N N
126 P N N N N
127 N N N N N
128 N N N N N
129 N N N N N
130 P P P P N
131 N N N N P
132 N N N N N
133 N N N N N
134 N N N N N
135 N N N N N
136 N N N N N
137 N N N N N
138 N N N N N
139 N N N N N
140 P N N N N
141 P N P P P
142 N N N N N
143 N N N N N
144 N N N N N
145 N N N N N
146 N N N N N
147 N N N N N
148 N N N N N
Donor Antigén
C100 C33c C22 S2 NS5
149 N N N N N
150 N N N N N
151 N N N N N
152 N N N N N
153 N N N N N
154 P P P P P
155 N N N N N
156 N N N N N
157 N N N N N
158 N N N N N
159 N N N N N
160 N N N N N
161 P P P P P
162 N N N N N
163 N N N N N
164 P P P N P
165 N N N N N
166 P P P N P
167 N N N N N
168 N N N N N
169 N N N N -1 N
170 N N N N N
171 N N N N N
172 N N N N N
173 N N N N N
174 N N N N N
175 N N N N N
176 N N N N N
177 N N N N P
178 N N N N N
179 N N N N N
180 N N N N N
181 N N N N N
182 N N N N N
183 P P P P P
184 N N N N N
185 N N N N N
186 N N N N N
187 N N N N N
188 N P P N N
189 N N N N N
190 N N N N N
191 N N N N N
HU 217 025 Β
2. táblázat (folytatás)
Donor Antigén
C100 C33c C22 S2 NS5
192 N N N N N
193 N N N N N
194 N N N N N
195 N N N N N
196 N N N N N
197 N N N N P
198 P P P N N
199 N N N N P
200 P P P P N
A fizetett vérdonorok esetén kapott eredmények megerősítik a fertőzött egyének szérumánál kapott eredményeket.
7. példa: A HCV-antitestek HCV-antigénkészítmény alkalmazásával történő ELISA-meghatározása
A C22 és a C33c antigének készítményével bevont lemezeket az alábbiak szerint készítettük el. Közvetlenül a Removeawell Immulon I lemezekre (Dynatech. Corp.) történő felvitel előtt bevonópufferből (coating puffer; 50 mM borát, pH 9,0) 21 ml/lemez, BSA-ból (25 pg/ml) C22-ből és C33c-ből (mindegyik 2,50 pg/ml mennyiségben) oldatot készítettünk. Ötperces keverés után az oldatból 0,2 ml/lyuk mennyiségeket vittünk fel a lemezekre, befedtük, két órán keresztül 37 °C-on inkubáltuk, majd az oldatfelesleget leszívással eltávolítottuk. A lyukakat egyszer 400 μΐ mosópufferrel mostuk [100 mM nátriumfoszfát, pH 7,4, 140 mM NaCl, 0,1% (W/V) kazein, 1% (W/V) Triton X-100, 0,01% (W/V) Thimerosal). A mosóoldat eltávolítása után 200 μΐ/lyuk mennyiségű „utóbevonó oldatot” (postcoat solution) (10 mM Na-foszfát, pH 7,2, 150 mM NaCl, 0,1% (W/V) kazein, 3% szukróz és 2 mM fenil-metil-szulfonil-fluorid (PMSF)] vittünk a lyukakba, a párolgás megakadályozása céljából lazán befedtük a lemezeket, majd szobahőmérsékleten 30 percig állni hagytuk. Ezután a lyukakból leszívtuk a folyadékot, és önmelegedés (self heating) nélkül egy éjszaka alatt szárazra liofileztük. Az így kapott lemezeket 2-8 °C-on, zárt alumíniumtasakban, szárítókapszulával (3 g Sorbit™ kapszulák) tárolhatjuk.
Az ELISA eredményeinek megerősítése céljából a szérumminta, illetve a kontrollminta 20 μΐ mennyiségeit adtuk a 200 μΐ minta hígítót [100 mM nátrium-foszfát, pH 7,4, 500 mM NaCl, 1 mM EDTA, 0,1% (W/V) kazein, 1% (W/V) Triton X-100,0,01% (W/V) Thimerosal és 100 pg/ml élesztőextraktum] tartalmazó lyukakba. A lemezeket lefedtük, és 37 °C-on két órán keresztül inkubáltuk, majd az oldatot leszívással eltávolítottuk, és a lemezeket háromszor 400 μΐ mosópufferrel mostuk [0,05% Tween 20-at tartalmazó, foszfátpufferes fiziológiás sóoldat (PBS)]. A mosás után a lyukakat 200 μΐ egér-anti-humán IgG-torma-peroxidáz- (HRPO) konjugátummal kezeltük, mely Ortho konjugátum hígítóoldatban volt [10 mM nátrium-foszfát, pH 1(2, 150 mM NaCl, 50% (V/V) fetális szarvasmarhaszérum, 1% (V/V) hőkezelt lószérum, 1 mM K3Fe (CN)6, 0,05% (W/V) Tween 20 és 0,02% (W/V) Thimerosal]. A kezelés 37 °C-on, egy órán keresztül tartott, majd az oldatot leszívással eltávolítottuk, és a lemezeket háromszor 400 μΐ mosópufferrel mostuk, melyet szintén leszívással távolítottunk el. A kötött enzimkonjugátum meghatározása céljából 200 μΐ szubsztrátoldatot (10 mg o-fenilén-diamin-dihidroklorid 5 ml „developer” oldatban) adtunk hozzá. A „developer” oldat 50 mM Na-citrátot tartalmazott, pH 5,1 foszforsavval és 0,6 μΐ/ml 30%-os H2O2-t. A szubsztrátoldatot tartalmazó lemezeket sötétben 30 percig szobahőmérsékleten inkubáltuk, a reakciót 50 μΐ/ml 4 N kénsav hozzáadásával állítottuk le, majd meghatároztuk az OD-értékeket.
Hasonló módon végezhetjük el a C22 és C33c, és C22, C33c, és S2, és a C22, és C100, C22, és S2, C22, és egy NS5 antigén, C22, C33c, és S2, és C22, Cl00, és S2 fúziós fehéijék ELISA-vizsgálatát.
A fenti eljárások kivitelezésében a molekuláris biológiai, az immunológiai és az egyéb kapcsolódó tudományok alapján történő módosításoknak az alább következő igénypontok területén belül kell esniük.

Claims (17)

1. Szilárd mátrix felületén immobilizált hepatitis C vírus- (HCV) antigénkészítmény, amely egy vagy több kémiai szintézissel vagy rekombináns kifejezés útján nyert pepiidet tartalmaz, HCV elleni antitestek immunoassay-vel történő meghatározására, azzal jellemezve, hogy az alábbi antigéneket tartalmazza:
a) egy első HCV-antigént, mely a HCV-poliprotein C doménjéből származó epitóppal rendelkezik, és
b) legalább egy további HCV-antigént, melyet az alábbi csoportból választunk ki:
i) egy, a HCV-poliprotein NS3 doménjéből származó epitóppal rendelkező HCV-antigén;
ii) egy, a HCV-poliprotein NS4 doménjéből származó epitóppal rendelkező HCV-antigén;
iii) egy, a HCV-poliprotein S doménjéből származó epitóppal rendelkező HCV-antigén;
iv) egy, a HCV-poliprotein NS5 doménjéből származó epitóppal rendelkező HCV-antigén.
2. Az 1. igénypont szerinti készítmény, azzal jellemezve, hogy az antigének kombinációja a pl peptid és a C 100-3; a p35 peptid és a C 100-3; vagy a p99 peptid és a C 100-3 kombinációjától vagy a CA 290a fúziós peptidtől eltérő.
3. Az 1. igénypont szerinti készítmény, azzal jellemezve, hogy egy harmadik HCV-antigént tartalmaz, melyet az alábbi csoportból választunk ki :
i) egy, a HCV poliprotein NS3 doménjéből származó epitóppal rendelkező HCV-antigén;
ii) egy, a HCV-poliprotein NS4 doménjéből származó epitóppal rendelkező HCV-antigén;
iii) egy, a HCV-poliprotein S doménjéből származó epitóppal rendelkező HCV-antigén;
HU 217 025 Β iv) egy, a HCV-poliprotein NS5 doménjéből származó epitóppal rendelkező HCV-antigén, azzal a feltétellel, hogy a második és harmadik antigén a HCV-poliprotein különböző doménjeiből származó epitóppal rendelkezik.
4. Az 1-3. igénypontok bármelyike szerinti készítmény, azzal jellemezve, hogy a második antigén a HCV NS3 doménjéből származó epitóppal rendelkezik.
5. Az 1-3. igénypontok bármelyike szerinti készítmény, azzal jellemezve, hogy a második antigén a HCV NS4 doménjéből származó epitóppal rendelkezik.
6. Az 1-3. igénypontok bármelyike szerinti készítmény, azzal jellemezve, hogy a második antigén a HCV S doménjéből származó epitóppal rendelkezik.
7. Az 1-3. igénypontok bármelyike szerinti készítmény, azzal jellemezve, hogy a második antigén a HCV NS5 doménjéből származó epitóppal rendelkezik.
8. A 4. igénypont szerinti készítmény, azzal jellemezve, hogy az első HCV-antigén a C22, és a második HCV-antigén a C33c.
9. A 3. igénypont szerinti készítmény, azzal jellemezve, hogy az első HCV-antigén a C22, a második HCV-antigén a C33c, és a harmadik HCV-antigén az S2.
10. A 3. igénypont szerinti készítmény, azzal jellemezve, hogy az első HCV-antigén a C22, és a második HCV-antigén a C100.
11. A 3. igénypont szerinti készítmény, azzal jellemezve, hogy az első HCV-antigén a C22, a második HCV-antigén a Cl00, és a harmadik HCV-antigén az S2.
12. Az 1-11. igénypontok bármelyike szerinti készítmény, azzal jellemezve, hogy a készítmény egy fúziós polipeptidet tartalmaz.
13. Az 1-11. igénypontok bármelyike szerinti készítmény, azzal jellemezve, hogy az első HCV-antigén és a további antigének külön kötődnek a közös szilárd mátrixhoz.
14. A 13. igénypont szerinti készítmény, azzal jellemezve, hogy a szilárd mátrix egy mikrotiterlemez felszíne, gyöngy vagy pálca.
15. Az 1-11. igénypontok bármelyike szerinti készítmény, azzal jellemezve, hogy az az első HCV-antigén és a további antigének keverékét tartalmazza.
16. Az 1-15. igénypontok bármelyike szerinti készítmény, azzal jellemezve, hogy az egy kit része.
17. In vitro módszer HCV-antitesteknek emlőstestkomponensekben történő meghatározására, azzal jellemezve, hogy a testkomponenst az 1-16. igénypontok bármelyike szerinti antigénkészítménnyel hozzuk érintkezésbe, és a létrejött antitest-antigén reakció során keletkezett immunkomplex jelenlétét kimutatjuk.
HU9203146A 1990-04-04 1991-03-29 Hepatitis C vírus-(HCV) antigénkészítmények az anti-HCV-antitestek kimutatására immunoassay-kben HU217025B (hu)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US50435290A 1990-04-04 1990-04-04

Publications (3)

Publication Number Publication Date
HU9203146D0 HU9203146D0 (en) 1992-12-28
HUT62706A HUT62706A (en) 1993-05-28
HU217025B true HU217025B (hu) 1999-11-29

Family

ID=24005897

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
HU9203146A HU217025B (hu) 1990-04-04 1991-03-29 Hepatitis C vírus-(HCV) antigénkészítmények az anti-HCV-antitestek kimutatására immunoassay-kben

Country Status (25)

Country Link
EP (2) EP0450931B1 (hu)
JP (1) JP2733138B2 (hu)
KR (1) KR100206150B1 (hu)
AT (2) ATE182684T1 (hu)
BG (1) BG61291B1 (hu)
BR (1) BR9106309A (hu)
CY (1) CY1881A (hu)
DE (2) DE69120138T2 (hu)
DK (2) DK0693687T4 (hu)
ES (2) ES2088465T3 (hu)
FI (1) FI106317B (hu)
GB (1) GB2257784B (hu)
GR (2) GR3020964T3 (hu)
HU (1) HU217025B (hu)
IE (1) IE911105A1 (hu)
IL (2) IL170719A (hu)
LT (1) LT3808B (hu)
LV (2) LV10344A (hu)
MY (1) MY107499A (hu)
NO (1) NO310241B1 (hu)
PL (1) PL172133B1 (hu)
RO (1) RO109916B1 (hu)
RU (1) RU2130969C1 (hu)
UA (1) UA41266C2 (hu)
WO (1) WO1991015771A1 (hu)

Families Citing this family (58)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US7166287B1 (en) 1989-12-18 2007-01-23 Glaxo Wellcome Inc. Viral agent
SE9004010D0 (sv) 1989-12-18 1990-12-17 Wellcome Found Viralt medel
KR940000755B1 (ko) * 1990-02-16 1994-01-29 유나이티드 바이오메디칼 인코오포레이티드 Hcv에 대한 항체 검출, hcv 감염의 진단 및 백신으로서의 그 예방에 특히 적합한 합성 펩티드
US6194140B1 (en) 1990-04-04 2001-02-27 Chiron Corporation HCV NS3 protein fragments having helicase activity and improved solubility
DK0527815T3 (da) * 1990-04-06 2000-11-06 Genelabs Tech Inc Hepatitis C-virus-epitop
CA2049679C (en) * 1990-08-24 2005-06-21 Sushil G. Devare Hepatitis c assay utilizing recombinant antigens
US6274148B1 (en) 1990-11-08 2001-08-14 Chiron Corporation Hepatitis C virus asialoglycoproteins
SK285623B6 (sk) * 1990-11-08 2007-05-03 Chiron Corporation Spôsob produkcie asialoglykoproteínu hepatitis C vírusu
US5910404A (en) 1990-12-14 1999-06-08 Innogenetics N.V. Synthetic antigens for the detection of antibodies to hepatitis C virus
DK0489968T3 (da) * 1990-12-14 1997-03-24 Innogenetics Nv Syntetiske antigener til påvisning af antistoffer imod hepatitis C virus
US6007982A (en) * 1990-12-14 1999-12-28 Innogenetics N.V. Synthetic antigens for the detection of antibodies to hepatitis C virus
DE4041304A1 (de) * 1990-12-21 1992-06-25 Mikrogen Molekularbiol Entw Von strukturproteinen des hepatitis c-virus abgeleitete polypeptide, testkits, die diese polypeptide enthalten und impfstoffe gegen infektionen von hepatitis c-viren
US5574132A (en) * 1991-04-05 1996-11-12 Biochem Immunosystems Inc. Peptides and mixtures thereof for detecting antibodies to hepatitis C virus (HCV)
CA2099883A1 (en) * 1991-11-07 1993-05-08 John A. Kink Epitope mapping of the c33c region of hcv
DE610436T1 (de) * 1991-11-21 1995-08-03 Common Services Agency Detektion des Hepatis-C Virus.
EP0625204B1 (en) * 1992-02-04 2002-06-19 Chiron Corporation Hepatitis therapeutics
GB9203803D0 (en) * 1992-02-21 1992-04-08 Wellcome Found A recombinant polypeptide
UA39944C2 (uk) * 1992-07-07 2001-07-16 Чірон Корпорейшн Спосіб визначення ранньої сероконверсії у ссавця-хазяїна до вірусу гепатиту с і набір для використання в способі
US6153378A (en) * 1992-10-16 2000-11-28 Bionova Corporation Diagnosis of, and vaccination against, a positive stranded RNA virus using an isolated, unprocessed polypeptide encoded by a substantially complete genome of such virus
JP2778886B2 (ja) * 1992-10-16 1998-07-23 エバーニュー バイオテック インコーポレイティド C型肝炎ウィルスのコア抗原タンパク質及びそれを用いての診断方法及びキット
EP0593291A3 (en) * 1992-10-16 1995-03-15 Evernew Biotech Inc Non-structural protein of the hepatitis C virus, as well as diagnostic procedure and test kit.
WO1994013164A1 (en) 1992-12-10 1994-06-23 Nike International Ltd. Bonding of rubber to plastic in footwear
PT698216E (pt) * 1993-05-10 2005-03-31 Chiron Corp Metodos de tipificacao do virus da hepatite c e reagentes para utilizar nestes
DE4428705A1 (de) * 1994-08-12 1996-02-15 Boehringer Mannheim Gmbh Rekombinantes Antigen aus der NS3-Region des Hepatitis C Virus
JPH0862219A (ja) * 1994-08-19 1996-03-08 Dainabotsuto Kk 還元型抗原に対する抗体アッセイ試薬及びそれを使用した測定方法
JP3665371B2 (ja) * 1994-08-31 2005-06-29 株式会社先端生命科学研究所 C型肝炎ウイルス感染又はグループ判定のためのエピトープキメラ抗原ペプチド、その製法、及びそれを使用する感染又はグループ判定法
CA2172305A1 (en) * 1995-03-30 1996-10-01 Muneo Aoyama Multiple antigenic peptide comprising at least two hepatitis c virus-associated peptides
AU5924396A (en) * 1995-05-22 1996-12-11 Bionova Corporation Compositions and methods for the diagnosis of, and vaccinati on against, hepatitis c virus (hcv)
FR2734639B1 (fr) * 1995-05-26 1997-10-03 Parteurop Methode de pronostic de l'evolution d'une infection par le virus de l'hepatite c, et necessaire pour sa mise en oeuvre
FR2737209B1 (fr) 1995-07-25 1997-09-19 Bio Merieux Peptide capable d'etre reconnu par des anticorps reconnaissant l'antigene c33 du virus de l'hepatite c
US6127116A (en) 1995-08-29 2000-10-03 Washington University Functional DNA clone for hepatitis C virus (HCV) and uses thereof
JP3715027B2 (ja) 1996-05-07 2005-11-09 シスメックス株式会社 C型肝炎ウイルス感染症診断薬
US7049428B1 (en) 1998-03-04 2006-05-23 Washington University HCV variants
US7338759B1 (en) 1997-03-04 2008-03-04 Washington University HCV variants
US6391540B1 (en) * 1997-09-22 2002-05-21 Chiron Corporation Method for detecting antibodies in a sample
AU6098900A (en) * 1999-07-15 2001-02-05 Bayer Corporation The use of specific antibody titers to predict hepatic failure in people infected with hepatitis c virus
AU1236801A (en) 1999-10-27 2001-05-08 Chiron Corporation Activation of hcv-specific t cells
US6986892B1 (en) 1999-11-24 2006-01-17 Chiron Corporation Immunogenic Hepatitis C virus non-structural polypeptides
KR100788812B1 (ko) * 1999-11-24 2007-12-27 노바티스 백신즈 앤드 다이아그노스틱스 인코포레이티드 신규한 hcv 비구조 폴리펩티드
MXPA02012424A (es) 2000-06-15 2003-04-25 Chiron Corp Ensayo de combinacion de antigenos/anticuerpos para el virus de hepatitis c.
US7491808B2 (en) 2000-06-15 2009-02-17 Novartis Vaccines And Diagnostics, Inc. HCV non-structural protein mutants and uses thereof
US7022830B2 (en) 2000-08-17 2006-04-04 Tripep Ab Hepatitis C virus codon optimized non-structural NS3/4A fusion gene
US6858590B2 (en) 2000-08-17 2005-02-22 Tripep Ab Vaccines containing ribavirin and methods of use thereof
US6680059B2 (en) 2000-08-29 2004-01-20 Tripep Ab Vaccines containing ribavirin and methods of use thereof
WO2002014362A2 (en) 2000-08-17 2002-02-21 Tripep Ab A hepatitis c virus non-structural ns3/4a fusion gene
FR2839722A1 (fr) 2002-05-17 2003-11-21 Bio Merieux Nouvelles compositions peptidiques et leur utilisation notamment dans la preparation de compositions pharmaceutiques actives contre le virus de l'hepatite c
MXPA05002641A (es) 2002-09-09 2005-05-05 Chiron Corp Ensayo del virus de la hepatitis c.
US8101425B1 (en) * 2004-06-09 2012-01-24 Pathogen Removal And Diagnostic Technologies Inc. Particles embedded in a porous substrate for removing target analyte from a sample
JP2005274584A (ja) * 2005-05-25 2005-10-06 Sysmex Corp C型肝炎ウイルス感染症診断薬の製造方法
CA2618429A1 (en) 2005-05-25 2007-03-22 Tripep Ab A hepatitis c virus non-structural ns3/4a fusion gene
JP4005093B2 (ja) * 2005-05-25 2007-11-07 シスメックス株式会社 C型肝炎ウイルス感染症診断薬および抗hcv抗体検出方法
ES2387321T3 (es) 2006-03-09 2012-09-20 Transgene Sa Proteína de fusión no estructural del virus de la hepatitis C
EP1978365B1 (en) 2007-03-16 2010-08-25 Sysmex Corporation Reagent kit and method for measuring HCV antibody
WO2009022236A2 (en) 2007-08-16 2009-02-19 Tripep Ab Immunogen platform
WO2009130588A2 (en) 2008-04-22 2009-10-29 Tripep Ab Immunogen platform
FR2984328B1 (fr) 2011-12-20 2016-12-30 Bio-Rad Innovations Procede de detection d'une infection par le virus de l'hepatite c
CN107110868B (zh) 2014-10-29 2020-08-21 雅培制药有限公司 采用ns3捕获肽的受试者抗hcv抗体检测测定
JP2018124277A (ja) * 2017-02-02 2018-08-09 三洋化成工業株式会社 粒子含有組成物、免疫測定用試薬、免疫測定方法及び粒子の保存方法

Family Cites Families (10)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US456637A (en) 1891-07-28 Fence
US390599A (en) 1888-10-02 Tool for weaver s use
SE7804231L (sv) 1978-04-14 1979-10-15 Haessle Ab Magsyrasekretionsmedel
US4870008A (en) * 1983-08-12 1989-09-26 Chiron Corporation Secretory expression in eukaryotes
CA1341482C (en) 1984-10-31 2005-05-10 Paul A. Luciw Process for preparing fragments of aids-associated retroviruses
US4751180A (en) * 1985-03-28 1988-06-14 Chiron Corporation Expression using fused genes providing for protein product
NZ227011A (en) * 1987-11-18 1992-03-26 Chiron Corp Non-a, non-b-hepatitis (hepatitis c) antigens, proteins, nucleotide sequences, vaccines and kits
HUT54896A (en) 1989-03-17 1991-04-29 Chiron Corp Process for producing aquous diagnosticum and vaccine of nanbv
SE9004010D0 (sv) * 1989-12-18 1990-12-17 Wellcome Found Viralt medel
AU638304B2 (en) 1989-12-22 1993-06-24 Abbott Laboratories Hepatitis c assay

Also Published As

Publication number Publication date
FI106317B (fi) 2001-01-15
LV10344B (en) 1996-02-20
MY107499A (en) 1995-12-30
IE911105A1 (en) 1991-10-09
HU9203146D0 (en) 1992-12-28
ES2134388T5 (es) 2008-12-01
AU639560B2 (en) 1993-07-29
AU7651091A (en) 1991-10-30
HUT62706A (en) 1993-05-28
WO1991015771A1 (en) 1991-10-17
DK0450931T3 (da) 1996-07-01
NO923839D0 (no) 1992-10-01
DE69131488T2 (de) 1999-11-18
EP0693687B2 (en) 2008-06-04
DE69120138T2 (de) 1996-11-14
NO310241B1 (no) 2001-06-11
ES2134388T3 (es) 1999-10-01
DE69120138D1 (de) 1996-07-18
ATE139343T1 (de) 1996-06-15
EP0450931A1 (en) 1991-10-09
FI924349A (fi) 1992-09-28
LTIP1747A (en) 1995-07-25
BR9106309A (pt) 1993-04-20
PL172133B1 (pl) 1997-08-29
GR3020964T3 (en) 1996-12-31
IL170719A (en) 2011-04-28
ATE182684T1 (de) 1999-08-15
LV10344A (en) 1994-10-20
IL97741A0 (en) 1992-06-21
DK0693687T3 (da) 1999-11-29
GB2257784B (en) 1995-01-04
NO923839L (no) 1992-11-19
GR3031361T3 (en) 2000-01-31
DE69131488D1 (de) 1999-09-02
GB2257784A (en) 1993-01-20
LT3808B (en) 1996-03-25
JP2733138B2 (ja) 1998-03-30
BG61291B1 (en) 1997-04-30
EP0450931B1 (en) 1996-06-12
ES2088465T3 (es) 1996-08-16
EP0693687B1 (en) 1999-07-28
BG96943A (bg) 1993-12-24
EP0693687A1 (en) 1996-01-24
GB9220480D0 (en) 1992-11-25
JPH05508219A (ja) 1993-11-18
RO109916B1 (ro) 1995-07-28
UA41266C2 (uk) 2001-09-17
DK0693687T4 (da) 2008-09-22
RU2130969C1 (ru) 1999-05-27
FI924349A0 (fi) 1992-09-28
CY1881A (en) 1996-04-05
KR100206150B1 (ko) 1999-07-01

Similar Documents

Publication Publication Date Title
HU217025B (hu) Hepatitis C vírus-(HCV) antigénkészítmények az anti-HCV-antitestek kimutatására immunoassay-kben
US6312889B1 (en) Combinations of hepatitis c virus (HCV) antigens for use in immunoassays for anti-HCV antibodies
US5683864A (en) Combinations of hepatitis C virus (HCV) antigens for use in immunoassays for anti-HCV antibodies
US7056658B2 (en) Multiple epitope fusion protein
US7728121B2 (en) Hepatitis-C virus type 4, 5 and 6
US6596476B1 (en) Hepatitis C assay
AU685059B2 (en) Immunoassays for anti-HCV antibodies using antigens with conformational epitopes
JPH04253998A (ja) C型肝炎アッセイ
JPH06153960A (ja) C型肝炎ウィルスのコア抗原タンパク質及びそれを用いての診断方法及びキット
EP0642666B1 (en) Hepatitis c assay
JPH06247997A (ja) Hcv ペプチド抗原及びhcv の測定方法
US5935778A (en) Method for serological typing using type-specific antigens
AU639560C (en) Combinations of hepatitis C virus (HCV) antigens for use in immunoassays for anti-HCV antibodies
JPH06510289A (ja) Ns5領域由来の組換え抗原を利用したc型肝炎アッセイ
JP3327549B2 (ja) C100領域に対する組換え抗原を利用したc型肝炎アッセイ
JPH07504562A (ja) C型肝炎ウイルスペプチド
PT97247B (pt) Processo de preparacao de combinacoes de antigenios do virus da hepapite c (hcv) para uso em imunoensaios para anticorpos anti-hcv
JPH06153959A (ja) C型肝炎ウィルスの非構造タンパク質及びそれを用いての診断方法及びキット