ES2673070T3 - Mutantes C-RAF que confieren resistencia a los inhibidores de RAF - Google Patents

Mutantes C-RAF que confieren resistencia a los inhibidores de RAF Download PDF

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Abstract

Una molécula de ácido nucleico que codifica un polipéptido C-RAF mutante que tiene actividad C-RAF o un polipéptido C-RAF mutante que tiene actividad C-RAF, en los que dicho polipéptido C-RAF mutante comprende al menos una sustitución de aminoácido seleccionada del grupo que consiste en 257S>P, 261P>T, 361G>A y 478E>K en comparación con un polipéptido C-RAF de tipo silvestre que comprende SEQ ID NO: 2, confiriendo la al menos una sustitución de aminoácido resistencia a uno o más inhibidores de RAF en una célula que expresa el polipéptido C-RAF mutante, estando el inhibidor de RAF seleccionado de PLX 4720, PLX4032 y (S)-metil-1-(4-(3-(5-cloro-2-fluoro-3-(metilsulfonamido)fenil)-1-isopropil-1H-pirazol-4-il)pirimidin-2-ilamino)propan-2-il-carbamato.

Description

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Mutantes C-RAF que confieren resistencia a los inhibidores de RAF
La presente invención se realizó con soporte del gobierno con la subvención federal n.° DP2 OD002750, otorgada por National Institutes of Health. El Gobierno tiene determinados derechos sobre la presente invención.
Antecedentes
En del 50 al 70 % de los melanomas malignos, se encuentran mutaciones oncogénicas en la serina/treonina quinasa B-RAF (también conocida como BRAF). (Davies, H. et al., Nature 417, 949-954 (2002).) El melanoma se considera la forma más letal de cáncer de piel y, para el año 2012, el National Cancer Institute estimó 72.250 casos nuevos que podrían conducir a la muerte de aproximadamente 9.180 personas en Estados Unidos. Los estudios preclínicos han demostrado que la mutación B-RAF(V600E) predice una dependencia de la cascada de señalización de proteína quinasa activada por mitógeno (MAPK) en el melanoma (Hoeflich, K. P. et al., Cancer Res. 69, 3042-3051 (2009); McDermott, U. et al., Proc. Natl Acad. Sci. EE.UU. 104, 19936-19941 (2007); Solit, D. B. et al. "BRAF mutation predicts sensitivity to MEK inhibition". Nature 439, 358-362 (2006); Wan, P. T. et al., Cell 116, 855-867 (2004); Wellbrock, C. et al., Cancer Res. 64, 2338-2342 (2004)) - una observación que se ha validado gracias al éxito de inhibidores de RAF o de MEK en ensayos clínicos (Flaherty, K. T. et al., N. Engl. J. Med. 363, 809-819 (2010); Infante, J. R. et al., J. Clin. Oncol. 28 (supl.), 2503 (2010); Schwartz, G. K. et al., J. Clin. Oncol. 27 (supl.), 3513 (2009).)
Recientemente, la FDA aprobó el inhibidor de Raf Vemurafenib (PLX4032). (Dummer et al., 2008; Infante et al., 2010; Joseph et al., 2010; Flaherty et al., 2010). Sin embargo, las respuestas clínicas a los agentes terapéuticos dirigidos contra el cáncer a menudo se confunden con la resistencia de novo o la resistencia adquirida. (Engelman, J. A. et al., Science 316, 1039-1043 (2007); Gorre, M. E. et al., Science 293, 876-880 (2001); Heinrich, M. C. et al., J. Clin. Oncol. 24, 4764-4774 (2006); Daub, H., Specht, K. y Ullrich, A. Nature Rev. Drug Discov. 3, 1001-1010 (2004).) En el entorno clínico e in vitro, recientemente, se ha demostrado que este fenómeno se rige por la sobreexpresión de un módulo de señalización paralelo (CRAF, COT) (Montagut et al., Cancer Res 68:4853-4861 (2008); Johannessen et al., Nature 468:968-972 (2010), la activación de una vía de señalización paralela (PDGFRb, IGF-1R) (Nazarian et al., Nature 468: 973-977 (2010); Villanueva et al., Cancer Cell 18: 683-695 (2010), la amplificación de una diana cadena arriba (BRAF) (Shi et al., Nat Commun 3:724 (2012), la eliminación en la diana (p61BRAF) (Poulikakos et al., Nature 480:387-390 (2011) o mediante la activación de mutaciones en la diana cadena abajo o en la propia proteína diana (Mek) (Emery et al., Proc Natl Acad Sci EE.UU. 106: 20411-20416 (2009); Wagle et al., JCO 29: 3085-3096 (2011). Por consiguiente, sigue existiendo la necesidad de nuevos métodos para identificar mecanismos de resistencia de forma que se diluciden dianas "susceptibles de convertirse en fármacos" para estrategias de tratamiento eficaces a largo plazo, de nuevos métodos para identificar pacientes que puedan beneficiarse de las estrategias de tratamiento y de métodos para tratar a los pacientes con las estrategias de tratamiento eficaces a largo plazo.
Montagut et al (Cancer Res. 15 de junio de 2008;68(12): 4853-4861) describen la CRAF elevada como un mecanismo potencial de la resistencia adquirida a la inhibición de BRAF en el melanoma.
Breve sumario
La presente invención se refiere al desarrollo de resistencia a agentes terapéuticos en el tratamiento del cáncer y a la identificación de dianas que confieren resistencia al tratamiento del cáncer. La presente invención también se refiere a la identificación de dianas farmacológicas paralelas para facilitar una estrategia de tratamiento eficaz a largo plazo y a la identificación de pacientes que se beneficiarían de dicho tratamiento.
En un aspecto, se proporciona una molécula de ácido nucleico que codifica un polipéptido C-RAF mutante que tiene actividad C-RAF o un polipéptido C-RAF mutante que tiene actividad C-RAF, en los que dicho polipéptido C-RAF mutante comprende al menos una sustitución de aminoácido seleccionada del grupo que consiste en 257S>P, 261P>T, 361G>A y 478E>K en comparación con un polipéptido C-RAF de tipo silvestre que comprende SEQ ID NO: 2, confiriendo la al menos una sustitución de aminoácido resistencia a uno o más inhibidores de RAF en una célula que expresa el polipéptido C-RAF mutante, inhibidor de RAF seleccionado de PLX 4720, PLX4032 y (S)-metil-1-(4- (3-(5-cloro-2-fluoro-3-(metilsulfonamido)fenil)-1-isopropil-1H-pirazol-4-il)pirimidin-2-ilamino)propan-2-il-carbamato.
En otro aspecto, se proporciona un vector de expresión. El vector de expresión incluye la molécula de ácido nucleico de la reivindicación 1.
En otro aspecto, se proporciona una célula hospedadora. La célula hospedadora incluye el vector de expresión.
En otro aspecto, se proporciona un preparado de anticuerpos. El preparado de anticuerpos se une específicamente a un polipéptido C-RAF mutante de la presente invención.
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En otro aspecto, se proporciona un método para identificar a un sujeto que tenga cáncer como aquel que tiene resistencia a un inhibidor de RAF, comprendiendo el método:
(a) extraer ácido nucleico de células obtenidas de un cáncer del paciente; y
(b) ensayar al menos una parte de una molécula de ácido nucleico que codifique un polipéptido C-RAF;
en el que la presencia de una o más sustituciones de C-RAF según lo definido en la reivindicación 1 indica que el sujeto tiene resistencia a un inhibidor de RAF.
Breve descripción de los dibujos
La Figura 1 ilustra alelos mutantes C-RAF en células A375 (BRAFV600E) resistentes al inhibidor de RAF PLX4720.
(A) Se muestra la puntuación media de las variantes de las mutaciones candidatas a través de la secuencia de codificación de C-RAF de la selección por mutagénesis de PLX4720. Se indican las sustituciones de aminoácidos correspondientes de las mutaciones de puntuación alta (>2 %). (B) Izquierda: se muestra la estructura cristalina del dominio quinasa de C-RAF (restos 340-618; gris) (código PDB: 3OMV), que incluye mutantes de resistencia C-RAF representativos (barras) junto con un modelo de relleno de espacios de PLX4720 unido. También se indican el motivo DFG y el bucle P. Derecha: estructura de C-RAF girada 90 ° para exponer el resto R401 de la superficie de contacto del dímero (las estructuras se renderizan con PyMOL). (C) La estructura de dominio C-RAF que representa (CR, región conservada; RBD, dominio de unión a Ras; y CRD, dominio rico en cisteína) muestra la ubicación de mutantes de resistencia C-RAF (asteriscos) y de tres restos de serina importantes para la regulación de C-RAF (círculos).
La Figura 2 ilustra la caracterización funcional de mutantes de resistencia C-RAF.
(A) Se trataron células A375 que expresaban C-RAF (WT) y C-RAF (alelos identificados) con inhibidor de RAF PLX4720 de una manera dependiente de la dosis (0,08 pM, 0,4 pM, 2 pM, 5 pM y 10 pM) durante 90 min. Inmunotransferencia que muestra pErk1/2, pMek1/2, C-RAF. Se usó a-tubulina como control de carga.
(B) Se trataron células A375 que expresaban mutantes C-RAF altamente resistentes con 2 pM de PLX4720 durante 16 h. Se muestran los niveles de pMek1/2, pErk1/2, Mek, S259 C-RAF, S338 C-RAF, S621 C-RAF y actina. (C) Curvas de inhibición del crecimiento de A375 y los alelos de resistencia C-RAF en respuesta a PLX4720 y (D) vemurafenib. (E) Se trataron células A375 que expresaban mutantes de C-RAF altamente resistentes con 1 pM de inhibidor de MEK AZD6244 durante 16 h. Se muestran los niveles de pMe k1/2, pErk1/2, Mek, S259 C-RAF, S338 C-RAF, S621 C-RAF y actina. (F) Curvas de inhibición del crecimiento de A375 y los alelos de resistencia C-RAF en respuesta a AZD6244 y (G) Mek-GSK 1120212.
La Figura 3 ilustra que los mutantes de resistencia C-RAF muestran un aumento de la asociación con B-RAF.
Se inmunoprecipitaron con C-RAF total (A) células 293/T que expresaban alelos de resistencia C-RAF y (B) células A375 que expresaban alelos de resistencia C-RAF. Los niveles de proteína unida (B-RAF y 14-3-3) se evaluaron mediante inmunotransferencia. El lisado de entrada (paneles inferiores) muestra 14-3-3, B-RAF, C- RAF, pMek1/2, pErk1/2, Mek, actina y S259 C-RAF, S338 C-RAF y S621 C-RAF (paneles derechos superiores). Los resultados son representativos de más de dos experimentos independientes.
La Figura 4 ilustra la caracterización bioquímica de los alelos de resistencia C-RAF usando (S)-metil-1-(4-(3-(5- cloro-2-fluoro-3-(metilsulfonamido)fenil)-1-isopropil-1H-pirazol-4-il)pirimidin-2-ilamino)propan-2-il-carbamato.
(A) La inmunotransferencia representa pMek1/2, pErk1/2, Mek, Erk y C-RAF en células A375 que expresan alelos de resistencia C-RAF en respuesta al tratamiento durante 16 h con 1 pM de PLX4720, (S)-metil-1-(4- (3-(5-cloro-2-fluoro-3-(metilsulfonamido)fenil)-1-isopropil-1H-pirazol-4-il)pirimidin-2-ilamino)propan-2-il- carbamato y AZD6244. Se usó actina como control de carga. (B) Curvas de inhibición del crecimiento de A375 y los alelos de resistencia C-RAF en respuesta a PLX4720. (C) (S)-metil-1-(4-(3-(5-cloro-2-fluoro-3- (metilsulfonamido)fenil)-1-isopropil-1H-pirazol-4-il)pirimidin-2-ilamino)propan-2-il-carbamato y (D) AZD6244.
La Figura 5 ilustra que los mutantes de resistencia C-RAF confieren resistencia a Vemurafenib (PLX4032).
(A) Curvas de inhibición del crecimiento de A375 y los alelos de resistencia C-RAF en respuesta a Vemurafenib (PLX4032). (B) actividad de C-RAF quinasa en extractos de células A375 que expresan WT, S257P, P261T y G361A en presencia y ausencia de Vemurafenib durante 16 h. La inmunotransferencia representa pMek1/2, pErk1/2, Mek, Erk y actina. Los resultados son representativos de tres experimentos independientes. (C) Curvas de inhibición del crecimiento de A375 y los alelos de resistencia C-RAF en respuesta a PLX4720, (D) AZD6244 y (E) PLX4720 y AZD6244.
La Figura 6 ilustra la homodimerización y la actividad quinasa de mutantes de resistencia C-RAF.
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(A) Se inmunoprecipitaron células 293T que expresaban conjuntamente mutantes de resistencia C-RAF marcados con His/V5 y marcados con Flag durante 48 h con níquel (véanse los Métodos) para desplegar C- RAF marcado con His, y se evaluó el C-RAF marcado con Flag mediante inmunotransferencia. También se evaluó el lisado de entrada usando anticuerpos que detectaban Flag-C-RAF, V5-C-RAF, C-RAF total, p-MEK, p-ERK y ERK total. (B) Se trataron células 293T que expresaban conjuntamente mutantes de resistencia C- RAF marcados con His/V5 y marcados con Flag bien con vehículo (DMSO) o con 2 pM de vemurafenib durante 1 hora, y se inmunoprecipitó C-RAF marcada con His/V5 como en (A) anterior. Los lisados de entrada se inmunotransfirieron usando anticuerpos que reconocían C-RAF (S338), p-MEK, p-ERK y actina (control de carga). (C) Se midió la actividad de C-Raf quinasa in vitro en extractos celulares derivados de células 293T que expresaban transitoriamente el vector vacío marcado con Flag ("C"), C-RAF de tipo salvaje ("WT") y C-rAf que albergaba mutantes de resistencia S257P, P261T, G361A y E478K. Los ensayos se realizaron en presencia o ausencia de 2 pM de vemurafenib (véanse los Métodos). También se inmunotransfirió el lisado de entrada usando anticuerpos que detectaban p-MEK1/2, p-ERK1/2, MEK total, ERK total y actina. (D) Se midió la actividad de C-Raf quinasa in vitro en extractos celulares derivados de células A375 (B-RaFv600E) ("C") y A375 que expresan establemente C-RAF de tipo silvestre ("WT"), y C-RAF que alberga los mutantes de resistencia S257P, P261T y G361A en presencia y ausencia de 2 pM de vemurafenib. Se realizaron estudios de inmunotransferencia en el lisado de entrada usando anticuerpos que reconocían a p-MEK1/2, p-ERK1/2, MEK total, ERK total y actina. Todos los resultados son representativos de tres experimentos independientes.
La Figura 7 ilustra la homodimerización y las propiedades de unión a 14-3-3 Z de mutantes de resistencia C-RAF.
(A) Se inmunoprecipitaron células 293/T que expresaban transitoriamente los mutantes de resistencia C-RAF indicados en ausencia (-) o presencia (+) de 2 pM de vemurafenib durante 1 h con C-RAF, y se evaluaron los niveles de proteína unida (B-RAF y 14-3-3 Z) (paneles superiores) mediante inmunotransferencia. El lisado de entrada (paneles inferiores) muestra 14-3-3 Z, B-RAF, C-RAF, pMek1/2, pErk1/2, Mek, S338 C-RAF y actina. Los resultados son representativos de más de dos experimentos independientes. (B) Se inmunoprecipitaron células A375 que expresaban establemente los mutantes de resistencia C-RAF indicados en presencia y en ausencia de 2 pM de vemurafenib durante 16 h con C-RAF, y se evaluaron los niveles de proteína unida (B- RAF y 14-3-3 Z) (paneles superiores) mediante inmunotransferencia. El lisado de entrada se transfirió para lo mismo que en la Fig. 7A. Los resultados son representativos de más de dos experimentos independientes.
La Figura 8 ilustra que los mutantes de resistencia C-RAF requieren dimerización para la señalización de
mek/erk.
(A) Se expresaron construcciones que expresaban C-RAF marcado con Flag, de tipo silvestre o los mutantes de resistencia C-RAF indicados en ausencia (izquierda) o en presencia (derecha) del mutante R401H deficiente en dimerización (rosa) en células 293T. Se transfirieron los lisados usando anticuerpos que reconocían a p-MEK, p-ERK, MEK total o C-RAF total. (B) Se cultivaron células 293/T que expresaban conjuntamente mutantes de resistencia C-Raf marcados con His por sí mismas y en el contexto de la deficiencia de la dimerización (rosa) en ausencia o en presencia de vemurafenib (2 pM, 1 hora). Se realizaron inmunoprecipitaciones usando perlas de níquel y se evaluaron los niveles de C-RAF marcado con Flag mediante inmunotransferencia. También se muestran los lisados de entrada transferidos con anticuerpos que reconocen Flag-C-RAF, V5-C-RAF, C-RAF total, p-MEK, p-ERK, S338-C-RAF y actina.
La Figura 9 ilustra la caracterización bioquímica de alelos de resistencia C-RAF.
(A) La comparación de los niveles de pMek/pErk usando células A375 que expresaban C-RAF que contenía diversos alelos de resistencia que emergieron de las exploraciones por mutagénesis aleatoria se expresó en células A375. Se incluyó tubulina como control positivo. (B) Se trataron células A375 que expresaban C-RAF de tipo silvestre o alelos de resistencia C-RAF con el inhibidor de Raf PLX4720 durante 90 minutos a las dosis indicadas. Se realizaron estudios de inmunotransferencia con anticuerpos contra p-ERK, p-MEK y C- RAF total. Se usó tubulina como control de carga.
La Figura 10 ilustra la homodimerización y la actividad quinasa.
(A) Se inmunoprecipitaron células 293/T que expresaban conjuntamente mutantes de resistencia C-RAF marcados con His/V5 con C-RAF WT marcado con Flag tras 48 h con His, y se evaluaron los niveles de interacción de C-RAF marcado con Flag mediante inmunotransferencia. El lisado de entrada representa Flag- C-RAF, V5-C-RAF, C-RAF, pMek, pErk y Erk. (B) Se transfectaron células 293/T con el mutante C-RAF deficiente en dimerización R401H y el mutante guardián T421N, y se detectó la sensibilidad hacia Mek/Erk en presencia de vemurafenib (2 pM) durante 1 h. T421N se usó como control negativo y G361A se usó como control positivo.
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Descripción detallada de la invención
La presente invención se refiere al desarrollo de resistencia a agentes terapéuticos en el tratamiento del cáncer y a la identificación de dianas que confieren resistencia al tratamiento del cáncer. La presente divulgación también se refiere a la identificación de dianas farmacológicas paralelas para facilitar una estrategia de tratamiento eficaz a largo plazo y a la identificación de pacientes que se beneficiarían de dicho tratamiento.
La práctica de la presente invención empleará, salvo que se indique otra cosa, técnicas convencionales de biología molecular, inmunología, microbiología, biología celular y ADN recombinante, que están dentro de las habilidades en la técnica. Véase, por ejemplo, Sambrook, Fritsch y Maniatis, MOLECULAR CLONING: A LABORATORY MANUAL, (Edición actual); CURRENT PROTOCOLS IN MOLECULAR BIOLOGY (F. M. Ausubel et al. eds., (Edición actual)); la serie METHODS IN ENZYMOLOGY (Academic Press, Inc.); PCR 2: A PRACTICAL APPROACH (Edición actual); ANTIBODIES, A LABORATORY MANUAL y ANIMAL CELL CULTURE (R. I. Freshney, ed. (1987)). "DNA Cloning: A Practical Approach", vol. I y II (D. Glover, ed.); "Oligonucleotide Synthesis" (N. Gait, ed., Edición actual); "Nucleic Acid Hybridization" (B. Hames y S. Higgins, eds., Edición actual); "Transcription and Translation" (B. Hames y S. Higgins, eds., Edición actual); "Fundamental Virology", 2.a edición, vol. I y II (B. N. Fields y D. M. Knipe, eds.)
La cascada de la proteína quinasa activada por mitógeno (MAPK) es una vía de señalización intracelular fundamental que regula la transducción de señales en respuesta a diversos estímulos extracelulares, entre los que se incluyen los factores de crecimiento, citocinas y protooncogenes. La activación de esta vía produce la activación del factor de transcripción y alteraciones en la expresión génica, que finalmente conducen a cambios en las funciones celulares, incluyendo la proliferación celular, la regulación del ciclo celular, la supervivencia celular, la angiogénesis y la migración celular. La señalización clásica de MAPK es iniciada por receptores tirosina quinasa en la superficie celular, sin embargo, otras muchas moléculas de la superficie celular son capaces de activar la cascada de MAPK, incluyendo las integrinas, Las proteínas G heterotriméricas y los receptores de citocinas.
La unión del ligando a un receptor de la superficie celular, por ejemplo, un receptor tirosina quinasa, normalmente produce la fosforilación del receptor. La proteína adaptadora Grb2 se asocia con el dominio intracelular fosforilado del receptor activado, y esta asociación recluta factores de intercambio de nucleótidos de guanina que incluyen SOS-I y CDC25 hacia la membrana celular. Estos factores de intercambio de nucleótidos de guanina interactúan y activan la GTPasa Ras. Las isoformas comunes de Ras incluyen K-Ras, N-Ras, H-Ras y otras. Tras la activación de Ras, la serina/treonina quinasa Raf (por ejemplo, A-Raf, B-Raf, C-Raf o Raf-1) se recluta hacia la membrana celular mediante la interacción con Ras o de manera independiente de Ras en el citosol, en el que experimenta cambios de configuración y se une a proteínas de armazón tales como 14-3-3 (King et al., Nature396; 180-183 (1998); Chaudhary et al., Curr Biol 10: 551-554 (2000); Avruch et al., Endo Rev 56: 127-156 (2001), Wellbrock et al., Nat Rev Mol Cell Biol 5: 875-885 (2004). La unión a 14-3-3 y la estabilización/activación de CRAF se rigen por la fosforilación de restos de activación tales como S338, Y341 en la región reguladora de carga negativa (región N) y S621 en el extremo C, fuera del dominio quinasa, y la desfosforilación de restos reguladores negativos tales como S259 en el dominio CR2 (Fig. 1C) y muchos otros sitios de fosforilación distribuidos a lo largo de la proteína que reflejan además su regulación compleja (Avruch et al., Id. (2001); Wellbrock et al., Id. (2004); Garnett et al., Mol. Cell 20: 963-969 (2005). La activación de CRAF también se induce mediante la formación artificial de homodímeros (Avruch et al., Id. (2001); Wellbrock et al., Id., (2004).)
Luego se fosforila Raf. Raf activa directamente MEKI y MEK2 mediante la fosforilación de dos restos de serina en las posiciones 217 y 221. Tras la activación, MEKI y MEK2 fosforilan restos de tirosina (Tyr-185) y treonina (Thr-183) en serina/treonina quinasas ErkI y Erk2, lo que resulta en la activación de Erk. La Erk activada regula muchas dianas en el citosol y también se transloca hacia el núcleo, en el que fosforila una serie de factores de transcripción que regulan la expresión génica. La Erk quinasa tiene numerosas dianas, entre las que se incluyen Elk-I, c-Ets1, c-Ets2, p90RSKI, MNKI, MNK2, MSKI, MSK2 y TOB. Si bien la vía anterior es una representación clásica de la señalización de MAPK, existe una interacción considerable entre la vía de MAPK y otras cascadas de señalización.
Las aberraciones en la señalización de MAPK tienen un papel significativo en la biología del cáncer. La expresión alterada de Ras es común en muchos cánceres, y también se han identificado mutaciones activadoras en Ras. Dichas mutaciones se encuentran en hasta el 30 % de todos los cánceres, y son especialmente comunes en los carcinomas pancreáticos (90 %) y de colon (50 %). Además, se han identificado mutaciones activadoras de B-Raf en los melanomas y en el cáncer de ovario. La mutación más habitual, BRAFV600E, produce la activación constitutiva de la vía de MAP quinasa cadena abajo, y es necesaria para la proliferación de las células de melanoma, el crecimiento de agar blando y la formación de xenoinjertos tumorales. La amplificación de CRAF es ha visto implicada en el cáncer de próstata y el cáncer de vejiga (Edwards et al., 2003; Simon et al., 2001), además de translocaciones cromosómicas en el cáncer de estómago y los astrocitomas pilocíticos (Shimizu et al., 1986; Jones et al., 2009). Sin embargo, la tasa de aparición de mutaciones CRAF en los cánceres humanos es del 1 % (COSMIC), lo que es atribuible a su baja actividad quinasa basal en comparación con BRAF (Marais et al., Science 280: 109-112 (1997); Emuss et al., Cancer Res 65: 9719-9726 (2005); Garnett et al., Mol. Cell 20: 963-969 (2005)). Basándose en la función definida de la sobreactivación de MAPK en los cánceres humanos, los componentes de dirección de la vía de MAPK con inhibidores específicos son un enfoque prometedor para el tratamiento del cáncer. Sin embargo, los pacientes pueden tener resistencia innata o resistencia adquirida a estos tratamientos prometedores. A continuación,
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se describen la identificación de mutaciones que confieren resistencia en quinasas diana, marcadores de diagnóstico y/o de pronóstico y terapias de tratamiento para estos pacientes con resistencia innata o adquirida.
MUTACIONES C-RAF
Aunque el tratamiento del cáncer con inhibidores de RAF, tales como PLX4032, es un enfoque terapéutico prometedor, con frecuencia, los pacientes que reciben dichos tratamientos recaen o no responden, y por consiguiente, la enfermedad de estos pacientes progresa. Como se describe en el presente documento, la presente invención se refiere al descubrimiento de mutaciones en C-RAF que confieren resistencia a inhibidores de RAF, algunos de los cuales se encuentran actualmente en desarrollo clínico. La adquisición de dicha mutación en las células cancerosas hace que las células del paciente sean resistentes al tratamiento con ciertos inhibidores de RAF. La invención se refiere al desarrollo de resistencia a los inhibidores de RAF PLX 4720, PLX4032 y (S)-metil-1-(4-(3- (5-cloro-2-fluoro-3-(metilsulfonamido)fenil)-1-isopropil-1H-pirazol-4-il)pirimidin-2-ilamino)propan-2-il-carbamato. A
modo de ejemplo, en la Tabla 1, se muestran inhibidores de RAF a modo de ejemplo. El inhibidor de RAF (S)-metil- 1-(4-(3-(5-cloro-2-fluoro-3-(metilsulfonamido)fenil)-1-isopropil-1H-pirazol-4-il)pirimidin-2-ilamino)propan-2-il- carbamato se aborda genérica y específicamente (Compuesto 9,
tabla 1, página 50 del documento provisional; Compuesto 9 de la pág. 72 de la publicación PCT WO2011/025927.
La emergencia clínica de una mutación de C-RAF que confiera resistencia a un inhibidor de RAF como se describe en el presente documento sugiere que la relevancia biológica de la dependencia asociada a RAF/MEK se mantiene incluso en etapas avanzadas de malignidad. Así pues, la insuficiencia de inhibidores de RAF para generar respuestas tumorales duraderas en muchos tumores malignos, incluyendo los melanomas, puede indicar una potencia o farmacodinámica subóptimas del fármaco en el entorno clínico. Basándose en los hallazgos descritos en el presente documento, las modalidades de tratamiento que implican agentes dirigidos en tumores dirigidos por RAF o MEK pueden beneficiarse de fármacos más potentes, la dosificación modificada de fármacos existentes o la inhibición combinada de RAF y MEK. Los ejemplos de inhibidores de RAF incluyen, pero sin limitación, los inhibidores enumerados en la Tabla I. Los ejemplos no limitantes de inhibidores de MEK incluyen AZD6244; CI-1040; PD184352; PD318088, PD98059, PD334581, RDEA119, 6-metoxi-7-(3-morfolin-4-il-propoxi)-4-(4-fenoxi-fenilamino)- quinolin-3-carbonitrilo y 4-[3-cloro-4-(1-metil-1H-imidazol-2-ilsulfanil)-fenilamino]-6-metoxi-7-(3-morfolin-4-il-propoxi)- quinolin-3-carbonitrilo. En la Tabla 2, se muestran inhibidores de MEK a modo de ejemplo. Estas innovaciones terapéuticas, junto con un sólido perfil genómico tumoral para estratificar a los pacientes, deberían acelerar el advenimiento del tratamiento personalizado contra el cáncer en los cánceres con mutaciones oncogénicas "susceptibles de convertirse en fármacos".
Tabla 1: Inhibidores de RAF ilustrativos
Nombre N.° CAS Estructura
1
RAF265 92788 0-90- n ? «y'V'V'V'"' *1tf írt-U M " 0' F F
2
Sorafenib Tosylate Nexavar Bay 43-9006 47520 7-59-1 Cfs o avS o (*v5rvi''N" UaU u h H H CtHjOj8
Sorafenib 4-[4-[[4-cloro-3- (trifluorometil)fenil]carbamoilamino]fenoxi]- W-metil-piridin-2-carboxamida 28446 1-73-0 VY" ^ F i! 1 f\ i H
Nombre N.° CAS Estructura
3
SB590885 «r p H n... /—\ /... í:. />...<;x A -O ........y HOH
4
PLX4720 91850 5-84-7 K pL y**), \ rJ\ u ° ) lf T> ¿ M &
5
PLX4032 10298 72-54-5 \ i
6
GDC-0879 90528 1-76-7 íí^ HO^ ^
7
ZM 336372 20826 0-29-1 ZI “& —z \
imagen1
Tabla 2: Inhibidores de MEK ilustrativos
Nombre N.° CAS Estructura
1
CI-1040/PD184352 212631-79-3 jOA°^a F'Y^Nn i
2
AZD6244 606143-52-6 H ° T H V1 V=N
3
PD318088 391210-00-7 ?M H VoY H 5 0H rVSrS F
4
PD98059 167869-21-8 0 í^tS
5
PD334581 o ^ \___ Qc;
6
RDEA119 /V-[3,4-difluoro-2-[(2-fluoro-4- yodofenil)amino"]-6-metoxifenil]-1-[(2R)- 2,3-dihid roxi propil]- ciclopropanosulfonamida 923032-38-6 i A oh V7 hn^^f 0 H
7
6-Metoxi-7-(3-morfolin-4-il-propoxi)-4-(4- fenoxi-fenilamino)-quinolin-3-carbonitrilo n CX £XNH
8
4-[3-Cloro-4-(1-metil-1H-imidazol-2- ilsulfanil)-fenilamino]-6-metoxi-7-(3- morfolin-4-il-propoxi)-quinolin-3- carbonitrilo n «ciyynh
En el presente documento, se describen métodos para identificar mutaciones en un polipéptido C-RAF, o mutaciones en una molécula de ácido nucleico que codifica el polipéptido C-RAF, que confieren resistencia en células que expresan el polipéptido C-RAF a fármacos que inhiben la actividad de RAF. Un "polipéptido C-RAF mutante", como 5 se hace referencia en el presente documento, incluye un polipéptido C-RAF que incluye una o más mutaciones que confieren resistencia a uno o más inhibidores de rAf conocidos. Asimismo, una "molécula de ácido nucleico de C- RAF mutante", como se hace referencia en el presente documento, incluye una molécula de ácido nucleico que codifica un polipéptido C-RAF mutante. Las moléculas de ácido nucleico que codifican polipéptidos C-RAF que incluyen una o más mutaciones pueden crearse usando cualquier método adecuado conocido en la técnica, que 10 incluyen, por ejemplo, mutagénesis aleatoria o mutagénesis dirigida de una secuencia de ácido nucleico de C-RAF de tipo silvestre, que se puede realizar en E. coli. La secuencia de ácido nucleico de C-RAF de tipo silvestre puede ser una secuencia de ácido nucleico de MEK1 de tipo silvestre humana. La secuencia de ácido nucleico de C-RAF de tipo silvestre descrita en el presente documento es C-RAF humano de tipo silvestre (SEQ ID NO: 1)( número de registro BC018119.2.). Las moléculas de ácido nucleico de C-RAF mutante pueden seleccionarse en células 15 sensibles al tratamiento con un inhibidor de RAF para identificar un ácido nucleico que codifique un polipéptido C- RAF mutante en comparación con un polipéptido C-RAF de tipo silvestre que sea resistente al tratamiento con el inhibidor de RAF. El polipéptido C-RAF descrito en el presente documento es el C-RAF humano de tipo silvestre (SEQ ID NO: 2) (ID de Swiss-Prot n.° P04049-10).
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Se puede usar cualquier método adecuado para seleccionar los ácidos nucleicos de C-RAF mutantes y los polipéptidos C-RAF mutantes para la resistencia al tratamiento con un inhibidor de RAF. Por ejemplo, se puede expresar una molécula de ácido nucleico que codifique un polipéptido C-RAF mutante en células que, de otro modo, serían sensibles al tratamiento con RAF. Una estirpe celular ilustrativa útil para este fin es la estirpe celular de melanoma A375. Tras la expresión del polipéptido C-RAF mutante, las células se pueden tratar con un RAF. La actividad del polipéptido C-RAF mutante puede medirse y compararse luego con la actividad de un polipéptido C- RAF de tipo silvestre expresado de forma similar y tratado con el inhibidor de RAF. La actividad de un polipéptido C- RAF puede determinarse, por ejemplo, midiendo la proliferación o viabilidad de las células después del tratamiento con el inhibidor de RAF, de modo que la proliferación o viabilidad se correlacionan positivamente con la actividad C- RAF. El crecimiento, la proliferación o la viabilidad celulares se pueden determinar usando cualquier método adecuado conocido en la técnica. El crecimiento celular se puede determinar usando ensayos de viabilidad/proliferación celular bien fundamentados tales como MTS o Cell Titer GLo, en los que el crecimiento celular en presencia de un inhibidor de RAF se expresa como un porcentaje del observado en células no tratadas cultivadas en ausencia del Inhibidor de RAF. La resistencia se define como un cambio en el valor de IC50 de al menos el doble, más preferentemente, de al menos el triple, lo más preferentemente de al menos 4-5 veces, con respecto a un control adecuado. Como alternativa, la resistencia se define como un valor de IC50 de ~ 1 uM). La actividad de un polipéptido C-RAF también puede determinarse, por ejemplo, determinando la cantidad relativa de ERK1/2 fosforilada presente en la célula después del tratamiento con el inhibidor de RAF. La actividad de un polipéptido C-RAF de tipo silvestre o mutante también puede determinarse usando un ensayo de fosforilación in vitro, en el que se determina la actividad MEK1 midiendo la proporción de sustrato de ERK1/2 fosforilada en el ensayo después del tratamiento con el inhibidor de RAF o de MEK. Un polipéptido C-RAF mutante que tiene una actividad superior a la de un polipéptido C-RAF de tipo silvestre después del tratamiento con un inhibidor de RAF se identifica como aquel que tiene una mutación que confiere resistencia a un inhibidor de RAF. La mutación que confiere resistencia a un inhibidor de RAF puede identificarse entonces secuenciando el ácido nucleico que codifica el polipéptido C-RAF mutante, o secuenciando directamente el polipéptido C-RAF mutante.
De esta manera, además de usar métodos de secuenciación paralela masiva, como se describe en el Ejemplo 1, se identificaron sustituciones de aminoácidos en el polipéptido C-RAF que, cuando se mutan, confieren resistencia a los inhibidores de RAF PLX4032, PLX4720 y (S)-metil-1-(4-(3-(5-cloro-2-fluoro-3-(metilsulfonamido)fenil)-1-isopropil-1H- pirazol-4-il)pirimidin-2-ilamino)propan-2-il-carbamato. En particular, sustituciones en uno o más de los siguientes aminoácidos del polipéptido C-RAF humano confieren resistencia a inhibidores de RAF, entre los que se incluyen 104E, 257S, 261P, 356G, 361G, 427S, 447D, 469M, 478E y 554R. Un polipéptido C-RAF mutante puede incluir una mutación con respecto al polipéptido C-RAF humano de tipo silvestre en uno o más de estos restos de aminoácidos. El polipéptido C-RAF mutante puede incluir una o más de las siguientes mutaciones de resistencia: 104E>K, 257S>P, 261 P>T, 356G>E, 361G>A, 427S>T, 447D>N, 469M>I, 478E>K y 554R>K.
Moléculas de ácido nucleico aisladas
La presente invención se refiere a polinucleótidos o moléculas de ácido nucleico relacionadas con el gen C-RAF y su producto génico respectivo. Estos polinucleótidos o moléculas de ácido nucleico son aislables y purificables a partir de células de mamífero. Las moléculas de ácido nucleico de C-RAF aisladas descritas en el presente documento comprenden una mutación que confiere resistencia a uno o más inhibidores de RAF. Una "molécula de ácido nucleico de C-RAF mutante", como se hace referencia en el presente documento, incluye una molécula de ácido nucleico de C-RAF que codifica un polipéptido C-RAF mutante, es decir, un polipéptido C-RAF que incluye una o más mutaciones que confieren resistencia a uno o más inhibidores de RAF.
Se contempla que una molécula de ácido nucleico de C-RAF aislada y purificada, por ejemplo, una molécula de ácido nucleico de C-RAF mutante, puede adoptar la forma de ARN o ADN. Como se usa en el presente documento, la expresión "producto de transcripción de ARN" se refiere a una molécula de ARN que es el producto de la transcripción de una molécula de ácido nucleico de ADN. Dicho producto de transcripción puede codificar una o más proteínas.
Como se usa en la presente solicitud, El término "polinucleótido" se refiere a una molécula de ácido nucleico, ARN o ADN, que se ha aislado, tal como que está libre de ácido nucleico genómico total. Por lo tanto, un "polinucleótido que codifica C-RAF" se refiere a un segmento de ácido nucleico que incluye secuencias codificantes de C-RAF, aunque está aislado de, o purificado y libre de, ADN genómico total y proteínas. Cuando la presente solicitud se refiere a la función o actividad de un polinucleótido o ácido nucleico que codifica C-RAF, se entiende que el polinucleótido codifica una molécula que es capaz de realizar una actividad de un polipéptido C-RAF de tipo silvestre, por ejemplo, la fosforilación del sustrato de ERK1/2.
El término "ADNc" pretende referirse a ADN preparado usando ARN como molde. También se contempla que un ácido nucleico codificante de C-RAF dado o un gen C-RAF de una célula dada se puede representar mediante variantes naturales o cepas que tienen secuencias de ácido nucleico ligeramente diferentes, pero que, no obstante, codifican un polipéptido C-RAf activo. El polipéptido C-RAF activo puede ser un polipéptido C-RAF humano activo. El polipéptido C-RAF activo puede ser un polipéptido C-RAF mutante que tenga una actividad de un polipéptido C- RAF de tipo silvestre, pero que sea resistente a uno o más inhibidores de RAF conocidos. Por consiguiente, En el
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presente documento, se describen derivados de ácidos nucleicos de C-RAF o polipéptidos C-RAF con mínimos cambios en los ácidos nucleicos o aminoácidos, pero que poseen la misma función biológica.
En algunas realizaciones, la invención se refiere a vectores recombinantes que incorporan secuencias de ADN que codifican polipéptidos C-RAF mutantes de la invención. En el presente documento, se describen segmentos de aDn aislados y vectores recombinantes que incorporan secuencias de ADN que codifican un polipéptido C-RAF que incluye dentro de su secuencia de aminoácidos una secuencia de aminoácidos contigua de un polipéptido C-RAF que comprende una o más mutaciones que confieren resistencia a uno o más inhibidores de RAF.
Los segmentos de ácido nucleico independientemente de la longitud de la propia secuencia codificante, se pueden combinar con otras secuencias de ADN o ARN, tales como promotores, señales de poliadenilación, sitios de enzimas de restricción adicionales, sitios de clonación múltiple, otros segmentos codificantes y similares, de manera que su longitud total puede variar considerablemente. Por lo tanto, se contempla que es posible emplear un fragmento de ácido nucleico de casi cualquier longitud, estando la longitud total preferentemente limitada por la facilidad de preparación y de uso en el protocolo de ADN recombinante pretendido. Una secuencia "heteróloga" se refiere a una secuencia que es foránea o exógena a la secuencia restante. Un gen heterólogo se refiere a un gen que no se encuentra en la naturaleza adyacente a las secuencias con las que ahora se sitúa.
De acuerdo con la divulgación, la secuencia de ácido nucleico puede codificar un polipéptido C-RAF mutante que tenga actividad C-RAF, en el que se produzca al menos una sustitución de aminoácido en una o más posiciones de aminoácidos incluyendo las siguientes: 104E, 257S, 261P, 356G, 361G, 427S, 447D, 469M, 478E y 554R. De acuerdo con la divulgación, el polipéptido C-RAF mutante puede incluir una o más de las siguientes mutaciones de resistencia: 104E>K, 257S>P, 261P>T, 356G>E, 361G>A, 427S>T, 447D>N, 469M>I, 478E>K y 554R>K. Las moléculas de C-RAF mutantes de la invención son como se especifica en la reivindicación 1.
Vectores de expresión y células hospedadoras
La presente invención engloba vectores de expresión que codifican un polipéptido C-RAF de la invención, así como células hospedadoras en las que se han introducido dichos vectores de expresión. El término "vector" se usa para referirse a una molécula de ácido nucleico portadora en la que puede introducirse una secuencia de ácido nucleico para la introducción en una célula en la que pueda replicarse. Una secuencia de ácido nucleico puede ser "exógena", lo que significa que es foránea para la célula en la que se introduce el vector o que la secuencia es homóloga a una secuencia de la célula, pero en una posición dentro del ácido nucleico de la célula hospedador en la que la secuencia no se encuentra normalmente. Los vectores incluyen plásmidos, cósmidos, virus (bacteriófagos, virus de animales y virus vegetales) y cromosomas artificiales (por ejemplo, YAC). Un experto en la materia estaría bien equipado para construir un vector a través de técnicas recombinantes convencionales.
La expresión "vector de expresión" o "construcción de expresión" se refiere a un vector que contiene una secuencia de ácido nucleico que codifica al menos parte de un producto génico capaz de transcribirse. En algunos casos, las moléculas de ARN se traducen a una proteína, una proteína o un péptido. En otros casos, estas secuencias no se traducen, por ejemplo, en la producción de moléculas antisentido o ribozimas. Los vectores de expresión pueden contener una variedad de "secuencias de control", que se refieren a las secuencias de ácido nucleico necesarias para la transcripción y, posiblemente, la traducción de una secuencia de codificación unida operativamente en un determinado organismo hospedador. Además de las secuencias de control que gobiernan la transcripción y la traducción, los vectores y los vectores de expresión pueden contener secuencias de ácido nucleico que también sirvan para otras funciones.
Como se usa en el presente documento, los términos "célula", "estirpe celular", y "cultivo celular" se pueden usar indistintamente. En la invención, se puede emplear una célula que comprenda un polinucleótido C-RAF, ya sea mutado o de tipo silvestre. Todos estos términos también incluyen su progenie, que se refiere a todas y cada una de las generaciones posteriores. Se entiende que toda la progenie puede no ser idéntica debido a mutaciones deliberadas o inadvertidas. En el contexto de la expresión de una secuencia de ácido nucleico heteróloga, "célula hospedadora" se refiere a una célula procariota o eucariota, e incluye cualquier organismo transformable que sea capaz de replicar un vector y/o expresar un gen heterólogo codificado por un vector. Una célula hospedadora puede usarse, y se ha usado, como receptora de vectores. Una célula hospedadora puede ser "transfectada" o "transformada", lo que se refiere a un proceso mediante el que se transfiere o introduce ácido nucleico exógeno a la célula hospedadora. Una célula transformada incluye la célula objeto primaria y su progenie. Una "célula hospedadora recombinante" se refiere a una célula hospedadora que porta un ácido nucleico recombinante, es decir, un ácido nucleico que ha sido manipulado in vitro o que es una copia replicada de un ácido nucleico que ha sido manipulado de esta manera. Una célula hospedadora puede derivarse de procariotas o eucariotas, dependiendo de si el resultado deseado es la replicación del vector, la expresión de parte o de la totalidad de las secuencias de ácido nucleico codificadas por el vector, o la producción de partículas víricas infecciosas.
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Moléculas polipeptídicas aisladas
En el presente documento, también se describen polipéptidos C-RAF aislados y/o purificados, y partes biológicamente activas de los mismos. Los polipéptidos C-RAf descritos en el presente documento comprenden una mutación en uno o más aminoácidos que confieren resistencia a uno o más inhibidores de RAF. Un "polipéptido C- RAF mutante", como se hace referencia en el presente documento, incluye un polipéptido C-RAF que incluye una mutación en una o más posiciones de aminoácidos que confieren resistencia a uno o más inhibidores de RAF.
Las partes biológicamente activas de un polipéptido C-RAF incluyen péptidos que comprenden secuencias de aminoácidos derivadas de la secuencia de aminoácidos de un polipéptido C-RAF, por ejemplo, la secuencia de aminoácidos que se muestra en SEQ ID NO: 2, que incluyen menos aminoácidos que un polipéptido C-RAF de longitud completa, y muestra al menos una actividad de un polipéptido C-RAF. Normalmente, las partes biológicamente activas (péptidos, por ejemplo, péptidos que son de, por ejemplo, 5, 10, 15, 20, 30, 35, 36, 37, 38, 39, 40, 50, 100 o más aminoácidos de longitud) comprenden un dominio o motivo con al menos una actividad de un polipéptido C-RAF. Además, otras partes biológicamente activas, en las que se eliminan otras regiones de la proteína, pueden prepararse mediante técnicas recombinantes y evaluarse para determinar una o más de las actividades descritas en el presente documento. Preferentemente, las partes biológicamente activas de un polipéptido C-RAF incluyen uno o más dominios/motivos seleccionados o partes de los mismos que tienen actividad biológica.
Los polipéptidos C-RAF pueden producirse mediante técnicas de ADN recombinante. Por ejemplo, se clona una molécula de ácido nucleico que codifica la proteína en un vector de expresión (como se ha descrito anteriormente), se introduce el vector de expresión en una célula hospedadora (como se ha descrito anteriormente) y se expresa el polipéptido C-RAF en la célula hospedadora. El polipéptido C-RAF se puede aislar luego de las células mediante un esquema de purificación apropiado usando técnicas de purificación de proteínas convencionales. Como alternativa a la expresión recombinante, se puede sintetizar químicamente un polipéptido C-RAF usando técnicas de síntesis de péptidos convencionales. Además, se puede aislar un polipéptido C-RAF nativo y/o un polipéptido C-RAF mutante a partir de células (por ejemplo, células cancerosas), por ejemplo, usando un anticuerpo anti-C-RAF, que puede producirse mediante técnicas convencionales utilizando un polipéptido C-RAF o fragmento del mismo de la presente invención.
También se pueden usar proteínas quiméricas o de fusión C-RAF. Como se usa en el presente documento, una "proteína quimérica" MEK1 o "proteína de fusión" MEK1 comprende un polipéptido C-RAF unido operativamente a un polipéptido que no es C-RAF. Un "polipéptido C-RAF" se refiere a una proteína que tiene una secuencia de aminoácidos correspondiente a un polipéptido C-RAF, mientras que un "polipéptido no C-RAF" se refiere a una proteína que tiene una secuencia de aminoácidos correspondiente a una proteína que no es sustancialmente homólogo al polipéptido C-RAF, por ejemplo, una proteína que es sustancialmente diferente del polipéptido C-RAF, que no muestra actividad C-RAF y que se deriva del mismo organismo o de un organismo diferente. Dentro de la proteína de fusión, la expresión "unido operativamente" pretende indicar que el polipéptido C-RAF y el polipéptido que no es C-RAF están fusionados en fase entre sí. El polipéptido que no es C-RAF puede fusionarse al extremo N o al extremo C del polipéptido C-RAF. La proteína de fusión puede ser una proteína de fusión GST-C-RAF, en la que los aminoácidos de C-RAf se fusionan con el extremo C del polipéptido GST. Dichas proteínas de fusión pueden facilitar la purificación del polipéptido C-RAF recombinante. La proteína de fusión puede ser un polipéptido C-RAF que contenga una secuencia señal heteróloga en su extremo N. En ciertas células hospedadoras (por ejemplo, células hospedadoras de mamífero), la expresión y/o secreción de una proteína MEK1 puede aumentarse mediante el uso de una secuencia señal heteróloga.
El polipéptido C-RAF mutante se puede generar mediante la mutagénesis de un polipéptido C-RAF de tipo silvestre, o de la molécula de ácido nucleico que codifica un polipéptido C-RAF de tipo silvestre. El polipéptido C-RAF mutante también puede identificarse seleccionando bibliotecas combinatorias de mutantes de C-RAF para un polipéptido C- RAF mutante que tenga una actividad deseada, por ejemplo, resistencia a uno o más inhibidores de RAF. Se conocen varias técnicas en la materia para seleccionar productos génicos de genotecas combinatorias preparadas mediante mutaciones puntuales o truncamiento, y para explorar genotecas de ADNc en busca de productos génicos que tengan una propiedad seleccionada. Dichas técnicas se pueden adaptar a la exploración rápida de las genotecas generadas por mutagénesis combinatoria. Las técnicas más ampliamente usadas, que son susceptibles del análisis de alto rendimiento, para la exploración de grandes genotecas normalmente incluyen la clonación de la genoteca en vectores de expresión replicables, la transformación de las células apropiadas con la genoteca resultante de vectores, y la expresión de los genes combinatorios en condiciones en las que la detección de una actividad deseada facilite el aislamiento del vector codificante del gen cuyo producto se detectó.
Anticuerpos
Los polipéptidos expresados a partir de los polinucleótidos de la invención pueden usarse para generar anticuerpos. Los anticuerpos pueden usarse para detectar y cuantificar la expresión de los polipéptidos C-RAF mutantes. Los anticuerpos se pueden usar para alterar la actividad de un polipéptido C-RAF mutante. Los polipéptidos expresados a partir de los polinucleótidos de la invención que comprenden al menos seis, ocho, diez, doce, quince, veinte o
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treinta aminoácidos consecutivos se pueden usar como inmunógenos. Los polipéptidos pueden usarse para obtener una preparación de anticuerpos que se unen específicamente a un polipéptido C-Raf mutante de la invención.
Los anticuerpos pueden ser anticuerpos monoclonales y policlonales, anticuerpos monocatenarios, anticuerpos quiméricos, anticuerpos bifuncionales/biespecíficos, anticuerpos humanizados, anticuerpos humanos y anticuerpos injertados en la región determinante de la complementariedad (CDR), que son específicos para la proteína diana o fragmentos de la misma; e incluyen también fragmentos de anticuerpos, incluyendo Fab, Fab', F(ab')2, scFv, Fv, anticuerpos de camello o microanticuerpos. Un anticuerpo también puede referirse a un anticuerpo anti-idiotipo, es decir, un anticuerpo dirigido contra la parte específica del antígeno de la secuencia de un anticuerpo y, por lo tanto, reconoce los sitios de unión de otros anticuerpos; o un anticuerpo anti-anti-idiotipo, es decir, un anticuerpo con un sitio de combinación que imita el epítopo en el antígeno que se usó para generar el anticuerpo original. Las técnicas para generar anticuerpos son bien conocidas en la materia.
También se pueden construir anticuerpos monocatenarios. Los anticuerpos monocatenarios que se unen específicamente a un polipéptido expresado a partir de los polinucleótidos de la invención se pueden aislar, por ejemplo, de bibliotecas de presentación de inmunoglobulina monocatenaria, como se conoce en la técnica. La biblioteca se "selecciona" frente a un polipéptido, y se pueden aislar varios anticuerpos monocatenarios que se unen a diferentes epítopos del polipéptido con alta afinidad. Hayashi et al., 1995, Gene 160: 129-30. Dichas bibliotecas son conocidas y están disponibles para los expertos en la materia. Los anticuerpos también pueden construirse usando la reacción en cadena de la polimerasa (PCR), usando ADNc de hibridoma como molde. Thirion et al., 1996, Eur. J. Cáncer Prey. 5: 507-11.
El anticuerpo monocatenario puede ser monoespecífico o biespecífico, y puede ser bivalente o tetravalente. La construcción de anticuerpos monocatenarios biespecíficos tetravalentes se enseña en Coloma y Morrison, 1997, Nat. Biotechnol. 15: 159-63. La construcción de anticuerpos monocatenarios biespecíficos bivalentes se describe en Mallender y Voss, 1994, J. Biol. Chem. 269: 199-206.
Se puede construir entonces una secuencia de nucleótidos que codifique el anticuerpo monocatenario usando la síntesis de nucleótidos manual o automática, clonarse en vectores de expresión de ADN usando metodologías de ADN recombinante convencionales, e introducirse en células que expresen el gen seleccionado, como se describe más adelante. Como alternativa, los anticuerpos pueden producirse directamente usando tecnología de fagos filamentosos, Verhaar et al., 1995, Int. J. Cancer 61:497-501; Nicholls et al., 1993. J. Immunol. Meth. 165:81-91.
Los anticuerpos se pueden unir específicamente a los epítopos de los polipéptidos expresados a partir de los polinucleótidos de la invención. En una realización preferida, los epítopos no están presentes en otras proteínas humanas. Por lo general, un número mínimo de aminoácidos contiguos para codificar un epítopo es de 6, 8 o 10. Sin embargo, se pueden usar más, por ejemplo, al menos 15, 25 o 50, en especial, para formar epítopos que incluyan restos no contiguos o determinadas configuraciones.
Los anticuerpos que se unen específicamente a los polipéptidos incluyen aquellos que se unen a polipéptidos de longitud completa. Los anticuerpos de unión específica no detectan otras proteínas en transferencias Western de células humanas, o proporcionan una señal al menos diez veces inferior a la señal proporcionada por la proteína diana de la invención. Los anticuerpos que tienen dicha especificidad se pueden obtener mediante una selección rutinaria. Los anticuerpos pueden inmunoprecipitar los polipéptidos expresados a partir de los polinucleótidos de la invención desde extractos o soluciones celulares. Además, los anticuerpos pueden reaccionar con polipéptidos expresados a partir de los polinucleótidos de la invención en secciones de tejido o en transferencias Western de geles de poliacrilamida. Preferentemente, los anticuerpos no muestran reactividad cruzada inespecífica con otras proteínas humanas en transferencias Western o en ensayos inmunocitoquímicos.
Las técnicas de purificación de anticuerpos a los polipéptidos expresados a partir de los polinucleótidos de la invención están disponibles en la materia. Los anticuerpos se pueden pasar a través de una columna a la que se una proteína o un polipéptido particular expresado a partir de los polinucleótidos de la invención. Luego se eluyen los anticuerpos unidos, por ejemplo, con un tampón que tenga una alta concentración de sal.
Detección de mutaciones
En el presente documento, se describen métodos para detectar la presencia de un polipéptido C-RAF mutante en una muestra (por ejemplo, una muestra biológica de un paciente con cáncer). Se puede usar una variedad de métodos de selección para detectar la presencia de un polipéptido C-RAF mutante de la invención en una muestra, por ejemplo, una muestra de ácido nucleico y/o una muestra de proteína. La muestra puede incluir una célula o un extracto celular.
La muestra de acuerdo con la invención es de células obtenidas de un sujeto que tiene cáncer.
Se pueden usar métodos para detectar la presencia de mutaciones de resistencia en ADN genómico, ADNc y ARN (es decir, ARNm) que contienen una secuencia codificante de un polipéptido C-RAF, o una parte biológicamente activa del mismo. Asimismo, se pueden usar métodos para detectar la presencia de mutaciones de resistencia en el
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polipéptido C-RAF, o partes biológicamente activas del mismo. En particular, los métodos pueden incluir, pero sin limitación, los siguientes, que se pueden usar para detectar la presencia de un polipéptido C-RAF, o una molécula de ácido nucleico codificante del polipéptido C-RAf, que tenga una mutación en una o más posiciones de aminoácidos en comparación con el polipéptido C-RAF de tipo silvestre (SEQ ID NO: 2). Los anticuerpos dirigidos a un polipéptido C-RAF mutante pueden usarse para detectar la presencia del polipéptido mutante.
Las mutaciones puntuales pueden detectarse usando cualquier método adecuado conocido en la técnica, entre los que se incluyen, por ejemplo, la electroforesis en gel con gradiente de desnaturalización ("DGGE"), el análisis de polimorfismos de longitud de fragmentos de restricción ("RFLP"), métodos de escisión química o enzimática, la secuenciación directa de regiones diana amplificadas por PCR (véase más arriba), el análisis de polimorfismos de configuración monocatenaria ("SSCP"), la reacción en cadena de la polimerasa, la secuenciación, la hibridación o "captura híbrida" seguida de la pirosecuenciación o secuenciación de una sola molécula. También se pueden usar otros métodos para detectar mutaciones conocidas por los expertos en la materia.
Se pueden realizar métodos de selección para examinar a un individuo en busca de la aparición de las mutaciones identificadas anteriormente. Por ejemplo, se toman células de un paciente para su análisis. El paciente es un paciente con cáncer. Los métodos adecuados para procesar dichas muestras para la detección de una mutación en un ácido nucleico de C-RAF o un polipéptido C-RAF son conocidos en la técnica, y el experto en la materia puede adaptar el procesamiento de dichas muestras de acuerdo con el método de detección escogido.
La presencia o ausencia de una o más mutaciones descritas en el presente documento determina la probabilidad de que los individuos explorados resistan el tratamiento con un inhibidor de RAF. De acuerdo con los métodos descritos en el presente documento, estos resultados se usarán para ajustar y/o alterar la dosis del inhibidor de RAF, o para seleccionar un ciclo de tratamiento usando un segundo inhibidor. En algunas realizaciones, el segundo inhibidor puede ser un inhibidor de MEK. El tratamiento eficaz de un sujeto que tiene cáncer puede comprender la erradicación de una célula cancerosa, el cese o la reducción de la velocidad de crecimiento del cáncer (tal como del tumor sólido), o la mejoría de al menos un síntoma de cáncer.
Las mutaciones de resistencia en el polipéptido C-RAF, o en moléculas de ácido nucleico que codifican el polipéptido C-RAF, pueden detectarse usando cualquier método adecuado conocido en la técnica, o modificaciones del mismo, incluyendo los métodos descritos a continuación. Dichos métodos incluyen el uso de la reacción en cadena de la polimerasa específica del alelo, la secuenciación directa o indirecta del sitio, el uso de enzimas de restricción en las que los respectivos alelos del sitio crean o destruyen un sitio de restricción, el uso de sondas de hibridación específicas del alelo, el uso de anticuerpos que son específicos del polipéptido C-RAF mutante, o cualquier otra interpretación bioquímica.
Marcadores de diagnóstico/pronóstico de la resistencia a terapias dirigidas
En el presente documento, se describen métodos para detectar la presencia de uno o más marcadores de diagnóstico o de pronóstico en una muestra (por ejemplo, una muestra biológica de un paciente con cáncer). Se puede usar una variedad de métodos de selección conocidos por los expertos en la materia para detectar la presencia del marcador en la muestra que incluye la detección de ADN, aRn y proteína. Las técnicas se pueden usar para determinar la presencia o ausencia de una mutación en una muestra obtenida de un paciente. En algunas realizaciones, el paciente puede tener resistencia innata o adquirida a terapias dirigidas a quinasas, que incluyen inhibidores de B-RAF o inhibidores de pan-RAF. Por ejemplo, el paciente puede tener una resistencia innata o adquirida a los inhibidores de RAF PLX4720 y/o PLX4032 y/o (S)-metil-1-(4-(3-(5-cloro-2-fluoro-3- (metilsulfonamido)fenil)-1-isopropil-1H-pirazol-4-il)pirimidin-2-ilamino)propan-2-il-carbamato. En una realización, la identificación de un ácido nucleico o polipéptido C-RAF que incluye una o más mutaciones descritas en el presente documento en una muestra que contiene células cancerosas obtenida de un paciente indica que el paciente tiene un riesgo relativamente alto de recaída o falta de respuesta al tratamiento con un inhibidor de RAF. La identificación de una o más mutaciones C-RAF descritas anteriormente en un paciente ayuda al médico a determinar e implementar un protocolo de tratamiento para el paciente. Por ejemplo, en un paciente que tiene una o más mutaciones en el polipéptido C-RAF identificadas anteriormente, el médico puede tratar al paciente con una terapia de combinación como se describe con más detalle a continuación.
La identificación de mutaciones de resistencia en el polipéptido C-RAF también permite la exploración de pacientes que tienen un cáncer con el fin de determinar la presencia o ausencia de una mutación de resistencia C-RAF en una o más posiciones de aminoácidos en el cáncer. La determinación de la presencia o ausencia de una o más mutaciones de resistencia C-RAF en un cáncer permite la modificación de la estrategia de tratamiento de un paciente con cáncer. Dichas modificaciones pueden incluir, por ejemplo, iniciar o interrumpir el tratamiento con un inhibidor de RAF o un inhibidor de MEK, administrar una terapia de combinación, proporcionar la dosificación secuencial de un inhibidor de RAF y un segundo inhibidor, y similares.
En algunas realizaciones, las mutaciones de resistencia RAF se pueden identificar en un ácido nucleico que codifica un polipéptido C-RAF mutante que tiene actividad C-RAF, en el que el polipéptido C-RAF mutante incluye al menos una sustitución de aminoácido en comparación con un polipéptido C-RAf de tipo silvestre mostrado en SEQ ID NO:
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2 y en el que la al menos una sustitución de aminoácido según lo especificado en la reivindicación 1, confiere resistencia a uno o más inhibidores de RAF en una célula que expresa el polipéptido RAF mutante. En el presente documento, se describen mutaciones de resistencia RAF que pueden identificarse en un polipéptido C-RAF mutante que tiene actividad C-RAF, en el que el polipéptido C-RAF mutante incluye al menos una sustitución de aminoácido en comparación con un polipéptido C-RAf de tipo silvestre mostrado en SEQ ID NO: 2, y en el que la al menos una sustitución de aminoácido confiere resistencia a uno o más inhibidores de RAF en una célula que expresa el polipéptido C-RAF mutante. También se describe en el presente documento que la sustitución en uno o más de los siguientes aminoácidos del polipéptido C-RAF de tipo silvestre confiere resistencia a inhibidores de RAF, entre las que se incluyen 104E, 257S, 261P, 356G, 361G, 427S, 447D, 469M, 478E y 554R. En el presente documento se describe que la sustitución de uno o más aminoácidos del polipéptido C-RAF de tipo silvestre se selecciona del grupo que consiste en 104E>K, 257S>P, 261 P>T, 356G>E, 361G>A, 427S>T, 447D>N, 469M>I, 478E>K y 554R>K. En algunas realizaciones, la sustitución de uno o más aminoácidos del polipéptido C-RAF de tipo silvestre se selecciona del grupo que consiste en 257S, 261P y 361G.
Métodos de tratamiento (no reivindicados)
En el presente documento, se describen métodos para el tratamiento de un paciente que tiene cáncer. En general, los métodos comprenden la administración de un primer inhibidor y de un segundo inhibidor. Un inhibidor puede ser un inhibidor de RAF. En la Tabla 1 anterior, se muestran inhibidores de RAF a modo de ejemplo. Un inhibidor puede ser un inhibidor de MEK (véase la Tabla 2 que ilustra inhibidores de MEK de ejemplo). En el presente documento, se describe que se proporciona una terapia de combinación para el cáncer, que comprende una cantidad eficaz de un inhibidor de RAF y una cantidad eficaz de un segundo inhibidor. El segundo inhibidor puede ser un inhibidor de MEK.
Un inhibidor de RAF descrito en el presente documento puede ser PLX4720, PLX4032, BAY 43-9006 (Sorafenib), ZM 336372, RAF 265, AAL-881, LBT-613, (S)-metil-1-(4-(3-(5-cloro-2-fluoro-3-(metilsulfonamido)fenil)-1-isopropil-1H- pirazol-4-il)pirimidin-2-ilamino)propan-2-il-carbamato o CJS352. Los ejemplos adicionales de inhibidores de RAF útiles para la terapia de combinación incluyen inhibidores de pan-RAF, inhibidores de B-RAF, inhibidores de A-RAF e inhibidores de RAF-1. Se pueden usar también inhibidores de RAF adicionales conocidos en la técnica.
Como un ejemplo no limitante, el inhibidor de MEK proporcionado en el presente documento puede ser CI-1040, AZD6244, PD318088, PD98059, PD334581, RDEA119, 6-metoxi-7-(3-morfolin-4-il-propoxi)-4-(4-fenoxi-fenilamino)- quinolin-3-carbonitrilo o 4-[3-cloro-4-(1-metil-1H-imidazol-2-ilsulfanil)-fenilamino]-6-metoxi-7-(3-morfolin-4-il-propoxi)- quinolin-3-carbonitrilo, el compuesto de Roche RG7420, o combinaciones de los mismos. También se pueden usar inhibidores de MEK adicionales conocidos en la técnica.
La administración de la combinación incluye la administración de la combinación en una sola formulación o forma de dosificación unitaria, la administración de los agentes individuales de la combinación al mismo tiempo, pero por separado, o la administración de los agentes individuales de la combinación secuencialmente mediante cualquier vía adecuada. La dosificación de los agentes individuales de la combinación puede requerir una administración más frecuente de uno de los agentes en comparación con el otro agente de la combinación. Por lo tanto, para permitir la dosis apropiada, los productos farmacéuticos envasados pueden contener una o más formas farmacéuticas que contengan la combinación de agentes, y una o más formas farmacéuticas que contengan una de las combinaciones de agentes, pero no el/los otro/s agente/s de la combinación.
Los agentes pueden contener uno o más elementos asimétricos tales como centros estereogénicos o ejes estereogénicos, por ejemplo, átomos de carbono asimétricos, de modo que los compuestos pueden existir en diferentes formas estereoisoméricas. Estos compuestos pueden ser, por ejemplo, racematos o formas ópticamente activas. Para los compuestos con dos o más elementos asimétricos, estos compuestos pueden ser además mezclas de diastereómeros. Para los compuestos que tienen centros asimétricos, se ha de entender que se engloban todos los isómeros ópticos y mezclas de los mismos. Además, los compuestos con dobles enlaces carbono-carbono pueden darse en las formas Z y E; todas las formas isoméricas de los compuestos están incluidas en la presente divulgación. En estas situaciones, los enantiómeros individuales (formas ópticamente activas) se pueden obtener mediante síntesis asimétrica, síntesis a partir de precursores ópticamente puros, o mediante la resolución de los racematos. La resolución de los racematos también se puede realizar, por ejemplo, mediante métodos convencionales tales como cristalización en presencia de un agente de resolución, o cromatografía, usando, por ejemplo, una columna de HPLC quiral.
A menos que se especifique lo contrario, o se indique claramente por el texto, la referencia a compuestos útiles en la terapia de combinación descrita en el presente documento incluye tanto la base libre de los compuestos, como todas las sales farmacéuticamente aceptables de los compuestos. Una sal preferida es la sal de clorhidrato.
La expresión "sales farmacéuticamente aceptables" incluye derivados de los compuestos desvelados, en los que el compuesto precursor se modifica al preparar sus sales de adición de ácido o base no tóxicas, y se refiere además a solvatos farmacéuticamente aceptables, incluyendo hidratos, de dichos compuestos y de dichas sales. Los ejemplos de sales farmacéuticamente aceptables incluyen, pero sin limitación, sales de adición de ácidos minerales u orgánicos de restos básicos tales como aminas; sales de adición de base u orgánica de restos ácidos tales como
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ácidos carboxílicos; y similares, y combinaciones que comprenden una o más de las sales anteriores. Las sales farmacéuticamente aceptables incluyen sales no tóxicas y las sales de amonio cuaternario del compuesto precursor formado, por ejemplo, a partir de ácidos inorgánicos u orgánicos no tóxicos. Por ejemplo, las sales ácidas no tóxicas incluyen las derivadas de ácidos inorgánicos tales como ácido clorhídrico, bromhídrico, sulfúrico, sulfámico, fosfórico y nítrico; otras sales inorgánicas aceptables incluyen sales metálicas tales como sal de sodio, sal de potasio y sal de cesio; y sales de metales alcalinotérreos, tales como sal de calcio y sal de magnesio; y combinaciones que comprenden una o más de las sales anteriores.
Las sales orgánicas farmacéuticamente aceptables incluyen sales preparadas a partir de ácidos orgánicos tales como ácido acético, trifluoroacético, propiónico, succínico, glicólico, esteárico, láctico, málico, tartárico, cítrico, ascórbico, pamoico, maleico, hidroximaleico, fenilacético, glutámico, benzoico, salicílico, mesílico, esílico, besílico, sulfanílico, 2-acetoxibenzoico, fumárico, toluenosulfónico, metanosulfónico, etano disulfónico, oxálico, isetiónico, HOOC(CH2)nCOOH, en el que n es 0-4; sales de amina orgánica tales como sales de trietilamina, sal de piridina, sal de picolina, sal de etanolamina, sal de trietanolamina, sal de diciclohexilamina, sal de W,W-dibenciletilendiamina; y sales de aminoácidos tales como arginato, asparaginato y glutamato, y combinaciones que comprenden una o más de las sales anteriores.
Una "cantidad eficaz" de una combinación de agentes es una cantidad suficiente para proporcionar una mejora observable con respecto a los signos y síntomas clínicamente observables iniciales del trastorno tratado con la combinación.
Los productos farmacéuticos se pueden administrar por vía oral u otras formas, por ejemplo, por vía rectal o mediante inyección parenteral. "Forma farmacéutica oral" pretende incluir una forma de dosificación unitaria prescrita o destinada a la administración oral. Una forma farmacéutica oral puede comprender o no una pluralidad de subunidades, tales como, por ejemplo, microcápsulas o microcomprimidos, envasadas para la administración en una sola dosis.
Los productos farmacéuticos se pueden liberar de diversas formas. La "forma liberable" pretende incluir formas de liberación instantánea, de liberación inmediata, de liberación controlada y de liberación sostenida.
La "liberación instantánea" pretende incluir una forma farmacéutica diseñada para garantizar una disolución rápida del agente activo modificando la forma cristalina normal del agente activo para obtenerse una disolución más rápida.
La "liberación inmediata" pretende incluir una forma de liberación convencional o no modificada en la que se libera una cantidad superior o igual al aproximadamente 50 %,o más preferentemente, del aproximadamente 75 % de los agentes activos en las dos horas de la administración, preferentemente en una hora de la administración.
"Liberación sostenida" o "liberación prolongada" incluyen la liberación de agentes activos a una velocidad tal que los niveles en sangre (por ejemplo, en plasma) se mantienen dentro de un intervalo terapéutico, pero por debajo de niveles tóxicos durante al menos aproximadamente 8 horas, Preferentemente, al menos aproximadamente 12 horas, más preferentemente, aproximadamente 24 horas después de la administración en estado estacionario. La expresión "estado estacionario" significa que se ha alcanzado un nivel en plasma para un agente activo o una combinación de agentes activos dados, y que se mantiene con dosis posteriores de agente/s activo/s en un nivel que es igual o superior al mínimo nivel terapéutico eficaz y que está por debajo del mínimo nivel tóxico en plasma para uno o varios de los agentes activos dados.
El término "tratar", "tratado", o "tratamiento" se usa en el presente documento para referirse a calmar, reducir o aliviar al menos un síntoma de una enfermedad en un sujeto. Por ejemplo, el tratamiento puede ser la disminución de uno o varios síntomas de un trastorno o la erradicación completa de un trastorno, tal como el cáncer. En el sentido del presente contexto, el término "tratar" también denota la detención, el retraso del inicio (es decir, el período anterior a la manifestación clínica de una enfermedad) y/o la reducción del riesgo de desarrollar o empeorar una enfermedad. El término "proteger» se usa en el presente documento para referirse a evitar el retraso o el tratamiento, o ambas cosas, según sea apropiado, el desarrollo o la continuación o el agravamiento de una enfermedad en un sujeto. En el sentido del presente contexto, la enfermedad está asociada a un cáncer.
El término "sujeto" o "paciente" pretende incluir animales, que son capaces de padecer o estar afectados por un cáncer o cualquier trastorno que implique, directa o indirectamente, un cáncer. Los ejemplos de sujetos incluyen mamíferos, por ejemplo, seres humanos, perros, vacas, caballos, cerdos, ovejas, cabras, gatos, ratones, conejos, ratas y animales no humanos transgénicos. En determinadas realizaciones, el sujeto es un ser humano, por ejemplo, un ser humano que padece, que corre el riesgo de padecer o que puede padecer cáncer.
El término "aproximadamente" normalmente significa dentro del 20 %, más preferentemente dentro del 10 % y lo más preferentemente dentro del 5 % de un valor o intervalo dado. Como alternativa, en especial, en sistemas biológicos, el término "aproximadamente" significa dentro de aproximadamente un registro (es decir, un orden de magnitud) preferentemente dentro de un factor de dos de un valor dado.
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El uso de los términos "un" y "una", y "el" y "ella", y los referentes similares en el presente contexto se debe interpretar que abarca tanto el singular como el plural, a menos que se indique lo contrario en el presente documento o se contradiga claramente con el contexto. Las expresiones "que comprende", "que tiene", "que incluye", y "que contiene" deben interpretarse como expresiones abiertas (es decir, que significan "que incluye, pero sin limitación") a menos que se indique lo contrario. La mención de intervalos de valores en el presente documento simplemente tiene la intención de servir como método abreviado para referirse individualmente a cada valor por separado que se encuentre dentro del intervalo, A menos que se indique lo contrario en el presente documento.
Como se ha especificado anteriormente, en el presente documento, se describe una combinación de fármacos útil para tratar, prevenir, interrumpir, retrasar el inicio y/o reducir el riesgo de desarrollar, o revertir al menos un síntoma de cáncer, en un sujeto que comprende administrar al sujeto una terapia de combinación, que comprende una cantidad eficaz de un inhibidor de RAF y de un segundo inhibidor. En algunas realizaciones, el segundo inhibidor es un inhibidor de MEK. Preferentemente, estos inhibidores se administran a dosis terapéuticamente eficaces que, cuando se combinan, proporcionan un efecto beneficioso. La administración puede ser simultánea o consecutiva.
El término "cáncer" se usa en el presente documento para referirse a un amplio espectro de tumores, que incluyen todos los tumores sólidos y malignidades hematológicas. Los ejemplos de dichos tumores incluyen, pero sin limitación, leucemias, linfomas, mielomas, carcinomas, carcinomas metastásicos, sarcomas, adenomas, cánceres del sistema nervioso y cánceres gertorretinianos.
Los métodos anteriores descritos en el presente documento pueden ser útiles en el tratamiento de la leucemia linfoblástica aguda de adultos y pediátrica, leucemia mieloide aguda, carcinoma adrenocortical, cánceres relacionados con el SIDA, cáncer de ano, cáncer del apéndice, astrocitoma, carcinoma de células basales, cáncer del conducto biliar, cáncer de vejiga, cáncer de hueso, osteosarcoma, histiocitoma fibroso, cáncer de cerebro, glioma del tronco encefálico, astrocitoma cerebeloso, glioma maligno, ependimoma, meduloblastoma, tumores neuroectodérmicos primitivos supratentoriales, glioma hipotalámico, cáncer de mama, cáncer de mama masculino, adenomas bronquiales, linfoma de Burkitt, tumores carcinoides, carcinoma de origen desconocido, linfoma del sistema nervioso central, astrocitoma cerebeloso, glioma maligno, cáncer de cuello uterino, cánceres en la infancia, leucemia linfocítica crónica, leucemia mielógena crónica, trastornos crónicos mieloproliferativos, cáncer colorrectal, linfoma cutáneo de linfocitos T, cáncer del endometrio, ependimoma, cáncer de esófago, tumores de la familia Ewing, tumor de células germinales extracraneales, tumor de células germinales extragonadales, cáncer del conducto biliar extrahepático, melanoma intraocular, retinoblastoma, cáncer de vesícula biliar, cáncer gástrico, tumores estromales gastrointestinales, tumor de células germinales extracraneales, tumor de células germinales extragonadales, tumor de células germinales ováricas, tumor trofoblástico gestacional, glioma, leucemia de células pilosas, cáncer de cabeza y cuello, cáncer hepatocelular, linfoma de Hodgkin, linfoma no hodgkiniano, cáncer hipofaríngeo, glioma hipotalámico y de la vía óptica, melanoma intraocular, tumores de células de los islotes, sarcoma de Kaposi, cáncer de riñón, cáncer de células renales, cáncer de laringe, cáncer de labios y de la cavidad oral, cáncer microcítico de pulmón, cáncer de pulmón no microcítico, linfoma primario del sistema nervioso central, macroglobulinemia de Waldenstrom, histiocitoma fibroso maligno, meduloblastoma, melanoma, carcinoma de células de Merkel, mesotelioma maligno, cáncer de cuello escamoso, síndrome múltiple de neoplasia endocrina, mieloma múltiple, micosis fungoide, síndromes mielodisplásicos, trastornos mieloproliferativos, trastornos crónicos mieloproliferativos, cáncer de la cavidad nasal y del seno paranasal, cáncer nasofaríngeo, neuroblastoma, cáncer orofaríngeo, cáncer ovárico, cáncer pancreático, cáncer paratiroideo, cáncer de pene, cáncer faríngeo, feocromocitoma, pineoblastoma y tumores neuroectodérmicos primitivos supratentoriales, cáncer de la hipófisis, neoplasia de células plasmáticas, blastoma pleuropulmonar, cáncer de próstata, cáncer rectal, rabdomiosarcoma, cáncer de las glándulas salivales, sarcoma de tejidos blandos, sarcoma uterino, síndrome de Sezary, cáncer de piel no melanómico, cáncer del intestino delgado, carcinoma de células escamosas, cáncer de cuello escamoso, tumores neuroectodérmicos primitivos supratentoriales, cáncer testicular, cáncer de garganta, timoma y carcinoma tímico, cáncer de tiroides, cáncer de células transicionales, tumores trofoblásticos, cáncer de la uretra, cáncer uterino, sarcoma uterino, cáncer de vagina, cáncer de la vulva y tumor de Wilms.
En particular, el cáncer puede estar asociado a una mutación en el gen B-RAF. El cáncer puede ser un cáncer dependiente de RAF. Estos cánceres incluyen, pero sin limitación, melanoma, cáncer de mama, cánceres colorrectales, glioma, cáncer pulmonar, cáncer ovárico, sarcoma y cáncer tiroideo.
La combinación terapéutica descrita en el presente documento puede ser eficaz para el tratamiento de cáncer de moderado a grave en un sujeto.
Dosificaciones
La dosis óptima de la combinación de agentes para el tratamiento del cáncer se puede determinar empíricamente para cada sujeto usando métodos conocidos, y dependerá de una variedad de factores, entre los que se incluyen la actividad de los agentes; la edad, el peso corporal, el estado de salud general, el género y la alimentación del sujeto; el tiempo y la vía de administración; y otros medicamentos que esté tomando el sujeto. Las dosis óptimas se pueden establecer usando pruebas de rutina y procedimientos que son bien conocidos en la técnica.
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La cantidad de combinación de agentes que puede combinarse con los materiales portadores para producir una sola forma farmacéutica variará dependiendo del individuo tratado y del modo particular de administración. Las formas de dosificación unitaria que contienen la combinación de agentes descrita en el presente documento contendrán las cantidades de cada agente de la combinación que normalmente se administran cuando los agentes se administran solos.
Un médico o veterinario que tenga experiencia en la materia puede determinar y prescribir fácilmente la cantidad eficaz de la composición farmacéutica requerida. Por ejemplo, el médico o veterinario podría empezar con dosis de los compuestos descritos en el presente documento empleados en la composición farmacéutica a niveles inferiores que los requeridos para conseguir el efecto terapéutico deseado e ir aumentando gradualmente la dosis hasta conseguir el efecto deseado.
En general, una dosis diaria adecuada de un compuesto descrito en el presente documento será aquella cantidad del compuesto que sea la dosis eficaz más baja para producir un efecto terapéutico. Dicha dosis eficaz, en general, dependerá de los factores descritos anteriormente y la determinará fácilmente un experto en la materia.
En general, las dosis terapéuticamente eficaces de los compuestos descritos en el presente documento para un paciente, cuando se usan para los efectos analgésicos indicados, variarán de aproximadamente 0,0001 a aproximadamente 1.000 mg por kilogramo de peso corporal por día, más preferentemente, de aproximadamente 0,01 a aproximadamente 50 mg/kg al día.
Si se desea, la dosis diaria eficaz del compuesto activo puede administrarse como dos, tres, cuatro, cinco, seis o más subdosis administradas por separado a intervalos apropiados durante todo el día, opcionalmente, en formas monodosis.
Formulaciones farmacéuticas y vía de administración
En el presente documento, se proporcionan formulaciones farmacéuticas que comprenden una combinación de agentes para el tratamiento del cáncer, por ejemplo, melanoma. Las formulaciones farmacéuticas también pueden comprender un vehículo o excipiente, estabilizante, agente aromatizante y/o agente colorante.
En el presente documento, se proporcionan formulaciones farmacéuticas que comprenden una combinación de agentes que puede ser, por ejemplo, una combinación de dos tipos de agentes: (1) un inhibidor de RAF y/o metabolitos, sales, solvatos y racematos farmacológicamente activos del inhibidor y (2) un inhibidor de MEK y/o metabolitos, sales, solvatos y racematos farmacológicamente activos del inhibidor de MEK.
La combinación de agentes se puede administrar usando una variedad de vías de administración conocidas por los expertos en la materia. La combinación de agentes puede administrarse a seres humanos y a otros animales por vía oral, parenteral, sublingual, por aerosolización o inhalación, por vía rectal, intracisternal, intravaginal, intraperitoneal, bucal o tópica en formulaciones de dosificación unitaria que contengan portadores, adyuvantes y vehículos farmacéuticamente aceptables no tóxicos convencionales según lo deseado. La administración tópica también puede implicar el uso de administración transdérmica tal como parches transdérmicos o dispositivos de ionoforesis. El término parenteral, como se usa en el presente documento, incluye inyecciones subcutáneas, Inyección intravenosa, intramuscular, intraesternal o técnicas de infusión.
Los métodos de formulación son bien conocidos en la técnica y se desvelan, por ejemplo, en "Remington: The Science and Practice of Pharmacy", Mack Publishing Company, Easton, Pa., 19a Edición (1995). Las composiciones farmacéuticas para el uso descrito en el presente documento pueden estar en forma de soluciones o suspensiones líquidas, no pirogénicas, estériles, cápsulas recubiertas, supositorios, polvos liofilizados, parches transdérmicos u otras formas conocidas en la técnica.
Las preparaciones inyectables, por ejemplo, las suspensiones acuosas u oleaginosas inyectables estériles pueden formularse de acuerdo con la técnica conocida usando agentes dispersantes o humectantes y agentes de suspensión adecuados. La preparación inyectable estéril también puede ser una solución, suspensión o emulsión inyectable estéril en un diluyente o disolvente atóxico parenteralmente aceptable, por ejemplo, tal como una solución en 1,3-propanodiol o 1,3-butanodiol. Entre los vehículos y disolventes aceptables que pueden emplearse están el agua, solución de Ringer, U. S. P. y solución de cloruro sódico isotónica. Además, se usan convencionalmente aceites no volátiles estériles en forma de un disolvente o un medio de suspensión. Para este fin, puede emplearse cualquier aceite suave no volátil, incluyendo monoglicéridos o diglicéridos sintéticos. Además, los ácidos grasos tales como ácido oleico, encuentran uso en la preparación de los inyectables. Las formulaciones inyectables pueden esterilizarse, por ejemplo, mediante filtración a través de un filtro de retención de bacterias, o incorporando agentes esterilizantes en forma de composiciones sólidas estériles que pueden disolverse o dispersarse en agua estéril u otro medio inyectable estéril antes de su uso.
Para prolongar el efecto de un fármaco, es a menudo deseable ralentizar la absorción del fármaco mediante inyección subcutánea o intramuscular. Esto puede lograrse mediante el uso de una suspensión líquida de material
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cristalino o amorfo con poca solubilidad en agua. La velocidad de absorción del fármaco depende por tanto de su velocidad de disolución que, a su vez, puede depender del tamaño del cristal y de la forma cristalina. Como alternativa, se puede lograr la absorción retardada de una forma de fármaco administrada por vía parenteral disolviendo o suspendiendo el fármaco en un vehículo oleoso. Las formas de depósito inyectables se preparan formando matrices microencapsuladas del fármaco en polímeros biodegradables tales como poliláctido-poliglicólido. Dependiendo de la proporción del fármaco con respecto al polímero y de la naturaleza del polímero concreto empleado, se puede controlar la velocidad de liberación del fármaco. Los ejemplos de otros polímeros biodegradables incluyen poli(ortoésteres) y poli(anhídridos). También se pueden preparar formulaciones inyectables de depósito atrapando el fármaco en liposomas o microemulsiones que sean compatibles con los tejidos corporales.
Las composiciones para la administración rectal o vaginal son preferentemente supositorios que pueden prepararse mezclando los compuestos descritos en el presente documento con excipientes o vehículos no irritantes adecuados, tales como manteca de cacao, polietilenglicol o una cera para supositorio que son sólidos a temperatura ambiente pero líquidos a temperatura corporal y, por lo tanto, se derretirán en el recto o en la cavidad vaginal y liberarán el compuesto activo.
Las formas farmacéuticas sólidas para la administración oral incluyen cápsulas, comprimidos, píldoras, polvos y gránulos. En dichas formas sólidas de dosificación, el compuesto activo se mezcla con al menos un excipiente o vehículo inerte, farmacéuticamente aceptable tal como citrato de sodio o fosfato de dicalcio y/o a) cargas o diluyentes tales como almidones, lactosa, sacarosa, glucosa, manitol y ácido silícico, a) aglutinantes tales como, por ejemplo, carboximetilcelulosa, alginatos, gelatina, polvinilpirrolidona, sacarosa y goma arábiga, c) humectantes tales como glicerol, d) agentes disgregantes tales como agar-agar, carbonato cálcico, almidón de patata o tapioca, ácido algínico, determinados silicatos y carbonato de sodio, e) agentes retardantes de la solución tales como parafina, f) aceleradores de la absorción tales como compuestos de amonio cuaternario, g) agentes humectantes tales como, por ejemplo, alcohol acetílico y monoestearato de glicerol, h) absorbentes tales como caolín y arcilla bentonita e i) lubricantes tales como talco, estearato de calcio, estearato de magnesio, polietilenglicoles sólidos, lauril sulfato de sodio y mezclas de los mismos. En el caso de las cápsulas, comprimidos y píldoras, la forma farmacéutica puede comprender agentes tamponantes.
También pueden emplearse composiciones sólidas de tipo similar como cargas en cápsulas de gelatina blandas y duras usando excipientes tales como lactosa o azúcar de la leche, así como polietilenglicoles de alto peso molecular y similares.
Las formas farmacéuticas sólidas de comprimidos, grageas, cápsulas, píldoras y gránulos pueden prepararse con recubrimientos y envolturas, tales como recubrimientos entéricos y otros recubrimientos bien conocidos en la técnica de formulación farmacéutica. Opcionalmente, pueden contener agentes opacificantes y también pueden tener una composición que libera el principio o los principios activos única, o preferentemente, en una determinada parte del tracto intestinal, opcionalmente, de manera retardada. Los ejemplos de composiciones inclusoras que pueden usarse incluyen sustancias poliméricas y ceras.
Los compuestos activos también pueden estar en forma microencapsulada con uno o más excipientes, como se ha indicado anteriormente. Las formas farmacéuticas sólidas de comprimidos, grageas, cápsulas, píldoras y gránulos pueden prepararse con recubrimientos y envolturas, tales como recubrimientos entéricos, recubrimientos de control de la liberación y otros recubrimientos bien conocidos en la técnica de la formulación farmacéutica. En dichas formas farmacéuticas sólidas, el compuesto activo puede mezclarse con al menos un diluyente inerte tal como sacarosa, lactosa o almidón. Dichas formas farmacéuticas también pueden comprender, como es práctica normal, sustancias adicionales distintas de los diluyentes inertes, por ejemplo, lubricantes para formación de comprimidos y otros adyuvantes para la compresión, tales como estearato de magnesio y celulosa microcristalina. En el caso de las cápsulas, comprimidos y píldoras, las formas farmacéuticas también pueden comprender agentes tamponantes. Opcionalmente, pueden contener agentes opacificantes y también pueden tener una composición que libera el principio o los principios activos única, o preferentemente, en una determinada parte del tracto intestinal, opcionalmente, de manera retardada. Los ejemplos de composiciones inclusoras que pueden usarse incluyen sustancias poliméricas y ceras.
Las formas farmacéuticas líquidas para la administración oral incluyen emulsiones, microemulsiones, soluciones, suspensiones, jarabes y elixires farmacéuticamente aceptables. Además de los principios activos, las formas farmacéuticas líquidas pueden contener diluyentes inertes usados comúnmente en la técnica, tales como, por ejemplo, agua u otros disolventes, agentes solubilizantes y emulsionantes tales como alcohol etílico, alcohol isopropílico, carbonato de etilo, EtOAc, alcohol bencílico, benzoato de bencilo, propilenglicol, 1,3-butilenglicol, dimetilformamida, aceites (en particular, aceite de semillas de algodón, de cacahuete, de maíz, de germen, de oliva, de ricino y de sésamo), glicerol, alcohol tetrahidrofurfurílico, polietilenglicoles y ésteres de ácidos grasos de sorbitán y mezclas de los mismos. Además de diluyentes inertes, las composiciones orales también pueden incluir adyuvantes, tales como agentes humectantes, agentes emulsionantes y de suspensión, edulcorantes, agentes aromatizantes y perfumantes.
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Las formas farmacéuticas para administración tópica o transdérmica de un compuesto descrito en el presente documento incluyen pomadas, pastas, cremas, lociones, geles, polvos, soluciones, pulverizados, inhalantes o parches. El componente activo se mezcla previamente en condiciones estériles con un vehículo farmacéuticamente aceptable y cualquier conservante o tampón necesario, según se requiera. También se contemplan las formulaciones oftálmicas, gotas para los oídos y similares.
Las pomadas, pastas, cremas y geles pueden contener, además de un compuesto activo descrito en el presente documento, excipientes tales como grasas animales y vegetales, aceites, ceras, parafinas, almidón, tragacanto, derivados de celulosa, polietilenglicoles, siliconas, bentonitas, ácido silícico, talco y óxido de cinc, o mezclas de los mismos.
Las composiciones descritas en el presente documento también pueden formularse para la administración como un aerosol líquido o polvo seco inhalable. Las formulaciones de aerosoles líquidos pueden nebulizarse predominantemente en tamaños de partículas que puedan administrarse a los bronquiolos terminales y respiratorios.
Las formulaciones aerosolizadas descritas en el presente documento pueden administrarse usando un dispositivo de formación de aerosol, tal como un nebulizador de chorro, nebulizador de placa porosa vibrante o nebulizador ultrasónico, seleccionado preferentemente para permitir la formación de partículas de aerosol que tengan un diámetro medio de masa predominantemente entre 1 y 5 pm. Además, la formulación preferentemente tiene una fuerza iónica de osmolaridad y una concentración de cloruro equilibradas, y el menor volumen aerosolizable capaz de administrar una dosis eficaz de los compuestos descritos en el presente documento al sitio de la infección. Además, la formulación aerosolizada preferentemente no perjudica negativamente a la funcionalidad de las vías respiratorias y no causa efectos secundarios no deseados.
Los dispositivos de aerosoles adecuados para la administración de formulaciones de aerosol descritas en el presente documento incluyen, por ejemplo, nebulizadores de chorro, nebulizadores de placa porosa vibratoria, nebulizadores ultrasónicos e inhaladores de polvo seco energizados, que son capaces de nebulizar la formulación descrita en el presente documento en partículas de tamaño de aerosol predominantemente en el intervalo de tamaño de 1 a 5 pm. Predominantemente en esta aplicación significa que al menos el 70 %, pero preferentemente más del 90 % de todas las partículas de aerosol generadas están dentro del intervalo de 1 a 5 pm. Un nebulizador de chorro funciona por presión de aire para romper una solución líquida en gotitas de aerosol. Los nebulizadores de placa porosa vibrante funcionan usando un vacío sónico producido por una placa porosa que vibra rápidamente para extruir una gotita de disolvente a través de una placa porosa. Un nebulizador ultrasónico funciona con un cristal piezoeléctrico que corta un líquido en pequeñas gotas de aerosol. Hay disponible una variedad de dispositivos adecuados, entre los que se incluyen, por ejemplo, los nebulizadores de placa porosa vibratoria AERONEB y AERODOSE (AeroGen, Inc., Sunnyvale, California), Nebulizadores SIDEStReAM (Medic Aid Ltd., West Sussex, Inglaterra), nebulizadores de chorro PARI LC y PARI LC STAR (Pari Respiratory Equipment, Inc., Richmond, Virginia), y y los nebulizadores ultrasónicos AEROSONIC (DeVilbiss Medizinische Produkte (Deutschland) GmbH, Heiden, Alemania) y ULTRAAIRE (Omron Healthcare, Inc., Vernon Hills, Illinois).
Los compuestos descritos en el presente documento también pueden formularse para su uso como polvos tópicos y pulverizados que pueden contener, además de los compuestos descritos en el presente documento, excipientes tales como lactosa, talco, ácido silícico, hidróxido de aluminio, silicatos cálcicos y polvo de poliamida, o mezclas de estas sustancias. Los pulverizados pueden contener además propulsores habituales tales como clorofluorohidrocarburos.
Los parches transdérmicos tienen la ventaja añadida de proporcionar un suministro controlado de un compuesto al organismo. Dichas formas farmacéuticas pueden prepararse disolviendo o dispensando el compuesto en el medio adecuado. También se pueden usar potenciadores de la absorción para aumentar el flujo del compuesto a través de la piel. La velocidad puede controlarse proporcionando una membrana de control de la velocidad o dispersando el compuesto en una matriz polimérica o gel. Los compuestos descritos en el presente documento también pueden administrarse en forma de liposomas. Como es sabido en la técnica, los liposomas, en general, se obtienen de fosfolípidos u otras sustancias lipídicas. Los liposomas están formados por cristales líquidos hidratados monolaminares o multilaminares que se dispersan en un medio acuoso. Se puede usar cualquier lípido no tóxico, fisiológicamente aceptable y metabolizable capaz de formar liposomas. Las presentes composiciones en forma de liposomas pueden contener, además de un compuesto descrito en el presente documento, estabilizantes, conservantes, excipientes, y similares. Los lípidos preferidos son los fosfolípidos y las fosfatidilcolinas (lecitinas), tanto naturales como sintéticos. Los métodos de formación de liposomas son conocidos en la técnica. Véase, por ejemplo, Prescott (ed.), "Methods in Cell Biology", Volumen XIV, Academic Press, Nueva York, 1976, p. 33 et seq.
Ejemplos
Ejemplo 1: Identificación y caracterización de mutaciones de resistencia CRAF in vitro.
Para identificar mutaciones RAF somáticas que confieren resistencia a los inhibidores de RAF, se realizaron selecciones de mutagénesis aleatoria de saturación usando el sistema bacteriano XL1-Red y vectores retrovíricos
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que expresaban ADNc de C-RAF (Emery et al., Id. 2009, Wagle et al., Id. 2011). La genoteca de ADNc de saturación sometida a mutagénesis aleatoria resultante de mutaciones CRAF se expresó en células de melanoma A375 portadoras de la mutación BRAF V600E, que es altamente sensible a los inhibidores de RAF (Li et al., 2007; Tsai et al., 2008, Emery et al., Id. 2009). Estas células se cultivaron durante 4 semanas en presencia de concentraciones totalmente inhibidoras de PLX4720 (1,5 pM), y se combinaron los clones resistentes emergidos y se caracterizaron mediante secuenciación paralela masiva (Emery et al., 2009, Wagle et al., Id. 2011). Todas las mutaciones C-RAF examinadas (Fig. 1A) pudieron expresarse de manera estable en células A375. (Fig. 9A). Además, 8 de las 10 mutaciones C-RAF más destacadas confieren resistencia bioquímica al inhibidor de RAF PLX4720 en células A375, como lo demuestran los niveles de p-MEK y de p-ERK (Fig. 9B). Uno de estos alelos (CRAFG361A) confirió activación "paradójica" sustancial de p-MEK a altas concentraciones de PLX4720 (Fig. 9B).
Las mutaciones CRAF obtenidas a través de la exploración se cartografiaron en la estructura cristalina del dominio CRAF quinasa (340-618) (Hatzivassiliou et al., 2010) (código PDB: 30MV) (Fig. 1B). Tres de las mutaciones no fueron cartografiadas, ya que, hasta la fecha, no se ha resuelto la estructura completa de CRAF. Los alelos de resistencia CRAF se agruparon hacia dos regiones distintas, fuera o dentro de la región reguladora (extremo N) y en el dominio quinasa (extremo C) (Fig. 1C). CRAF consiste en dos sitios de unión consenso a 14-3-3, y dos de los alelos de resistencia S257P y P261T ocuparon uno de los sitios de unión consenso a 14-3-3 en el CR2, excepto el alelo E104K en la región CR1 (Fig. 1B).
La segunda categoría de alelos de resistencia abarca el dominio quinasa, que incluye el bucle rico en glicina. Se encontraron mutaciones tales como G356E y G361A en el resto de glicina del bucle P de unión a ATP, motivo GxGxxG. Las mutaciones del bucle P se han encontrado en varias proteínas quinasa (Christopher et al., 2007), que incluyen BRAF que poseen capacidad de transformación celular mediante la activación de Mek (Wan et al., Cell 116: 855-867, 2004; Garnett et al., Id. 2005). El otro subconjunto de mutaciones (S427T, D447N, M469I, E478K y R554K) se poblaron fuera del segmento de activación (Fig. 1B).
Ejemplo 2: Caracterización funcional de mutantes de resistencia C-RAF
Para estudiar las consecuencias funcionales de los alelos de resistencia C-RAF identificados, se introdujeron las mutaciones representativas (Fig. 1A) en células de melanoma A375 y se expresaron en ellas. El análisis bioquímico seguido del tratamiento con inhibidor de Raf, PLX4720, atenuó la fosforilación de Mek (pMek) y la fosforilación de Erk (pErk) a una concentración de 2 pM (Fig. 2A) en células A375 y células que expresaban C-RAF de tipo silvestre. Sin embargo, los alelos de resistencia mostraron pMek y pErk sostenidas a la misma concentración (Fig 2A). Además, los alelos de resistencia agrupados hacia la región de unión a 14-3-3 (S257P y P261T) y uno en la región de unión a ATP, en particular, G361A, confirieron una potente resistencia farmacológica a PLX4720. Estos mutantes aumentaron los valores de IC50 de PLX4720 en ~100 veces (S257P y P261T) y 30 veces (G361A) en comparación con el WT (0,4 pM) (Fig. 2C). Además, la estabilidad de C-Raf se ha correlacionado con la fosforilación de S259 y S621 (Fig. 1C) y la posterior unión a 14-3-3, y la activación de C-RAF se ha correlacionado con la fosforilación de los restos S338 y S621 (Fig. 1C) (Wellbrock et al.,Id. 2004). PLX4720 indujo la fosforilación de S338 y un aumento modesto de S621, en particular, en mutantes de resistencia S257P, P261T y G361A, lo que coincide con la activación paradójica de pMek en estas variantes (Fig. 2B). Esta activación de C-RAF de la señalización de MEK/ERK fue suprimida por la inhibición farmacológica de MEK (Fig. 2G). Las células que expresaron WT presentaron un aumento modesto en S338, pero no en S621. Por el contrario, el sitio S259 se fosforiló en condiciones basales, y la expresión ectópica de C-RAF WT agravó el efecto en ausencia de PLX4720 (Fig. 2B). Sin embargo, PLX4720 también indujo la fosforilación de S259 en los mutantes de resistencia, pero comparativamente estos mutantes presentaron niveles de fosforilación de S259 inferiores (Fig. 2B), pero este efecto se atenuó en presencia de AZD6244 con niveles decrecientes de pErk (Fig. 2E). Como C-RAF se modula y activa a un alto nivel por fosforilación, estos datos sugieren que hay un bucle de activación e inhibición de retroalimentación que funciona de manera constante manteniendo la robustez y la rigurosidad de la salida de señalización de MAPK. Por lo tanto, la actividad del alelo de resistencia C-RAF se podría modular mediante un equilibrio entre la cantidad de fosforilación alcanzada por los sitios que generan actividad (S338, S621) y sitios que producen inhibición (S259). Solo un alelo (G361A) confirió evidencia de resistencia farmacológica a la inhibición de MEK (Fig. 2F y 2G).
Ejemplo 3: Los mutantes de resistencia C-RAF muestran un aumento de la asociación con B-RAF
Los datos acumulados anteriores muestran que los alelos de resistencia que abarcan el sitio de unión consenso a 14-3-3 (S257P y P261T) y la región de unión a ATP (G361A) (Fig. 1C) confieren resistencia debido a la reducción de la inhibición de MEK y ERK fosforiladas. Además, se ha demostrado que un doble mutante de S259/S621A anula por completo la interacción entre C-RAF y 14-3-3 sin afectar a la interacción con RAS o MEK (Tzivion et al., Nature 394: 88-92, 1998). Para investigar el mecanismo subyacente, se inmunoprecipitó C-RAF a partir de células 293/T expresando ectópicamente todos los alelos de resistencia identificados durante la selección inicial. Las mutaciones que disminuyeron la interacción con 14-3-3 y aumentaron la interacción con B-RAF mantuvieron un estado de fosforilación de MEK y ERK mayor en comparación con el tipo silvestre (Fig. 3A) y también aumentaron la actividad C-RAF quinasa in vitro (datos no mostrados). Estos resultados corroboraron el estado de interacción de 14-3-3 y B- RAF en células A375 que expresaban alelos C-RAF (Fig. 3B). Por lo tanto, estos mutantes de resistencia poseen
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una mayor actividad hacia su sustrato incluso en ausencia de un conductor oncogénico tal como Ras (Weber et al., 2001).
Ejemplo 4: Caracterización bioquímica de los alelos de resistencia C-RAF usando (S)-metil-1-(4-(3-(5-cloro-2-fluoro-
3- (metilsulfonamido)fenil)-1-isopropil-1H-pirazol-4-il)pirimidin-2-ilamino)propan-2-il-carbamato
Para excluir la posibilidad de una unión ineficaz de PLX4720 a los mutantes de resistencia, Se examinaron las respuestas de C-RAF mutantes a (S)-metil-1-(4-(3-(5-cloro-2-fluoro-3-(metilsulfonamido)fenil)-1-isopropil-1H-pirazol-
4- il)pirimidin-2-ilamino)propan-2-ilcarbamato (Novartis), en células A375 y células que expresaban C-RAF de tipo silvestre (Fig. 3C). Los alelos de resistencia C-RAF (S257P, P261T) aumentaron los valores de IC50 de (S)-metil-1- (4-(3-(5-cloro-2-fluoro-3-(metilsulfonamido)fenil)-1-isopropil-1H-pirazol-4-il)pirimidin-2-ilamino)propan-2-il-carbamato en ~ 10,000 y ~30,000 veces respectivamente, y de G361A en 20 veces (Fig. 3C). Como se observa en las Fig. 2C y E, la respuesta a PLX4720 y AZD6244 permaneció invariable (Fig. 3B y D). Además, bioquímicamente, los mutantes de resistencia C-RAF confirieron resistencia a (S)-metil-1-(4-(3-(5-cloro-2-fluoro-3-(metilsulfonamido)fenil)-1- isopropil-1H-pirazol-4-il)pirimidin-2-ilamino)propan-2-il-carbamato incluso a una concentración de 1 pM (Fig 3A).
Ejemplo 5: Los mutantes de resistencia C-RAF confieren resistencia a Vemurafenib (PLX4032).
Vemurafenib es altamente sensible a las mutaciones BRAFV600E, pero causa una activación paradójica de Mek y Erk en células que expresan Ras oncogénica (Hatzivassiliou et al., 2010; Heidorn et al., 2010; Poulikakos et al., 2010). Se analizaron los alelos de resistencia C-RAF para determinar si presentaban una respuesta similar hacia Vemurafenib en presencia de B-RAF oncogénica. Las células A375 que expresaban C-RAF de tipo silvestre (0,4 pM) (Fig. 5A) mostraron valores de IC50 comparables a los de las células que expresaban C-RAf de tipo silvestre tratadas con PLX4720 (Fig. 2C). La resistencia conferida por G361A fue 50 veces mayor que la de WT, mientras que,sorprendentemente, S257P y la P261T mostraron un aumento de la resistencia hacia Vemurafenib. Dado que estos mutantes confieren resistencia incluso en ausencia de Ras oncogénica, se determinó, además, si la resistencia al inhibidor de Raf se debió a un aumento de la actividad. Se inmunoprecipitó la C-RAF total de extractos de células A375 que expresaban las variantes de C-RAF en presencia y ausencia de Vemurafenib. Las mutaciones que mostraron alta resistencia (S257P y P261T) durante la inhibición farmacológica (Fig. 5A) tuvieron un aumento de la actividad quinasa in vitro en comparación con el tipo silvestre (Fig. 5B); sin embargo, el mutante de resistencia G361A presentó una actividad quinasa incluso mayor en presencia del fármaco (Fig. 5B). Además, se demuestra que los alelos de resistencia C-RAF permanecen sensibles al tratamiento combinatorio con PLX4720 y AZD6244 (Fig. 5C, D y E).
Conjuntamente, estos datos coinciden con la noción de que solo se requiere una cantidad óptima de señalización de Erk para que las células confieran resistencia.
Ejemplo 6: Los alelos de resistencia C-RAF permiten la activación paradójica de C-RAF y la dimerización potenciada
La activación paradójica de MEK/ERK inducida por inhibidores de RAF implica la dimerización de proteínas RAF (Hatzivassiliou et al., 2010; Poulikakos et al., 2010). Además, una forma truncada de BRAFV600E que muestra una dimerización potenciada confiere resistencia a los inhibidores de RAF (Poulikakos et al., 2011). Para determinar si las mutaciones de resistencia C-RAF median en la resistencia a través del aumento de la dimerización, se realizaron transfecciones conjuntas en células 293/T usando construcciones de expresión en las que se marcaron diferencialmente varios alelos de resistencia C-RAF representativos con dos epítopos distintos (His/V5 o Flag). Se llevaron a cabo reacciones de inmunoprecipitación usando perlas de Ni2+ (para capturar la proteína marcada con His), seguidas de inmunotransferencia usando anticuerpo anti-Flag. En estos experimentos, todas las mutaciones C- RAF que confieren resistencia farmacológica a inhibidores de RAF también presentaron un aumento de la homodimerización en comparación con C-RAF de tipo silvestre (S257P, P261T, G361A y E478K). Como era de esperar, en general, el aumento de dimerización se correlacionó con niveles aumentados de p-MEK (Fig. 6A, lisado de entrada). Se observaron resultados similares cuando se transfectaron conjuntamente mutantes C-RAF marcados con His/V5 con C-RAF de tipo silvestre marcada con Flag (Fig. 10A), aunque la magnitud de la activación de MEK/ERK pareció cualitativamente reducida (Fig. 10A, lisado de entrada). Los tres mutantes C-RAF que confieren la resistencia farmacológica más potente hacia PLX4720 y vemurafenib (S257P, P261T y G361A) (Fig. 2C y 2F) también mostraron pruebas de una mayor acumulación de proteína total (Fig. 6A, lisado de entrada). Así pues, el fenotipo de resistencia vinculado a las mutaciones C-RAF se correlacionó enormemente con la dimerización de RAF.
En las células 293T (que carecen de mutaciones BRAF oncogénicas), se mantuvo el aumento de la dimerización de C-RAF engendrado por la presencia de mutaciones de resistencia, pero no se potenció más tras la exposición de las células transfectadas al inhibidor de RAF (vemurafenib; Fig. 6B). Sin embargo, tanto la activación de C-RAF (evidenciada por la fosforilación de S338) como la señalización de MEK/ERK cadena abajo fueron inducidas potentemente por el inhibidor de RAF (Fig. 6B, lisado de entrada). Para determinar los efectos de estas mutaciones de resistencia sobre la actividad C-RAF quinasa intrínseca, se realizaron reacciones de quinasa in vitro a partir de células 293T cultivadas en presencia o ausencia de inhibidor de RAF. En ausencia de fármaco, en la mayoría de los casos, no se aumentó de forma medible la actividad C-RAF quinasa en estado estacionario (p-MEK) mediante las mutaciones de resistencia (Fig. 6C). CRAFG361A fue la excepción a esto; en este caso, se detectó una modesta
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actividad quinasa en estado estacionario, que se correlacionó con niveles potentes de p-MEK intrínseca en los lisados celulares completos correspondientes (Fig. 6C). En contraste, el tratamiento de células 293T con vemurafenib a 2 pM antes de los ensayos de quinasa in vitro produjo una notable regulación positiva de la actividad C-RAF quinasa en todos los alelos de resistencia examinados (Fig. 6C). Experimentos similares en células de melanoma BRAFV600E (A375) revelaron un aumento de la actividad quinasa intrínseca en los tres mutantes de resistencia C-RAF más potentes examinados (S257P, P261T y G361A; Fig. 6D). Esta actividad quinasa se aumentó más con la exposición de estas células a vemurafenib (Fig. 6D), como se observó en las células 293T. En conjunto, estos resultados sugirieron que los potentes mutantes de resistencia C-RAF potenciaron tanto la dimerización de RAF como la actividad C-RAF quinasa mediada por el inhibidor de RAF.
Ejemplo 7: Los mutantes de resistencia C-RAF presentan una unión a 14-3-3 reducida y una mayor heterodimerización de B-RAF
Los datos acumulados anteriores sugieren que las mutaciones C-RAF que engloban su sitio de unión a 14-3-3 consenso (S257P y P261T) y la región de unión a ATP del bucle P (G361A) confirieron resistencia farmacológica y bioquímica hacia la inhibición de RAF, la dimerización potenciada de RAF y el aumento de la activación de C-RAF quinasa tras el tratamiento con inhibidores de RAF. Para investigar el papel de la unión de la proteína 14-3-3 en relación con la dimerización de RAF, se realizaron experimentos de inmunoprecipitación a partir de células diseñadas para expresar ectópicamente alelos de resistencia C-RAF. Para examinar los efectos de la inhibición farmacológica de RAF sobre la unión a 14-3-3 y la heterodimerización de B-RAF, estos experimentos se realizaron tanto en ausencia como en presencia de inhibición de RAF (en este caso, vemurafenib). En ausencia de inhibidor de RAF, los alelos de resistencia C-RAF S257P, P261T y G361A tendieron a demostrar interacciones reducidas con 143-3 Z, y aumentaron las interacciones con B-RAF tanto en células 293T (Fig. 7A) como, en particular, células de melanoma A375 (BRAFV600E) (Fig. 7B). En las células 293T, la heterodimerización potenciada de C-RAF/B-RAF desencadenada por las mutaciones C-RAF se correlacionó con la estabilización de la proteína C-RAF y la potente fosforilación de MEK/ERK (Fig. 7A). Por otro lado, la potente activación de MEK/ERK observada en las células de melanoma BRAFV600E solo fue potenciada marginalmente por los mutantes de resistencia C-RAF (Fig. 7B); este resultado era de esperar, dada la señalización oncogénica constitutiva de B-RAF en estas células. Curiosamente, uno de los mutantes C-RAF (G356E) mostró una unión a 14-3-3Z muy baja en ambos contextos celulares (Fig. 7A y 7B); sin embargo, C-RAFG3 6E no mostró enriquecimiento en la heterodimerización de B-RAF ni aumento en la señalización de MEK/ERK en condiciones de estado estacionario. Estos resultados sugieren que aunque la unión a 14-3-3 reducida puede promover la dimerización de C-RAF mutante potenciada, se requiere un cierto grado de unión a 14-3-3 (tal vez dentro del dominio C-terminal) para promover la máxima señalización dependiente de RAF.
Como era de esperar, el inhibidor de RAF vemurafenib indujo la heterodimerización de B-RAF/C-RAF en células 293/T de manera ectópica expresando C-RAF de tipo silvestre (Fig. 7A), pero abrogó esta heterodimerización en las células de melanoma A375 (Fig. 7B). En contraste, la expresión ectópica de los mutantes de resistencia C-RAF más potentes permitió la heterodimerización de B-RAF sostenida, incluso en presencia de fármaco en las células A375 (Fig. 7B). Estos resultados sugieren que BRAFV600E adopta una configuración dominante que favorece la heterodimerización con variantes de C-RAF asociadas a la resistencia. La inhibición farmacológica de RAF tuvo efectos variables sobre la interacción de 14-3-3/C-RAF dependiendo del contexto genético celular. En las células A375 (BRAFV600E), vemurafenib disminuyó modestamente la unión de 14-3-3Z a C-RAF de tipo silvestre, pero no tuvo efecto en la fijación de los mutantes C-RAFS257P, C-RAFP261T y C-RAFG361A (Fig. 7B). Por otro lado, el vemurafenib mejoró estas interacciones de 14-3-3/C-RAF en las células 293/T (Fig. 7A). Estos hallazgos respaldaron la premisa de que el fenotipo de resistencia conferido por estos mutantes C-RAF en el contexto de BRAFV600E implicaba una dimerización de RAF potenciada, que se correlacionaba con una disminución de las interacciones de 14-3-3/C-RAF.
Ejemplo 8: La señalización potenciada de MEK/ERK por parte de los mutantes de resistencia C-RAF requiere la dimerización
Para probar si la dimerización de C-RAF es necesaria para la señalización de MEK/ERK potenciada conferida por mutantes de resistencia C-RAF, se introdujo una mutación de arginina-histidina en el resto R401 (C-RAFR401H) (Fig. 10B). Se ha demostrado previamente que este mutante interrumpe la homodimerización de C-RAF ((Hatzivassiliou et al., Nature 464: 431-435, 2010; Poulikakos et al., Nature 464:427-430, 2010). Se introdujo la mutación deficiente en dimerización R401H en los respectivos alelos de resistencia C-RAF. Como era de esperar, los mutantes dobles C-RAF se volvieron en gran parte incapaces de una señalización potenciada de MEK/ERK (Fig. 8A). A continuación, se realizaron transfecciones conjuntas usando mutantes dobles de R401H/C-RAF marcados diferencialmente con epítopo. Como se ha descrito anteriormente, los alelos de resistencia C-RAF aumentaron la homodimerización de C- RAF de una manera no afectada por el inhibidor de RAF (Fig. 8B). En contraste, la introducción del alelo R401H suprimió la homodimerización de C-RAF e inhibió la señalización de MEK/ERK en la mayoría de los contextos mutantes de C-RAF examinados. La excepción a esto fue el alelo C-RAFG361A, que presentó activación constitutiva (aunque notablemente reducida) de MEK/ERK, que fue inducida además por la exposición a vemurafenib, incluso cuando se expresó junto con el doble mutante deficiente en dimerización. Junto con los resultados de la actividad
1 J A/R401 l-l
quinasa in vitro anteriores, estos datos sugieren que el alelo C-RAF también puede contener una mayor
actividad quinasa intrínseca. En su conjunto, estos resultados proporcionan la evidencia directa de que la señalización potenciada de MEK/ERK conferida por los mutantes de resistencia C-RAF requiere la dimerización de
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RAF. También pueden proporcionar una justificación para el desarrollo futuro de inhibidores alostéricos de RAF que interrumpan la superficie de contacto de dimerización de RAF.
Métodos
Cultivo celular
Se cultivaron células 293/T, células A375 (ATCC) y células Phoenix (alelo Biotech), y se mantuvieron a 37 °C en medio de Eagle modificado por Dulbecco suplementado con suero bovino fetal al 10 % en una atmósfera humidificada que contenía CO2 al 5 %.
Selección mediante mutagénesis aleatoria de C-RAF
Se clonó ADNc de C-RAF en el vector pWZL-Blast (obsequio de J. Boehm y W. C. Hahn) mediante clonación de recombinación (Invitrogen). Se introdujeron mutaciones específicas en el ADNc de c-raf usando la mutagénesis dirigida QuickChange II (Stratagene). La mutagénesis aleatoria se realizó basándose en el protocolo establecido (Emery et al., Id. 2009). El plásmido de C-RAF mutagenizado se usó para infectar células de melanoma A375. Tras la selección con blasticidina, se sembraron las células en placas de 15 cm y se cultivaron en presencia de inhibidor de RAF, PLX4720 (1,5 pM) durante 4 semanas hasta que surgieron los clones resistentes.
Secuenciación de ADN de c-RAF
Se agruparon las células resistentes a PLX4720 surgidas de la selección por mutagénesis aleatoria, y se preparó ADN genómico (Qiagen DNeasy). Se amplificó ADNc de C-RAF a partir de ADN genómico usando cebadores específicos para la secuencia del vector de flanqueo en el extremo 5' y 3', y se secuenció mediante el método de Sanger usando protocolos establecidos.
Análisis de secuenciación masiva paralela
Se analizaron los datos sin procesar de los carriles de secuenciación masiva paralela (Illumina, 2-3 millones de secuencias de 36 pares de bases por carril) usando un canal de análisis de secuenciación de "próxima generación" (Emery et al., PNAS, 2009). Se integraron y se procesaron los resultados de los archivos de datos que representan la secuencia de nucleótidos, la medida de calidad por base, las variantes detectadas y la alineación con la secuencia de referencia de ADNc (según lo determinado mediante la alineación con el algoritmo ELAND) para cada serie. Se determinó la cobertura (es decir, el número de fragmentos que incluyen cada base de la referencia de ADNc) para todas las bases, y se cartografiaron las variantes alélicas a partir de fragmentos de ADN individuales en la secuencia de referencia. Se determinó la frecuencia de variación para cada alelo de tipo no silvestre, y se calculó una puntuación media de variante (AVS) como la media de todas las puntuaciones de calidad para la posición y la variante alélica en cuestión. Se tradujeron todas las mutaciones de codificación para determinar la variación de aminoácidos (si existe), y se cargaron los datos para las mutaciones de alta frecuencia (> 0,5 %) y de alta calidad (AVS >7) en la base de datos de resultados de CCGD.
Infecciones retrovíricas
Se transfectaron células Phoenix (70 % de confluencia) con pWZLBlast-C-RAF o los mutantes usando Fugene 6 (Roche). Se pasaron los sobrenadantes que contenían el virus a través de una jeringa de 0,45 pm. Se infectaron las células A375 durante 16 h con virus junto con polibreno (4 pg/ml, Sigma). Se introdujo el marcador selectivo blasticidina (3 pg/ml) 48 h después de la infección.
Análisis de transferencia Western
Se extrajeron muestras tras lavar dos veces con PBS y se lisaron con NaCl 150 mM, Tris 50 mM, pH 7,5, EDTA 1 mM, PMSF, fluoruro sódico, ortovanadato de sodio y cóctel inhibidor de proteasa en presencia de NP-40 al 1 %. Se estimó el contenido de proteína con reactivo de ensayo de proteínas (Bio-Rad) de acuerdo con las instrucciones del fabricante. Se cargaron cantidades iguales de lisados de células enteras y se separaron mediante geles listos para usar de SDS-PAGE al 8-16 %. Se transfirieron las proteínas a membranas de difluoruro de polivinilideno en un aparato Trans-Blot. Se bloquearon las membranas con leche desnatada al 5 % en TBS que contenía Tween 20 al 0,1 % durante 1 h a temperatura ambiente o durante una noche a 4 °C. Luego, se incubaron las membranas con anticuerpo monoclonal o policlonal producido contra la proteína de interés durante 1 h a temperatura ambiente o durante la noche a 4 °C, seguido de tres lavados con TBS que contenía Tween 20 al 0,1 %. Se visualizó la inmunorreactividad de los anticuerpos primarios C-RAF, S259C-RAF, S338C-RAF, S621C-RAF, pERK, ERK, pMEK, MEK, 14-3-3Z Flag (Cell Signaling), B-RAF (Santa Cruz Biotechnology) y actina (Sigma) con anticuerpos anti-conejo (BD Transduction Laboratories) o anti-ratón (Santa Cruz Biotechnology) secundarios conjugados con peroxidasa de rábano picante y el posterior desarrollo con ECL Plus (Amersham Biosciences) y autorradiografía en películas X- OMAR TAR. Se rastrearon las bandas y se cuantificaron mediante el sistema Gel Doc usando el software Quantity One.

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    REIVINDICACIONES
    1. Una molécula de ácido nucleico que codifica un polipéptido C-RAF muíante que tiene actividad C-RAF o un polipéptido C-RAF mutante que tiene actividad C-RAF,
    en los que dicho polipéptido C-RAF mutante comprende al menos una sustitución de aminoácido seleccionada del grupo que consiste en 257S>P, 261P>T, 361G>A y 478E>K en comparación con un polipéptido C-RAF de tipo silvestre que comprende SEQ ID NO: 2,
    confiriendo la al menos una sustitución de aminoácido resistencia a uno o más inhibidores de RAF en una célula que expresa el polipéptido C-RAF mutante,
    estando el inhibidor de RAF seleccionado de PLX 4720, PLX4032 y (S)-metil-1-(4-(3-(5-cloro-2-fluoro-3- (metilsulfonamido)fenil)-1-isopropil-1H-pirazol-4-il)pirimidin-2-ilamino)propan-2-il-carbamato.
  2. 2. Un vector de expresión que comprende el ácido nucleico de la reivindicación 1.
  3. 3. Una célula hospedadora que comprende el vector de expresión de la reivindicación 2.
  4. 4. Un preparado de anticuerpos que se une específicamente a un polipéptido C-RAF mutante según lo definido en la reivindicación 1.
  5. 5. Un método para identificar a un sujeto que tenga cáncer como aquel que tiene resistencia a un inhibidor de RAF, comprendiendo el método:
    (a) extraer ácido nucleico de células de un cáncer obtenidas del paciente; y
    (b) ensayar al menos una parte de una molécula de ácido nucleico que codifique un polipéptido C-RAF;
    en el que la presencia de una o más sustituciones de C-RAF según lo definido en la reivindicación 1 indica que el sujeto tiene resistencia a un inhibidor de RAF.
  6. 6. El método de acuerdo con la reivindicación 5, en el que la presencia de una o más sustituciones de C-RAF según lo definido en la reivindicación 1 indica una necesidad de tratar al sujeto con un inhibidor de RAF y un inhibidor secundario.
  7. 7. El método de acuerdo con la reivindicación 6, en el que el segundo inhibidor es un inhibidor de MEK.
  8. 8. El método de acuerdo con la reivindicación 7, en el que el inhibidor de MEK se selecciona del grupo que consiste en Cl-1040/PD184352, AZD6244, PD318088, PD98059, PD334581, RDEA119, 6-metoxi-7-(3-morfolin-4-il-propoxi)- 4-(4-fenoxi-fenilamino)-quinolin-3-carbonitrilo y 4-[3-cloro-4-(1-metil-1H-imidazol-2-ilsulfanil)-fenilamino]-6-metoxi-7- (3-morfolin-4-il-propoxi)-quinolin-3-carbonitrilo.
  9. 9. El método de acuerdo con la reivindicación 7 o la reivindicación 8, en el que el inhibidor de RAF se selecciona del grupo que consiste en RAF265, sorafenib, SB590885, PLX 4720, PLX4032, GDC-0879, ZM 336372 y (S)-metil-1-(4- (3-(5-cloro-2-fluoro-3-(metilsulfonamido)fenil)-1-isopropil-1H-pirazol-4-il)pirimidin-2-ilamino)propan-2-il-carbamato.
  10. 10. El método de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 6 -9, en el que el cáncer se selecciona del grupo que consiste en melanoma, cáncer de mama, cánceres colorrectales, glioma, cáncer pulmonar, cáncer ovárico, sarcoma y cáncer tiroideo, y/o un cáncer dependiente de RAF.
  11. 11. El método de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 6-10, en el que el sujeto tiene células cancerosas que comprenden una mutación en B-RAF, preferentemente, una mutación B-RAFV600E.
  12. 12. El método de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 6-11, en el que el ensayo del ácido nucleico comprende la secuenciación del ácido nucleico.
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