ES2326848T3 - Inhibidores de la actividad de secuencias inmunoestimulatorias de adn. - Google Patents
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Abstract
Procedimiento para la identificación de un oligonucleótido (IIS-ON) que inhibe la actividad inmunoestimulatoria de ISS-ODN, que comprende: (a) contactar una población de células inmunes estimuladas con antígenos con un polinucleótido inmunoestimulatorio (ISS-ODN) que incluye por lo menos un motivo 5''-CG-3'' o metilado para inducir la proliferación de linfocitos en secreción de citocinas IFNBeta, IFN-alfa, IFN-ípsilon, IL-12 y IL-18 de, la producción de anticuerpos IgG1 mediante, o la supresión de IgE en, la población de células inmunes estimuladas con antígenos; (b) medir cualquier cambio en el número de linfocitos o los niveles de citocinas secretadas y/o los niveles de anticuerpos IgE o IgG1 en la población de células estimuladas con antígenos después de contactar con el ISS-ODN; (c) contactar la población de células estimuladas con antígenos con un oligonucleótido inhibitorio IIS-ON candidato, comprendiendo dicho IIS-ON una secuencia de nucleótidos hexamérica de fórmula 5''-Purina-Purina-[Y]-[Z]- Pirimidina-Pirimidina-3'' o 5'' Purina-Purina-[Y]-[Z]-poli(Pirimidina)-3''; en la que Y es cualquier nucleótido que se produce naturalmente o sintético excepto citosina y Z es cualquier nucleótido que se produce naturalmente o sintético y en la que cuando Y no es guanosina o inosina, Z es guanosina o inosina; y (d) medir cualquier cambio en el número de linfocitos o los niveles de citocinas IFNbeta, IFN-alfa, IFN-ípsilon, IL-12 y IL-18 secretadas y/o los niveles de anticuerpos IgE o IgG1 en la población de células estimuladas con antígenos después de contactar con el oligonucleótido, en el que una disminución en cualquiera de los valores medidos para la proliferación de linfocitos, secreción de citocinas, o producción de anticuerpo IgG1, así como un aumento en la producción de anticuerpo IgE, comparado con las mediciones tomadas en la etapa (b) indica que el oligonucleótido inhibe la actividad inmunoestimulatoria del ISS-ODN de la etapa (a).
Description
Inhibidores de la actividad de secuencias
inmunoestimulatorias de ADN.
La invención se refiere a secuencias
inmunoestimulatorias en ADN. La invención también se refiere a
vectores de expresión recombinantes para su uso en terapia
génica.
Los vectores de expresión recombinantes son las
herramientas que los investigadores y los clínicos utilizan para
conseguir los objetivos de la terapia génica y la inmunización
génica. En la terapia génica, se utilizan vectores virales y no
virales para proporcionar un gen que se puede expresar en un huésped
para reemplazar el gen faltante o defectuoso, o para proporcionar
de otra manera al huésped un polipéptido terapéuticamente
beneficioso. En la inmunización génica, se utilizan principalmente
vectores no virales para inducir una respuesta inmune por parte del
huésped a un antígeno expresado.
Uno de los obstáculos para la práctica clínica
exitosa de la terapia génica y la inmunización génica ha sido la
naturaleza a menudo transitoria de la expresión génica conseguida en
vivo. La expresión génica transitoria es menos problemática en la
inmunización génica, donde las respuestas inmunes suficientes para
ciertos esquemas de inmunización se pueden estimular incluso
mediante una exposición a corto plazo al antígeno expresado.
Además, están disponibles varias opciones para impulsar la respuesta
inmune del huésped al antígeno, incluyendo el uso del propio vector
como adyuvante para la respuesta inmune deseada mediante la
exposición del huésped a secuencias de nucleótidos
inmunoestimulatorios no codificadores (ISS-ODN)
presentes en el vector (Sato, et al., Science,
273:352-354 (1996)).
Sin embargo, en un protocolo de terapia génica,
la pérdida prematura de expresión génica priva al huésped de los
beneficios potenciales de la terapia (Friedmann, Scientific
American, "Making Gene Therapy Work" (Junio 1997)). La
dosificación repetitiva para extender la exposición del huésped a un
polipéptido terapéutico puede requerir el uso de diferentes
vectores para suministrar cada dosis, de manera que se minimiza la
respuesta inmune de huésped a antígenos de vector (Tripathy, et
al., Nature Med., 2:545-550 (1996)).
Una fuente potencial de inmunogenicidad del
vector son ISS-ODN en el genoma de las especies
microbianas usadas para construir vectores de expresión
recombinantes. Para explicarlo, los motivos CpG que caracterizan el
ISS-ODN están presentes en bacterias y virus
(incluyendo retrovirus) en una frecuencia mucho mayor de la que se
aprecia en genomas de vertebrados. Una consecuencia de la actividad
del ISS-ODN es la producción inducida de
ISS-ODN de citocinas tales como
interferon-\alpha (INF-\alpha),
INF-\gamma y interleuquina-12
(IL-12). Esta inflamación del
ISS-ODN se cree que es defensiva contra infección
microbiana en vertebrados y también se cree que se produce en
respuesta al ISS-ODN introducido en un huésped como
oligonucleótidos o como parte de un vector de expresión
recombinante.
El documento WO96/02555 describe
oligonucleótidos inmunomoduladores que contienen dinucleótidos de
CpG no metilados. Oligonucleótidos similares también se describen en
Kreig et al, Nature 374:546-549 (1995) y
Ballas et al, J. Immunol., 157:1840-1845
(1996). El documento WO95/26204 describe ciertos oligonucleótidos
antisentido que están marcados en ARNms virales seleccionados.
La invención se refiere a compuestos que
consisten en oligodeoxinucleótidos, ribonucleótidos y análogos de
los mismos que inhiben específicamente la actividad
inmunoestimulatoria del ISS-ODN y su
utilización.
La secreción inducida de ISS-ODN
de INF-\alpha en particular puede suprimir
expresiones génicas recombinantes e impide que ARNm y síntesis de
proteínas en células transfectadas. Así, la inhibición de la
actividad de ISS-ODN evita substancialmente
pérdidas inducidas de ISS-ODN de expresión génica,
prolongando así la disponibilidad del polipéptido expresado en un
huésped que sufre terapia génica o inmunización génica con un vector
de expresión recombinante que contiene ISS-ODN.
Además, se evita la necesidad de dosificación repetitiva para
prolongar la disponibilidad de proteínas expresadas y reingeniería
extensiva de vectores de expresión recombinante para eliminar las
secuencias de ISS-ODN a través del uso de los
compuestos aquí descritos.
Los compuestos aquí descritos también son útiles
en la modulación de la actividad inmunoestimulatoria del
ISS-ODN administrado como adyuvantes para impulsar
las respuestas inmunes del huésped al antígeno en, por ejemplo,
inmunoterapia. Respecto a esto, los compuestos aquí descritos
permiten un control exquisito sobre el efecto de los adyuvantes
basados en ISS-ODN en un huésped.
Además, los compuestos aquí descritos reducen la
inflamación del huésped generada en respuesta a una infección por
un ISS-ODN que contiene bacterias o virus.
Ventajosamente, los compuestos aquí descritos se pueden administrar
para inhibir la actividad del ISS-ODN ejercida por
un microbio incluso si la identidad del ISS-ODN
particular presente en el microbio es desconocida. Así, los
compuestos aquí descritos se pueden considerar que son agentes
antiinflamatorios de amplio espectro.
En un aspecto, la invención proporciona un
procedimiento para identificar un oligonucleótido
(IIS-ON) que inhibe la actividad
inmunoestimulatoria del ISS-ODN que comprende: (a)
contactar una población de células inmunes estimuladas con antígeno
con un polinucleótido inmunoestimulatorio (ISS-ODN)
que incluye por lo menos motivo
5'-CG-3' no metilado para inducir la
proliferación de linfocitos en forma de secreción de citocina
IFN\beta, IFN-\alpha,
IFN-\gamma, IL-12 y
IL-18, producción de anticuerpos IgG1, o la
supresión de IgE en la población de células inmunes estimuladas con
antígeno; (b) medir cualquier cambio en el número de linfocitos o
niveles de citocinas secretadas y/o niveles de anticuerpos IgE o
IgG1 en la población de células estimuladas de antígenos después de
contactar con el ISS-ODN; (c) contactar la población
de células estimuladas con antígeno con un oligonucleótido
inhibitorio IIS-ON candidato, comprendiendo dicho
IIS-ON una secuencia nucleótida hexamérica de
fórmula
5'-Purina-Purina-[Y]-[Z]-Pirimidina-Pyrimidina-3'
o 5'
Purina-Purina-[Y]-[Z]-poli(Pirimidina)-3';
en la que Y es cualquier nucleótido que se produce de manera
natural o sintética excepto citosina y Z es cualquier nucleótido
que se produce de manera natural o sintética y en el que cuando Y no
es guanosina o inosina, Z es guanosina o inosina; y (d) medir
cualquier cambio en el número de linfocitos o niveles de citocinas
IFN\beta, IFN-\alpha,
IFN-\gamma, IL-12 y
IL-18 secretadas y/o niveles de anticuerpos IgE o
IgG1 en la población de células estimuladas con antígeno después de
contactar con el oligonucleótido, en el que una disminución en
cualquiera de los valores medidos de la proliferación de linfocitos,
secreción de citocina o producción de anticuerpo IgG1, así como un
aumento en la producción de anticuerpo IgE, comparado con las
mediciones tomadas en la etapa (b) indica que el oligonucleótido
inhibe la actividad inmunoestimulatoria del ISS-ODN
de la etapa (a).
En otro aspecto, la invención proporciona una
composición farmacéutica que comprende: a) un oligonucleótido que
comprende una secuencia de nucleótido hexamérica de fórmula
5'-Purina-Purina-[Y]-[Z]-Pirimidina-Pirimidina-3'
o 5'
Purina-Purina-[Y]-[Z]-poly(Pirimidina)-3';
en la que Y es cualquier nucleótido que se produce de manera
natural o sintética excepto citosina y Z es cualquier nucleótido que
se produce de manera natural o sintética y en el que cuando Y no es
guanosina o inosina, Z es guanosina o inosina, en la que dicho
oligonucleótido exhibe un efecto inmunoinhibitorio contra un
polinucleótido inmunoestimulatorio que incluye por lo menos un
motivo 5'-CG-3' no metilado; y b) un
portador farmacéuticamente aceptable, para su uso en un
procedimiento de inhibición de la estimulación de una secuencia
inmunoestimulatoria que comprende por lo menos un motivo CG no
metilado.
La invención también prevé la utilización de la
composición farmacéutica definida para la fabricación de un
medicamento para inhibir la estimulación mediante una secuencia
inmunoestimulatoria que comprende por lo menos un motivo CG no
metilado.
Más preferiblemente, las purinas 5' son el mismo
nucleótido, ya que son las pirimidinas 3'. Por ejemplo, si ** es
YZ, las purinas 5' y las pirimidinas 3' pueden ser AA**TT,AG**TT,
GA**TT, GG**TT, AA**TC, AG**TC, etc. Cualquier secuencia presente
que flanquea la secuencia del núcleo del hexámero se construye para
que coincida substancialmente con las secuencias flanqueadoras
presentes en cualquier ISS-ODN conocido.
El IIS-ON inhibitorio de la
invención se prepara en una composición farmacéuticamente aceptable
para su uso en un huésped. El IIS-ON se puede
mezclar en la composición de manera simple, en múltiples copias o
en una mezcla de IIS-ON diferente. Alternativamente,
el IIS-ON inhibitorio de la invención se puede
incorporar en un vector de expresión recombinante. El
IIS-ON inhibitorio también se puede prever en forma
de un conjunto, que comprende IIS-ON inhibitorio y
construcciones de vector de expresión que contienen, o son
susceptibles de inserción, un gen de interés.
Una ventaja particular del
IIS-ON de la invención es que se puede usar para
dirigir ISS-ON en cualquier IIS-ODN
que contiene el vector de expresión recombinante o el microbio, si
se conoce o no la composición del nucleótido del vector o microbio.
Incluso, no es necesario conocer la existencia, identidad o posición
del ISS-ODN en el vector o microbio. Si el
ISS-ODN no está presente en el vector o microbio, el
ISS-ON de la invención simplemente no tendrá ningún
efecto. Sin embargo, si el ISS-ODN está presente en
el vector o microbio, se puede esperar que su actividad
inmunoestimulatoria será inhibida en una manera que depende de la
dosis mediante el IIS-ON, incluso si no se conoce
la estructura o posición específica del ISS-ODN en
el vector o microbio.
Así, en otro aspecto, la invención proporciona
una alternativa simple y efectiva para la ardua tarea de eliminar
la actividad del ISS-ODN de los vectores de
expresión recombinante mediante la identificación de todos los
ISS-ODN presentes en el vector y su eliminación.
También en este aspecto, la invención
proporciona procedimiento para el cribado de vectores de expresión
recombinantes para la presencia de ISS-ON y para
identificar IIS-ON inhibitorio adicional. En el
aspecto anterior, la presencia de ISS-ODN en un
vector de expresión recombinante se confirma mediante la incubación
del vector en una población de linfocitos con un
IIS-ON de actividad inhibitoria conocida y
comparando la diferencia, si la hay, en el nivel de producción de
citocina inducida con ISS mediante los linfocitos antes y después
de la incubación del IIS-ON.
En este último aspecto, el
IIS-ON inhibitorio adicional que tiene las
características aquí descritas se identifica por su capacidad de
inhibir la actividad inmunoestimulatoria de un polinucleótido o
vector de expresión recombinante que contiene ISS conocido.
En todavía otro aspecto, la invención también
proporciona un agente antiinflamatorio útil para su uso en la
inhibición de la actividad inmunoestimulatoria de cualquier
ISS-ODN presente en una bacteria infecciosa o
virus.
Además, la invención proporciona medios útiles
para modular la actividad inmunoestimulatoria del
ISS-ODN suministrado a un huésped para
inmunoestimulación (por ejemplo, como adyuvante).
La figura 1 es un gráfico que representa la
inhibición en vivo de la actividad inmunoestimulatoria del
ISS-ODN mediante el IIS-ON
inhibitorio de la invención (I-ON DY1019 y DY1041
(que tienen regiones de hexámero que consisten en, respectivamente,
AAGGTT and AAGCTT)). La proliferación de linfocitos estimulados en
un modelo de murina mediante el ISS-ODN (DY1038,
que tiene una región de hexámero que consiste en AACGTT) se comparó
en presencia o ausencia del IIS-ON. Una disminución
en las cuentas por minutos medidas (CPM; eje vertical) representa
la inhibición de la actividad inmunoestimulatoria del
ISS-ODN en la figura. Se muestran dosis para cada
IIS-ON probado a lo largo del eje horizontal. DY1039
(un ISS-ODN con la citosina), DY1040, DY1042 y
DY1043 (todos con dinucleótidos CC en lugar del dinucleótido CG de
DY1038) sirvieron como controles. Para confirmar la posición de
competición potencial con DY1038, todos los oligonucleótidos era
idénticos a DY1038 excepto para las regiones de hexámero
identificada y DY1043 (un control de secuencia irrelevante).
La figura 2 es un gráfico que confirma la
inhibición dependiente de la dosis en vivo de la actividad
inmunoestimulatoria del ISS-ODN mediante el
IIS-ON DY1019 y DY1041 de la invención. La
proliferación de linfocitos estimulada en un modelo de murina
mediante un ISS-ODN diferente al probado en el
experimento de la figura 1 (DY1018) se comparó en presencia o
ausencia del IIS-ON. Una disminución en las cuentas
por minuto medidas (CPM; eje vertical) representa la inhibición de
la actividad inmunoestimulatoria del ISS-ODN en la
figura. Dosificaciones para cada IIS-ON probado se
muestran a lo largo del eje horizontal. La actividad inhibitoria del
IIS-ON DY1019 y DY-1041 aumentó con
la dosificación, siendo el aumento en la actividad del DY1019
proporcional al aumento en la dosificación. Para confirmar para
posición de la competición potencial con DY1018, DY1019 y DY1041 son
idénticos a DY1018 excepto para las regiones de hexámero
identificadas.
La figura 3 es un gráfico que representa la
inhibición dependiente de la dosis en vivo de la actividad
inmunoestimulatoria del ISS-ODN mediante varios
IIS-ON inhibitorios de la invención. La
proliferación de linfocitos estimulada en un modelo de murina
mediante DY1038 se comparó en presencia o ausencia del
IIS-ON. Una disminución en las cuentas por minuto
medidas (CPM; eje vertical) representa la inhibición de la actividad
inmunoestimulatoria del ISS-ODN en la figura.
Dosificaciones para cada IIS-ON probado se muestran
a lo largo del eje horizontal. En orden descendente, la actividad
más inhibitoria se mostró por parte del IIS-ON
DY1019, DY-1041, DY1048, DY1050 y DY1060 (este
último tiene regiones de hexámero que consisten en, respectivamente,
AGGGTT, GAGGTC y TTGCAA). DY1039 (un ISS-ODN con la
citosina metilada), DY1040 y DY1043 (este ultimo con dinucleótidos
CC en lugar del dinucleótido CG de DY1038) sirvieron como
controles. Para confirmar para posición de la competición potencial
con DY1038, todos los oligonucleótidos eran idénticos a DY1038
excepto para las regiones de hexámero identificadas y DY1043 (un
control de secuencia irrelevante).
La figura 4 es un gráfico que representa la
inhibición dependiente de la dosis en vivo de la actividad
inmunoestimulatoria del ISS-ODN mediante el
IIS-ON inhibitorio de la invención. La producción de
INF-\gamma estimulado mediante DY1018
ISS-ODN en un modelo de murina se comparó en
presencia o ausencia del IIS-ON. Una disminución en
el INF-\gamma medido (eje vertical) representa la
inhibición de la actividad inmunoestimulatoria del
ISS-ODN en la figura. Las dosificaciones para cada
I-ON probado se muestran a lo largo del eje
horizontal. Se observó alguna actividad inhibitoria para todos
excepto un IIS-ON, mostrándose la mayor actividad
por parte de I-ON DY1019 y DY-1041,
así como DY1042 (que tiene una región de hexámero que consiste en
TTCCTT). La inserción separa los datos de la inhibición de la
producción de INF-\gamma mediante DY1019. Para
confirmar la posición de la competición potencial con DY1018, todos
los oligonucleótidos eran idénticos a DY1018 excepto para las
regiones de hexámero identificadas y DY1043 (un control de secuencia
irrelevante).
La figura 5 es un gráfico que representa las
propiedades adyuvantes del IIS-ODN, mediante el cual
se induce una respuesta inmune celular de tipo Th2 en ratones
inmunizados con antígeno (\beta-galactosidasa)
mediante coadministración del antígeno y IIS-ODN
DY1019 (identificado en la figura como
\beta-gal/M-ODN). Las respuestas
del TH2 se representan mediante niveles IgE medidos después del
impulso. Los valores obtenidos se comparan con los niveles IgE
medidos el ratones inmunizados con antígeno y la composición de
ISS-ODN
b-gal/ISS-ODN
(5'-AATTCAACGTTCGC-3'),
pKISS-3 (un plásmido que tiene tres copias del
hexámero AACGTT ISS-ODN en la espina dorsal) y
pKISS-0 (un plásmido que no tiene copias del
hexámero AACGTT ISS-ODN en la espina dorsal), así
como ratones que recibieron salino solamente. Se obtuvieron
respuestas de IgE potentes (respuestas de tipo Th2) por encima de
1000 CPM solamente en los ratones que recibieron salino
(aproximadamente 1200 CPM 1 semana después de la activación) y
\beta-gal/M-ODN (aproximadamente
1750 CPM 1 semana después de la activación).
El IIS-ON de la invención reduce
el efecto inmunoestimulatorio del ISS-ODN.
Estructuralmente, los ISS-ON son oligonucleótidos
no codificadores con una longitud de 6 mer o mayor que pueden
incluir por lo menos un motivo CG no metilado. La posición relativa
de cada secuencia CG en ISS-ODN con actividad
inmunoestimulatoria en ciertas especies de mamíferos (por ejemplo
roedores) es 5'-CG-3' (es decir, la
C está en la posición 5' respecto a la G en la posición 3'). Muchos
ISS-ODN conocidos flanquean el motivo CG con por lo
menos dos nucleótidos de purina (por ejemplo, GA or AA) y por lo
menos dos nucleótidos de pirimidina (por ejemplo, TC o TT) para
mejorar la actividad estimulatoria de los linfocitos B del
polinucleótido inmunoestimulatorio (ver, por ejemplo, Krieg,
et al., Nature, 374:546-549, 1995).
Funcionalmente, los ISS-ODN
mejoran las respuestas inmunes celulares y humorales en un huésped,
particularmente la proliferación de linfocitos y la liberación de
citocinas (incluyendo IFN) mediante monocitos huésped y células
asesinas naturales (NK). El ADN bacteriano contiene dinucleótidos
CpG no metilados con una frecuencia de aproximadamente uno por cada
16 bases. Estos dinucleótidos están también presentes en ciertas
especies virales, pero están claramente poco representados en
especies vertebradas.
Se cree que la capacidad de las micobacterias,
así como otras especies bacterianas y virales, para estimular la
proliferación de linfocitos, producción de IL-12,
producción del factor de necrosis tumoral (TNF), actividad de
células asesinas naturales (NK) y secreción
IFN-\gamma es debida a la presencia de
ISS-ODN en ADN bacteriano y viral (ver, por
ejemplo, Krieg, Trends in Microbiology, 4:73-76
(1996)). Por el contrario, la supresión y metilación de CpG en
vertebrados puede ser una respuesta evolutiva a la amenaza de las
infecciones bacterianas y virales. De manera interesante,
recientemente se ha implicado también un oligonucleótido que
contiene CpG comparable con el ISS-ODN bacteriano en
el inicio y la exacerbación de enfermedades autoinmunes a través de
una trayectoria dependiente del IL-12 (Segal, et
al., J. Immunol., 158:5087 (1997)).
La inmunoestimulación mediante
ISS-ODN sintético en vivo se produce mediante
el contacto de linfocitos huésped con, por ejemplo,
oligonucleótidos de ISS-ODN, los vectores de
expresión recombinantes de conjugados oligonucleótidos de
ISS-ODN y que contienen ISS (datos respecto a la
actividad de los conjugados ISS-ODN y vectores
ISS-ODN se indican en la solicitudes de patente
solicitadas al mismo tiempo y del mismo titular Nº. 60/028,118 y
08/593,554; cuyos datos se incorporan aquí como referencia solamente
para demostrar la actividad inmunoestimulatoria del
ISS-ODN en vivo). Así, mientras el
ISS-ODN microbiano nativo estimula a que el sistema
inmune huésped responda a la infección, análogos sintéticos de estos
ISS-ODN pueden ser terapéuticamente útiles para
modular la respuesta inmune del huésped no solamente para antígenos
microbianos, sino también para antígenos tumorales, alérgenos y
otras substancias (id.).
Aunque la invención no está limitada mediante
ninguna teoría respecto al mecanismo de acción del
IIS-ON, se cree que compiten con el
ISS-ODN para unirse a la membrana celular de los
linfocitos huésped. La región del ISS-ODN que
confiere su actividad inmunoestimulatoria se cree que es la longitud
de 6 mer o más de nucleótidos que incluye un dinucleótido no
metilado (por ejemplo, CpG). Por lo tanto, se cree que la presencia
de una región de longitud de aproximadamente 6 mer o más que tiene
por lo menos un dinucleótido de competencia (definido como [Y]-[Z]
y [Y]-poli[Z] en las fórmulas indicadas a
continuación) confiere actividad inhibitoria ISS en el
IIS-ON de la invención.
Así, los compuestos inhibitorios de la invención
son oligonucleótidos sintetizados (IIS-ON) que
inhibe la actividad inmunoestimulatoria de los
ISS-ON en vertebrados y en células inmunes de
vertebrados.
Para identificar los IIS-ON
entre un grupo de IIS-ONs sintetizados candidatos,
las siguientes etapas proporcionan unos medios simples y eficientes
para cribar rápidamente el grupo de candidatos:
a. Una población de linfocitos y/o monocitos
cultivados estimulados con antígeno se contacta con un
ISS-ODN para inducir la proliferación de
linfocitos, la secreción de citocina IFN\beta,
IFN-\alpha, IFN-\gamma,
IL-12 y IL-18 y/o la producción de
anticuerpo IgG2.
b. Se mide cualquier cambio en el número de
linfocitos, niveles de citocinas IFN\beta,
IFN-\alpha, IFN-\gamma,
IL-12 y IL-18 secretadas, niveles de
anticuerpos IgG1 o IgG2 o niveles de anticuerpo IgE en el cultivo
celular después del contacto con el ISS-ODN.
c. Las células se contactan con el candidato
IIS-ON.
d. Se mide cualquier cambio en el número de
linfocitos, niveles de citocinas secretadas, niveles del anticuerpo
IgG2 o niveles del anticuerpo IgE en la población de células después
de contactar con el oligonucleótido.
\newpage
Una disminución de cualquiera de estos valores
(excepto anticuerpos IgG1 y IgE) comparados con las mediciones
tomadas en la etapa (2) indica que el oligonucleótido candidato es
un IIS-ON de la invención; es decir, inhibe la
actividad inmunoestimulatoria del ISS-ODN.
Alternativamente, un aumento en los niveles
medidos de anticuerpos IgG1 o IgE es un indicador indirecto de un
aumento en una respuesta de linfocitos de tipo Th2, que indica que
la actividad estimulatoria Th1 del ISS-ODN ha
disminuido en presencia del IIS-ODN. Las técnicas de
ensayo adecuadas para su uso en la realización de las etapas
anteriores se muestran en los ejemplos adjuntos. En vista de las
enseñanzas de esta descripción, otras técnicas de ensayo para medir
los cambios en la proliferación de linfocitos inducidos con
ISS-ODN o la secreción de citocina serán evidentes
para los expertos en la materia.
El procedimiento de cribado también se puede
usar para detectar ISS-ODN en una muestra de células
inmunes tomadas del huésped. Este aspecto de la invención es útil
en la confirmación de la presencia de antígenos que contienen
ISS-ODN (por ejemplo, antígenos microbianos) y
autoantígenos en el huésped. Para este propósito, las etapas del
procedimiento de cribado descrito anteriormente se modifican para
incluir las etapas de:
a. Obtener una muestra de células inmunes del
huésped, cuyas células se creen que están expuestas a un antígeno o
autoantígeno.
b. Medir los niveles de proliferación de
linfocitos en; secreción de citocina IFN\beta,
IFN-\alpha, IFN-\gamma,
IL-12 y IL-18 de; producción de
anticuerpos IgG1 y IgG2 mediante; o producción de anticuerpo IgE
mediante, la muestra de las células inmunes del huésped.
c. Contactar la muestra de las células inmunes
del huésped con un IIS-ON.
d. Medir cualquier cambio en el número de
linfocitos o niveles de citocinas secretadas IFN\beta,
IFN-\alpha, IFN-\gamma,
IL-12 y IL-18 y/o en los niveles de
anticuerpos IgE o IgG1 en la muestra de células inmunes del huésped
después de contactar con el IIS-ON, en el que una
disminución en cualquiera de los valores medidos para la
proliferación de linfocitos, secreción de citocina o producción del
anticuerpo IgG2, así como un aumento en la producción de
anticuerpos IgG1 y IgE, comparado con las mediciones tomadas en la
etapa (b) indica que un ISS-ODN objeto de
inhibición mediante el IIS-ON está presente en la
muestra de células inmunes del huésped.
Un IIS-ON particular que inhibe
la actividad del IIS-ODN que contiene un motivo CpG
incluye los oligonucleótidos que están comprendidos en la siguiente
estructura primaria general:
5'-Purina-Purina-[Y]-[Z]-Pirmidina-Pirimidina-3'
o
5'-Purina-Purina-[Y]-[Z]-Pirimidina-poliPirimidina-3'
en donde Y es cualquier nucleótido que se
produce de manera natural o sintética excepto citosina y es
preferiblemente guanosina, adenosina o inosina (para ARN
IIS-ON), más preferiblemente guanosina. En general,
Z es cualquier nucleótido que se produce de manera natural o
sintética o la repetición del mismo nucleótido. Preferiblemente, si
Y es inosina, Z es inosina o una o más guanosina(s). Si Y es
guanosina, Z es preferiblemente guanosina o una o más
citosina(s) no metiladas. Si Y es adenosina, Z es
preferiblemente guanosina. Sin embargo, cuando Y no es guanosina,
adenosina o inosina, Z es guanosina, adenosina o inosina. Más
preferiblemente, las purinas 5' son el mismo nucleótido, porque son
las pirimidinas 3'. Por ejemplo, si ** es YZ, las purinas 5' y las
pirimidinas 3' pueden ser AA**TT, AG**TT, GA**TT, GG**TT, AA**TC,
AG**TC, etc.
\vskip1.000000\baselineskip
La estructura del hexámero del núcleo del
IIS-ON anterior se puede flanquear antes y/o después
mediante cualquier número o composición de nucleótidos o
nucleósidos. Sin embargo, el IIS-ON tendrá
preferiblemente una longitud de 6 mer, o entre 6 y 45 mer de
longitud, para mejorar la absorción del IIS-ON y
minimizar las interacciones no específicas entre el
IIS-ON y el vector de expresión recombinante o
células huésped objetivo. Preferiblemente, cualquier secuencia que
flanquea el IIS-ON presentes se construyen para
coincidir con las secuencias flanqueadoras presentes en cualquier
ISS-ODN conocido (tal como la secuencia flanqueadora
DY1038 (TTGACTGTG******AGAGATGA), donde ****** es la secuencia de
hexámero inmunoestimulatoria. Los expertos en la materia serán
familiares, o pueden identificar fácilmente, las secuencias de
nucleótidos reportadas de IIS-ODN conocido. Para
facilidad de referencia en este respecto, las siguientes fuentes son
especialmente útiles:
Yamamoto, et al., Microbiol.
Immunol., 36:983 (1992)
Ballas, et al., J.
Immunol., 157:1840 (1996)
Klinman, et al., J.
Immunol., 158:3635 (1997)
Sato, et al., Science,
273:352 (1996)
Cada uno de estos artículos se incorpora aquí
como referencia para el propósito de ilustrar el nivel de
conocimiento en la técnica con referencia a la composición de
nucleótido del ISS-ODN.
Los IIS-ON inhibitorios
particulares de la invención incluyen los que tienen las siguientes
secuencias de hexámero:
1. IIS-ODN que tiene
dinucleótidos "GG": AAGGTT, AGGGTT, GGGGTT, GGGGTC, AAGGTC,
AAGGCC, AGGGTC, GAGGTT, GAGGTC, GAGGCC, GGGGCT, etc.
2. IIS-ODN que tiene
dinucleótidos "GC": AAGCTT, AGGCTC, AGGCCC, GAGCTT, GAGCTC,
GAGCCC, GGGCTT, GGGCTC, GGGCCC, AAGCCC, AAGCCT, AGGCCT, GAGCCT,
etc.
3. Sustituciones de inosina y/o adenosina para
nucleótidos en las secuencias de hexámero anteriores hechas según
las fórmulas indicadas anteriores.
\vskip1.000000\baselineskip
Los hexámeros de IIS-ON con una
actividad inhibitoria esperada especialmente fuerte son aquellos con
dinucleótidos de competencia GG y GC, particularmente AAGGTT
(DY1019 en las fiuras), AAGCTT (DY1041 en las figuras), AGGGCT, y
GAGGTT (que incluye sus análogos de
Pirimidina-pPirimidina 3').
El IIS-ON puede ser un ADN de
cadena simple o de cadena doble, ARN de cadena simple o doble y/o
oligonucleósidos. Las bases de nucleótidos del
IIS-ON que flanquean los dinucleótidos de
competencia pueden ser las bases conocidas que se producen de
manera natural o bases sintéticas no naturales (por ejemplo, TCAG o,
en ARN, UACGI). Los oligonucleósidos se pueden incorporar en la
región interna y/o terminales de los IIS-ON
utilizando técnicas convencionales para el uso de puntos de
fijación para otros compuestos (por ejemplo, péptidos). La(s)
base(s), fracción de azúcar, grupos de fosfato y terminales
de los IIS-ON se pueden modificar de cualquier
manera conocida para los expertos en la materia para construir un
IIS-ON que tiene las propiedades deseadas además de
la actividad inhibitoria del IIS-ON. Por ejemplo,
se pueden unir fracciones de azúcar a las bases de los nucleótidos
del IIS-ON en cualquier configuración estérica.
Además, las modificaciones del grupo fosfato de la espina dorsal
(por ejemplo, enlaces internucleótidos de metilfosfonato,
fosforotioato, fosforoamidato y fosforoditioato) pueden conferir
actividad antimicrobiana en los IIS-ON, haciéndolos
particularmente útiles en aplicaciones terapéuticas.
Las técnicas para hacer estas modificaciones de
los grupos fosfato en los oligonucleótidos son conocidas en la
técnica y no requieren una explicación detallada. Para revisión de
una de estas técnicas útiles, se prepara y oxida un triéster de
fosfato intermedio para el producto de oligonucleótido objetivo en
el triéster de fosfato que se produce naturalmente con iodina
acuosa o con otros agentes, tales como aminas anhidras. Los
fosforamidatos de oligonucleótidos resultantes se pueden tratar con
azufre para producir fosforotioatos. La misma técnica general
(excepto la etapa de tratamiento con azufre) se puede aplicar para
producir metilfosfoamiditas a partir de metilfosfonatos. Para más
detalles con referencia a las técnicas de modificación de grupos de
fosfato, los expertos en la materia pueden desear consultar las
patentes US 4.425.732; 4.458.066; 5.218.103 y 5.453.496, así como
Tetrahedron Lett. en 21:4149 (1995), 7:5575 (1986), 25:1437 (1984) y
Journal Am. ChemSoc., 93:6657 (1987), cuyas descripciones se
incorporan aquí para el único propósito de ilustrar el nivel
estándar de conocimiento en la técnica referente a la preparación
de estos compuestos.
Una modificación del grupo de fosfato
particularmente útil es la conversión a formas fosforotioato o
fosforoditioato de los oligonucleótidos IIS-ON.
Además de sus propiedades potencialmente antimicrobianas, los
fosforotioatos y fosforoditioatos son más resistentes a la
degradación en vivo que sus partes contrarias de oligonucleótidos
no modificadas, haciendo los IIS-ON de la invención
más disponibles para el huésped.
Los IIS-ON se pueden sintetizar
utilizando técnicas y equipos de síntesis de ácido nucleico que son
bien conocidos en la técnica. Por referencia en este sentido,
ver, por ejemplo, Ausubel, et al., Current Protocols
in Molecular Biology, Chs. 2 y 4 (Wiley Interscience, 1989);
Maniatis, et al., Molecular Cloning: A Laboratory Manual
(Cold Spring Harbor Lab., New York, 1982); Patente US 4.458.066 y
Patente US 4.650.675. Estas referencias se incorporan aquí como
referencia para el único propósito de demostrar el conocimiento en
la técnica referente a la producción de oligonucleótidos
sintéticos.
Alternativamente, se puede obtener
IIS-ON mediante mutación de ISS-ON
microbiano aislado para sustituir un dinucleótido de competición
para el motivo CpG que se produce de manera natural. Los
procedimientos de cribado que se basan en hibridización de ácido
nucleico hacen posible aislar cualquier secuencia de polinucleótido
de cualquier organismo, previendo que esté disponible la sonda o el
anticuerpo adecuado. Las sondas de oligonucleótidos, que
corresponden a una parte de la secuencia que codifica la proteína en
cuestión, se pueden sintetizar químicamente. Esto requiere que se
conozcan cortas cadenas de oligopéptido de la secuencia de
aminoácido. La secuencia de ADN que codifica la proteína también se
puede deducir del código genético, sin embargo, debe tenerse en
cuenta la degeneración del código.
Por ejemplo, una librería de ADNc que se cree
que contiene un polinucleótido que contiene ISS de interés se puede
cribar mediante la inyección de varios ARNm derivados de ADNcs en
oocitos, que permiten un tiempo suficiente para que se produzca la
expresión de los productos de los genes de ADNc, y se prueba la
presencia del producto de expresión de ADNc deseado, por ejemplo,
mediante el uso del anticuerpo específico para un péptido
codificado mediante el polinucleótido de interés o mediante el uso
de sondas para los motivos repetidos y una características del
diseño de expresión del tejido de un péptido codificado mediante el
polinucleótido de interés. Alternativamente, una librería de ADNc
se puede cribar indirectamente para la expresión de los péptidos de
interés que tienen por lo menos un epítope que utiliza anticuerpos
específicos para los péptidos. Estos anticuerpos pueden ser de
manera policlonal o monoclonal derivados y usados para detectar un
producto de expresión indicativo de la presencia del ADNc de
interés.
Una vez se ha obtenido el polinucleótido que
contiene ISS, se puede acortar a la longitud deseada, por ejemplo,
mediante digestión enzimática utilizando técnicas convencionales. El
motivo CpG en el producto oligonucleótido del
ISS-ODN muta a continuación para sustituir un
dinucleótido de competición para el motivo CpG. Las técnicas para
hacer las mutaciones de sustitución en sitios particulares en el ADN
que tiene una secuencia conocida son bien conocidas, por ejemplo
mutagénesis de cebo M13 a través de PCR. Como el
IIS-ON es no codificador, no hay ningún asunto
respecto a mantener un marco de lectura abierto en la realización
de la mutación de sustitución. Sin embargo, para uso en vivo, el
material inicial del polinucleótido, el oligonucleótido de
ISS-ODN intermedio o producto de mutación del
IIS-ON se han de volver substancialmente puros (es
decir, tan libres de contaminantes que se producen naturalmente y
de LPS como sea posible utilizando técnicas conocidas y elegidos
por parte de un experto en la
materia).
materia).
Los IIS-ON de la invención se
pueden usar en solitario o se pueden incorporar en cis o en
trans en un vector de expresión recombinante (plásmido,
cósmido, virus o retrovirus) que puede, a su vez, codificar
cualquier proteína terapéuticamente beneficiosa que se pueda
suministrar por parte de un vector de expresión recombinante. Por
motivos de conveniencia, los IIS-ON se administran
preferiblemente sin incorporación en un vector de expresión. Sin
embargo, si se desea la incorporación en un vector de expresión,
esta incorporación se puede realizar utilizando técnicas
convencionales que no requieran una explicación detallada a un
experto en la materia. Para revisión, sin embargo, los expertos
puede desear consultar Ausubel, Current Protocols in Molecular
Biology, supra.
Brevemente, la construcción de vectores de
expresión recombinantes utiliza técnicas de ligadura estándar. Para
el análisis para confirmar las secuencias correctas en los vectores
construidos, las mezclas de ligadura se pueden usar para
transformar una célula huésped y transformadores exitosos
seleccionados mediante resistencia antibiótica si es apropiado. Los
vectores de los transformadores se preparan, analizan mediante
restricción y/o secuencian, por ejemplo, mediante el procedimiento
de Messing, et al., (Nucleic Acids Res., 9:309, 1981), el
procedimiento de Maxam, et al., (Methods in Enzymology,
65:499,1980), u otros procedimientos adecuados que serán conocidos
por parte de los expertos en la materia. La separación de tamaños de
fragmentos desprendidos se realiza utilizando electroforesis de gel
convencional tal como se describe, por ejemplo, por parte de
Maniatis, et al., (Molecular Cloning, pp.
133-134, 1982).
Las células huésped se pueden transformar con
los vectores de expresión de esta invención y cultivar en un medio
nutriente convencional modificado como es apropiado para inducir los
promotores, seleccionando transformadores o amplificando genes. Las
condiciones de cultivo, tal como la temperatura, el pH y similares,
son las usadas previamente con la célula huésped seleccionada para
la expresión, y serán evidentes para el experto en la materia
ordinario.
Si se utiliza un vector de expresión
recombinante como portador para los IIS-ON de la
invención, se prefieren particularmente plásmidos y cósmidos por su
falta de patogenicidad. Sin embargo, los plásmidos y los cósmidos
están sometidos a degradación en vivo más rápidamente que los virus
y, por lo tanto, no proporcionan una dosificación adecuada de
IIS-ON para inhibir substancialmente la actividad
inmunoestimulatoria del IIS-ODN ejercida mediante
un vector de terapia génica administrado de manera sistémica. De las
alternativas de vectores virales, los virus adenoasociados poseerán
la ventaja de su baja patogenicidad. La relativamente baja capacidad
de los virus adenoasociados para la inserción de genes extraños no
supondrá ningún problema en este contexto debido al tamaño
relativamente pequeño en el que los IIS-ON de la
invención se pueden sintetizar.
Otros vectores virales que se pueden utilizar en
la invención incluyen adenovirus, virus adenoasociados, virus de
herpes, vaccinia o un virus de ARN tal como un retrovirus. Los
vectores retrovirales son preferiblemente derivados de una murina,
retrovirus VIH aviario o humano. Ejemplos de vectores retrovirales
en los un único gen extraño se puede insertar incluyen, pero no
están limitados a: virus de leucemia de murina Moloney (MoMuLV),
virus de sarcoma de murina Harvey (HaMuSV), virus de tumor mamario
de murina (MuMTV), y virus de sarcoma Rous (RSV). Una pluralidad de
vectores retrovirales adicionales pueden incorporar múltiples genes.
Todos estos vectores pueden transferir o incorporar un ge para un
marcador que se puede seleccionar, de manera que se pueden
identificar y generar células transducidas.
Como los retrovirus recombinantes son
defectuosos, requieren ayuda para producir partículas de vector
infeccionas. Esta ayuda se puede proporcionar, por ejemplo, usando
líneas celulares de ayuda que contienen plásmidos que codifican
todos los genes estructurales de los retrovirus bajo el control de
las secuencias regulatorias en el LTR. Estos plásmidos no disponen
de una secuencia de nucleótido que permita al mecanismo de
empaquetado reconocer una transcripción de ARN para encapsidación.
Las líneas celulares de ayuda que tienen omisiones de la señal de
empaquetado incluyen, pero no están limitadas a, \Psi2, PA317 y
PA12, por ejemplo. Estas líneas celulares producen viriones vacíos,
ya que no se empaqueta ningún genoma. Si se introduce un vector
retroviral en estas células de ayuda en las que la señal de
empaquetado está intacta, pero los genes estructurales se
reemplazan por otros genes de interés, el vector se puede empaquetar
y se puede producir el virión del vector.
Insertando una o más secuencias de interés en el
vector viral, junto con otro gen que codifica el ligando para un
receptor en una célula objetivo específica, por ejemplo, el vector
se puede volver el objetivo específico. Los vectores retrovirales
se pueden hacer objetivos específicos insertando, por ejemplo, un
polinucleótido que codifica un azúcar, un glicolípido o una
proteína. El objetivo preferido se cumple usando un anticuerpo para
apuntar al vector retroviral. Los expertos en la materia sabrán, o
pueden determinar fácilmente sin experimentación indebida,
secuencias específicas de polinucleótidos que se pueden insertar en
el genoma retroviral para permitir el suministro objetivo
específico del vector retroviral que contiene los polinucleótidos de
interés.
Alternativamente, se puede usar un sistema de
dispersión coloidal para el suministro objetivo. Los sistemas de
dispersión coloidal incluyen complejos macromoleculares,
nanocápsulas, microesferas, cuentas y sistemas basados en lípidos
que incluyen emulsiones de aceite en agua, micelas, micelas
mezcladas, y liposomas. El sistema coloidal preferido de esta
invención es un liposoma.
Los liposomas son vesículas de membrana
artificial que son útiles como vehículos de suministro in
vitro y en vivo. Se ha mostrado que grandes vesículas
unilaminares (LUV), que varían en tamaño entre
0,2-4,0 \mum pueden encapsular un porcentaje
substancial de un tampón acuoso que contiene grandes macromoléculas.
ARN, ADN y viriones intactos se pueden encapsular en el interior
acuoso y se pueden suministrar a células en una forma
biológicamente activa (Fraley, et al., Trends Biochem. Sci.,
6:77, 1981). Además de las células de mamíferos, los liposomsa se
han usado para suministrar polinucleótidos en células de plantas,
levadura y bacterias. Para que un liposoma sea un vehículo de
transferencia génica eficiente, las siguientes características deben
estar presentes: (1) encapsulación de los genes que codifican los
polinucleótidos antisentido con una alta eficiencia mientras no se
comprometa su actividad biológica; (2) unión preferente y
substancial a una célula objetivo en comparación con células no
objetivo; (3) suministro de contenidos acuosos de la vesícula al
citoplasma celular objetivo con una alta eficiencia; y (4)
expresión precisa y efectiva de información génica (Mannino, el
al., Biotechniques, 6:682, 1988).
La composición del liposoma es usualmente una
combinación de fosfolípidos, particularmente fosfolípidos de
temperatura de transición de fase alta, usualmente en combinación
con esteroides, especialmente colesterol. Otros fosfolípidos u
otros lípidos también se pueden usar. Las características físicas de
los liposomas dependen del pH, la resistencia iónica, y la
presencia de cationes divalentes.
Ejemplos de lípidos útiles en la producción de
liposomas incluyen compuestos de fosfatidilo, tales como
fosfatidilglicerol, fosfatidilcolina, fosfatidilserina,
fosfatidiletanolamina, esfingolípidos, cerebrósidos, y
gangliósidos. Particularmente útiles son los
diacilfosfatidilgliceroles, donde la porción de lípido contiene de
14 a 18 átomos de carbono, particularmente entre 16 y 18 átomos de
carbono, y está saturada. Los fosfolípidos ilustrativos incluyen
fosfatidilcolina, dipalmitoilfosfatidilcolina y
distearoilfosfatidilcolina.
El objetivo de los liposomas se puede clasificar
basado en factores anatómicos y de mecanismos. La clasificación
anatómica se base en el nivel de selectividad, por ejemplo,
específicos de órganos, específicos de células, y específicos de
orgánulos. El objetivo de mecanismos se puede distinguir basado en
si es pasivo o activo. El objetivo pasivo utiliza la tendencia
natural de los liposomas a distribuir las células del sistema
retículo-endotelial (RES) en órganos que contienen
capilares sinusoidales. El objetivo activo, por lo otro lado,
implica la alteración del liposoma mediante el acoplamiento del
liposoma a un ligando específico tal como un anticuerpo monoclonal,
azúcar, glicolípido o proteína, o cambiando la composición o el
tamaño del liposoma para conseguir apuntar a órganos y tipos
celulares diferentes de los sitios de localización que se producen
naturalmente.
La superficie del sistema de suministro objetivo
se puede modificar en una variedad de maneras. En el caso de un
sistema de suministro específico liposomal, los grupos de lípidos se
pueden incorporar en la bicapa de lípidos del liposoma para
mantener el ligando específico en asociación estable con la bicapa
liposomal. Se pueden usar varios grupos de enlace bien conocidos
para unir las cadenas de lípidos al ligando específico (ver,
e.g., Yanagawa, et al., Nuc. Acids Symp. Ser., 19:189 (1988);
Grabarek, et al., Anal.Biochem., 185:131 (1990); Staros,
et al., Anal. Biochem., 156:220 (1986) y Boujrad, et
al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 90:5728 (1993), cuyas
descripciones se incorporan aquí como referencia solamente para
ilustrar el nivel estándar de conocimiento en la técnica respecto a
la conjugación de oligonucleótidos en lípidos).
El suministro específico de
IIS-ON también se puede conseguir mediante la
conjugación de los IIS-ON en la superficie de los
vectores de expresión recombinante virales y no virales, en un
antígeno u otro ligando, en un anticuerpo monoclonal o en cualquier
molécula que tenga la especificidad de unión deseada. Un conjugado
de IIS-ODN particular de interés es uno en el que un
autoantígeno o autoanticuerpo es el socio del conjugado de
IIS-ODN. Los conjugados de autoantígeno de
IIS-ODN son útiles en la activación de las
respuestas inmunes de tipo Th2 del huésped en el autoantígeno
(suprimiendo las respuestas Th1 inducidas mediante el propio
autoantígeno; ver, por ejemplo, Conboy, et al., J.
Exp. Med., 185:439-451 (1997)), mientras que los
conjugados de anticuerpos de IIS-ODN son útiles en
la inducción de inmunidad pasiva en un huésped que sufre una
condición autoinmune. Procedimientos específicos para el suministro
de estos conjugados, así como IIS-ON en general, se
describen en mayor detalle infra.
Los expertos en la material ordinarios estarán
familiarizados con, o pueden determinar fácilmente, las fuentes
para autoantígenos y autoanticuerpos útiles como conjugados de
IIS-ON. Ejemplos de estos materiales conjugados
incluyen proteína básica de mielina (ver, por ejemplo, la
información de secuencias y fuentes proporcionada en Segal, et
al., J. Immunol., 158:5087 (1997); Matsuo, et al., Am. J.
Pathol., 150:1253 (1997); and Schluesener, FEMS
Immunol.Med.Microbiol., 17:179 (1997)); autoantígeno del síndrome de
Sjorgen (ver, por ejemplo, Hanjei, et al., Science,
276:604 (1997)); autoantígeno de hemocromatosis (ver, por
ejemplo, Ruddy, et al., Genome Res., 7:441 (1997)), proteína
La/SSB (ver, por ejemplo, Castro, et al., Cell
Calcium, 20:493 (1996)); autoantígeno de lupus HsEg5 (ver,
por ejemplo, Whitehead, et al., Arthritis Rheum., 39:1635
(1996)); autoantígeno de lupus nuclear Ki (ver, por ejemplo,
Paesen y Nuttal, Biochem. Biophys. Acta, 1309:9 (1996)); y
anticuerpos para los mismos (ver, por ejemplo, Menon, et
al., J. Autoimmun., 10:43 (1997) y Rahman, et al., Semin.
Arthritis Rheum., 26:515 (1996) [anticuerpos monoclonales
antifosfolípidos de humanos (anti-ADN)]; y, Kramers,
et al., J. Autoimmun., 9:723 (1997) [autoanticuerpos
monoclonales de lupus antinucleosoma]). Cada una de las referencias
citadas se incorpora aquí solamente para ilustrar el nivel de
conocimiento y la práctica en la técnica referente a la identidad,
actividad y estructura de autoantígenos y autoanticuerpos.
Ejemplos de otros socios conjugados útiles
incluyen cualquier antígeno inmunogénico (incluyendo alérgenos,
partículas virales vivas y atenuadas y antígenos tumorales),
péptidos específicos (tales como ligandos receptores, anticuerpos y
fragmentos de anticuerpos, hormonas y enzimas), antígenos no
peptídicos (acoplados a través de un enlace péptido, tales como
lípidos, polisacáridos, glicoproteínas, gangliósidos y similares) y
citosinas (incluyendo interleucinas, interferones, eritorpoietina,
factor de necrosis tumoral y factores de estimulación de colonias).
Estos socios conjugados se pueden preparar según técnicas
convencionales (por ejemplo, síntesis de péptidos) y están
disponibles comercialmente.
Los expertos en la materia también estarán
familiarizados con, o podrán determinar fácilmente, procedimientos
útiles en la preparación de conjugados de
oligonucleótido-péptido. La conjugación se puede
realizar en cualquier terminal del IIS-ON o en una
base adecuadamente modificada en una posición interna (por ejemplo,
una citosina o uracil). Como referencia, se conocen procedimientos
para conjugar oligonucleótidos en proteínas y en fracciones de
oligosacáridos de Ig (ver, por ejemplo, O'Shannessy, et
al., J.Applied Biochem., 7:347 (1985), cuya descripción se
incorpora aquí como referencia solamente para ilustrar el nivel
estándar de conocimiento en la técnica referente a la conjugación
de oligonucleótidos). Otra referencia útil es Kessler:
"Nonradioactive Labeling Methods for Nucleic Acids", en Kricka
(ed.), Nonisotopic DNA Probe Techniques (Acad.Press, 1992)).
Brevemente, ejemplos de procedimientos de
conjugación adecuados conocidos incluyen: conjugación a través de
fijación 3' a través de química de soporte sólido (ver, por
ejemplo, Haralambidis, et al., Nuc. Acids Res., 18:493
(1990) y Haralambidis, et al., Nuc. Acids Res., 18:501 (1990)
[síntesis de soporte sólido de socio de péptido]; Zuckermann, et
al., Nuc. Acids Res., 15:5305 (1987), Corey, et al.,
Science, 238:1401 (1987) y Nelson, et al., Nuc. Acids Res.,
17:1781 (1989) [síntesis de soporte sólido de socio de
olignucleótido]). Los enlaces del grupo amino-amino
se pueden realizar tal como se describe en Benoit, et al.,
Neuromethods, 6:43 (1987), mientras que los enlaces del grupo
tiol-carboxil se pueden realizar como se describe en
Sinah, et al., Oligonucleotide Analogues: A Practical
Approach (IRL Press, 1991). En estos últimos procedimientos, el
socio del oligonucleótido se sintetiza sobre un soporte sólido y un
grupo de enlace que comprende una amina protegida, tiol o grupo
carboxil opuesto a la fosforamidita se fija de manera covalente con
el 5'-hidroxil (ver, por ejemplo, las
patentes US 4.849.513; 5.015.733; 5.118.800 y 5.118.802).
El enlace del socio del oligonucleótido a un
péptido se puede realizar también a través de la incorporación de
un brazo de enlace (por ejemplo, gripo amino o carboxil) a una base
de citosina o uracil modificada (ver, por ejemplo, Ruth, 4th
Annual Congress for Recombinant DNA Research at 123). También se
pueden usar enlaces de afinidad (por ejemplo
biotina-estreptavidina) (ver, por ejemplo,
Roget, et al., Nuc. Acids Res., 17:7643 (1989)).
También se conocen procedimientos para enlazar
oligonucleótidos con lípidos e incluyen la síntesis de conjugados
de oligo-fosfolípidos (ver, por ejemplo,
Yanagawa, et al., Nuc. Acids Symp.Ser., 19:189 (1988)),
síntesis de conjugados de ácidos oligo-grasos
(ver, por ejemplo, Grabarek, et al., Anal. Biochem.,
185:131 (1990)) y conjugados oligo-esterol
(ver, por ejemplo, Boujrad, et al., Proc. Natl. Acad.
Sci USA, 90:5728 (1993)).
Cada una de las referencias anteriores se
incorpora aquí como referencia con el único propósito de ilustrar
el nivel de conocimiento y habilidad en la técnica respecto a los
procedimientos de conjugación de oligonucleótidos.
Si se suministra sin el uso de un vector u otro
sistema de suministro, los IIS-ON se prepararán en
una composición farmacéuticamente aceptable. Los portadores
farmacéuticamente aceptables preferidos para su uso con los
IIS-ON de la invención pueden incluir soluciones
acuosas o no acuosas estériles, suspensiones y emulsiones. Ejemplos
de solventes no acuosos son propileno glicol, polietileno glicol,
aceites vegetales tales como aceite de oliva, y ésteres orgánicos
inyectables tales como etil oleato. Los portadores acuosos incluyen
agua, soluciones alcohólicas/acuosas, emulsiones o suspensiones,
incluyendo medios salinos y tamponados. Los vehículos parenterales
incluyen solución de cloruro de sodio, dextrosa de Ringer, dextrosa
y cloruro de sodio, aceites de Ringer lactados o fijos. Los
vehículos intravenosos incluyen reponedores de fluidos y nutrientes,
reponedores de electrolitos (tales como los basados en dextrosa de
Ringer), y similares. También pueden estar presentes preservativos
y otros aditivos tales como, por ejemplo, agentes antimicrobianos,
antioxidantes, quelantes, y gases inertes y similares. Una
composición de IIS-ON también se puede liofilizar
usando medios bien conocidos en la técnica, para la posterior
reconstitución y uso según la invención.
Los IIS-ON de la invención son
útiles en la inhibición de la actividad inmunoestimulatoria de los
ISS, siempre que estén presentes. Así, los IIS-ON
son útiles como, por ejemplo, agentes antiinflamatorios para
reducir las respuestas inmunes del huésped a los
ISS-ODN en bacterias y virus. Los
IIS-ON son también útiles como agentes para
suprimir la actividad inmunoestimulatoria de cualquier
ISS-ODN, conocido o desconocido, presente en
vectores de expresión recombinante, especialmente los usados para
terapia génica e inmunización. Además, los IIS-ODN
son útiles en la inhibición de respuestas autoinmunes del huésped
estimuladas mediante ISS-ODN microbiano y en la
activación de respuestas de tipo Th2 al antígeno.
En este contexto, "inhibición" se refiere a
una reducción en la respuesta inmune del huésped comparada con el
nivel de respuesta inmune del huésped estimulado con
ISS-ODN antes de la administración del
IIS-ODN. Como el IIS-ODN estimula
la secreción de estimulación de ciertas citocinas (por ejemplo,
IL-12, IL-18 y IFNs) y tiende a
cambiar la respuesta inmune celular del huésped al repertorio Th1,
la medición de los niveles de citocina, proliferación de linfocitos
estimulados con citocina, niveles de anticuerpos IgG2 (cuya
producción es indicativa de una respuesta de linfocitos Th1),
niveles IgE (cuya supresión es indicativa de una respuesta de
linfocitos Th1) y niveles de anticuerpos IgG1 (cuya producción es
indicativa de una respuesta de linfocitos Th2) son todos valores
adecuados para su uso en la detección de actividad inhibitoria del
IIS-ODN. Ejemplos y detalles específicos de
procedimientos para determinar estos valores se describen también a
continuación.
Respecto a los cambios en el repertorio Th1/Th2
y los consiguientes cambios en los niveles de citocina, es útil
recordar que los linfocitos CD4+ generalmente caen en uno de dos
subconjuntos distintos; es decir, las células Th1 y Th2. Las
células Th1 segregan principalmente IL-2,
IFN\gamma y TNF\beta (cuyos últimos dos median en la activación
macrófaga y retrasan el tipo de hipersensibilidad), mienras que las
células Th2 principalmente segregan IL-4 (que
estima la producción de anticuerpos IgE), IL-5,
IL-6 y IL-10. Estos subconjuntos
CD4+ ejercen una influencia negativa entre sí; es decir, la
secreción de linfocinas Th1 inhibe la secreción de linfocinas Th2 y
viceversa. Además, se cree que la exposición de las células Th2 a
linfocitos T citotóxicos (CTLs) también suprime la actividad
celular TH2.
Los factores que se creen que favorecen la
activación Th1 se parecen a los inducidos mediante infección viral
e incluyen patógenos intracelulares, exposición a
IFN-\beta, IFN-\alpha,
IFN\gamma, IL-12 y IL-18, así
como la presencia de APCs y la exposición a bajas dosis de antígeno.
Las respuestas inmunes de tipo Th1 también predominan en las
enfermedades autoinmunes. Los factores que se creen que favorecen la
activación Th2 incluyen la exposición a IL-4 y
IL-10, la actividad APC sobre la parte de linfocitos
B y altas dosis de antígeno. Las células Th1 activas (IFN\gamma)
mejoran la inmunidad celular y, por lo tanto, de particular valor
en la respuesta a infecciones intracelulares, mientras que las
células Th2 activas mejoran la producción de anticuerpos y, por lo
tanto, son de valor en la respuesta a las infecciones extracelulares
(a pesar del riesgo de eventos anafilácticos asociados con la
inducción estimulada de IL-4 de producción de
anticuerpo IgE). Así, la capacidad de cambiar respuestas inmunes
del huésped del repertorio Th1 al Th2 y viceversa tiene una
significancia clínica substancial para mejorar y controlar la
inmunidad del huésped contra infecciones y alergias. Además, el
control sobre la liberación mediada de citocinas Th1/Th2 permite
controlar las respuestas immunes del huésped a los
auto-antígenos (que tienen significancia clínica
para el tratamiento de enfermedades autoinmunes) y para antígenos
de vector de expresión recombinante (que tienen significancia
clínica para el control de la expresión génica para terapia génica
e inmunización génica).
Para su uso en la modulación, la inmunogenicidad
de un vector de expresión recombinante, los IIS-ON
de la invención se administrarán según cualesquiera medios y rutas
mediante las cuales el vector de expresión recombinante específico
se administra a un huésped, incluyendo rutas in vivo y ex
vivo. La absorción del IIS-ON por parte de
células del huésped se produce por lo menos de manera tan robusta
como la absorción de la terapia y los vectores de inmunización, si
no más debido al pequeño tamaño de los IIS-ON
comparado con las dimensiones totales de los ácidos nucleicos
plásmido, viral y retroviral.
Un objetivo particular de la administración de
IIS-ON en este contexto es la inhibición de
ISS-ODN estimulado, la producción de citocina
mediada Th1. Así, una reducción que se puede medir de estos niveles
de citocina en un huésped tratado constituye la actividad
terapéutica del IIS-ON en esta realización de la
invención. La actividad terapéutica del IIS-ON
también se demuestra en este contexto mediante la prolongación de
la expresión génica, comparada con los niveles de expresión
obtenidos en ausencia de IIS-ON. Los expertos en la
materia en las técnicas de terapia e inmunización génica estarán muy
familiarizados con, o pueden determinar fácilmente, medios
clínicamente aceptables y rutas de administración de vectores de
terapia e inmunización y, por extensión,
IIS-ON.
Para su uso como agentes antiinflamatorios, los
IIS-ON y los conjugados IIS-ON se
administrarán según cualesquiera medios y rutas mediante las cuales
se administran antiinflamatorios y antibióticos conocidos. Un
objetivo particular de la administración de IIS-ODN
en este contexto es la inhibición de la producción de citocina
mediada Tg1 estimulada con ISS-ODN. Así, una
reducción que se puede medir de estos niveles de citocina en un
huésped tratado constituye la actividad terapéutica del
IIS-ODN en esta realización de la invención. Los
expertos en la materia en el tratamiento de enfermedades infecciosas
estarán muy familiarizados con, o pueden determinar muy fácilmente,
los medios y las rutas clínicamente aceptables para la
administración de antiinflamatorios y antibióticos y, por
extensión, IIS-ON y sus conjugados.
Para su uso como moduladores autoinmunes, los
IIS-ON y los conjugados de autoantígeno o
autoanticuerpo IIS-ON se administrarán según
cualesquiera medios y rutas mediante las cuales se practican
terapias conocidas para enfermedades autoinmunes. Un objetivo
particular de la administración de IIS-ODN en este
contexto es la inhibición de la producción de IL-12
mediada con Th1 estimulada con ISS-ODN. Así, una
reducción que se puede medir de los niveles de
IL-12 en un huésped autoinmune constituye la
actividad terapéutica del IIS-ODN en esta
realización de la invención. Los expertos en la materia en el
tratamiento de enfermedades infecciosas estarán muy familiarizados
con, o pueden determinar muy fácilmente, los medios y las rutas
clínicamente aceptables para la administración de
IIS-ON y sus conjugados.
Para su uso como moduladores de
ISS-ODN administrado con inmunoestimulantes, los
IIS-ON y los conjugados IIS-ON de
la invención se administrarán según cualesquiera medios y rutas
mediante las cuales el ISS-ODN específico se
administra a un huésped, incluyendo rutas in vivo y ex
vivo. Por ejemplo, si los ISS-ODN se administran
como adyuvantes en un protocolo de inmunización (ver, las
solicitudes de patente US presentadas al mismo tiempo y del mismo
titular Nº. 60/028.118 y 08/593.554), puede ser deseable poder
reducir o eliminar posteriormente la actividad inmunoestimulatoria
del ISS-ODN para modificar el transcurso de la
terapia. En este contexto, por lo tanto, los IIS-ON
sirven como conmutadores "off" ISS-ODN, con lo
cual se demuestra la actividad de los IIS-ON y los
conjugados de IIS-ON mediante una reducción medida
en la producción de citocina estimulada con
ISS-ODN, la producción de linfocitos estimulada con
IIS-ODN, o un cambio del repertorio de linfocitos
Th1.
Para su uso como adyuvantes para respuestas
inmunes de Th2 a antígeno extracelular, la IIS-ON de
la invención se administrará según cualesquiera medios y rutas
mediante las cuales vacunas basadas en antígenos se pueden
administrar a un huésped. Los cambios del repertorio de linfocitos
Th1 son una medida de la eficacia para el uso de
IIS-ON y conjugados de IIS-ON como
adyuvantes estimulatorios de linfocitos Th2 en presencia de
antígeno.
Una ventaja particular del
IIS-ON de la invención es su capacidad de ejercer
una actividad inhibitoria del ISS-ODN incluso con
dosis relativamente bajas. Aunque la dosificación utilizada variará
dependiendo de los objetivos clínicos a conseguir, un intervalo de
dosis adecuadas es el que proporciona hasta aproximadamente
1-200 \mug de IIS-ON/ml de
portador en una sola dosis. En vista de las enseñanzas
proporcionadas mediante esta descripción, los expertos en las
técnicas clínicas estarán familiarizados con, o podrán determinar
fácilmente, los parámetros adecuados para la administración de
IIS-ON según la invención.
En este respecto, la actividad inhibitoria del
IIS-ON depende esencialmente de la dosis. Por lo
tanto, para aumentar la potencia del IIS-ON en una
magnitud de dos, cada dosis simple se dobla en concentración. Para
su uso en la inhibición de la actividad del ISS-ODN
(incluyendo la actividad del ISS-ODN en vectores de
expresión recombinante), es útil administrar los
IIS-ON y los ISS-ODN específicos o
vectores en dosis equivalentes, a continuación aumentar la dosis de
IIS-ON como sea necesario para conseguir el nivel
deseado de inhibición. Para su uso como agente antiinflamatorio, es
útil administrar los IIS-ON en una dosis baja (por
ejemplo, de aproximadamente 1 \mug/ml a aproximadamente 50
\mug/ml), a continuación aumentar la dosis como sea necesario
para conseguir el objetivo terapéutico deseado. Alternativamente,
una dosificación específica de IIS-ON se puede
considerar de aproximadamente 1-10 \muM en una
muestra de sangre del huésped extraída dentro de las primeras
24-48 horas después de la administración del
IIS-ON.
Para maximizar la efectividad del
IIS-ON para inhibir la actividad inmunoestimulatoria
del ISS-ODN, los IIS-ON se
coadministran preferiblemente con los ISS-ODN i
vector de expresión recombinante específicos. Además, los
IIS-ON se pueden incubar previamente con el vector
de expresión recombinante específico antes de la administración al
huésped para reducir la capacidad de este último a la actividad
inmunoestimulatoria del ISS-ODN presente en el
huésped durante el tratamiento en un régimen de terapia o
inmunización. Para su uso como antiinflamatorio, los
IIS-ON se pueden coadministrar con, o tomarse de
otra manera por parte de un huésped tratado, otros productos
farmacéuticos antiinflamatorios.
Para estos propósitos, los
IIS-ON se suministran convenientemente en viales de
dosis simples y/o en conjuntos junto con dosis adecuadas de
ISS-ODN, vectores de expresión o agentes
antiinflamatorios. En conjuntos que incluyen vectores de expresión
recombinantes, los IIS-ON y los vectores se pueden
premezclar en viales de dosis simples. Si se requiere, medios para
administrar cada dosis a un huésped (por ejemplo, jeringuillas,
parches transdermales, dispositivos de iontoforesis e inhaladores).
A continuación se indican ejemplos que ilustran la actividad
inmunoinhibitoria de los IIS-ON. Los ejemplos son
solamente por propósitos de referencia y no deben construirse para
limitar la invención, que se define mediante las reivindicaciones
adjuntas. Todas las abreviaciones y términos usados en los ejemplos
tienen su significado esperado y ordinario, a menos que se
especifique lo contrario.
Se cultivaron esplenocitos de ratón Balb/c
hembra inmulógicamente naive (6-8 semanas de edad)
de cada animal. Supernatantes de los esplenocitos cultivados se
incubaron con 1 \mug/ml del ISS-ODN DY1018
ISS-ODN o 1 \mug/ml del ISS-ODN
DY1038 en salino normal (todas las secuencias de oligonucleótidos se
indican en la leyenda de las figuras y en la descripción de los
dibujos). Las columnas vertebrales de DY1018 y DY1038 se
modificaron como fosforotioatos. En este contexto, los
ISS-ODN sirvieron como adyuvantes no específicos
para estimulación in vitro del sistema inmune.
Dentro de las 4 horas de contacto con
ISS-ODN, los supernatantes se incubaron con varias
concentraciones de IIS-ON o un control. DY1039 (un
ISS con la citosina metilada), DY1040 y DY1043 (este último con
dinucleótidos en lugar del dinucleótido CG de DY1018 y DY1038)
sirvieron como controles. Para confirmar la posición de la
competición potencial con DY1018 y DY1038, todos los
oligonucleótidos eran idénticos a DY1038 (figuras 1 y 3) o DY1018
(figura 2) excepto para las regiones de hexámero identificadas en
las figuras y DY1043 (un control de secuencia irrelevante).
Se midió la proliferación de linfocitos antes y
después de la administración de IIS-ODN (como una
función de cuentas por minuto) utilizando técnicas de ensayo
convencionales. Cualquier cambio observable en la proliferación de
linfocitos entre los supernatantes se anotó. Los valores mostrados
en las figuras 1 a 3 son los promedios para cada grupo de ratones
probado.
Los resultados de estos ensayos se muestran en
las figures 1 a 3. Respecto a DY1038 (figuras 1 y 3) y DY1018
(figura 2), la inhibición de la actividad inmunoestimulatoria del
ISS mediante IIS-ON inhibitorio de la invención en
estos experimentos se demostró mediante IIS-ON
DY1019 (que tiene una región de hexámero que consiste en AAGGTT).
Otro IIS-ON inhibitorio fuertemente probado fue
DY1048 (región de hexámero=GAGGTC), DY1050 (región de
hexámero=AGGGCT), DY1060 (región de hexámero=TTGCAA) y DY1041
(región de hexámero=AAGCTT) (figura 3). La fuerza inhibitoria fue
dependiente de la dosis en una relación generalmente proporcional de
dosis en la reducción en la proliferación de linfocitos medida.
\vskip1.000000\baselineskip
Grupos de ratones se inmunizaron tal como se
describe en el Ejemplo 1, se sacrificaron y sus esplenocitos se
cultivaron. Los supernatantes de los espelnocitos cultivados se
incubaron con 1 \mug/ml de DY1018 ISS-ODN en
salino tal como se describe en el Ejemplo I. Dentro de las 4 horas,
los supernantantes se incubaron con varias concentraciones de
IIS-ON o un control. DY1039 (un ISS con la citosina
metilada), DY1040 y DY 1043 (este ultimo con dincucleótidos CC en
lugar del dinucleótido CG de DY1018) sirvieron como controles (todas
las secuencias de oligonucleótidos se indican en la leyenda de las
figuras y en la descripción de los dibujos. Para confirmar la
posición de la competición potencial con DY1018, todos los
oligonucleótidos eran idénticos a DY1018 excepto para las regiones
de hexámero identificadas y DY1043 (un control de secuencia
irrelevante).
Se midieron los niveles de
IFN-\gamma antes y después del contacto con
IIS-ODN. Cualquier cambio observable en la
secreción de IFN-\gamma (pg/ml de supernatantes)
entre los supernatantes se anotó. Los valores mostrados en la
figura 4 son los promedios para cada grupo de ratones probado.
Los resultados de estos ensayos se muestran en
la figura 4. Otra vez, la inhibición más fuerte de la actividad
inmunoestimulatoria del ISS mediante los IIS-ON
inhibitorios de la invención en estos experimentos se demostró
mediante IIS-ON DY1019 (que tiene una región de
hexámero que consiste en AAGGTT). DY1041 (region de
hexémero=AAGCTT) también fue muy inhibitorio, incluso en bajas dosis
(1 \mug/ml salino). En una dosis mayor (10 \mug/ml), los
niveles de INF-\gamma empezaron a disminuir
también en los ratones de control.
\vskip1.000000\baselineskip
Grupos de cuatro ratones Balb/c se coinmunizaron
con 10 \mug de antígeno \beta-galactosidasa y
50 \mug (en 50 \mul de salino normal) de IIS-ODN
DY1019 (identificado en la figura como
\beta-gal/M-ODN), la composición
de ISS-ODN
\beta-gal/ISS-ODN
(5'-AATTCAACGTTCGC-3'), el antígeno
\beta-gal y pKISS-3 (un plásmido
que tiene tres copias del hexámero AACGTT ISS-ODN en
la espina dorsal), el antígeno \beta-gal y
pKISS-0 (un plásmido de control que no tiene copias
del hexámero AACGTT ISS-ODN en la espina dorsal), o
salino solamente. Las respuestas Th2 en cada grupo se midieron
mediante ELISA como una función de los niveles IgE obtenidos
después de la activación. Tal como se muestra en la figura 5, las
respuestas potentes de tipo Th2 (por encima de 1000 CPM) se
obtuvieron solamente en los ratones que recibieron salino
(aproximadamente 1200 CPM en 1 semana después de la activación) y
\beta-gal/M-ODN (aproximadamente
1750 CPM en 1 semana después de la activación).
Además, se indujeron altos niveles de
anticuerpos IgG2a y bajos niveles de anticuerpos IgG1 (respuestas
de tipo Th1 y Th2, respectivamente) en respuesta al antígeno en los
ratones tratados con ISS-ODN, mientras que se
obtuvieron respuestas opuestas en los ratones tratados con
IIS-ON, mostrando así un cambio hacia el repertorio
Th2 en este último grupo.
\vskip1.000000\baselineskip
Esta lista de referencias citadas por el
solicitante está prevista únicamente para ayudar al lector y no
forma parte del documento de patente europea. Aunque se ha puesto
el máximo cuidado en su realización, no se pueden excluir errores u
omisiones y la OEP declina cualquier responsabilidad en este
respecto.
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Claims (29)
1. Procedimiento para la identificación de un
oligonucleótido (IIS-ON) que inhibe la actividad
inmunoestimulatoria de ISS-ODN, que comprende:
(a) contactar una población de células inmunes
estimuladas con antígenos con un polinucleótido inmunoestimulatorio
(ISS-ODN) que incluye por lo menos un motivo
5'-CG-3' no metilado para inducir la
proliferación de linfocitos en secreción de citocinas IFN\beta,
IFN-\alpha, IFN-\gamma,
IL-12 y IL-18 de, la producción de
anticuerpos IgG1 mediante, o la supresión de IgE en, la población
de células inmunes estimuladas con antígenos;
(b) medir cualquier cambio en el número de
linfocitos o los niveles de citocinas secretadas y/o los niveles de
anticuerpos IgE o IgG1 en la población de células estimuladas con
antígenos después de contactar con el ISS-ODN;
(c) contactar la población de células
estimuladas con antígenos con un oligonucleótido inhibitorio
IIS-ON candidato, comprendiendo dicho
IIS-ON una secuencia de nucleótidos hexamérica de
fórmula
5'-Purina-Purina-[Y]-[Z]-Pirimidina-Pirimidina-3'
o 5'
Purina-Purina-[Y]-[Z]-poli(Pirimidina)-3';
en la que Y es cualquier nucleótido que se produce naturalmente o
sintético excepto citosina y Z es cualquier nucleótido que se
produce naturalmente o sintético y en la que cuando Y no es
guanosina o inosina, Z es guanosina o inosina; y
(d) medir cualquier cambio en el número de
linfocitos o los niveles de citocinas IFN\beta,
IFN-\alpha, IFN-\gamma,
IL-12 y IL-18 secretadas y/o los
niveles de anticuerpos IgE o IgG1 en la población de células
estimuladas con antígenos después de contactar con el
oligonucleótido, en el que una disminución en cualquiera de los
valores medidos para la proliferación de linfocitos, secreción de
citocinas, o producción de anticuerpo IgG1, así como un aumento en
la producción de anticuerpo IgE, comparado con las mediciones
tomadas en la etapa (b) indica que el oligonucleótido inhibe la
actividad inmunoestimulatoria del ISS-ODN de la
etapa (a).
\vskip1.000000\baselineskip
2. Composición farmacéutica, que comprende:
a) un oligonucleótido que comprende una
secuencia de nucleótido hexamérica de fórmula
5'-Purina-Purina-[Y]-[Z]-Pirimidina-Pirimidina-3'
o 5'
Purina-Purina-[Y]-[Z]-poli(Pirimidina)-3';
en la que Y es cualquier nucleótido que se produce naturalmente o
sintético excepto citosina y Z es cualquier nucleótido que se
produce naturalmente o sintético y en la que cuando Y no es
guanosina o inosina, Z es guanosina o inosina, en la que dicho
oligonucleótido presenta un efecto inmunoinhibitorio contra un
polinucleótido inmunoestimulatorio que incluye por lo menos un
motivo 5'-CG-3' no metilado; y
b) un portador farmacéuticamente aceptable, para
su uso en un procedimiento de inhibición de la estimulación
mediante una secuencia inmunoestimulatoria que comprende por lo
menos un motivo CG no metilado.
\vskip1.000000\baselineskip
3. Composición para su uso según la
reivindicación 2, en la que Y es guanosina o inosina.
4. Composición para su uso según la
reivindicación 2 ó 3, en la que Y es inosina y Z es inosina o
guanosina.
5. Composición para su uso según la
reivindicación 2 ó 3, en la que Y es guanosina y Z es guanosina o
una citosina no metilada.
6. Composición para su uso según la
reivindicación 2, en la que dicha secuencia de nucleótido hexamérico
se selecciona entre AAGGTT, AAGGTC, AAGGCC, AGGGTT, AGGGTC, AGGGCT,
GGGGTT, GGGGTC, GGGGCT, GAGGTT, GAGGTC, GAGGCC, AAGCTT, AAGCTC,
AAGCCC, AAGCCT, AGGCTC, AGGCCC, AGGCCT, GGGCTT, GGGCTC, GGGCCC,
GAGCTT, GAGCTC, GAGCCC y GAGCCT.
7. Composición para su uso según una cualquiera
de las reivindicaciones 2 a 6, en la que el oligonucleótido tiene
una longitud de 6 nucleótidos a 45 nucleótidos.
8. Composición para su uso según una cualquiera
de las reivindicaciones 2 a 7, en la que dicho oligonucleótido
comprende una o más modificaciones de espina dorsal de fosfato.
9. Composición para su uso según la
reivindicación 8, en la que la espina dorsal de fosfato comprende un
enlace de fosforotioato.
10. Composición para su uso según una cualquiera
de las reivindicaciones 2 a 9, en la que el oligonucleótido se
conjuga a un péptido.
11. Composición para su uso según una cualquiera
de las reivindicaciones 2 a 10, para reducir la inflamación en un
huésped en respuesta a una infección microbiana.
12. Composición para su uso según la
reivindicación 11, en la que el microbio está presente en un huésped
vertebrado.
13. Composición para su uso según una cualquiera
de las reivindicaciones 2 a 10, para prolongar la expresión génica
de un vector de expresión recombinante que se cree que contiene por
lo menos un oligodeoxinucleótido inmunoestimulatorio
(ISS-ODN).
14. Composición para su uso según la
reivindicación 13, en la que el vector de expresión recombinante
está presente en un huésped vertebrado.
15. Composición para su uso según una cualquiera
de las reivindicaciones 2 a 14, para activar la respuesta inmune de
tipo Th2 a un antígeno.
16. Composición para su uso según una cualquiera
de las reivindicaciones 2 a 14, para reducir la producción de
citocina mediada con Th1 en un individuo.
17. Composición para su uso según la
reivindicación 16, en la que la citocina mediada con Th1 se
selecciona entre IL-12,
interferon-\gamma, y necrosis tumoral de
factor-\beta.
18. Procedimiento para detectar actividad
inmunoestimulatoria de ISS-ODN en un huésped, que
comprende:
(a) proporcionar una muestra de células inmunes
obtenidas de un huésped, cuyas células se creen que han sido
expuestas a un antígeno o autoantígeno;
(b) medir los niveles de de proliferación de
linfocitos en; la secreción de citocina de IFN\beta,
IFN-\alpha, IFN-\gamma,
IL-12 y IL-18 en; la producción de
anticuerpos IgG1 mediante; o la supresión de IgE en, la muestra de
células inmunes del huésped;
(c) contactar la muestra de células inmunes del
huésped con un oligonucleótido (IIS-ON) que
comprende una secuencia de nucleótido hexamérico de fórmula
5'-Purina-Purina-[Y]-[Z]-Pirimidina-Pirimidina-3'
o 5'
Purina-Purina-[Y]-[Z]-poli(Pirimidina)-3';
en la que Y es cualquier nucleótido que se produce naturalmente o
sintético excepto citosina y Z es cualquier nucleótido que se
produce naturalmente o sintético y en la que cuando Y no es
guanosina o inosina, Z es guanosina o inosina, en la que dicho
oligonucleótido presenta un efecto inmunoinhibitorio contra un
polinucleótido inmunoestimulatorio que incluye por lo menos un
motivo 5'-CG-3' no metilado; y
(d) medir cualquier cambio en el número de
linfocitos o los niveles de citocinas IFN\beta,
IFN-\alpha, IFN-\gamma,
IL-12 y IL-18 secretadas y/o los
niveles de anticuerpos IgE o IgG1 en la población de células
estimuladas con antígenos después de contactar con el
ISS-ON, en el que una disminución en cualquiera de
los valores medidos para la proliferación de linfocitos, secreción
de citocinas, o producción de anticuerpo IgG2, así como un aumento
en la producción de anticuerpos IgG1 o IgE, comparado con las
mediciones tomadas en la etapa (b) indica que un
IIS-ON está presente en la muestra de células
inmunes del huésped.
\vskip1.000000\baselineskip
19. Utilización de una composición farmacéutica,
que comprende:
(a) un oligonucleótido que comprende una
secuencia de nucleótido hexamérica de fórmula
5'-Purina-Purina-[Y]-[Z]-Pirimidina-Pirimidina-3'
o 5'
Purina-Purina-[Y]-[Z]-poli(Pirimidina)-3';
en la que Y es cualquier nucleótido que se produce naturalmente o
sintético excepto citosina y Z es cualquier nucleótido que se
produce naturalmente o sintético y en la que cuando Y no es
guanosina o inosina, Z es guanosina o inosina, en la que dicho
oligonucleótido presenta un efecto inmunoinhibitorio contra un
polinucleótido inmunoestimulatorio que incluye por lo menos un
motivo 5'-CG-3' no metilado; y
b) un portador farmacéuticamente aceptable, para
la fabricación de un medicamento para inhibir la estimulación
mediante una secuencia inmunoestimulatoria que comprende por lo
menos un motivo CG no metilado.
\vskip1.000000\baselineskip
20. Utilización según la reivindicación 19, en
la que Y es guanosina o inosina.
21. Utilización según la reivindicación 19 ó 20,
en la que Y es inosina y Z es inosina o guanosina.
22. Utilización según la reivindicación 19 ó 20,
en la que Y es guanosina y Z es guanosina o una citosina no
metilada.
23. Utilización según una cualquiera de las
reivindiaciones 19 a 22, en la que el oligonucleótido tiene una
longitud de 6 nucleótidos a 45 nucleótidos.
24. Utilización según una cualquiera de las
reivindicaciones 19 a 23, para reducir la inflamación en un huésped
en respuesta a una infección microbiana.
25. Utilización según la reivindicación 24, en
la que el microbio está presente en un huésped vertebrado.
26. Utilización según una cualquiera de las
reivindicaciones 19 a 25 para prolongar la expresión génica de un
vector de expresión recombinante que se cree que contiene por lo
menos un oligodeoxinucleótido inmunoestimulatorio
(ISS-ODN).
27. Utilización según la reivindicación 26, en
la que el vector de expresión recombinante está presente en un
huésped vertebrado.
28. Utilización según una cualquiera de las
reivindicaciones 19 a 27, para activar la respuesta inmune de tipo
Th2 a un antígeno.
29. Utilización según una cualquiera de las
reivindicaciones 19 a 27, para reducir la producción de citocina
mediada con Th1 en un individuo.
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